View
13
Download
0
Category
Preview:
Citation preview
i
IDENTIFIKASI TELUR CACING Hookworm, Toxocara vitulorum DAN Taenia saginata PADA FESES PETERNAK SAPI DAN
FESES SAPI DI PETERNAKAN SAPI DUSUN KARANGNONGKO, BOYOLALI
KARYA TULIS ILMIAH
Untuk memenuhi sebagian persyaratan sebagai
Ahli Madya Analis Kesehatan
Oleh :
Frederica Uliviani Sihombing
33152907J
PROGRAM STUDI D-III ANALIS KESEHATAN
FAKULTAS ILMU KESEHATAN
UNIVERSITAS SETIA BUDI
SURAKARTA
2018
iv
PERSEMBAHAN
Karya Tulis Ilmiah ini saya persembahkan untuk :
1. Tuhan Yesus Kristus atas berkat dan kasih-Nya yang telah memberikan
kepada saya kekuatan dan kelancaran dalam penyelesaian Karya Tulis
Ilmiah
2. Mama dan Bapa yang senantiasa memberikan motivasi berupa semangat
dan doa untuk anaknya ini
3. Kak Zylen, Adik-adikku Castro dan Gerva yang memberikan dukungan
supaya saya cepat wisuda
4. Ryan Rahadi yang telah menemani saya dalam suka dan duka,
mendukung dalam keadaan buruk saya dan membantu saya dari awal
pemilihan judul Karya Tulis Ilmiah ini sampai selesai
5. Keluarga besar yang memberikan arahan dan doa
6. Endah Restiana yang senantiasa memberikan masukan dan membantu
penelitain saya
7. Noxious (Eka, Cepe, Bokir, Gita) yang selalu memberikan semangat dan
untuk Eka terima kasih telah menemani saya ke Perpus UI sampai malam
walaupun besok ada mat-kul
8. Kesya dan Destia yang telah memberikan doa dan semangat
9. Iton dan Cindy yang selalu datang kerumah setiap saya pulang ke Jakarta
dan memberikan masukan-masukan yang kadang tidak membantu
10. Teman-temanku dari Teori 3 dan Praktek JD yang selama 3 tahun ini
berjuang bersama untuk mendapatkan gelar Amd. AK bersama
v
KATA PENGANTAR
Puji Syukur penulis panjatkan kehadirat Tuhan Yang Maha Kuasa atas
rahmat dan karunia-Nya penulis dapat menyelesaikan Karya Tulis Ilmiah yang
berjudul “Identifikasi Telur Cacing Hookworm, Toxocara vitulorum dan Taenia
saginata Pada Feses Peternak Sapi dan Feses Sapi di Peternakan Sapi Dusun
Karangnongko, Boyolali”. Karya Tulis Ilmiah ini disusun guna menyelesaikan
program pendidikan Diploma III Analis Kesehatan di Universitas Setia Budi
Surakarta.
Karya Tulis Ilmiah ini disusun berdasarkan tinjauan pustaka dan
pemeriksaan di laboratorium yang sangat berperan dalam menunjang penulisan
Karya Tulis Ilmiah. Penulis sadar bahwa penyusunan Karya Tulis Ilmiah ini tidak
terlepas dari bimbingan, semangat, serta dukungan dari banyak pihak, baik
bersifat formil maupun materil. Maka pada kesempatan kali ini penulis
mengucapkan terima kasih kepada:
1. Dr. Ir. Djono Tarigan, M.BA selaku Rektor Universitas Setia Budi Surakarta
2. Prof. dr. Marsetyawan HNE Soesatyo, M.Sc., PH. D selaku Dekan Fakultas
Ilmu Kesehatan Universitas Setia Budi Surakarta
3. Dra. Nur Hidayati, M.Pd selaku Kaprodi Diploma III Analis Kesehatan
Universitas Setia Budi Surakarta yang senantiasa memberikan
pengarahan tentang Karya Tulis Ilmiah
4. Tri Mulyowati, SKM., M.Sc selaku pembimbing yang telah selalu sabar
dalam membimbing dan memberikan saran yang bersifat membangun
dalam penyusunan Karya Tulis Ilmiah
vi
5. Para Laboran di Laboratorium 8 yang telah bersedia membantu dalam
penelitian yang dilakukan penulis
6. Dosen dan seluruh staff di Program Studi Diploma III Analis Kesehatan
Universitas Setia Budi Surakarta yang telah membantu penulis
menyelesaikan Karya Tulis Ilmiah ini
7. Kedua orang tua (S. Sihombing dan S. Silalahi) yang selalu memberi
motivasi dan nasihat mendidik guna menyelesaikan Karya Tulis Ilmiah
8. Teman-teman yang selalu memberikan semangat
9. Semua pihak yang terlibat dalam penyelesaian Karya Tulis Ilmiah ini, yang
tidak dapat penulis sebutkan satu per satu.
Dalam penyusunan Karya Tulis Ilmiah ini penulis telah menyusun sebaik-
baiknya, tetapi penulis menyadari bahwa masih banyak kekurangan dalam
penyusunan Karya Tulis Ilmiah ini, untuk itu penulis mengharapkan kritik dan saran
yang bersifat membangun. Penulis berharap Karya Tulis Ilmiah ini dapat
bermanfaat bagi pembaca, serta memberi pengetahuan bagi perkembangan ilmu
pengetahuan dan penelitian-penelitian selanjutnya.
Surakarta, Mei 2018
Penulis
vii
DAFTAR ISI
LEMBAR PERSETUJUAN ................................................................................... ii
LEMBAR PENGESAHAN .................................................................................... iii
PERSEMBAHAN .................................................................................................iv
KATA PENGANTAR ............................................................................................ v
DAFTAR ISI ........................................................................................................ vii
DAFTAR GAMBAR ..............................................................................................ix
DAFTAR LAMPIRAN ........................................................................................... x
INTISARI .............................................................................................................xi
BAB I PENDAHULUAN........................................................................................ 1
1.1 Latar Belakang ....................................................................................... 1
1.2 Rumusan Masalah ................................................................................. 3
1.3 Tujuan Penelitian ................................................................................... 4
1.4 Manfaat Penelitian ................................................................................. 4
BAB II TINJAUAN PUSTAKA ............................................................................... 6
2.1 Nematoda Intestinal ............................................................................... 6
2.2 Hookworm .............................................................................................. 6 2.2.1 Klasifikasi ...................................................................................... 7 2.2.2 Distribusi Geografis ....................................................................... 7 2.2.3 Morfologi ....................................................................................... 8 2.2.4 Siklus Hidup .................................................................................. 9 2.2.5 Hospes dan Habitat ..................................................................... 10 2.2.6 Gejala Klinis ................................................................................ 10 2.2.7 Cara Infeksi ................................................................................. 11 2.2.8 Diagnosis .................................................................................... 11 2.2.9 Pengobatan ................................................................................. 12 2.2.10 Pencegahan .............................................................................. 13
2.3 Toxocara vitulorum .............................................................................. 13 2.3.1 Klasifikasi .................................................................................... 13 2.3.2 Distribusi Geografis ..................................................................... 14 2.3.3 Morfologi ..................................................................................... 14 2.3.4 Siklus Hidup ................................................................................ 14 2.3.5 Hospes dan Habitat ..................................................................... 15 2.3.6 Gejala Klinis ................................................................................ 16 2.3.7 Diagnosis .................................................................................... 16 2.3.8 Pengobatan ................................................................................. 16
2.4 Cestoda ............................................................................................... 17
2.5 Taenia saginata ................................................................................... 17 2.5.1 Klasifikasi .................................................................................... 18
viii
2.5.2 Distribusi Geografis ..................................................................... 18 2.5.3 Morfologi ..................................................................................... 18 2.5.4 Siklus Hidup ................................................................................ 19 2.5.5 Hospes dan Habitat ..................................................................... 20 2.5.6 Gejala Klinis ................................................................................ 20 2.5.7 Cara Infeksi ................................................................................. 21 2.5.8 Diagnosis .................................................................................... 21 2.5.9 Pengobatan ................................................................................. 21 2.5.10 Pencegahan .............................................................................. 22
2.6 Ternak Sapi ......................................................................................... 22
BAB III METODE PENELITIAN .......................................................................... 25
3.1 Tempat dan Waktu Penelitian .............................................................. 25
3.2 Alat dan Bahan Penelitian .................................................................... 25
3.3 Teknik Penelitian .................................................................................. 25
3.4 Populasi dan Sampel ........................................................................... 25 3.4.1 Populasi ...................................................................................... 25 3.4.2 Sampel ........................................................................................ 26
3.5 Metode Penelitian ................................................................................ 26
3.6 Prosedur Kerja ..................................................................................... 26 3.6.1 Pemeriksaan Makroskopis .......................................................... 26 3.6.2 Pemeriksaan Mikroskopis............................................................ 27 3.6.3 Interpretasi Hasil ......................................................................... 29
3.7 Analisis Data ........................................................................................ 30 3.7.1 Prosentase Infeksi ....................................................................... 30
BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN .................................................................. 31
4.1 Hasil Penelitian .................................................................................... 31
4.2 Perhitungan ......................................................................................... 32 4.2.1 Prosentase Peternak sapi yang Terinfeksi dan Tidak Terinfeksi . 32 4.2.2 Prosentase Feses Sapi yang Terinfeksi dan Tidak Terinfeksi ...... 33
4.3 Pembahasan ........................................................................................ 34
BAB V KESIMPULAN DAN SARAN................................................................... 38
5.1 Kesimpulan .......................................................................................... 38
5.2 Saran ................................................................................................... 38 5.2.1 Bagi Peternak .............................................................................. 38 5.2.2 Bagi Masyarakat ......................................................................... 39 5.2.3 Bagi Mahasiswa .......................................................................... 39
DAFTAR PUSTAKA .......................................................................................... P-1
LAMPIRAN ....................................................................................................... L-1
ix
DAFTAR GAMBAR
Gambar 1. Telur Hookworm..................................................................................1
Gambar 2. Siklus Hidup Hookworm.....................................................................10
Gambar 3. Telur Toxocara vitulorum...................................................................14
Gambar 4. Telur Taenia saginata........................................................................19
Gambar 5. Siklus Hidup Taenia saginata............................................................19
x
DAFTAR LAMPIRAN
Lampiran 1. Hasil Pemeriksaan Makroskopis Pada Feses Peternak Sapi.........L-1
Lampiran 2. Hasil Pemeriksaan Makroskopis Pada Feses Sapi........................L-2
Lampiran 3. Hasil Pemeriksaan Mikroskopis Pada Feses Peternak Sapi..........L-5
Lampiran 4. Hasil Pemeriksaan Mikroskopis Pada Feses Sapi.........................L-5
Lampiran 5. Peternakan Sapi di Dusun Karangnongko, Boyolali......................L-7
Lampiran 6. Preparat Sampel............................................................................L-8
Lampiran 7. Hasil Pemeriksaan Mikroskopis Feses Sapi..................................L-8
xi
INTISARI
Sihombing, Frederica, U. 2018. Identifikasi Telur Cacing Hookworm, Toxocara vitulorum dan Taenia saginata Pada Feses Peternak Sapi dan Feses Sapi di Dusun Karangnongko, Boyolali. “Karya Tulis Ilmiah”, D-III Analis Kesehatan, Fakultas Ilmu Kesehatan, Universitas Setia Budi Surakarta.
Sapi bermanfaat untuk menghasilkan susu. Kondisi sapi penghasil susu harus sehat dan tidak terinfeksi cacing parasit. Infeksi cacing parasit yang dapat menyerang sapi dari kelas Nematoda dan Cestoda. Kerugian bila hewan ternak terinfeksi cacing usus parasit yaitu pertumbuhan sapi muda terhambat, berat badan sapi menurun, penurunan kualitas daging, penurunan produksi susu pada sapi perah, dan beresiko jika menularkan penyakit pada manusia.
Tujuan penelitian adalah untuk mengetahui adanya telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata pada feses sapi dan peternak sapi di Dusun Karangnongko, Boyolali. Pengambilan sampel menggunakan teknik random sampling. Penelitian dilakukan di laboratorium Parasitologi Universitas Setia Budi Surakarta metode langsung yaitu menggunakan lugol 2% dan diamati secara mikroskopis.
Hasil penelitian prosentase positif pada feses sapi adalah Hookworm sebesar 8%, Toxocara vitulorum 4% dan Taenia saginata 0%, sedangkan pada feses peternak tidak ditemukan infeksi telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata.
Kata kunci: Telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata, Sapi.
1
BAB I
PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang
Sapi merupakan salah satu komoditi dalam bidang peternakan yang
memiliki produk aktif berupa susu. Tingginya kesadaran masyarakat akan
pentingnya protein yang terkandung didalam susu menjadikan susu sebagai
produk hasil peternakan yang sangat diminati. Menurut data Kementerian
Pertanian Republik Indonesia (2017), jumlah populasi sapi di Indonesia saat
ini mecapai 14,6 juta ekor atau masih memenuhi sekitar 67% kebutuhan sapi
di Indonesia. Bedasarkan data Badan Pusat Statistik Nasional atau BPSN
(2016), menyatakan bahwa dari 34 provinsi di Indonesia terdapat sebaran
populasi ternak seperti sapi potong dan sapi perah, populasi terbanyak berada
di Provinsi Jawa Timur.
Ternak sapi memiliki manfaat yang beragam, dimana seekor atau
sekelompok sapi dapat memenuhi kebutuhan protein hewani, tenaga sapi
dapat dimanfaatkan untuk menarik gerobak, penghasil susu, dan kotoran sapi
dapat dimanfaatkan sebagai pupuk (Sudarmono dan Sugeng, 2008). Jenis
sapi beraneka ragam yaitu sapi bali, sapi brahman, sapi friesian holstein, sapi
aberden angus, sapi potong hasil persilangan, sapi simmental, sapi limousin
(Harianto dan Rahmat, 2017).
Sistem usaha peternakan di Indonesia ada beberapa macam
diantaranya mempunyai tujuan untuk produksi sapi potong, pembibitan, dan
sapi perah. Pemeliharan sapi dapat dilakukan secara tradisional dan modern.
Peternakan tradisional mengedepankan pola pemeliharaan induk-anak untuk
2
menghasilkan bakalan/ pedet (calf cow operation), sedangkan pada
peternakan modern biasanya menerapkan konsep Low External Input
Sustainable Agriculture. Peternakan yang dipelihara secara tradisional
maupun modern tidak dapat lepas dari berbagai hambatan termasuk penyakit
akibat cacing parasit berupa nematoda dan cestoda. Infeksi oleh parasit usus
selain mengakibatkan gangguan kesehatan pada manusia juga dapat
merugikan bagi ekonomi peternakan. Kerugian bila hewan ternak terinfeksi
cacing usus parasit yaitu pertumbuhan sapi muda terhambat, berat badan sapi
menurun, penurunan kualitas daging yang dihasilkan oleh hewan ternak,
penurunan produksi susu pada sapi perah, dan beresiko jika menularkan
penyakit pada manusia. Menurut hasil penelitian Siregar (2013), menyatakan
bahwa kasus kecacingan menyebabkan keterlambatan pertumbuhan berat
per hari sebanyak 15% pada sapi perah dan 40% untuk sapi potong.
Menurut data World Health Organization (WHO) tahun 2016, terdapat
lebih dari 1,5 miliyar orang atau sekitar 24% penduduk di dunia terinfeksi Soil
Transmitted Helminth dan yang terinfeksi taeniasis sebanyak 2,8 miliyar
orang. Infeksi yang disebabkan oleh cacing usus masih menjadi sumber
masalah dalam kesehatan masyarakat di Indonesia karena prevalensi masih
tinggi yaitu ± 45-65%, bahkan di wilayah tertentu dengan kondisi sanitasi
lingkungan yang buruk, kelembaban dan panas yang tinggi prevalensi infeksi
dapat mencapai 80% (Sumolang dkk, 2014).
Penelitian yang dilakukan oleh Erwin et al (2010) pada 96 sampel
feses sapi, ditemukan telur cacing dari dua kelompok cacing parasit yaitu
kelas trematoda dan kelas nematoda. Pada jenis sapi Bali di organ hati dan
3
diafragma pernah ditemukan telur cacing jenis Taenia saginata (Dharmawan
et al, 2009).
Kabupaten Boyolali terkenal sebagai tempat penghasil susu terbesar
di Jawa Tengah. Susu yang dihasilkan harus dari sapi dengan kondisi sehat,
tidak stress dan tidak terinfeksi cacing parasit. Parasit yang dapat meyerang
sapi antara lain kelas Nematoda, Cestoda dan Trematoda. Jenis Nematoda
ada berbagai macam spesies antara lain Hookworm atau cacing tambang dan
Toxocara vitulorum, sedangkan dari kelas Cestoda adalah spesies Taenia
saginata (Safar, 2009).
Dusun Karangnongko merupakan salah satu daerah di Boyolali yang
menghasilkan produk susu. Kondisi kandang sapi yang berdekatan dengan
rumah peternak sapi serta sanitasi peternakan yang masih buruk menjadi
pertimbangan untuk melakukan penelitian sebagai upaya pencegahan infeksi
penyakit akibat cacing sebelum terjadi infeksi. Cara untuk mengetahui adanya
telur cacing adalah dengan identifikasi telur cacing dalam feses, hal ini
dilakukan untuk mendeteksi dini adanya infeksi cacing parasit terutama
parasit pencernaan dengan cara yang cepat, mudah dan efektif (Nezar, 2014).
1.2 Rumusan masalah
a. Apakah ternak sapi di Dusun Karangnongko, Boyolali ada yang terinfeksi
telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata?
b. Apakah peternak sapi di Dusun Karangnongko, Boyolali ada yang
terinfeksi telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia
saginata?
4
c. Berapa prosentase sapi di peternakan sapi Dusun Karangnongko,
Boyolali yang terinfeksi telur Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia
saginata?
d. Berapa prosentase peternak sapi di peternakan sapi Dusun
Karangnongko yang terinfeksi telur Hookworm, Toxocara vitulorum, dan
Taenia saginata?
1.3 Tujuan penelitian
a. Untuk mengetahui apakah ada ternak sapi di Dusun Karangnongko,
Boyolali yang terinfeksi telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan
Taenia saginata
b. Untuk mengetahui apakah ada peternak sapi di Dusun Karangnongko,
Boyolali yang terinfeksi telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan
Taenia saginata
c. Untuk mengetahui prosentase sapi di Dusun Karangnongko yang
terinfeksi telur Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata.
d. Untuk mengetahui prosentase peternak sapi di Dusun Karangnongko
yang terinfeksi telur Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata.
1.4 Manfaat penelitian
a. Bagi Mahasiswa
Memberikan pengetahuan tentang prosentase infeksi cacing
Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata terhadap sapi dan
peternak sapi.
b. Bagi Masyarakat
5
Memberikan pemahaman kepada masyarakat khususnya peternak
sapi agar dapat melakukan tindakan pencegahan terhadap bahaya infeksi
cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata
c. Bagi Institusi
Sebagai referensi penelitian selanjutnya, sumber bacaan dan
sumber informasi bagi mahasiswa.
6
BAB II
TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Nematoda Intestinal
Nematoda mempunyai jumlah spesies terbanyak di antara cacing-
cacing yang hidup sebagai parasit. Cacing tersebut berbeda-beda dalam
habitat, daur hidup dan hubungan hospes parasit (host parasite relationship)
(Staf Pengajar Parasitologi FKUI, 2008).
Nematoda intestinal adalah nematoda yang berhabitat di saluran
pencernaan manusia dan hewan. Sebagian besar dari nematoda ini adalah
hospes ini adalah penyebab masalah kesehatan masyarakat di Indonesia.
Diantara nematoda intestinal ini terdapat beberapa spesies yang tergolong
“Soil Transmitted Helminth”, yaitu nematoda yang dalam siklus hidupnya
untuk mencapai stadium infektif, memerlukan tanah dengan kondisi tanah
yang lembab dengan suhu optimum 25-30ºC. Nematoda golongan Soil
Transmitted Helminth adalah Hookworm dan Toxocara vitulorum (Safar,
2009).
2.2 Hookworm
Cacing tambang (Hookworm) merupakan Soil Transmitted Helminth
yang penularan dan siklus hidupnya melalui media tanah. Penularan cacing
tambang pada manusia dapat terjadi karena menelan telur atau larva cacing
ke dalam tubuh melalui pori-pori kulit. Infeksi cacing Hookworm tersebar luas
di Indonesia terutama di daerah beriklim tropis. Infeksi cacing tambang masih
menjadi masalah kesehatan khususnya bagi anak-anak karena dapat
7
menyebabkan gangguan pertumbuhan dan menyebabkan penurunan
kemampuan kognitif (Hariani, 2015).
Cacing tambang yang dapat menginfeksi manusia adalah
Ancylostoma duodenale dan Necator americanus. Sedangkan cacing
tambang yang menginfeksi hewan adalah Ancylostoma caninum,
Ancylostoma braziliense, dan Ancylostoma ceylanicum, ketiga jenis parasit ini
menginfeksi hewan kucing dan anjing (Safar, 2009).
2.2.1 Klasifikasi
Kingdom : Animalia
Filum : Nematoda
Kelas : Secernentea
Ordo : Strongiloidae
Familia : Ancylostomatidae
Genus : Necator / Ancylostoma
Species : Ancylostoma duodenale
Necator americanus
Ancylostoma brazilliense
Ancylostoma ceylanicum
Ancylostoma caninum (Wikipedia, 2013)
2.2.2 Distribusi Geografis
Penyebaran cacing Hookworm di seluruh daerah dengan
keadaan yang sesuai, misalnya di daerah pertambangan dan
perkebunan. Prevalensi di Indonesia masih tinggi, terutama di daerah
pedesaan sekitar 40% (Staf Pengajar Parasitologi FKUI, 2008).
8
2.2.3 Morfologi
Telur cacing Hookworm memiliki ukuran ± 40-60µ, berbentuk
lonjong dengan dinding tipis dan jernih. Ovum dari telur yang baru
dikeluarkan tidak memiliki segmen. Telur Hookworm hidup di tanah
dengan suhu optimum 23ºC - 33ºC, ovum akan berkembang menjadi
2,4, dan 8 blastomer, pada suhu 0ºC telur Hookworm dapat hidup
dalam waktu 7 hari dan dapat bertahan hidup beberapa hari pada suhu
45ºC, sedangkan pada suhu optimum dalam waktu 24-48 jam akan
menetas dan keluar larva rhabditiform yang makan dari bahan sisa
organik yang ada disekitarnya. Larva akan menjadi lebih panjang dan
kurus dengan mulut tertutup dan runcing dalam waktu 3-5 hari, larva
ini disebut filariform yang infektif dan dapat hidup ditanah dengan suhu
optimum dalam waktu 2 minggu. Larva ini akan mati bila kemarau,
terkena panas langsung, atau banjir. Larva filariform dapat menembus
kulit manusia menuju kapiler darah, lalu masuk ke jantung kanan dan
masuk ke paru-paru. Larva yang berada di dalam paru-paru akan
masuk ke dalam bronkus, lalu masuk ke trakea, kemudian ke dalam
laring dan berakhir di dalam usus halus. Larva di dalam usus halus
akan berubah menjadi dewasa (Safar, 2010).
Gambar 1. Telur Hookworm (CDC, 2017a)
9
2.2.4 Siklus Hidup
Daur hidup cacing tambang hanya membutuhkan 1 hospes
definitif yaitu manusia. Hospes definitif adalah tempat parasit hidup
dan berkembang serta bereproduksi secara seksual. Tidak ada hewan
yang bertindak sebagai hewan reservoir, yaitu hewan yang
mengandung parasit dan merupakan sumber infeksi bagi manusia.
Telur cacing tambang yang sudah keluar dari usus penderita akan
jatuh ditanah dalam waktu 2 hari, akan tumbuh menjadi larva
rhabditiform yang tidak infektif karena larva ini dapat hidup bebas di
tanah. Larva rhabditiform akan berganti kulit dalam waktu 1 minggu
dan akan berkembang mejadi larva filariform yang infektif yang tidak
dapat mencari makan dengan bebas di tanah. Larva filariform harus
mencari hospes definitif untuk dapat bertahan hidup, hospes definitif
yaitu manusia. Larva filariform akan menginfeksi kulit manusia,
menembus pembuluh darah dan limfe, selanjutnya masuk ke dalam
darah dan mengikuti aliran darah menuju jantung dan ke paru-paru
(Soedarto, 2016).
Larva yang berada di dalam paru-paru akan menembus dinding
pembuluh darah masuk ke dinding alveolus, kemudian rongga
alveolus, dan naik ke trakea melalui bronchiolus dan bronkus menuju
ke faring, kemudian dari faring akan masuk ke esofagus. Larva pada
esofagus akan menuju ke usus halus dan akan tumbuh menjadi cacing
dewasa (Kementerian Kesehatan RI, 2012).
10
Gambar 2. Siklus Hidup Hookworm (CDC, 2017b)
2.2.5 Hospes dan Habitat
Hospes dari cacing tambang adalah manusia dan habitat
cacing ini di usus halus manusia. Cacing tambang juga dapat hidup
ditanah pada suhu 23ºC - 33ºC (suhu optimum) selama 24-48 jam.
Pada suhu 0ºC telur Hookworm dapat hidup dalam waktu 7 hari dan
dapat bertahan hidup beberapa hari pada suhu 45ºC (Safar, 2010).
2.2.6 Gejala Klinik
Gejala klinis yang dapat ditimbulkan oleh infeksi cacing
tambang adalah sebagai berikut:
a. Stadium larva
Bila banyak larva filariform yang menembus kulit, maka
dapat terjadi perubahan kulit yang disebut ground itch. Perubahan
pada paru biasanya ringan.
b. Stadium dewasa
Gejala tergantung pada spesies dan jumlah cacing dan
keadaan gizi penderita (Fe dan Protein).
11
Cacing tambang dapat menyebabkan anemia. Necator
americanus menyebabkan kehilangan darah sebanyak 0,05 – 0,1 cc
sehari, sedangkan Ancylostoma duodenale 0,08 – 0,34 cc. Biasanya
terjadi anemia mikrositik hipokrom. Selain anemia, infeksi cacing
tambang juga dapat terjadi eosinofilia. Gejala pada usus dimulai ketika
larva mencapai usus kecil. Cacing tambang akan menempel pada
mukosa usus dan dapat menyebabkan perdarahan. Penderita dengan
infeksi ringan akan mengalami sedikit atau tanpa gejala, tetapi penderita
yang terinfeksi berat sering merasakan tidak nyaman pada epigastrium
dan akan mereda bila diberi pengobatan obat cacing. Anak-anak yang
terinfeksi berat sering mengalami pembesaran perut. Infeksi berat dapat
ditandai dengan kadar hemoglobin darah bisa turun sampai 1 g/100ml.
Infeksi besar dapat menyebabkan kelelahan, koma, dan kematian
terutama pada bayi. Infeksi berat yang bersifat kronis dapat
menyebabkan kurang gizi, hypoproteinemia, dan anemia yang
mengakibatkan keterlambatan pertumbuhan (Wijaya, 2015).
2.2.7 Cara infeksi
Infeksi cacing tambang dapat terjadi bila larva filariform
menembus kulit. Infeksi juga dapat terjadi bila secara tidak sengaja
menelan larva filariform maupun bentuk telur cacing Hookworm (Staf
Pengajar Parasitologi FKUI, 2008).
2.2.8 Diagnosis
Kelainan patologis yang ditimbulkan oleh telur, larva, maupun
cacing tambang dewasa menyebabkan berbagai keluhan dan gejala klinis
12
yang tidak khas. Keluhan penderita dan gambaran klinis infeksi cacing
tambang dapat berupa:
a. Anemia mikrositik hipokrom, leukopenia dengan limfositosis relatif
dengan jumlah leukosit kurang dari 4.000/ ml, dan gambaran umum
kekurangan darah (pucat, perut membesar yang tidak wajar, rambut
kering dan mudah rontok)
b. Ground itch (gatal kulit ditempat masuknya larva filariform)
c. Gejala bronchitis akibat adanya larva di dalam paru yang
menimbulkan batuk-batuk yang kadang disertai darah.
Pada pemeriksaan darah, penderita infeksi cacing tambang
menunjukkan gambaran: hemoglobin yang menurun sampai kurang dari
11,5 g/dl pada penderita perempuan dan kurang dari 13,5 pada penderita
laki-laki. Gambaran pemeriksaan darah juga menunjukkan MCHC (Mean
Corpuscular Hemoglobin Concentration) kurang dari 31-36 g/dl. Sediaan
apus darah tepi menunjukkan jumlah eosinofil yang meningkat
(eosinofilia) yang dapat mencapai 30% dan anisositosis atau poikilositosis
(Soedarto, 2016).
2.2.9 Pengobatan
Obat Anthelminthic (obat yang membersihkan tubuh dari cacing
parasit), seperti Albendazol dan Mebendazol dengan dosis 20 mg/KgBB
diminum sebagai dosis tunggal selama 2 hari berturut-turut atau 10
mg/KgBB diminum sebagai dosis tunggal selama 3 hari berturut-turut.
Suplemen zat besi juga diperlukan jika penderita menderita anemia
(Badan POM RI, 2015).
13
2.2.10 Pencegahan
Pencegahan infeksi cacing tambang dapat dilakukan dengan
tidak membuang tinja di sembarang tempat, membiasakan diri
menggunakan alas kaki bila keluar rumah, dan tidak menumpuk sayuran
dekat dengan tinja manusia (Safar, 2010).
2.3 Toxocara vitulorum
Toxocara dapat menyebabkan penyakit yang biasa dikenal dengan
istilah toxocariasis. Toxocariasis pada hewan biasanya disebabkan oleh
infeksi cacing Toxocara cati pada kucing, Toxocara canis pada anjing, dan
Toxocara vitulorum pada sapi atau kerbau. Penyakit parasit yang menyerang
sapi dan bersifat zoonosis salah satunya disebabkan oleh infeksi cacing
Toxocara vitulorum. Cacing ini menyerang sapi di semua umur, dapat menular
melalui kontak makanan maupun melalui plasenta induk yang menulari fetus
sapi dalam kandungan (Agustina dkk, 2013).
2.3.1 Klasifikasi
Kingdom : Animalia
Filum : Nemathelminthes
Kelas : Nematoda
Sub Kelas : Secernentea
Famili : Ascarididae
Genus : Toxocara
Spesies : Toxocara vitulorum (Kania, 2012)
14
2.3.2 Distribusi Geografis
Toxocara tersebar secara kosmopolit, dan juga ditemukan
dibeberapa daerah di Indonesia. Tahun 2008 prevalensi cacing
Toxocara vitulorum pada pedet di kabupaten Pasuruan cukup tinggi,
yaitu 21,33% (Susanto, 2008).
2.3.3 Morfologi
Telur cacing Toxocara vitulorum memiliki warna kekuning-
kuningan. Bentuknya agak bulat dan memiliki dinding yang tebal.
Dinding tersebut menjadi pertahanan telur cacing agar dapat
bertahan hidup lama pada lingkungan sampai termakan oleh inang
(Yudha, 2014).
Gambar 3. Telur Toxocara vitulorum (CDC, 2017c)
2.3.4 Siklus Hidup
Toxocara vitulorum banyak ditemukan pada kandang-
kandang hewan ternak yang terdapat banyak kotoran hewan ternak.
Daur hidup Toxocara vitulorum dapat melalui kolostrum. Seekor
cacing betina mampu bertelur sebanyak 200.000 telur/ hari. Telur
dibebaskan bersama tinja dan sangat tahan terhadap udara panas,
dingin, dan kekeringan (Duri, 2015).
15
Toxocara vitulorum memiliki siklus hidup langsung (Direct Life
Circle), artinya tidak memiliki hospes perantara. Telur yang
dikeluarkan oleh cacing betina akan berkembang biak dalam waktu
7-15 hari dengan suhu 27ºC - 30ºC (suhu optimum). Telur ini infektif
dan dapat bertahan hidup selama berbulan-bulan bahkan bertahun-
tahun, namun sangat peka terhadap sinar matahari. Ternak akan
terinfeksi setelah menelan embryonated eggs. Larva akan keluar dari
telur di dalam lambung, dan akan penetrasi ke dalam dinding
lambung dan migrasi ke dalam pembuluh darah menuju liver, paru,
trakea, mulut, esophagus, dan kembali ke usus halus. Usus halus
adalah tempat berkembang biak dan produksi telur. Larva bermigrasi
ke jaringan lain, berupa kelenjar mamae dan plasenta, cacing ini akan
berpindah ke anak sapi atau ke fetus. Lama prepatent periode atau
pertama infeksi sampai menghasilkan telur adalah 3-4 minggu di
tubuh anak sapi. Lamanya migrasi larva pada sapi dewasa
tergantung pada lama periode dorman di dalam jaringan (Polyoga,
2015).
2.3.5 Hospes dan Habitat
Toxocara vitulorum ditemukan pada sapi atau kerbau.
Toxocara vitulorum dapat hidup di dalam tubuh manusia sebagai
erratic parasite dan dapat menimbulkan penyakit yang disebut viseral
larva migrans. Habitat dari Toxocara vitulorum adalah usus halus
(Safar, 2010).
16
2.3.6 Gejala Klinik
Infeksi Toxocara vitulorum pada sapi lebih banyak ditemukan
pada anak sapi daripada yang dewasa. Tanda-tanda klinis
toxocariasis pada hewan sangat bervariasi dan tergantung dari umur
hewan. Gejala yang dapat ditimbulkan pada manusia antara lain tidak
mau makan, sakit di daerah perut, diare, dehidrasi, penurunan berat
badan, dan tinja berbau khas. Pneumonia akan terlihat pada anak
sapi yang terinfeksi Toxocara karena adanya migrasi larva ke paru-
paru. Pada anak sapi akan terjadi diare dan menurunnya berat badan
akibat tidak mau makan. Infeksi Toxocara yang menyerang anak sapi
dapat digolongkan menjadi 3 tingkatan yaitu, infeksi ringan dengan
5.000 epg, infeksi sedang 5.000 – 10.000 epg, dan infeksi berat berat
lebih dari 10.000 epg (Duri, 2015).
2.3.7 Diagnosis
Infeksi paten Toxocara pada sapi dapat di diagnosa secara
tentatif mulai dari tanda-tanda klinis yang terlihat dan umur dari
hewan. Pneumonia dan ditemukannya telur cacing Toxocara dalam
feses dapat membantu menegakkan diagnosis dan harus dikuatkan
dengan melihat sejarah penyakit hewan ternak tersebut.
2.3.8 Pengobatan
Pengobatan yang dapat diberikan kepada penderita
toxocariasis yaitu menggunakan antihelmin dengan spectrum luas,
seperti Benzimidazoles, Levamisole, dan lain-lain. Antihelmin
memiliki efek sampik bila digunakan untuk larva migrant, sehingga
17
untuk penanggulangan larva harus dilakukan penggulangan obat
cacing (Polyoga, 2015).
2.4 Cestoda
Cestoda berasal dari bahasa Yunani, Cestos = ikat pinggang. Cestoda
adalah salah satu kelas dari filum Platyhelminthes yang merupakan salah satu
kelompok parasit pada hewan dan manusia. Parasit ini dapat menimbulkan
kerugian secara ekonomi terutama pada penurunan kualitas hasil perikanan
dapat dapat merugikan kesehatan manusia. Semua cestoda adalah
endoparasit, cacing dewasa berada di dalam usus vertebrata dan larva dalam
jaringan hospes perantara (Irianto, 2009).
2.5 Taenia saginata
Taenia saginata adalah parasit dalam usus manusia. Taenia saginata
dapat menyebabkan taeniasis atau infeksi cacing pita sapi. Penyebaran
cacing Taenia saginata bersifat kosmpolitan terutama di daerah-daerah yang
berpenduduk gemar mengkonsumsi daging sapi mentah atau setengah
matang (Irianto, 2009).
Taenia saginata merupakan cestoda yang siklus hidupnya
membutuhkan lebih dari satu inang (dua) dan telur di produksi dalam jumlah
banyak. Sapi memakan makanan yang terkontaminasi larva usia 10-12
minggu. Cacing dewasa berbentuk skoleks dan menyerang usus, diikuti
cacing muda dan proglotid (Tantri dkk, 2013).
2.5.1 Klasifikasi
Kingdom : Animalia
18
Filum : Platyhelminthes
Kelas : Cestoda
Famili : Taenidae
Genus : Taenia
Spesies : Taenia saginata (Atmojo, 2016)
2.5.2 Distribusi Geografis
Secara umum, Taenia saginata ditemukan di Amerika Selatan,
Eropa Barat dan Timur, Amerika Serikat, Afrika Timur dan Barat.
Kasus taeniasis terdapat di beberapa daerah endemis di Indonesia
seperti di Sumatera Utara (Pulau Samosir), Lampung, Jakarta,
Kalimantan Barat, Sulawesi Utara, Sulawesi Tenggara, Bali, Nusa
Tenggara Timur, dan Irian Jaya, yang penduduknya mempunyai
kebiasaan mengkonsumsi daging sapi yang dimasak kurang
sempurna (Pusarawati dkk, 2009).
2.5.3 Morfologi
Telur Taenia saginata berbentuk bulat dengan diameter 30-
40 µm x 20-30 µm, memiliki kulit tebal yang nampak sebagai dua
garis halus dan kulit bergaris radier. Telur berisi embrio hexacant atau
onkosfer yaitu suatu masa bulat, bergranula, dan diliputi membran
halus, di bagian dalam nampak 3 pasang kait berbentuk mirip seperti
lanset yang membias. Warna kulit telur lebih gelap dibanding warna
isi telur, hal ini menyebabkan bentuk telur Taenia saginata
menyerupai bentuk roda (Prasetyo, 2013).
19
Gambar 4 : Telur Taenia saginata (Prianto dkk, 2008)
2.5.4 Siklus Hidup
Manusia merupakan hospes definitif dari Taenia saginata,
sedangkaan sapi bertindak sebagai hospes perantara. Infeksi pada
manusia terjadi jika makan daging sapi yang masih mentah atau
dimasak kurang sempurna sehingga cysticercus bovis yang terdapat
di dalam daging masih infektif. Siklus hidup dimulai dari manusia
yang terinfeksi mengeluarkan tinja yang mengandung telur cacing di
tanah atau tidak pada tempatnya. Telur cacing tersebut termakan
sapi. Cysticersus bovis terbentuk di orang/ jaringan sapi, lalu
termakan bersama daging sapi oleh manusia. Cysticersus kemudian
akan berkembang menjadi cacing dewasa di dalam usus manusia
(Soedarto, 2016).
Gambar 5 : Siklus hidup Taenia saginata (CDC, 2017d)
20
2.5.5 Hospes dan Habitat
Hospes perantara dari Taenia saginata adalah sapi,
sedangkan hospes definitif adalah manusia. Habitat dari cacing
dewasa Taenia saginata berada di lumen usus halus dengan skoleks
yang menempel pada mukosa usus halus manusia (Pusarawati dkk,
2013).
2.5.6 Gejala Klinik
Infeksi yang disebabkan oleh Taenia saginata tidak
menimbulkan gejala yang nyata. Penderita akan merasa terganggu
apabila proglotid gravid yang berotot dan bergerak aktif migrasi
keluar dari anus. Segmen gravid yang keluar dari anus secara satu
per satu masih dapat bergerak dan sering di temukan pada celana
dalam penderita atau diatas tempat tidur, dapat menimbulkan rasa
tidak nyaman sehingga penderita mual dan bahkan muntah. Akibat
dari segmen gravid yang keluar dari anus dapat menyebabkan rasa
terganggu atau risih di sekitar anus (perianal), dan ada perasaan
buang air besar yang tidak diinginkan. Gejala ini dapat terjadi sekitar
enam kali dalam satu hari (Irianto, 2009).
Cacing dewasa Taenia saginata menyebabkan keluhan
dispesia seperti mual, muntah, diare, nyeri epigastrium, disertai
pusing dan gugup. Gejala menjadi lebih berat apabila cacing dewasa
Taenia saginata menimbulkan obstruksi usus yang mengakibatkan
penderita mengalami ileus atau apabila segmen gravid masuk ke
apendiks. Pemeriksaan darah, penderita taeniasis ditemukan
peningkatan pada jumlah eosinofil 6-15% (Prasetyo, 2013).
21
2.5.7 Cara Infeksi
Penyebaran terjadi melalui padang rumput yang tercemar
kotoran manusia dan mengandung telur atau proglotid gravid yang
terlepas dari rangkaiannya. Rumput terkontaminasi melalui pupuk
dari tinja manusia atau melalui air limpahan yang telah
terkontaminasi. Telur cacing Taenia saginata pada padang rumput
dapat bertahan hidup selama 8 minggu atau lebih. Ternak sapi akan
terinfeksi bila memakan rumput tersebut dan infeksi pada manusia
terjadi secara pre-oral, makan daging sapi yang mentah atau
dimasak kurang sempurna yang mengandung larva Taenia saginata
(cysticercus bovis) (Irianto, 2009).
2.5.8 Diagnosis
Diagniosis dapat ditegakkan dengan deteksi telur atau
segmen pada feses. Telur Taenia saginata dengan Taenia solium
tidak bisa dibedakan. Telur terdiri dari lapisan vitelin luar yang
merupakan selaput yang membranous. Lapisan dalam yang
merupakan suatu embriofor dengan gambaran garis-garis radier. Di
dalam telur terdapat hexacant embrio atau onkosfer yang mempunyai
6 kait (Zaman, 2014).
2.5.9 Pengobatan
Obat yang dapat digunakan untuk taeniasis pada hewan
adalah Mebendazol, Prazikuantel, Albendazol, Epsiprantel, Febentel,
Febendazole. Pengobatan taeniasis pada manusia, pemberian obat
cacing:
a. Mebendazol
22
Diberikan dengan dosis 2 x 200 mg/ hari, selama 4 hari berturut-
turut
b. Prazikuantel
Merupakan drug of choice untuk Taenia saginata, diberikan
dengan dosis tunggal 100 mg/ Kg BB
c. Albendazol
Diberikan terhadap penderita dewasa dengan dosis 400 mg/
hari, diberikan selama 3 hari berturut-turut (Estuningsih, 2009).
Penggunaan obat tradisional seperti biji labu merah atau biji
pinang masih digunaan. Pengobatan dinyatakan berhasil apabila
setelah pengobatan penderita buang air besar, dalam feses
penderita ditemukan skolex Taenia saginata (Prasetyo, 2013).
2.5.10 Pencegahan
Untuk mencegah taeniasis pada manusia, dapat dilakukan
dengan menghindari memakan daging sapi yang kurang matang.
Daging sapi yang terkontaminasi harus dimasak terlebih dahulu
dengan suhu diatas 56ºC. Selain itu, dengan membekukan daging
terlebih dahulu dapat mengurangi resiko penularan penyakit
(Estuningsih, 2009).
2.6 Ternak sapi
Sapi merupakan salah satu ternak penghasil daging di Indonesia.
Indonesia merupakan tempat yang bagus untuk memelihara sapi, pasalnya
suhu, curah hujan, sinar matahari, ketesediaan air, kelembaban, serta kondisi
lahan yang ada di sebagian besar wilayah di Indonesia sangat mendukung
untuk dijadikan lokasi penggemukan sapi (Harianto dan Rahmat, 2017).
23
Pemeliharan ternak sapi dapat dikelompokkan menjadi 2 cara, yaitu
pemeliharan yang baik dan pemeliharan yang kurang baik. Ciri-ciri sebagai
berikut :
a. Pemeliharan yang baik
1. Suhu lingkungan untuk pertumbuhan dan perkembangan sapi
berkisar 17-27ºC
2. Curah hujan memiliki hubungan dengan ketersediaan air bagi ternak
sapi. Lokasi peternakan mempunyai curah hujan 800 – 1.500 mm/
tahun
3. Penggunaan kandang. Kandang yang paling baik digunakan adalah
kandang individu, sebab jenis kandang individu dapat membuat
pertumbuhan sapi lebih pesat karena ruang gerak yang terbatas
membuat pakan yang seharusnya digunakan untuk energi dialihkan
menjadi daging dan lemak.
4. Lantai kandang sebaiknya disemen dengan kualitas yang baik dan
tahan lama sehingga tidak sering dilakukan perbaikan alas kandang
dan tidak menggangu jadwal pemeliharaan
5. Kebersihan kandang selalu di perhatikan. Membersihkan kandang
sebaiknya dilakukan minimal 1x1 hari
6. Pemberian vitamin dan obat-obatan guna menjaga kebugaran tubuh
sapi. Obat cacing dan vitamin B 12 merupakan obat-obatan dan
vitamin yang umumnya selalu disediakan oleh peternak sapi
(Harianto dan Rahmat, 2017).
b. Pemeliharaan yang kurang baik
24
1. Pembuatan kandang di daerah tropis seperti Indonesia
menggunakan kandang dengan sistem terbuka. Artinya, dinding
kandang dibuat tidak penuh, bahkan ada yang tidak menggunakan
dinding sama sekali.
2. Kebersihan kandang yang tidak diperhatikan
3. Pemberian pakan sapi yang tidak mengandung kebutuhan gizi sapi
(Harianto dan Rahmat, 2017)
25
BAB III
METODE PENELITIAN
3.1. Tempat dan Waktu Penelitian
Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Parasitologi Universitas Setia Budi
Surakarta, pada tanggal 15 Januari 2018 – 20 Januari 2018.
3.2. Alat dan Bahan Penelitian
a. Alat
1. Pot sampel
2. Mikroskop
3. Obyek glass
4. Masker
5. Handscoon
6. Lidi
b. Bahan :
1. Sampel feses
2. Larutan lugol 2%
3.3. Teknik Penelitian
Penelitian ini termasuk penelitian observasional dengan pendekatan cross
sectional.
3.4. Populasi dan Sampel
3.4.1 Populasi
Peternak sapi dan sapi di peternakan sapi Dusun Karangnongko.
26
3.4.2 Sampel
25 feses sapi dan 5 feses peternak sapi.
3.5. Metode Penelitian
Metode penelitian yang digunakan adalah pemeriksaan secara langsung,
dibagi menjadi 2 tahap yaitu pemeriksaan makroskopis dan mikroskopis.
3.6. Prosedur Kerja
3.6.1 Pemeriksaan Makroskopis
a. Tujuan : untuk pemeriksaan dini sebagai bentuk gambaran
feses yang dapat dilihat dengan mata langsung
atau tanpa menggunakan alat bantu penglihatan.
b. Cara kerja
1. Membuka pot sampel yang berisi feses
2. Mengamati :
a) Warna
1) Normal : kuning kecoklatan
2) Hijau : dipengaruhi oleh makanan yang banyak
mengandung sayur-sayuran
3) Abu-abu : tidak adanya urobilin dalam saluran
makanan, dan dapat terjadi jika makanan
mengandung lemak yang tidak dicerna
karena defisiensi enzim pancreas
4) Merah muda : terjadi karena perdarahan yang segar
dibagian distal
5) Coklat : terjadi karena perdarahan proximal atau
dengan makanan coklat atau kopi
27
6) Hitam : terjadi karena carbo medicinalis, obat-
obatan yang mengandung Fe dan melena
b) Bau
Bau normal tinja disebabkan oleh indol, skatol dan
asam butirat. Bau busuk terjadi bila di dalam usus terjadi
karena protein yang tidak dicerna dan dirombak oleh
kuman-kuman.
c) Konsistensi
Konsistensi agak lunak dan dengan mempunyai
bentuk. Konsistensi tinja yang sangat lunak dan cair
biasanya terjadi pada diare, sedangkan tinja dengan
konsistensi padat terjadi pada konstipasi.
d) Lendir
Adanya lendir mengindikasikan adanya radang
dinding usus. Jika lendir hanya pada bagian luar tinja
maka lokalisasi iritasi pada usus besar, jika bercampur
dengan tinja mungkin pada usus halus.
e) Darah
Bila terdapat darah pada tinja, perhatikan apakah
darah tersebur segar (merah muda), coklat atau hitam
dan apakah bercampur atau hanya dibagian luar tinja.
3. Mencatat hasil analisis
3.6.2 Pemeriksaan Mikroskopis
a. Tujuan : untuk mengidentifikasi ada atau tidaknya protozoa
dan telur cacing pada sampel yang dianalisis.
28
b. Cara kerja :
1. Meneteskan 1 tetes Lugol 2% diatas obyeck glass
2. Mengambil sampel feses seujung sudip atau ± 2mg,
meletakkan diatas obyeck glass
3. Menghomogenkan feses dengan larutan lugol 2%
menggunakan lidi
4. Menutup sedian dengan deck glass atau kaca penutup
5. Memeriksa sediaan dibawah mikroskop dengan lensa
obyektif dengan perbesaran 100 atau 400.
6. Mengamati :
a) Sel epitel
Sel epitel berasal dari dinding usus bagian distal dan
dapat ditemukan dalam keadaan normal. Sel epitel yang
berasal dari bagian yang lebih proximal, sel-sel itu
sebagian atau seluruhnya rusak.
b) Makrofag
Bentuk makrofag dalam preparat lebih menyerupai
amoeba, perbedaannya ialah sel makrofag tidak dapat
bergerak
c) Leukosit
Leukosit dapat terlihat jelas bila tinja dicampur
dengan beberapa tetes asam asetat 10%.
d) Eritrosit
Eritrosit hanya dapat dilhat jika lesi mempunyai
lokalisasi dalam kolon, rectum, atau anus. Jika ditemukan
29
eritrosit dalam tinja maka tinja tersebut abnormal. Adanya
eritrosit dapat dilihat dari pemeriksaan makroskopis yaitu
ditemukannya darah dalam tinja.
e) Kristal – kristal
Pada umumnya, adanya kristal tidak mempunyai
arti klinis. Dalm tinja normal terdapat kristal seperti
triplefosfat, calcium oxalate, dan asam lemak. Pada
kelainan dapat dijumpai kristal Charcot-Leyden, dan
kristal hematoidin.
f) Sel ragi
g) Telur cacing
Telur cacing yang dapat dijumpai adalah
Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata
(Gandasoebrata, 2008).
3.6.3 Interpretasi hasil :
(+) Positif : Ditemukan telur Hookworm, Toxocara vitulorum,
dan Taenia saginata pada sediaan
(-) Negatif :Tidak ditemukan telur Hookworm, Toxocara
vitulorum, dan Taenia saginata pada sediaan
(Irianto, 2009)
3.7. Analisis Data
3.7.1 Prosentase Infeksi
Perhitungan prosentase infeksi bedasarkan Kemenkes 2012 sebagai
berikut :
30
a. Prosentase peternak sapi yang terkontaminasi telur cacing, yaitu
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑝𝑒𝑡𝑒𝑟𝑛𝑎𝑘 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎 𝑥 100%
b. Prosentase peternakan yang tidak terkontaminasi telur cacing,
yaitu:
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑝𝑒𝑡𝑒𝑟𝑛𝑎𝑘 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑖𝑑𝑎𝑘 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎 𝑥 100%
c. Prosentase sapi yang terkontaminasi telur cacing, yaitu :
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑠𝑎𝑝𝑖 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎 𝑥 100%
d. Prosentase sapi yang tidak terkontaminasi telur cacing, yaitu :
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑠𝑎𝑝𝑖 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑖𝑑𝑎𝑘 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎 𝑥 100%
31
BAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1. Hasil Penelitian
Penelitian dilakukan dengan mengambil sampel feses sapi sebanyak
25 sampel dan sampel feses peternak sapi sebanyak 5 sampel. Sampel feses
diperoleh dari Dusun Karangnongko RT 03/ RW 01, Desa Karangnongko,
Kecamatan Mojosongo, Kabupaten Boyolali yang merupakan daerah dengan
mayoritas penduduk berprofesi sebagai peternak sapi. Penelitian dilakukan di
Laboratorium Parasitologi Universitas Setia Budi, Jl. Let. Jend. Sutoyo,
Mojosongo, Surakarta pada tanggal 15 Januari 2018 sampai dengan 20
Januari 2018.
Hasil penelitian secara makroskopis pada 5 feses peternak sapi yaitu
warna feses kuning kecoklatan dengan bau khas feses, konsistensi lembek
dan agak keras, tidak ditemukan adanya lendir, darah dan cacing dewasa.
Pemeriksaan makroskopis pada 25 feses sapi yaitu warna feses kehitaman
dengan bau khas feses sapi, konsistensi lembek, serta tidak ditemukan
adanya lendir, darah, dan cacing dewasa pada feses.
Pemeriksaan mikroskopis pada sampel feses sapi ditemukan telur
cacing Hookworm, telur cacing Toxocara vitulorum, dan larva filariform
Hookworm, sedangkan pada feses peternak sapi tidak ditemukan telur cacing
Hookworm, Toxocara vitulorum dan Taenia saginata.
32
4.2. Perhitungan
4.2.1. Prosentase Feses Peternak Sapi yang Terinfeksi dan Tidak
Terinfeksi
a. Prosentase sampel feses peternak sapi yang terinfeksi telur
cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata
No Telur Cacing Hasil Positif Prosentase
1 Hookworm 0 0%
2 Toxocara vitulorum 0 0%
3 Taenia saginata 0 0%
Jumlah 0 0%
1. Perhitungan sampel feses peternak sapi yang terinfeksi telur
cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata
=𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑝𝑒𝑡𝑒𝑟𝑛𝑎𝑘 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎×100%
= 0
5 × 100%
= 0%
b. Prosentase sampel feses peternak sapi yang tidak terinfeksi telur
cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata:
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑝𝑒𝑡𝑒𝑟𝑛𝑎𝑘 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑖𝑑𝑎𝑘 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎×100%
= 5
5 × 100%
= 100%
4.2.2. Prosentase Feses Ternak Sapi yang Terinfeksi dan Tidak Terinfeksi
33
a. Prosentase sampel feses ternak sapi yang terinfeksi telur cacing
Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata
No Telur Cacing Hasil Positif Prosentase
1 Hookworm 2 8%
2 Toxocara vitulorum 1 4%
3 Taenia saginata 0 0%
Jumlah 3 12%
1. Perhitungan sampel feses sapi yang terinfeksi telur cacing
Hookworm:
= 𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑠𝑎𝑝𝑖 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎 ×100%
= 2
25 × 100%
= 8%
2. Perhitungan sampel feses sapi yang terinfeksi telur cacing
Toxocara vitulorum:
= 𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑠𝑎𝑝𝑖 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎 ×100%
= 1
25 × 100
= 4%
3. Perhitungan sampel feses sapi yang terinfeksi telur cacing
Taenia saginata:
34
= 𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑠𝑎𝑝𝑖 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎 ×100%
= 0
25 × 100%
= 0%
b. Prosentase sampel feses ternak sapi yang tidak terinfeksi telur
cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata:
=𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑐𝑒𝑠 𝑠𝑎𝑝𝑖 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑖𝑑𝑎𝑘 𝑡𝑒𝑟𝑘𝑜𝑛𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎𝑠𝑖
𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑓𝑒𝑠𝑒𝑠 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑝𝑒𝑟𝑖𝑘𝑠𝑎 × 100%
= 22
25 × 100%
= 88%
4.3 Pembahasan
Pemeriksaan ini dilakukan dengan metode pemeriksaan langsung.
Metode pemeriksaan langsung dilakukan dengan 2 tahap pemeriksaan yaitu
pemeriksaan makroskopis dan mikroskopis. Pemeriksaan makroskopis
harus dilakukan terlebih dahulu untuk melihat kemungkinan adanya infeksi
cacing pada feses. Pemeriksaan makroskopis dilakukan dengan mengamati
warna, bau, konsistensi, serta ada tidaknya darah, lendir, dan cacing dewasa
yang ada pada feses. Pemeriksaan mikroskopis dilakukan dengan cara
diambil tinja kira-kira 0,2 gram, diletakkan pada Obyek glass. Kemudian
ditambah 1-2 tetes Lugol 2% dan diratakan, lalu ditutup dengan Deck glass
atau kaca penutup dan langsung diperiksa dibawah mikroskop perbesaran
lemah (10 x 10) dan perbesaran sedang (40 x 10) (Gandasoebrata, 2008).
35
Keuntungan penggunaan Lugol 2% adalah dapat membunuh
organisme dan dapat mewarnai unsur-unsur sel seperti inti sel, benda-benda
kromatid, dan vakuola dapat terlihat dengan jelas. Kelemahan dari
penggunaan Lugol 2% adalah tidak dapat melihat pergerakan tropozoit yang
mati. Kelemahan penggunaan Lugol 2% tidak begitu memiliki arti karena
penelitian ini berpusat pada identifikasi telur cacing dan bukan tropozoit
(Naomi, 2015).
Pemeriksaan makroskopis pada 5 feses peternak sapi didapatkan
hasil sebagai berikut: warna kuning kecoklatan dengan bau khas feses.
Konsistensi lembek dan agak keras, serta pada feses tidak terdapat lendir,
darah dan cacing dewasa. Hasil pemeriksaan tersebut dapat disimpulkan
bahwa feses peternak sapi normal dan tidak adanya infeksi telur cacing.
Pemeriksaan makroskopis pada 25 feses sapi didapatkan hasil sebagai
berikut: warna feses kehitaman dan memiliki bau khas feses sapi dengan
konsistensi lembek, tidak ditemukan adanya lendir, darah, dan cacing
dewasa pada feses.
Hasil penelitian pada sampel feses sapi dan peternak sapi di Dusun
Karangnongko RT 03/ RW 01, Desa Karangnongko, Kecamatan Mojosongo,
Kabupaten Boyolali menunjukkan bahwa dari 25 sampel feses sapi terdapat
3 sampel yang terinfeksi telur cacing terdiri dari 2 telur cacing Hookworm dan
1 telur cacing Toxocara vitulorum. Pada 5 sampel feses peternak sapi tidak
ditemukan telur cacing Hookworm, Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata.
Telur cacing Hookworm yang ditemukan pada feses sapi memiliki
morfologi telur berukuran ± 70 x 45µ, bulat lonjong, berdinding tipis, kedua
kutub mendatar, didalamnya terdapat beberapa sel. Ditemukan juga telur
36
Toxocara vitulorum pada feses sapi dengan morfologi telur berukuran ± 80
x 70µ, bulat, dinding luar menyerupai renda. Sampel feses sapi juga
ditemukan larva filariform Hookworm dengan morfologi panjang ± 500µ,
ruang mulut tertutup, esofagus menempati ¼ panjang badan bagian anterior
(Prianto dkk, 2008). Infeksi telur cacing Taenia saginata tidak ditemukan
pada feses sapi. Telur Taenia saginata memiliki morfologi berukuran ± 35 x
30µ, berbentuk bulat, berdinding tebal dengan struktur liniar, berisi onkosfer
dan memiliki 6 buah kait-kait (Prianto dkk, 2008). Pemeriksaan mikroskopis
pada sampel feses peternak sapi tidak ditemukan telur cacing Hookworm,
Toxocara vitulorum dan Taenia saginata.
Kasus toxocariasis dimulai dengan termakannya feses yang
mengandung telur cacing oleh sapi. Telur akan menetas di usus halus dan
menjadi larva. Larva akan bermigrasi ke hati, paru-paru, jantung, ginjal,
bahkan plasenta dan masuk ke jaringan amnion (ketuban) serta ke dalam
kelenjar susu sapi dan keluar bersama kolostrum. Kolostrum yang diminum
oleh sapi akan menjadi sumber penularan cacing Toxocara. Larva yang tetap
berada dalam usus akan berkembang menjadi cacing dewasa dan
selanjutnya menghasilkan telur yang bisa keluar bersama feses sapi.
Penularan toxocariasis pada sapi dapat terjadi melalui pakan atau air yang
terkontaminasi oleh telur maupun larva cacing dan melalui kolostrum yang
mengandung larva cacing (Medion, 2013).
Infeksi Hookworm pada feses sapi dapat dipengaruhi oleh lantai
kandang yang sebagian besar masih berupa tanah dan kesukaan sapi
merebahkan badan di tanah saat istirahat di kandang. Kondisi ini sangat
37
memungkinkan terjadinya proses infiltrasi larva cacing tambang pada
binatang ternak sapi (Sumanto, dkk., 2010).
Faktor-faktor yang menyebabkan terinfeksinya sapi-sapi di
peternakan dusun Karangnongko oleh telur cacing Hookworm dan Toxocara
vitulorum serta larva filariform Hookworm adalah defekasi sapi di tanah, alas
kandang yang masih terbuat dari tanah, sanitasi di daerah peternakan yang
masih buruk, dan pemberian pakan pada hewan ternak yang tidak sesuai
dengan gizi yang dibutuhkan (Hariyadi, 2014).
Hubungan antara sapi dengan peternak sapi yaitu kandang sapi yang
berdekatan dengan rumah peternak, sering terjadi kontak antara ternak sapi
dan peternak sapi. Pencegahan yang dapat dilakukan untuk mencegah
terjadinya infeksi kecacingan pada sapi maupun peternak sapi yaitu menjaga
hygiene dan sanitasi, tidak defekasi di sembarang tempat, mencuci tangan
dengan sabun sebelum dan sesudah makan, dan tidak menggunakan tinja
manusia sebagai pupuk (Safar, 2009).
38
BAB V
KESIMPULAN DAN SARAN
5.1. Kesimpulan
a. Ditemukan ternak sapi yang terinfeksi telur cacing Hookworm, Toxocara
vitulorum, tetapi tidak ditemukan telur cacing Taenia saginata di
peternakan sapi Dusun Karangnongko, Boyolali
b. Tidak ditemukan peternak sapi yang terinfeksi telur cacing Hookworm,
Toxocara vitulorum, dan Taenia saginata di peternakan sapi Dusun
Karangnongko, Boyolali
c. Prosentase feses sapi yang terinfeksi telur Hookworm sebesar 8%,
Toxocara vitulorum sebesar 4%, dan Taenia saginata 0%
d. Prosentase feses peternak sapi yang terinfeksi Hookworm, Toxocara
vitulorum, dan Taenia saginata adalah 0%.
5.2. Saran
5.2.1. Bagi Peternak
c. Peternak disarankan menjaga kebersihan kandang sapi dengan
membersihkan kotoran sapi setiap hari
d. Peternak disarankan memperhatikan kebersihan pribadi seperti
mencuci tangan dengan sabun setelah kontak dengan hewan
ternak
e. Peternak sebaiknya menggunakan APD (Alat Pelindung Diri) saat
kontak dengan sapi
39
5.2.2. Bagi Masyarakat
Pentingnya menjaga kebersihan lingkungan guna mencegah resiko
infeksi akibat telur cacing yang dapat menyebabkan penyakit
5.2.3. Bagi Mahasiswa
Melakukan penelitian lebih lanjut tentang infeksi telur cacing pada
sapi dan peternak sapi untuk meminimalisir infeksi kecacingan yang
dapat menimbulkan penyakit bagi lingkungan sekitar peternakan.
P-1
DAFTAR PUSTAKA
Agustina, K., Dharmayudha., Wirata, I. 2013. “Prevalensi Toxocara vitulorum
Pada Induk dan Anak Sapi Bali di Wilayah Bali Timur”. Buletin Veteriner
Udayana. Vol 5 (1): 1-6
Atmojo, A. 2016. “Parasitologi Teori” (Online), (http://medlab.id/taenia-saginata/,
diakses 14 November 2017) BPSN (Badan Pusat Statistik Nasional). 2016. Statistika Hewan Ternak di
Indonesia Tahun 2016. Jakarta: BPS RI Badan POM RI. 2015. “Obat Kecacingan”, (Online),
(http://pionas.pom.go.id/artikel/obat-kecacingan, diakses 17 April 2018) CDC. 2017a. “Parasites- Hookworm”, (Online),
(http://www.cdc.gov/parasites/hookworm/biology.html, diakses 18 April 2018)
CDC. 2017b. “Parasites- Hookworm”, (Online),
(http://www.cdc.gov/parasites/hookworm/biology.html, diakses18 April 2018)
CDC, 2017c. “Parasites- Toxocara vitulorum”, (Online),
(http://www.cdc.gov/parasites/toxocarariasis/biology.html, diakses18 April 2018)
CDC, 2017d. “Parasites- Toxocara vitulorum”, (Online),
(http://www.cdc.gov/parasites/toxocarariasis/biology.html, diakses18 April 2018)
CDC. 2017e. “Parasites- Taenia”, (Online),
(http://www.cdc.gov/parasites/taeniasis/biology.html, diakses 18 April 2018)
Dharmawan, N. S, Damriyasa, I. M, Kapti, I. N, Sutisna, P, Okamato, M., Ito, A.
2009. “Experimental Infection of Taenia saginata Eggs in Bali Cattle: Ditribution and Density of Cystercercus bovis”. Jurnal Veternier. Vol 10 (4): 84-91
Duri, R. 2015. “Deteksi Toxocara vitulorum Pada Kerbau Perah (Bubalus bubalis)
Di Kabupaten Enrekang”. Skripsi. Makasar: Fakultas Kedokteran, Universitas Hasanuddin
Erwin, N., Kamal, M., Rusdiana, A. 2010. “Identitas Jenis Telur Cacing Parasit
Usus Pada Ternak Sapi (Bos sp) dan Kerbau (Bubalus sp) di Rumah Potong Hewan Palembang. Jurnal biologi FMIPA. Vol D (10): 6-11
P-2
Estuningsih, S. E. 2009. “Taeniasis dan Sistiserkosis Merupakan Penyakit Zoonosis Prasiter” Watazoa. Vol 19 (2): 84-92
Gandasoebrata, R. 2008. Penuntun Laboratorium Klinik edisi kelima, Dian
Rakyat: Jakarta
Hariani, B. 2015. “Keberadaan Telur dan Larva Cacing Tambang Pada Tanah di
Lingkungan Desa Sepunggur dan Desa Gunung Tinggi Kabupaten Tanah
Bumbu Kalimantan Selatan Tahun 2014”. Jurnal Vektor Penyakit. Vol (9):
15-20
Harianto, B dan Rahmat. 2017. Membuat Sapi Potong Cepat Gemuk. Jakarta: Agro Media Pustaka
Irianto, K. 2009. Parasitologi: Berbagai Penyakit yang Mempengaruhi Kesehatan
Manusia. Bandung: Yrama Widya Kania, U. 2012. “Nematoda usus”, (Online),
(http://parasitipedia.net/index.php?option=com_conten&view=articel&id=2638&hemid=2916, diakses 4 April 2018)
Kementerian Kesehatan RI Direktorat Jendral PP dan PL. 2012. Pedoman
Pengendalian Kecacingan, Jakarta: Kemenkes RI Kementerian Pertanian Republik Indonesia. 2017. “Populasi Sapi Perah Menurut
Provinsi, 2013-2017”. (Online), (http://www.pertanian.go.id/ap_pages/mod/datanak, diakses 14 November 2017)
Medion. 2013. “Cacingan pada Sapi Jangan Dianggap Enteng”. (Online),
(http://info.medion.co.id, diakses 16 April 2018) Naomi, B. 2015. ”Manfaat Eosin, NaCl dan Lugol”, (Online),
(https://www.scribd.com/doc/286192973/Manfaat-Eosin-NaCl-Dan-Lugol, diakses 19 April 2018)
Nezar, M. 2014. “Jenis Cacing Pada Feses Sapi di TPA Bantar Gebang dan KTT
Sidomulyo Desa Nongkosawit Semarang”. Skripsi. Semarang: Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Universitas Negeri Semarang
Polyoga, H. 2015. “Toxocara vitulorum”, (Online), (http://www.dokter-
hewan.net/2015/09/toxocara-vitulorum.html?m=1, diakses 17 April 2018) Prasetyo, R. H. 2013. Buku Ajar Parasitologi Kedokteran Parasit Usus. Jakarta:
Sagung Seto
Prianto, J., Tjahaya. P. U, Darwanto. 2008. Atlas Parasitologi Kedokteran. Jakarta: Gramedia Pustaka Utama
Pusarawati, S., Ideham, B., Kusmaratisnawati., Tantular, I. S., Basuki, S. 2013.
Atlas Parasitologi Kedokteran. Jakarta: EGC
P-3
Safar, R. 2009. Parasitologi Kedokteran. Bandung: Yrama Widya Safar, R. 2010. Parasitologi Kedokteran. Bandung: Yrama Widya Santi, W. P. 2008. “Respons Penggemukan Sapi PO dan Persilangannya
sebagai Hasil IB terhadap Pemberian Jerami Padi Fermentasi dan Konsentrat di Kabupaten Blora”. Skripsi. Bogor: Fakultas Peternakan, Institut Pertanian Bogor
Siregar. 2013. Tampilan reproduksi kambing lokal hasil induksi superovulasi
dengan ekstrak pituitary. Jurnal Veteriner. 14 (1): 75-79 Soedarto. 2016. Buku Ajar Parasitologi Kedokteran Edisi Kedua. Jakarta:
Sagung Seto Staf Pengajar Parasitologi FKUI. 2008. Buku Ajar Parasitologi Kedokteran Edisi
Keempat. Jakarta: Balai Penerbit Fakultas Kedokteran Universitas Indonesia
Sudarmono dan Sugeng. 2008. Sapi potong dan Pemeliharaan, Perbaikan
Produksi, Prospek Bisnis, Analisis Penggemukan. Semarang: Niaga Swadaya.
Sumanto, D., Alhamidy. F., Anggriani. H., 2010. “Uji Paparan Telur Cacing Tambang pada Tanah Halaman Rumah dan Kotoran Binatang Piaraan Rumah Tangga”. (Online), (http://researchgate.net/publication/314282645_UJI_PAPARAN_TELUR_CACING_TAMBANG_PADA_TANAH_HALAMAN_RUMAH_DAN_KOTORAN_BINATANG_PIARAAN_RUMAH_TANGGA, diakses 16 April 2018).
Sumolang, P., Hayani, A., Junus. W., Samarang. 2014. “Prevalensi Kecacingan
usus di Kota Palu, Sulawesi Tenggara”. Jurnal Epidemiologi dan Penyakit Bersumber Binatang, 5(2): 75-80
Susanto, A. 2008. “Prevalensi Infeksi Cacing Toxocara vitulorum pada Anak Sapi
Perah dan Anak Sapi Potong di Kabupaten Pasuruan”. Tesis. Surabaya:
Universitas Airlangga
Tantri, N., Setyawati. T. R., Khotimah, S. 2013. “Prevalensi dan Intensitas Telur Cacing Parasit Pada Feses Sapi (Bos Sp) Rumah Potong Hewan (RPH) Kota Pontianak Kalimantan Barat”. Jurnal Protobiont, 2 (2): 102-106
Wijaya, N. 2015. “Beberapa Faktor Risiko Kejadian Infeksi Cacing Tambang
Pada Petani Pembibitan Albasia”. Tesis. Semarang: Program Magister
Epidemiologi Pascasarjana, Universitas Diponegoro
P-4
WHO, 2016. “Soil Transmitted Helminth Infection”, (Online), (http://www.who.int/medicentere/factsheets/fs366/en/ , diakses 12 November 2017)
Wikipedia. 2015. “Cacing Tambang”, (Online),
(http://id.m.wikipedia.org/wiki/cacing_tambang, diakses 17 April 2018)
Yudha, S. 2014. Identifikasi dan Program Pengendalian Toxocara vitulorum pada
Ternak Ruminansia Besar. Skripsi. Bogor: Fakultas Kedokteran Hewan,
Institut Pertanian Bogor
Zaman, V. 2014. Atlas Parasitologi Kedokteran : Atlas Protozoa, dan Arthropoda
Penting, Sebagian Besar Berwarna. Terjemahan oleh: Anwar, C., Musral, Y. Jakarta: Hipokrates.
L-1
LAMPIRAN
Lampiran 1. Hasil Pemeriksaan Makroskopis Pada Feses Peternak Sapi di Dusun
Karangnongko RT 03/ RW 01, Desa Karangnongko, Kecamatan Mojosongo,
Kabupaten Boyolali
NO Sampel Pemeriksaan Makroskopis Feses
Warna Bau Konsistensi Lendir Darah Parasit
1 Sampel no. 1 Kuning
kecoklatan
Khas
Feses
Agak Keras Tidak
Ada
Lendir
Tidak
Ada
Darah
Tidak Ada Parasit
2 Sampel no. 2 Kuning
Kecoklatan
Khas
Feses
Lembek Tidak
Ada
Lendir
Tidak
Ada
Darah
Tidak Ada Parasit
3 Sampel no.3 Kuning
Kecoklatan
Khas
Feses
Agak Keras Tidak
Ada
Lendir
Tidak
Ada
Darah
Tidak Ada Parasit
4 Sampel no. 4 Kuning
Kecoklatan
Khas
Feses
Agak Keras Tidak
Ada
Lendir
Tidak
Ada
Darah
Tidak Ada Parasit
5 Sampel no. 5 Kuning
Kecoklatan
Khas
Feses
Lembek Tidak
Ada
Lendir
Tidak
Ada
Darah
Tidak Ada Parasit
L-2
Lampiran 2. Hasil Pemeriksaan Makroskopis Pada Feses Sapi di Dusun
Karangnongko RT 03/ RW 01, Desa Karangnongko, Kecamatan Mojosongo,
Kabupaten Boyolali
NO Sampel Pemeriksaan Makroskopis Feses
Warna Bau Konsistensi Lendir Darah Parasit
1 Sampel
no. 1
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
2 Sampel
no. 2
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
3 Sampel
no. 3
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
4 Sampel
no. 4
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
5 Sampel
no. 5
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
6 Sampel
no. 6
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
L-3
7 Sampel
no. 7
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
8 Sampel
no. 8
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
9 Sampel
no. 9
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
10 Sampel
no. 10
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
11 Sampel
no. 11
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
12 Sampel
no. 12
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
13 Sampel
no. 13
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
14 Sampel
no. 14
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
L-4
15 Sampel
no. 15
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
16 Sampel
no. 16
Kehitaman
Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
17 Sampel
no. 17
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
18 Sampel
no. 18
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
19 Sampel
no. 19
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
20 Sampel
no. 20
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
21 Sampel
no. 21
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
22 Sampel
no. 22
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
L-5
23 Sampel
no. 23
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
24 Sampel
no. 24
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
25 Sampel
no. 25
Kehitaman Khas
feses
Lembek Tidak
ada
lendir
Tidak
ada
darah
Tidak ada
parasit
Lampiran 3. Hasil Pemeriksaan Mikroskopis pada Feses Peternak Sapi di Dusun
Karangnongko RT 03/ RW 01, Desa Karangnongko, Kecamatan Mojosongo,
Kabupaten Boyolali
NO Sampel Hasil Pemeriksaan Keterangan
1 Sampel no. 1 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
2 Sampel no. 2 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
3 Sampel no. 3 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
4 Sampel no. 4 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
5 Sampel no. 5 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
Lampiran 4. Hasil Pemeriksaan Mikroskopis Pada Feses Sapi di Dusun
Karangnongko RT 03/ RW 01, Desa Karangnongko, Kecamatan Mojosongo,
Kabupaten Boyolali
L-6
NO Sampel Hasil
Pemeriksaan
Keterangan
1 Sampel no. 1 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
2 Sampel no. 2 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
3 Sampel no. 3 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
4 Sampel no. 4 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
5 Sampel no. 5 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
6 Sampel no. 6 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
7 Sampel no. 7 Positif (+) Ditemukan telur cacing Hookworm
8 Sampel no. 8 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
9 Sampel no. 9 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
10 Sampel no. 10 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
11 Sampel no. 11 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
12 Sampel no. 12 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
13 Sampel no. 13 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
14 Sampel no. 14 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
15 Sampel no. 15 Positif (+) Ditemukan larva Filariform
Hookworm
16 Sampel no. 16 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
17 Sampel no. 17 Positif (+) Ditemukan telur cacing Toxocara
18 Sampel no. 18 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
19 Sampel no. 19 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
20 Sampel no. 20 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
21 Sampel no. 21 Positif (+) Ditemukan telur cacing Hookworm
L-7
22 Sampel no. 22 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
23 Sampel no. 23 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
24 Sampel no. 24 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
25 Sampel no. 25 Negatif (-) Tidak ditemukan telur cacing
Lampiran 5. Peternakan Sapi di Dusun Karangnongko, Boyolali
Lampiran 6. Preparat Sampel
L-8
Lampiran 7. Hasil Pemeriksaan Mikroskopis Feses Sapi
Telur Cacing Hookworm (Sampel no. 7) Perbesaran 400
L-9
Larva Filariform Hookworm (Sampel no. 15) Perbesaran 100
Telur Cacing Toxocara vitulorum (Sampel no. 17) Perbesaran 400
Recommended