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光生体エネルギー研究室(G研)
生命が行う光エネルギー変換反応「光合
成」のメカニズムを、様々な物理学的手法
を用いて原子・分子レベルで解明する。
研究室の目標:
なぜ「光合成」?
化学エネルギー
光エネルギー
① 最も基本的な生命反応全生命のエネルギー源
• 地球最大規模の生体エネルギー変換反応
• 地球上の全生命のエネルギー源
酸素植物 動物
太陽光二酸化炭素
糖光合成 呼吸
② 酸素の供給源:生命の進化
酸素:21%
二酸化炭素:0.04%
50億年前
地球の誕生
シアノ
バクテリア
O2発生
40 30 20 10 0
オゾン層生命誕生
光合成細菌
21%
葉緑体
太陽光エネルギー利用
呼吸生命の進化
地球と生命の共進化
太陽光エネルギー →地球の総エネルギー使用量の3万倍
化石燃料枯渇、CO2・地球温暖化問題
• 太陽光エネルギー利用
光合成の利用、人工光合成系の開発
光合成 → 2000億トン⁄年間のCO2固定
③エネルギー問題・地球温暖化問題
• CO2削減
光合成:光エネルギー変換
6CO2 + 6H2O → C6H12O6 + 6O2
光エネルギー
二酸化炭素 水 糖 酸素化学エネルギー
太陽光エネルギー
化学エネルギー
電気エネルギー
蓄積不能
蓄積可能
光,電子,電位,励起状態,プロトン,
水,酸素,色素,金属イオン,蛋白質,
生体膜 .......
物理、化学、生物のすべての要素を含む。
光合成 key words
生物 化学
工学
光合成:学際的な研究
農学
物理
光合成
研究内容
CO2 C6H12O6
e-
還元二酸化炭素 糖
ATPNADPH
e-
H2O
O2
光合成プロセス
水太陽光
H+
光エネルギー変換過程
水分解
光化学系Ⅱ
H2O
H+
O2
地球上の酸素のすべてを作り出す。
Mn4CaO5 cluster
水分解・酸素発生機構の解明
2H2O → O2 + 4H+ + 4e−
光合成研究最大の謎
S3 S4
S0
S1
S2
O2
hn
hn
hn
hn
H+
H+
H+
H+
H2OH2O
YZ
D1-H190
CP43-E354
D1-E189
D1-A344
D1-D342
D1-H332D1-E333
D1-D61
D1-D170
Mn1
Mn2
Mn3
Mn4
Ca
e-
H+
H+
酸素発生Mnクラスター 反応サイクル
•水は如何にして酸化されるか?
QAQB
Pheo
P680
Mn cluster
Cytb559
YZ
e-
YD
ChlZ
caro
O2
H+
H+H+
H+H2O H2O
H+
PQH2
H+
PQ
ChlD1
光駆動電子移動の機構解明
•如何にして電子の流れを制御するか?
•非対称的電子移動の謎
QA QB
e-
どうやって電子移動をコントロール?
キノン電子受容体
クロロフィル二量体
•水を酸化するための極めて高い酸化力の獲得機構は?
植物の環境応答機構の解明
強光
光傷害・光阻害
光保護機構
光化学系Ⅱの光保護機構
• クロロフィル励起三重項の緩和
• pHに依存した電子移動制御
QA
Pheo
YZ
QB
P680
Mn4Ca
ChlD1
hν
2H+pH↑
e-
QA
Pheo
QBH2
P680
ChlD1 1O2*3
活性酸素
~10 μs
+
Nozawa and Noguchi, 2018
光化学系Ⅱ光合成細菌
~25 億年前
O2+ 4H+2H2O
H2S有機酸
Mnクラスター
P680P870
e- e-
光合成の進化
•光合成生物は如何にして進化し、酸素を発生するようになったか?
2H2O → O2 + 2H2
人工光水分解ナノデバイスの開発
人工光合成
2H2O 4H+
Au
光化学系Ⅱ 白金ナノ粒子
2H2
4e-
O2 + 4H+
金ナノ粒子光化学系Ⅰ
0.8
0.6
0.4
0.2
0.0
Tim
e (
ns)
720710700690680670660
Wavelength (nm)
Kawahara et al., 2020 Tahara et al., 2016
20 nm
GNP
PSII dimer
PSI trimer
2H2O
O2 + 4H+
e−
手法
Mn4CaO5
cluster
YZ YDP680
ChlD1
PheoD1
QAQB
Fe
e−
e−
O2H+
H2OH2O H+
H+ H+
赤外分光
電子スピン共鳴
光、低温 電極
反応コントロール
光合成電子移動
野口
三野
加藤
光合成の光エネルギー変換機構の解明
水分解・酸素発生
分子生物学・生化学•変異導入•同位体置換•再構成
CO2
計算科学•密度汎関数法•QM/MM法
分光解析
嶋田
赤外分光法 光誘起FTIR差スペクトル法
•赤外光吸収により分子振動を検出
•光反応による微小構造変化を観測
•蛋白質、コファクター、基質、水分子の構造・反応の原子レベル解析
水分解系:FTIRスペクトル
1800 1700 1600 1500 1400 1300 1200
Wavenumber/cm-1
ΔA
10-4
2nd flashS2 → S3
3rd flashS3 → S0
4th flashS0 → S1
1st flashS1 → S2
タンパク質振動領域
Mn cluster
O2
S1
S0S2
S3 S4
S-state cycleNoguchi and Sugiura, 2002
YZH+
~200 μs
e-1-2 ms
H+
H+
O2
時間分解赤外分光法
電子移動とプロトン移動の観測
6
4
2
0
A
/10
-4
6543210
Time/ms
S3→S4→S0190 μs
60 μs 1.6 ms
1.2 ms
2500 cm-1: H+
1400 cm-1: COO−
H+
e-
Noguchi et al., Biochemistry, 2012
A
3000200010000
Time (µs)
A
3000200010000
Time (µs)
H2O D2O4000 cm-1
2500 (1900) cm-1
1514 cm-1
1400 cm-1
1256 cm-1
H-bond
P680+
YZ•
Mn cluster
YZ
H+
H2O
YZ•
H2O
W3
W2
W1
W4
D61
e-
4 1
P680+ YZ•S2 YZ
•’S2’ YZS3
H+ e−H2O
~350 μs~100 μs~10 μsS2→S3 遷移
Sakamoto et al., JACS, 2017
• 水分解反応における電子・プロトン移動過程を直接検出
電子スピン共鳴
Inte
nsity
4000350030002500
Magnetic Field (G)
control
+ NH4Cl
+ NaCl
•電子スピンを検出することにより、電子移動反応を追跡
•コファクターの電子状態、距離、蛋白質の運動、相互作用を解析
electrochemical cell for FTIR
FTIR instrumentation
分光電気化学計測•電極反応を用いて光合成反応を制御•電子伝達成分の酸化還元電位の精密測定
QBQA Fe
PheoD1 PheoD2
ChlD1 ChlD2
P680YZ YD
Mn4CaO5
1.0
0.5
0.0
Re
lative
in
tnsity (
)
E (mV vs. SHE)
+100 +200
intact
Mn dep.
Em = +93 mV
Em = +87 mV
0
−100
+100
QA−/QA
QB−/QB
P680+
E m(m
V vs.
SH
E)Mn dep
Pheo−
e-
キノン電子受容体の電子移動制御機構
Kato et al., PNAS, 2016
• 末端キノン電子受容体QBの電位を初めて検出
• キノンの電子移動制御機構を解明
熱発光
P
A
D
-
+
P
A
D
-
+
A
D
-
+
光照射 凍結 昇温 発光
P
•電荷再結合の温度を測定•電荷分離状態のポテンシャルを計測
∆G
D+A-
P*
P
量子化学計算
600
500
400
300
200
100
0
IR inte
nsity (
km
mol-1
)
1520 1500 1480 1460 1440 1420 1400
Wavenumber (cm-1
)
nCOas+nCC+Me 1479
nCC
+CH
+Me1504
Me
+nCC
+nCOas 1468
Me
+nCOas1487 nCC
+Me1412
キノン電子受容体
•密度汎関数法(DFT)、quantum mechanics/molecular mechanics (QM/MM)法などの量子化学計算により、分子の構造、エネルギー、振動を計算
•実験データの理論解析
Mnクラスター
DFT計算
1.2
78
1.2
79
1
4
2
3 5
6
QM/MM計算
水分解系の振動構造の解明
Ca
Cl
Mn1
Mn4
Mn3 Mn2
O5
O4O2
O1
O3
W4W3
W2
W1
W7W6
W5
W8
W9
YZH190
E189
D61
D170
D2-K317
N181
Q165
F182
S169
a
b
b
aa
b
b
aab
b
a
a
b
b
b
a
a
6000
4000
2000
0
-2000
IR I
nte
nsity (
km
/mol)
3200 3000 2800 2600 2400
Wavenumber (cm-1
)
1a,2b 2b,1a
1a
2b5a,6a,7a,2a,3b 1a,2b
5a,6a,7a,
2a,3b
2b,1a
strongly H-bonded OH
experimentsimulation
S2 Mn1(IV)
S2 Mn4(IV)
S1
Nakamura et al., Biochemistry, 2016
-1000
-500
0
500
1000
IR I
nte
nsity (
km
/mo
l)
1450 1400 1350 1300 1250
Wavenumber (cm-1
)
E1
89
A3
44
E1
89
A3
44
D17
0E
35
4,D
34
2
D61
,D34
2
D34
2,E
35
4,D
61
,E1
89
,A3
44
E1
89
,E3
54
,A3
44
E3
33
D17
0
E1
89
,E3
54
D61
,D34
2
D34
2,D
61
E1
89
E1
89
A3
44E1
89
A3
44
E3
33
,D17
0
D17
0
D17
0,E
33
3
D34
2,E
18
9
E1
89
,E3
54
,D34
2
E1
89
,A3
44
,D34
2,E
354
E3
54
D61
,D34
2
D34
2,D
61
E1
89
D61
,E1
89
,D34
2,A
34
4
E3
33
experimentsimulation
symmetric COO- region
Nakamura et al., PNAS, 2016
W2
W3
D61E333
W1
W4
D342
E189
A344
E354
D170
123
4
CaO5
O1
O3
O2
O4
• K. Kawahara, N. Inoue-Kahino, K. Namie, Y. Kato, T. Tomo, Y. Shibata, Y. Kashino, and T. Noguchi, Biomed. Spectrosc. Imaging 9, 73-81 (2020).
• Y. Kato, S. Haniu, Y. Nakajima, F. Akita, J.-R. Shen, and T. Noguchi, J. Phys. Chem. B, 124, 121-127 (2020). • S. Nakamura and T. Noguchi, Chem. Phys. Lett., 721, 62-67 (2019). • H. Takemoto, M. Sugiura, and T. Noguchi, Biochemistry, 58 4276-4283 (2019). • T. Shimizu, M. Sugiura, and T. Noguchi, J. Phys. Chem. B 122, 9460–9470 (2018)• H. Yata, and T. Noguchi, Biochemistry 57, 4803−4815 (2018).• Y. Nozawa, and T. Noguchi, Biochemistry 57, 2828-2836 (2018).• K. Ozeki, H. Tsukuno, H. Nagashima, O. Hisatomi, and H. Mino, Biochemistry 57, 494-497 (2018).• R. Nagao, S. Kitazaki, and T. Noguchi, Biochim. Biophys. Acta 1859, 129–136 (2018).• J. Kondo, and T. Noguchi, Photosynthetica, 56, 178-184 (2018).• S. Nakamura, and T. Noguchi, J. Am. Chem. Soc. 139, 9364-9375 (2017)• R. Nagao, M. Yamaguchi, S. Nakamura, H. Ueoka-Nakanishi, and T. Noguchi, J. Biol. Chem. 292, 7474–7486
(2017)• H. Nagashima, H. Kishimoto, R. Mutoh, N. Terashima, H. Oh-oka, G. Kurisu, and H. Mino, J. Phys. Chem.
B 121, 2543-2553 (2017)• H. Nagashima, and H. Mino, J. Phys. Chem. Lett. 8, 621-625 (2017)• H. Sakamoto, T. Shimizu, R. Nagao, and T. Noguchi, J. Am. Chem. Soc. 139, 2022–2029 (2017)• K. Tahara, A. Mohamed, K. Kawahara, R. Nagao, Y. Kato, H. Fukumura, Y. Shibata, and T. Noguchi, Faraday
Discuss. 198, 121-134 (2017).• Y. Kato, R. Ishii, and T. Noguchi, Biochemistry 55, 6355–6358 (2016)• S. Nakamura, and T. Noguchi, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 113, 12727-12732 (2016)• S. Nakamura, K. Ota, Y. Shibuya, and T. Noguchi, Biochemistry 55, 597-607 (2016)• S. Nakamura and T. Noguchi, Biochemistry 54, 5045−5053 (2015)• Y. Sano, K. Endo, T. Tomo, and T. Noguchi, Photosynth. Res. 125, 105-114 (2015)
学生の学術論文への寄与(抜粋) 青:博士 赤:修士 緑:卒研
卒業生の進路
修士修了:日立製作所、リコー、ニコン、ブリヂストン、オリンパス、三菱電機、富士通、旭硝子、デンソー、日本特殊陶業、ブラザー、愛知製鋼、JR東海 など
研究室構成
教員4(教授1、准教授1、講師1、特任助教1)研究員1名修士課程5名卒業研究2名
博士修了:Università di Rome、名工大、東工大、
分子研、神戸大