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Instituto de Previsión Social
Hospital Central
Gerencia de Salud
Dirección de Apoyo y Servicios
Departamento de Análisis Clínicos
Servicio de Laboratorio UTI
GUIA DE PROCEDIMIENTOS OPERATIVOS
ESTÁNDAR FASE ANALITICA
Elaborado por:
Dra. Myriam García
Revisado por:
Dra. Aurelia Torres
Aprobado por:
Dra. Milva Ibarrola
Instituto de Previsión Social
Hospital Central
Servicio de Laboratorio UTI
POE-QUI-01UTI
Procedimiento Operativo Estándar para el
examen de Química Sanguínea
Elaborado por:
Dra. Myriam García
Revisado por:
Dra. Aurelia Torres
Aprobado por:
Dra. Milva Ibarrola
Febrero-2019
Procedimiento Operativo Estándar para examen de
Hemograma
Código: HEMO-01UTI Revisión: 001
1
HISTORICO DE MODIFICACIONES
Versión
Nº
Fecha Apartados Pág. Causas de la
modificación
Recalificación
necesaria del
personal Si/No
Procedimiento Operativo Estándar para examen de
Hemograma
Código: HEMO-01UTI Revisión: 001
2
Procedimiento Operativo Estándar para examen de
Hemograma
Código: HEMO-01UTI Revisión: 001
3
CUADRO DE ABREVIATURAS
WBC
Recuento total de Glóbulos blancos o leucocitos
RBC
Recuento total de glóbulos rojos o eritrocitos
HGB
Concentración de hemoglobin
HCT
Valor de hematocrito: Proporción entre el volumen de eritrocitos y el
volumen total de sangre.
MCV
Volumen medio de eritrocitos en la muestra
MCH
Hemoglobina media por eritrocito
MCHC
Concentración media de hemoglobina en los eritrocito
PLT
Recuento total de plaquetas
PDW
Amplitud de distribución de trombocitos
Procedimiento Operativo Estándar para examen de
Hemograma
Código: HEMO-01UTI Revisión: 001
4
PCT
Plaquetocrito
P-LCR
Proporción de macrotrombocitos
P-LCC
Recuento de macrotrombocitos
NEUT%
Porcentaje de neutrófilos
LYMPH%
Porcentaje de linfocitos
MONO%
Porcentaje de monocitos
EO%
Porcentaje de eosinófilos
BASO%
Porcentaje de basófilos
NEUT#
Recuento de neutrófilos
LYMPH#
Recuento de linfocitos
Procedimiento Operativo Estándar para examen de
Hemograma
Código: HEMO-01UTI Revisión: 001
5
MONO#
Recuento de monocitos
EO#
Recuento de eosinófilos
BASO#
Recuento de basófilos
RDW-SD
Amplitud calculada de la distribución de los eritrocitos, desviación
estándar
RDW-CV
Amplitud calculada de la distribución de los eritrocitos, coeficiente de
variación
MPV
Volumen plaquetario medio
RET%
Porcentaje de reticulocitos
RET#
Recuento de reticulocitos
IRF
Fracción de reticulocitos inmaduros
Procedimiento Operativo Estándar para examen de
Hemograma
Código: HEMO-01UTI Revisión: 001
6
IMG#
Recuento de granulocitos inmaduros
IMG%
Porcentaje de granulocitos inmaduros
FPI
Fracción de plaquetas inmaduras
1 OBJETIVO
Describir los procedimientos para la determinación de la concentración de las
células sanguíneas de la serie blanca, serie roja, plaquetas y formula leucocitaria
comprendidos en un Hemograma, en muestras de sangre total de todos los
pacientes que acuden al laboratorio y muestras remitidas al mismo.
2 ALCANCE
A todas las muestras que ingresen al Servicio de UTI con pedido de Hemograma,
Eritrosedimentación.
3 RESPONSABLES
El Jefe de Servicio, Bioquímicos y técnicos asignados por la Jefatura según
cronograma de trabajo.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de
Hemograma
Código: HEMO-01UTI Revisión: 001
7
4 MATERIALES Y EQUIPOS
4.1 Guantes
4.2 Guardapolvo
4.3 Equipo automatizado para Hemograma
4.4 Gradillas
4.5 Láminas
4.6 Gasas
4.7 Colorantes
4.8 Timer
4.9 Gradilla para láminas
4.10 Punteras
4.11 Homogenizador de muestras
4.12 Pipetas automáticas
4.13 Microscopio óptico
4.14 Muestras:
Sangre entera con EDTA (Hemograma).
Sangre con Citrato (Eritrosedimentación).
4.15 Reactivos proveídos para la determinación.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de
Hemograma
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8
5 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1 FUNDAMENTO
Hemograma
El hemograma es un examen relativamente simple y en algunas situaciones nos
ayudan en la evaluación diagnóstica. Este examen proporciona datos sobre
recuento de eritrocitos, leucocitos, plaquetas, hematocrito, concentración de
hemoglobina, índices hematriméticos.
Eritrosedimentación- Velocidad de Sedimentación Globular (VSG).
Esta prueba refleja una respuesta pronta del huésped, para generar un ambiente
contra microorganismos o procesos patológicos, gracias a la producción de
citoquinas y proteínas de fase aguda, estas últimas provenientes en particular de
macrófagos y monocitos.
Se considera un proceso inespecífico.
5.2 MUESTRA REQUERIDA
Sangre entera con EDTA (Hemograma ).
Ayuno requerido: 8 horas.
Obs: En casos de necesidad se puede realizar el análisis sin ayuno previo.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de
Hemograma
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9
5.3 METODO
Citometría de flujo: para el recuento y diferenciación de leucocitos
(neutrófilos, linfocitos, eosinófilos, monocitos, basófilos), recuento de
granulocitos inmaduros, recuento de normoblastos.
Método colorimétrico: para la medición de hemoglobina.
Método de impedancia del flujo envolvente: para el recuento de
eritrocitos, plaquetas y reticulocitos.
Cálculo derivado del histograma del recuento de eritocitos: para la
determinación del MCV, MCH, MCHC,RDW-CV.
Cálculo derivado del histograma del recuento de plaquetas: para la
determinación del MPV.
Razón: Cálculo del Hematocrito.
Método Westergren modificado: para la determinación de la
eritrosedimentación.
VALORES DE REFERENCIA
Parámetros
Unidad de medida
Valores de Referencia
Glóbulos blancos
/µL
4.500 – 11.500
Glóbulos rojos
/µL
Hombres: 4500000 - 6500000
Mujeres: 3800000 - 5800000
Hemoglobina
g/Dl Hombres: 14 - 18
Mujeres: 12 – 16
Procedimiento Operativo Estándar para examen de
Hemograma
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10
Hematocrito
%
Hombres: 47 - 52
Mujeres: 37- 47
MCV
fL
83 – 97
MCH
Pg
27 – 31
MCHC
g/dL
32 – 36
RDW
%
10 - 14
Plaquetas
/µL
150000 - 450000
Neutrófilos relativos
%
55 – 70
Linfocitos relativos
%
17 – 45
Monocitos relativos
%
2,0 – 10,0
Eosinófilos relativos
%
1,0 – 4,0
Basófilos relativos
%
0,2 - 1,2
Neutrófilos absolutos
/µL
2000 – 7000
Linfocitos absolutos
/µL
800 – 4000
VPM
fL
6,2 – 11,8
Procedimiento Operativo Estándar para examen de
Hemograma
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5.4 PROCEDIMIENTO
5.4.1 ACCIONES EN FORMA SECUENCIAL
5.4.1.1 Hemograma
5.4.1.1.1 Determinar los valores de los controles que constan de tres niveles (nivel
bajo, normal y alto).
5.4.1.1.2 Etiquetar la muestra con el código correspondiente mediante el sistema
informático de gestión de laboratorio (LIS).
5.4.1.1.3 Colocar las muestras en el homogeneizador.
Se pueden procesar las muestras de dos maneras:
Sistema abierto (manual)
Seleccionar en el equipo el modo abierto
Escanear el código de barras
Quitar la tapa del tubo y pasar la muestra en el equipo automatizado
Sistema cerrado (automático)
Seleccionar en el equipo el modo cerrado
Colocar las muestras etiquetadas en las gradillas correspondientes
Introducir las muestras en el equipo para su procesamiento
5.4.1.1.4 Informar los valores obtenidos.
5.4.1.1.4 Informar los valores obtenidos.
5.4.2 ESPACIO FISICO Y CONDICIONES AMBIENTALES
La determinación se realiza dentro del servicio de Hemograma en ambiente
climatizado (18 °C – 25 °C).
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Hemograma
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5.5. CRITERIOS DE ACEPTACION Y RECHAZO
5.5.1 Las muestras para estudio deberán estar acompañadas del pedido médico,
con firma y sello del médico tratante.
5.5.2 Se rechazarán muestras sin rotular, con doble rotulación y las muestras cuyo
pedido médico no coincida con la rotulación.
5.5.3 Se rechazarán muestras cuya orden emanada sea ilegible o incompleta.
5.5.4 Se solicitarán nuevas muestras en caso de que las muestras contengan
coágulos y micro-coágulos.
5.6 INTERPRETACIÓN, INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
5.6.1 INTERPRETACIÓN
El hemograma es uno de los análisis de laboratorio en el que se miden, en
porcentajes y números absolutos los tres tipos básicos de células que contiene la
sangre; leucocitos, eritrocitos y plaquetas. Es utilizado como screening con el
propósito de obtener una visión general del estado de salud del paciente, ya que
refleja:
El correcto funcionamiento de la médula ósea o su alteración
La capacidad del organismo de reaccionar frente a la enfermedad
Ayuda a diagnosticar enfermedades hematológicas
Es un indicador del progreso de los pacientes en diversas enfermedades
renales, hepáticas, inflamatorias, autoinmunes y neoplásicas.
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Hemograma
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La eritrosedimentación es un proceso inespecífico y producido por diferentes
alteraciones proteicas cuyo principal componente es el fibrinógeno. Su especificidad
no permite por si sola hacer ningún diagnóstico, pero es un dato de gran valor en
multitud de circunstancias, y una buena interpretación de ella, con la ayuda de otros
parámetros induce a diagnósticos clínicos difíciles.
El recuento de reticulocitos es útil para diferenciar las anemias regenerativas de
aquellas arregenerativas.
5.6.2 INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
Los resultados son impresos en el sistema informático de gestión de laboratorio
(LIS), luego de ser controlados y firmados por los profesionales bioquímicos, están
listos para su posterior entrega a los pacientes.
5.7. CONTROLES INTERNOS Y EXTERNOS
5.7.1 CONTROLES INTERNOS
Se utilizan controles que constan de tres niveles (nivel bajo, normal y alto).
5.7.2 CONTROLES EXTERNOS
Como control externo se utiliza el del Programa Nacional de Control de Qualidade –
PNCQ (Patrocinado por la Sociedad Brasilera de Análisis Clínicos) destinado a
mejorar la calidad analítica del laboratorio de Química sanguínea con respecto a
otros laboratorios que utilizan los mismos métodos e instrumentos.
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6. REFERENCIAS
• Rodak, F. Bernardette . Hematología: fundamentos y aplicaciones clínicas. 2ª
Edición. Buenos Aires : Médica Panamericana, 2004.
• Failace, Renato. Hemograma: manual de interpretación. 5ª edición. Porto Alegre:
Artmed, 2011.
• Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
• Aranda Torrelio Eduardo. El hemograma como instrumento diagnóstico básico en
pediatría. Rev. bol. ped. [Internet]. 2011 [citado 2018 Mayo 23] ; 50( 2 ): 139-
146. Disponible en:
http://www.scielo.org.bo/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1024-
06752011000200009&lng=es.
• Manual de usuario del equipo automatizado.
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Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
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Redacción y Revisión:
Servicio de Laboratorio UTI
Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
HISTORICO DE MODIFICACIONES
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Fecha
Apartados
Pág.
Causas de la
modificación
Recalificación
necesaria del
personal Si/No
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Gerencia de salud
1- OBJETIVO
Describir los procedimientos para el procesamiento de las determinaciones
químicas
2- ALCANCE
A todas las muestras que ingresen y los pacientes que acudan al Servicio
Laboratorio de Urgencias con pedido de determinaciones químicas.
3- RESPONSABLES
El Jefe de Servicio, Bioquímicos y Técnicos asignados por la Jefatura según
cronograma de trabajo.
4- MATERIALES Y EQUIPOS
4.1 Guantes
4.2 Guardapolvo
4.3 Centrifuga
4.4 Equipo automatizado
4.5 Gradillas
4.6 Muestras para las determinaciones
4.7 Reactivos proveídos para las determinaciones.
4.8 Pipetas automáticas
4.9 Punteras
5- LISTA DE DETERMINACIONES
1. Ácido Úrico
2. Albumina
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3. Alfa Amilasa
4. Bilirrubina Directa
5. Bilirrubina Indirecta
6. Bilirrubina Total
7. Calcio
8. CK MB
9. CK Total
10. Colesterol
11. Colesterol HDL
12. Colesterol LDL
13. Colesterol VLDL
14. Creatinina
15. Fosfatasa alcalina
16. Fósforo
17. Gamma GT
18. Glucosa
19. GOT/AST
20. GPT/ALT
21. LDH
22. Lipasa
23. Magnesio
24. Proteína C Reactiva
25. Proteínas totales
26. Proteínas en LCR
27. Triglicéridos
28. Urea
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6- DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
6.1 MUESTRA REQUERIDA
Para la mayoría de las determinaciones químicas la muestra de elección es
el suero, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante por 10
minutos a 3500 rpm.
En algunas ocasiones se utiliza plasma con EDTA o heparina según la
especificación de cada técnica.
Se procesan también determinaciones químicas en líquidos biológicos
6.2 PROCEDIMIENTO
6.2.1 ACCIONES EN FORMA SECUENCIAL
6.2.1.1 Se verifican los valores de los controles normales y patológicos para
validar los resultados de calibración.
6.2.1.2 Se codifica, registra y etiqueta la muestra con el código correspondiente
mediante el sistema informático de laboratorio (SIL).
6.2.1.3 Los sueros a testar son utilizados puros, con el tubo primario, en caso
de muestras escasas se utilizan tubos eppendorf que se colocan con el tubo
primario para introducirlos al equipo. Los líquidos biológicos se procesan en
tubos de vidrio rotulados.
6.2.1.4 Se procesa la muestra en el equipo automatizado. En el caso que los
valores superen la linealidad especificada en la técnica, el equipo realiza una
dilución automática 1:2. Si esta dilución es insuficiente, aparece la alarma: “No
se puede calcular el valor”; en este caso se programa una dilución superior a la
predeterminada para el procesamiento.
6.2.1.5 El resultado es transmitido por interface al SIL, donde es verificado,
validado, impreso y firmado por el profesional responsable del procesamiento.
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Gerencia de salud
6.2.2 ESPACIO FISICO Y CONDICIONES AMBIENTALES
Las determinaciones se procesan en el Laboratorio de Urgencias en ambiente
climatizado (18 a 25°)
6.3 CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO DE LA MUESTRA
6.3.1 Las muestras para estudio están acompañadas del pedido médico, con firma y
sello del médico tratante.
6.3.2 Se rechazan muestras sin rotular, con doble rotulación y las muestras cuyo
pedido médico no coincida con la rotulación.
6.3.3 Se rechazan muestras cuya orden emanada sea ilegible o incompleta.
6.3.4 Se rechazan muestras cuyo volumen sea insuficiente para las determinaciones a
procesar.
6.3.5 Consideraciones específicas
Aspecto del suero: hemolizado
Acción: Se procesa la muestra completa y se borran los parámetros que se
ven afectados por hemolisis, marcando con un asterisco el espacio
correspondiente a esos resultados; y solicitando nueva muestra para los
mismos.
Observación adjunta: Suero hemolizado. Las siguientes determinaciones
(especificar analitos) no se procesaron debido a que el material se encuentra
hemolizado, lo cual altera el resultado de las mismas. Se solicita nueva
muestra.
Aspecto del suero: lechoso
Acción: En primer lugar se procesa el suero puro, luego se realiza la menor
dilución posible solo para las determinaciones que presentan interferencia. La
dilución se puede realizar de manera manual con solución fisiológica o
programar una de las diluciones predeterminadas del equipo automatizado.
Se informan los resultados cuantificables en suero puro y diluciones según sea
el caso. Si el analito a determinar lanza un valor por debajo de la sensibilidad
haciendo una dilución, se agrega la siguiente observación.
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Autorización:
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Gerencia de salud
Observación adjunta: Aspecto del suero: lechoso. Interfiere con la
determinación de…(se especifica el/los analito/s)
Aspecto del suero: Ictérico
Acción: Se informa el aspecto ictérico del suero sea cual fuere la naturaleza
de los analitos solicitados.
Observación adjunta: Aspecto del suero: Ictérico
Volumen de muestra remitida insuficiente para la totalidad de las
determinaciones; en caso de muestras de Recién Nacidos
Acción: Se establece prioridad de procesamiento para los analitos Bilirrubinas,
Glucosa, Electrolitos.
Observación adjunta: El material remitido al laboratorio es insuficiente para la
determinación de...(se especifica analito/s) se solicita nueva muestra
6.4 VALIDACION, INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
6.4.1 VALIDACIÓN DE RESULTADOS
Antes de validar resultados se verifican los archivos de resultados anteriores
de los pacientes en el SIL. Si no hay coincidencia en la tendencia de los
valores, se sigue la siguiente secuencia de acciones:
1. Se verifica la identificación de la muestra en el tubo original en cuestión
2. Si la identidad es correcta y la muestra adecuada, se repite la prueba
3. Si el resultado reproduce los valores, se valida con la observación
correspondiente.
Observación adjunta: Resultados verificados por repetición, se sugiere remitir
nueva muestra según criterio médico.
Cuando los valores resultantes generan dudas acerca del sitio de punción
escogido, se agrega la siguiente observación
Observación adjunta: El material remitido presenta hemodilución
posiblemente debido al sitio de punción escogido; favor remitir nueva muestra.
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6.4.2 INFORME DE RESULTADOS
Los resultados son impresos mediante sistema informático de gestión de laboratorio
(SIL). Luego son firmados por los profesionales bioquímicos, estando listos para su
posterior entrega a los pacientes o sus familiares.
6.4.3 VALORES CRITICOS DE NOTIFICACIÓN INMEDIATA
Cuando en los resultados se encuentran valores que expresan una situación médica
que puede poner en riesgo la vida del paciente si no se interviene de manera
adecuada y oportuna; se informan de manera inmediata, mediante comunicación
con el médico firmante de la solicitud o el médico de guardia a cargo; vía interno (IP)
que corresponde al puesto de enfermería que está asignado el paciente.
En el caso de pacientes ambulatorios se procede a la comunicación telefónica,
utilizando el registro de números particulares que está en el pedido médico; en la
misma, se solicita al paciente retirar su resultado antes de la hora convenida para
posterior consulta al médico.
Antes de ser notificados, estos valores son confirmados, verificando la identificación
primaria, la idoneidad de la muestra y los valores en sí, por repetición.
En todos los casos, las notificaciones son responsabilidad del profesional a cargo del
procesamiento.
Se deja un registro de la notificación en la parte de observaciones del resultado del
paciente, asignando hora y nombre del médico que recibió la notificación.
El rango de valores críticos se encuentra especificado en el apartado correspondiente
a cada parámetro.
6.5 CONTROL INTERNO DE CALIDAD
6.5.1 NATURALEZA DE LA MUESTRA
Las muestras que se utilizan para control de calidad son de la marca Bio Rad de 2
niveles. Consiste en suero comercial liofilizado. En el inserto del control se pueden
encontrar los rangos aceptables para ambos niveles dependiendo tanto de los
reactivos/métodos como de la marca de autoanalizador que se utiliza. Estos rangos se
cargan en el equipo automatizado cuando cambia el lote de fabricación de los
controles.
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6.5.2 LUGAR DE ALMACENAMIENTO
Los viales son proveídos por la firma Biotec, y se almacenan en la heladera del
laboratorio antes de su reconstitución.
6.5.3 PREPARACION DE LOS CONTROLES
- Se abre el vial, retirando lentamente el tapón de goma para evitar pérdidas de
material liofilizado.
- Se agrega 5.0 ml de agua destilada exactamente medida.
- Se tapa y mezcla por inversión suave, evitando la formación de espuma. No se agita
- Se deja disolver 30 minutos a temperatura ambiente, mezclando por inversión de
tanto en tanto.
- Una vez reconstituidos, se alicuotan en 380 ul en tubos eppendorf y se almacenan
en el congelador de la heladera del Laboratorio de Urgencias. Por la gradilla de
almacenamiento se pega la etiqueta del control donde figura el número de lote.
6.5.4 UTILIZACION DE LOS CONTROLES
- Se colocan los controles en cubetas adecuadas para el equipo
- Se coloca el control Normal en la posición C1 del equipo y el control patológico en la
posición C2
- Se programa en la sección Programación/Control de Calidad según el nivel y lote
registrado en el equipo, se selecciona las determinaciones a realizar, se guarda la
programación eligiendo la opción Guardar
- Se procesan los controles
6.5.5 FRECUENCIA DE PROCESAMIENTO
Los controles se procesan:
- Todos los días a primera hora en el Turno mañana
- Luego de la calibración de uno o más parámetros
- Luego del cambio de lote de reactivos
- Luego de los mantenimientos correctivos del equipo
- Cuando el operador considere necesario
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6.5.6 VALIDACIÓN DE LOS RESULTADOS DE LOS CONTROLES
6.5.6.1 REGLA DE VALIDACIÓN
Son aceptados los valores de los controles que están dentro del rango de +- 2
desviaciones estándar con relación a la media calculada, lo cual se puede observar en
el gráfico de Levy Jennings del equipo.
6.5.6.2 MEDIDAS CORRECTORAS EN CASO DE NO VALIDACIÓN
En caso que los valores de uno o más parámetros no entren dentro del criterio de
validación, se procede de la siguiente manera en forma correlativa:
1) Se procesa nuevamente el control para el parámetro en cuestión.
2) Se revisan los pasos de preparación del control
3) Se cambia el reactivo y se procesa con nuevo material de control y nuevo
reactivo.
4) Se recalibra, se vuelven a pasar los controles
6.6 CALIBRACIÓN
6.6.1 NATURALEZA DE LA MUESTRA
Con excepción de las determinaciones PCR, PTU y HDL, que tienen calibradores
propios; para las demás determinaciones se utiliza el Calibrador A Plus de la Marca
Wiener Lab, es un multicalibrador de química clínica para analizadores automáticos.
Consiste en suero liofilizado conteniendo metabolitos en concentraciones conocidas.
Los valores de cada parámetro son asignados según el lote de fabricación por lo que
se actualizan en el equipo automatizado con cada cambio de lote.
6.6.2 LUGAR DE ALMACENAMIENTO
Antes de su reconstitución, se almacenan refrigerados en la heladera del laboratorio
Los reactivos provistos son:
-Calibrador A Plus
-Reconstituyente: Solución de carbonato de sodio 25 mmol/l, pH 10
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6.6.3 PREPARACIÓN
- Se abre el vial, retirando lentamente el tapón de goma para evitar pérdidas de
material liofilizado
- Se agregan 3.0 ml de Reconstituyente
- Se tapa y mezcla por inversión suave, evitando la formación de espuma.
-Se deja disolver unos 30 minutos a temperatura ambiente, mezclando por inversión
de tanto en tanto.
Luego de la preparación se alicuotan en 280 ul en tubos eppendorff y se almacenan
en la congeladora del laboratorio de Urgencias hasta su uso.
Para su uso, se dejan los tubos a temperatura ambiente hasta que se descongele
totalmente, y luego se procede a la calibración
6.6.4 UTILIZACIÓN
Se pipetea el calibrador en una cubeta adecuada para el equipo y se coloca en
la posición S1 del carrusel de muestras.
En la sección “Reactivos” del equipo, se selecciona los parámetros a calibrar, y
se pulsa la opción F5 (calibración)
6.6.5 FRECUENCIA DE CALIBRACIÓN
Los parámetros se calibran:
Con cada cambio de lote de reactivo
Cuando los valores de los controles no se adecuan a los criterios de validación
mencionados en el apartado 6.4.6.1
Cada vez que el profesional operador considere necesario
6.6.6. VALIDACION DE LA CALIBRACIÓN
La validación de la calibración se realiza directamente con los controles de calidad que
se procesan inmediatamente después de cada calibración.
6.6.7 ACCIONES EN CASO DE NO VALIDACION
En caso de falla de calibración se procede a:
1) Recalibrar
2) En caso que vuelva a fallar , se cambia de reactivo y se vuelve a calibrar
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1. ÁCIDO ÚRICO EN SANGRE
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
El ácido úrico es el producto del catabolismo de las purinas. En su mayor parte se
excreta por el riñón y en menor proporción por el tracto intestinal.
Su fuente principal son las nucleoproteínas de la dieta, abundante en la carne,
mariscos, sardinas, anchoas, vísceras y bebidas alcohólicas.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
Plasma, únicamente con heparina
1.3 MÉTODO
Enzimático colorimétrico uricasa.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
Hombres: 2,5 -7,0 mg/dl
Mujeres: 2,5 - 6,0 mg/dl
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
El cambio mínimo de concentración detectable es de 0.03 mg/dL. Valores inferiores se
deben informar: Inferior a 0,03 mg/dL (< 0,03 mg/dL)
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 20 mg/dL. Valores superiores se confirman con dilución
superior a 1:2
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
LAC5
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12
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Servicio de Laboratorio UTI
Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
1.5.3 INTERFERENCIAS
Las sustancias interferentes conocidas son:
Ácido ascórbico (Vitamina C) en dosis elevadas
Butil bromuro de hioscina (Buscapina) en dosis elevadas
Bilirrubina > 10 mg/dL
Triglicéridos > 490 mg/dL
Hemoglobina > 180 mg/dL.
1.6. INTERPRETACIÓN
Se encuentran niveles elevados de ácido úrico en algunos casos de gota, por
alteraciones renales, deshidratación, tratamiento con diuréticos, leucemia, linfoma,
policitemia, neoplasia, anemia hemolítica, hipotiroidismo, reciente ingestión de alcohol
entre otros.
Se encuentran niveles disminuidos por ingestión de altas dosis de aspirina, dosis
masivas de vitamina C, porfiria aguda intermitente, hipouricemia familiar, diabetes,
corticoesteroides y estrógenos, síndrome de Fanconi, enfermedad de Wilson.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
LAC5
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Vigencia
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13
Redacción y Revisión:
Servicio de Laboratorio UTI
Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Valenzuela M Alex. Ácido úrico: ¿un nuevo factor contribuyente al desarrollo de
obesidad?. Rev. chil. nutr. [Internet]. 2016 Sep [citado 2018 Ago 21] ; 43( 3 ):
303-307. Disponible en:
https://scielo.conicyt.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0717-
75182016000300011&lng=es. http://dx.doi.org/10.4067/S0717-
75182016000300011.
Inserto provisto por el kit del reactivo para la determinación de Ácido úrico.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
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Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
2. ALBUMINA EN SANGRE
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La albúmina es una proteína hepática cuyas funciones primordiales son el transporte
de diferentes elementos y moléculas, y el mantenimiento de la presión oncótica, que
es la presión osmótica ejercida por las proteínas plasmáticas que aparece en el
compartimento vascular e intersticial.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero libre de hemólisis que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante
durante 10 minutos a 3500 rpm
1.3 MÉTODO
Colorimétrico Verde de Bromocresol.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
General: 3,5 – 5,0 g/dL
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La mínima concentración detectable es 0,01 g/dL. Valores inferiores se informan:
Inferior a 0,01 g/dL (< 0,01 g/dL)
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 7 g/dL
1.5.3 INTERFERENCIAS
Las sustancias interferentes conocidas son:
Bilirrubina > 20 mg/dL
Triglicéridos > 900 mg/dL
Hemoglobina > 0,7 g/dL
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Código POE-DAS-
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Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
1.6. INTERPRETACIÓN
La hipoalbuminemia ocurre en condiciones patológicas tales como pérdida
excesiva de proteínas en el síndrome nefrótico, desnutrición, infecciones
prolongadas, quemaduras severas. Otras causas son disminución en la
síntesis por una dieta deficiente, enfermedad hepática o malabsorción.
La hiperalbuminemia tiene importancia clínica en los casos de deshidratación
aguda y shock.
2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición.
Bogotá: Médica Panamericana.
PACHECO V SUZANNA, WEGNER A ADRIANA, GUEVARA Q RICHARD,
CÉSPEDES F PAMELA, DARRAS M ENRIQUE, MALLEA T LUIS et al .
Albúmina en el paciente crítico: ¿Mito o realidad terapéutica?. Rev. chil.
pediatr. [Internet]. 2007 Ago [citado 2018 May 21] ; 78( 4 ): 403-413.
Disponible en:
https://scielo.conicyt.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0370-
41062007000400009&lng=es. http://dx.doi.org/10.4067/S0370-
41062007000400009.
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Albúmina.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
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Autorización:
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Aprobación:
Gerencia de salud
3. ALFA AMILASA EN SANGRE
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La amilasa se produce principalmente en el páncreas, y en pequeñas cantidades en
las glándulas salivales y en las trompas de Falopio. En el intestino participa en la
digestión de los carbohidratos para descomponerlos en azúcares simples. La
destrucción de dichas células en procesos inflamatorios o la obstrucción del conducto
pancreático dan lugar a que esta enzima pase al torrente circulatorio.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
Plasma heparinizado. No se utiliza plasma con EDTA
1.3 MÉTODO
Cinético
1.4 VALORES DE REFERENCIA
Inferior a 125 U/L
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La mínima concentración detectable es 4 U/L. Valores inferiores se informan: Inferior a
4 U/L (< 4 U/L)
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta una actividad de 2000 U/L.
1.5.3 INTERFERENCIAS
Las sustancias interferentes conocidas son:
Bilirrubina > 22 mg/dL
Hemoglobina > 0,18 g/dL. Hemolisis interfiere
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Aprobación:
Gerencia de salud
Triglicéridos > 1400 mg/dL
Heparina > 50 U/mL
1.6. INTERPRETACIÓN
Sus niveles están elevados en pancreatitis agudas a las 24 horas, en patologías
pancreáticas como pseudoquistes, absesos, ascitis pancreática, carcinoma o trauma,
en ulcera péptica perforada. Es un signo de diferenciación de gran valor de apendicitis
aguda y embarazo ectópico roto.
Los opiáceos y morfina la elevan considerablemente.
2 REFERENCIAS
Labtest. Amilasa Pancreática. [Internet]. [Citado 2018 mayo 22]. Disponible en:
https://www.labtestsonline.es/tests/amilasa
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Inserto del reactivo para la determinación de Amilasa.
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4. BILIRRUBINA DIRECTA EN SANGRE
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La bilirrubina directa es aquella que después de separarse de la albumina penetra a la
célula hepática donde se conjuga con el ácido glucurónico por acción de la UDP
glucuronil transferasa y posteriormente es segregada a la bilis y el intestino.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
Plasma con heparina
1.3 MÉTODO
Colorimétrico
La bilirrubina directa reacciona con la sal de diclorofenildiazonio (DPD) formando un
azocompuesto de color rojo en solución ácida.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
Hasta 0,2 mg/dL
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La mínima concentración detectable es 0,012 mg/dL. Valores inferiores se informan:
Inferior a 0,012 mg/dL (< 0,012 mg/dL)
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 10 mg/dL
1.5.3 INTERFERENCIAS
Las sustancias interferentes conocidas son.
Triglicéridos > 500 mg/dL
Muestras con hemólisis producen valores falsamente disminuidos
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1.6. INTERPRETACIÓN
Se observan valores aumentados en obstrucciones biliares o colestásis; tumores
hepáticos o de cabeza de páncreas, estrechamiento de los conductos biliares,
colestásis inducidas por medicamentos, síndrome de Dubin - Johnson, en hepatitis y
cirrosis.
2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Moreno Borque A., González Moreno L., Mendoza-Jiménez J., García-Buey L.,
Moreno Otero R. Utilidad de los parámetros analíticos en el diagnóstico de las
enfermedades hepáticas. An. Med. Interna (Madrid) [Internet]. 2007 Ene [citado
2018 abril 21] ; 24( 1 ): 38-46. Disponible en:
http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0212-
71992007000100010&lng=es.
Quesada Luis D, Zamora Henry, Martén Alfredo. El enfoque del paciente ictérico.
Acta méd. costarric [Internet]. 2005 Feb [citado 2018 Abril 20] ; 47( 1 ): 15-23.
Disponible en: http://www.scielo.sa.cr/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0001-
60022005000100003&lng=en.
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Bilirrubina directa.
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5. BILIRRUBINA INDIRECTA
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La bilirrubina indirecta o no conjugada, es transportada al hígado ligada con la
albúmina, es insoluble en agua y por ello no se excreta en orina. La bilirrubina sérica
se encuentra normalmente en la forma no conjugada, lo que refleja un equilibrio entre
la producción y la excreción hepatobiliar.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
Plasma con heparina
1.3 MÉTODO
Se puede calcular en base a la siguiente fórmula:
Bilirrubina indirecta: Bilirrubina total – Bilirrubina directa
1.4 VALORES DE REFERENCIA
Inferior a 0,8 mg/dL
1.5. INTERPRETACIÓN
La hiperbilirrubinemia no conjuagada está asociada con un aumento de la producción
de bilirrubina (hemólisis, eritropoyesis inefectiva, transfusiones de sangre, reabsorción
de hematomas y raramente en las lesiones musculares), disminución de la captación
hepática (síndrome de Gilbert y de Criggler – Najjar e ictericia fisiológica en el recién
nacido).
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Aprobación:
Gerencia de salud
2 REFERENCIAS
MedLinePlus. Examen de Bilirrubina en Sangre. Enero. 2017 [Internet] [citado
2018 mayo 21]. Disponible en:
https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/003479.htm
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Moreno Borque A., González Moreno L., Mendoza-Jiménez J., García-Buey L.,
Moreno Otero R.. Utilidad de los parámetros analíticos en el diagnóstico de las
enfermedades hepáticas. An. Med. Interna (Madrid) [Internet]. 2007 Ene [citado
2018 abril 21] ; 24( 1 ): 38-46. Disponible en:
http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0212-
71992007000100010&lng=es.
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Gerencia de salud
6. BILIRRUBINA TOTAL
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La bilirrubina es un compuesto de degradación de la hemoglobina que es captada por
el hígado para su conjugación y excreción en la bilis.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
Plasma con heparina o EDTA
1.3 MÉTODO
Método colorimétrico DPD (diclorofenildiazonio)
La bilirrubina indirecta, unida a la albúmina, es liberada por un tensioactivo
La bilirrubina total reacciona con la sal de diclorofenildiazonio (DPD) formando un
azocompuesto de color rojo en solución ácida.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
General: 0,2 a 1,2 mg/dL
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La mínima concentración detectable es 0,031 mg/dL. Valores inferiores se informan:
Inferior a 0,031 mg/dL (< 0,031 mg/dL)
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 25 mg/dL.
1.5.3 INTERFERENCIAS Y LIMITACIONES DEL PROCEDIMIENTO
La acción de la luz, tanto sobre las muestras como sobre las soluciones standard, es
capaz de destruir en una hora hasta el 50% de la bilirrubina presente.
Las sustancias interferentes conocidas son:
Hemoglobina > 0,5 g/dL
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Gerencia de salud
Triglicéridos > 500 mg/dL
1.6. INTERPRETACIÓN
Las alteraciones hepatocelulares u obstrucciones biliares pueden provocar
hiperbilirrubinemias. La eritroblastosis fetal o anemia hemolítica de recién nacido
provoca un severo aumento de la bilirrubina sérica con el consecuente riesgo de
difusión del pigmento al sistema nervioso central produciendo toxicidad, por lo que la
determinación de la bilirrubina en estos niños recién nacidos resulta sumamente
importante.
2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Moreno Borque A., González Moreno L., Mendoza-Jiménez J., García-Buey L.,
Moreno Otero R.. Utilidad de los parámetros analíticos en el diagnóstico de las
enfermedades hepáticas. An. Med. Interna (Madrid) [Internet]. 2007 Ene [citado
2018 abril 21] ; 24( 1 ): 38-46. Disponible en:
http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0212-
71992007000100010&lng=es.
Sanagustín A, Metabolismo de la Bilirrubina. [Internet]. 2013 Mayo [citado 2018
abril 21] Disponible en: https://www.albertosanagustin.com/fisiologia-de-la-bilirrubina/
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Bilirrubina.
7. CALCIO
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Gerencia de salud
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
El calcio es esencial en la mayoría de las reacciones de la coagulación sanguínea y
en la regulación de la excitabilidad de las fibras musculares. Su concentración está
regulada por la acción de factores tales como niveles de parathormonas, vitamina D y
fósforo, observándose fluctuaciones fisiológicas debidas a la edad, sexo, embarazo,
actividad física, cambios estacionales (por acción de la luz solar).
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
Plasma con heparina
1.3 MÉTODO
Colorimétrico (Arsenazo III).
1.4 VALORES DE REFERENCIA
Suero: 8,5 - 10,5 mg/dl
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La mínima concentración detectable es 2,5 mg/dL
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 20 mg/dL
1.5.3 INTERFERENCIAS
Los anticoagulantes distintos a la heparina, complejan al calcio produciendo
resultados erróneos.
Las sustancias interferentes conocidas son:
Bilirrubina > 20 mg/dL
Hemoglobina > 0,35 g/dL
Magnesio > 10 mg/dL
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
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Aprobación:
Gerencia de salud
Triglicéridos > 500 mg/dL
1.6. INTERPRETACIÓN
La hipercalcemia está relacionada con distintas patologías: hiperparatiroidismo,
neoplasias óseas, intoxicaciones con vitamina D.
La hipocalcemia se asocia con desórdenes tales como hipoparatiroidismo, deficiencia
de vitamina D, mala absorción.
2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Martínez de Victoria Emilio. El calcio, esencial para la salud. Nutr. Hosp. [Internet].
2016 [citado 2018 Ago 21] ; 33( Suppl 4 ): 26-31. Disponible en:
http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0212-
16112016001000007&lng=es. http://dx.doi.org/10.20960/nh.341.
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Calcio.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
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Gerencia de salud
8. CREATIN KINASA ISOTIPO MB (CK MB)
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La Creatin Kinasa (CK) es una enzima intramuscular constituida por una subunidad M
(Músculo) y otra subunidad B (brain = cerebro) que se combinan dando lugar a las
isoenzimas CK-MM (muscular), CK-BB (cerebral) y CK-MB (miocárdica). La elevación
sérica de la CK Total y CKMB constituye un indicador de injuria del miocardio.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
Plasma con heparina o EDTA
1.3 MÉTODO
El método se basa en la inhibición específica de las subunidades M con anticuerpos
anti CK-M. Los anticuerpos inhiben tanto a la isoenzima MM como a las subunidades
M de la CK MB. La actividad restante corresponde a la subunidad B
1.4 VALORES DE REFERENCIA
Hasta 25 U/L
El porcentaje de CK MB se encuentra entre 6 y 20% de la CK Total. Si el porcentaje
supera el 20% se sospecha la presencia de formas atípicas de CK que no son
inhibidas por los anticuerpos anti- CKM
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La mínima actividad detectable es 8 UI/L
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 500 UI/L
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1.5.3 INTERFERENCIAS Y ACCIONES EN CASO DE LA PRESENCIA DE LAS
MISMAS
Las sustancias interferentes conocidas son:
Bilirrubina > 39 mg/dL. Si los valores son superiores se informa: La presencia
de valores elevados de bilirrubina produce interferencia en la determinación de
CKMB
Triglicéridos > 300 mg/dL.
Hemoglobina > 0,06 g/dL (Hemólisis leve). Los sueros con hemólisis visible
producen valores falsamente aumentados. En caso que la muestra sea
remitida de otro servicio, se informa: Suero hemolizado, no apto para la
determinación de CKMB. En caso que la muestra haya sido extraída en el
laboratorio, el profesional a cargo se comunica con el paciente de modo a
realizar una nueva extracción.
1.6. INTERPRETACIÓN
En el infarto agudo los niveles de CK MB comienzan a elevarse 4 a 8 horas
tras el infarto; las elevaciones máximas se observan alrededor de 15 a 24 horas
después del infarto. Los niveles regresan a la normalidad en un lapso de 48 a 72
horas. Los casos que no constituyen infarto agudo al miocardio no presentan este
curso característico de actividad.
2 REFERENCIAS
Ruiz Ginés M. A., Calafell Mas M. F., Ruiz Ginés J. A., Fernández Rodríguez E..
Macro-creatincinasa: marcador de enfermedad. Guía práctica para su manejo. An.
Med. Interna (Madrid) [Internet]. 2006 Jun [citado 2018 MAY 21] ; 23( 6 ): 272-
275. Disponible en: http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0212-
71992006000600006&lng=es.
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
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28
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Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
MedLinePlus. Michael A. Chen, MD, PhD. Examen de isoenzimas de la Creatina
fosfokinasa. [Internet]. Enero 2017. [Citado 2018 mayo 21]. Disponible en:
https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/003504.htm
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Creatinina Kinasa
MB.
9. CK TOTAL
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La creatin kinasa (CK) es una enzima intracelular localizada en mayor proporción en
músculos cardiaco, esquelético y también en cerebro. Un aumento en la actividad
sérica, es por tanto indicio de lesión celular.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
Plasma con heparina
1.3 MÉTODO
Método UV optimizado
Se basa en una secuencia de reacciones que involucra a la Creatinkinasa,
hexoquinasa y Glucosa-6-fosfato deshidrogenasa, utilizando la N- acetil cisteína como
activador. Método recomendado por la IFCC
1.4 VALORES DE REFERENCIA
Mujeres: 24 – 170 U/L
Hombres: 24 – 195 U/L
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1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
El mínimo cambio de actividad detectable es de 8 U/L
1.5.2 LINEALIDAD
Hasta 1800 U/L. Para valores superiores, el equipo realiza una dilución automática, y
emite el resultado multiplicado por el factor de dilución. Si la dilución que realiza el
equipo no es suficiente, se realiza una dilución manual superior a 1:2 con solución
fisiológica, multiplicando el resultado por el factor de dilcuión.
1.5.3 INTERFERENCIAS Y ACCIONES ANTE LA PRESENCIA DE LAS MISMAS
Las sustancias interferentes conocidas son:
Bilirrubina > 39 mg/dL
Triglicéridos > 1250 mg/dL
Hemoglobina > 0,15 g/dL. Los sueros con hemólisis visible producen valores
falsamente aumentados. En caso que la muestra sea remitida de otro servicio,
se informa: Suero hemolisado, no apto para la determinación de CKMB. En
caso que la muestra haya sido extraída en el laboratorio, el profesional a cargo
se comunica con el paciente de modo a realizar una nueva extracción.
1.6. INTERPRETACIÓN
Un aumento de su actividad sérica es indicio de lesión celular, sus niveles se
encuentran elevados en el infarto agudo al miocardio por lo tanto facilita su
diagnóstico precoz, también se encuentran niveles elevados en enfermedades
musculoesqueléticas como distrofia muscular de Duchenne, como polimiositis, trauma
muscular y estrés físico.
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Vigencia
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30
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Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Franquelo Morales Pablo, Alramadam Alramadam Mubarak, Prada De Medio
Enrique, González Martínez Félix. Elevación crónica de Creatincinasa. Rev Clin
Med Fam [Internet]. 2009 Oct [citado 2018 Mayo 21] ; 2( 8 ): 434-437.
Disponible en:
http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1699-
695X2009000300009&lng=es.
Coll Muñoz Yanier, Valladares Carvajal Francisco, González Rodríguez Claudio.
Infarto agudo de miocardio. Actualización de la Guía de Práctica Clínica. Rev.
Finlay [Internet]. 2016 Jun [citado 2018 mayo 21] ; 6( 2 ): 170-190. Disponible
en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2221-
24342016000200010&lng=es.
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de CK Total.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
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Gerencia de salud
10 COLESTEROL EN SANGRE
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
El colesterol es un elemento indispensable en la formación de esteroides, síntesis de
hormonas femeninas, principal componente de la bilis, catalizador activo de
intercambios celulares; interviene activamente en la síntesis de los andrógenos y es
indispensable en la formación de las membranas celulares.
Está constituido por tres fracciones que según su densidad se clasifican en VLDL
lipoproteína de muy baja densidad, LDL baja densidad y HDL alta densidad.
Las VLDL transportan triglicéridos sintetizados en el hígado, grasa que se encarga de
modelar el organismo.
Las LDL están implicadas en la formación de placa coronaria que contribuye a la
incidencia de infarto coronario.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la muestra durante 10 minutos a 3500
rpm.
Plasma con heparina
1.3 MÉTODO
Se basa en una secuencia de reacciones que involucra a la Colesterol estearasa,
Colesterol oxidasa y peroxidasa.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
General: Inferior a 200 mg/dL
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La mínima concentración detectable es 0,63 mg/dL
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1.5.2 LINEALIDAD
Hasta 500 mg/dL. Valores superiores son diluidos automáticamente por el equipo
automatizado. En caso que esta dilución supere la linealidad, se realiza una dilución
superior a 1:2 con solución fisiológica, en forma manual y se multiplica el resultado por
el factor de dilución.
1.5.3 INTERFERENCIAS
Las sustancias interferentes son:
Los anticoagulantes comunes excepto la heparina
Bilirrubina > 8 mg/dL
Ácido ascórbico > 75 mg/dL
Ácido úrico > 20 mg/dL
Hemólisis moderada a intensa
1.6. INTERPRETACIÓN
Se presentan niveles aumentados de colesterol en hipotiroidismo, diabetes
incontrolada, síndrome nefrótico, dieta rica en colesterol, hipertensión, arterosclerosis,
estrés, nefrosis.
Se presentan nivele disminuidos en desnutrición, hipertiroidismo, anemia perniciosa y
enfermedad hepática.
Niveles elevados de LDL en sangre se asocian con riesgo progresivo de aterosclerosis
y enfermedad de las arterias coronarias.
2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Colesterol.
Acevedo Mónica, Krämer Verónica, Tagle Rodrigo, Corbalán Ramón, Arnaíz Pilar,
Berríos Ximena et al . Relación colesterol total a HDL y colesterol no HDL: los
mejores indicadores lipídicos de aumento de grosor de la íntima media carotidea.
Rev. méd. Chile [Internet]. 2012 Ago [citado 2018 jun 21] ; 140( 8 ): 969-976.
Disponible en: https://scielo.conicyt.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0034-
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
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Servicio de Laboratorio UTI
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Aprobación:
Gerencia de salud
98872012000800001&lng=es. http://dx.doi.org/10.4067/S0034-
98872012000800001.
11 COLESTEROL HDL EN SANGRE
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
HDL es la fracción del colesterol que realiza una función preventiva de la cardiopatía
isquémica.
La función principal de las HDL en el metabolismo lipídico es la captación y transporte
de colesterol desde los tejidos periféricos al hígado en un proceso conocido como
transporte reverso de colesterol (mecanismo cardioprotectivo)
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la muestra durante 10 minutos a 3500
rpm.
Plasma con heparina o EDTA
1.3 MÉTODO
Método colorimétrico sin precipitación.
El método se desarrolla en dos etapas, la primera no colorimétrica, en la cual se
solubiliza y consume el colesterol libre o unido a proteína distinta a HDL. En una
segunda etapa, un detergente solubiliza específicamente las HDL, dando un producto
coloreado.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
General: Superior a 35 mg/dL
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La mínima concentración cuantificable es 4 mg/dL.
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1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 200 mg/dL. Valores superiores son diluidos
automáticamente por el equipo.
1.5.3 INTERFERENCIAS
Las sustancias interferentes conocidas son:
Ácido ascórbico > 100 mg/dL
Hemoglobina > 1g/dL
Bilirrubina > 60 mg/dL
Triglicéridos > 1200 mg/dL.
Anticoagulante citrato
1.6. CALIBRACIÓN
1.6.1 Muestra de calibración
La calibración se realiza con un calibrador comercial de la marca Wiener. El valor del
parámetro es dependiente del lote de fabricación, por lo que con cada cambio de lote
se registra en el equipo automatizado el nuevo valor de HDL.
1.6.2 Almacenamiento
El calibrador viene liofilizado y se almacena en la heladera del laboratorio antes de la
reconstitución.
Luego de la reconstitución, se separa para su utilización y el remanente se congela en
el frasco original hasta una nueva calibración
1.6.3 Frecuencia de calibración
La calibración de HDL se realiza:
Con cada cambio de lote
Cuando los controles no entran en el rango de 2 desviaciones estándar de la
media
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1.6.4 Procedimiento de calibración
Se carga el calibrador en el carrusel interno de muestras, en la posición
asignada al calibrador de HDL que se puede observar en el apartado
Reactivos/Configurar.
Se programa la calibración en el apartado Reactivos, marcando “HDL” y luego
“Calibrar”
1.6.5 Validación de la calibración
La validación se realiza mediante el procesamiento de controles de calidad
1.7 CONTROL DE CALIDAD
Para el control de calidad se utiliza el mismo suero control multiparámetro que para las
demás determinaciones químicas.
1.8 INTERPRETACIÓN
El HDL Colesterol bajo, está asociado con un alto riesgo de enfermedad cardiaca. Por
este motivo es una herramienta útil en la identificación de individuos de alto riesgo.
2 REFERENCIAS
Cuartas Silvina, Pérez Torre María. Evaluación comparativa entre el colesterol no-
HDL y el colesterol-LDL en niños y adolescentes. Rev Cubana Pediatr [Internet].
2017 Mar [citado 2018 Jun 21] ; 89( 1 ): 20-29. Disponible en:
http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0034-
75312017000100004&lng=es.
Montiel-Jarolín Dora, Aveiro Alba, Torres Boggino Estela, Barrios Marsa Alfredo,
López Andrés. Prevalencia de colesterol HDL-bajo asociado a otros factores de
riesgo cardiovascular en una población adulta en la Policlínica del Hospital Central
del Instituto de Previsión Central. Rev. Nac. (Itauguá) [Internet]. 2013 Dec [cited
2018 may 21] ; 5( 2 ): 17-20. Disponible en:
http://scielo.iics.una.py/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2072-
81742013000200003&lng=en.
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Colesterol-HDL
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12 COLESTEROL LDL EN SANGRE
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
Las lipoproteínas de baja densidad (Low Density Lipoproteins, LDL) desempeñan un
papel clave en la formación y el desarrollo de la aterosclerosis, especialmente de la
esclerosis coronaria. Las LDL derivan de las lipoproteínas de muy baja densidad (Very
Low Density Lipoproteins, VLDL) ricas en triglicéridos por la acción de varias enzimas
lipolíticas y se sintetizan en el hígado. La eliminación de las LDL del plasma se efectúa
mayormente por las células del parénquima hepático a través de los receptores
específicos de las LDL. Las concentraciones elevadas de LDL en sangre durante un
tiempo prolongado junto a una elevada tasa de modificación biológica llevan a la
destrucción de la función endotelial y una absorción elevada del colesterol LDL por el
sistema de monocitos/macrófagos y las células musculares lisas de la pared tisular.
De esta manera, la mayor parte del colesterol almacenado en placas ateroscleróticas
proviene de las LDL.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la muestra durante 10 minutos
a 3500 rpm.
1.3 MÉTODO
Cálculo matemático consistente en la fórmula de Friedewald (betacuantificación
derivada) = Colesterol total – (HDL + VLDL); siendo VLDL = Triglicéridos/5
1.4 VALORES DE REFERENCIA
Inferior a 100 mg/dL
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1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 LINEALIDAD
El cálculo se realiza siempre que los triglicéridos tengan un valor inferior a 400 mg/dL
1.5.2 INTERFERENCIAS Y ACCIONES ANTE LA PRESENCIA DE LAS MISMAS
La elevada concentración de quilomicrones y β-VLDL hace que la estimación de VLDL
sea inexacta, afectando así la estimación de LDL. No se utiliza el cálculo cuando la
concentración de triglicéridos es superior a 400 mg/dL
En este caso, se coloca un asterisco (*) en el espacio que corresponde al resultado y
en observaciones se agrega lo siguiente: *La elevada concentración de tiglicéridos
interfiere en la estimación de las LDL. Se sugiere realizar la determinación por el
método directo.
1.6. INTERPRETACIÓN
La determinación de colesterol LDL tiene importancia clínica en el pronóstico de la
esclerosis coronaria. Por esta razón, el objetivo terapéutico de reducir el nivel de
lípidos se concentra en disminuir el Colesterol-LDL para mejorar la función endotelial,
evitar la aterosclerosis o detener su desarrollo y prevenir la ruptura de las placas.
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2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Gondres Legró Karima Maricel, Calá Fernández Jorge, Romero García Lázaro
Ibrahim, Paez Candelaria Yordanys, Rodríguez Borgesç Soraya. Valores de
colesterol LDL en una población adulta de referencia. MEDISAN [Internet]. 2016
Mayo [citado 2018 Ago 21] ; 20( 5 ): 630-637. Disponible en:
http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1029-
30192016000500006&lng=es.
Ramírez A, Pistilli N, Echagüe G, Zavala de Melgarejo MV. Comparación entre la
determinación analítica del colesterol-LDL y su estimación por cálculo. Mem. Inst.
Investig. Cienc. Salud [Internet]. 2005 Dec [cited 2018 jun 21] ; 3( 1 ): 43-46.
Disponible en : http://scielo.iics.una.py/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1812-
95282005000100011&lng=en.
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13 COLESTEROL VLDL 1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
Las VLDL son las portadoras principales de triglicéridos endógenos (derivados
hepáticos) y transfieren triglicéridos del hígado al tejido periférico. Reflejan la luz con
facilidad y explican la mayor turbidez observada en muestras de plasma hiperlipémico
en ayunas. Su determinación y la de las HDL son importantes para la estimación de
las LDL.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
1.3 MÉTODO
Por estimación en base a la concentración de triglicéridos. VLDL= Triglicéridos/5.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
Hasta 40 mg/dL
1.5. INTERPRETACIÓN
La interpretación de los valores se realiza en conjunto con las demás determinaciones
que componen el perfil lipídico.
Se encuentran aumentadas en las hipertrigliceridemias de causas diversas
2 REFERENCIAS
- Bishop, Michael L. Química Clínica. Principios, procedimientos y correlaciones.
Quinta edición. Editorial Mc Graw Hill
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14 CREATININA EN SANGRE
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La creatinina es un producto de desecho eliminado por los riñones principalmente por
filtración glomerular. Su concentración en el plasma de un individuo sano es bastante
constante independiente de la ingesta de agua, ejercicio o producción de orina.
Es una prueba muy específica y sensible a posibles fallas de función renal y es mejor
indicador que (BUN) incluso en enfermedad renal crónica.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la muestra durante 10 minutos
a 3500 rpm.
Plasma con heparina o EDTA
1.3 MÉTODO
Método cinético basado en la reacción de Jaffé. La creatinina reacciona con el picrato
alcalino produciendo un cromógeno de color rojo. La velocidad de esta reacción es
una medida de la concentración de creatinina de la muestra ya que se comporta como
una reacción cinética de primer orden para la creatinina.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
Hombre: 0,7 – 1,4 mg/dL.
Mujer: 0,5 – 1,0 mg/dL.
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
El mínimo cambio de concentración detectable es 0,45 mg/dL
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 9 mg/dL. Valores superiores son diluidos automáticamente
por el equipo automatizado y el resultado emitido es el multiplicado por el factor de
dilución.
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Gerencia de salud
Si luego de la dilución automática, aparece una alarma: “No se puede calcular”, se
realiza una dilución superior a 1:2 con solución fisiológica y se multiplica el resultado
por el factor de dilución.
1.5.3 INTERFERENCIAS
Las sustancias interferentes conocidas son:
Hemoglobina > 0,78 g/dL
Triglicéridos > 1700 mg/dL
Bilirrubina > 24 mg/dL
1.6. INTERPRETACIÓN
Se observan niveles elevados en: fallas renales, nefritis crónicas, obstrucción del
tracto urinario, falla cardiaca congestiva, shock, deshidratación, rabdomiolisis.
Se observan niveles disminuidos en: personas con baja estatura, masa muscular
disminuida, enfermedad hepática avanzada o severa, dieta inadecuada con proteínas
en embarazo.
1.7 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Pedrero M, Valores Renales. España. Marzo 2012.Rev.[Internet].[Citado 2018
mayo 21]. Disponible en:
https://www.onmeda.es/exploracion_tratamiento/valores_rinones.html
Perazzi Beatriz, Angerosa Margarita. Creatinina en sangre: calidad analítica e
influencia en la estimación del Índice de Filtrado Glomerular. Acta bioquím. clín.
latinoam. [Internet]. 2011 Jun [citado 2018 mayo 20] ; 45( 2 ): 265-272.
Disponible en: http://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0325-
29572011000200003&lng=es.
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Creatinina.
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15 FOSFATASA ALCALINA EN SANGRE
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La fosfatasa alcalina es una enzima ampliamente distribuida en el organismo.
Hidroliza los monoésteres del ácido ortofosfórico en medio alcalino. En el adulto
proviene en parte del hígado y en parte del hueso, sistema retículo endotelial y
vascular.
La fosfatasa alcalina es útil como indicador de enfermedad ósea o hepática cuando se
correlaciona con otros hallazgos clínicos.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la muestra durante 10 minutos a 3500
rpm
Plasma con heparina
1.3 MÉTODO
Cinético optimizado a 405 nm. La fosfatasa alcalina hidroliza el p-nitrofenilfosfato que
es incoloro, produciendo fosfato y p-nitrofenol a pH alcalino. La velocidad de aparición
del anión p-nitrofenolato a 405 nm es proporcional a la actividad enzimática de la
muestra.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
Adultos: 65 a 300 U/L
Niños: Hasta 645 U/L
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La mínima actividad detectable corresponde a 18 U/L
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Aprobación:
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1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 1500 U/L. Valores superiores son diluidos
automáticamente por el equipo automatizado. Si luego de la dilución automática
aparece la alarma: “No se puede calcular”, se realiza una dilución superior a 1:2 y se
multiplica el resultado por el factor de dilución.
1.5.3 INTERFERENCIAS
Las sustancias interferentes conocidas son:
Bilirrubina > 16 mg/dL
Triglicéridos > 1000 mg/dL
Heparina > 50 UI/L
Hemoglobina > 0,2 g/dL. La hemolisis intensa puede producir variaciones en
los resultados
1.6. INTERPRETACIÓN
La actividad sérica de fosfatasa alcalina ósea en condiciones normales, alcanza su
mayor actividad en los niños en edad de crecimiento llegando a triplicar los niveles del
adulto, también es fisiológico el aumento que se produce al final del primer trimestre
del embarazo.
Entre las patologías que afectan la actividad sérica de fosfatasa alcalina se puede citar
carcinoma metastásico en hígado y huesos, colestasis biliar, fenómenos
osteoblásticos, deficiencia de vitamina D.
Una gran variedad de fármacos pueden incrementar ligera o moderadamente los
valores de fosfatasa alcalina, entre ellos albúmina, anticonvulsivantes, alprazolam,
antineoplásicos, metildopa, anticonceptivos, fenobarbital.
2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Fosfatasa Alcalina.
MedLinePlus. Examen de sangre para Fosfatasa Alcalina. Laura J. Martin, MD.
[Internet] Mayo 2017.[ Citado 2018 mayo 21]. Disponible en:
https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/003470.htm
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16 FÓSFORO EN SANGRE
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
En el organismo existe principalmente como ion fosfato. El principal componente del
tejido óseo es el fosfato de calcio inorgánico, mientras que los ésteres de fosfato
orgánico están envueltos en el metabolismo. La energía producida por la hidrólisis del
fosfato terminal unido al ATP es la mayor fuente de energía metabólica. El 95 % del
fosfato sérico es ION LIBRE, el resto está unido a proteínas. Bajo condiciones
normales la hormona paratiroidea mantiene niveles constantes de fósforo inorgánico
en el suero.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante
durante 10 minutos a 3500 rpm.
1.3 MÉTODO
Fotométrico Molibdato UV. El fósforo inorgánico reacciona en medio ácido con el
molibdato para dar un complejo fosfomolibdico que se mide espectrofotométricamente
a 340 nm.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
General: 2,5 a 5,6 mg/dL.
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
El menor cambio de concentración detectable es de 0,11 mg/dL
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 16 mg/dL. Muestras con valores superiores son diluidas
automáticamente por el equipo automatizado, emitiendo un resultado calculado por el
factor de dilución.
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1.5.3 INTERFERENCIAS
Bilirrubina > 5,8 mg/dL
Hemólisis
Lipemia
1.6. INTERPRETACIÓN
Se encuentran niveles elevados de fósforo en el hipoparatiroidismo, mientras que en
el hiperpatiroidismo se encuentra bajos niveles. También puede encontrarse
hiperfosfatemia por hipervitaminosis D y diversos trastornos renales, mientras que la
hipofosfatemia se relaciona con deficiencias de vitamina D y defectos en la
reabsorción de fósforo a nivel renal.
2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
PEREZ CERDA OSCAR. Valores de calcio y fosforo en el lactante normal. Rev.
chil. pediatr. [Internet]. 1949 Maio [citado 2018 May 22] ; 20( 5 ): 181-185.
Disponível em: https://scielo.conicyt.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0370-
41061949000500001&lng=pt. http://dx.doi.org/10.4067/S0370-
41061949000500001. Puchulu María Bernardita, Gimenez Mariana, Viollaz Rocío,
Ganduglia Mercedes, Amore Pérez Melisa, Texido Laura. Fuentes de fósforo,
aditivos alimentarios y Enfermedad Renal Crónica. Diaeta [Internet]. 2013 Dic
[citado 2018 May 22] ; 31( 145 ): 22-30. Disponible en:
http://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1852-
73372013000400004&lng=es.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
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Vigencia
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46
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17 GAMMA GT (γ GLUTAMILTRANSPEPTIDASA)
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La γ-glutamil transferasa (γ-GT) es una enzima de membrana ampliamente distribuida
en el organismo. Se localiza principalmente en riñón, vesículas seminales, páncreas,
hígado, bazo y cerebro. Su actividad es influenciada por cualquier factor que afecte a
las membranas celulares de los órganos que la contienen.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
Plasma con EDTA
1.3 MÉTODO
Szasz modificado con sustrato recomendado por la IFCC, L-Ɣ-glutamil-3-carboxi-4-
nitroanilida
1.4 VALORES DE REFERENCIA
Hombres 11-50 U/L
Mujeres 7- 32 U/L
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
El mínimo cambio de actividad detectable es de 1U/L. Niveles inferiores se informan: <
1 U/L (Inferior a 1 U/L)
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 1200 U/L.
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Código POE-DAS-
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Versión 01
Vigencia
Página 47
47
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Aprobación:
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1.5.3 INTERFERENCIAS
Las sustancias interferentes conocidas son:
Bilirrubina > 28 mg/dL
Triglicéridos > 540 mg/dL
Hemoglobina > 0,39 g/dL
1.6. INTERPRETACIÓN
Es de gran ayuda en el estudio de las enfermedades hepatobiliares. Se encuentran
niveles elevados en ictericias obstructivas, también es útil como marcador en el
carcinoma pancreático, en la cirrosis biliar, alcoholismo; para el diagnóstico y el
manejo del alcohólico. Aumenta en la terapia antiepiléptica.
2 REFERENCIAS
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación γ-glutamil transferasa.
Caravaca-Fontán Fernando, Azevedo Lilia, Bayo Miguel Ángel, Gonzales-Candia
Boris, Luna Enrique, Caravaca Francisco. Niveles séricos elevados de gamma-
glutamil transferasa y fosfatasa alcalina son predictores independientes de
mortalidad en la enfermedad renal crónica estadio 4-5. Nefrología (Madr.)
[Internet]. 2017 Jun [citado 2018 May 22] ; 37( 3 ): 267-275. Disponible en:
http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0211-
69952017000300267&lng=es. http://dx.doi.org/10.1016/j.nefro.2016.11.010.
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
LAC5
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Vigencia
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48
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Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
18 GLUCOSA
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
Su valoración es importante en el estudio de metabolismo de carbohidratos.
Constituye un examen de diagnóstico clínico y control, en el caso de pacientes con
Diabetes Mellitus, para evitar la cetoacidosis y las complicaciones resultantes de la
hiperglicemia.
La concentración en líquidos biológicos ayuda en el diagnóstico de distintos tipos de
patologias
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante
durante 10 minutos a 3500 rpm.
Plasma con EDTA/Fluoruro
Líquidos biológicos
1.3 MÉTODO
Enzimático que involucra a la glucosa oxidasa y a la peroxidasa en un esquema de
dos reacciones cuyo producto es una quinonimina roja de concentración directamente
proporcional a la de glucosa en la muestra.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
General: 70 a 99 mg/dL.
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La sensibilidad analítica es 4,2 mg/dL. Valores inferiores se informan: < a 4,2 mg/dL
(Inferior a 4,2 mg/dL.)
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
LAC5
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Vigencia
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49
Redacción y Revisión:
Servicio de Laboratorio UTI
Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 500 mg/dL. Valores superiores son diluidos
automáticamente por el equipo automatizado. Si con la dilución automática aparece la
alarma “ No se puede calcular”, se realiza una dilución manual superior a 1:2 con
solución fisiológica multiplicando el resultado por el factor de dilución.
1.5.3 INTERFERENCIAS
Las sustancias interferentes conocidas son:
Bilirrubina > 10 mg/dL
Triglicéridos > 500 mg/dL
Hemoglobina > 0,35 mg/dL
1.6. INTERPRETACIÓN
Niveles elevados de glucosa se encuentran en enfermedad de Cushing; en ayunas su
elevación es propia del diabético.
Se encuentran disminuidas en insulinomas, carcinomas extra-pancreáticos,
enfermedad de Addison, hipotiroidismo, hipopituitarismo, mala absorción de glucosa,
alcoholismo, sobredosis de insulina, ejercicio intenso y hematocrito aumentado.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
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50
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Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
2 REFERENCIAS
• Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
• Arteaga, A; Pollak, Robres, L; Velasco, N. Características clínicas y metabólicas
de los estados de intolerancia a la glucosa y glicemia de ayuno alteradas. Rev.
méd. Chile [Internet]. 2009 Feb [citado 2018 abril 20] ; 137( 2 ): 193-199.
Disponible en: https://scielo.conicyt.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0034-
98872009000200002&lng=es. http://dx.doi.org/10.4067/S0034-
98872009000200002
• MedlinePlus [Internet]. Brent Wisse, MD, U.S. Division of Metabolism,
Endocrinology & Nutrition, University of Washington School of Medicine, Seattle,
WA. Febrero 2018. [citado 2018 mayo18].Disponible en:
https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/003482.htm
• Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de glucosa.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
LAC5
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Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
19 ASPARTATO AMINOTRANSFERASA (AST/GOT)
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La aspartato aminotranferasa es una enzima bilocular (citoplasmática y mitocondrial)
ampliamente difundida. Se encuentra en mayor concentración en el hígado y corazón.
Cualquier alteración de estos tejidos produce un aumento en los niveles de AST
circulante.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Muestra de suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin
anticoagulante durante 10 minutos a 3500 rpm.
Plasma con EDTA o heparina
1.3 MÉTODO
Ultravioleta optimizado que consiste en un esquema de reacciones que involucra a la
GOT y malato deshidrogenasa.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
General: 0 a 38 UI/L
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
El mínimo cambio de actividad detectable es 6 U/L. Valores inferiores se informan < 6
U/L (Inferior a 6 U/L)
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 1500 U/L. Valores superiores son diluidos de manera
automática por el equipo. Si luego de la dilución automática aparece la alarma: “No se
puede calcular”, se realiza una dilución manual superior a 1:2, multiplicando el
resultado por el factor de dilución.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
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Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
1.5.3 INTERFERENCIAS
Muestras provenientes de pacientes hemodializados o con hipovitaminosis o
patologías asociadas a la deficiencia de piridoxal fosfato producen valores
falsamente disminuidos.
Bilirrubina > 30 mg/dL
Triglicéridos > 500 mg/dL
La hemoglobina interfiere significativamente aumentando los resultados debido
a la presencia de GOT en los eritrocitos.
1.6. INTERPRETACIÓN
Se encuentra elevados en infarto agudo al miocardio, hepatopatías, miopatías y
enfermedades que ocasionan lesión de tejidos o células.
2 REFERENCIAS
Bustamante Verónica, Arab Juan Pablo, Terc Florencia, Poggi Helena, Goycoolea
Manuela, Arrese Marco et al . Aumento aislado y sostenido de aspartato
aminotransferasa por presencia de macroenzimas: Caso clínico. Rev. méd. Chile
[Internet]. 2016 Ago [citado 2018 junio 21] ; 144( 8 ): 1078-1082. Disponible en:
https://scielo.conicyt.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0034-
98872016000800017&lng=es. http://dx.doi.org/10.4067/S0034-
98872016000800017.
García Ferrera Waldo Orlando. ¿Cómo evaluar la elevación de las enzimas
hepáticas en personas aparentemente sanas?: Su importancia para el médico
general. Rev. gastroenterol. Perú [Internet]. 2013 Jul [citado 2018 junio 21] ; 33(
3 ): 262-264. Disponible en:
http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1022-
51292013000300011&lng=es.
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Aspartato
aminotranferasa.
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Gerencia de salud
20 ALANINA AMINO TRANSFERASA (ALT/GPT)
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La alanina aminostransferasa (ALT o GPT) es una enzima citoplasmática cuya mayor
actividad se localiza en el tejido hepático la destrucción o cambio de permeabilidad de
las membranas celulares provoca la liberación de ALT a la circulación sanguínea.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
1.3 MÉTODO
Ultravioleta optimizado en un esquema de reacciones que involucra a la GPT y a la
lactato deshidrogenasa
1.4 VALORES DE REFERENCIA
Hombres: Hasta 41 U/L
Mujeres: Hasta 31 U/L
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
El mínimo cambio de actividad detectable es 2 U/L. Valores inferiores se informan < 2
U/L (Inferior a 2 U/L)
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 1500 U/L. Valores superiores son diluidos de manera
automática por el equipo. Si luego de la dilución automática aparece la alarma: “No se
puede calcular”, se realiza una dilución manual superior a 1:2, multiplicando el
resultado por el factor de dilución.
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Autorización:
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Aprobación:
Gerencia de salud
1.5.3 INTERFERENCIAS
Muestras provenientes de pacientes hemodializados o con hipovitaminosis o
patologías asociadas a la deficiencia de piridoxal fosfato producen valores
falsamente disminuidos.
Bilirrubina > 25 mg/dL
Triglicéridos > 1000 mg/dL
La hemoglobina interfiere significativamente aumentando los resultados debido
a la presencia de GOT en los eritrocitos.
1.6. INTERPRETACIÓN
La ALT esta elevada en todo proceso inflamatorio necrótico del hígado y es empleada
como prueba de tamizaje en donantes de sangre para descartar hepatitis viral activa,
es útil para seguir la evolución de hepatitis virales.
Se eleva ligeramente en el infarto del miocardio y valores bajos corresponden a baja
nutrición, con piridoxina deficiente.
2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Alanina amino
transferasa.
García Ferrera Waldo Orlando. ¿Cómo evaluar la elevación de las enzimas
hepáticas en personas aparentemente sanas?: Su importancia para el médico
general. Rev. gastroenterol. Perú [Internet]. 2013 Jul [citado 2018 Ago 21] ; 33(
3 ): 262-264. Disponible en:
http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1022-
51292013000300011&lng=es.
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21 LACTATO DESHIDROGENASA
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La LDH es una enzima que cataliza la conversión de lactato a Piruvato; está presente
en el citoplasma de las células de todos los tejidos humanos con concentración más
elevada en hígado, corazón y músculo esquelético y más bajo en eritrocitos, páncreas,
riñón y estómago.
En el Líquido cefalorraquídeo el valor normal es de aproximadamente 10% de su valor
en suero, aumentando marcadamente su valor en meningitis bacterianas. En las
meningitis virales la LDH aumenta su valor solo en el 10% de los casos.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
Plasma con heparina
Líquidos biológicos
1.3 MÉTODO
Ultra violeta (UV) optimizado basado en una reacción que involucra la conversión de
piruvato a lactato por la LDH. Las concentraciones de ensayo están optimizadas de
acuerdo a la Sociedad Francesa de Bioquímica Clínica.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
230 – 460 U/L
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La mínima actividad cuantificable es 24 U/L. Valores inferiores se informan: < 24 U/L
(Inferior a 24 U/L)
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Aprobación:
Gerencia de salud
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 1000 U/L. Valores superiores son diluidos
automáticamente por el equipo automatizado. Si luego de la dilución automática
aparece la alarma: “No se puede calcular” se realiza una dilución manual superior a
1:2 con solución fisiológica y se multiplica el resultado obtenido por el factor de
dilución.
1.5.3 INTERFERENCIAS
Las sustancias interferentes conocidas son:
Triglicéridos > 570 mg/dL
Bilirrubina > 18 mg/dL
Hemoglobina > 0,18 g/dL en muestras con niveles normales de LDH
Hemoglobina > 0,35 g/dL en muestras con niveles elevados de LDH
Heparina > 50 UI/mL
1.6. INTERPRETACIÓN
La LDH pasa a la sangre por destrucción de tejidos (traumática, infecciosa o
neoplásica) por lo que su elevación en suero es un signo inespecífico de lesión tisular.
Niveles elevados pueden indicar cardiopatías, enfermedades hematológicas,
hepatopatías, obstrucción de las vías biliares, metástasis tumorales, tromboembolismo
pulmonar, neumonías, insuficiencia renal aguda, hipotiroidismo, ejercicio muscular
muy violento, fiebre tifoidea, tratamientos con medicamentos hepatotóxicos,
alcoholismo.
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Aprobación:
Gerencia de salud
2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Aranda Torrelio Eduardo. Interpretación de la deshidrogenasa láctica. Rev. bol.
ped. [Internet]. 2010 [citado 2018 Ago 20] ; 49( 2 ): 132-134. Disponible en:
http://www.scielo.org.bo/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1024-
06752010000200009&lng=es.
LabTest. Lactato deshidrogenasa. [Internet]. Nov.2017. [Citado 2018 mayo 21].
Disponible en: https://www.labtestsonline.es/tests/lactato-deshidrogenasa
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de LDH.
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Gerencia de salud
22 LIPASA EN SANGRE
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La lipasa es una enzima con la función de disgregar las grasas de los alimentos y
facilitar su absorción, catalizando la hidrolisis de triacilglicerol a glicerol y ácidos
grasos libres.
Es importante para el diagnóstico y evolución de la pancreatitis aguda, la cual se eleva
más tiempo que la amilasa. En la sangre se halla en muy baja concentración.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
Plasma con heparina
1.3 MÉTODO
Cinético, en el cual la lipasa hidroliza el sustrato definido como 1,2-O- dilauril-rac-
glicerol-3-glutárico-éster para liberar ácido glutárico- metilresorufina éster, compuesto
inestable que se descompone espontáneamente liberando un compuesto coloreado
que se mide a 570 nm.La velocidad de aparición del color es directamente
proporcional a la actividad enzimética.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
General: 13 - 60 U/l a 37 °C.
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La mínima actividad detectable corresponde a 2 U/L. Valores inferiores se informan <
2 U/L (Inferior a 2 U/L)
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Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 300 U/L. Valores superiores son diluidos automáticamente
por el equipo automatizado. Si luego de la dilución automática, aparece la alarma “No
se puede calcular”, se realiza una dilución manual superior a 1:2 con solución
fisiológica y se multiplica el resultado por el factor de dilución.
1.5.3 INTERFERENCIAS
Las sustancias interferentes conocidas son:
Bilirrubina > 40 mg/dL
Hemoglobina > 0,5 g/dL
Triglicéridos > 1200 mg/dL
1.6. INTERPRETACIÓN
Se encuentra elevada considerablemente en la pancreatitis aguda, en carcinoma de
páncreas, pancreatitis crónica, insuficiencia renal, en peritonitis aguda.
Es útil para evaluar el curso y la severidad de enfermedades pancreáticas crónicas.
2 REFERENCIAS
MedlinePlus. Laura J. Martin, MD. 2017. [Internet] [Citado 2018 mayo 21].
Disponible en: https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/003465.htm
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Lipasa.
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Gerencia de salud
23 MAGNESIO EN SANGRE
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
El magnesio es uno de los iones más abundantes del organismo. Se encuentra en los
huesos y el resto está repartido entre los músculos y otros tejidos blandos.
El magnesio participa en el metabolismo energético a través de la activación del ATP,
en la transferencia de fosfatos de alta energía y es el ion activador de muchas
enzimas involucradas en el metabolismo de lípidos, carbohidratos y proteínas, es
mediador en mecanismos de conducción y transporte a través de membranas. Es
esencial en la preservación de estructuras moleculares de DNA, RNA y ribosomas,
formación del hueso y el mantenimiento de la presión osmótica.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante 10 minutos a
3500 rpm.
Plasma con heparina.
No se utiliza anticoagulantes EDTA o citrato ya que forman complejos con el
magnesio, provocando resultados erróneos.
1.3 MÉTODO
Colorimétrico con Clorofosfonazo
1.4 VALORES DE REFERENCIA
1,7 a 2,5 mg/dl
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La mínima concentración cuantificable es 0,35 mg/dL
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Aprobación:
Gerencia de salud
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 6 mg/dL.
1.5.3 INTERFERENCIAS
La contaminación con eritrocitos puede elevar los resultados ya que el nivel de
Magnesio en los mismos es mayor que en el suero
Triglicéridos > 1300 mg/dL
Hemoglobina > 0,8 mg/dL
Bilirrubina directa > 21 mg/dL
Bilirrubina Total > 40 mg/dL
Calcio > 45 mg/dL
Heparina > 50 UI/mL.
1.6. INTERPRETACIÓN
Valores bajos de magnesio están asociados a la deficiencia de otros iones como el P,
K y Ca. También en diarreas crónicas y agudas, síndromes de mala absorción,
succión nasogástrica prolongada y vómito, fistulas intestinales y biliares, deterioro de
la conservación renal, diabetes mellitus, hipertiroideos, hiperaldosteronismo primario,
alcoholismo crónico, rabdomiólisis.
La hipermagnesemia implica una depresión del sistema nervioso central y de la
excitabilidad neuromuscular. Valores elevados son propios de insuficiencia renal
aguda o crónica, coma diabético, hiperparatiroidismo, administración de antiácidos con
contenido de magnesio y en enfermedad de Addison.
2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Francisco Ángel L. M. de, Rodríguez Mariano. Magnesio y enfermedad renal
crónica. Nefrología (Madr.) [Internet]. 2013 [citado 2018 Jun 22] ; 33( 3 ): 389-
399. Disponible en: http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0211-
69952013000400014&lng=es.
http://dx.doi.org/10.3265/Nefrologia.pre2013.Feb.11840.
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Magnesio.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
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Gerencia de salud
24 PROTEINA C REACTIVA
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La proteína C reactiva es una proteína de fase aguda que se sintetiza en el hígado y
aparece en la sangre de pacientes con diversas enfermedades inflamatorias. Debido a
la velocidad y la magnitud de su respuesta, es reconocida como uno de los
marcadores más sensibles de fase aguda.
Su determinación es clínicamente útil en el screening de enfermedades infecciosas e
inflamatorias. Para monitorear la actividad inflamatoria de enfermedades como la
artritis reumatoidea; para la detección de infecciones intercurrentes en lupus, etc.
Es un marcador sensible de predicción de eventos cardiovasculares
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante por 10 minutos a
3500 rpm.
Plasma con heparina
1.3 MÉTODO
La PCR presente en la muestra es capaz de aglutinar las partículas de látex
recubiertas con anticuerpos anti-PCR. La turbidez causada por la aglutinación de las
partículas de látex es proporcional a la concentración de PCR en la muestra y puede
ser medida espectrofotométricamente.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
General: 0 a 5 mg/L
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La mínima concentración detectable es 0,2 mg/L. Valores inferiores se informan: < 0,2
mg/L (Inferior a 0,2 mg/L
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Página 63
63
Redacción y Revisión:
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Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 100 mg/L. Valores superiores son diluidos
automáticamente por el equipo automatizado. Si aún con la dilución aparece la
alarma: “No se puede calcular”, se realiza una dilución manual superior a 1:2 con
solución fisiológica, multiplicando el resultado emitido por el factor de dilucón
1.5.3 INTERFERENCIAS
Las muestra lipémicas, contaminadas o hemolizadas no se utilizan
Las sustancias interferentes conocidas son:
Bilirrubina > 25 mg/dL
Triglicéridos > 3000 mg/dL
Hemoglobina > 1 g/dL
Factor reumatoideo > 500 UI/L
1.6. INTERPRETACIÓN
Aumenta después de infarto de miocardio, stress, trauma, infección, inflamación,
cirugías o proliferación neoplásica. Sin embargo el incremento es inespecífico y no
puede ser interpretado sin conocimiento de la historia clínica completa y de los valores
previos del paciente.
2 CALIBRACION
2.1 Naturaleza del calibrador
La calibración se realiza con un calibrador en serie para Proteína C Reactiva con 8
niveles de concentración que se enumeran del 1 al 8; que viene listo para su uso y
cuyas concentraciones son dependientes del lote de fabricación, y están registradas
en el equipo automatizado.
2.2 Calibración
La calibración es de 6 puntos y se utilizan los calibradores 1,3, 4, 5, 6 y 7
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2.3 Frecuencia de calibración
La calibración se realiza:
Con cada cambio de lote de reactivo
Cuando los controles no entran dentro del rango de 2 desviaciones estándar de
la media
Cuando el profesional operador considere necesario
3. CONTROL DE CALIDAD
3.1 Naturaleza de los controles
Se utiliza el control N exclusivo para PCR con valor asignado dependiente del lote de
fabricación. Este valor se encuentra registrado en el equipo automatizado y se
modifica con cada cambio de lote del Control. El control viene listo para su uso.
3.2 Frecuencia de procesamiento de controles
Los controles se procesan
diariamente en el turno mañana
luego de la calibración por cambio de lote de reactivo
luego del cambio de lote de control
cada vez que el profesional operador considere necesario
4 REFERENCIAS
Ficha técnica de trabajo para la determinción de Proteína C Reactiva adjunta
al reactivo de trabajo
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Gerencia de salud
25 PROTEINAS TOTALES
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
Las proteínas son compuestos orgánicos macromoleculares ampliamente distribuidos
en el organismo, esenciales para la vida. Actúan como elementos estructurales o de
transportes y aparecen en forma de enzimas, hormonas, anticuerpos, factores de
coagulación, etc.
En el plasma, las proteínas contribuyen a mantener el volumen del fluido circulante,
transportan sustancias relativamente insolubles y actúan en la inactivación de
compuestos tóxicos y en la defensa contra agentes invasores.
La determinación de proteínas totales es útil para el monitoreo de cambios
ocasionados por diversas enfermedades.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
Líquido ascítico
Líquido pleural
Líquido sinovial
1.3 MÉTODO
Los enlaces peptídicos de las proteínas reaccionan con el ión cúprico en medio
alcalino para dar un complejo color violeta, cuya intensidad es proporcional a la
concentración de proteínas totales de la muestra.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
General: 6,1 – 7,9 g/dL.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
LAC5
Versión 01
Vigencia
Página 66
66
Redacción y Revisión:
Servicio de Laboratorio UTI
Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
El menor cambio de concentración detectable es de 0,01 g/dL. Valores inferiores se
informan: < 0,01 g/dL (Inferior a 0,01 g/dL)
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 17 g/dL. Valores superiores son diluidos automáticamente
por el equipo automatizado. Si aún con la dilución aparece la alarma “No se puede
calcular”, se realiza una dilución manual superior a 1:2 con solución fisiológica,
multiplicando el resultado emitido por el factor de dilución.
1.5.3 INTERFERENCIAS
La utilización de plasma llevará a un incremento de 0,2 g/dL en la proteinemia debido
al fibrinógeno que no está considerado dentro de la definición de Proteínas totales.
La sustancia interferente conocida es:
Bilirrubina > 10 mg/dL
1.6. INTERPRETACIÓN
En condiciones patológicas como perdidas renales, infecciones prolongadas, ect
suelen presentarse hipoproteinemias, mientras que en otras como mieloma multiple,
endocarditis bacteriana y hemoconcentración de diversos orígenes se observan
hiperproteinemias.
2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Proteínas Totales.
MedLinePlus. Laura J. Martin, MD.Proteínas Totales. May 2017.[Internet].[Citado
2018 may 23]. Disponible en: https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/003483.htm
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
LAC5
Versión 01
Vigencia
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67
Redacción y Revisión:
Servicio de Laboratorio UTI
Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
26 PROTEINAS EN LCR
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La determinación de proteínas en líquido cefalorraquídeo es útil para evaluar la
permeabilidad de la barrera hematoencefálica en muchas enfermedades inflamatorias
o infecciosas del SNC, como ocurre en las meningitis bacterianas, virales o de otros
orígenes, encefalitis, poliomielitis, neurosífilis, esclerosis múltiple, hemorragia cerebral,
tumores cerebrales o espinales. Otros desórdenes ocasionan una producción anormal
de proteínas dentro del SNC como las enfermedades desmielinizantes.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Líquido cefalorraquídeo
1.2.1 VOLUMEN DE MUESTRA
El volumen mínimo requerido es 200 uL
1.3 MÉTODO
Las proteínas presentes en la muestra reaccionan en medio ácido con el complejo
Rojo de Pirogalol-Molibdato originando un nuevo complejo coloreado que se cuantifica
espectrofotométricamente a 600 nm.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
15 a 45 mg/dl
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La mínima concentración detectable es 0,5 mg/dL.
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 150 mg/dL. Valores superiores son diluidos
automáticamente por el equipo automatizado. Si aún con la dilución automática
aparece la alarma: “No se puede calcular”, se realiza una dilución manual superior a
1:2 con solución fisiológica y se multiplica el resultado por el factor de dilución.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
LAC5
Versión 01
Vigencia
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68
Redacción y Revisión:
Servicio de Laboratorio UTI
Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
1.5.3 INTERFERENCIAS
La hemolisis causa resultados falsamente aumentados
1.6. INTERPRETACIÓN
Se observan valores aumentados en infecciones bacterianas, neoplasias e
inflamaciones.
2 CALIBRACION
2.1 Naturaleza del calibrador
La calibración se realiza con un calibrador monoparámetrico para Proteínas en LCR
que viene listo para su uso y cuya concentración es dependiente del lote de
fabricación, y está registrada en el equipo automatizado.
2.2 Frecuencia de calibración
La calibración se realiza:
Cada 15 días
Con cada cambio de lote de reactivo
Cuando los controles no entran dentro del rango de 2 desviaciones estándar de
la media
Cuando el profesional operador considere necesario
3. CONTROL DE CALIDAD
3.1 Naturaleza de los controles
Se utilizan 2 niveles de controles exclusivos para proteínas en LCR que están listos
para su uso y se encuentran en la heladera del laboratorio.
3.2 Frecuencia de procesamiento de controles
Los controles se procesan
diariamente en el turno mañana
luego de la calibración por cambio de lote de reactivo
luego del cambio de lote de control
cada vez que el profesional operador considere necesario
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
LAC5
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Vigencia
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69
Redacción y Revisión:
Servicio de Laboratorio UTI
Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
4 REFERENCIAS
Ficha técnica de trabajo para la determinación in vitro de Proteínas Totales
en LCR marca Wiener adjunta al reactivo de trabajo.
27 TRIGLICERIDOS EN SANGRE
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
Los triglicéridos forman parte de las lipoproteínas y se dividen en exógenos y
endógenos. Son materia prima para fabricar la lipoproteína LDL, que es la forma
fisiológica que lleva el colesterol a las células, y al mismo tiempo es nociva para el
organismo. Por depositarse en las paredes arteriales, estrechar su luz, producir placas
ateromatosas.
Toda lipoproteína tiene triglicéridos, pero estos son más abundantes en los
quilomicrones y en la fracción VLDL, que representa la quinta parte de los triglicéridos
totales.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
Plasma con heparina
1.3 MÉTODO
Enzimático (GPO/PAP) en una secuencia de reacciones que involucra a la
lipoproteinlipasa, glicerolkinasa, glicerol fosfato oxidasa y peroxidasa, y como producto
final se forma una quinonimina roja cuya absorbancia es directamente proporcional a
la concentración de triglicéridos.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
General: < 160 mg/dl
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
LAC5
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Vigencia
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70
Redacción y Revisión:
Servicio de Laboratorio UTI
Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
El cambio mínimo de concentración detectable corresponde a 0,9 mg/dL
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 1000 mg/dL. Valores superiores son diluidos
automáticamente por el equipo automatizado. Si aún con la dilución predeterminada,
aparece la alarma: “No se puede calcular”, se realiza una dilución manual superior a
1:2 con solución fisiológica, multiplicando el resultado emitido por el factor de dilución.
1.5.3 INTERFERENCIAS
Las contaminaciones con glicerol producen resultados falsamente aumentados
La sustancia interferente conocida es:
Bilirrubina > 15 mg/dL
La hemólisis marcada no interfiere en la reacción
1.6. INTERPRETACIÓN
La medición de los triglicéridos se utiliza en el control del estado de los lípidos para
detectar riesgos de arterosclerosis. Se ha comprobado que concentraciones de
lipoproteínas de baja densidad (LDL) constituyen un alto riesgo para enfermedad
cardíaca coronaria. En enfermedades del hígado, riñones y páncreas también están
elevados.
2 REFERENCIAS
Rodríguez Antonio J.. Triglicéridos, "el enemigo olvidado". Rev. costarric. cardiol
[Internet]. 2002 abril [Citado 2018 mayo 21] ; 4( 1 ): 28-31. Disponible en:
http://www.scielo.sa.cr/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1409-
41422002000100006&lng=en.
Escribano Hernández Alfonso, Vega Alonso Agustín Tomás, Lozano Alonso José
Eugenio, Álamo Sanz Rufino, Castrodeza Sanz José Javier, Lleras Muñoz Siro.
Dislipidemias y riesgo cardiovascular en la población adulta de Castilla y León. Gac
Sanit [Internet]. 2010 Ago. [citado 2018 Jun 21] ; 24( 4 ): 282-287. Disponible en:
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
LAC5
Versión 01
Vigencia
Página 71
71
Redacción y Revisión:
Servicio de Laboratorio UTI
Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0213-
91112010000400004&lng=es.
Miguel Soca Pedro Enrique. Dislipidemias. ACIMED [Internet]. 2009 Dic
[citado 2018 mayo 21]; 20(6): 265-273. Disponible en:
http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1024-
94352009001200012&lng=es.
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Triglicéridos.
28 UREA EN SANGRE
1 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
1.1 FUNDAMENTO
La urea es el principal componente nitrogenado, que como producto final del
catabolismo proteico es excretado normal y rápidamente por los riñones. Se produce
en el hígado y es excretada por la orina a través de los riñones.
1.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante durante
10 minutos a 3500 rpm.
Plasma con heparina o EDTA
1.3 MÉTODO
Cinético con ureasa y glutamato deshidrogenasa.
1.4 VALORES DE REFERENCIA
General: 10 – 50 mg/dl.
1.5 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
1.5.1 SENSIBILIDAD
La sensibilidad analítica es 7,1 mg/dL. Valores inferiores se informan como: < 7,1
mg/dL( Inferior a 7,1 mg/dL.
Procedimiento Operativo Estándar para examen de Química
Código POE-DAS-
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Versión 01
Vigencia
Página 72
72
Redacción y Revisión:
Servicio de Laboratorio UTI
Autorización:
Departamento de Análisis Clínicos
Aprobación:
Gerencia de salud
1.5.2 LINEALIDAD
La reacción es lineal hasta 300 mg/dL. Valores superiores son diluidos
automáticamente por el equipo automatizado. Si aún con la dilución predeterminada,
aparece la alarma: “No se puede calcular”, se realiza una dilución manual superior a
1:2 con solución fisiológica, multiplicando el resultado emitido por el factor de dilución.
1.5.3 INTERFERENCIAS
Las sustancias interferentes conocidas son:
Bilirrubina > 15 mg/dL
Hemoglobina > 0,35 mg/dL
Triglicéridos > 700 mg/dL
1.6. INTERPRETACIÓN
El significado clínico es muy importante, ya que constituye un muy buen indicador de
la función renal, ya que, al disminuir la filtración glomerular por fallas renales, los
niveles de urea se incrementan. Sin embargo debe tenerse en cuenta el hecho de que
lo valores séricos de urea se encuentran íntimamente relacionado con la dieta y el
metabolismo proteico, por lo que cualquier alteración de estas variables se traducirá
en un cambio de concentración de urea en el suero.
2 REFERENCIAS
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá:
Médica Panamericana.
Pedrero M, Valores Renales. España. Marzo 2012.Rev.[Internet].[Citado 2018
mayo 21].Disponible en:
https://www.onmeda.es/exploracion_tratamiento/valores_rinones.html
Inserto provisto por el kit de reactivo para la determinación de Urea marca Wiener
Elaborado por:
Revisado por:
Aprobado por:
Instituto de Previsión Social
Hospital Central
Servicio Laboratorio UTI
POE UTI- ELEC
Procedimiento Operativo Estándar para
determinación de electrolitos
HISTORIAL DE MODIFICACIONES
Versión
Nº
Fecha Apartados Pág. Causas de la
modificación
Recalificación necesaria
del personal Si/No
SODIO, POTASIO, CLORURO EN SANGRE
1 OBJETIVO
Describir los procedimientos para la determinación de Sodio, Potasio y Cloruro en sangre
2 ALCANCE
A todas las muestras que ingresen y los pacientes que acudan al Servicio de Laboratorio de
Urgencias con pedido de Sodio, Potasio y Cloruro.
3 RESPONSABLES
El Jefe de Servicio UTI, Bioquímicos y Técnicos asignados por la Jefatura según cronograma de
trabajo.
4 MATERIALES Y EQUIPOS
4.1 Guantes
4.2 Guardapolvo
4.3 Centrifuga
4.4 Equipo automatizado
4.5 Gradillas
4.6 Reactivos proveídos para la determinación.
5 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1 FUNDAMENTO
El sodio constituye en principal catión extracelular, determina en gran medida la osmolalidad del
plasma.
El potasio es el principal catión intracelular, entre sus funciones están: la regulación de la
excitabilidad neuromuscular, contracción del corazón, volumen del líquido intracelular y la
concentración de del ion hidrógeno.
El cloro es el principal anión extracelular. Interviene en mantener la osmolalidad, el volumen
sanguíneo y la neutralidad eléctrica. Los 3 tienen la función de conservar el equilibrio hidro-osmótico
de la sangre, contribuyendo al equilibrio ácido base.
5.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, libre de hemólisis, que se obtiene centrifugando la sangre sin anticoagulante
durante 10 minutos a 3500 rpm.
Plasma con heparina de Litio a una concentración final de 15 a 50 UI/mL.
5.3 MÉTODO
Ion selectivo que se basa en la utilización de un equipo semiautomático que utiliza membranas
selectivas a cada tipo de ion.
5.3.1 CARACTERISTICAS DE LA TÉCNICA
Sensibilidad
Las mínimas concentraciones detectables son:
Sodio: 100 mmol/L
Potasio: 1,0 mmol/L
Cloro: 50 mmol/L
Linealidad
La determinación es lineal hasta:
Sodio: 200 mmol/L
Potasio: 10,0 mmol/L
Cloro: 150 mmol/L
Volumen de muestra: El equipo utiliza un volumen de 55 uL.
Tiempo de procesamiento: 35 segundos
Interferencias
Los iones cargados negativamente pueden interferir con el electrodo de cloro. El salicilato es un
interferente común en su rango clínico, aunque esta interferencia es insignificante.
Otras interferencias son: bromuro, tiocianato, albúmina y bicarbonato.
5.4 PROCEDIMIENTO
5.4.1 ACCIONES EN FORMA SECUENCIAL
5.4.1.1 Se determinan los valores de los controles normales y patológicos para validar los resultados
de calibración.
5.4.1.2 Se etiqueta la muestra con el código correspondiente mediante el sistema informático de
gestión de laboratorio (LIS).
5.4.1.3 Los sueros a testar son utilizados puros, con el tubo primario, en caso de muestras escasas
se utilizan adaptadores de modo que la muestra quede accesible a la sonda del equipo
5.4.1.4 Se informan en el SIL, los valores de Sodio, Potasio, Cloro obtenidos.
5.4.2 ESPACIO FÍSICO Y CONDICIONES AMBIENTALES
La determinación se realiza dentro del laboratorio de Urgencias en ambiente climatizado (18 °C – 25
°C).
5.5. CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO
5.5.1 Las muestras para estudio deben estar acompañadas del pedido médico, con firma y sello del
médico tratante.
5.5.2 Se rechazan muestras sin rotular, con doble rotulación y las muestras cuyo pedido médico no
coincida con la rotulación.
5.5.3 Se rechazan muestras cuya orden emanada sea ilegible o incompleta.
5.6 INTERPRETACIÓN, INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
5.6.1 INTERPRETACIÓN
La determinación de sus niveles es de gran utilidad clínica, pues los tres inciden notablemente sobre
la acidosis y alcalosis, y aunque por sí mismos no son capaces de producir ninguno de estos
cambios, si tienen alteraciones en sus concentraciones influyen en el equilibrio ácido-básico.
5.6.2 INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
Los resultados son impresos en el sistema informático de gestión de laboratorio (SIL), luego de ser
controlados y firmados por los profesionales bioquímicos, están listos para su posterior entrega a los
pacientes o sus familiares.
5.6.3 VALORES CRITICOS DE NOTIFICACION INMEDIATA
Los valores que pueden significar riesgo de vida se notifican de manera inmediata, sin esperar el
tiempo promedio habitual de informe de resultados. Estos valores son:
Sodio < 120 o > 159 mmol/L
Potasio < 2,5 o > 6,0 mmol/L
Cloro < 75 o > 127 mmol/L
5.7. CONTROLES INTERNOS DE CALIDAD
5.7.1 NATURALEZA DE LA MUESTRA
Se utilizan dos niveles de control. Consiste en suero comercial liofilizado. En el inserto del control se
encuentran los rangos aceptables para ambos niveles dependiendo tanto de los reactivos/métodos
como de la marca del analizador que se utiliza y el lote de fabricación. Estos rangos están registrados
a la vista en el lugar de procesamiento.
5.7.2 LUGAR DE ALMACENAMIENTO
Los viales son proveídos por la firma GT, y se almacenan en la heladera del laboratorio antes de su
reconstitución.
5.7.3 PREPARACION DE LOS CONTROLES
- Se abre el vial, retirando lentamente el tapón de goma para evitar pérdidas de material liofilizado.
- Se agrega 5.0 ml de agua destilada (que se obtiene del destilador del área química) exactamente
medida.
- Se tapa y mezcla por inversión suave, evitando la formación de espuma. No se agita
- Se deja disolver 30 minutos a temperatura ambiente, mezclando por inversión de tanto en tanto.
- Una vez reconstituidos, se alicuotan en 200 ul en tubos eppendorf y se almacenan en el congelador
de la heladera del Laboratorio de Urgencias. Por la gradilla de almacenamiento se registra el número
de lote de fabricación y la fecha de preparación
5.7.4 UTILIZACION DE LOS CONTROLES
Los controles se procesan como muestra y los resultados se registran en el cuaderno de control de
calidad de electrolitos que se encuentra en el área de procesamiento.
5.7.5 FRECUENCIA DE PROCESAMIENTO
Los controles se procesan:
- Todos los días a primera hora en el Turno mañana
- Luego del cambio de pack de reactivos
- Luego de los mantenimientos correctivos del equipo
- Cuando el operador considere necesario
5.8 CALIBRACION
Las calibraciones están programadas de la siguiente manera:
Un punto después de cada muestra
Dos o tres puntos cada 4 horas
5.9 VALORES DE REFERENCIA
Sodio: 135 – 148 mmol/L
Potasio: 3,5 – 5,5 mmol/L
Cloro: 95 - 110 mmol/L
6 REFERENCIAS
Bustamante C. Gladys, Cuba Pardo Grover. Electrolitos. Rev. Act. Clin. Med [revista en la Internet].
[citado May 24]. Disponible en:
http://www.revistasbolivianas.org.bo/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2304-
37682013001200001&lng=es.
Zamora Mario Michel. Alteraciones electrolíticas y del metabolismo del agua en los procesos
neurológicos. Arq. Neuro-Psiquiatr. [Internet]. 1962 June [cited 2018 May 24] ; 20( 2 ): 137-141.
Available from: http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0004-
282X1962000200007&lng=en. http://dx.doi.org/10.1590/S0004-282X1962000200007.
Gómez, A.; Casas, M. Interpretación clínica del laboratorio. 8ª Edición. Bogotá: Médica
Panamericana
Elaborado por: Dra. Myriam García
Revisado por: Dra. Aurelia Torres
Aprobado por: Dra. Gladys Cáceres
Febrero - 2019 Febrero - 2019 Febrero - 2019
Instituto de Previsión Social
Hospital Central
Servicio de Laboratorio UTI
POE-GASO-01UTI
Procedimiento Operativo Estándar para el
examen de GASOMETRIA
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTI
Procedimiento Operativo Estándar para el examen de
gasometría
POE GASO 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
HISTORIAL DE MODIFICACIONES
Versión
Nº
Fecha Apartados Pág. Causas de la
modificación
Recalificación necesaria
del personal Si/No
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTI
Procedimiento Operativo Estándar para el examen de
gasometría
POE GASO 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
INDICE
1. OBJETIVO
2. ALCANCE
3. RESPONSABLES
4. MATERIALES Y EQUIPOS
5. DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1 FUNDAMENTO
5.2 MUESTRA REQUERIDA
5.3 METODO
5.4 PROCEDIMIENTO
5.5 CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO
5.6 INTERPRETACION, INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
5.7 CALIBRACIONES
5.8 CONTROLES INTERNOS DE CALIDAD
5.9 REFERENCIAS
Gases en sangre
1. OBJETIVO
Describir los procedimientos para la determinación de la concentración de gases en
muestras de sangre arterial y venosa, acidez-alcalinidad, electrolitos, hematocrito y
glicemia comprendidos en una gasometría, en muestras de sangre total de todos los
pacientes que acuden al laboratorio y muestras remitidas al mismo.
2. ALCANCE
A todas las muestras que ingresen al Servicio de Laboratorio de UTI para el
procesamiento de gases en sangre.
3. RESPONSABLES
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTI
Procedimiento Operativo Estándar para el examen de
gasometría
POE GASO 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
El Jefe de Servicio, Bioquímicos y Técnicos asignados por la Jefatura según
cronograma de trabajo.
4. DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
4.1 FUNDAMENTO
5. MATERIALES Y EQUIPOS
4.1 Guantes
4.2 Guardapolvo
4.3 Equipo automatizado
4.4 Muestra: plasma heparinizado
4.5 Reactivos proveídos para la determinación.
5.2 MUESTRA REQUERIDA
Sangre total en jeringa heparinizada, extraída con heparina de sodio diluida ⅕.
Procedimiento de dilución de heparina ⅕
En una jeringa de 5 ml. Aspirar 1 ml de heparina sódica concentrada, luego aspirar 1 ml de
solución salina, y por último 3 ml de agua destilada estéril. Mezclar por inversión
Procedimiemt0 para toma de muestra de gasometrías
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTI
Procedimiento Operativo Estándar para el examen de
gasometría
POE GASO 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
5.2.1 Cantidad de muestra
El volumen mínimo requerido es de 150 ul.
5.3 MÉTODO
Potenciometría directa realizada por electrodo de medición de pH , pO2 Y pCO2
Valores de Referencia
Arterial Venosa
pH 7,35 a 7,45 7,34 a 7,41
pCO2 35 a 45 mmHg
BE (Exceso de base) +2,0 mmol/L
TCO2 (CO2 total) 20 a 24 mmol/L 22 a 26 mmol/L
Bicarbonato actual 22 a 30 mmol/L
Bicarbonato estándar 21 a 25 mmol/L
pO2 80 a 100 mmHg 25 a 40 mmHg
Sat. O2 95 a 100%
5.4 PROCEDIMIENTO
5.4.1 ACCIONES EN FORMA SECUENCIAL
5.4.1.1 Determinar los valores de los controles normales y patológicos para validar los
resultados de calibración.
5.4.1.2 Mezclar la muestra de sangre por inversión de la jeringa, luego rodar la jeringa
entre las palmas de las manos
5.4.1.3 Levantar la puerta de entrada de las jeringas y aplicar la punta de la jeringa en la
entrada
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTI
Procedimiento Operativo Estándar para el examen de
gasometría
POE GASO 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
5.4.1.4 Seleccionar el modo de medida (jeringa 195ul), pulsar la tecla inicio y luego la tecla
aspirar, para iniciar la medida.
5.4.1.5 Cuando lo indique el analizador, retirar la jeringa y cerrar la entrada
5.4.1.6 Introducir los datos en la pantalla Identificación del paciente: número de CI, apellido
y nombre, tipo de muestra (arterial, venosa, etc.)
5.4.2 ESPACIO FÍSICO Y CONDICIONES AMBIENTALES
La determinación se realiza en ambiente climatizado (18 °C – 25 °C).
5.5. CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO
5.5.1 Las muestras para estudio deberán estar acompañadas del pedido médico, con firma
y sello del médico tratante.
5.5.2 Se rechazarán muestras sin rotular, con doble rotulación y las muestras cuyo pedido
médico no coincidan con la rotulación.
5.5.3 Se rechazarán muestras cuya orden emanada sea ilegible o incompleta.
5.5.4 Se rechazarán muestras con burbujas o material insuficiente o muestra con coágulos
5.6 INTERPRETACIÓN, INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
5.6.1 INTERPRETACIÓN
. INTERPRETACIÓN DE LA GASOMETRÍA ARTERIAL ANORMAL
Gasometría Patologías
Acidosis
respiratoria
- hipercapnia (PaCO2> 44):
no compensada:
bicarbonatos normales,
pH<7,35
parcialmente compensada:
bicarbonatos altos,
pH<7,35
compensada: bicarbonatos
- Disminución de la fracción inspirada de
oxígeno (aire viciado, altitud, inhalación de gas
hipóxica).
- Disminución de la ventilación pulmonar:
traumatismo torácico, derrame pleural, síndrome
de Pickwick, narcosis, enfisema, bronquitis
crónica obstructiva, asma, insuficiencia
respiratoria, edema pulmonar, fibrosis
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTI
Procedimiento Operativo Estándar para el examen de
gasometría
POE GASO 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
altos, pH> 7,35 intersticial difusa, disminución de la tasa de
hemoglobina funcional, tumores cerebrales con
la participación de centros responsables del
control de la respiración.
Alcalosis
respiratoria
- hipocapnia (PaCO2<35)
disminución de la
reabsorción de
bicarbonatos por reducción
de la función renal
(mecanismo
compensatorio)
- Hiperventilación por hipoxia a gran altura.
- Problema de reanimación.
- Ingestión de sustancias tóxicas (salicilatos).
- Enfermedad pulmonar.
- Lesión traumática de origen central.
Acidosis
metabólica
- disminución de
bicarbonatos (HCO3-<22)
- disminución de la PaCO2
por hiperventilación
(mecanismo
compensatorio)
- Acidosis láctica con hipoxia.
- Cetoacidosis diabética.
- Problemas renales: glomerulonefritis,
tubulopatía. Insuficiencia renal funcional.
- Sobrecarga en exógenos ácidos (intoxicación,
medicamentos).
- Diarrea profusa.
Alcalosis
metabólica
- aumento de bicarbonatos
(HCO3->28)
- aumento de la PaCO2 por
hipoventilación
(mecanismo
compensatorio)
- Vómitos.
- Exceso de bicarbonatos (problemas de
reanimación).
- Aldosteronismo.
- Hipercortisolismo.
5.6.2 INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
Cuando los resultados se imprimen, se registran en la planilla habilitada dejando
constancia de: nombre y apellido del paciente, hora de recepción de muestra,
servicio o sala de internación, resultados.
Obs: Los resultados de gasometrías no quedan registrados en el SIL (Sistema informático
del laboratorio)
5.7 CALIBRACIONES
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTI
Procedimiento Operativo Estándar para el examen de
gasometría
POE GASO 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
Calibración automática de 1 y 2 puntos programados
5.7.1 Frecuencia de calibraciones
Se realizarán calibraciones:
● Con cada cambio de lote de reactivo
● Cuando el profesional operador considere necesario
● En forma automática cada 2 y 4 horas
5.8 CONTROLES INTERNOS DE CALIDAD
VIALES COMERCIALES CON 3 NIVELES DE CONTROLES
5.8.1 Frecuencia de procesamiento de controles
Los controles se procesan
● diariamente en el turno mañana
● luego de cada calibración por cambio de lote de reactivo
● luego de cambio de lote de control
● cada vez que el profesional operador considere necesario
5.9 REFERENCIAS
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTI
Procedimiento Operativo Estándar para el examen de
gasometría
POE GASO 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
Elaborado por: Dra. Myriam García
Revisado por: Dr. Aurelia Torres
Aprobado por: Dra. Milva Ibarrola
Instituto de Previsión Social
Hospital Central
Servicio Laboratorio de UTI
POE ORIS UTI – 01UTI
Procedimiento Operativo Estándar para
análisis de Orina Simple
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTi
Procedimiento Operativo Estándar para el análisis de
Orina Simple
POE 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
HISTORIAL DE MODIFICACIONES
Versión
Nº
Fecha Apartados Pág. Causas de la
modificación
Recalificación necesaria
del personal Si/No
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Procedimiento Operativo Estándar para el análisis de
Orina Simple
POE 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
1. OBJETIVO
2. ALCANCE
3. RESPONSABLES
4. MATERIALES Y EQUIPOS
5. DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1 FUNDAMENTO
5.2 MUESTRA REQUERIDA
5.3 METODO
5.4 PROCEDIMIENTO E INTERPRETACIÓN
5.5 CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO
6. REFERENCIAS
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Procedimiento Operativo Estándar para el análisis de
Orina Simple
POE 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
1 OBJETIVO
Describir los procedimientos para el análisis de Orina Simple
2 ALCANCE
A todas las muestras que ingresen al Servicio de Laboratorio de UTI con pedido de análisis de Orina
Simple u Orina Rutina
3 RESPONSABLES
El Jefe de Servicio, Bioquímicos y Técnicos asignados por la Jefatura según cronograma de trabajo.
4 MATERIALES Y EQUIPOS
4.1 Guantes
4.2 Guardapolvo
4.3 Centrífuga
4.4 Tiras reactivas de orina
4.5 Tubos de hemolisis
4.6 Gradillas
4.7 Láminas
4.8 Laminillas
4.9 Microscopio
5 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1 FUNDAMENTO
La orina desempeña un papel importante en la regulación del balance de líquidos y electrolitos y del
equilibrio entre ácidos y bases. La cantidad de orina producida diariamente es de 1 a 1,5 litros, valor
que aumenta si se ingieren muchos líquidos y disminuye en caso de sudoración intensa. Las
muestras de orina son biopsias líquidas de los tejidos del tracto urinario, recolectadas en forma
indolora que permiten tener información rápida y económica.
La orina normal contiene un 96% de agua y un 4% de sólidos en solución. Cerca de la mitad de los
sólidos son urea, el principal producto de degradación del metabolismo de las proteínas. El resto
incluye nitrógeno, cloruros, cetosteroides, fósforo, amonio, creatinina y ácido úrico.
5.2 MUESTRA REQUERIDA
Orina fresca libre de contaminación recolectada en un frasco limpio.
Volumen mínimo
10 mL
Estabilidad de la muestra
La orina se debe procesar antes de las 2 horas de emitida
5.3 MÉTODO
El análisis consta de tres partes:
1- Las características físicas: color, aspecto y densidad
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Procedimiento Operativo Estándar para el análisis de
Orina Simple
POE 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
2- Las características químicas, incluyendo el pH, el contenido de proteínas, glucosa, cetonas,
sangre oculta, bilirrubina, urobilinógeno y nitrito.
3- Las estructuras microscópicas presentes en el sedimento, como leucocitos, hematíes, células
epiteliales, cristales, cilindros y más.
5.4 PROCEDIMIENTO
5.4.1 ACCIONES EN FORMA SECUENCIAL E INTERPRETACIÓN
Examen físico
Se homogeneiza bien la orina por medio de movimientos suaves, se evalua el aspecto y color de la
orina en contraste con la luz y se informa.
Aspecto: Es considerado como normal un aspecto límpido, pero es aceptado hasta un aspecto
ligeramente turbio ya que este puede ser debido a contaminaciones o presencia de partículas.
El aspecto turbio es considerado como anormal, y puede ser debido a presencia de leucocitos,
glóbulos rojos, bacterias, cristales, grasa (Por obstrucción de conductos linfáticos).
Color: Puede variar de amarillo claro a ámbar oscuro. Se informa el color observado de la
orina en el mismo envase.
Examen químico
Este examen se hace por medio de tiras reactivas de marcas variadas.
1) Se enumeran los tubos de hemolisis, según el código identificador de la orina
2) Se vierte la orina en el tubo con el código correspondiente
3) Se sumerge la tira de orina, de modo a que quede sumergida toda el área de pruebas, por 3 a
4 segundos
4) Al retirarla, se roza la tira reactiva contra el borde el tubo para eliminar el exceso de orina. Se
seca la tira tocando un extremo con un papel absorbente para remover la orina remanente. El
exceso de orina en la tira puede causar interacción química entre las distintas áreas de
muestra que puede resultar en interpretaciones incorrectas.
5) Al cabo de 60 segundos como mínimo, se compara el color de reacción con la escala
cromática proveída con las tiras. Se mantiene la tira en forma horizontal para prevenir posibles
interacciones químicas entre las áreas de prueba si hay exceso de orina.
6) Se registran los datos en el cuaderno de orina
Densidad: Esta varia en razón directa a la cantidad de sólidos, principalmente cloruros, urea, sulfatos,
la densidad normal va de 1.005 - 1.030.
pH: Es el reflejo de la capacidad del riñón para mantener la concentración normal de hidrogeniones.
La tira contiene los indicadores: rojo de metilo, fenolftaleína y azul de bromotimol. El pH normal va de
5.5 - 6.5.
Proteínas: Se pueden encontrar varias clases de proteínas pero la más importante es la albúmina.
Hay proteinurias llamadas fisiológicas asociadas a fiebres, exposición al frío, stress emocional,
ejercicio intenso.
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Procedimiento Operativo Estándar para el análisis de
Orina Simple
POE 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
La presencia de una alta concentración de proteínas puede constituir un importante índice de
enfermedad renal.
Hemoglobina: Es una proteína sanguínea que no se debe encontrar en orinas normales, su presencia
puede ser causada por procesos hemolíticos, agentes tóxicos, accidentes transfusionales,
quemaduras, etc. Fisiológicamente puede presentarse por ejercicio intenso. La presencia de
hemoglobina y proteínas, ambas altas indican que hay un daño glomerular.
Glucosa: En condiciones normales se elimina por la orina cantidades no detectables por los métodos
usuales, cuando el nivel de glucosa sobrepasa el umbral renal (aproximadamente 180 mg/dl en
sangre) se detecta en orina.
Cetonas: Cuando el metabolismo hepático se acelera por carencia de glucósidos, exceso de grasas o
en diabetes, los cuerpos cetónicos aparecen en abundancia en la orina y sangre. La prueba se basa
en la reacción del ácido acetoacético con el nitroprusiato.
La presencia aumentada de cetonas y glucosa se presenta en una acidosis diabética.
Bilirrubina y Urobilinogeno: La detección se basa en la copulación de una sal de diazonio con
bilirrubina para formar un colorante azoico. Incluso los más leves matices rosa ya deben ser
considerados como positivo y con ello como patológico. Si es posible, se corroboran los resultados
con los valores de Bilirrubina directa en sangre.
Nitritos: Algunos agentes patógenos causantes de infecciones de la vía urinaria transforman el nitrato
absorbido con la alimentación en nitrito, que es detectado por una coloración del rosa al rojo en la
zona reactiva. De este modo se realiza una detección indirecta de gérmenes formadores de nitrito en
la orina. Incluso una leve coloración roja indica una bacteriuria significativa. Es importante que la orina
sea recién emitida para que tenga valor diagnóstico.
Examen microscópico
Luego del examen químico:
1) Se centrifuga la orina en el tubo a 2.500 r.p.m. durante 5 minutos.
2) Se decanta el sobrenadante de cada tubo por vaz y se re suspende suavemente para no
dañar los cilindros del sedimento (debe quedar aproximadamente 1 ml en el tubo).
3) Se pipetea 1 gota pequeña (aproximadamente 20 microlitros) del sedimento sobre el
portaobjetos, se coloca el cubreobjeto, evitando la formación de burbujas.
4) Se deja en reposo por un minuto y luego se observa al microscopio.
5) Se estudia el sedimento con aumento de 400x y con luz amortiguada para dar un contraste
adecuado.
La presencia de:
Leucocitos: en números aumentados indican una pielonefritis, también se encuentran en
enfermedades autoinmunes, lesión en vía renal o infecciones cerca del aparato urinario. Se debe
tener en cuenta si la muestra está contaminada principalmente en mujeres.
Hematíes: Indican sangrado a nivel de vías urinarias. Se debe mirar si los hematíes están intactos
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Procedimiento Operativo Estándar para el análisis de
Orina Simple
POE 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
o crenados.
Células epiteliales: Se pueden encontrar algunas células en la orina como consecuencia del
desprendimiento normal de las células envejecidas. Un marcado aumento puede indicar
inflamación del conducto del tracto urinario.
Los cuerpos ovales son células epiteliales redondas llenas de grasa que se observan en nefrosis
debido a perdida de proteínas.
CILINDROS: Se forman en la luz del túbulo renal, cuando las proteínas se precipitan originando
un gel.
Cilindros hialinos: Son incoloros homogéneos y transparentes, se observan en una deshidratación
y enfermedad renal, se pueden observar en condiciones normales.
Cilindros Eritrocitarios: Son cilindros en los que se ven glóbulos rojos, indican lesiones
glomerulares.
Cilindros hemáticos: Se ven menos glóbulos rojos, son cilindros que microscópicamente se
observan de un color rojo. También indican lesión glomerular.
Cilindros epiteliales: Se observan en necrosis tubular.
Cilindros leucocitarios : Se observan en infección renal y procesos inflamatorios de causa no
infecciosa
Cilindros granulosos: Se observan en enfermedad renal significativa, también se observan
después del ejercicio intenso
Cilindros céreos: Se observan en infección renal crónica, hipertensión, nefropatía, inflamación
CRISTALES: No tienen mayor significado clínico, solo en casos de trastornos metabólicos. Se
debe correlacionar su presencia con los hábitos alimenticios. Se forman cuando la orina después
de recogida se deja por mucho tiempo sin analizar, por eso son importantes cuando se observan
en orinas recién emitidas. Se ha visto que existe una correlación genética en su formación.
Cristales de orinas ácidas:
Ácido úrico: Se encuentran en gota, estados febriles y litiasis. Microscópicamente se
ven como un precipitado rosado.
Uratos amorfos: Se observan en estados de sudoración profunda, enfermedades
febriles.
Acido hipúrico: No tienen significado clínico.
Cistina: Se observan en cálculos renales
Tirosina: Aparecen en enfermedades hepáticas graves, formas graves de fiebre tifoidea
y leucemias.
Leucina: En enfermedades hepáticas graves.
Cristales de orinas alcalinas:
Fosfato triple: En cistitis crónica, retención urinaria.
Fosfatos amorfos: En trastornos metabólicos, osteopatía.
Uratos de amonio: Son anormales solo si se encuentran en orinas recién emitidas.
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTi
Procedimiento Operativo Estándar para el análisis de
Orina Simple
POE 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
5.4.2 ESPACIO FÍSICO Y CONDICIONES AMBIENTALES
La determinación se realiza dentro del laboratorio de Urgencias en ambiente climatizado (18 °C – 25
°C).
5.5. CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO
5.5.1 Las muestras para estudio deben estar acompañadas del pedido médico, con firma y sello del
médico tratante.
5.5.2 Se rechazan muestras sin rotular, con doble rotulación y las muestras cuyo pedido médico no
coincida con la rotulación.
5.5.3 Se rechazan muestras cuya orden emanada sea ilegible o incompleta.
5.5.4 Se rechazan muestras con volumen insuficiente
5.6 INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
Determinación Expresión del resultado
Examen físico Aspecto Límpido, ligeramente turbio, turbio, hematúrico, colúrico,
purulento.
Color Amarillo, amarillo claro, amarillo oscuro, rojo, ámbar, pardo, (color) medicamentoso.
Densidad Expresada en números
pH Expresado en números con un decimal
Examen químico Proteínas No detectable, trazas, (+), (++), (+++), (++++); según corresponda
Glucosa No detectable, trazas, (+), (++), (+++), (++++); según corresponda
Urobilinógeno No detectable, (+), (++), (+++); según corresponda
Bilirrubina No detectable, trazas (+), (++), (+++); según corresponda
Cuerpos cetónicos No detectable, trazas (+), (++), (+++), (++++); según corresponda
Nitritos Negativo, Positivo
Sangre en forma de Hb No detectable, trazas, (+), (++), (+++); según corresponda
Examen microscópico Leucocitos Intervalo por campo. Ej: 1-2 por campo
Hematíes Intervalo por campo. Ej: 1-2 por campo
Células epiteliales planas Intervalo por campo. Ej: 1-2 por campo
Células epiteliales redondas Intervalo por campo. Ej: 1-2 por campo
Filamentos mucosos Escasa, moderada o abundante cantidad
Bacterias Escasa, moderada o abundante cantidad
Cilindros hialinos Intervalo por campo. Ej: 1-2 por campo
Cilindros granulosos Intervalo por campo. Ej: 1-2 por campo
Cilindros leucocitarios Intervalo por campo. Ej: 1-2 por campo
Acúmulos leucocitarios Intervalo por campo. Ej: 1-2 por campo
Cristales de oxalato de calcio Escasa, moderada o abundante cantidad
Cristales de ácido úrico Escasa, moderada o abundante cantidad
Cristales de fosfato triple Escasa, moderada o abundante cantidad
Partículas de uratos amorfos Escasa, moderada o abundante cantidad
Partículas de fosfatos amorfos Escasa, moderada o abundante cantidad
Levaduras Escasa, moderada o abundante cantidad
Especificaciones del informe
En caso que:
Que el color de la orina sea debido a medicamentos, se informa: aspecto, color y en las
determinaciones fisicoquímicas se informa: “Interferencia medicamentosa”
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTi
Procedimiento Operativo Estándar para el análisis de
Orina Simple
POE 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
El pedido médico especifique: Búsqueda de hifas, se informa inclusive la ausencia de las
mismas, agregando en el apartado “otros”: “No se observan hifas”.
Se sospeche que la muestra se encuentra contaminada con materia fecal, se agrega la
observación: Probable contaminación con materia fecal, se sugiere remitir nueva muestra.
6 REFERENCIAS
- Ficha técnica de trabajo de las tiras de orina de la marca Mission
- Graff, L. Atlas color. Editorial Médica Panamericana S.A. Buenos Aires, Argentina, 1987
- Página web revistaciencia.com.
Elaborado por: Dra. Myriam García
Revisado por: Dra. Aurelia Torres
Aprobado por: Dra. Milva Ibarrola
Febrero 2019 Febrero 2019 Febrero 2019
Instituto de Previsión Social
Hospital Central
Servicio Laboratorio de UTI
POE TNI-01UTI
Procedimiento Operativo Estándar para
determinación de Troponina I.
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTI
Procedimiento Operativo Estándar para la determinación
de Troponina I
POE TNI 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
HISTORIAL DE MODIFICACIONES
Versión
Nº
Fecha Apartados Pág. Causas de la
modificación
Recalificación necesaria
del personal Si/No
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Procedimiento Operativo Estándar para la determinación
de Troponina I
POE TNI 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
INDICE
1. OBJETIVO
2. ALCANCE
3. RESPONSABLES
4. MATERIALES Y EQUIPOS
5. DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1 FUNDAMENTO
5.2 MUESTRA REQUERIDA
5.3 METODO
5.4 PROCEDIMIENTO
5.5 CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO
5.6 INTERPRETACION, INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
5.7 CALIBRACIONES
5.8 CONTROLES INTERNOS DE CALIDAD
5.9 REFERENCIAS
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTI
Procedimiento Operativo Estándar para la determinación
de Troponina I
POE TNI 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
1. OBJETIVO
Describir los procedimientos para la determinacion de muestras con pedido de Troponina I al
laboratorio de UTI.
2. ALCANCE
A todas las muestras que ingresen al Servicio de Laboratorio de UTI para el procesamiento de
Troponina I.
3. RESPONSABLES
Bioquímicos, Técnicos y personal administrativo asignados por la Jefatura según cronograma de
trabajo.
4. MATERIALES Y EQUIPOS
4.1 Guantes
4.2 Guardapolvo
4.3 Centrifuga
4.4 Gradillas
4.5 Muestra: suero o plasma
5. DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1 FUNDAMENTO
Los valores de Troponina I son utilizados para ayudar al diagnóstico de Infarto de Miocardio
(MI) y en el riesgo de estratificación de pacientes con síndrome coronario agudo (incluyendo angina
inestable y sin elevación ST) con respecto al riesgo relativo de mortalidad, infarto de miocardio o
probabilidad aumentada de eventos isquémicos.
Niveles elevados de Troponina I (con relación a valores establecidos de muestras de
pacientes que no sufren infarto de miocardio) son detectables en suero entre 4 a 6 horas luego del
comienzo del dolor de pecho, alcanza concentraciones pico en aproximadamente 8 a 28 horas y
permanecen elevados entre 3 a 10 días siguientes al Infarto.
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTI
Procedimiento Operativo Estándar para la determinación
de Troponina I
POE TNI 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
5.2 MUESTRA REQUERIDA
Suero sanguíneo, plasma heparinizado o plasma con EDTA.
5.2.1 Cantidad de muestra
El volumen mínimo requerido es de 200 ul.
5.3 MÉTODO
Las muestras con pedido médico de Troponina I son derivadas al laboratorio de Emergencias donde
se procesan por un método de Inmunoensayo de tipo sándwich de tres puntos que utiliza la
tecnología de quimioluminiscencia directa.
5.3.1 Valores de Referencia
Inferior a 0,04 ng/ml
5.4 PROCEDIMIENTO
5.4.1 ACCIONES EN FORMA SECUENCIAL
5.4.1.1 Se recibe el pedido y la muestra en ventanilla del laboratorio de Urgencias corroborando la
correcta identificación y concordancia entre los mismos.
5.4.1.2 En caso de tratarse de un paciente ambulatorio, se procede a la extracción de la muestra.
5.4.1.3 Se ingresa al Sistema Informático del Laboratorio (SIL) y se rotula
5.4.1.4 Se centrifuga
5.4.1.5 El profesional bioquímico encargado de la sección Química del laboratorio de Urgencias, filtra
en el SIL los análisis especiales a derivar cada 1 hora; priorizando el procesamiento de dichas
muestras; tanto química como electrolitos, de manera a liberar lo antes posible el tubo primario, y
derivar íntegramente la muestra con la identificación correspondiente.
5.4.1.6 El transporte de la muestra se realiza con los tubos originales tapados y en contenedor
adecuado, por un encargado designado por el profesional bioquímico, que puede ser un técnico o un
personal administrativo, quedando a criterio del bioquímico la opción de llevar la muestra
personalmente.
5.4.1.7 La muestra va acompañada de la planilla correspondiente del laboratorio de Urgencias, en la
cual figura el nombre del paciente y el número de cedula de identidad policial (CI)
5.4.1.8 En el laboratorio de Emergencias se cargan los datos del paciente mencionados en el punto
anterior; en el SIL; asignándole un código unívoco de modo a no interferir en la codificación del
IPS - Hospital Central Laboratorio de UTI
Procedimiento Operativo Estándar para la determinación
de Troponina I
POE TNI 01UTI Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
Laboratorio de Emergencias. Se pega la etiqueta que contiene el código de barras en la planilla de
Urgencias, junto al código identificador de la Urgencia.
5.4.1.9 El profesional bioquímico encargado de la sección química del laboratorio de Emergencias,
se encarga de realizar el procesamiento de la muestra y validación de los resultados, registrando los
mismos en la planilla de Troponina, donde consta el código, nombre y resultado del paciente.
5.4.1.10 Los pedidos médicos quedan en el laboratorio de Urgencias
5.4.2 VALORES ESPERADOS
El ensayo es lineal entre 0,01 y 50 ng/ml.
5.5. CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO
5.5.1 Las muestras para estudio deben estar acompañadas del pedido médico, con firma y sello del
médico tratante.
5.5.2 Se rechazan muestras sin rotular, con doble rotulación y las muestras cuyo pedido médico no
coincidan con la rotulación.
5.5.3 Se rechazan muestras cuya orden emanada sea ilegible o incompleta.
5.6 INTERPRETACIÓN, INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
5.6.1 INTERPRETACIÓN
Niveles de troponina por encima del rango de referencia constituyen un factor de riesgo
cardiovascular. La troponina es un marcador bioquímico sensible de necrosis del miocardio.
5.6.2 INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
Los resultados son registrados y validados por el profesional bioquímico del Laboratorio de
Emergencias encargado del procesamiento.
En el laboratorio de Urgencias el profesional encargado de la sección química imprime los
resultados ingresando al sistema del laboratorio de emergencias que se encuentra con el
ícono “Emergencias Tropo”
En el archivo de Troponina del paciente, en el SIL del Laboratorio de Urgencias se coloca la
observación: “Procesado en el Laboratorio de Emergencias” se valida y se guarda sin
imprimir.
Elaborado por: Dra. Myriam García
Revisado por: Dra. Aurelia Torres
Aprobado por: Dra. Milva Ibarrola
Febrero 2019 Febrero 2019 Febrero 2019
Instituto de Previsión Social
Hospital Central
Servicio Laboratorio de UTI
POE –UTI-LCR
Procedimiento Operativo Estándar para
análisis de Líquido Cefalorraquídeo
HISTORIAL DE MODIFICACIONES
Versió
n Nº
Fech
a
Apartado
s
Pág. Causas de la
modificación
Recalificación necesaria
del personal Si/No
INDICE
1. OBJETIVO
2. ALCANCE
3. RESPONSABLES
4. MATERIALES Y EQUIPOS
5. DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1. FUNDAMENTO
5.2. MUESTRA REQUERIDA
5.3. METODO
5.3.1 CARACTERISTICAS DE LA TECNICA
5.4 PROCEDIMIENTO
5.4.1 ACCIONES EN FORMA SECUENCIAL
5.4.1.1 PREPARACION
5.4.1.2 EXAMEN MACROSCOPICO
5.4.1.3 EXAMEN MICROSCOPICO
5.4.1.4 EXAMEN BIOQUIMICO
5.4.2 ESPACIO Y CONDICIONES AMBIENTALES
5.5 CRITERIOS DE ACEPTACION Y RECHAZO
5.6 INTERPRETACIÓN, INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
5.6.1 INTERPRETACIÓN
5.6.2 INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
6. REFERENCIAS
LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO (LCR)
1. OBJETIVO
Describir el análisis macroscópico, microscópico y bioquímico de los líquidos
cefalorraquídeos.
2. ALCANCE
A todas las muestras de Líquido Cefalorraquídeo que ingresen al Servicio de Laboratorio
de UTI para su procesamiento.
3. RESPONSABLES
El Jefe de Servicio, Bioquímicos y Técnicos asignados por la Jefatura según cronograma
de trabajo.
4. MATERIALES Y EQUIPOS
4.1 Guantes
4.2 Guardapolvo
4.3 Centrifuga
4.4 Equipo automatizado de química clínica.
4.5 Gradillas
4.6 Tubos de vidrio de hemolisis.
4.7 Reactivos proveídos para la determinación.
4.8 Cámara de Neubauer
4.9 Lámina cubrecámara
4.10 Lámina portaobjetos
4.11 Laminilla cubre objetos
4.12 Pipetas automáticas
4.13 Punteras
5. DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1 FUNDAMENTO
La investigación de LCR en el laboratorio está indicada en casos de sospecha de
infección del SNC, enfermedad desmielinizante, malignidad y hemorragia en el SNC.
Las muestras son remitidas de los servicios de internación donde son extraídas por
profesionales médicos mediante una técnica aséptica.
El examen visual de la muestra es la primera observación, el LCR normal es claro,
incoloro, libre de grumos y de sangre. Las diferencias a partir de estos estándares indican
una patología probable y ameritan examen adicional.
5.2 MUESTRA REQUERIDA
Líquido cefalorraquídeo
5.3 MÉTODO
Análisis cito-químico, consistente en recuento celular total, diferencial y determinaciones
químicas.
PARAMETRO METODO UNIDADES MARCA
GLUCOSA ENZIMATICO mg/dl Wiener
PROTEINAS COLORIMETRICO ROJO DE PIROGAGOL
mg/dl Wiener
LDH CINETICO U/L Wiener
CELULAS RECUENTO EN CAMARA(NEUBAUER)
CEL/mm3
5.4 PROCEDIMIENTO
5.4.1 ACCIONES EN FORMA SECUENCIAL
5.4.1.1 En la mesa de preparación de muestras luego del examen macroscópico; se separa una
parte del LCR en un tubo de vidrio, el cual se centrifuga. El sobrenadante se utiliza para
las determinaciones químicas. El LCR remanente en el frasco se utiliza para el examen
citológico.
El sedimento se utiliza para el predominio celular en caso de ser necesario.
5.4.1.2 Examen macroscópico
Al examinar el tubo de muestra se anotan el aspecto y color; en caso de un líquido
ligeramente turbio y/o xantocrómico, se centrifuga y anota color del sobrenadante.
5.4.1.3 Examen microscópico
Se homogeneiza el LCR por agitación suave del tubo
Se pipetea en una cámara de Neubauer de recuento celular
Se procede al recuento de células de los 4 cuadrantes y luego se calcula el
número de leucocitos y por mm3. de la siguiente manera:
Células por mm3 = Nº de células contadas (Leucocitos o hematíes) x la inversa de
la dilución x 10 (profundidad de la cámara) ÷ el número de cuadrantes
contados.
Cuando el número de leucocitos es superior a 10/ mm3, se informa el predominio
de tipos de leucocitos realizando una tinción con Giemsa en un frotis del LCR
centrifugado y contando 100 células como mínimo; el predominio se informa como
porcentaje de polimorfonucleares y mononuleares.
5.4.1.3.1 Preparación del frotis coloreado, para la diferenciación de leucocitos
Se realiza un extendido del sedimento
● Se dejar secar al aire
● Se fija con alcohol rectificado
● Se deja secar al aire
● Se colorea con colorante Giemsa por 2 minutos y se lava
● Se deja secar y se observa
5.4.1.3.2 Examen en fresco, para la diferenciación de hematíes
● Se homogeneiza la muestra
● Se pipetea una gota (20 ul) del líquido entre lámina y laminilla.
● Se observa al microscopio con aumento de 400 X
5.4.1.3.3 Examen en fresco de Líquidos de aspecto purulento
Debido a la consistencia del líquido, no se realiza recuento celular; se realiza una
apreciación microscópica, informando número de leucocitos y hematíes por campo
Se pipetea una gota de líquido sobre la lámina y se cubre con la laminilla
Se observa al microscopio con aumento de 400x
Se realiza un recuento de leucocitos y hematíes observando como mínimo
10 campos
Se informa cantidad de leucocitos por campo y hematíes por campo
Si el número de elementos es superior a 100 por campo, se informa
Leucocitos: > 100 por campo
Hematíes: > 100 por campo
5.4.1.3.4 Diferenciación de leucocitos en líquidos purulentos
Se realiza un extendido de la muestra, en lámina portaobjetos
Se deja secar
Se fija con alcohol
Se colorea con colorante Giemsa diluido 1:2 por 10 minutos
Se lava con agua corriente
Se colorea con colorante Giemsa puro por un minuto
Se lava con agua corriente
Se deja secar
Se observa al microscopio con aumento de 1000x con aceite de inmersión
Se realiza el recuento diferencial, informando el predominio de
polimorfonucleares o mononucleares en porcentaje.
5.4.1.3.5 En caso de presencia de coágulo
No se realiza el recuento celular
5.4.1.4 Examen bioquímico
Se carga el sobrenadante de la muestra centrifugada rotulada adecuadamente en el
autoanalizador de química.
Ver los procedimientos operativos de la sección química (POE- URG-QCA) referentes a los
parámetros bioquímicos a realizar
● Glucosa: Valor de referencia: 60 – 70% del valor sanguíneo.
● Proteínas en LCR: Se utiliza el reactivo de Proti U/LCR, se informa en mg/dl;
valor de referencia, hasta 45 mg/dl.
● LDH: El valor clínico de su determinación reside en la diferenciación entre
meningitis bacteriana (niveles de LDH aumentados en 90% de los casos) y
vírica. Niveles de LDH aumentados en una meningitis comportan un mal
pronóstico para la enfermedad
● CLORUROS: Ver los procedimientos operativos de electrolitos .
El intervalos de referenca igual que los valores en sangre.
5.4.2 ESPACIO FÍSICO Y CONDICIONES AMBIENTALES
La determinación se realiza en ambiente climatizado (18 °C – 25 °C).
5.5. CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO
5.5.1 Las muestras para estudio están acompañadas del pedido médico, con firma y sello del
médico tratante.
5.5.2 Se rechazan muestras sin rotular, con doble rotulación y cuyo pedido médico no coincida
con la rotulación.
5.5.3 Se rechazan muestras cuya orden emanada sea ilegible o incompleta.
5.5.4 Los pedidos que no tengan especificada la naturaleza del líquido biológico.
5.6 INTERPRETACIÓN, INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
5.6.1 INTERPRETACIÓN
Caracteres LCR normal Meningitis purulenta Meningitis viral
Aspecto Límpido, cristal de roca Turbio, purulento Claro o ligeramente
turbio
Citología 1 – 3 células/mm3
1000 – 2000
células/mm3
100 -300
células/mm3
Fórmula No se realiza Predominio de PMN
(POLIMORFO
NUCLEARES)
Predominio de MN
(MONONUCLE
ARES)
Glucosa 60-70% del valor
sanguíneo
Disminuida Normal (virus)
Disminuida (bacterias)
Proteínas 20 -45 mg/dl. 10 -50 mg/dl 10 -20 mg/dl.
L.D.H 10% de su valor en
suero
Muy aumentado Normal a ligeramente
aumentado
CLORURO Cloruro: igual que en suero Normales a disminuidos Igual que en suero
5.6.2 INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
.Los resultados se registran en el SIL, luego son validados, impresos y firmados por el
profesional responsable del procesamiento.
Resultados que se informan:
EXAMEN MACROSCÓPICO
● Aspecto: límpido cristalino, ligeramente turbio, turbio, lechoso, xantocrómico,
hemolisado o hemorrágico, sanguinolento o hemático (punción traumática)
● Color: incoloro, xantocrómico, hemolisado o sanguinolento
● Color del sobrenadante: en caso de líquidos turbios presencia o ausencia de botón
celular o hemático
● Coagulación: Presente o ausente.
EXAMEN MICROSCOPICO
● Leucocitos: número /mm3. % de mononucleares y polimorfonucleares (si el recuento
es mayor a 10/mm3)
En caso que haya presencia de coágulo, se informa: Recuento celular no se realiza
por encontrarse coagulación presente.
● Hematíes: número /mm3. % de frescos y crenados (si el recuento es mayor a
10/mm3)
BIOQUÍMICA
● Glucosa: valor en mg/dL
● Proteínas: valor en mg/dL.
● LDH: valor en U/L
● CLORUROS: mmol/l
6. REFERENCIAS Y BIBLIOGRAFIA
- Material proveído en el Curso sobre “Líquidos de Punción” organizado por la Facultad de
Ciencias Químicas de la Universidad Nacional de Asunción.
- STRASINGER, Susan King, DI LORENZO, Marjorie Schaub. Análisis de orina y de los líquidos
corporales. Buenos Aires: Editorial Médica Panamericana, 5º Edición, 2010.
- BISHOP, Michael L. Química Clínica, Principios, procedimientos y correlaciones. México:
Editorial Mc Graw-Hill Interamericana Editores, 5º Edición, 2007.
Elaborado por: Dra. Myriam García
Revisado por: Dra. Aurelia Torres
Aprobado por: Dra. Milva Ibarrola
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Hospital Central
Servicio Laboratorio de UTI
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Procedimiento Operativo Estándar para
análisis de Líquido Ascítico
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Procedimiento Operativo Estándar para el análisis de
LÍQUIDO ASCÍTICO
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HISTORIAL DE MODIFICACIONES
Versión
Nº
Fecha Apartados Pág. Causas de la
modificación
Recalificación necesaria
del personal Si/No
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INDICE
1. OBJETIVO
2. ALCANCE
3. RESPONSABLES
4. MATERIALES Y EQUIPOS
5. DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1 FUNDAMENTO
5.2 MUESTRA REQUERIDA
5.3 MÉTODO
5.4 PROCEDIMIENTO
5.4.1 ACCIONES EN FORMA SECUENCIAL
5.4.2 ESPACIO FÍSICO Y CONDICIONES
AMBIENTALES
5.5 CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO
5.6 INTERPRETACIÓN, INFORME Y ARCHIVO
DE RESULTADOS
5.6.1 INTERPRETACIÓN
5.6.2 INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
6. REFERENCIAS Y BIBLIOGRAFIA
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LIQUIDO ASCÍTICO
1. OBJETIVO
Describir el análisis macroscópico, microscópico y bioquímico de los líquidos ascíticos.
2. ALCANCE
A todas las muestras de Líquido ascítico que ingresen al Servicio de Laboratorio de UTI
para su procesamiento.
3. RESPONSABLES
El Jefe de Servicio, Bioquímicos y Técnicos asignados por la Jefatura según cronograma de
trabajo.
4. MATERIALES Y EQUIPOS
4.1 Guantes
4.2 Guardapolvo
4.3 Centrifuga
4.4 Equipo automatizado
4.5 Gradillas
4.6 Muestra: Líquido ascítico
4.7 Reactivos proveídos para la determinación.
4.8 Cámara de Neubauer
4.9 Lámina portaobjetos
4.10 Lámina cubrecámara
4.11 Pipetas automáticas
4.12 Punteras
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5. DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1 FUNDAMENTO
La acumulación de líquido entre las membranas peritoneales se denomina ascitis, y
el líquido suele denominarse líquido ascítico en lugar de líquido peritoneal.
Una de las causas más frecuentes de derrames trasudativos es la cirrosis. Las
infecciones bacterianas (peritonitis) a menudo como resultado de perforación intestinal o
rotura del apéndice y los procesos malignos son las causas más frecuentes de líquidos
exudativos.
5.2 MUESTRA REQUERIDA
Líquido ascítico
5.3 MÉTODO
Análisis citoquímico, consistente en recuento celular total; diferencial y determinaciones
químicas.
5.4 PROCEDIMIENTO
5.4.1 ACCIONES EN FORMA SECUENCIAL
5.4.1.1 Examen macroscópico: Al examinar el tubo de muestra se anotan el aspecto y
color; en caso de un líquido ligeramente turbio, se centrifuga y anota color del
sobrenadante:
5.4.1.2 Examen microscópico:
Se homogeniza el líquido por agitación suave del frasco
Se pipetea el líquido peritoneal en una cámara de Neubauer de recuento celular
Se procede al recuento de células de los 4 cuadrantes y luego se el número de
leucocitos y hematíes por mm3. de la siguiente manera:
Células por mm3 = Nº de células contadas x inversa de la dilución x profundidad
de la cámara(10) ÷ el número de cuadrantes contados.
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Cuando el número de leucocitos es superior a 10 por mm3, se informa el
predominio de tipos de leucocitos realizando una tinción con Giemsa en un frotis
de sedimento del líquido centrifugado y contando 100 células como mínimo.El
predominio se informa como porcentaje.
5.4.1.2.1 Preparación del frotis coloreado:
Se realiza un extendido del sedimento
Se deja secar al aire
Se fija con alcohol rectificado
Se deja secar al aire
Se colorea con colorante Giemsa por 2 minutos y lava con
agua
Se deja secar y se observa al microscopio con aumento de
1000x
5.4.1.3 Examen bioquímico: El sobrenadante de la muestra centrifugada, correctamente
etiquetada, se procesa en el autoanalizador de química.
Ver los procedimientos operativos relativos a los parámetros bioquímicos a realizar, en la
sección química
Glucosa: Valor en mg/dL. Valores de referencia iguales al suero.
Proteínas totales: Valor en g/dL. Sirve para diferenciar exudado de trasudado.
Valor de referencia: Hasta 2 g/dl
LDH: Valor en U/L.Valor de referencia: < 200 U/L.
Fosfatasa alcalina: Valor en U/L. Solo si especifica el pedido médico.
Urea y creatinina: Valores en mg/dL. Solo si especifica el pedido médico.
Amilasa: Valor en U/L. Solo si especifica el pedido médico.
Lipasa: Valor en U/L. Solo si especifica el pedido médico.
Albumina: Valor en g/dL. Siempre
5.4.2 ESPACIO FÍSICO Y CONDICIONES AMBIENTALES
La determinación se realiza en ambiente climatizado (18 °C – 25 °C).
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5.5. CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO
5.5.1 Las muestras para estudio deberán estar acompañadas del pedido médico, con firma
y sello del médico tratante.
5.5.2 Se rechazarán muestras sin rotular, con doble rotulación y las muestras cuyo pedido
médico no coincidan con la rotulación.
5.5.3 Se rechazarán muestras cuya orden emanada sea ilegible o incompleta.
5.5.4 Los pedidos que no tengan especificada la naturaleza del líquido biológico
5.6 INTERPRETACIÓN, INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
5.6.1 INTERPRETACIÓN
El líquido peritoneal normal es claro y amarillo pálido.
Los exudados son turbios en las infecciones bacterianas o micóticas
Se observan líquidos con filamentos de sangre después de traumatismos y en casos
de tuberculosis, trastornos intestinales y procesos malignos.
El material quiloso o seudoquiloso puede estar presente en traumatismos o bloqueo
de los vasos linfáticos
En caso de presencia de coagulación, se informa coagulación presente, se procesa
e informa la parte bioquímica y en la parte de citología se informa la siguiente
observación: No se realiza por encontrarse coagulación presente.
Los recuentos de leucocitos normales son menores a 350 células/ul y aumentan en
la peritonitis bacteriana y la cirrosis. Para diferenciar entre estas dos enfermedades
debe realizarse el recuento absoluto de neutrófilos; un recuento mayor a 250
células/ul o mayor del 50% del recuento de leucocitos totales indica infección.
La glucosa disminuye por debajo de los niveles séricos en las peritonitis bacteriana y
tuberculosa y en los procesos malignos.
La amilasa se determina en el líquido ascítico, confirma casos de pancreatitis y
puede estar elevada en pacientes con perforaciones gastrointestinales
La fosfatasa alcalina elevada es diagnóstica de perforación intestinal
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Las mediciones de urea en sangre y de creatinina en el líquido se solicitan cuando
preocupa la rotura o la perforación accidental de la vejiga durante el procedimiento
de paracentesis.
La concentración de proteínas en líquido ascítico y en el suero mediante el análisis de las pruebas de proteína total, albúmina en ascitis y gradiente de albúmina son parte de los estudios rutinarios iniciales para el diagnóstico diferencial de ascitis en exudado y trasudado.
• La prueba de albúmina en ascitis, como nueva prueba discriminativa de trasudado y exudado es comparable a la proteína total en ascitis y a la gradiente de albúmina y pueden ser utilizadas indistintamente en la práctica clínica por tener valores de especificidad y sensibilidad comparables.
Valores de LDH > 2000 U/l se observan en casos de peritonitis, líquidos
hemorrágicos. Valores bajos permiten descartar carcinomatosis peritoneal o
derrames no purulentos. Tambien está descendido en la cirrosis y en la insuficiencia
cardiaca.
5.6.2 INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
. Resultados que se informan:
EXAMEN MACROSCÓPICO
Aspecto: Límpido, ligeramente turbio, turbio.
Color: Amarillo, verde, castaño u otro según corresponda.
Color del sobrenadante: Según corresponda especificando si es con o sin
botón hemático.
Coagulación: Presente o ausente. En el caso que se encuentre coágulo
presente, no se realiza el recuento celular
EXAMEN MICROSCOPICO
Leucocitos: número /mm3. % de mononucleares y polimorfonucleares (si el
recuento es superior a 10 células/ul.)
Hematíes: número /mm3. % de frescos y crenados (si el recuento es superior
a 10 células/ul.)
BIOQUÍMICA
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Glucosa: Valor en mg/dl
Proteínas: Valor en g/dl.
LDH: Valor en UI/L
Albumina: Valor en g/dl.
6. REFERENCIAS Y BIBLIOGRAFIA
- Material proveído en el Curso sobre “Líquidos de Punción” organizado por la Facultad de
Ciencias Químicas de la Universidad Nacional de Asunción.
- STRASINGER, Susan King, DI LORENZO, Marjorie Schaub. Análisis de orina y de los
líquidos corporales. Buenos Aires: Editorial Médica Panamericana, 5º Edición, 2010.
-BISHOP, Michael L. Química Clínica, Principios, procedimientos y correlaciones. México:
Editorial Mc Graw-Hill Interamericana Editores, 5º Edición, 2007.
Elaborado por: Dra. Myriam García
Revisado por: Dra. Aurelia Torres
Aprobado por: Dra. Milva Ibarrola
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análisis de Líquido Pleural
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HISTORIAL DE MODIFICACIONES
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Nº
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modificación
Recalificación necesaria
del personal Si/No
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INDICE
1. OBJETIVO
2. ALCANCE
3. RESPONSABLES
4. MATERIALES Y EQUIPOS
5. DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1 FUNDAMENTO
5.2 MUESTRA REQUERIDA
5.3 MÉTODO
5.4 PROCEDIMIENTO
5.4.1 ACCIONES EN FORMA SECUENCIAL
5.4.2 ESPACIO FÍSICO Y CONDICIONES
AMBIENTALES
5.5 CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO
5.6 INTERPRETACIÓN, INFORME Y ARCHIVO
DE RESULTADOS
5.6.1 INTERPRETACIÓN
5.6.2 INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
6. REFERENCIAS Y BIBLIOGRAFIA
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LÍQUIDO PLEURAL
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LIQUIDO PLEURAL
1. OBJETIVO
Describir el análisis macroscópico, microscópico y bioquímico de los líquidos pleurales
2. ALCANCE
A todas las muestras de Líquido pleural que ingresen al Servicio de Laboratorio de UTI para
su procesamiento.
3. RESPONSABLES
El Jefe de Servicio, Bioquímicos y Técnicos asignados por la Jefatura según cronograma de
trabajo.
4. MATERIALES Y EQUIPOS
4.1 Guantes
4.2 Guardapolvo
4.3 Centrifuga
4.4 Equipo automatizado
4.5 Gradillas
4.6 Muestra: Líquido ascítico
4.7 Reactivos proveídos para la determinación.
4.8 Cámara de Neubauer
4.9 Lámina portaobjetos
4.10 Lámina cubrecámara
4.11 Pipetas automáticas
4.12 Punteras
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5. DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1 FUNDAMENTO
Los derrames pleurales pueden ser de origen trasudativo o exudativo. El análisis
citoquímico ayuda a establecer el diagnóstico diferencial entre exudado y trasudado.
5.2 MUESTRA REQUERIDA
Líquido pleural
5.3 MÉTODO
Análisis citoquímico, consistente en recuento celular total; diferencial y determinaciones
químicas.
5.4 PROCEDIMIENTO
5.4.1 ACCIONES EN FORMA SECUENCIAL
5.4.1.1 Examen macroscópico:
Al examinar el tubo de muestra se anotan el aspecto y color; se centrifuga y
anota color del sobrenadante:
5.4.1.2 Examen microscópico:
Se homogeniza el líquido por agitación suave del frasco
Se pipetea el líquido pleural en una cámara de Neubauer de recuento celular
Se realiza el recuento de células de los 4 cuadrantes y luego se calcula el
número de leucocitos y hematíes por mm3. de la siguiente manera:
Células por mm3 = Nº de células contadas x inversa de la dilución x profundidad
de la cámara(10) ÷ el número de cuadrantes contados.
Cuando el número de leucocitos es superior a 10 por mm3, se informa el
predominio de tipos de leucocitos realizando una tinción con Giemsa en un frotis
del sedimento del líquido centrifugado y contando 100 células como mínimo.El
predominio se informa como porcentaje.
5.4.1.2.1 Preparación del frotis coloreado:
Se realiza un extendido del sedimento
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LÍQUIDO PLEURAL
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Se deja secar al aire
Se fija con alcohol rectificado
Se deja secar al aire
Se colorea con colorante Giemsa por 2 minutos y se lava con
agua
Se deja secar y se observa al microscopio con aumento de
1000x
5.4.1.3 Examen bioquímico: El sobrenadante de la muestra centrifugada, correctamente
etiquetada, se procesa en el autoanalizador de química.
Ver los procedimientos operativos relativos a los parámetros bioquímicos a realizar en los
procedimientos de la sección Química
Glucosa: Valor en mg/dL. Valores de referencia iguales al suero.
Proteínas totales: Valor en g/dL. Sirve para diferenciar exudado de trasudado.
Valor de referencia: Hasta 2 g/dl
Colesterol: Valor en mg/dL. Valor de referencia: < 60 mg/dl.
LDH: Valor en U/L. Valor de referencia: < 200 U/l.
5.4.2 ESPACIO FÍSICO Y CONDICIONES AMBIENTALES
La determinación se realiza en ambiente climatizado (18 °C – 25 °C).
5.5. CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO
5.5.1 Las muestras para estudio deberán estar acompañadas del pedido médico, con firma
y sello del médico tratante.
5.5.2 Se rechazarán muestras sin rotular, con doble rotulación y las muestras cuyo pedido
médico no coincidan con la rotulación.
5.5.3 Se rechazarán muestras cuya orden emanada sea ilegible o incompleta.
5.5.4 Los pedidos que no tengan especificada la naturaleza del líquido biológico
5.6 INTERPRETACIÓN, INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
5.6.1 INTERPRETACIÓN
DIFERENCIAS ENTRE EXUDADOS Y TRASUDADOS
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TRASUDADOS EXUDADOS
PROTEINAS Menos de 3 g/dl Más de 3 g/dl
COAGULACIÓN No coagula Frecuente
CÉLULAS Predominio Células Predominio de
Endoteliales( MN) PMN o Linfocitos.
Interpretación del examen macrocópico
El líquido pleural normal es claro y amarillo pálido.
La turbidez suele relacionarse con la presencia de leucocitos e indica infección bacteriana,
tuberculosis o un trastorno inmunitario, como la artritis reumatoide.
La presencia de sangre en el líquido pleural puede significar hemotorax (lesión traumática),
daño de la membrana, como sucede en un proceso maligno, o aspiración traumática.
5.6.2 INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
Resultados que se informan:
EXAMEN MACROSCÓPICO
Aspecto: Límpido, ligeramente turbio, turbio.
Color: Amarillo claro, amarillo, rosado, verdoso, amarillo verdoso, blanquecino o
según corresponda
Color del sobrenadante: Según corresponda, se informa con o sin botón hemático
Coagulación: Presente o ausente. En caso que exista coagulación presente, no se
realiza el recuento celular y se agrega en observación: “Recuento celular no se
realiza por encontrarse coagulación presente”
EXAMEN MICROSCOPICO
Leucocitos: número /mm3. % de mononucleares y polimorfonucleares (si el recuento
es superior a 10 células/ul.)
Hematíes: número /mm3. % de frescos y crenados (si el recuento es superior a 10
células/ul.)
BIOQUÍMICA
Glucosa: Valor en mg/dl
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Proteínas: Valor en g/dl.
LDH: Valor en U/l.
Colesterol: Valor en mg/dl, solo si especifica el pedido médico.
Triglicéridos: Valor en mg/dl, solo si especifica el pedido médico.
6. REFERENCIAS Y BIBLIOGRAFIA
- Material proveído en el Curso sobre “Líquidos de Punción” organizado por la Facultad de
Ciencias Químicas de la Universidad Nacional de Asunción.
- STRASINGER, Susan King, DI LORENZO, Marjorie Schaub. Análisis de orina y de los
líquidos corporales. Buenos Aires: Editorial Médica Panamericana, 5º Edición, 2010.
-BISHOP, Michael L. Química Clínica, Principios, procedimientos y correlaciones. México:
Editorial Mc Graw-Hill Interamericana Editores, 5º Edición, 2007.
Elaborado por: Dra. Myriam García
Revisado por: Dra. Aurelia Torres
Aprobado por: Dra. Milva Ibarrola
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Procedimiento Operativo Estándar para
análisis de Líquido Sinovial
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Procedimiento Operativo Estándar para el análisis de
LÍQUIDO SINOVIAL
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HISTORIAL DE MODIFICACIONES
Versión
Nº
Fecha Apartados Pág. Causas de la
modificación
Recalificación necesaria
del personal Si/No
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Procedimiento Operativo Estándar para el análisis de
LÍQUIDO SINOVIAL
POE UTI -LSIN
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INDICE
1. OBJETIVO
2. ALCANCE
3. RESPONSABLES
4. MATERIALES Y EQUIPOS
5. DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1 FUNDAMENTO
5.2 MUESTRA REQUERIDA
5.3 METODO
5.4 PROCEDIMIENTO
5.5 CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO
5.6 INTERPRETACIÓN, INFORME Y ARCHIVO
DE RESULTADOS
6. REFERENCIAS
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Procedimiento Operativo Estándar para el análisis de
LÍQUIDO SINOVIAL
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LIQUIDO SINOVIAL
1. OBJETIVO
Describir el análisis macroscópico, microscópico y bioquímico de los líquidos sinoviales.
2. ALCANCE
A todas las muestras de Líquido sinovial que ingresen al Servicio de Laboratorio de UTI
para su procesamiento.
3. RESPONSABLES
El Jefe de Servicio, Bioquímicos y Técnicos asignados por la Jefatura según cronograma de
trabajo.
4. MATERIALES Y EQUIPOS
4.1 Guantes
4.2 Guardapolvo
4.3 Centrifuga
4.4 Equipo automatizado
4.5 Gradillas
4.6 Muestra: Líquido sinovial
4.7 Reactivos proveídos para la determinación.
4.8 Cámara de Neubauer
4.9 Lámina portaobjetos
4.10 Lámina cubrecámara
4.11 Pipetas automáticas
4.12 Punteras
5. DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
5.1 FUNDAMENTO
El líquido sinovial o líquido articular es un ultrafiltrado del plasma sanguíneo al cual
se le agregan el ácido hialurónico y glucosamina, sintetizados por los sinoviocitos, que son
células sinoviales de revestimiento.
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LÍQUIDO SINOVIAL
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El daño a las membranas articulares produce dolor y rigidez de las articulaciones, en
conjunto conocido como artritis. Los resultados de laboratorio en el análisis del líquido
sinovial pueden usarse para determinar la patogenia de la artritis.
Varias situaciones como infección, inflamación, trastornos metabólicos, tensión física
y edad avanzada, se asocian con la artritis.
Los trastornos articulares se pueden clasificar según su importancia patológica en:
1. No inflamatorio: Trastornos articulares degenerativos, artrosis.
2. Inflamatorio: Trastornos inmunitarios, artritis reumatoidea, lupus eritematoso,
esclerodermia, polimiositis, espondilitis anquilosante, fiebre reumática y artritis de Lyme
3. Séptico: Infección bacteriana
4. Hemorrágico: Lesión traumática, tumores, hemofilia, otros trastornos de la coagulación.
5.2 MUESTRA REQUERIDA
Líquido sinovial
5.3 MÉTODO
Análisis citoquímico, consistente en recuento celular total; diferencial y determinaciones
químicas.
5.4 PROCEDIMIENTO
Recogida de muestra: La muestra remitida al laboratorio se obtiene por artrocentesis,
practicada por un profesional médico. En todos los casos la muestra debe ser recogida
sobre heparina de sodio, para evitar la coagulación.
5.4.1 ACCIONES EN FORMA SECUENCIAL
5.4.1.1 Examen macroscópico: Al examinar el tubo de muestra se anotan el aspecto y
color:
En condiciones normales es incoloro o amarillo pálido. El vocablo sinovial proviene
del vocablo latino que significa huevo. El líquido sinovial viscoso normal se asemeja
a la clara del huevo.
El color se torna amarillo más oscuro en presencia de derrames no inflamatorios e
inflamatorios y puede adquirir un tinte verdoso en la infección bacteriana.
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La presencia de sangre puede sugerir una artritis hemorrágica que debe distinguirse
de la sangre por punción traumática.
La turbidez suele asociarse con la presencia de leucocitos; sin embargo, los detritos
de las células sinoviales y la fibrina también producen turbidez. El líquido puede
parecer lechoso en presencia de cristales.
Prueba de viscosidad: Se puede determinar por intermedio de la filancia, dejando
caer una gota de líquido desde la punta de una pipeta o una aguja unida a una
jeringa. Un filamento que mide de 4 a 6 cm. se considera normal. En casos de
líquido inflamatorios se va acortando el filamento de acuerdo al grado de inflamación
pudiendo gotear como el agua en casos extremos. Se informa: viscosidad alta-baja-
muy baja
5.4.1.2 Examen microscópico:
Se homogeneiza el líquido por inversión del frasco
Se pipetea el líquido en una cámara de Neubauer de recuento celular
Se realiza al recuento de células de los 4 cuadrantes y luego calcular el número
de leucocitos y hematíes por mm3. de la siguiente manera:
Células por mm3 = Nº de células contadas x inversa de la dilución x profundidad
de la cámara (10) ÷ el número de cuadrantes contados.
Cuando el número de leucocitos es superior a 10 por mm3, se informa el
predominio de tipo de leucocitos realizando una tinción con Giemsa en un frotis
del líquido centrifugado y contando 100 células como mínimo, el predominio se
informa como porcentaje.
5.4.1.2.1 Preparación del frotis coloreado:
Se realiza un extendido del sedimento
Se deja secar al aire
Se fija con alcohol rectificado
Se deja secar al aire
Se colorea con colorante Giemsa por 2 minutos y se lava con
agua
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LÍQUIDO SINOVIAL
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Versión 001 Vigencia desde: Febrero/2019
Se deja secar y se observa al microscopio con aumento de
1000x
• En líquidos claros el recuento se realiza sin diluir, pero cuando los líquidos son
turbios o sanguinolentos es necesario diluir la muestra. Se debe utilizar solución
fisiológica para la dilución ya que el diluyente habitual para glóbulos blancos
contiene ácido acético que produce formación de coágulos de mucina con el líquido
sinovial.
• En el laboratorio de Urgencias no se realiza identificación de cristales en líquido
sinovial, pero se informa la presencia de cristales ese si fuere el caso.
5.4.1.3 Examen bioquímico: El sobrenadante de la muestra centrifugada, correctamente
etiquetada, se procesa en el autoanalizador de química
Ver los procedimientos operativos relativos a los parámetros bioquímicos a realizar
Glucosa: Ver POE Química, apartado Glucosa. Valores de referencia similares al
suero. Deben obtenerse muestras simultáneas en sangre y líquido sinovial. La
muestra en líquido sinovial no debería ser más de 10 mg/dl más baja que el valor
en sangre.
Proteínas totales: Ver POE Química, apartado Proteínas totales. Valor de
referencia: Hasta 3 g/dl
Ácido úrico: Solo si especifica el pedido médico. Ver POE Química, apartado
ácido úrico. Su elevación puede confirmar el diagnóstico de gota.
5.4.2 ESPACIO FÍSICO Y CONDICIONES AMBIENTALES
La determinación se realiza en ambiente climatizado (18 °C – 25 °C).
5.5. CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO
5.5.1 Las muestras para estudio deberán estar acompañadas del pedido médico, con firma
y sello del médico tratante.
5.5.2 Se rechazarán muestras sin rotular, con doble rotulación y las muestras cuyo pedido
médico no coincidan con la rotulación.
5.5.3 Se rechazarán muestras cuya orden emanada sea ilegible o incompleta.
5.5.4 Los pedidos que no tengan especificada la naturaleza del líquido biológico
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Procedimiento Operativo Estándar para el análisis de
LÍQUIDO SINOVIAL
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5.6 INTERPRETACIÓN, INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
5.6.1 INTERPRETACIÓN
En un líquido sinovial normal se encuentran los siguientes resultados:
Color: Incoloro a amarillo pálido
Claridad: Claro
Viscosidad: Capaz de formar un filamento de 4-6 cm de largo
Recuento de leucocitos: < 200/ul
Neutrófilos: < 25% del diferencial
Diferencia con la glucosa plasmática: < 10 mg/dl menor que la glicemia
Proteínas totales: < 3g/dl.
Hallazgos de laboratorio en los trastornos articulares
Hallazgos de lab
Clasificación
Color y aspecto
Viscosidad
Leucocitos/ul
Neutrófilos
Glucosa
No inflamatorio
Claro
Amarillo
Buena
< 1000
< 30%
Normal
Similar a la glicemia
Inflamatorio de origen inmunitario
Turbio
Amarillo
Escasa
2000-75000
>50%
Disminuida
Inflamatorio inducido por cristales
Turbio o lechoso
Baja
Hasta 100.000
< 70%
Disminuida
Séptico
Turbio
Amarillo verdoso
Variable
50.000-100.000
> 75%
Disminuida
Hemorrágico
Turbio, rojo
Baja
Iguales a sangre
Iguales a sangre
Normal
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5.6.2 INFORME Y ARCHIVO DE RESULTADOS
Resultados que se informan:
EXAMEN MACROSCÓPICO
Aspecto: Límpido, ligeramente turbio, turbio, lechoso
Color: Amarillo, rojo, verdoso
Coagulación: Presente o ausente. En el caso de encontrarse coagulación presente, se
informa el examen macroscópico y químico con la siguiente observación: Citología no
se realiza por encontrarse coágulo presente.
Viscosidad: alta, baja o muy baja
EXAMEN MICROSCOPICO
Leucocitos: Valor por mm3. Predominio en porcentaje de mononucleares y
polimorfonucleares
Hematíes: Valor por mm3.Predominio en porcentaje de hematíes frescos y crenados.
BIOQUÍMICA
Glucosa: Valor en mg/dl
Proteínas: Valor en g/dl.
Ac. Urico: Valor en mg/dl
6. REFERENCIAS Y BIBLIOGRAFIA
- Material proveído en el Curso sobre “Líquidos de Punción” organizado por la Facultad de
Ciencias Químicas de la Universidad Nacional de Asunción.
- STRASINGER, Susan King, DI LORENZO, Marjorie Schaub. Análisis de orina y de los
líquidos corporales. Buenos Aires: Editorial Médica Panamericana, 5º Edición, 2010.
-BISHOP, Michael L. Química Clínica, Principios, procedimientos y correlaciones. México:
Editorial Mc Graw-Hill Interamericana Editores, 5º Edición, 2007.
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