CICLO DE VIDA DE LA MARIPOSA DE “MARCAS … · autor del trabajo de grado titulado “Ciclo de vida de la mariposa de “marcas ... Son mariposas de tamaño pequeño, ... Ecuador,

CICLO DE VIDA DE LA MARIPOSA DE “MARCAS METALICAS”:

Mesosemia mevania (LEPIDOPTERA: RIODINIDAE) EN EL PARQUE

ECOLOGICO PIEDRAS BLANCAS, COLOMBIA

ANA MARÍA VÉLEZ ARANGO

PONTIFICIA UNIVERSIDAD JAVERIANA

FACULTAD DE CIENCIAS

CARRERA DE BIOLOGÍA

Bogotá D.C.

Noviembre de 2005





TRABAJO DE GRADO

Presentado como requisito parcial

Para optar por el título de

BIOLOGO

Patricia Duque Vélez

DIRECTOR


FACULTAD DE CIENCIAS

CARRERA DE BIOLOGÍA

Bogotá D.C.

Noviembre de 2005

NOTA DE ADVERTENCIA Artículo 23 de la Resolución Nº 13 de Julio de 1946

“La Universidad no se hace responsable por los conceptos emitidos por sus

alumnos en sus trabajos de tesis. Solo velará por que no se publique nada

contrario al dogma y a la moral católica y por que las tesis no contengan

ataques personales contra persona alguna, antes bien se vea en ella el

anhelo de buscar la verdad y la justicia”.

Bogotá 23 de enero de 2005

Señores


Bogotá

Estimados señores:

Yo Ana María Vélez Arango identificada con C.C. No 52 928 506 de Bogotá,

autor del trabajo de grado titulado “Ciclo de vida de la mariposa de “marcas

metálicas” Mesosemia mevania (Lepidoptera: Riodinidae) en el Parque

Ecológico Piedras Blancas, Colombia”, presentado como requisito para optar

al título de Biólogo en el año 2006; autorizo a la Pontificia Universidad

Javeriana a:

a) Reproducir el trabajo en medio digital o electrónico con el fin de

ofrecerlo para consulta en la Biblioteca General. Si

b) Poner a disposición para la consulta con fines académicos, en la

página web de la Facultad, de la Biblioteca General y en redes de

información con las cuales tenga convenio la Universidad Javeriana.

Si

c) Enviar en formato impreso o digital, en caso de que sea seleccionado

para participar en concursos de trabajos de grado. Si

d) Distribuir ejemplares de la obra, para la consulta entre las entidades

educativas con las que la facultad tenga convenio de intercambio de

información, para que este sea consultado en las bibliotecas y centros

de documentación de las respectivas entidades. Si

e) Todos los usos, que tengan finalidad académica. Si

Los derechos morales sobre el trabajo son de los autores de conformidad

con lo establecido en el artículo 30 de la Ley 23 de 1982 y el artículo 11 de la

Decisión Andina 351 de 1993, los cuales son irrenunciables, imprescriptibles,

inembargables e inalienables. Atendiendo a lo anterior, siempre que se

consulte la obra, mediante cita bibliográfica se debe dar crédito al trabajo y a

su autor. Este documento se firma, sin perjuicio de los acuerdos que el autor

pacte con la Unidad Académica referentes al uso de la obra o a los derechos

de propiedad industrial que puedan surgir de la actividad académica.

_______________________

Ana María Vélez Arango

C.C. 52 928506 de Bogotá





APROBADO

__________________________ ___________________________

Patricia Duque Vélez, Museo Fabio Gómez Delgado, Profesor

Entomológico Piedras Blancas Departamento de Biología

Director Pontificia Universidad Javeriana

Asesor

___________________________ ___________________________

Edison Valencia Edison Valencia

Bayer Crop Science Profesor Facultad de Agronomía

Jurado Universidad Nacional de Colombia

Jurado





APROBADO

__________________________ ___________________________

Ángela Umaña, MPhil. Cecilia Espíndola, Bióloga

Decana Académica Directora de Carrera

AUTOR

Apellidos Nombres

Vélez Arango

Ana María

DIRECTOR

Apellidos Nombre

Duque Vélez

Patricia

ASESOR

Apellidos Nombre

Gómez Delgado

Fabio

TRABAJO DE GRADO PARA OPTAR POR EL TÍTULO DE: Biólogo

TÍTULO COMPLETO DEL TRABAJO: “Ciclo de vida de la “mariposa de

marcas metálicas” Mesosemia mevania (Lepidoptera: Riodinidae) en el

Parque Ecológico Piedras Blancas, Colombia”.

FACULTAD: Ciencias

PROGRAMA: Carrera

NOMBRE DEL PROGRAMA: Biología

CIUDAD: Bogotá AÑO DE PRESENTACIÓN DEL TRABAJO: 2006

NÚMERO DE PÁGINAS: 70

TIPO DE ILUSTRACIONES:

- Ilustraciones

- Tablas y gráficos

- Fotografías

DESCRIPTORES O PALABRAS CLAVE: ciclo de vida, Mesosemia mevania,

planta hospedera, Notopleura macrophylla, Riodinidae.

RESUMEN DEL CONTENIDO:

Se describe el ciclo de vida de Mesosemia mevania a partir de 132 huevos

colectados en campo sobre Notopleura macrophylla (Rubiaceae), entre el 5

de abril y el 24 de mayo de 2005 en el Parque Ecológico Piedras Blancas,

Antioquia, Colombia. Para cada estadío se tomaron datos de duración y

longitud, para los adultos se observó el dimorfismo sexual, la proporción de

sexos y se midió la envergadura alar. Adicionalmente, se realizó una tabla de

superviviencia para determinar la mortalidad de cada estadío. Para

determinar el modo de distribución de la planta hospedera se realizó un

índice de dispersión. Se encontró una duración promedio del ciclo de vida de

77.4 días. La mayor mortalidad la presentaron las larvas del primer estadío,

seguido de los huevos. Se observó una postura con diez huevos parasitada

por avispas Scelionidae. El índice de dispersión de la planta hospedera

mostró una distribución agrupada.

TABLA DE CONTENIDO 1. Introducción 1

2. Marco teórico y revisión de literatura 3

2.1. Antecedentes 3

2.2. Familia Riodinidae 6

2.3. Ciclo de vida 9

2.4. Planta hospedera 14

3. Formulación del problema y justificación 16

3.1. Formulación del problema 16

3.2. Pregunta de investigación 16

3.3. Justificación 16

4. Objetivos 18

5. Materiales y métodos 19

5.1. Área de estudio 19

5.2. Diseño de la investigación 19

5.2.1. Población de estudio y muestra 20

5.3. Métodos 20

5.3.1. Ciclo de vida 20

5.3.2. Planta hospedera 23

5.4. Recolección de la información 23

5.5. Análisis de la información 24

6. Resultados y discusión 27

6.1. Ciclo de vida 27

6.1.1. Descripción morfológica de cada estadio 30

6.1.2. Observaciones biológicas 43

6.1.3. Enemigos naturales 46

6.2. Tabla de vida 46

6.3. Planta hospedera 49

7. Conclusiones 50

8. Recomendaciones 51

9. Referencias 52

Índice de Tablas Tabla 1. Planilla para la toma de datos del ciclo de vida de cada 24

individuo

Tabla 2. Tabla de supervivencia 25

Tabla 3. Duración de cada uno de los estadios de M. mevania 28

Tabla 4. Promedio y desviación estándar de la longitud inicial, 28

longitud final y ancho de la cápsula cefálica para cada

uno de los estadios de M. mevania

Tabla 5. Tabla de supervivencia de M. mevania 47

Índice de Figuras Figura 1. a. Huevo. b. Larva I. c. Larva II. d. Larva III. e. Larva IV. 31

f. Larva V. g. Prepupa. h. Pupa. i. Macho adulto vista

dorsal. j. Macho adulto vista ventral.

Figura 2. a. Huevo. b. Larva III. c. Pupa. d. Macho adulto 32

Figura 3. Curva de supervivencia de M. mevania 48

RESUMEN

Se describe el ciclo de vida de Mesosemia mevania a partir de 132 huevos

colectados en campo sobre Notopleura macrophylla (Rubiaceae), entre el 5

de abril y el 24 de mayo de 2005 en el Parque Ecológico Piedras Blancas,

Antioquia, Colombia. Para cada estadío se tomaron datos de duración y

longitud, para los adultos se observó el dimorfismo sexual, la proporción de

sexos y se midió la envergadura alar. Adicionalmente, se realizó una tabla de

superviviencia para determinar la mortalidad de cada estadío. Para

determinar el modo de distribución de la planta hospedera se realizó un

índice de dispersión. Se encontró una duración promedio del ciclo de vida de

77.4 días. La mayor mortalidad la presentaron las larvas del primer estadío,

seguido de los huevos. Se observó una postura con diez huevos parasitada

por avispas Scelionidae. El índice de dispersión de la planta hospedera

mostró una distribución agrupada.

PALABRAS CLAVES: ciclo de vida, Mesosemia mevania, planta hospedera,

Notopleura macrophylla, Riodinidae

ABSTRACT

The life cycle of Mesosemia mevania is described starting form eggs

collected in field on Notopleura macrophylla (Rubiaceae). For each stage we

took duration and longitude, additionally we achieved a life table to determine

the mortality of each stage. To determine the distribution of the host plants

accomplished a dispersion index. The final average duration of the cycle was

77.3 days. The greater mortality was in the caterpillar of the first instar,

followed by eggs. One posture was parasitized by wasps of the family

Scelionidae. The host plant shows a cluster distribution.

KEY WORDS: host plant, life cycle, Mesosemia mevania, Notopleura

macrophylla, Riodinidae

1. INTRODUCCIÓN

El género Mesosemia (Hübner 1819), uno de los más frecuentemente

observados de la familia Riodinidae, comprende alrededor de 100 especies

encontradas desde México a través de América Central y Suramérica, con

una gran concentración de especies en el Amazonas. Son frecuentemente

observadas en el bosque por su forma particular de desplazarse con

pequeños saltos sobre las hojas. Son mariposas de tamaño pequeño,

reconocidas por la forma de sus alas algo cuadradas, y la presencia de

ocelos que contienen pequeñas manchas oculares en las alas anteriores.

Una de las especies comúnmente vistas en nuestro medio, en el sotobosque

es Mesosemia mevania (Hewitson 1857) la cual se distribuye en Venezuela,

Ecuador, Perú y en el occidente de Colombia se encuentra en las tres

cordilleras, en la costa Pacifica, valle de los ríos Cauca y Magdalena, desde

los 100 hasta y 2400 msnm. En el Valle del Cauca se han encontrado como

sus plantas hospederas a las Rubiaceae Psychotria poeppigina, P.

macrophilla y Palycurea angustifolia.

A pesar de que Mesosemia es uno de los géneros más diversos entre los

Riodinidae, es uno de los menos conocidos en cuanto a su biología y

estados inmaduros. Hasta la fecha no se conoce una descripción detallada

del ciclo de vida de sus especies y puntualmente para Mesosemia mevania

no se han descrito incluso sus estados inmaduros, por esta razón esta

investigación pretende describir los estados larvales, el ciclo de vida y

plantas hospederas de Mesosemia mevania en el Parque Ecológico Piedras

Blancas.

1

Adicionalmente, esta investigación es un aporte para los proyectos sobre cría

de mariposas nativas que se están adelantando en el Parque Ecológico

Piedras Blancas, donde se proyecta construir un mariposario con fines

educativos y recreativos.

2

2. MARCO TEÓRICO Y REVISIÓN DE LITERATURA

2.1. Antecedentes

La mayoría de estudios de ciclos de vida realizados en Lepidoptera han sido

sobre polillas ya que son plagas importantes en plantas de interés

económico, en cuanto a especies de mariposas diurnas se han realizado

estudios de ciclos de vida en Papua Nueva Guinea para los Nymphalidae

Eliminas agondas glaucopsis (Merret 1993), Tanaeris artemis staudingeri, T.

catops westwoodi y T. myops wahnesi (- 1996), en Australia para Sabera

fuliginosa (Hesperiidae) (Müller & Wood 1999). En Malasia para Papilionidae

Trogonoptera brookiana albescens (Goh 1994). En Norte América los

Nymphalidae Anthanassa texana seminole (Watts & Habeck 1991) y

Phyciodes phaon (Genc et al. 2003). En el Neotrópico en Trinidad los

Nymphalidae Morpho peleides insularis (Urich & Emmel 1991a), Dynastor

macrosiris (Urich & Emmel 1991b); en Republica Dominicana para

Nymphalidae Anetia briarea (Browser et al 1992); en Puerto Rico los Pieridae

Dismorphia spio (Torres Bauzá 1991a), Eurema portoricensis (Torres-Bauzá

1991b) y Eurema leuce antillarum (Torres Bauzá 1999); en México Anetia

thirza thirza (Nymphalidae) (Llorente-Bousquets et al. 1993); en Costa Rica

para los Nymphalidae Manataria maculata (Murillo & Nishida 2003) y Caligo

atreus (Calvo 1999), y Pieridae Dismorphia virgo (Young 1972).

En Suramérica en Brasil para los Nymphalidae Eunica bechina (Freitas &

Oliveira 1992), Anaea ryphea (Caldas 1994) y Dryas iulia alcionea (Paim et

al. 2004). En Panamá para Pieridae Dismorphia amphiona beroe (Aiello

1980). En Perú para Nymphalidae Oleria onega agarista, Oleria onega ssp.

(Gallusser 2002),

3

Específicamente para Colombia se han realizado el ciclo de vida para las

siguientes especies, de Nymphalidae Haetera piera (Constantino 1993),

Morpho amathonte (Constantino 1997b), M. macrophtalmus y M. peleides

telamon (Constantino & Corredor 2004), Heliconius cydno celinde (Prieto et

al. 1999), Colobura annulata y Colobura dirce (Willmott et al. 2001); Siproeta

epaphus, Anartia amathea, Colobura dirce, Ithomia alienassa, Actinote

ecuatoriana, Heliconius erato y Danaus plexippus megalippe (Gil & Posada

2002); en Papilionidae Battus polydamas, Parides iphidamas, P. anchises, P.

lycimens, P. lysander (Fagua & Ruiz 1996), B. chalceus ingenuus, Heraclides

anchiciades, P. childrenae latifasciata, P. eurimedes emilius y P. panares

erythrus (Prieto et al. 1999) y Heraclides anchisiades anchisiades (Gómez-S

& Fagua 2002).

En cuanto a la familia Riodinidae en 1987 Harvey reportó información de las

plantas alimenticias y/o de la morfología de los estadios inmaduros conocidos

para 100 especies de Riodinidos, lo que constituye el 8-9% de la diversidad

total de la familia. Luego De Vries (1997) y Janzen y Hallwachs (2002)

reportan información de 170-180 especies, sin embargo, esto solo representa

el 13-15% de la familia. Entre los estudios realizados se encuentra: Aricoris

hubrichi por Bruch 1926, Menander felsina por Callaghan 1977, Thisbe irinea

por DeVries 1988, 1991, Juditha caucana por Hall y Harvey 2001 (Citados en

Hall et al. 2004), Anatole rossi por Ross 1964 y Calydna sturnula por Hall et

al. (2004). Sobre otras especies como Nymphidium lisimon attenuatum,

Phaenochitonia sagaris satnius y Metacharis ptolomaeus se han realizado

notas sobre su biología sin ser descritos todos sus estadios (Callaghan

1988).

Ross 1964 realizó una descripción de la larva con breves observaciones de

su ecología y etología; además se muestra la asociación de las larvas con

hormigas de la especie Camponotus abdominales Fabr. (Formicinae). Se

4

partió de 21 huevos encontrados en hojas nuevas de Croton repens

Schlecht. (Euphorbiaceae).

Hall et al. (2004) describió a Calydna sturnula a partir del segundo instar. La

planta fue Schoepfia schereberi (Olecaceae). En este estudio de los 219

individuos colectados entre orugas y pupas, solo seis fueron parasitados por

avispas Apanteles y Hipomicrogaster (Braconidae), Chalcidae y por moscas

Tachinidae.

Callaghan (1988) describió el tercer instar (posiblemente) de Nymphidium

lisimon attenuatum como larvas solitarias que se alimentan en hojas

separadas, característica de otras especies mirmecófilas. En campo siempre

se encontró asociada con hormigas, sin embargo algunas larvas estaban

parasitadas por avispas Trichogrammatidae, lo que sugiere que las hormigas

no defienden agresivamente a las larvas. En el laboratorio la larva se

alimentó por la noche. Encontró como planta hospedera a Inga sp.

En el mismo trabajo Callaghan (1998) describió huevos, larvas de primer,

segundo y tercer instar de Phaenochitonia safaris satnius. Observó que las

larvas de segundo y tercer instar tejen con seda la superficie de las hojas

hasta plegarlas y así se ocultan en su interior para protegerse de la

depredación, además permanecen unidas mientras se alimentan. Dos o tres

días antes de la muda la larva cesa de alimentarse hasta un día después de

esta. No se encontró evidencia de órganos mirmecófilos o cualquier patrón

de comportamiento que pudiera sugerir su asociación con hormigas. Planta

hospedera Melastomataceae.

Callaghan (1998) describió los huevos y el primer instar de Metacharis

ptolomaeus, la hembra ovopositó un huevo en la base del pecíolo de

5

Lacistema (Flacurtiaceae). No se encontraron especies de hormigas

asociadas.

Considerando todas las especies de Mesosemia muy pocas han sido criadas,

De Vries et al. (1992) registran las plantas hospederas, tipo de postura y

comportamiento de las larvas a partir de observaciones en campo de las

siguientes especies: M. asa con Psychotria macrophylla como planta

hospedera, huevos individuales y larvas solitarias; M. carissima con P.

luxurians como planta hospedera y larvas solitarias; M. nr. tenebricosa y M.

nr. ephyne con posturas individuales y larvas solitarias alimentándose de una

Rubiaceae; M. telegone, larvas solitarias que se alimentan de Psichotria sp.,

Aphelandra sp. y Palicourea guianensis; finalmente M. nr. judicialis con

posturas individuales y larvas solitarias sobre sus plantas hospederas

Faramea sp. y Faramea eurycarpa.

2.2. Familia Riodinidae

La familia Riodinidae es un grupo de mariposas de tamaño pequeño de gran

variedad de formas, con colores metalizados y brillantes. Son conocidas

popularmente como mariposas de marcas metálicas “metalmarks” o

“revoloteadoras” por el hábito de volar constantemente y posarse con las alas

abiertas ocultándose en el envés de las hojas, por lo que pasan

desapercibidas (Vélez & Salazar 1991; Minno & Emmel 1993; García-

Robledo et al. 2002; Valencia et al. 2005).

Se conocen unas 1308 especies para toda la región Neotropical y unas 630

para Colombia, distribuidas en todos los pisos térmicos. Las zonas cálidas

del bosque húmedo y muy húmedo tropical como la Amazonia, la costa del

Pacífico y el Magdalena Medio son las más ricas en diversidad. Esta familia

tiene altos niveles de endemismo que alcanzan el 37% en la costa del

6

Pacífico, 30% en el Putumayo y el pie de monte oriental de la cordillera

Oriental y 27% en el Magdalena Medio (García-Robledo et al. 2002; Valencia

et al. 2005).

Es una de las familias menos conocida del Neotrópico, biológicamente es la

menos estudiada (DÁbrera 1984; De Vries 1997; Stehr 1987; Vélez &

Salazar 1991; De Vries et al. 1992), como anteriormente se consideraba

subfamilia de Lycaenidae, la biología y evolución ha sido típicamente inferida

de lo conocido para los licaenidos (De Vries et al. 1992).

Los huevos son esféricos, fuertemente achatados en su base y en su ápice,

con poros muy elaborados (Valencia et al. 2005). Las larvas de Riodinidae

son reconocidas por la presencia de más de dos setas mandibulares y por la

ubicación ventral del espiráculo en A1 (Stehr 1987), las larvas son achatadas

y alargadas con setas y mechones de pelos dorsales y laterales, usualmente

son solitarias (Stehr 1987; García-Robledo et al. 2002; Valencia et al. 2005).

Al igual que los Lycaenidae, algunas larvas son mirmecofilas, es decir, tienen

simbiosis con hormigas (De Vries 1997). Las pupas de color verde, amarillo o

café, con puntos negros y en algunos géneros con pequeños proyecciones o

espículas laterales; empupan generalmente sobre las hojas de manera

horizontal e individual como si estuviesen posadas sobre las hojas como

estrategia para camuflarse, o en grupos en la base de los troncos de los

árboles (Valencia et al. 2005).

Las mariposas del género Mesosemia (Hübner 1819), tribu Mesosemiini

(Bates 1859), son reconocidas por la forma algo cuadrada de sus alas, con

manchas en forma de ojo que generalmente contiene de una a tres pupilas

en la celda del ala posterior, en algunos casos los ocelos son obsoletos pero

la pupila permanece. Muestran una tendencia a un fuerte dimorfismo sexual,

7

con unas pocas excepciones. En este género no se observan larvas

mirmecófilas (De Vries 1997).

Las mariposas de este género son componentes importantes en la riqueza

de especies de mariposas desde las más bajas elevaciones hasta sitios de

elevaciones medias. Es uno de los géneros frecuentemente observados de

riodinidos. Aunque las especies de Mesosemia son comunes, en muchos del

Neotrópico no se han encontrado especies de este genero, solo después de

muchos años de trabajo se han reportado especies extremadamente raras

(De Vries 1997).

La cantidad de material sin determinar en museos y la confusión respecto a

la identificación de los sexos refleja una verdadera necesidad de revisión de

este género. Muchas especies, subespecies y formas no tienen grado de

certeza, por esta razón se pueden encontrar más especies de Mesosemia de

las que se reconocen actualmente (De Vries 1997).

La mayoría de las plantas hospederas registradas para Mesosemia son de la

familia Rubiaceae, géneros Psychotria, Faramea, Guettarda, Palicourea,

Cephalanthus, y Cephaelis (De Vries et al. 1992, De Vries 1997). Solo se

encuentra un registro de la familia Acanthaceae género Aphelandra (De Vries

et al 1992).

Para este genero, las orugas tienden a ser uniformemente verdes, cubiertas

por setas rígidas esparcidas y de longitud media. Cuando son vistas desde

arriba muestran unos lóbulos laterales pronunciados en todos los segmentos,

todos los instares son suficientemente crípticos hasta ser casi invisibles. Los

estadios tempranos pueden alimentarse constantemente, sin embargo los

estadios avanzados se alimentan exclusivamente en la noche. La forma total

8

de la pupa se asemeja a las del género Leucochimona siendo las de

Mesosemia más grandes (De Vries 1997).

Mesosemia mevania (Hewitson 1857) se encuentra distribuida en Venezuela,

Ecuador, Perú y el occidente de Colombia. En este último está presente en

las tres cordilleras, en la Costa Pacífica, valle geográfico de los ríos Cauca y

Magdalena, entre los 100 – 2400 m.s.n.m. Presenta una longitud del ala

anterior de 24-26 mm (García-Robledo et al. 2002; Valencia et al. 2005). Los

machos presentan la banda blanca de las alas anteriores más angosta que

en las hembras. Las plantas hospederas son: Psychotria poeppigiana, P.

macrophylla y Palicourea angustifolia (Rubiaceae) en el Valle del Cauca. En

cuanto a su comportamiento vuela al interior del bosque en sitios

sombreados (Valencia et al. 2005). En el Parque Ecológico Piedras Blancas

esta especie se encuentra en sitios sombríos de riachuelos y quebradas, con

mayor actividad entre las ocho y las tres de la tarde, comúnmente observada

libando en las flores de las copas de los árboles con otras mariposas

(Ramírez 1992).

2.3. Ciclo de vida

El ciclo de vida de una mariposa tiene cuatro estadíos diferentes: huevo,

larva, con cinco instares, pupa o crisálida y estado adulto o imago.

Generalmente, la duración completa del ciclo de vida de los estados

inmaduros (huevo, larva, pupa) de una mariposa diurna se encuentra entre

30 y 120 días, dependiendo de la especie y las condiciones ambientales

(Constantino 1997a; Valencia et al. 2005).

9

Huevo

El ciclo de vida de una mariposa se inicia cuando las hembras seleccionan

una planta hospedera para poner sus huevos, la identificación inicial es visual

probablemente basada en el color y forma de la hoja, una vez sobre la hoja la

mariposa corrobora la identificación por percepción química con

quimiorreceptores ubicados en los tarsos o en la proboscide (Vaidya 1969;

Constantino 1996; Fagua et al. 1998; García-Robledo et al. 2002; Gómez-S &

Fagua 2002).

La oviposición puede estar influenciada por las condiciones ambientales, la

mayoría de las mariposas son inactivas cuando se presentan días nublados,

con viento o con lluvia. Las hembras no pueden compensar la tasa de

reducción de oviposición debido al tamaño, la edad y temperatura pero

pueden compensar por condiciones ambientales desfavorables (nubes,

viento o lluvias) aumentando la tasa de oviposición durante períodos

favorables (Stamp 1980).

El sitio de oviposición dentro de la planta también puede ser característico

para la especie, los huevos pueden ser puestos en la superficie inferior de la

hoja, en los ápices, o incluso en los zarcillos de las enredaderas (Constantino

1996; Fagua et al. 1998; García-Robledo et al. 2002; Gómez-S & Fagua

2002).

La oviposición determina la probabilidad que la oruga alcance suficiente

recurso alimenticio para su desarrollo, en muchas ocasiones la hembra de

una especie puede aceptar sustratos subóptimos para la oviposición cuando

el óptimo es raro o no se encuentra (Chew 1997). El huevo es el estado más

vulnerable de la mariposa, una buena localización asegura una mayor

supervivencia de la futuras orugas disminuyendo las oportunidades de que

10

sean atacadas por parásitos o por sus depredadores, y la posibilidad de que

la futura oruga encuentre el alimento que necesita (Chew 1977; Vélez &

Salazar 1991). Probablemente el color conspicuo de los huevos y su

posición, puede inhibir la ovoposición de nuevas posturas en la misma

planta, contribuyendo así a una mejor distribución del recurso o impidiendo la

pérdida de orugas por canibalismo o agresión (Stamp 1980; Fagua & Ruiz

1996).

Las mariposas pueden depositar sus huevos individuales o agrupados, en los

Riodinidae se observa una tendencia de posturas individuales o en grupos

pequeños, tanto para las hembras como para los huevos se presentan

ventajas al ser depositados individualmente. Para las hembras se encuentra

que utilizan menos tiempo depositándolos, evitan depredadores, parasitoides

y competencia entre herbívoros, pueden usar diferentes plantas hospederas

y diferentes especies de plantas hospederas dentro de un hábitat. Mientras

que para los huevos se evitan de una manera más efectiva parasitoides y

predadores, especialmente si la detección de la distancia por parasitoides y

predadores es pequeña; los huevos individuales son usualmente crípticos

(blancos, amarillos o verdes) localizados en la parte inferior de las hojas de

las plantas hospederas (Stamp 1980).

Larva

La fase larval es la etapa de nutrición y crecimiento del ciclo de vida de la

mariposa, durante esta fase la actividad de la oruga se limita a alimentarse y

crecer; a lo largo de su crecimiento, la larva transforma grandes cantidades

de follaje en tejido y reservas alimenticias que usará durante las fases de

pupa y adulto (García-Robledo et al. 2002).

11

Todo el cuerpo de la oruga se encuentra protegido por el exosqueleto, una

envoltura de quitina que le confiere dureza, por esta razón la oruga debe

mudarlo varias veces durante su desarrollo. El período comprendido entre

cada muda es conocido como instar o estadio de desarrollo, por lo general la

oruga presenta cinco estadios, pero el número puede variar de cuatro a siete

dependiendo de la especie. Al final del último estadio la oruga deja de comer,

disminuye su actividad y se prepara para pupar, este estado se conoce como

prepupa (García-Robledo et al. 2002).

Se encuentra que dependiendo del tipo de postura las larvas pueden ser

solitarias o gregarias. El comportamiento gregario se puede interrumpir

durante el tercero y cuarto instar, y en contraste encontrar larvas

alimentándose individualmente o en grupos pequeños; el comportamiento

gregario presenta ventajas como el incremento del comportamiento

termoregulatorio, tasa de crecimiento, eficiencia en el forrajeo y defensa

contra enemigos naturales (Stamp 1980; Zalucki et al. 2002). Por otro lado

las larvas solitarias también presentan ventajas como una menor exposición

a parásitos y predadores, y no existe competencia al momento de buscar un

sitio para formar la pupa (Stamp 1980).

Pupa o crisálida

Al inicio la pupa se une fuertemente a un punto fijo por medio de unos

ganchos llamados cremaster, internamente se lleva a cabo la metamorfosis,

una reorganización drástica de tejidos que finaliza con la formación del

adulto, la actividad externa de esta fase se reduce a unos mínimos

movimientos abdominales. Al completarse la metamorfosis la zona ventral de

la pupa se abre permitiendo que emerja el adulto (García-Robledo et al.

2002).

12

Las crisálidas se han adaptado plenamente a su entorno adquiriendo

coloraciones crípticas y formas extrañas, las que se fijan a las cortezas y

ramas secas tienen una coloración parda o grasosa lo que les permite pasar

casi desapercibidas (Vélez & Salazar 1991).

Adulto

Cuando el adulto emerge de la pupa ya tiene el tamaño normal y no sigue

creciendo; éste es el estado en el cual las mariposas vuelan se aparean y

colocan huevos. Los adultos se alimentan de fluidos, néctar, exudados

azucarados o fermentos de frutas (García-Robledo et al. 2002; Gómez-S &

Fagua 2002; Valencia et al. 2005).

Enemigos naturales

Las mariposas están en constante riesgo a causa de diversos factores que

influyen en su probabilidad de sobrevivencia, Gil y Posada (2002)

encontraron para varias especies de mariposas diurnas de la zona cafetera,

que los enemigos naturales más abundantes fueron los parasitoides

seguidos por los entomopatógenos y el grupo menos abundante fue el de los

depredadores. Los huevos y orugas jóvenes están sujetos a una extensiva

presión por parte de artrópodos parasitoides (Chalcidae, Trichogrammatidae

y Scelionidae, entre otros), otras familias pertenecientes a Hymenoptera,

Diptera, Orthoptera, Heteroptera y Aranea (Ctenidae y Lycosidae) son

enemigos naturales de orugas o pupas (DeVries 1997). Las larvas también

pueden estar afectadas incluso por hongos patógenos, Gil y Posada (2002)

encontraron las especies: Beauveria bassiana (Bals.) Vuill, Paecilomyces,

Metarhizium anisopliae (Match.) Sorokin y Verticillium atacando larvas y

pupas de varias especies de Lepidoptera; las bacterias y los virus son otro

grupo de patógenos frecuentes especialmente bajo condiciones de

13

laboratorio; la presencia de estos organismos se puede dar por la

manipulación inadecuada del material o por colocar en un espacio reducido

varios individuos, en este estudio las larvas y las pupas fueron los estados

más susceptibles (Gil & Posada 2002). Por su parte los adultos son

depredados por invertebrados como arañas, mántidos, hormigas, odonatos,

entre otros, y vertebrados como aves reptiles y mamíferos (De Vries 1987).

2.4. Planta hospedera

Los herbívoros generalistas o polífagos se alimentan de diversas especies de

plantas pertenecientes a especies poco relacionadas taxonómicamente, los

especialistas monófagos consumen una planta específica y de olífagos

especies estrechamente relacionadas (DeVries 1987; Fagua & Ruiz 1996;

Fagua et al. 1998). La preferencia de un herbívoro por una planta está

definida por las sustancias químicas de éstas, una sustancia tóxica para un

herbívoro puede ser alimento para otro (DeVries 1987; Fagua & Ruiz 1996;

Fagua et al. 1998; García-Robledo et al. 2002).

Las plantas contienen nutrientes básicos (agua, nitrógeno, potasio, etc.),

metabolitos primarios (azúcares, grasas, aminoácidos proteicos, etc.), y

metabolitos secundarios (alcaloides, glucosinolatos, terpenoides, etc.). Las

zonas jóvenes de crecimiento de las plantas generalmente presentan una

mayor proporción de nitrógeno, fósforo, azufre, potasio y azúcares, y menor

cantidad de celulosa, por lo que son preferidas por los herbívoros. La

reducción en la calidad de la hoja disminuye la supervivencia de herbívoros,

indirectamente por el incremento de su período de exposición a enemigos

naturales (depredadores, parásitos y enfermedades), la exposición a

enemigos naturales pueden favorecer adaptaciones hacia un rápido

desarrollo del herbívoro (Scriber & Feeny 1979; Loader & Damman 1991;

Fagua & Ruiz 1996; Fagua et al. 1998; Gómez-S & Fagua 2002). Por otro

14

lado los herbívoros también son dependientes de las características

fenológicas de sus hospederos y sus ciclos de vida deben estar

sincronizados con las épocas de floración, fructificación o producción del

follaje (Fagua & Ruiz 1996; Forister 2005).

Las orugas de lepidópteros tienen la necesidad de consumir tejidos blandos,

especialmente en sus primeros estadios, la mayoría prefieren hojas con alto

contenido de agua. El rechazo por parte de la oruga puede ser determinante

para su supervivencia, especialmente en los primeros estadios, ya que la

probabilidad de alcanzar un hospedero apropiado antes de morir por

inanición o ser atacadas por depredadores es menor para orugas de tamaño

pequeño (Fagua & Ruiz 1996; Zalucki et al. 2002).

15

3. FORMULACIÓN DEL PROBLEMA Y JUSTIFICACIÓN

3.1. Formulación del problema

El género Mesosemia presenta un gran número de especies, sin embargo

sus estados inmaduros son quizás los menos conocidos de toda la familia

Riodinidae. Hasta la fecha para Mesosemia mevania no se ha realizado

ningún estudio detallado de su ciclo de vida. Por esta razón es importante

hacer una descripción e ilustración detallada de los estadios inmaduros de

esta especie. Además, será un aporte para los proyectos sobre cría de

mariposas nativas que están adelantando en el Parque Ecológico Piedras

Blancas donde se proyecta construir un mariposario con fines educativos y

recreativos.

3.2. Pregunta de investigación

¿Cuál es el tiempo de duración, longitud de cada estadio y sobreviviencia de

M. mevania del Parque Ecológico Piedras Blancas, Antioquia, Colombia?

¿Cómo es la distribución de la planta hospedera de M. mevania?

3.2. Justificación de la Investigación

Actualmente, la historia natural y descripción de los estados inmaduros de las

mariposas de la familia Riodinidae son poco conocidos, para las especies de

esta familia, en Colombia, no existe ningún estudio detallado. Del género

Mesosemia específicamente ningún ciclo de vida ha sido descrito hasta la

fecha, por esta razón realizar el seguimiento, descripción e ilustración

detallada de M. mevania es la forma más adecuada de aportar conocimiento

sobre la historia natural y ecología no solo de la especie, sino también de la

16

familia. Se utiliza M. mevania porque es la especie de riodinido más

observada en el Parque Ecológico Piedras Blancas.

En el Parque Ecológico Piedras Blancas se han realizado pocos ciclos de

vida de las mariposas de la zona, esta investigación aporta al proyecto sobre

cría de mariposas del Parque, el cual viene adelantando CONFENALCO

Antioquia, con miras a construir un mariposario con fines educativos y

recreativos.

17

4. OBJETIVOS

Objetivo general

Describir el ciclo de vida de Mesosemia mevania (Lepidoptera: Riodinidae)

en el Parque Ecológico Piedras Blancas, Antioquia.

Objetivos Específicos

1. Determinar el tiempo de duración, longitud y la probabilidad de

superviviencia de cada uno de los estados de desarrollo (desde huevo

hasta pupa) de M. mevania en condiciones de laboratorio.

2. Establecer las características fenotípicas de cada uno de los estadios

de M. mevania.

3. Identificar la principal planta hospedera de los estados inmaduros de

M. mevania del Parque Ecológico Piedras Blancas, Antioquia.

4. Determinar los patrones de dispersión de la planta hospedera en los

parches de bosque del Parque Ecológico Piedras Blancas.

18

5. MATERIALES Y MÉTODOS

5.1. Área de estudio

El Parque Ecológico Piedras Blancas se encuentra localizado al oriente del

Municipio de Medellín, en los municipios de Guarne y Medellín, en las

coordenadas 6º 8' 20'' N 75º 30' 20'' W. Se encuentra entre los 2300 y 2400

msnm, tiene una temperatura y una precipitación promedio de 15°C y 1965

mm (IDEAM 2003). La estación de lluvias tiene un régimen bimodal: abril,

mayo y octubre, noviembre. El período de sequía es entre enero y marzo. De

acuerdo con el sistema de Holdridge (1987) el parque corresponde a una

zona de vida de bosque húmedo montano bajo (bh-MB), cerca de la línea de

transición con el bosque muy húmedo montano bajo (bmh- MB).

El Parque comprende una extensión de 2877 ha, de las cuales 1400 se

encuentran cubiertas por vegetación natural, donde sobresalen pequeños

fragmentos de bosque secundario en diversas etapas sucesionales y

bosques naturales donde predomina el roble Querqus humboldtii. Además,

existen 1100 ha en plantaciones forestales de diversas especies de pino,

ciprés y eucalipto. En menor medida se encuentran pequeñas extensiones

dedicadas a la ganadería y a la agricultura.

5.2. Diseño de la Investigación

Factor de diseño: Tiempo y crecimiento de cada estadio.

Variable respuesta: tiempo de cada estadio y tamaño de los individuos en

cada estadio.

19

Unidad de respuesta: número de días de duración y longitud (mm).

Unidad de muestreo: huevos de M. mevania de 43 posturas.

5.2.1. Población de estudio y muestra

Población de estudio: población de M. mevania (Lepidoptera: Riodinidae) de

los bosques naturales en estadio sucesional secundario del Parque

Ecológico Piedras Blancas, Antioquia.

Muestra: 132 individuos de Mesosemia mevania pertenecientes a 43

posturas.

5.3. Métodos

5.3.1. Ciclo de vida

Se realizaron salidas de campo dos días por semana desde el 5 de abril

hasta el 24 de mayo de 2005, en dos parches de bosque secundario del

Parque Ecológico Piedras Blancas, en los que se buscaron estados

inmaduros de Mesosemia mevania en individuos de Rubiaceae donde se

habían observado anteriormente posturas y larvas de la especie. Además, se

realizaron observaciones y anotaciones en campo del comportamiento de los

adultos.

Del material colectado se anotó la fecha y sitio de colecta, las plantas se

numeraron, para cada una se tomaron datos de ubicación en el bosque,

altura y especie, si se encontraban varias posturas o larvas en una misma

planta las hojas se enumeraban y se asumía que eran posturas diferentes;

para las posturas y larvas se anotó: estado de desarrollo, ubicación de los

20

huevos en la planta y número de individuos encontrados por postura y por

planta.

Las posturas y orugas encontradas fueron llevadas al laboratorio del Museo

Entomológico Piedras Blancas, allí se depositaron individualmente en

recipientes de plástico con tapa. Se les adicionó hojas frescas de la planta

hospedera y en el fondo papel absorbente humedecido para evitar la

deshidratación de estas y facilitar la limpieza del excremento de las larvas.

Los ensayos de cría se realizaron a temperatura y humedad ambiente,

diariamente se registró temperatura y humedad relativa mínima, máxima y

promedio en las horas de la mañana.

Diariamente se observaron los huevos para registrar la fecha de eclosión y

número de orugas emergidas. Igualmente, las larvas fueron revisadas cada

día para registrar mudas, patrones de coloración, comportamiento,

mortalidad y presencia de parasitoides (Tabla 1). El cambio de estadio se

identificó por la presencia de exuvias, las cápsulas cefálicas resultantes se

fijaron en solución Kahles y se conservaron en alcohol al 80%.

Se partió de 132 huevos pertenecientes a 43 posturas, para cada individuo

se registró la duración de cada estadio, longitud inicial, longitud final y ancho

de la cápsula cefálica para todas las larvas desde estadio uno a estadio

cinco, y ancho de la pupa; para determinar la mortalidad por estadio se

construyo una tabla y curva de superviviencia con todos los individuos que

fueron pasando de un estadio a otros.

A cada individuo en sus diferentes estadios se le tomaron las siguientes

mediciones con papel milimetrado al estereoscopio:

o Huevos: altura y diámetro.

21

o Larvas: longitud mínima (al momento de nacer o de mudar), longitud

máxima (días antes de la muda) y ancho de la cápsula cefálica (de las

pieles de las larvas).

o Pupas: longitud y ancho.

o Adultos: envergadura alar (longitud desde el punto de inserción del

ala hasta el ápice del ala anterior).

Se registró la duración de tiempo en cada estadio, es importante aclarar que

como no se observaron hembras ovopositando la duración de los huevos se

tomo a partir de los huevos colectados en campo. Para algunas posturas se

puede calcular el tiempo de ovoposición con un margen de error entre uno y

dos días porque estas plantas se revisaron diariamente. También se registró

el sexo de cada adulto y se observaron las diferencias morfológicas entre

estos.

Se realizó una descripción detallada de cada uno de los estadios, usando la

terminología de Stehr (1987), se tuvo especial cuidado en anotar los cambios

de color ya que una vez fijada la larva pierde su color original. Se hizo

registro fotográfico de todos los estadios y una ilustración del huevo, larva III,

pupa y el adulto.

Se fijaron cinco larvas de cada estadio, cada larva se sumergió en agua

caliente, luego en solución Kahles (Borror et al. 1989), después de una

semana se trasladaron a alcohol al 80% (Holloway, Bradley & Carter 1992).

Se realizó todo el proceso de curaduria y montaje para cinco machos y cinco

hembras adultos.

Estas muestras de larvas y adultos se depositaron en el Museo Entomológico

Piedras Blancas (MEPB) y el Laboratorio de Entomología de la Universidad

de Antioquia.

22

5.3.2. Planta hospedera

Para determinar el patrón de dispersión de las plantas hospederas se

seleccionaron al azar seis transectos de 100x2 m en cada uno de los dos

parches de bosque donde se hizo el muestreo de huevos y larvas. Cada

transecto se subdividió en cien cuadrantes de 1x2 m, en cada uno se registró

la cantidad de plantas hospederas.

La planta hospedera fue identificada y depositada en el Herbario Universidad

de Antioquia HUA # 147845.

5.4. Recolección de la información

Para el registro de datos del ciclo de vida se utilizó una planilla (Tabla 1) para

cada individuo, en la cual se marcó una equis si el individuo seguía en el

mismo estadio o se registró la medida de la larva si había cambiado de

estadio o estaba próxima a hacerlo, para los adultos se anotó la envergadura

alar. En las observaciones se escribieron datos de la presencia de exuvia si

se presentaba una muda, si los individuos estaban parasitados, morían, o

cualquier otro dato importante.

23

Tabla 1. Planilla para la toma de datos del ciclo de vida de cada individuo.

MEPB Ciclo de vida de____________ Familia______________ Estadio colectado_______

Planta hospedera _______________ Planta Nº ________ Individuo Nº ____ Hoja Nº ____

Sitio colecta _____________ Colector ________________ Fecha ____________

Tarro Fecha H LI LII LIII LIV LV PP A Observaciones

H: huevo; LI: larva uno; LII: larva dos; LIII: larva tres; LIV: larva cuatro; LV: larva cinco; PP:

prepupa; P: pupa; A: adulto

5.5. Análisis de la información

Para el ciclo de vida de M. mevania se realizó una tabla de supervivencia de

cohortes (Tabla 2) siguiendo la metodología de Begon, Harper y Townsend

(1999) para determinar la mortalidad en cada uno de los estadios por:

ax: número observado de individuos en cada fase.

lx: número estandarizado de individuos. Se calcula convirtiendo cada valor

observado en lo que se esperaría, se inicia la tabla con un valor fijo, en este

caso 1,000. La utilidad de este parámetro consiste en que puede ser

comparado entre curvas de superviviencia para especies, años o localidades

diferentes.

dx: proporción de la cohorte original que muere durante cada fase. Este valor

es la diferencia entre lx y lx + 1.

qx: tasa de mortalidad. Se calcula dividiendo los valores dx y lx de cada fase.

24

kx: fuerza de mortalidad. Este valor es definido como log10 ax – log10 ax+1,

refleja la intensidad o tasa de mortalidad de una edad a otra.

Tabla 2. Tabla de supervivencia.

Tabla de supervivencia de Mesosemia mevania Estadio ax lx dx qx kx

Huevo Larva I Larva II Larva III Larva IV Larva V Prepupa Pupa Adulto

A partir de 132 individuos pertenecientes a 43 posturas, con los datos de

cada individuo de duración (período de días entre muda y muda), longitud

inicial (desde huevo hasta pupa), longitud final (desde larva uno a larva

cinco), ancho de la cápsula cefálica y envergadura alar de los adultos se

calculó el valor medio, mínimo y máximo, además se realizó el promedio y la

desviación estándar. A partir de los adultos emergidos se realizó la relación

de sexos. Para observar las diferencias entre posturas de duración, longitud

inicial, longitud final y ancho de la cápsula cefálica para cada estadio, se

realizaron ANOVA o prueba de Kruskalll-Wallis, dependiendo de la

normalidad de los datos (Pérez 2001).

Para la planta hospedera a partir de los datos obtenidos de los transectos se

halló el índice de dispersión (ID) para cada uno de los cuadrantes:

25

ID = [varianza (n – 1)] / promedio

donde n = el número de cuadrantes usados. Debido a que ID tiene una

distribución estadística parecida a la de Chi – cuadrado (χ2), entonces se

comparó el valor de ID con el de χ2; si el valor de ID tiene un valor que no se

aleje mucho de χ2 significa que los individuos de la población están

distribuidos al azar, si ID es menor que χ2 los individuos están distribuidos

regularmente y si tiene un valor mayor están agrupados (Harms 1996).

26

6. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

6.1. Ciclo de vida

Los huevos y larvas de Mesosemia mevania se colectaron en abril y mayo,

también se observaron posturas en campo en el mes de agosto. Entre el 5 de

abril y el 9 de julio, fechas durante las cuales se realizó el ensayo de cría, se

registró una temperatura promedio de 16.7º C y una humedad relativa de

76.7. El fotoperíodo fue de 12:12 horas luz oscuridad.

La Tabla 3 muestra el tiempo de duración promedio y la desviación estándar

de cada estadío, estos resultados son el producto del análisis del total de

individuos independiente de la postura M. mevania requiere alrededor de

77.4 días (n = 58), desde huevo hasta la emergencia del adulto. El estadio

más largo es el de pupa con 28.4 días promedio y el más corto prepupa con

3.5 días. De los instar larvales el más largo fue larva uno con 7.3 días

promedio y el más corto larva cinco con 4 días. En algunos estadios como

larva dos el tiempo que requirieron los individuos para pasar al próximo instar

fue muy variable (desviación estándar 1.97), unos tardaron solo cuatro días,

mientras que otros diez, algo similar ocurrió en larva uno (Tabla 3),

probablemente la falta o mala calidad del alimento obliga a algunos

individuos a mudar más rápido (Harcourt 1966; Scriber & Feeny 1979) o

pueden ser unos rangos de variación normal en la especie.

27

Tabla 3. Duración de cada uno de los estadios de M. mevania.

Días de duración de cada estadio Estadio Mínimo Máximo Promedio Desv. Estándar Huevo (n = 17) 16 18 17.0 0.79 Larva I (n = 64) 5 12 7.3* 1.90 Larva II (n = 59) 4 10 7.2* 1.97 Larva III (n = 58) 3 9 5.8* 1.41 Larva IV (n = 58) 3 7 4.2* 0.87 Larva V (n = 58) 2 7 4.0* 1.67 Prepupa (n = 58) 1 6 3.5 1.13 Pupa (n = 58) 25 32 28.4 1.75

Total 77.4

*diferencias estadísticamente significativas ANOVA o Kruskall-Wallis p<0.05 cuando se

comparan las posturas.

El incremento de longitud entre un estadio y otro fue en promedio 4.3 mm, el

mayor incremento (5.3 mm) se da en el paso de larva tres que mide 11.2, a

larva cuatro que alcanza 16.5 mm; el mayor aumento del ancho de la cápsula

cefálica también se observa entre estos dos estadios (Tabla 4).

Tabla 4. Promedio (P) y desviación estándar (D.E.) de la longitud inicial,

longitud final y ancho de la cápsula cefálica para cada uno de los estadios de

M. mevania.

Longitud Inicial Longitud Final Ancho cápsula

cefálica Estadio P D. E. P D. E. P D. E.

Huevo 0.6 0.1 Larva I 2.2* 0.4 3.6* 0.6 0.5 0.1 Larva II 4.9* 1.5 6.7* 1.5 0.8 0.2 Larva III 8.9* 2.0 11.2 1.5 1.1 0.2 Larva IV 13.2* 2.0 16.5* 2.3 1.4 0.5 Larva V 19.2 2.5 20.7 1.6 3.0 0.2 Prepupa 19.5 1.3 Pupa 19.0* 0.8

*diferencias estadísticamente significativas ANOVA o Kruskall-Wallis p<0.05 cuando se

comparan las posturas.

28

Al realizar el ANOVA o la prueba de Kruskall-Wallis según la normalidad de

los datos para cada uno de los estadios para observar las diferencia entre

posturas se encuentran, para la duración diferencias significativas en larva

uno (p = 0.0008), dos (p = 0.003), tres (p = 0.03), cuatro (p = 0.046) y cinco

(p = 0.02), por el contrario en todas las posturas fue muy similar el tiempo

que duraron como pupas y prepupas. Para la longitud de los huevos no se

observan diferencias significativas entre la posturas, para la longitud inicial de

larva uno (p = 0.0001), dos (p = 0.006), tres (p = 0.006), cuatro (p = 0.004) y

pupa (p = 0.017) existen diferencias significativas, mientras que para larva

cinco y prepupa no; por otro lado las longitudes finales de larva uno (p =

0.007), dos (p = 0.02) y cuatro (p = 0.01) presentaron diferencias, mientras

que para larva tres y cinco no. La diferencias entre posturas para la duración

y longitudes pudo estar ocasionada por las diferentes fechas de colecta de

las posturas, por factores climáticos, calidad del alimento y genética de los

individuos. No se presentaron diferencias significativas entre posturas para el

ancho de la cápsula cefálica en los cinco instares.

Estas diferencias tanto de duración como de tamaño de la larva se debieron

posiblemente a diferencias en la calidad de las hojas como el contenido de

agua y nitrógeno; Feeny y Scriber (1979) indican que mientras las tasa de

crecimiento, la eficiencia de utilización del nitrogeno, y la tasa de

acumulación de nitrógeno disminuyen, la duración para los dos últimos

instares larvales aumenta. Otro aspecto como el contenido de nutrientes de

la hoja puede afectar el crecimiento de las larvas (Scriber & Feeny 1979;

Fagua et al. 1998; Gómez-S & Fagua 2002), pero no es fácil determinar

cuales aspectos o combinación de aspectos juegan el papel predominante

(Scriber & Feeny 1979).

29

6.1.1. Descripción morfológica de cada estadio

Huevo

El huevo tiene forma redondeada con 0.6 mm de longitud y 0.8 mm de

diámetro (n = 132) (Tabla 4), esta longitud es similar a la encontrada por

Ross (1964) para Anatole rossi (longitud: 0.4-0.5 mm, diámetro 0.6-0.7 mm, n

= 21) y por Callaghan (1988) para Phaenochitona sagaris satnius (longitud:

0.4 mm, diámetro: 0.8 mm, n = 5). Mientras que muestra valores menores

para lo registrado por Callaghan (1988) para Metacharis ptolomaeus

(longitud: 0.2 mm, diámetro: 0.5, n = 1) y por lo estimado por García-Barros

(2000) para Mesosemia sp.

El huevo es achatado ligeramente en la parte superior y con la base

completamente aplanada, por donde se adhiere al sustrato. El micropilo se

localiza en la parte central superior, es poco profundo; la superficie del huevo

es rugosa, es una red de pequeñas crestas formando patrones hexagonales

con una pequeña profusión de cada intersección, con vellosidades en toda la

superficie visible (Figura 1a y 2a). Los huevos de posturas agrupadas se

encuentran adheridos entre sí por fibras de seda, solo ocho posturas

correspondieron huevos individuales. La forma del huevo es similar, a lo

descrito para Anatole rossi (Ross 1964), Phaenochitona sagaris satnius y

Metacharis ptolomaeus (Callaghan 1988).

Al principio el huevo es amarillo y gradualmente se va aclarando hasta

volverse blanco días antes de la eclosión. La larva eclosiona por el micropilo,

se tarda en promedio 17 días (16-18 días, n = 17) (Tabla 3), un valor mayor

comparado con A. rossi (Ross 1964) que duro 8-9 días, P. sagaris satnius

30

31

32

con 12 días de duración y Metacharis ptolomaeus con 11 (Callaghan 1988).

Primer estadio

La larva mide en promedio 2.2 mm de longitud al comenzar el estadio (2.9-

3.1 mm, n = 103) y al finalizar 3.6 mm (2.5-5 mm, n = 64) (Tabla 4).

Comparando con A. rossi con 1.4-1.5 mm (n = 15) (Ross 1964), P. sagaris

satnius con 1.7 mm (n = 5) y Metacharis ptolomaeus con 1 mm (n = 1)

(Callaghan 1988) Mesosemia mevania presenta una longitud inicial mayor.

Mientras que para la longitud final un valor similar al de A. rossi (2.5-2.6 mm,

n = 15) (Ross 1964).

El cuerpo es aplanado, partiendo desde el epicranio hasta la placa anal es de

color amarillo hialino, incluyendo patas y propatas. Dorsalmente desde el

mesotórax hasta el último segmento abdominal, se observa una banda de

color verde esmeralda que contrasta con el cuerpo la cual se va

oscureciendo con el tiempo. Todos los segmentos poseen chalazas con

setas negras en la parte dorsal a cada lado de la línea media, el protórax

presenta cinco chalazas a cada lado, el metatórax dos a cada lado, el

mesotórax y todos los abdominales presentan una a cada lado; lateralmente

presenta setas blancas hialinas largas incluyendo la parte superior de las

propatas. Los espiráculos son blancos circulares, no presenta en los

segmentos torácicos dos y tres, el espiráculo del protórax presenta una

disposición más ventral que los espiráculos de los segmentos abdominales,

desde el primer segmento abdominal se observa una línea espiracular blanca

(Figura 1b).

33

La cápsula cefálica mide en promedio 0.5 mm de ancho (0.3-0.8 mm, n = 26)

(Tabla 4), es redondeada y de color amarillo hialino, con setas hialinas cortas

y largas, seis ocelos negros circulares a cada lado y mandíbulas de color

café claro. El ancho de la cápsula cefálica es similar al encontrado para A.

rossi (0.32-0.33 mm, n = 15) (Ross 1964) y P. sagaris satnius (0.3 mm, n = 5)

(Callaghan 1988), mientras que para Metacharis ptolomaeus se encuentra un

valor menor (0.13 mm, n = 1) (Callaghan 1988). Para Mesosemia mevania el

mayor rango encontrado para puede ser ocasionado por el mayor número de

individuos medidos.

En promedio la duración de este estadio es 7.3 días (5-12 días, n = 64)

(Tabla 3). Para A. rossi Ross (1964) encontró una duración de 4-5 días (n =

15) y para P. sagaris satnius Callaghan (1988) registra 9 días de duración. Lo

anterior muestra que la duración del primer instar de M. mevania se

encuentra dentro del rango de algunas de las especies de la familia

Riodinidae.

Segundo estadio

Al inicio de este estadio la larva mide alrededor de 4.9 mm de longitud (2.9-9

mm, n = 62), al finalizar 6.7 mm (4.2-12 mm, n = 59) (Tabla 4). Tanto la

longitud inicial de A. rossi (2.6-2.7 mm, n = 13) (Ross 1964) como la de P.

sagaris satnius (2.5 mm, n = 4) (Callaghan 1988) presentan valores similares

a los encontrados para M. mevania, mientras que el rango de la longitud final

de A. rossi (4.0-4.4 mm, n = 13) (Ross 1964) es menor.

La forma, la coloración, la disposición de setas blancas, chalazas con setas

negras y espiráculos son muy similares a la del primer estadio. Presenta

34

setas blancas en la parte lateral del cuerpo y en la parte superior de las

propatas, espiráculos blancos circulares sobre los que se observan pequeñas

sedas blancas hialinas y línea espiracular blanca desde el primer segmento

abdominal. Se diferencia del estadio anterior en que dorsalmente la línea

verde esmeralda es más pronunciada, las setas negras de las chalazas son

más oscuras y gruesas, el protórax presenta diez chalazas a cada lado,

desde el mesotórax hasta el décimo segmento abdominal se observan tres

chalazas a cada lado por segmento (Figura 1c).

Cápsula cefálica con un ancho promedio de 0.8 mm (0.4-1.1 mm, n = 27)

(Tabla 4), similar a la del primer estadio, ligeramente más opaca y con la

mandíbula más oscura. En este estadio el cuerpo es un poco más robusto

por lo que el epicranio se observa más pequeño. Los valores del ancho de la

cápsula cefálica en comparación con A. rossi (0.52-0.53 mm, n = 13) (Ross

1964) y P. sagaris satnius (0.4 mm, n = 4) (Callaghan 1988), se encuentran

dentro del rango encontrado para Mesosemia mevania, siendo este mas

amplio que el de las otras especies posiblemente por la mayor cantidad de

especimenes medidos.

En promedio la duración de este estadio es de 7.2 días (4-10 días, n = 59)

(Tabla 3). Para A. rossi se observa una duración de 4-5 días (n = 13) (Ross

1964) y para P. sagaris satnius de 8 días (Callaghan 1988), al igual que con

la cápsula cefálica estos valores se encuentran dentro del rango encontrado

para Mesosemia mevania, pero el rango para esta especie es mas amplio.

35

Tercer estadio

La larva mide en promedio 8.9 mm de longitud al principio del estadio (5-13

mm, n = 59), al finalizar 11.2 mm (7.4-15 mm, n = 58) (Tabla 4), presenta

valores similares a los registrados para A. rossi con una longitud inicial de

5.1-5.4 mm (n = 12) y una longitud final de 7.0-7.9 (n = 12) (Ross 1964), y

valores mayores que los de P. sagaris satnius con una longitud inicial de 3.5

mm (n = 4) ( Callaghan 1988).

Igual que los anteriores estadios el cuerpo es aplanado. Dorsalmente desde

el protórax hasta la placa anal es de color café verdoso, se observan tres

líneas paralelas de color verde claro desde el mesotórax hasta el último

segmento abdominal, la línea central es más delgada que las laterales; las

chalazas de esta parte del cuerpo presenta la misma coloración de las líneas.

La parte lateral del cuerpo incluyendo patas y propatas presenta una

coloración verde hialina tornándose cada vez más claro hacia la parte

ventral. El primer segmento torácico presenta una prolongación que cubre la

parte superior de la cápsula cefálica. No presenta línea espiracular, los

espiráculos son blancos circulares, alrededor presentan algunas setas

negras cortas (Figura 1d y 2b).

Tanto dorsal como lateralmente presenta chalazas primarias y secundarias

con setas negras, las primarias más cortas que en los estadios anteriores. En

cuanto a la disposición de las chalazas primarias el protórax dorsal y

lateralmente presenta quince a cada lado y el último segmento abdominal

doce a cada lado. Dorsalmente el mesotórax presenta dos chalazas a cada

lado, desde el metatórax hasta el séptimo segmento abdominal tres a cada

lado y el noveno no presenta. Lateralmente desde el mesotórax hasta el

36

séptimo segmento abdominal se presenta una chalaza por segmento a cada

lado y en el noveno dos a cada lado; en la parte superior de las propatas y

de las patas del mesotórax y metatórax se observa una chalaza a cada lado

y muchas setas blancas hialinas (Figura 1d y 2b).

La cápsula cefálica de 1.1 mm (0.8-1.9 mm, n = 45) (Tabla 4) sigue siendo

redondeada y su coloración cambia a verde, presentado setas hialinas

cortas, mandíbula de color café más oscuro que los estadios anteriores

(Figura 1d). En este estadio la larva es más robusta que en el estadio

anterior por lo que el epicranio se observa cada vez más pequeño. Los

valores del ancho de la cápsula cefálica para A. rossi (0.77-0.78 mm, n = 12)

(Ross 1964), como para P. sagaris satnius (0.6 mm , n = 4) (Callaghan 1988)

son menores a los encontrados para Mesosemia mevania.

En promedio la duración de este estadio es de 5.8 días (3-9 días, n = 59)

(Tabla 3), comparado con A. rossi que presenta una duración de 5-6 días (n

= 12) de este estadio (Ross 1964), se puede decir que M. mevania presenta

un rango similar pero mas amplio.

Cuarto estadio

Al iniciar este estadio la larva mide en promedio 13.2 mm (8.5-17 mm, n =

58), al finalizar 16.5 mm (11.5-20 mm, n = 58) (Tabla 4). Para A. rossi Ross

(1964) encontró una longitud inicial de 7.9-9.4 mm (n = 9) y una longitud final

de 10.1-11.0 (n = 9), lo que muestra un rango mas amplio para los dos datos

en M. mevania, esto puede estar ocasionado por la diferencia en la cantidad

de individuos medidos.

37

Cuerpo aplanado, desde el protórax hasta la placa anal es de color verde

esmeralda, las patas son verde claro hialino y las propatas verde claro.

Dorsalmente desde el mesotórax hasta el último segmento abdominal

presenta las mismas tres líneas verde claro del tercer estadio, la del medio

aun más delgada que en el estadio anterior. Al igual que el estadio anterior

no presenta línea espiracular, los espiráculos son negros circulares con

borde blanco. La prolongación del protórax es más grande que en el estadio

anterior, cubre más la cápsula cefálica (Figura 1e).

Al igual que en el estadio anterior presenta chalazas primarias y secundarias

con setas negras, las primarias más largas que en larva tres. Tanto dorsal

como lateralmente el protórax presenta 24 chalazas a cada lado y el último

segmento abdominal 12 a cada lado; dorsalmente el mesotórax y primer

segmento abdominal presentan tres chalazas a cada lado, en el metatórax y

a partir del segundo segmento abdominal hasta el séptimo tienen cuatro

chalazas a cada lado, el octavo dos a cada lado y el noveno no presenta.

Lateralmente presenta la misma disposición y cantidad de chalazas que el

estadio anterior; se diferencia en que la parte superior de las patas y

propatas del mesotórax, metatórax y los primeros ocho segmentos

abdominales, se observan cinco chalazas a cada lado rodeadas por setas

blancas hialinas (Figura 1e).

La cápsula cefálica es ovalada, de color verde hialino, con setas blancas

hialinas cortas, mandíbula de color café y ancho promedio de 1.4 mm (1-2.2

mm, n = 9) (Tabla 4). Larva más robusta que en el anterior estadio. Para A.

rossi se registra un valor del ancho de la cápsula cefálica entre 1.10-1.16 mm

(n = 9) (Ross 1988) r al encontrado para M. mevania.

38

En cuanto a la duración promedio de este estadio, para M. mevania se

encontró un valor de 4.2 días (3-7 días, n = 58) (Tabla 3), mientras que para

A. rossi Ross (1964) encontró una duración mayor de 8-9 días (n = 9).

Quinto estadio

Al inicio del estadio la larva mide en promedio 19.2 mm de longitud (12-24

mm, n = 58), al finalizar 20.7 mm (17-25 mm, n = 58) (Tabla 4). Para A. rossi

Ross (1964) encontró una longitud inicial de 12.0-13.4 mm (n = 8) y una

longitud final de 14.9-16.6 mm (n = 8), por otro lado Hall et al. (2004)

registran para Calydna sturnula una longitud total de 15.7 mm; valores

menores a los encontrados para M. mevania.

Presenta un cuerpo aplanado, dorsalmente es de color café verdoso que se

va degradando lateralmente hasta llegar a verde claro en las patas y

propatas; las tres líneas dorsales del anterior estadio presentan la misma

disposición pero son más marcadas y la línea central cambia a una

coloración verde claro, esta desaparece en el centro de cada segmento y es

remplazada por cuatro puntos del mismo color, dos a cada lado, las líneas

laterales también desaparecen en el centro de cada segmento pero no

presentan puntos. Lateralmente hasta la base proximal de las propatas se

observan puntos de un verde más claro que el de las líneas superiores. No

presenta línea espiracular, los espiráculos son iguales a los del estadio

anterior (Figura 1f).

En este estadio también se observan chalazas primarias y secundarias con

setas negras. En cuanto a las chalazas primarias tanto dorsal como

lateralmente el protórax presenta 20 chalazas a cada lado y el último

39

segmento abdominal nueve a cada lado; las chalazas dorsales y laterales

desde el mesotórax hasta el noveno segmento abdominal presentan la

misma disposición y cantidad que el estadio anterior.

La cápsula cefálica es igual a la del anterior estadio, más pequeña por el

cuerpo más robusto, presenta un ancho promedio de 3 mm (2.1-3.5 mm, n =

58) (Tabla 4), comparado con A. rossi quien presenta valores de 1.93-2.10

mm (n =8) (Ross 1964), el valor son mayor.

La larva es muy activa y se alimenta constantemente. La duración promedio

de este estadio es de 4 días (2-7 días, n = 58) (Tabla 3), para A. rossi se

presentan valores de duración mucho más altos entre 23-25 días (n = 8)

(Ross 1964).

Según la descripción de Stehr (1987) para las larvas de la familia Riodinidae

se observa que las larvas maduras de M. mevania presentan las

características descritas para la familia.

Prepupa

Presenta una duración promedio de 3.5 días (1-6 días, n = 58) (Tabla 3) la

larva deja de comer y gradualmente la coloración de la larva se torna café

oscuro, la línea dorsal del cuerpo y las propatas cambia a amarillo fuerte,

mientras que las líneas paralelas a la línea media central y los puntos se

mantienen de color verde esmeralda. Durante este estadio se desarrolla una

base de seda sobre algún sustrato, que puede ser la hoja de la planta

hospedera, el papel absorbente o la superficie del vaso por el cremaster. Una

40

vez adherida la larva perdió tamaño y las estructuras empezaron a cambiar

(Figura 1g). La longitud promedio de este estadio es de 19.5 mm (17-23 mm,

n = 58) (Tabla 3).

Pupa

La pupa mide en promedio 19 mm de longitud (17-21 mm, n = 58) por 5.9

mm de ancho (4-7 mm, n = 58) (Tabla 4), valores mayores a los encontrados

para A. rossi con una longitud de 14.0-16.3 mm (n = 12) y una ancho de 4.8-

5.9 mm (n = 12) (Ross 1964) y C. sturnula una con una longitud de 9.4 mm y

un ancho de 4.0 mm (Hall et al. 2004).

En los tres primeros días la pupa se oscurece, en la parte caudal presenta

sedas blancas en toda la superficie pero en mayor densidad hacia la parte

cefálica. Se observan ocho segmentos abdominales (Figura 1h y 2c). Solo se

observan movimientos cuando es molestada. Un día antes de la emergencia

la pupa se oscurece más, empezando por la parte cefálica. El imago emerge

a los 28.4 días en promedio (25-32 días, n = 56) (Tabla 3). La pupa esta

unida al sustrato por el cremaster y sostenida verticalmente por un cinto de

seda que cruza dorsalmente por el abdomen, la zona cefálica se encuentra

dirigida hacia abajo. La pupa de esta especie morfológicamente es muy

diferente a la descrita para otras especies de riodinidos como A. rossi (Ross

1964) y C. sturnula (Hall et al. 2004)

41

Adulto

El adulto presenta una coloración negra con azul oscuro tornasolado, en las

alas anteriores presenta una un ocelo negro y una banda blanca (Figura 1i, 1j

y 2d), más ancha en las hembras que coincide con las descripciones de

Valencia, Gil y Constantino en el 2005 para esta especie.

De las 58 pupas emergieron 56 adultos, solo dos machos y una hembra eran

deformes (con las alas arrugadas), los dos restantes murieron tratando de

emerger; no se observó ninguna tendencia para emerger primero machos o

hembras. Se midió la envergadura alar de 73 individuos, para las hembras se

encuentra un rango de 20-27 mm y para los machos de 20-26 mm lo que

muestra muy poca diferencia entre los dos sexos; se observa entonces un

rango más amplio de 20-27 mm que el indicado por Valencia, Gil y

Constantino en el 2005 de 24-26 mm, y es un valor menor al encontrado por

García-Barros en el 2000 para el género Mesosemia de 20.0 mm.

Se encontró una proporción de sexos de 1:1, de 76 entre individuos tomados

desde huevo y otros desde larva que emergieron 39 machos y 37 hembras,

una proporción de sexos de este tipo indica un papel para machos y hembras

de igual importancia, los machos protegen recursos seleccionados, esta

proporción maximiza la diponibilidad de machos y maximiza la

heterogeneidad genética, la cual aumenta la supervivencia de la población

(Schowalter 2000).

42

6.1.2. Observaciones biológicas

Se estudio un total de 43 posturas de las cuales 40 estaban agrupadas

desde dos hasta diez huevos. En general se hallaron tres individuos por

postura (Moda=3), solo tres posturas era huevos individuales, en contraste

De Vries et al. (1992) registran para seis especies de Mesosemia y para la

tribu Mesosemiini huevos individuales, esto sería un nuevo aporte para la

tribu. De las 43 posturas 39 se encontraron en el borde del envés de la hoja,

dos posturas en la parte central del envés de la hoja, cerca de la nervadura,

una en el borde del haz de la hoja y otra en el tallo de la planta.

Generalmente se encontró una postura por planta, solo en cuatro ocasiones

se hallaron dos posturas en hojas diferentes de una misma planta, y en dos

posturas en una misma hoja.

En todas las posturas observadas el comportamiento de eclosión fue muy

similar, todos los huevos de una misma postura tienden a eclosionar

simultáneamente, con algunas excepciones: en tres posturas, hubo una

diferencia de un día en el tiempo de eclosión de algunos huevos y en una

postura de tres huevos uno eclosionó cuatro días después. Para las posturas

encontradas en diferentes hojas de una misma planta la diferencia en el

tiempo de eclosión entre posturas fue de dos días, posiblemente podrían fue

la misma hembra que repartió sus posturas en una misma hoja. Finalmente

para las dos posturas en una misma hoja la diferencia en el tiempo de

eclosión fue de nueve días probablemente son de diferentes hembras,

debido a que este es el único caso de dos posturas por hoja se puede

concluir que la presencia de una postura en una planta por lo general inhibe

una nueva ovoposición, de tal manera que las dos posturas por planta puede

ser el resultado de escasez de plantas que obligaron a las hembras a aceptar

43

sustratos subóptimos para la ovoposición como lo indican Chew (1997) y

Stamp (1980).

La larva básicamente es solitaria, en algunos casos semi-gregaria, tolera

otros instar, durante los primeros estadios se pueden encontrar desde dos

hasta cinco individuos en diferentes partes de la hoja, en los estadios cuatro

y cinco, solo se encontraron dos individuos por hoja. Por lo contrario De Vries

et al. (1992) registran para seis especies de Mesosemia y en general para la

tribu Mesosemiini larvas solitarias, en ningún momento semi-gregarias, al

igual que para los huevos sería un nuevo registro para la tribu.

Tal vez la característica mas interesante del comportamiento de la larva de

M. mevania es su apariencia críptica, tanto en morfología (coloración y

forma), como en comportamiento (posición de descanso sobre la planta

hospedera), una apariencia críptica se encuentra acompañada de un

comportamiento solitario, quizás por esta razón las larvas de esta especie

sean básicamente solitarias, este comportamiento se encuentra descrito en

Stehr (1987) y De Vries (1997) para las larvas de esta la familia Riodinidae.

El color amarillo de los huevos, las larvas aplanadas y verdes en todos los

instar, y el parecido de la pupa a una hoja seca o excremento de pájaro, los

hacen lo suficientemente crípticos para pasar desapercibidos. Posiblemente

esto reduce el ataque de predadores y parásitos; el estadio menos críptico es

el huevo, de 43 posturas solo una se encontró parasitada, mientras que las

larvas y pupas colectadas en campo no se encontró ninguna parasitada.

Se observó que en todos los estadios las larvas se alimentan tanto en el día

como en la noche, pero los estadios avanzados se alimentan principalmente

en la noche, esto confirma lo dicho por De Vries en 1997 para el género

44

Mesosemia. En los primeros instares se alimenta de diferentes partes de la

hoja, principalmente de la parte media, dejándola agujereada, mientras que

en los estadios cuatro y cinco, se alimenta vorazmente de los bordes y

presenta cortos períodos de reposo; cuando las larvas se dejaban sobre

plantas, consumían todas las hojas y si no encontraban más alimento se

observaban alimentándose del tallo. En los primeros estadios las larvas

prefieren permanecer y alimentarse en el envés de la hoja esto, mientras que

las larvas cuatro y cinco en el haz, posiblemente para pasar más

desapercibidas por su similitud con el color de esta parte de la hoja. En todos

los estadios la larva se adhiere con hilos a la superficie.

Antes de la muda la larva deja de alimentarse, elabora una base de hilos de

seda de donde se fija a la superficie por la parte caudal del cuerpo. Mientras

muda la larva se encoge, la cabeza se desprende de la cápsula quitinosa y

rompe por la franja hialina, por lo que se observa por un lado la cápsula y por

el otro los restos del cuerpo. En el cuarto estadio se encontraron pocas

cápsulas, posiblemente la larva comía parte de la exuvia. En el cuarto y

quinto estadio cuando se manipulaba reiterativamente la larva, en algunas

ocasiones emitía una secreción verde, probablemente repelente de

artrópodos predadores como lo indican los estudios de Eisner & Meinwald

(1965) y Damman (1986) para la familia Papilionidae.

Antes de la formación de la pupa, la larva se oscurece y deja de comer,

empieza a elaborar una base de hilos con la que se adhiere centralmente al

sustrato, con la cabeza hacia abajo. Al formarse la pupa se detecta la exuvia

con la cápsula cefálica adherida a ella y el cuerpo ha reducido su tamaño.

Cuando el imago está listo para emerger, la pupa se abre lateralmente por

las suturas cefálicas y sale el adulto, se agarra de la piel de la pupa con la

cabeza hacia arriba y empieza a extender sus alas. Cuando ya ha expandido

45

totalmente las alas, el adulto excreta un líquido rojo, llamado el meconium,

que es producto de los desechos metabólicos del estado pupal.

Los adultos se encuentran usualmente volando en el sotobosque a menos de

2 m de altura, o en los claros hasta los 5 m, pasando de una planta a otra

donde se posan con las alas abiertas sobre las hojas y pasan inadvertidas,

confirmando lo observado por (Vélez & Salazar 1991; Minno & Emmel 1993;

García-Robledo et al. 2002; Valencia et al. 2005).

6.1.3. Enemigos naturales

No se observó la predación de huevos, larvas, pupas y adultos en campo. En

cuanto a los parásitos se encontró el 4.6% de las posturas parasitadas, es

decir de 43 posturas se encontraron dos parasitadas, el color de estos

huevos es gris oscuro; en una de las posturas se observó que emergieron

avispas de la familia Scelionidae, entre 29 y 31 días desde el día de su

oscurecimiento. Este porcentaje de parasitismo tan bajo puede estar

explicado porque esta especie posiblemente parasita otros hospederos

diferentes (Linares & Estrada 1998).

6.2. Tabla de vida

Para realizar la tabla de supervivencia de M. mevania se partió de 132

individuos en estadio de huevo a los cuales se les hizo el seguimiento de su

ciclo de vida hasta que emergieron como adultos. Del total de individuos 56

(42%) alcanzaron el estado adulto. La mortalidad más alta ocurrió en las

larvas del primer instar 34%, seguido de los huevos 17%, luego larva dos 8%

46

y larva tres 2%, para las prepupas y larvas de cuarto y quinto instar no se

observó mortalidad (Tabla 5, Figura 3).

Tabla 5. Tabla de supervivencia de Mesosemia mevania.

Tabla de supervivencia de Mesosemia mevania Estadio ax lx dx qx kx

Huevo 132 1.000 0.17 0.17 0.019 Larva I 109 0.83 0.35 0.42 0.032 Larva II 64 0.48 0.03 0.08 0.031 Larva III 59 0.45 0.01 0.02 0.031 Larva IV 58 0.44 0.00 0.00 0.030 Larva V 58 0.44 0.00 0.00 0.030 Prepupa 58 0.44 0.00 0.00 0.030 Pupa 58 0.44 0.02 0.03 0.031 Adulto 56 0.42

ax: número observado al inicio de cada fase. lx: proporción de la cohorte original que

sobrevive al inicio de la fase. dx: proporción de la cohorte original que muere durante cada

fase. qx: tasa de mortalidad. kx: fuerza de mortalidad.

La curva de supervivencia para M. mevania según Begon et al. (1999),

Ricklefs & Millar (2000), Schowalter (2000), es de tipo III (cóncava), muestra

una tendencia a una alta mortalidad en los estadios de huevo, larva uno y

larva dos, esta se reduce una vez se superan estos estadios y resulta en una

superviviencia casi constante (Figura 3). Sin embargo estos tasas de

mortalidad de los primeros estadios es muy baja si se compara con los

registros de Zalucki et al. (2002), para 80 especies de mariposas donde el

41% de los individuos muere en estadio de huevo y 54% en larva uno.

47

Curva de superviviencia de Mesosemia mevania

0,000

0,200

0,400

0,600

0,800

1,000

Huevo

Larva

I

Larva

II

Larva

III

Larva

IV

Larva

V

Prepup

aPup

aAdu

lto

Estadio

lx

Figura 3. Curva de superviviencia de Mesosemia mevania.

La principal causa de mortalidad de los huevos no se pudo de terminar, solo

un 4,6% de las posturas presento mortalidad por parasitoides; la mortalidad

de las larvas de primer estadio se presentó principalmente en los primeros

momentos de la eclosión, algunas larvas se extraviaron porque tal vez al

morir se desecaban rápidamente y por su tamaño no se alcanzaban a

observar, esto coincide con las observaciones de Zalucki et al. (2002).

Probablemente la principal causa de mortalidad se dio por inanición ya sea

porque las larvas no podían adherirse a la planta hospedera, o no

encontraban en la hoja una parte adecuada para alimentarse (Zalucki et al.

2002). La muerte de las larvas cuando se trasladaban con pincel de una hoja

a otra en los primeros días después de la eclosión confirma lo anterior. Sin

embargo, como lo indican Zalucki et al. (2002), es difícil determinar la causa

de la muerte incluso con observaciones intensas, según estos autores en la

mayoría de los estudios las causas de mortalidad identificadas es por

predadores basado en 41 estudios, por causas desconocidas para 18, por

desaparición de las larvas para 14, por condiciones climáticas 12, y por el

error al establecer la relación con el hospedero para 28 estudios. La

48

mortalidad encontrada en larva dos y tres pudo estar ocasionada porque el

alimento no tenía los requerimientos necesarios, posiblemente por hojas

deshidratadas, o por la presencia de hongos, bacterias o virus.

6.2. Planta hospedera

La planta hospedera fue determinada como Notopleura macrophylla (Ruiz &

Pav.) C. M. Taylor (Rubiaceae). Hasta hace poco algunas especies de esta

género, incluyendo esta, se consideraban como Psychotria (Mendoza,

Ramírez & Jiménez 2004). Este trabajo confirma registros anteriores de esta

especie como hospedera de los estados inmaduros de M. mevania (García-

Robledo et. al. 2002; Valencia et al. 2005) la registran como Psychotria

macrophylla.

Al realizar el índice de dispersión (ID) indicado por Harms 1996 para cada

uno de los cuadrantes se encontró que estos valores eran significativamente

mayores que los de χ2 lo que indica que Notopleura macrophylla presenta

una distribución agrupada en los dos parches de bosque en los cuales se

encontraron huevos. La planta se observó en sotobosque de bosques nativos

secundarios, nunca en plantaciones de ciprés o pino, en lugares muy

sombreados y húmedos, más abundantes cerca de cuerpos de agua; esto

confirma lo indicado por Mendoza y Ramírez (2000) para el género

Psychotria quienes indican que los individuos de esta especie crecen

generalmente en lugares sombreados en interior de bosque maduro y

secundario. Algunas especies, como esta, se encuentran en lugares muy

húmedos al lado de quebradas, por esta razón se encuentran agrupadas.

49

7. CONCLUSIONES

o El ciclo de vida de M. mevania en el Parque Ecológico Piedras

Blancas requiere entre 59 y 101 días para alcanzar el estado adulto,

partiendo desde huevo.

o Los huevos y las pupas son los estadios que más tiempo toman en su

desarrollo, 17 y 20 días respectivamente, las larvas solo necesitan

entre 4 y 7 días para pasar al próximo instar, esto muestra diferencias

en el tiempo de duración entre los estados inmaduros del ciclo de vida.

o Comparado con otras especies de mariposas la sobrevivencia de M.

mevania en condiciones de laboratorio es alta.

o La mayor mortalidad 35%, ocurrió en larva uno, probablemente por

inanición; una vez las larvas alcanzaron el tercer estadio el porcentaje

de supervivencia es del 96%.

o La longitud de las larvas variaron desde 2.2 mm en su primer estadio

hasta 20.7 mm para el quinto y la cápsula cefálica desde 0.5 mm en

larva uno hasta 3 mm en larva cinco. El mayor incremento de longitud

y del ancho de la cápsula cefálica se da en el paso de larva tres a

larva cuatro.

o Los estados inmaduros (huevo, larva y pupa) de M. mevania son

crípticos.

o Se identificó a Scelionidae (Hymenoptera) como parasitoide de M.

mevania en estadio de huevos.

o Las larvas de M. mevania son semi-gregarias y colocan huevos en

pequeños grupos lo cual es un nuevo aporte para la tribu Mesosemiini.

o La planta hospedera de M. mevania, N. macrophylla presenta un

patrón de dispersión agrupado.

50

8. RECOMENDACIONES

o Para enriquecer el conocimiento de la biología de M. mevania y

complementar la información sobre su ciclo de vida, es necesario

realizar investigaciones principalmente en el campo, que permitan

conocer la longevidad de los adultos, su comportamiento de

oviposición y cortejo, determinar las épocas de cría, y los principales

controladores de las poblaciones en condiciones naturales.

o Además, explorar si existen hospederos alternos para la especie y

hacer estudios de herbivoría.

o Para determinar la factibilidad de cría en cautiverio, es necesario

adecuar un espacio que permita la reproducción de los adultos y así

lograr un seguimiento de la especie durante varias generaciones.

o Se recomienda realizar ANOVAS dentro de las posturas para observar

las diferencias entre individuos en cuanto a duración, longitud inicial,

longitud final y ancho de la cápsula cefálica.

51

9. REFERENCIAS

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CICLO DE VIDA DE LA MARIPOSA DE “MARCAS … · autor del trabajo de grado titulado “Ciclo de vida de la mariposa de “marcas ... Son mariposas de tamaño pequeño, ... Ecuador,