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Calidad del agua
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PROTECCIÓN AMBIENTAL 2
17/02/2015
DR. ALFONSO DURÁN MORENO
DEPARTAMENTO DE INGENIERÍA QUÍMICA
FACULTAD DE QUÍMICA, UNAM
Torre de Ingeniería, 3er piso Ala Sur
Sede Alterna: Paseo de la Investigación Científica, Conjunto E
Ciudad Universitaria, 04510 Coyoacán, México, D.F.
Tels.: 56 23 35 00 Ext. 3537 y 3538 y 56 22 52 93;
E-mail: [email protected]
SEMESTRE 2015-02
17/02/2015
Parámetros de calidad de agua y de aguas residuales
17/02/2015 2
La calidad del agua se refiere a las
características físicas, químicas y biológicas
de los cuerpos de agua superficiales y
subterráneos. La composición del agua en
la medida en que esta es afectada por la
concentración de sustancias producidas por
procesos naturales y actividades humanas
afectan la capacidad del agua para
sustentar tanto a las comunidades
humanas, como la vida vegetal y animal.
Calidad del agua
17/02/2015 3
Tabla 3-2, Metcalft y Eddy (1996) Ingeniería de Aguas Residuales. Tomo 1, McGrawHill
Contaminantes de importancia en el
tratamiento de agua residual
PARÁMETROS CONSTITUYENTES
SólidosSólidos disueltos (calcio, sodio y sulfato),sólidos suspendidos
Materia Orgánica BiodegradableProteínas, Carbohidratos, GrasasAnimales (medida como DBO, DQO)
Patógenos Coliformes Fecales
Nutrientes Nitrógeno, Fósforo, Carbono
Materia Orgánica Refractaria Materia resistente a los métodosconvencionales de tratamiento.Tensoactivos, fenoles pesticidas agrícolas
Metales Pesados Plomo, Mercurio, Cromo, Arsénico
17/02/2015 4Tabla 3-5 y Tabla 3-6, Metcalft y Eddy (1996) Ingeniería de Aguas Residuales. Tomo 1, McGrawHill
Compuestos olorosos asociados al agua
residual
COMPUESTO FORMULA QUÍMICA TIPO DE OLOR
Aminas CH3NH2, (CH3)3H Pescado
Amoníaco NH3 Amoniacal
Diaminas NH2(CH2)4NH2, NH2(CH2)5NH2Carne descompuesta
Sulfuro de hidrógeno H2S Huevos podridos
Mercaptanos (metilo, etilo) CH3SH, CH3(CH2)SH Coles descompuestas
Mercaptanos (butilo, crotilo) (CH3)3CSH, CH3(CH2)3SH Mofeta
Sulfuros orgánicos (CH3)2S, (C6H5)2S Coles podridas
Eskatol C9H9N Materia fecal
•Biológico: Producto de la descomposición de materia orgánica
•Compuestos naturales volátiles (H2S, NH3): procesos de reducción
17/02/2015 5Tabla 3-12, Metcalft y Eddy (1996) Ingeniería de Aguas Residuales. Tomo 1, McGrawHill
Agentes infecciosos presentes en agua
residual
Organismo Enfermedad Causada
Bacterias
Escherichia coli (enterotoxígeno) Gastroenteritis
Leptospira (spp.) Leptospirosis
Salmonella typhi Fiebre tifoidea
Salmonella (2,100 serotipos) Salmonelosis
Shigella (4 spp.) Shigellosis (disentería bacilar)
Vibrio cholerae Cólera
Protozoos
Balantidium coli Balantidiasis
Cryptosporidium parvum Cryptosporidiasis
Entamoeba histolytica Amebiasis (disentería amoébica)
Giardia lamblia Giardiasis
Helmintos
Ascaris lumbricoides Ascariasis
T. solium Teniasis
Trichuris trichiura Tricuriasis
Virus
Enterovirus (72 tipos Gastroenteritis, anomalías del
Hepatitis A Hepatitis de tipo infeccioso
Agente de Norwalk Gastroenteritis
Rotavirus Gastroenteritis
17/02/2015 6Tabla 3-13, Metcalft y Eddy (1996) Ingeniería de Aguas Residuales. Tomo 1, McGrawHill
Organismo indicador Características
Bacterias coliformes
Especies de organismos que pueden fermentar lactosa con generación de gases (o
producen una colonia diferenciable en un periodo de incubación en un medio adecuado d e
2 4 ± 2 h a 4 8 ± 3 h) a 35 ± 0.5 °C.
Del grupo de organismos, el género Escherichia (especie E. Coli.) parece ser el más
representativo de la contaminación fecal.
Bacterias coliformes
fecales
Se estableció un grupo de bacterias coliformes fecales en función de la capacidad de
generar gas (o colonias) a una temperatura de incubación elevada (44,5 ± 0,2 °C) durante 24±2h.
Klebisella
La población total de coliformes incluye el genero Klebisella. La Klebisella termo tolerante
también se incluye en el grupo de coliformes fecales. Este grupo se cultiva a 35 ± 0,5 °C durante 24 ± 2 h.
Estreptococos fecales
Este grupo se ha empleado, junto con los coliformes fecales, para determinar las fuentes de
contaminación fecal reciente (humana o de animales de granja). Con los procedimientos
analíticos habituales no es posible diferenciar los verdaderos estreptococos fecales de
algunas de las variedades que se parecen a este grupo, lo cual representa un impedimento
para su uso como organismo indicador.
Enterococos
Las dos familias conocidas como enterococos se pueden aislar y cuantificar mediante la
eliminación de las familias mediante métodos analíticos. Los enterococos suelen estar
presentes en numero inferior al resto de los organismos indicadores; no obstante ,
sobreviven mejor en agua salada.
Clostridium perfringensEs una bacteria persistente anaerobia formadora de esporas, y sus características la
convierten en un indicador útil en los casos en los que se realiza las desinfección del agua.
Pseudomonas
aeruginosa y Aeromonas
hydrophiala
Estos organismos pueden estar presentes en grandes cantidades en el agua residual.
Ambos se pueden considerar como organismos acuáticos y se pueden encontrar en el agua
en ausencia de fuentes de contaminación fecal inmediatas.
Organismos específicos propuestos como
indicadores de la contaminación humana
17/02/2015 7Figura 3-5, Metcalft y Eddy (1996) Ingeniería de Aguas Residuales. Tomo 1, McGrawHill
Intervalos de tamaños de contaminantes orgánicos
presentes en el agua residual
17/02/2015 8
Sólidos y su tratamiento específico
17/02/2015 9
Sales disueltas totales (SDT): Sustancias orgánicas e inorgánicas solubles
en agua y que no son retenidas en el material filtrante.
Sólidos suspendidos totales (SST): Sólidos constituidos por sólidos
sedimentables, sólidos y materia orgánica en suspensión y/o coloidal, que son
retenidas en el medio filtrante.
Sólidos totales (ST): Suma de los sólidos suspendidos totales, sales
disueltas y materia orgánica.
Sólidos totales volátiles (SVT): Cantidad de materia orgánica (incluidos
aquellos inorgánicos) capaz de volatilizarse por el efecto de la calcinación a
550°C ± 50°C en un tiempo de 15 a 20 minutos.
Sólidos sedimentables: Materiales que se detectan en el fondo de un
recipiente debido a la sedimentación de estos.
Sólidos presentes en el agua
17/02/2015 10Metcalft y Eddy (1996) Ingeniería de Aguas Residuales. Tomo 1, McGrawHill
Técnicas de separación y
cuantificación de sólidos
17/02/2015 11
Demanda bioquímica de oxígeno (DBO5): Es una estimación de la cantidad
de oxígeno que requiere una población microbiana heterogénea para oxidar la
materia orgánica de una muestra de agua en un periodo de 5 días.
Se mide como mg de Oxígeno consumido por los microorganismos que
metabolizan la materia disuelta y/o suspendida por litro de disolución
Evaluación :
Tiempo de incubación (básica 5 días),
Origen histórico
Estabilización completa “demanda ultima” (40 días)
Factores ambientales (pH intervalo, temperatura 20°C)
Bioecosistema: responsable estabilización, adaptación del efluente
Demanda bioquímica de Oxígeno
17/02/2015 12
Procedimiento de preparación de botellas para el ensayo de la DBO: (A)
agua de dilución sin inóculo y (B) agua de dilución inoculada [23].
Figura 3-11, Metcalft y Eddy (1996) Ingeniería de Aguas Residuales. Tomo 1, McGrawHill
Determinación de DBO5
17/02/2015 13
kLdt
dL
kdtL
dL
t
to
L
Lo
dtkL
dL
t kLo
Lln
t k
o e LL
)eLo(1LLoy t k
(1)
(2)
(3)
(4)
(5)
(6)
k = Constante cinética de consumo de DBO
L = Contenido de DBO en la muestra
Lo= DBO última, contenido total de DBO en la muestra antes de la prueba
t = Tiempo
y = Consumo de DBO en el tiempo t
Consumo teórico de DBO
17/02/2015 14Figura 3-15, Metcalft y Eddy (1996) Ingeniería de Aguas Residuales. Tomo 1, McGrawHill
Esquema de definición de las demandas bioquímica
de oxígeno carbonosa y nitrogenada ejercidas por una
muestra de agua residual.
17/02/2015 15Ejemplo 3-2, Metcalft y Eddy (1996) Ingeniería de Aguas Residuales. Tomo 1, McGrawHill
Determinar la DBO de 1 día y la BBO última de la primera fase para un agua
residual cuya DBO a los 5 días a 20°C es de 200 mg/l. La constante de la
reacción k (base e)= 0,23 día-1
Solución:
1. Determinación de la DBO última:
1. Determinación de la DBO de 1 día:
17/02/2015 16
Demanda Química de Oxígeno (DQO): Cantidad de materia orgánica e
inorgánica en un cuerpo de agua susceptible de ser oxidada por un oxidante
fuerte.
Se mide en mg de oxígeno equivalente a la fracción orgánica disuelta y/o
suspendida por litro de disolución (agua residual)
Materia orgánica (CxHyOzNw) + Cr2O72- Cr3+ + CO2 + H2O
Compuestos orgánicos que son oxidados por permanganato o
dicromato no son necesariamente BIOQUIMICAMENTE oxidables
Substancias inorgánicas sulfuros, nitritos y hierro ferroso se oxidan por
el dicromato “DQO inorgánico” falseando el valor final
DQO independiente de la DBO (valores bajos por compuestos tóxicos)
Cloruros interfieren análisis, DQO valores mas altos
6Cl - + Cr2O7 2- +14H + 3Cl2 + 2Cr 3 + + 7H2O
Demanda Química de Oxígeno
Un efluente industrial contiene como principal contaminante glucosa (no recuperable) a una concentración
de 1500 mg/L. La relación DBOu/DQO es igual a 0.732. Con base en estos datos, la DTeO (en este caso
considerada igual a la DQO) y la DBOu.
C12H12O6 + 6O2 6CO2 + 6H2O
L
Omg1171.2366DBO
L
Omg1600.05000.732DBO
DQO0.7320DBO0.7320DQO
DBOque sabe Se
2U
2U
UU
glucosamg
Omg1.0667
glucosag
Og1.0667
glucosag180
glucosamol1
Omol1
Og32
glucosamol1
Omol6 22
2
22
L
Omg1600.0500DTeO
L
glucosamg1500
glucosamg
Omg1.0667DQODTeO 22
17/02/2015 17
17/02/2015 18Ejemplo 3-4, Metcalft y Eddy (1996) Ingeniería de Aguas Residuales. Tomo 1, McGrawHill
Determinar la DTeO para la glicina (CH2(NH2)COOH) aceptando como validas
las siguientes suposiciones:
1. En la primera fase, los átomos de carbono se oxidan a CO2 mientras que el
nitrógeno se convierte en amoniaco.
2. En la segunda y tercera fase, el amoniaco se oxida a nitrato y nitrito.
3. La DTeO es la suma del oxígeno requerido en cada una de las fases.
Solución:
17/02/2015 19
Figura 3-19, Metcalft y Eddy (1996) Ingeniería de Aguas Residuales. Tomo 1, McGrawHill
Ilustración de los métodos empleados para la
realización de recuentos de bacterias: (a) utilización
de un medio líquido, y (b) empleo de un medio sólido
[23]
(a)
(b)
Métodos para el recuento de
bacterias
17/02/2015 20
La alcalinidad en agua residual resulta de la presencia
de hidróxidos, carbonatos y bicarbonatos de elementos
tales como calcio, magnesio, sodio, potasio y amoniaco.
La alcalinidad se determina por titulación con un ácido
estándar, los resultados se expresan en mg/L de CaCO3
Alcalinidad se define como la suma de todas las bases
titulables hasta un pH de 4.5. (Davis y Cornwell, 1991)
Titulación de una base
Alcalinidad
17/02/2015 21
Alcalinidad = [HCO3-] + 2[CO3
2-] + [OH-] - [H+]
H2CO3 H+ + HCO3- pk1 = 6.35
HCO3- H+ + CO3
2- pk2 = 10.33
Debajo de pH 4.5 todos los carbonatos son H2CO3 y la alcalinidad es negativa (debido a los H+)
A un pH entre 7.5 y 8.3 todos los carbonatos son HCO3-
Por encima de un pH 11.5 todos los carbonatos son CO32- y la alcalinidad es igual a 2[CO3
2- ] + [OH-].
Los [OH-] pueden no ser significativos a ese valor de pH
Davis & Cornemell (1991) Introduction to Environmental Engineering. McGrawHill, 2nd Ed., Singapore, p.p. 135-136
Cálculo de alcalinidad
17/02/2015 22
Un agua contiene 100 mg/L CO32- y 75 mg/L HCO3
- a un pH de 10.
1) Calcular la alcalinidad exacta;
2) Aproxime el cálculo ignorando las concentraciones de [H+] y [OH-]
CO32 -: PM= 60; n=2; PE=30; 100(50/30)=167
HCO3-: PM= 61; n=1; PE=61; 75(50/61) = 61
H+ : PM= 1; n=1; PE=1; 10-7(50/1 )= 5x10-6
OH- : PM= 17; n=1; PE=17; 1.7(50/1) = 5.0
mg H+/L = (10-10 moles/L)(1 g/mol)(103 mg/g) =10-7
mg OH-/L = (10-4 moles/L) (17 g/mol)(103 mg/g) =1.7
Alcalinidad exacta: 61+167+5.0-(5x10-6 )= 233 mgCaCO3/L
Alcalinidad aprox.: 61 + 167= 228 mgCaCO3/L (2% de error)
mgCaCO3/L
Davis & Cornemell (1991) Introduction to Environmental Engineering. McGrawHill, 2nd Ed., Singapore, p.p. 135-136
Cálculo de alcalinidad
17/02/2015 23
Dureza Total: La dureza se entiende como la capacidad de un agua para
precipitar al jabón y esto está basado en al presencia de sales de los iones
calcio y magnesio.
Generalmente se admite como DUREZA TOTAL (TH) la suma de las
concentraciones de calcio y magnesio expresadas en mgCaCO3/L
La dureza total (TH) se divide en DUREZA CARBONATADA y NO
CARBONATADA. La primera es llamada DUREZA TEMPORAL pues
se remueve por calentamiento (los carbonatos precipitan). La dureza no
carbonatada o DUREZA PERMANENTE se calcula como el exceso de la
dureza total con respecto a la alcalinidad. Si la alcalinidad es igual o más
grande que la dureza total, no hay dureza no carbonatada
Davis & Cornemell (1991) Introduction to Environmental Engineering. McGrawHill, 2nd Ed., Singapore, p.p.
137
Dureza
17/02/2015 24
Davis & Cornwell (1991) Introduction to Environmental Engineering. McGrawHill. 2nd ed. Singapore, pp. 175
Diagrama para resolver
problemas de ablandamiento
17/02/2015 25
Davis & Cornwell (1991) Introduction to Environmental Engineering. McGrawHill. 2nd ed. Singapore, pp. 172
Resumen de reacciones para
ablandamiento
17/02/2015 26Davis & Cornemell (1991) Introduction to Environmental Engineering. McGrawHill, 2nd Ed., Singapore, p.p. 137
Un agua tiene una alcalinidad de 200 mg/L como CaCO3. La concentración de
Ca2+ es de 160 mg/L y la Mg2+ es de 40 mg/L. Encuentre la dureza total, la
temporal y la permanente
Ca2+: PM=40; n=2; PE= 20; 160(50/20)=400
Mg2+: PM=24; n=2; PE=12; 40(50/12)= 166.67
TH = 400 + 167 = 567 mgCaCO3/L
TH > Alcalinidad Dureza temporal = 200 mgCaCO3/L
Dureza permanente = 567 - 200 = 367 mgCaCO3/L
Cálculo de la dureza
17/02/2015 27
Determinar la cantidad
de Cal y soda (en mg/L
de CaCO3) necesaria
para suavizar el agua
hasta 90.00 mg/l de
CaCO3
Análisis de agua
17/02/2015 28
Teniendo en cuenta la
siguiente composición de
agua. Determinar la
cantidad (mg/L) de CaO al
90 por ciento de pureza y
de Na2CO3 al 97 por
ciento de pureza que
deben adquirirse para
tratar el agua a una dureza
final de 85 mg/L; 120 mg/L
Análisis de agua
17/02/2015 29
El fósforo generalmente se encuentra en
aguas naturales, residuales y residuales
tratadas como fosfatos. Éstos se
clasifican como ortofosfatos, fosfatos
condensados y compuestos
órganofosfatados. Estas formas de
fosfatos provienen de una gran cantidad
de fuentes, tales como productos de
limpieza, fertilizantes, procesos
biológicos, etc.
El fósforo es un nutriente esencial para el
crecimiento de organismos, por lo que la
descarga de fosfatos en cuerpos de agua
puede estimular el crecimiento de macro
y microorganismos fotosintéticos en
cantidades nocivas. Ciclo del fósforo
Fósforo total
17/02/2015 30
La química del nitrógeno es compleja debido a los diferentes estados de
oxidación que presenta, en muy diferentes formas químicas en las aguas
naturales y contaminadas. En los análisis habituales se suele determinar el NTK
(nitrógeno total Kendahl) que incluye el nitrógeno orgánico y el amoniacal. El
contenido en nitratos y nitritos se da por separado.
Varios compuestos de nitrógeno son nutrientes esenciales. Sin embargo su
presencia en exceso en el agua es causa de eutrofización.
Nitrógeno total
17/02/2015 31
Nitritos: Los nitritos se consideran como una etapa intermedia en el ciclo
del nitrógeno que puede estar presenten en el agua como resultado de la
descomposición biológica de materiales protéicos. Su concentración en aguas
superficiales y subterráneas es normalmente más baja de 0.1 mg/L.
Nitrato: Es una de las formas de nitrógeno que se presenta generalmente
a nivel de trazas en el agua de superficie, pero puede alcanzar niveles
elevados en las subterráneas.
Nitrógeno Total Kjeldahl: Es la suma de nitrógeno orgánico y nitrógeno
amoniacal.
Compuestos más comunes formados por nitrógeno en el agua
Nitrógeno
17/02/2015 32
Ciclo del Nitrógeno
17/02/2015 33
N
N N
N
O
O P O P O P O CH2
O O--
OO
O-
NH2
OH
O
OH
-
Adenosin trifosfato (A.T.P.) es un constituyente fundamental de la materia viva. Está
implicada en las actividades metabólicas y desaparece inmediatamente después de la
muerte de la célula (NAM, 1978). Es un nucléotido compuesto por adenina, ribosa y
fosfatos.
El ATP interviene en la mayor parte de
las reacciones bioquímicas. En las
reacciones exotérmicas, la energía
liberada puede ser almacenada bajo la
forma de ATP. En las reacciones
endotérmicas, la hidrólisis del ATP en
ADP (Adenosina difosfato) aporta la
energía necesaria.
ATP
17/02/2015 34
La cantidad de ATP es relativamente constante en la célula viva y varía según las bacteria
entre 10-8 et 10-10 µg/célula (Andrews, 1971 citado por BOURBIGOT et al. 1981).
La dosificación de ATP es comúnmente utilizada como indicadora de la concentración de
biomasa debido a que se tienen las siguientes ventajas:
1) El A.T.P. está presente en todo organismo vivo;2)La relación de materia seca (o de cualquier otra medida de biomasa) con respecto al ATP
es relativamente uniforme en todas las células (Carbón celular/A.T.P. = 286);
3) El ATP no se encuentra en las células muertas y no se adsorbe en los detritus;
4) Si la velocidad de crecimiento de los microorganismos disminuye a causa de una
deficiencia de nutrimentos, el nivel celular de ATP no es significativamente diferente de
aquel de las células que se encuentran en crecimiento exponencial.
5) Las modificaciones del medio ambiente son rápidamente detectables al nivel de las
bacterias por una variación de la concentración de ATP (HOLM-HANSEN, 1973).
ATP
17/02/2015 35
Hidrocarburos totales del petróleo (HTP’s): Son los compuestos
orgánicos que son extraídos de la muestra con tetracloruro de carbono, no
son adsorbidos en sílica gel y absorben energía de un número de onda de
2,930 cm-1.
Hidrocarburos totales del petróleo
17/02/2015 36
Calcular los hidrocarburos de petróleo en la muestra usando la siguiente
ecuación:
Ecuación 1: mg/L de hidrocarburos totales del petróleo = (R x V x D) / M
donde:
R es la concentración obtenida de la curva de calibración en mg/L;
V es el volumen de tetracloruro de carbono usado para la extracción en mL;
M es el volumen de muestra en mL, y
D es el factor de dilución.
Todos los valores obtenidos se deben reportar en unidades de mg/L con la
precisión correspondiente.
Cálculo de hidrocarburos totales
del petróleo
17/02/2015 37
Grasas y Aceites: Son los compuestos orgánicos constituidos principalmente
por ácidos grasos de origen animal y vegetal, así como de hidrocarburos del
petróleo que son extraídos de la muestra utilizando hexano como disolvente.
Estructura química de grasas vegetales presentes en agua
Grasas y aceites
17/02/2015 38
Calcular las grasas y aceites recuperables (G y A) en la muestra usando la
siguiente ecuación:
G y A (mg/L)= (A - B) / V
donde:
A es el peso final del matraz de extracción (mg);
B es el peso inicial del matraz de extracción (mg), y
V es el volumen de la muestra, en litros.
Restar al resultado obtenido de la muestra el valor del blanco de reactivo.
Reportar los resultados del análisis en mg/L.
Cálculo de grasas y aceites
17/02/2015 39
El carbón orgánico total (COT) y los ensayos correspondientes se basan en la
oxidación del carbono de la materia orgánica a dióxido de carbono, y
determinación del CO2 por adsorción en Hidróxido de Potasio o por análisis
instrumental (análisis infrarrojo).
Teniendo en cuenta que la demanda teórica de oxigeno (DTEO) mide oxigeno
y que el carbono orgánico teórico (COTE) mide carbono, la relación entre la
DTO y COTE se calcula rápidamente de acuerdo con los cálculos
estequiométricos de la ecuación de oxidación la ecuación siguiente nos
representa la oxidación total de la sacarosa:
C12H22O11 + 12O2----- 12CO2 + 11H2O
Peso molecular 12*12 12*32
DTEO/COTE = (12*32)/(12*12) = 2.67
Carbón orgánico total
17/02/2015 40
El principio de operación de los analizadores de COT es la combustión
de la materia orgánica para finalmente obtener CO2 y H2O
Los gases de combustión se hacen pasar através de un analizador de
infrarrojo sensibilizado para CO2 y la respuesta se recoge en un
registrador
Analizador TOC
Carbón orgánico total
17/02/2015 41
TÉCNICAS PARA LA DETERMINACIÓN DE CALIDAD DE AGUA
3
17/02/2015 42
Una gran cantidad de compuestos orgánicos e inorgánicos son oxidados con
una mezcla de ácido crómico y sulfúrico a ebullición. La muestra se coloca a
reflujo en una disolución de ácido fuerte con un exceso conocido de dicromato
de potasio (K2Cr2O7). Después de la digestión, el dicromato no reducido se mide
por titulación o espectrofotométricamente para determinar la cantidad de
dicromato consumido y finalmente calcular la materia oxidable en términos de
oxígeno equivalente.
El método involucra el uso de Dicromato el cual es preferible sobre
procedimientos que utilizan otros oxidantes debido a su mayor potencial
Redox y su aplicabilidad a una gran variedad de muestras.
El método a reflujo abierto es conveniente para aguas residuales en donde se
requiere utilizar grandes cantidades de muestra. El método a reflujo cerrado es
más económico en cuanto al uso de reactivos, pero requiere una mayor
homogeneización de las muestras que contienen sólidos suspendidos para
obtener resultados reproducibles.
Principio del método.
Determinación de la demanda
Química de Oxígeno
17/02/2015 43
La muestra se debe analizar inmediatamente después de su toma, en
caso contrario debe conservarse en refrigeración a 4°C, además de la
adición de ácido sulfrúrico hasta pH < 2.
El tiempo máximo de almacenamiento previo al análisis es de 28 días.
Recolección, preservación y almacenamiento de muestras.
Determinación de la demanda
Química de Oxígeno
17/02/2015 44
La demanda bioquímica de oxígeno (DBO5): Es una estimación de la
cantidad de oxígeno que requiere una población microbiana heterogénea
para oxidar la materia orgánica de una muestra de agua en un periodo de
5 días. El método se basa en medir el oxígeno consumido por una
población microbiana en condiciones en las que se han inhibido los
procesos fotosintéticos de producción de oxígeno en condiciones que
favorecen el desarrollo de los microorganismos.
El método se basa en medir la cantidad de oxígeno que requieren los
microorganismos para efectuar la oxidación de la materia orgánica
presente en aguas naturales y residuales y se determina por la diferencia
entre el oxígeno disuelto inicial y el oxígeno disuelto al cabo de cinco días
de incubación a 20°C.
Principio del método.
Determinación de la demanda
bioquímica de Oxígeno
17/02/2015 45
En el caso de aguas naturales se debe tomar un mínimo de 1L de muestra en
un envase de polietileno o vidrio. En el caso de aguas residuales (DBO5
mayores de 50 mg/L) deben tomarse mínimo 100 mL. Pueden utilizarse
muestras simples o compuestas.
No se debe agregar ningún preservador a las muestras. Sólo deben
conservarse a 4°C hasta su análisis. El tiempo máximo de almacenamiento
previo al análisis es de 24 h.
Recolección, preservación y almacenamiento de muestras.
Determinación de la demanda
bioquímica de Oxígeno
17/02/2015 46
Determinación de hidrocarburos totales del petróleo (HTP’s)
La determinación de compuestos orgánicos de origen del petróleo es de
suma importancia en aguas residuales y naturales por su efecto de
disminuir el contenido de oxígeno en el agua. Así mismo disminuyen la
tensión superficial del agua, por lo que se afecta a los ecosistemas.
Fig. 1. Ejemplo de los productos obtenidos al reaccionar cadenas de hidrocarburos con oxigeno
Hidrocarburos Totales del Petróleo
17/02/2015 47
El método se basa en la extracción de los compuestos orgánicos no polares de la
muestra, principalmente hidrocarburos de origen del petróleo por su afinidad al
tetracloruro de carbono. Los hidrocarburos disueltos en el tetracloruro de carbono
se determinan cuantitativamente por comparación de la absorbancia leída a un
número de onda de 2,930 cm-1 (correspondiente a la región media infrarroja del
espectro electromagnético), con una curva de calibración preparada con tres tipos
de hidrocarburos.
Estructura química del Tetracloruro de carbono
Cromatógrafo de gases empleado para la determinación de
Hidrocarburos totales
Hidrocarburos Totales del Petróleo
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Debe colectarse un volumen de 2L de muestra en un frasco de vidrio de boca
ancha con tapa de teflón. Como pueden ocurrir pérdidas de hidrocarburos
totales del petróleo por el equipo de muestreo, no se permite la colecta de una
muestra compuesta y no deben tomarse alícuotas de la muestra para realizar
otro tipo de análisis porque se ocupa la muestra entera para éste.
Un retraso entre el muestreo y el análisis mayor de 4 horas, requiere que el
total de la muestra sea preservada por la adición de ácido clorhídrico (1:1)
hasta llevar a ésta a un vapor de pH < 2. Un retraso mayor de 48 horas
requiere refrigeración para la preservación de las muestras a 4°C.
El tiempo máximo de almacenamiento previo al análisis es de 28 días.
Recolección, preservación y almacenamiento de muestras.
Hidrocarburos Totales del Petróleo
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En la determinación de grasas y aceites no se mide
una sustancia específica sino un grupo de
sustancias con unas mismas características
fisicoquímicas (solubilidad). Entonces la determinación
de grasas y aceites incluye ácidos grasos, jabones,
grasas, ceras, hidrocarburos, aceites y cualquier otra
sustancia susceptible de ser extraída con hexano.
Estructura Química del Hexano
Determinación de grasas y aceites.
Este método permite una estimación del contenido de grasas y aceites en
aguas naturales, residuales y residuales tratadas al determinar
gravimétricamente las sustancias que son extraídas con hexano de una
muestra acuosa acidificada. La determinación de grasas y aceites es
indicativa del grado de contaminación del agua por usos industriales y
humanos.
Grasas y Aceites
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Este método se basa en la adsorción de grasas
y aceites en tierra de diatomeas, los cuales son
extraídos en un Soxhlet empleando hexano
como disolvente. Una vez terminada la
extracción se evapora el hexano y se pesa el
residuo que ha quedad en el recipiente, siendo
este valor el contenido de grasas y aceites.
Equipo Soxhlet empleando hexano
Principio del método.
Grasas y Aceites
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De la superficie del cuerpo de agua, colectar un volumen de
aproximadamente 1L de muestra en un frasco de vidrio de boca ancha y
tapa de cubierta de politetrafluoroetileno, poliamida, PVC polietileno o
metálica. Ya que pueden ocurrir pérdidas de grasas y aceites por el equipo
de muestro, no se permite la colecta de una muestra compuesta. Dado que
la muestra entera se ocupa en esta prueba, no se pueden tomar alícuotas
de la muestra para realizar otro tipo de análisis.
En caso de existir la presencia de aceites emulsionados en el agua a
muestrear, la muestra se toma de 20 cm a 30 cm de profundidad, cuando
no haya mucha turbulencia para asegurar una mayor representatividad.
La muestra debe preservarse por acidificación con ácido clorhídrico 1:1 a
un valor de pH menor a dos y refrigerarlas 4°C. El tiempo máximo de
almacenamiento previo al análisis es de 28 días.
Recolección, preservación y almacenamiento de muestras.
Grasas y Aceites