Upload
others
View
26
Download
1
Embed Size (px)
Citation preview
Biomateriales
GRANDES O MEDIANOSDEFECTOS INFRAÓSEOS
GRANDES O MEDIANOSDEFECTOS PERI-IMPLANTARIOS
GRANDES O MEDIANOSDEFECTOS A DOS PAREDES
ELEVACIÓN DE SENO MAXILAR
AUMENTO DEL SENO MAXILAR
Indicaciones clínicas
11
ALVEOLOS POST-EXTRACCIÓN
100% mix de hueso cortical y esponjosoFotografía cortesía del Dr. Carlos Cruz Rodríguez
Apatos
Apatos
Composición 100% granulado mix Tiempo de reentrada Aprox. 5 meses
Imagen SEM de gránulos esponjosos OsteoBiol Apatos.
Fotografía cortesía del Prof. Ulf Nannmark.
MODO DE EMPLEO:
Apatos tiene que ser siempre
rehidratado mezclándolo con
unas pocas gotas de solución
fisiológica; puede ser también
mezclado con la sangre del
paciente.
Sustituto óseo en grano600-1000 micras
Apatos es un biomaterial de origen heterólogo
con características similares al hueso humano
mineralizado.
Puede ser utilizado como alternativa al hueso autólogo.
La consistencia natural y microporosa de Apatos
facilita la formación de nuevo tejido óseo en el
área del defecto, acelerando el proceso
fisiológico.
Similar al hueso humano
A1005FS
A1010FS Apatos Mix
Apatos Mix Envase 0,5 gr. (Aprox. 0,9 c.c.)
Envase 1 gr. (Aprox. 1,8 c.c.)
TSVA05 Apatos 0,5 gr. + TSV Gel 0,5 c.c.Kit Apatos + TSV Gel
TSVA10 Apatos 1 gr. + TSV Gel 1 c.c.Kit Apatos + TSV Gel
A0210FS Envase 1 gr. (Aprox. 2 c.c.)Apatos Mix 1000-2000 micras
A1020FS Apatos Mix Envase 2 gr. (Aprox. 3,6 c.c.)
12
100% hueso cortical y esponjoso colagenadoFotografía cortesía del Dr. Antonio Armijo Salto
ALVEOLOS POST-EXTRACCIÓN
PEQUEÑOS O MEDIANOSDEFECTOS PERI-IMPLANTARIOS
PEQUEÑOS O MEDIANOSDEFECTOS A DOS PAREDES
PEQUEÑOS O MEDIANOSDEFECTOS INFRAÓSEOS
AUMENTO DEL SENO MAXILAR
Indicaciones clínicas
Gen-Os
13
Gen-Os
Composición 100% granulado mix Tiempo de reentrada Aprox. 5 meses
Imagen SEM de un gránulo OsteoBiol Gen-Os® colonizado por
los osteoblastos a partir de una línea celular. Fotografía
cortesía del Prof. Ulf Nannmark.
MODO DE EMPLEO:
Debe estar siempre hidratado y
bien mezclado con unas gotas
de solución fisiológica estéril
para activar su matriz de
colágeno y aumentar su
adhesividad; también puede ser
mezclado con la sangre del
paciente.
Sustituto óseo en grano250-1000 micras
Gen-Os® se reabsorbe gradualmente y asegura una acción de soporte para la formación ósea, contribuyendo a preservar la forma y el volumen del injerto original (propiedad osteoconductiva).
Además, gracias a su contenido de colágeno, el producto facilita la formación del coágulo hemático y la consiguiente invasión de las células reparadoras y regeneradoras, favoreciendo la completa "restitución e integración" del déficit óseo.
Ventajas de los ”Dual-phase”
M1052FS
M1005FS Gen-Os
Gen-Os Envase 0,25 gr. (Aprox. 0,4 c.c.)
Envase 0,5 gr. (Aprox. 0,8 c.c.)
M1010FS Envase 1 gr. (Aprox. 1,6 c.c.)Gen-Os
TSVG05 Gen-Os 0,5 gr. + TSV Gel 0,5 c.c. Kit Gen-Os + TSV Gel
TSVG10 Gen-Os 1 gr. + TSV Gel 1 c.c.Kit Gen-Os + TSV Gel
14
Indicaciones clínicas
ALVEOLOSPOST-EXTRACCIÓN
ELEVACIÓN DE SENO MAXILAR
DEFECTOS A DOS PAREDES
REG. VERTICAL TÉCNICA INLAY (CON SP-BLOCK)
Hueso cortical y esponjoso con 10% de colágenoFotografía cortesía del Dr. Alvaro de la Riva
Mp3
15
Mp3
Histología de una biopsia a 24 meses. 48% hueso neoformado,
13% biomaterial residual. Fotografía cortesía del Dr. Roberto
Rossi.
MODO DE EMPLEO:
Mp3® está disponible en
jeringas listas para su
utilización y puede ser injertado
fácilmente omitiendo las fases
de hidratación y manipulación.
Después de adaptar el material
a la forma del defecto, es
necesario eliminar los residuos
no estables antes de proceder a
la sutura de los tejidos blandos.
Mp3® está compuesto de gránulos prehidratados
colagenados córtico-esponjosos pertinentemente
mezclados con OsteoBiol® Gel 0. Gracias a esta
característica, es posible omitir la fase de hidratación y así reducir el riesgo de una exposición accidental del material a agentes
patógenos durante la fase de preparación.
Gradualmente reabsorbible, preserva la forma y
el volumen del injerto original (propiedad
osteoconductiva).
Máximo rendimiento y manejo
Sustituto óseo en jeringa600-1000 micras
A3075FS
A3005FS Mp3
Mp3 Jeringa 0,25 c.c x 3 ud.
Jeringa 1 c.c
A3015FS Jeringa 0,5 c.c x 3 uds. Mp3
A3010FS Jeringa 2 c.c Mp3
A3210FS Jeringa 2 c.cMp3 1000-2000 micras
Composición Hueso porcino esponjoso y cortical prehidratado con 10% de colágeno.
Tiempo de reentrada Aprox. 5 meses, dependiendo de la zona en la que se produzca la regeneración y el volumen.
16
Indicaciones clínicas
AUMENTO DEL SENOMAXILAR. ACCESOCRESTAL
ALVEOLOSPOST-EXTRACCIÓN
DEFECTOSPERIIMPLANTARIOS
DEFECTOS PERIIMPLANTARIOSSI LAS PAREDES SON PRESERVADAS
SPLIT CREST
Putty
17
Pasta de mix de hueso con un 20% de colágenoFotografía cortesía del Dr. Antonio Armijo Salto.
Putty
Composición Mix de hueso porcino esponjoso y cortical con un 20% de colágeno.
Tiempo de reentrada Aprox. 4 meses
Hueso recién formado después del tratamiento con Putty. HTX -
eosina. Aumento x20. Fotografía cortesía del Prof. Ulf
Nannmark.
MODO DE EMPLEO:
Inyectar el producto y
adaptarlo a la morfología del
defecto sin comprimirlo; todos
los residuos no estables
deben retirarse antes de
suturar los tejidos blandos.
Sustituto óseo en jeringa≤300 micras
Se produce mediante un proceso exclusivo que
otorga al producto una plasticidad y maleabilidad
excepcional, facilitando su aplicación en alveolos
y en defectos con paredes.
El éxito del injerto necesita una completa estabilidad del biomaterial: por éste motivo,
Putty tiene que ser utilizado solo en una cavidad
capaz de contenerlo de modo estable. En ningún
caso tiene que ser injertado en defectos a dos
paredes o en procedimientos de elevación de
seno con acceso lateral.
Diseñado para defectos periimplantarios
HPT52S
HPT32S Putty
Putty Jeringa 0,25 c.c.
Jeringa 0,25 c.c. x 3 uds. Pack ahorro
HPT09S Jeringa 0,5 c.c. Putty
HPT35S
HPT61S
Jeringa 0,5 c.c. x 3 uds. Pack ahorro
Jeringa 1 c.c.
Putty
Putty
18
Diseñado para defectos periimplantariosFotografía cortesía del Dr. Walter Rao.
Indicaciones clínicas
MINIELEVACIÓN DE SENO MAXILAR. ACCESO CRESTAL
DEFECTOS INFRA-ÓSEOS Y RECESIÓN GINGIVAL
Gel 40
19
Gel 40
Hueso formado después del tratamiento con Gel 40. Biopsias
tomadas 5 semanas después del implantación en maxilares de
conejo. Fotografía cortesía del Prof. Ulf Nannmark.
MODO DE EMPLEO:
Las particulares características de
viscosidad y densidad del Gel
40 facilitan la manipulación del
producto, proporcionando un
soporte pegajoso. Si la
viscosidad es excesiva, se deben
añadir unas pocas gotas de
solución salina estéril templada y
remezclar todo cuidadosamente
para conseguir la densidad
deseada.
Sustituto óseo en jeringa≤300 micras
Gel 40 está compuesto por una matriz de
colágeno (tipo I y III) obtenida mediante el
exclusivo proceso de Tecnoss®.
El producto se encuentra en estado gel a
temperaturas inferiores a 30ºC; a temperaturas
más altas, la viscosidad se reduce y Gel 40 puede
ser mezclado con fármacos hidrosolubles y/o
liposolubles.
Gel 40 facilita la formación de un coágulo hemático primario y la consiguiente invasión
de células reparadoras y regeneradoras.
Ideal para bolsas periodontales
Composición 60% granulado mix, 40% gel de colágeno tipo I y III.
Tiempo de reentrada Aprox. 4 meses.
15GEL40S Jeringa 0,5 c.c. x 3 Uds. Pack ahorroGel 40
05GEL40S Jeringa 0,5 c.c.Gel 40
20
Combinación única para la estabilización del injertoFotografía cortesía del Dr. Roberto Rossi.
REGENERACIÓNALVEOLAR
DEHISCENCIAS AUMENTOHORIZONTAL
DEFECTOS INFRAÓSEOS
Indicaciones clínicas
TSV Gel
21
Tsv Gel
Hueso formado alrededor de una partícula de Gen-Os® mezclada
con OsteoBiol TSV Gel, 2 semanas después de injertarla en un
conejo. Fotografía cortesía del Prof. Ulf Nannmark.
MODO DE EMPLEO:
Antes de utilizar TSV Gel, debe refrigerarse durante al menos 20 minutos a 4 °C para
poder alcanzar la fase de baja
viscosidad, lo que facilita su
mezcla con OsteoBiol® Gen-Os®
u OsteoBiol® Apatos.
Sustituto óseo + gel250-1000 micras
La viscosidad alcanzada por TSV Gel a
temperatura corporal, mejora significativamente
la estabilidad de los gránulos de Gen-Os® y
Apatos y es beneficiosa en casos donde haya escaso soporte óseo alrededor del defecto,
por ejemplo, aumento lateral, alveolos con una
pared bucal comprometida, dehiscencias y
defectos periodontales a una y dos paredes.
Además, la viscosidad de TSV Gel mejora la
estabilidad y la manipulación de las membranas
Evolution durante la delicada fase de cierre del colgajo.
Para una mayor estabilidad del injerto
Composición Gel de colágeno heterólogo tipo I y III y copolímero termogelificante biocompatible.
Tiempo de reentrada 4/5 meses, dependiendo de las características de la zona del injerto.
TSVA05
TSVA10 Kit Apatos + TSV Gel
Kit Apatos + TSV Gel Apatos 0,5 gr. + TSV Gel 0,5 c.c.
Apatos 1 gr. + TSV Gel 1 c.c.
TSVG05 Gen-Os 0,5 gr. + TSV Gel 0,5 c.c.Kit Gen-Os + TSV Gel
TSVG10 Gen-Os 1 gr. + TSV Gel 1 c.c.Kit Gen-Os + TSV Gel
22
Membrana revestida de huesoFotografía cortesía del Dr. José Luis Calvo Guirado
Indicaciones clínicas
DEFECTOS INFRAÓSEOS
ALVEOLOSPOST-EXTRACCIÓN
Duo-Teck
23
Duo-Teck
Composición Fieltro de colágeno y gránulos de hueso con colágeno ≤ 300 µm.
Tiempo de reabsorción En los primeros 60 días, según las características de la
zona del injerto.
Membrana Duo-Teck 20 x 20 x (1) mm
Imagen SEM de OsteoBiol Duo-Teck.
Fotografía cortesía del Politécnico de Torino, Italia.
MODO DE EMPLEO:
Rehidratar con solución
fisiológica tibia. Posicionar
directamente el lado con el
hueso micronizado en contacto
con el injerto y el lado liso en
contacto con los tejidos blandos.
MembranaAprox. 1mm
Duo-Teck es una membrana constituida por
colágeno liofilizado de origen equino,
biocompatible y con una rápida reabsorción.
Duo-Teck se diferencia de otras membranas
debido a que por un lado ha sido revestida con una película de hueso micronizado, también
de origen equino.
Este revestimiento aumenta la compactibilidad y la
estabilidad.
Biocompatible y de rápida absorción
DT020
24
Indicaciones clínicas
SEPARACIÓN Y PROTECCIÓN DETEJIDOS DUROS Y BLANDOS
Duo-teck Felt
Colágeno liofilizado para separación de tejidos Fotografía cortesía del Dr. Antonio Murillo Rodríguez.
25
Duo-Teck Felt
Membrana Duo-Teck Felt fijada con chinchetas.Fotografía cortesía del Dr. Antonio Murillo Rodríguez
MODO DE EMPLEO:
Duo-Teck Felt debe ser retirada del
envase con pinzas estériles y ser
colocada sobre la zona receptora.
En caso de exposición accidental de
la membrana, solamente se
recomienda su extracción en caso de
evidente superinfección, debido a
que la consistencia y plasticidad del
producto permiten una curación de
la herida por segunda intención.
Duo-Teck Felt es una membrana constituida
por colágeno liofilizado equino,
biocompatible y con una rápida reabsorción.
Se trata de una membrana para separar los tejidos, entre los bordes gingivales
reposicionados y el tejido óseo que se
encuentra debajo.
De hecho, Duo-Teck Felt se puede utilizar en
todos los casos que necesiten de una simple
separación entre tejidos con una consistencia
diferente y durante un corto espacio de
tiempo.
Caja 6 Uds Membrana Duo-Teck felt 25 x 25 x (0,2) mmDTN625
Composición Fieltro de colágeno liofilizado equino.
Tiempo de reabsorción En los primeros 60 días, según las características de la
zona del injerto.
MembranaAprox. 0,2 mm
Para una separación de tejidos con una consistencia diferente
26
Membrana 100% pericardioFotografía cortesía del Dr. Rosario Sentineri
Indicaciones clínicas
DEFECTOS A DOS PAREDES. EVOLUTIONSTANDARD
DEFECTOS PERIIMPLAN-TARIOS. DEHISCENCIA Y FENESTRACIÓN
ALVEOLOS POST-EXTRACCIÓN
DEFECTOS INFRAÓSEOS. EVOLUTION FINA
REGENERACIÓNVERTICAL TÉCNICA INLAY.EVOLUTION STANDARD
ELEVACIÓN DE SENOMAXILAR. ACCESOCRESTAL
Evolution
27
Evolution
Imagen SEM del lado rugoso de una membrana Osteobiol
Evolution. Cortesía del Prof. José Luis Calvo Guirado.
MODO DE EMPLEO:
La membrana puede ser
modelada con la forma
deseada con unas tijeras
estériles; posteriormente debe
ser hidratada con solución
fisiológica estéril tibia.
MembranaX-Fina: 0,2 mm/ Fina: 0,4 mm / Std: 0,6 mm
Obtenidas de tejidos mesenquimales las
membranas Evolution son completamente reabsorbibles. Su estructura constituida por
densas fibras de colágeno ofrece:
>> la máxima adaptabilidad
>> seguridad a la hora de suturar
>> estabilidad y protección prolongada
Elevada consistencia y resistencia
EM02HS Evolution STD 20 x 20 x (0,6) mm
EM03HS Evolution STD 30 x 30 x (0,6) mm
EMOHS Oval 25 x 35 x (0,6) mmEvolution STD
EM02XS 20 x 20 x (0,2) mmEvolution X-FINA
Composición Equino (fina) / Porcino (standard y X-fina)
Tiempo de reabsorción X-Fina: aprox. 2 meses. Fina: aprox. 3 meses. Standard: aprox. 4 meses.
EV04LLE 40 x 40 (0,4) mmEvolution FINA
EV02LLE 20 x 20 x (0,4) mmEvolution FINA
EV03LLE 30 x 30 x (0,4) mmEvolution FINA
EVOLLE Oval 25 x 35 x (0,4) mmEvolution FINA
EV06LLE 80 x 60 (0,4) mmEvolution FINA
28
Diseñada para defectos periimplantariosFotografía cortesía del Dr. Pablo Bustillo Hernández
Indicaciones clínicas
RECESIÓN GINGIVAL
ALVEOLOSPOST-EXTRACCIÓN
DEFECTOS A DOS PAREDES
Derma
29
Derma
Composición 100% Dermis porcina
Tiempo de integración X-Fina: ≈ 2 meses. Fina: ≈ 3 meses. Std: ≈ 4 meses
Imagen SEM de OsteoBiol Derma.
Fotografía cortesía del Politécnico de Torino, Italia.
MODO DE EMPLEO:
La membrana Derma puede ser
modelada con tijeras hasta
alcanzar las dimensiones
deseadas, tiene que ser
hidratada durante 15 min. con
solución fisiológica estéril tibia.
MembranaX-Fina: 0,6mm / Fina 0,8-1mm / Std: 2mm
Obtenida de la dermis de origen porcino, es
completamente reabsorbible.
Su fuerte consistencia y resistencia permiten una
estabilización perfecta y una protección
prolongada del injerto subyacente en los
procedimientos de grandes regeneraciones, junto
con una acción de fuerte barrera para guiar el crecimiento del tejido epitelial y previniendo su invaginación.
100% dermis. Std, Fina, Oval y X-Fina
ED03SS
ED05SS Derma STD
Derma STD 30 x 30 x (2) mm
50 x 50 x (2) mm
ED75SS 7 x 5 x (2) mmDerma STD
ED15SS 15 x 5 x (2) mmDerma STD
ED02LS 20 x 20 x (0,6) mmDerma X-FINA
30
ED21FS Oval 12 x 8 x (0,8-1) mm
ED25FS 25 x 25 x (0,8-1) mm
ED05FS 50 x 50 x (0,8-1) mmDerma FINA
Derma FINA
Derma FINA
100% hueso corticalLámina cortical. Fotografía cortesía del Dr. Antonio Armijo Salto
Indicaciones clínicas
REG. HORIZONTAL DEFECTOS A DOSPAREDES. (L.CURVA)
ELEVACIÓN DE SENOACCESO LATERAL
AUMENTO DECRESTA. (L.CURVA)
Lámina cortical
31
Lámina cortical
Composición Hueso cortical porcino con colágeno
Tiempo de reabsorción Fina: ≈ 5 meses. Curva y Medium: ≈ 6 meses. Std: ≈ 8 meses.
Imagen LM de Lámina OsteoBiol hidratada con sangre:
vascularización aumentada por la presencia de canales
vasculares originales. Fotografía cortesía del Prof. Ulf Nannmark.
MODO DE EMPLEO:
Puede ser injertada sin
hidratación aunque es
recomendable humedecerla
levemente para que su forma se
adapte a la morfología del
defecto. Normalmente debe
inmovilizarse con microtornillos
de titanio. En caso de exposición,
permite lograr una completa
curación por segunda intención
de la herida.
LáminaFina 0,5mm / Curva: 0,9mm / Medium: 1mm / Std: 2mm
Las Láminas Corticales OsteoBiol® son
fabricadas con hueso cortical producidas con un
método exclusivo de Tecnoss® que evita la
ceramización de los cristales de hidroxiapatita,
acelerando la reabsorción fisiológica.
Después de un proceso de descalcificación
superficial, adquiere una consistencia elástica, manteniendo la compatibilidad típica
del tejido óseo original; los márgenes son suaves
para no causar microtraumas a los tejidos
circundantes.
Márgenes suaves para evitar microtraumas
LS23FS
LS10HS
35 x 25 (0,5) mm
35 x 35 x (0,9) mm
LS25FS 25 x 25 x (0,5) mmLámina cortical fina
Lámina cortical oval fina
Lámina cortical curva
LS24LS 20 x 40 x (1) mmLámina cortical medium
LS03SS 30 x 30 x (2) mmLámina cortical standard
32
Diseñada específicamente para técnica de encofradoFotografía cortesía del Dr. Angel Manchón
Indicaciones clínicas
TÉCNICA DE ENCOFRADO
Lámina Rígida
33
Lámina Rígida
Composición Hueso cortical porcino con colágeno
Tiempo de reabsorción De 4-8 meses para conseguir una nueva cresta.
Imagen regeneración ósea con Lámina Rígida OsteoBiol
Fotografía cortesía del Dr. Jesús Torres.
MODO DE EMPLEO:
La Lámina rígida tiene una
consistencia totalmente rígida, se
puede cortar hasta conseguir el
tamaño deseado y no es
necesario que se hidrate
previamente.
LáminaRígida: 1mm
La Lámina rígida ha sido diseñada para la
reconstrucción del suelo orbital y para la
reconstrucción de la pared después de un trauma.
Una de las indicaciones clínicas para la que está
recomendada es la técnica de encofrado,
documentada por el Prof. Khoury, que ha
supuesto una revolución en el campo de la
regeneración ósea.
Puede cubrirse con membranas Derma X-Fina,
Evolution X-Fina o Duo Teck felt para asegurar
mayor cobertura tisular.
100% hueso cortical
LS35LS 35 x 35 (1) mmLámina cortical rígida
34
Indicaciones clínicas
AUMENTO VERTICAL EN MANDÍBULA MEDIANTE TÉCNICA INLAY
DEFECTOS ÓSEOS DE GRAN TAMAÑO
Bloque rígido 100% hueso esponjosoSp-Block. Fotografía cortesía del Dr. Pietro Felice
Sp-Block
35
Sp-Block
Composición Hueso esponjoso heterólogo
Tiempo de reentrada Aprox. 6 meses, variable según las características y la
vascularización de la zona del injerto, además de las condiciones clínicas del paciente
Imagen SEM de un bloque esponjoso OsteoBiol
Fotografía cortesía del Prof. Ulf Nannmark, Univ. Gotemburgo.
MODO DE EMPLEO:
Debe ser hidratado durante
5/10 min. para después
adaptarse al sitio receptor, el
cual debe estar correctamente
decorticado para garantizar el
máximo contacto. Debe fijarse
con tornillos de osteosíntesis y
podría ser protegido con una
barrera reabsorbible (Evolution).
Bloque rígido
Sp-Block soporta la formación de nuevo hueso: gracias a su consistencia rígida y a su
forma, es capaz de mantener en el tiempo el volumen del injerto original, lo cual es
particularmente importante en los casos de
grandes regeneraciones.
Es recomendable rellenar los huecos del bloque
con un biomaterial en gránulos para lograr el
volumen y contorno deseado.
Soporta la formación de nuevo hueso
BN0E
BN1E Sp-Block
Sp-Block Bloque 10 x 10 x 10 mm
Bloque 10 x 10 x 20 mm
BN2E Bloque 10 x 20 x 20 mmSp-Block
BN8E Bloque 35 x 10 x 5 mmSp-Block
36
OsteoBiol®
Literatura científica
BARONE A, TOTI P, QUARANTA A, ALFONSI F, CUCCHI A, NEGRI B, DI FELICE R, MARCHIONNI S, CALVO-GUIRADO JL, COVANI U, NANNMARK UCLINICAL AND HISTOLOGICAL CHANGES AFTER RIDGE PRESERVATION WITH TWO XENOGRAFTS: PRELIMINARY RESULTS FROM A MULTICENTER RANDOMIZED CONTROLLED CLINICAL TRIALJOURNAL OF CLINICAL PERIODONTOLOGY, 2017 FEB;44(2):204-214. EPUB 2017 JAN 10J CLIN PERIODONTOL, 2017 FEB;44(2):204-214. EPUB 2017 JAN 10
BARONE A, ALFONSI F, BORGIA V, IEZZI G, PIATTELLI A, COVANI U, TONELLI PMOLECULAR, CELLULAR AND PHARMACEUTICAL ASPECTS OF FILLING BIOMATERIALS DURING THE MANAGEMENT OF EXTRACTION SOCKETSCURRENT PHARMACEUTICAL BIOTECHNOLOGY, 2017;18(1):64-75. EPUB 2016 DEC 23CURR PHARM BIOTECHNOL, 2017;18(1):64-75. EPUB 2016 DEC 23
BARONE A, TOTI P, MENCHINI FABRIS GB, MARCHIONNI S, COVANI UEARLY VOLUMETRIC CHANGES AFTER VERTICAL AUGMENTATION OF THE ATROPHIC POSTERIOR MANDIBLE WITH INTERPOSITIONAL BLOCK GRAFT VERSUS ONLAY BONE GRAFT: A RETROSPECTIVE RADIOLOGICAL STUDYJOURNAL OF CRANIO-MAXILLOFACIAL SURGERY, 2017 SEP;45(9):1438-1447.EPUB JAN 25 2017J CRANIO-MAXILLOFAC, 2017. SEP;45(9):1438-1447.EPUB JAN 25 2017
BARONE A, TOTI P, FUNEL N, CAMPANI D, COVANI UEXPRESSION OF SP7, RUNX1, DLX5, AND CTNNB1 IN HUMAN MESENCHYMAL STEM CELLS CULTURED ON XENOGENEIC BONE SUBSTITUTE AS COMPARED WITH MACHINED TITANIUMIMPLANT DENTISTRY, 2014 AUG;23(4):407-15IMPLANT DENT, 2014 AUG;23(4):407-15
LOZANO CARRASCAL N, DELGADO RUIZ RA, GARGALLO ALBIOL J, MATÉ SÀNCHEZ JE, HERNANDEZ ALFARO F, CALVO GUIRADO JLXENOGRAFTS SUPPLEMENTED WITH PAMINDRONATE PLACED IN POSTEXTRACTION SOCKETS TO AVOID CRESTAL BONE RESORPTION. EXPERIMENTAL STUDY IN FOX HOUND DOGSCLIN ORAL IMPLANTS RES, 2016 FEB;27(2):149-55
ESPOSITO M, ZUCCHELLI G, CANNIZZARO G, CHECCHI L, BARAUSSE C, TRULLENQUE-ERIKSSON, FELICE PIMMEDIATE, IMMEDIATE-DELAYED (6 WEEKS) AND DELAYED (4 MONTHS) POST-EXTRACTIVE SINGLE IMPLANTS: 1-YEAR POST-LOADING DATA FROM A RANDOMISED CONTROLLED TRIALEUR J ORAL IMPLANTOL, 2017;10(1):11-26
GIULIANI A, IEZZI G, MAZZONI S, PIATTELLI A, PERROTTI V, BARONE AREGENERATIVE PROPERTIES OF COLLAGENATED PORCINE BONE GRAFTS IN HUMAN MAXILLA: DEMONSTRATIVE STUDY OF THE KINETICS BY SYNCHROTRON RADIATION MICROTOMOGRAPHY AND LIGHT MICROSCOPYCLINICAL ORAL INVESTIGATIONS, 2017 JUN 2 EPUB AHEAD OF PRINT
BARONE A, TOTI P, MENCHINI-FABRIS GB, DERCHI G, MARCONCINI S, COVANI UEXTRA ORAL DIGITAL SCANNING AND IMAGING SUPERIMPOSITION FOR VOLUME ANALYSIS OF BONE REMODELING AFTER TOOTH EXTRACTION WITH AND WITHOUT 2 TYPES OF PARTICULATE PORCINE MINERAL INSERTION: A RANDOMIZED CONTROLLED TRIALCLINICAL IMPLANT DENTISTRY AND RELATED RESEARCH, 2017 AUG;19(4):750-759. EPUB 2017 MAY 16CLIN IMPLANT DENT RELAT RES, 2017 AUG;19(4):750-759. EPUB 2017 MAY 16
IEZZI G, PIATTELLI A, GIULIANI A, MANGANO C, BARONE A, MANZON L, DEGIDI M, SCARANO A, FILIPPONE A, PERROTTI VMOLECULAR, CELLULAR AND PHARMACEUTICAL ASPECTS OF FILLING BIOMATERIALS DURING MAXILLARY SINUS-LIFT PROCEDCURES. PART 2: DETAILED CHARACTERISTICS OF THE MATERIALSCURRENT PHARMACEUTICAL BIOTECHNOLOGY, 2017, 18, 33-44. EPUB 2016 DEC 1CURR PHARM BIOTECHNOL, 2017, 18, 33-44. EPUB 2016 DEC 1
SCARANO A, CRINCOLI V, DI BENEDETTO A, COZZOLINO V, LORUSSO F, PODALIRI VULPIANI M, GRANO M, KALEMAJ Z, MORI G, GRASSI FRBONE REGENERATION INDUCED BY BONE PORCINE BLOCK WITH BONE MARROW STROMAL STEM CELLS IN A MINIPIG MODEL OF MANDIBULAR “CRITICAL SIZE” DEFECTSTEM CELLS INTERNATIONAL, 2017;2017:9082869STEM CELLS INT, 2017;2017:9082869
SCARANO ATRADITIONAL POSTEXTRACTIVE IMPLANT SITE PREPARATION COMPARED WITH PRE-EXTRACTIVE INTERRADICULAR IMPLANT BED PREPARATION IN THE MANDIBULAR MOLAR REGION, USING AN ULTRASONIC DEVICE: A RADOMIZED PILOT STUDYINT JOURNAL OF ORAL AND MAXILLOFACIAL IMPLANTS, 2017 MAY/JUN;32(3):655-660INT J ORAL MAXILLOFAC IMPLANTS, 2017 MAY/JUN;32(3):655-660
FELICE P, BARAUSSE C, BARONE A, ZUCCHELLI G, PIATTELLI M, PISTILLI R, IPPOLITO DR, SIMION MINTERPOSITIONAL AUGMENTATION TECHNIQUE IN THE TREATMENT OF POSTERIOR MANDIBULAR ATROPHIES: A RETROSPECTIVE STUDY COMPARING 129 AUTOGENOUS AND HETEROLOGOUS BONE BLOCKS WITH 2 TO 7 YEARS FOLLOW-UPINT JOURNAL OF PERIODONTICS AND RESTORATIVE DENTISTRY, 2017 JUL/AUG;37(4):469-480INT J PERIODONTICS RESTORATIVE DENT, 2017 JUL/AUG;37(4):469-480
IIDA T, CARNEIRO MARTINS NETO E, BOTTICELLI D, APAZA ALCCAYHUAMAN KA, LANG NP, XAVIER SPINFLUENCE OF A COLLAGEN MEMBRANE POSITIONED SUBJACENT THE SINUS MUCOSA FOLLOWING THE ELEVATION OF THE MAXILLARY SINUS. A HISTOMORPHOMETRIC STUDY IN RABBITSCLINICAL ORAL IMPLANTS RESEARCH, 2017 JUN 7. EPUB AHEAD OF PRINTCLIN IMPLANT DENT RELAT RES, 2017 JUN 7. EPUB AHEAD OF PRINT
DE MARCO P, ZARA S, DE COLLI M, RADUNOVIC M, LAZOVIC V, ETTORRE V, DI CRESCENZO A, PIATTELLI A, CATALDI A, FONTANA AGRAPHENE OXIDE IMPROVES THE BIOCOMPATIBILITY OF COLLAGEN MEMBRANES IN AN IN VITRO MODEL OF HUMAN PRIMARY GINGIVAL FIBROBLASTSBIOMEDICAL MATERIALS, 2017 SEP 13;12(5):055005. EPUB 2017 JUN 13BIOMED MATER, 2017 SEP 13;12(5):055005. EPUB 2017 JUN 13
MIJIRITSKY E, FERRONI L, GARDIN C, BRESSAN E, ZANETTE G, PIATTELLI A, ZAVAN BPORCINE BONE SCAFFOLDS ADSORB GROWTH FACTORS SECRETED BY MSCS AND IMPROVE BONE TISSUE REPAIRMATERIALS, 2017 SEP 8;10(9)
ROSSI R, FOCE E, SCOLAVINO STHE CORTICAL LAMINA TECHNIQUE: A NEW OPTION FOR ALVEOLAR RIDGE AUGMENTATION. PROCEDURE, PROTOCOL, AND CASE REPORTJOURNAL OF THE LEBANESE DENTAL ASSOCIATION, 2017 JAN-JUN; 52(1):35-41J LEBANESE DENTAL ASS, 2017 JAN-JUN; 52(1):35-41
CHECCHI V, FELICE P, ZUCCHELLI G, BARAUSSE C, PIATTELLI M, PISTILLI R, GRANDI G, ESPOSITO MWIDE DIAMETER IMMEDIATE POST-EXTRACTIVE IMPLANTS VS DELAYED PLACEMENT OF NORMAL-DIAMETER IMPLANTS IN PRESERVED SOCKETS IN THE MOLAR REGION: 1-YEAR POST-LOADING OUTCOME OF A RANDOMISED CONTROLLED TRIALEUROPEAN JOURNAL OF ORAL IMPLANTOLOGY, 2017;10(3):263-278EUR J ORAL IMPLANTOL, 2017;10(3):263-278
CRESPI R, CAPPARÈ P, GHERLONE ECOMPARISON OF MAGNESIUM-ENRICHED HYDROXYAPATITE AND PORCINE BONE IN HUMAN EXTRACTION SOCKET HEALING: A HISTOLOGIC AND HISTOMORPHOMETRIC EVALUATIONINT JOURNAL OF ORAL AND MAXILLOFACIAL IMPLANTS, 2011 SEP-OCT;26(5):1057-62INT J ORAL MAXILLOFAC IMPLANTS, 2011 SEP-OCT;26(5):1057-62
CORBELLA S, TASCHIERI S, FRANCETTI L, WEINSTEIN R, DEL FABBRO MHISTOMORPHOMETRIC RESULTS AFTER POSTEXTRACTION SOCKET HEALING WITH DIFFERENT BIOMATERIALS: A SYSTEMATIC REVIEW OF THE LITERATURE AND META-ANALYSISINT JOURNAL OF ORAL AND MAXILLOFACIAL IMPLANTS, 2017 SEP/OCT;32(5):1001–1017INT J ORAL MAXILLOFAC IMPLANTS, 2017 SEP/OCT;32(5):1001–1017
RADUNOVIC M, DE COLLI M, DE MARCO P, DI NISIO C, FONTANA A, PIATTELLI A, CATALDI A, ZARA SGRAPHENE OXIDE ENRICHMENT OF COLLAGEN MEMBRANES IMPROVES DPSCS DIFFERENTIATION AND CONTROLS INFLAMMATION OCCURRENCEJOURNAL OF BIOMEDICAL MATERIALS RESEARCH. PART A, 2017 AUG;105(8):2312-2320J BIOMED MATER RES A, 2017 AUG;105(8):2312-2320
Últimas publicaciones año 2017
Consultar publicaciones anteriores en www.osteobiol.com
37