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DIAGNÓSTICO DE LA DIVERSIDAD GENÉTICA DE RAZAS Y VARIEDADES DE MAÍZ NATIVO PARA LA TOMA DE DECISIONES Y LA EVALUACIÓN DE PROGRAMAS DE CONSERVACIÓN June Simpson Octavio Martínez de la Vega

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DIAGNÓSTICO DE LA

DIVERSIDAD GENÉTICA DE RAZAS

Y VARIEDADES DE MAÍZ NATIVO

PARA LA TOMA DE DECISIONES Y

LA EVALUACIÓN DE PROGRAMAS

DE CONSERVACIÓN

June Simpson

Octavio Martínez de la Vega

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Contexto

Conservación in situ

Evaluación de diversidad en materiales criollos sembrados actualmente

Consideraciones de biodiversidad de maíz en México cómo centro de origen; necesidad de conservar materials con propósitos científicos, de mejoramiento y culturales.

Problema complejo con varios factores: muchas variedades criollas cultivadas según necesidades específicas locales, poblaciones aisladas geográficamente, agricultores de edad avanzada y falta de continuidad, exacerbado con reportes de contaminación con material transgénico.

Diversidad en términos reales desconocida.

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Estrategia del Proyecto

Aprovechar muestreos recientes disponibles

Seleccionar cuidadosamente muestras en términos de región

geográfica y caracterización morfológica.

Hasta donde fuera posible incluir muestras de las regiones

más importantes en términos de diversidad: Oaxaca,

Guerrero, Puebla, Michoacán, en donde el germoplasma

criollo está ampliamente cultivado.

Oportunidad de estimar presencia de transgenes en un número

amplio de muestras en regiones geográficas distintas.

Información mínima requerida para cada muestra:

Localización con GPS, datos morfológicos (raza, color y

características de semillas).

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Desarrollo de base de datos: GenoMaiz DB

Distribuciónde colectasdel Estadode Puebla

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Definición de estrategia de muestreo

Pop 1

Pop 2

Pop n

Pop x Acc 1 Acc

1

Cortesia Dr. R. Sawers,

LANGEBIO, Cinvestav, Irapuato.

60 alelos=30 plantas

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Determinación de SSR´s más informativas

LOCUS NUMERO

BIN

PHI427913 1.01

PHI064 1.11

PHI96100 2.00-2.01

PHI127 2.07

PHI053 3.05

PHI072 4.01

PHI093 4.08

PHI109188 5.03

PHI031 6.04

PHI034 7.02

PHI051 7.06

PHI015 8.08

PHI033 9.02

PHI96342 10.02 Análisis en secuenciador ABI con software Genemapper

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Detección de transgenes

Se incluyeron también 2 marcadores para

transgenes:Promotor 35S y 3´NOS, MON810,

NK603 y MON863 usados como controles

positivos.

Algunas mezclas serán analizados a nivel de

plantas individuales para tener una idea más

precisa de la presencia de los transgenes.

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Resumen de muestras analizadas

Puebla 185 accesiones

Guanajuato 84 accesiones

Tabasco 20 accesiones

Tlaxcala 50 accesiones

Michoacán 226 accesiones

Guerrero 227 accesiones

Oaxaca 117 accesiones

Palomero 32 accesiones

Teocintle 24 accesiones

TOTAL DE ACCESIONES 965

TOTAL DE MEZCLAS 2895

TOTAL DE MUESTRAS 28950

14 SSR´s, 2 marcadores transgenes

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Tipos de Maíz/teosinte analizados

33 tipos/razas de maíz: 33 tipos/razas de maize: Pepitilla, Tuxpeno, Elotes Occidentales, Conejo, Elotes Conicos, Ancho,

Olotillo, Perla, Celaya, Vandeno, Arrocillo, Tepecintle, Tuxpeno Norteno,

Zapalote Grande, Raton, Onaveno, Bolita, Chalqueno, Tehuacanero, Maiz

Dulce, Mushito, Conico Norteno, Tabloncillo Zamorano, Mil granos, Tablilla

de Ocho, Amarillo de montana, Complejo Serrano de Jalisco, Elotero de

Sinaloa, Palomero Toluqueno, Reventador, Comiteco, Zapatole Chico,

Cacahuacintle,

3 tipos/razas de Teosinte: Raza Chapala (nuevo)

Zea mays-subspecies Mexicana, Raza Mesa central-

Zea mays-subspecies Mexicana, Raza Balsas- Zea

mays-subspecies Parviglumis

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Ejemplos de datos obtenidos

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Resumen alelos Puebla

SSR No. Alelos

identificados en

este estudio

Total=218

No. Alelos

reportados-criollos

No. Alelos

reportados-líneas

endogámicas

PHI 015 14 (69-108) 21 (76-113) 11 (83-104)

PHI 033 17 (225-271) 16 (237-270) 12 (224-263)

PHI 034 20 (95-162) 13 (123-160) 8 (123-148)

PHI 051 8 (127-150) 13 (137-154) 8 (139-148)

PHI 053 16 (158-201) 9 (169-212)

PHI 064 22 (70-142) 20 (75-121) 14 (75-110)

PHI 072 14 (124-164) 13 (219-301) 8 (235-300)

PHI 093 10 (273-303) 19 (272-296) 12 (284-294)

PHI127 11 (103-131) 10 (105-128) 7 (112-128)

PHI 96100 16 (260-305) 18 (219-301) 11 (235-300)

PHI 96342 19 (208-259) 20 (ND) 10 (ND)

PHI 427913 13 (110-145) 9 (117-135) 9 (117-207)

PHI 109188 20 (112-182) 17 (148-180) 10 (148-171)

PHI 031 18 (188-241) 4 (187-227)

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Comparación de distancias dentro y entre accesiones

La distancia dentro de accesiones es significativamente menor que entre

accesiones sugiriendo congruencia entre los datos genéticos y los morfológicos

así como una estructura poblacional bien definida.

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Se probaron distintos métodos de distancia para agrupar las

accesiones: El mejor fue el método del promedio (UPGMA)

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Se probaron distintos métodos de distancia para agrupar las

accesiones: El mejor fue el método del promedio (UPGMA)

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Existen combinaciones marcador-alelo fuertemente asociadas con

altura sobre el nivel del mar

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Existen combinaciones marcador-alelo fuertemente asociadas con

altura sobre el nivel del mar

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Se diseñó un método para evaluar el parecido entre dendrogramas

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Se agrupó a las accesiones por tipo, mostrando que la clasificación

fenotípica es robusta

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Existen combinaciones marcador-alelo fuertemente asociadas

con el tipo de maíz

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Regiones geográficas

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Color de semilla

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Se diseñó un coeficiente de “rareza” que es útil en la

clasificación de las accesiones para conservación

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Se diseñó un coeficiente de “rareza” que es útil en la

clasificación de las accesiones para conservación

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Conjuntos de accesiones que mejor representan la diversidad

encontrada: Un algoritmo para encontrarlas

1- Comenzar con la matriz de datos, m (t accesiones x n alelos), y vectores vacíos de genotipos seleccionados, G, y rareza, R.

2- De m obtener el vector de rareza R.

3- Obtener una lista de accesiones (renglones de m) con combinaciones únicas marcador-alelo e incluirlas en G.

4- Obtener un vector c de orden n con 1 para las combinaciones obtenidas en (3) y 0 de otra manera

5- Si la suma de c es igual a n mostrar los resultados, de otra manera…

6- Para cada accesión en m calcular la ganancia en marcador-alelos

7- Seleccionar los renglones con mayor ganancia, si hay empates seleccionar las accesiones con mayor rareza.

8- Incluir en G las accesiones seleccionadas, actualizar c e ir al paso (5).

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Conjuntos de accesiones que mejor representan la diversidad

encontrada: Un algoritmo para encontrarlas

Aplicando el algoritmo se obtiene que alrededor de

15% de las accesiones por estado y 10% en la

colección total son suficientes para conservar todas

las combinaciones marcador alelo.

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Conjuntos de accesiones que mejor representan la diversidad

encontrada: Un algoritmo para encontrarlas

Es posible modificar el algoritmo para incluir

características fenotípicas en la selección

Esto permitirá hacer más eficientes a los programas

de conservación tanto in situ como ex situ.

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Lista accesiones poco comunes

Tabla 4. Lista de accesiones “raras” encontradas en el estado de Puebla.

IDLan Loc Tipo Color Alt

PL014 AcatlandeOsorio Oloton Blanco 1196

PL021 Atlixco Conico Blanco 2325

PL038 TeteladeOcampo Conico Amarillo

PL039 Tlachichuca Conico Amarillo 2626

PL046 Aljojuca Conico Rojo 2481

PL048 Chignahuapan Elote-Conico Negro 2400

PL059 Tlachichuca Elote-Conico Azul 2630

PL070 SanJeronimoXayacatlan Elote-Conico Azul 1287

PL078 Chila Pepitilla Blanco 1670

PL093 Axutla Olotillo Blanco 861

PL094 Xicotepec Tuxpeno Blanco-Ahumado 177

PL100 Tehuitzingo Vandeno Blanco 1056

PL102 Chignahuapan Chalqueno Blanco 2560

PL107 SanNicolasBuenosAires Chalqueno Blanco 2412

PL108 Soltepec Chalqueno Cremoso 2464

PL112 Tepatlaxco Bolita Rojo 2390

PL131 Tochimilco Arroceno Blanco 1988

PL135 Altepaxi Tehucanero Azul 1314

PL139 AlbinoZertuche Cristalino-Ocho Blanco 1295

PL150 SanNicolasBuenosAires Ochenteno Blanco

PL153 Ahuehuetitla Blanco Blanco

PL169 Pantepec Mezcla Blanco 202

PL180 San Nicolas Buenos Aires Arrocillo Blanco-cremoso 2401

PL181 San Nicolas Buenos Aires Arrocillo Blanco-cremoso 2387

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Distribución muestras “raras”

Figura 6. Mapa de la distribución de los materiales con perfiles genéticos menos

comunes.

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Muestras con transgenes mezclas

ESTADO 35S

(MUESTRAS

POSITIVAS)

% NOS(MUESTRAS

POSITIVAS)

% COMUNES35y

NOS(MUESTRAS

POSITIVAS)

% NRO.TOTALDEMUESTRAS

(3mezclaspor

accesión)

PUEBLA 61 10.99 50 9.01 10 1.8 555

GUANAJUATO 29 11.51 14 5.55 2 0.79 252

TABASCO 5 8.33 0 0 0 0 60

TLAXCALA 5 3.33 1 0.67 0 0 150

TEOCINTLE 4 5.56 0 0 0 0 72

PALOMERO 2 2.08 2 2.08 0 0 96

MICHOACAN 27 3.98 14 2.07 0 0 678

GUERRERO 46 6.75 10 1.47 3 0.44 681

OAXACA 4 1.14 11 3.13 0 0 351

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Transgenes plantas individuales

Tabla 6. Resumen de números de plantas individuales con marcadores de

transgenes por accesión (30 plantas/ accesión).

Accesión Número de Plantas

positivos para 35S Número de Plantas

positivos para NOS Número de Plantas

positivos para 35S y

NOS

GT011 5 0 0

GT061 3 1 1

PL053 1 0 0

MC027 1 1 0

MC083 4 0 0

MC265 1 0 0

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Distribución de muestras con transgenes

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CONCLUSIONES

1) La estrategia de emplear mezclas de muestras para cada accesión con 14 SSR´s distribuídos a través

del genoma de maíz fue muy adecuada para determinar los perfiles genéticos de los materiales de

manera sencilla, eficiente y relativamente bajo en costo.

2) El índice Ri desarrollado a través del proyecto por el Dr. Octavio Martínez de la Vega es una

herramienta de mucha utilidad para identificar materiales geneticamente raras, los cuales son candidatos

importantes para entrar en programas de conservación. Aunque no fue un objetivo principal creemos que

la estrategia merece publicación en una revista de impacto internacional dado el interés actual en el

manejo y conservación de germplasma vegetal a nivel mundial.

3) El uso del índice Ri en conjunto con los datos de GPS y la información morfológica mas amplia de las

colectas permite identificar precisamente las accesiones de mayor interés para dar seguimiento en

programas de conservación.

4) Será posible basado en la estrategia empleada diseñar una metodología para el monitoreo de la

presencia y dispersión de materiales geneticamente diversos en términos de tipos y combinaciones de

alelos.

5) La incorporación de análisis de transgenes en el estudio fue efectivo y sencillo y reveló la presencia de

estos eventos en casi todas las localidades muestreadas. No es posible determinar si la presencia de

estos transgenes se debe a eventos de introgresión antiguos o son recientes sin llevar a cabo un análisis

más profundo.

6) El muestreo de plantas individuales confrimó los resultados de los transgenes en las mezclas y

demostró una gran variabilidad en los niveles de transgenes en plantas individuales en cada accesión.

7) La presencia de transgenes es relativamente baja en la mayoría de los casos y a simple vista no

parece que la morfología general de las poblaciones criollas ha cambiado debido a la presencia de ellos.

Sin embargo es esencial incorporar este tipo de análisis en los análisis de poblaciones de criollos para

dar seguimiento y monitorear la presencia y dispersión de materiales transgénicos.

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El Equipo!!

Emigdia AlfaroFernando HernándezLucrecia ContrerasAlejandra NúñezJesica OchoaLorena OrduñaBrenda GuerreroMaría de Jesús González Dra. Corina HayanoDr. Octavio MartínezDr. José Luis PonsDr. Humberto Reyes

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PISAC (CUSCO-PERU)

Dr. Efraín de la Cruz (Semillas de Tabasco)Dr. José Luis Herrera y el equipo del plan maestro (Semillas de Tlaxcala,Puebla)Dr. Alfredo Carrera Valtierra (Semillas de Michoacán)Dr. Noel Gómez Montiel (Semillas de Guerrero)

Dr. Amalio Santacruz-Varela: Acceso a datos

Equipo CIBIOGEM: Sol, Nathalie, Ariel

CONACyT/CIBIOGEM: Apoyo financiero