COPÉPODOS DE POZAS INTERMAREALES DE ISLA DE PASCUA · 2008. 10. 13. · Copépodos intermareales de isla de Pascua 47 Harpacticus sp. (Figs. 2c y 7) Anténula con nueve artejos

45Copépodos intermareales de isla de PascuaCienc. Tecnol. Mar, 26 (1): 45-72, 2003

COPÉPODOS DE POZAS INTERMAREALES DE ISLA DE PASCUA

TIDE POOLS COPEPODS OF EASTER ISLAND

MARCELA GODDARD

Facultad de FarmaciaUniversidad de Valparaíso

Casilla 5001. Playa Ancha, Valparaíso.

RESUMEN

Se describen las características morfológicas de 14 especies de copépodos harpactícidos, reco-lectados en pozas intermareales de Isla de Pascua, en noviembre de 1999.

Los resultados apoyan la hipótesis del origen indopacífico de la fauna rapanui, encontrándosetambién especies registradas en localidades atlánticas, antárticas y mediterráneas.

Palabras claves: Crustácea, Copepoda, Harpacticoida, pozas de marea, Isla de Pascua.

ABSTRACT

Morphological characteristics of 14 species of copepoda harpacticids collected at tide pools ofEaster Island in November of 1999 are described.

Result confirms the indopacific hypothesis about the origin of rapanui fauna, finding species collectedat atlantic, antarctic and mediterranean localities too.

Key words: Crustacea, Copepoda, Harpacticoida, tide pools, Easter Island.

46 Revista Ciencia y Tecnología del Mar, Vol. 26 (1) - 2003

INTRODUCCIÓN

La fauna marina costera de isla de Pascua escasi predominantemente de origen indopacífico occi-dental y se caracteriza por su alto grado deendemismo, principalmente a nivel específico (Castilla& Rozbaczylo, 1987).

Los estudios de los crustáceos de isla de Pascuase han centrado en la sistemática de los decápodos,siendo desconocida la fauna copepodológicaintermareal (Castilla & Rozbaczylo, 1987).

Los copépodos intermareales generalmente sonharpactícidos fitófilos. Wells (1984) sugiere que ladistribución biogeográfica de estos organismos debeanalizarse a nivel de especie, dado que todas lasfamilias, salvo Latiremidae y Neobrayidae, tienenamplia distribución, siendo en general cosmopolitas.

En este trabajo, se describen por primera vez lasespecies de copépodos recolectados presentes enpozas intermareales de isla de Pascua.

MATERIALES Y MÉTODOS

El estudio se efectuó durante la realización delCrucero Cimar 5-Islas Oceánicas, analizándose po-zas de marea de cuatro localidades en isla de Pas-cua: Hotu Hiti, Vinapu, Apina Nui y Tahai, entre 1 y el5 de noviembre de 1999 (Fig. 1). En la localidad deHotu Hiti se muestrearon tres pozas: Hotu Hiti-1, HotuHiti-2 y Hotu Hiti-3.

En cada poza se tomaron muestras de copépodos,mediante red y lavado de algas. Las muestras sefijaron con formalina al 10%, neutralizada con bórax.Los organismos se trataron con ácido láctico, se di-secaron bajo lupa, se montaron con glicerina y sedibujaron mediante cámara clara.

Se utilizaron las claves de Wells (1976) parala determinación de géneros o especies, Vervoort(1964) para Idomene simulans.

Las abreviaturas usadas en las leyendas de lafiguras son: A1, anténula; A2, antena; Benp,basiendopodito; end, endopodito; exp, exopodito; Mx,maxila; Mxp, Maxilípedo; P1- P6, 1º - 6º pereiópodo.

RESULTADOS

Familia Ectinosomatidae Sars, 1903Ectinosoma dentatum Steuer, 1940

(Figs. 2a y 4).

Cuerpo fusiforme, atenuado en el cefalotórax.Anténula con siete artejos, tercer segmento con

filamento sensitivo. Antena birramosa conexopodito triar ticulado. Maxila formada por unbasis largo y robusto. Los pereiópodos 1-4 contres segmentos tanto en el exopodito comoen el endopodito.

La fórmula setal es:

end expP

11.1.221 0.1.123

P2

1.1.221 1.1.223P

31.1.221 1.1.323

P4

1.1.221 1.0.332

Lugar de recolección: Hotu Hiti y Vinapu.Abundancia: Escasa, en ninguna muestra superóel 10%.

Distribución Geográfica: Mediter ráneo(Steuer, 1940); Islas Carolinas, Pacífico occiden-tal (Vervoort, 1964), Ria de Faro-Olhão, Portu-gal, Atlántico (Vilela, 1965).

Familia Harpacticidae Sars, 1904Harpacticus littoralis Sars, 1910

(Figs. 2b, 5 y 6).

Cuerpo largo y estrecho, más ancho en el extre-mo anterior. Cefalotórax con una mancha azul obscu-ra dorsal. Anténula con nueve artejos, tercer y cuartoartejo más largos que el segundo. Antena birramosacon exopodito biarticulado. Maxilípedo prensil. El pri-mer pereiópodo tiene endopodito y exopodito prensil.Los pereiópodos 2-4 tienen tres segmentos en elexopodito y en el endopodito. En el macho, el segun-do y tercer pereiópodo están modificados.

El quinto pereiópodo de la hembra tiene elbasiendopodito con cuatro cerdas y el exopoditocon cinco cerdas. Furca más ancha que larga.


end expP

21.1.221 1.1.223

P3

1.1.321 0.1.332P

41.1.221 1.1.323

Lugar de recolección: Hotu Hiti, Vinapu, ApinaNui y Tahai.

Abundancia: Escaso en todas las pozas.Distribución Geográfica: Costa sur y oeste deNoruega, Atlántico (Sars, 1910), Helgoland, Mardel Norte, Atlántico (Klie, 1927), Irlanda, Atlánti-co (Farran, 1913), Bahía Chesapeake, Atlántico(Wilson, 1932), Lago Chilca, Golfo de Bengala,Océano Índico (Sewell, 1924).

47Copépodos intermareales de isla de Pascua

Harpacticus sp.(Figs. 2c y 7)

Anténula con nueve artejos. Antena birramosacon exopodito biarticulado. Maxilípedo prensil, muyfuerte. Primer pereiópodo con endopodito y exopoditoprensil; end mucho más corto que el primer segmen-to del exp. Los pereiópodos 2-4 tienen tres segmen-tos en el exopodito y el endopodito. En el macho, elsegundo y tercer pereiópodo, están modificados.

El basiendopodito del quinto pereiópodo de la hem-bra lleva cuatro espinas y su exopodito tiene cinco. Enel macho, el exopodito tiene igual número de espinas.


end expP

21.1.221 1.1.232

P3

1.1.321 1.1.332P

41.1.230 1.1.332

Lugar de recolección: Hotu Hiti, Vinapu.Abundancia: En general escaso; pero en Hotu Hiti-2 alcanzó un 25%.

Harpacticus gurneyi Jakubisiak, 1933(Figs. 2d y 9).

Cuerpo levemente delgado, en vista dorsal.Anténula con nueve artejos. Antena birramosa conexopodito biarticulado. Maxilípedo prensil. Primerpereiópodo con endopodito y exopodito prensil.Los pereiópodos 2- 4 tienen tres segmentos enel exopodito y el endopodito.


end expP

21.1.220 1.1.232

P3

1.1.330 1.1.323P

41.1.230 0.1.323

Lugar de recolección: Vinapu, Apina Nui y Tahai.Abundancia: Escaso.Distribución geográfica: Mediterráneo (Jakubisiak,1933), Atlántico (Yeatman, 1962).

Perissocope adiastaltus Wells, 1968(Figs. 2e y 10).

Cuerpo fusiforme. Mancha ocular roja en elcefalotórax. Anténula con ocho artejos. Antenabirramosa con exopodito biarticulado. Maxilípedoprensil, con basis delgado. Primer pereiópodocon endopodito y exopodito prensil. Con sedainterna proximal en el último segmento delendopodito. Los pereiópodos 2-4 tienen tres seg-

mentos en el exopodito y el endopodito, los seg-mentos distales de sus exopoditos muy alarga-dos.

El basiendopodito del quinto pereiópodo de lahembra lleva cinco sedas y su exopodito es ovoi-de y tiene cuatro sedas apicales y dos laterales.


end expP

20.1.030 0.0.132

P3

1.1.230 0.0.232P

41.1.230 0.1.232

Lugar de recolección: Tahai.Abundancia: Abundante, superó el 25% de loscopépodos recolectados en esa localidad.Distribución geográfica: Mediterráneo (Wells, 1968).

Familia Tisbidae Stebbing, 1910Scutellidium australe (T. Scott) 1912

(Figs. 2f y 11).

Cuerpo ciclopiforme, comprimido dorsoven-tralmente, con cefalotórax amplio. Anténula connueve artejos, siendo los tres primeros los máslargos; lleva filamento sensitivo en el cuarto ynoveno segmento. Antena birramosa. Primerpereiópodo triarticulado; endopodito más largo queel exopodito; segmento terminal del endopodito condos espinas fimbriadas. Los pereiópodos 2-4 tienentres segmentos en el exopodito y el endopodito.

El exopodito del quinto pereiópodo de la hembraes ovoide y lleva tres sedas apicales y dos laterales.


end expP

21.2.230 0.1.223

P3

0.2.320 1.1.323P

41.2.220 1.1.323

Lugar de recolección: Vinapu y Apina Nui.Abundancia: Escaso en ambas localidades.Distribución geográfica: Antártica (Scott, 1912),Atlántico (Pallares, 1968), Montemar, Pacíficosuroriental (Goddard, 1993).

Tisbe varians T. Scott, 1914(Figs. 2g y 12).

Cuerpo ciclopiforme, comprimido dorsoven-tralmente, con cefalotórax amplio. Anténula conocho artejos, el cuarto con filamento sensitivo.Antena birramosa; exopodito con cuatro ar tejos.Maxilípedo no prensil. Primer pereiópodo con


endopodito más largo que el exopodito, prensil.Tercer segmento del endopodito con dos sedas,una de ellas suavemente penicilada. Ambas ra-mas de los pereiópodos 2-4 son triarticuladas.


end expP

21.2.320 1.1.223

P3

1.2.330 1.1.323P

41.2.320 1.1.323

Lugar de recolección: Hotu Hiti y Vinapu.Abundancia: Medianamente abundante, enVinapu se encontró una abundancia de 12%.Distribución: Atlántico sur (Scott, 1914)

Familia Porcellidiidae Sars, 1904.Porcellidium rubrum Pallares, 1966.

(Figs. 2h, 13 y 14).

Cuerpo ovoide, comprimido dorsoventralmente.Color rojo. Anténula con seis ar tejos. Antenabirramosa con exopodito monoarticulado. Maxilípedopoco desarrollado. Primer pereiópodo con endopoditobiarticulado y exopodito triarticulado. Los pereiópodos2-4 tienen tres segmentos en el exopodito y en elendopodito. Quinto pereiópodo de la hembra conexopodito lanceolado, con una espina en el bordeexterno; su basiendopodito está reducido.


end expP

21.2.121 1.1.220

P3

1.2.230 1.1.323P

41.1.121 1.1.323

Lugar de recolección: Vinapu y Tahai.Abundancia: Relativamente abundante, casi un20% en Hotu Hiti.Distribución: Atlántico (Pallares, 1966), Cerro Ver-de, Concepción Pacífico suroriental (Lépez, 1966).

Familia Peltidiidae Sars, 1904. Peltidium sp. (Figs. 3a y 15).

Cuerpo isopodiforme, muy ornamentado,aplastado dorsoventralmente, color rojo inten-so. Anténula con siete ar tejos lleva filamentosensitivo en tercer y cuarto segmento. Antenabir ramosa con exopodito b iar t iculado.Maxilípedo prensil. En el primer pereiópodosólo el exopodito es prensil; endopoditolamelar con cuatro sedas en el segmentodistal. Ambas ramas de los pereiópodos 2-4son triar ticuladas.

El exopodito del quinto pereiópodo presen-ta una fuerte espina dentada.


end expP

21.2.120 1.1.223

P3

1.1.320 1.1.323P

41.2.120 1.1.223

Lugar de recolección: Vinapu.Abundancia: Muy escaso, sólo se recolectarondos ejemplares.

Familia Thalestridae Sars, 1905Subfamilia Pseudotachidiinae Lang, 1936

Idomene simulans (Brady, 1910) (Figs. 3b y 16).

Cuerpo achatado dorsoventralmente, cefalosomaredondeado. Color café muy obscuro. Presenta tresespínulas en las placas epimerales. Anténula consiete artejos, filamento sensitivo en el cuarto. An-tena birramosa, con exopodito biar ticulado.Maxilípedo prensil, con una fuerte espina en laparte distal del basis. Primer pereiópodo conendopodito triarticulado prensil; su exopodito esmás cor to que el segmento proximal delendopodito; último artejo del exopodito con cincosedas. Los pereiópodos 2-4 tienen tres segmen-tos en el exopodito y en el endopodito.

Exopodito del quinto pereiópodo con 6 espi-nas tanto en el macho como en la hembra.Basiendopodito con cinco espinas en la hem-bra y dos en el macho.


end expP

21.2.230 1.1.232

P3

1.1.330 1.1.332P

41.1.330 1.1.332

Lugar de recolección: Hotu Hiti, Vinapu yApina Nui.Abundancia: Escaso en las localidades en quese recolectó.Distribución: Antártica (Brady, 1910), Ria de Faro-Olhão, Portugal, Atlántico (Vilela, 1965), costaoeste de África, Atlántico (Kunz, 1963).

Familia Diosaccidae Sars, 1906 Diosaccus varicolor (Farran, 1913)

(Figs. 3c y 17).

Cuerpo engrosado hacia el extremo cefálico,con segmentos torácicos y abdominales de co-


lor canela. Rostro alargado. Anténula con ochoartejos, filamento sensitivo en el cuarto. Antenabirramosa con exopodito biar ticulado. Primerpereiópodo con su endopodito mucho más largoque el exopodito. Los pereiópodos 2-4 con ra-mas triarticuladas.

Quinto pereiópodo de la hembra de color ca-nela, su basiendopodito lleva cinco sedas, lacentral de mayor longitud y su exopodito tieneseis sedas. La hembra por ta dos sacosovígeros.


end expP

20.2.121 0.1.223

P3

1.1.221 0.1.332P

40.1.232

Lugar de recolección: Hotu Hiti y Vinapu.Abundancia: Escaso.Distribución: Mediterráneo (Klie, 1942), Atlántico(Roe, 1959).

Metamphiascopsis nicobaricus Sewell, 1940(Figs. 3d y 18).

Anténula con nueve artejos. Antena birramosacon exopodito triarticulado, su segmento mediodesnudo. Maxilípedo prensil, con basis delgado.Primer pereiópodo con tres artejos, el distal concinco sedas. Los pereiópodos 2-4 tienen tres seg-mentos en el exopodito y el endopodito.

Basiendopodito del quinto pereiópodo de lahembra con cinco sedas, la central más larga;exopodito con seis sedas. La hembra posee dossacos ovígeros.


end expP

21.2.121 1.1.223

P3

1.2.321 1.1.332P

41.1.221 1.1.223

Lugar de recolección: Hotu Hiti.Abundancia: Escaso.Distribución: Índico (Sewell, 1940), Islas Nicobar,Índico (Wells & Rao, 1987)

Familia Metidae Sars, 1910Metis holothuriae (Edwards, 1891)

(Figs. 3e y 19).

Cuerpo corto, piriforme, con cefalotórax muydesarrollado, urosoma reducido. Rostro cua-

drangular con dos espinas apicales. Color rojointenso. Anténula con siete ar tejos. Antenabirramosa sin exopodito. Los pereiópodos 2-4tienen tres segmentos en el exopodito y en elendopodito.


end expP

20.1.220 0.1.131

P3

1.1.220 0.1.231P

41.0.220 0.0.221

Lugar de recolección: Hotu Hiti.Abundancia: Escaso.Distribución: Islas Nicobar, Islas Maldivas, Índico(Sewell, 1940), Australia oeste, Índico (Nicholls,1941a), sur de Australia, Índico (Nicholls, 1941b).Bahía Santos, costa brasilera, Atlántico (Carvalho,1952), Angola, África occidental, Atlántico(Candeias, 1959), Islas Carolinas, Pacífico occi-dental (Vervoort, 1964). Bahía Kiusiu, Pacífico oc-cidental (Tanaka & Hue, 1968).

Familia Lourinidae Monard, 1927Lourinia armata (Claus, 1866)

(Figs. 3f y 20).

Cuerpo cilíndrico alargado. Color verdoso.Anténula corta con siete con artejos. Antena cor-ta y fuerte, exopodito reducido, representado porun proceso cónico, con dos sedas. Maxilípedo muyreducido. Desde el primer a cuarto pereiópodolos exopoditos son triarticulados y los endopoditosbiarticulados.


end expP

21.311 0.1.132

P3

1.321 0.1.123P

41.220 0.1.123

Lugar de recolección: Se encontró en todas laslocalidades estudiadas, a excepción de Apina Nui.Abundancia: Muy abundante, en Hotu Hiti-1 (24%)y en Tahai (23%).Distribución: Islas Nicobar, Índico (Sewell, 1940),sur de Australia (Nicholls, 1941b), Índico; Costabrasileña, Atlántico (Jakobi, 1954), Isla Tenerife,Atlántico (Noodt, 1955). Islas Carolinas Pacíficooccidental (Vervoort, 1964).

DISCUSIÓN

Las características de la especie del géneroEctinosoma concuerdan con Ectinosoma


dentatum, redescrito por Vervoort (1964), sólodifiere, levemente en la fórmula setal de losexopoditos del tercer y cuarto pereiópodo, sien-do respectivamente 1.1.322 y 1.1.322, en losejemplares de las islas Carolinas, Pacífico occi-dental.

Según Lang (1948), Harpacticus littoralis pre-senta características similares a Harpacticusquelifer en la setación, lo cual incluye en su TablaVI. De acuerdo a esto la única discrepancia conla especie de isla de Pascua es la falta de unaseda interna en el primer exopodito del tercerpereiópodo. El segundo endopodito del macho,concuerda con el descrito por Lang (1945), aun-que este autor señala que la longitud de la espi-na es variable.

Harpacticus sp. Esta especie aún no ha sidoclasificada y no se descarta la posibilidad que setrate de una especie nueva.

Harpacticus gurneyi fue determinado de acuer-do a Wells (1976) y se separa fácilmente de lasdemás especies por el número de sedas en elsegmento distal de los endopoditos 2-4, siendorespectivamente 4:6:5. Del mismo modo,Perissocope adiastaltus posee en el segmentodistal de los exopoditos de los pereiópodos 2-4,7:8:7 sedas respectivamente y en los segmen-tos distales de los exopoditos respectivos, 5:6:5sedas.

Scutellidium australe concuerda con laredescripción de la especie hecha por Pallares(1968), aunque en ella no se representó el cuar-to pereiópodo.

Tisbe varians, redescrita por Pallares (1968),concuerda completamente con la especie reco-lectada en isla de Pascua.

Porcellidium rubrum fue descrito primeramentepor Pallares (1966) y después recolectado encerro Verde, bahía de Concepción por Lépez(1966). Los ejemplares de isla de Pascua sonconcordantes con la descripción original.

Peltidium sp. aún no ha sido asignada a algu-na especie en particular, debido a que sólo serecolectaron dos ejemplares. El mal estado delquinto pereiópodo, no permite hacer una bue-na observación. Sin embargo, la especie pre-senta bastante similitud con Peltidium laudatumTanaka y Hue, 1968; par ticularmente en la es-tructura de los tres primeros pereiópodos, y lapresencia de una fuerte espina dentada en elquinto.

Idomene simulans se determinó a partir de laclave propuesta por Vervoort (1964), donde la es-pecie se separa por la presencia de tres espínulasen las placas epimerales. Por otra parte, Vilela(1965) señala que tales espínulas son decisivasen la determinación de la especie, que es de colorcastaño amarillento. Sin embargo, Vilela (1965)no realizó su disección ya que sólo contaba con unejemplar. Por este motivo, las discrepancias en-contradas entre los ejemplares de isla de Pascuay el de Ria de Faro-Olhão pueden deberse a obser-vaciones incompletas. En particular, la presenciade seis sedas en el quinto exopodito de la hembrarapanui y cinco en la especie portuguesa.

Diosaccus varicolor se determinó de acuerdoa Wells (1976) y se separó de las demás espe-cies por el número de sedas en el borde externodel segmento distal de los exopoditos 2-4, sien-do respectivamente 3:3:2.

Metamphiascopsis nicobaricus se determinóde acuerdo a Wells (1976) y se separó de lasdemás especies por el número de sedas en elborde interno de los segmentos medios de losendopoditos 2-4, siendo respectivamente 2:2:1;la ausencia de sedas en segundo exopodito de laantena y la relación entre el número de sedas delbasiendopodito respecto del exopodito del quintopereiópodo, en el macho, es de 2:6.

Los ejemplares de Metis holothuriae concuer-dan en gran parte con la redescripción de Vervoort(1974), algunas diferencias radican en la presen-cia, en el tercer pereiópodo de la especiepascuense, de una seda interna tanto en el segun-do segmento del endopodito como en el segundosegmento de exopodito. Por otra parte hay cincosedas en tercer exopodito del cuarto pereiópodo,no seis como en la especie de islas Carolinas, enel Pacífico occidental. Al comparar la especie deisla de Pascua, con la redescripción de M.holothuriae, de Kyushu, Japón, realizada por Tanaka& Hue (1968), hay similitudes con la especie deVervoort (1974), salvo en la presencia de una sedainterna en el segundo segmento del exopodito, deltercer pereiópodo, que se encuentra tanto en laespecie de isla de Pascua como la de Kyushu.

Lourinia armata es la única especie de la fa-milia Louriniidae, que fue redescrita por Vervoort(1974). El ejemplar de isla de Pascua concuerdacompletamente con el de islas Carolinas, en elPacífico occidental.

De las doce especies determinadas, solo dosde ellas han sido recolectadas en el Pacífico orien-tal: Scutellidium australe y Porcellidium rubrum;


tres en el Océano Índico: Harpacticus littoralis,Metamphiascopsis nicobaricus, Lourinia armatay diez en el océano Atlántico. Esto no significaque no se pueda ampliar su distribución, dado elescaso conocimiento de la fauna local de muchasáreas marinas.

También se puede ver que hay una mayor re-lación con la región indopacífica que con el conti-nente, encontrándose en común sólo dos espe-cies, Scutellidium australe y Porcellidium rubrum.Según George (1996) son muy pocos los estu-dios en pozas de marea del litoral chileno, demodo que estas comparaciones son, por ahora,bastante incompletas.

En consecuencia, 12 de las 14 especies reco-lectadas en isla de Pascua, son nuevos registrospara aguas del Pácifico suroriental, exceptuandoScutellidium australe y Porcellidium rubrum. Delmismo modo, las familias Ectinosomatidae,Peltidiidae, Metidae y Lourinidae, también consti-tuyen un primer registro para nuestro país, ya quede acuerdo a George (1996), estas familias no sehan encontrado en Chile continental.

El conocimiento de la sistemática de la faunacopepodológica intermareal de isla de Pascua,constituye un vasto campo de investigación, con-siderando que se ha descrito sólo una pequeñaparte de las especies allí presentes. Junto a loanterior los estudios de distribución de estas es-pecies, al igual que su mayor conocimientobiogeográfico, permitirá una mejor comprensiónde la distribución de estos organismos en isla dePascua y en Chile continental.

AGRADECIMIENTOS

Se agradece al Comité Oceanográfico Na-cional por el financiamiento del crucero CIMAR5-Islas. Al Prof. Patricio Domínguez de la Univer-sidad Católica de Valparaíso por las facilidadesotorgadas para el uso de la cámara clara. A laProf. Gladys Asencio de la Universidad Austral,por su apoyo bibliográfico y al Sr. Nesko Kuzmicic,de la Universidad de Valparaíso, por la recolec-ción de las muestras en isla de Pascua.

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53

Copépodos interm

areales de isla de Pascua

Fig. 1: Área de estudio y estaciones de muestreo.Fig. 1: Study area and sampling stations.


Fig. 2: a. Ectinosoma dentatum; b. Harpacticus littoralis, c. Harpacticus sp., d. Harpacticus gurneyi,e. Perissocope adiastaltus, f. Scutellidium australe, g. Tisbe varians, h. Porcellidium rubrum.La escala representa 0,5 mm.

Fig. 2: a. Ectinosoma dentatum; b. Harpacticus littoralis, c. Harpacticus sp., d. Harpacticus gurneyi,e. Perissocope adiastaltus, f. Scutellidium australe, g. Tisbe varians, h. Porcellidium rubrum.Scale represents 0,5 mm.


Fig. 3: a. Peltidium sp; b. Idomene simulans; c, Diossacus varicolor; d. Metamphiascopsis nicobaricus; e. Metisholothuriae; f. Lourinia armata. La escala representa 0,3 mm.

Fig. 3: a. Peltidium sp; b. Idomene simulans; c, Diossacus varicolor; d. Metamphiascopsis nicobaricus; e. Metisholothuriae; f. Lourinia armata. Scale represents 0,3 mm.


Fig. 4: Ectinosoma dentatum, hembra. a. A2; b. Mx; c. Mxp ; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4 h. P5.Fig. 4: Ectinosoma dentatum, female. a. A2; b. Mx; c. Mxp ; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4 h. P5.


Fig. 5: Harpacticus littoralis, hembra. a. A1; b. A2; c. Mxp ; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4.Fig. 5: Harpacticus littoralis, female. a. A1; b. A2; c. Mxp ; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4.


Fig. 6: Harpacticus littoralis, macho. a. P2; b. P3; c. P5.Fig. 6: Harpacticus littoralis, male. a. P2; b. P3; c. P5.


Fig. 7: Harpacticus sp. hembra. a. A1; b. P1; c. Harpacticus sp. macho; c. P1; d. P2.Fig. 7: Harpacticus sp. female. a. A1; b. P1; c. Harpacticus sp. male; c. P1; d. P2.


Fig. 8: Harpacticus sp., hembra. a. A2; b. Mxp ; c. P2; d. P3; e. P4; f. P5.Fig. 8: Harpacticus sp. female. a. A2; b. Mxp ; c. P2; d. P3; e. P4; f. P5.


Fig. 9: Harpacticus gurneyi, hembra. a. A1; b. A2; c. Mxp ; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4.Fig. 9: Harpacticus gurneyi, female. a. A1; b. A2; c. Mxp ; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4.


Fig. 10: Perissocope adiastaltus, hembra. a. A1; b. A2; c. Mxp ; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4; h. P5.Fig. 10: Perissocope adiastaltus, female. a. A1; b. A2; c. Mxp ; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4; h. P5.


Fig. 11: Scutellidium australe, hembra. a. A1; b. A2; c. Mxp ; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4; h. P5.Fig. 11: Scutellidium australe, female. a. A1; b. A2; c. Mxp ; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4; h. P5.


Fig. 12: Tisbe varians, hembra. a. A1; b. A2; c. Mxp; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4; h. P5.Fig. 12: Tisbe varians, female. a. A1; b. A2; c. Mxp; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4; h. P5.


Fig. 13: Porcellidium rubrum, hembra. a. A1; b. A2; c. Palpo mandibular; d. P5; e. vista dorsal izquierda de abdomeny furca.

Fig. 13: Porcellidium rubrum, female. a. A1; b. A2; c. mandibular palp; d. P5; e. abdomen and furca left dorsal side.


Fig. 14: Porcellidium rubrum, hembra. a. P1; b. P2; c. P3; d. P4.Fig. 14: Porcellidium rubrum, female. a. P1; b. P2; c. P3; d. P4.


Fig. 15: Peltidium sp. a. Rostro, vista ventral; b. A1; c. A2; d. Mxp ; e. P1; f. P2; g. P3; h. P4; i. P5.Fig. 15: Peltidium sp. a. Rostrum, ventral view; b. A1; c. A2; d. Mxp ; e. P1; f. P2; g. P3; h. P4; i. P5.


Fig. 16: Idomene simulans. a. A1; b. Mxp; c. P1; d. P2; e. P3; f. P5; g. P5; h. P5. a, b, f y g hembra. c, d, e, h, machoFig. 16: Idomene simulans. a. A1; b. Mxp; c. P1; d. P2; e. P3; f. P5; g. P5; h. P5. a, b, f and g female. c, d, e, h, male.


Fig. 17: Diossacus varicolor, hembra. a. A1; b. A2; c. Mxp ; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4; h. P5.Fig. 17: Diossacus varicolor, female. a. A1; b. A2; c. Mxp ; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4; h. P5.


Fig. 18: Metamphiascopsis nicobaricus, hembra. a. A1; b. A2; c. Mxp ; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4; h. P5.Fig. 18: Metamphiascopsis nicobaricus, female. a. A1; b. A2; c. Mxp ; d. P1; e. P2; f. P3; g. P4; h. P5.


Fig. 19: Metis holothuriae, hembra. a. A1; b. A2; c. P1; d. P2; e. P3; f. P4.Fig. 19: Metis holothuriae, female. a. A1; b. A2; c. P1; d. P2; e. P3; f. P4.


Fig. 20: Lourinia armata, hembra. a. A1; b. A2; c. P1; d. P2; e. P3; f. P4; g. P5.Fig. 20: Lourinia armata, female. a. A1; b. A2; c. P1; d. P2; e. P3; f. P4; g. P5.

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COPÉPODOS DE POZAS INTERMAREALES DE ISLA DE PASCUA · 2008. 10. 13. · Copépodos intermareales de isla de Pascua 47 Harpacticus sp. (Figs. 2c y 7) Anténula con nueve artejos