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小麦 (ハルユタカ) 粒中のプロテインジスルフィドイソメラーゼ (PDI) の分離精製 誌名 誌名 日本食品保蔵科学会誌 ISSN ISSN 13441213 著者 著者 野口, 智弘 新井, 智美 野口, 治子 内野, 昌孝 髙野, 克己 巻/号 巻/号 37巻5号 掲載ページ 掲載ページ p. 245-248 発行年月 発行年月 2011年9月 農林水産省 農林水産技術会議事務局筑波産学連携支援センター Tsukuba Business-Academia Cooperation Support Center, Agriculture, Forestry and Fisheries Research Council Secretariat

小麦 (ハルユタカ) 粒中のプロテインジスルフィドイソメラー …小麦 (ハルユタカ) 粒中のプロテインジスルフィドイソメラーゼ (PDI) の分離精製

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  • 小麦 (ハルユタカ) 粒中のプロテインジスルフィドイソメラーゼ(PDI) の分離精製

    誌名誌名 日本食品保蔵科学会誌

    ISSNISSN 13441213

    著者著者

    野口, 智弘新井, 智美野口, 治子内野, 昌孝髙野, 克己

    巻/号巻/号 37巻5号

    掲載ページ掲載ページ p. 245-248

    発行年月発行年月 2011年9月

    農林水産省 農林水産技術会議事務局筑波産学連携支援センターTsukuba Business-Academia Cooperation Support Center, Agriculture, Forestry and Fisheries Research CouncilSecretariat

  • 245

    [研究ノート〕

    (ハルユタカ)粒中のプロテインジスルフイ

    イソメラーゼ (PDI)の分離精製

    2011 NO.5 VOL. 37 日本食品保政科学会誌

    小麦

    ( 31 )

    野口智弘*1 ~ .新井智美*2・野口治子叫

    内野昌 孝 ヰ 高 野 克 己*2

    * 1 東京農業大学};t、m生物科学部食品加工技術センター* 2 東京農業大学応用生物科学部生物応用化学科

    Grain (Haruyutaka)

    NOGUCHI Tomohiro*l~ , ARAI Satomi*2, NOGUCI-II HarukoぺUCI-!INO Masataka叫 andTAKANO Katsumi*2

    Wheat Disulfide Isomerase from of Protein Purification

    Food Processing CenteJ; Facu!tア ofApplied Biosoence,あわoUniversity of Agriじu!tw'e,

    J -J -J Sakuragaoka, Setagava-kll, Tokyo J 56-8502

    Department (ゲAppliedBio!ogy and Chemi,¥-rr); Facu!ty ol App!ied Biosoenι'e, Tokyo University of Agricu!ture,

    J -J -J Sakuraga口ka,Setagaya-ku,五?kyo 156-0-8502

    * 1

    * 2

    The protein disulfide isomerase (PDI) enzyme is involved in th巴 formationof disulfide bonds. Here

    we attempted to purify PDI from wheat grain (Triticumaestivum cv. Haruyutaka). As a. result of

    DEAE-Sepharose Fast Flow and affinity chromatography purification, 30. 74units of PDI activity/100g

    of wheat grain were observed in the adsorbed fraction from the affinity chromatography column. The

    molecular weight of this fraction was63kDa as determined by SDS-PAGE analysis. N-terminal amino

    acid sequencing of this63 -kDa protein showed that the sequences of wPDI and this63 -kDa protein

    shared79%identity, On the basis of this result, we assumed that the63 -kDa protein that we purified

    from wheat (Haruyutaka) grain is the same as wPDI, which we used for genetic information, and that

    our expression of this protein was sL1ccessful.

    CReceiv巴dMal¥31, 2011 ; Accept巴dJ ul. 21, 2011)

    山川出生

    Key words : Pnρtein Disu(fide Jsomerase, PDJ, Wheat, Disulfide Bond, Dough

    プロテインジスルフィドイソメラーゼ, PDI,小麦,ジスルフィド結合,

    タンパク質のリフォールデイングを触媒する酵素であるo

    PDIは様々な生物でその存在が明らかにされており,小

    麦のPDIについても様々な研究が行われている。近年,

    小麦粉内在PDIをコードするcDNAが分離され,1さらに

    小麦PDIについてその種類や詳細な遺伝子解析が行われ

    ている九一方で、,小麦より部分精製されたPDIとアス

    コルビン酸を同時に添加することで,生地の物性がl合L仁

    することも示されている九 筆者らは,これまでに小麦

    mRNAからリコンビナントPDI(wPDI)の発現・精製

    に成功し,その性状を報告している6110 しかしながら,

    小麦より PDIを分離精製し取得した報告は,これまでに

    ない。そこで,匡l内産小麦のハルユタカを用い小麦粒か

    らのPDIの分離精製を試みた。

    小麦は主に製粉され小麦粉として利用されている。小

    麦粉は水を加えて練ることで,他の穀類にはみられない

    独特のあliiJit('I~I: を示す生地を形成することから, パ ンや麺,

    菓子など株々な食品に加工されている。この生地は小麦

    の主要構成タンパク質であるグリアジンとグルテニンに

    水を加えて混担することで形成するグルテンによるもの

    である。

    グルテンの形成は,犠々な分子間相互作用や結合が関

    与 していると考えられているが,中でもジスルフィド結

    合が最も主要であると考えられている。しかしながら,

    生地視担時の物理的作用のみでジスルフイド結合が形成

    されるとは考えにくい。

    Protein Disulfide Isomerase lま(PDI ; EC5. 3.4.1)

    干156-8502 東京都世田谷灰桜丘 1-1 -1

    Corresponding author. E-mail: [email protected] 〒156-8502 東京都世間谷区桜丘 1-1 -1

    ームPAvdη/】

    *

    *

  • 246 日本食品保蔵科学会誌 VOL. 37 NO.5 2011 ( 32 )

    試料および実験方法

    1. 試 事ヰ

    試料には,北海道産ハルユタカ (1トitIιlImaestIvlIm cv

    Haruyutaka) をよFJいた。

    2.酵素の抽出

    酵素の抽出はKMl¥UMt¥OI (1998) らの方法を用いた。

    小麦全粒を,マルチビーズショッカーにて破砕し 4倍

    容 (w/v)の 5mMジチオトレイトール (DTT), 50mM

    ~k~化ナトリウム, 10mMエチレンジアミン-N.N, N, N-

    テトラ商ド西空(EDTA), 2 mMフッイヒフェニルメチルス

    ルホニル (PMSF),0.1% (w/v) Triton X-100を合む

    50mMトリス塩酸緩衝液 (pH8.0)を加え,ヒストコロ

    ン(日本医理科機械製作所製)にてさらに破砕し,遠心

    分離(10,000rpm,20min, 4'C) により得られた上澄

    液を粗tJtlI:lJ,液 (F1 )とした。F1を20%飽和硫酸アン

    モニウムにて塩析し,氷冷下で 1fJ寺問静置した後,遠心

    分離 (15,000rpm,20分間, 4 'C)後,得られた上澄液

    を分間分子量25,000の透析!院を別い, 20mMトリス血酸

    (pH8.0) にて 1晩 (4'C)透析することで, PDI活性

    に近似した活性を 示 す分子量13,000のタン パ ク質

    Thioredoxin')や低分子の還元物質を取り除き,遠心分離

    (15,000rpm, 20分間, 4 'C)後の上澄液を粗酵素 (F

    2 )とした。

    3. 小麦POIの精製

    PDIの分離精製は, 20mMトリス塩般緩衝液 (pH

    8.0) にて平衡化したDEAE-SepharoseFast Flowカラ

    ム(中20x 160rnrn, GEヘルスケア社製)に, F 2を供し

    た。溶I:U条件は1.Orne/min, 5.0rne/tubeにて行い,未l段

    着回分をi容1:1:'1後,吸着画分をNaClを含む同緩衝液にて

    ステッフ。ワイズ (0.1, 0.2, 1. OM) を行った。PDIi舌

    性が確認された 匝l分は,さらにお'LPDI抗イ本 (mouse

    Antiserum to wPDI) を用いたアフイニティークロマ

    トグラフイーに供し精裂を行った。カラムにはHiTrap

    NHS-activated HP (5 rnQ, GEヘルスケア社製)を用い,

    遺伝子情報より発現調製した小麦リコンビナント PDIJl

    を抗原として作成したPDIポリクローナル抗体をリガン

    ドとして用いた。先のDEAE-SepharoseFast Flowに

    てPDIの活性の得られた匝l分を20mMリン酸, 0.15M

    NaCl, pH7.0にて平衡化したカラムにアプライ後,未

    吸着画く分を溶出させた後, 1.0Mグリシン一塩酸, 0.5

    M NaCl, pH4.0にてi容出を行った。なお, i容出は1.OrnQ

    !min, 2.0rne/tubeにて行い,酵素活性の保持のため,

    あらかじめフラクションチューブに1.0Mトリス塩酸緩

    衝液 (pH7.0) を1.OrnQ入れi容出した。

    4. POI活性測定法

    PDIの活性測定は, ARNEらの方法汁叫に従いのインス

    リンを用いた方法にて行った。基質である 1% (w/v)

    インスリン溶液はインスリン(和光純薬社製)を50mM

    トリス塩酸緩衝i夜 (pH8.0) に懸濁し, 1 Nt昆般を加え

    溶解後, 1 N水酸化ナトリウムにてpH8.0に調整後, 50

    mMトリス塩酸緩衝液 (pH8.0) にて定谷し調製した。

    試験管に0.4Mリン酸カリウム緩衝液 (pH7.5) 0.25

    rnQ, 8 mM EDT AO. 25rne,インスリンi容i夜O.1rnQ,純水

    0.284rnQをとり,小麦粒から抽出した酵素溶液0.05rnQを

    加えた後, 5 mM DTTO.066rnQを力11え, 会 長 を1.OrnQ

    (終j農度:0.lM1)ン酸カリウム緩衝液 (pH7.5), 2 mM

    EDT A, 1 rng/rnQインスリン, 0.33mM DTT) とし

    て, 25'Cで60分間酵素反応を行った。生じたインスリン

    の濁度を l吸収波長650nmにてiJW定した。酵素力伯iはpH

    7.5, 25'CでDTT存花下において 1mg/rnQのインスリン

    のA650を1分間に0.01変化させる 力価を 1Uとした。

    なお,酵素i夜中のタンパク質量は, Coomassie'!!> Plus

    Protein Assay Reagent Kit (PIERCE担:事:g)および

    Lowryの改良法にて測定したD

    5. SOS-PAGEおよびウエスタンブロットによる解析

    アフィニティークロマトグラフィーで分離した四分は,

    SDS-PAGEに供しタンパク質の分子量の解析を行うとと

    もにウエスタンブロットにてPDIの4食出を1Tった。タンパク質の染色は銀染色(銀染色 Eキットワコー,和光純

    薬工業社製)にて行い,ウエスタンプロットの検出には,

    l次抗体に小麦PDIポリクローナル抗体 (mouse

    Antiserum to wPDI)を用い 2次抗体は, MouesIgG,

    I-Iorseradish Peroxidase Linked Whole antibody from

    sheep (GE Healthcare社 製),検出試薬はAmersham

    ECL Plus Western blotting reagent pack (GE

    Healthcare社製)をmいて,引iられたシグナルを化学蛍光検問機 (Gel-DocBio Rad 社製)にて検出した。

    6. N末端アミノ酸配列解析

    SDS-PAGE後のゲルをセミドライブロッテイングによ

    りPVDF膜に転写, CBB染色した。得られた精製酵素バ

    ンドを切り出した後,プロテインシークエンサー (PPSQ

    21/23, shimadzu社製)に供しEdmani.去にてN末端ア

    ミノ酸配列を解析した。

    結果および考察

    1. 陰イオン交換体クロマトグラフィーおよび抗POI抗

    体アフィニティーク口マトクラフィーを用いた小麦

    POIの分離精製

    DEAE-Sepharose Fast FlowカラムにF2を供し分離

    精製を行った結果,未l段着画分 (A1)および吸着画分

    (A 2, ~ 4) の計4つのタンパク質ピークが得られ

    (Fig.l) ,これら各画分 (A1 ~ 4) のPDI活性を測定

    したところ (Table1 ), A 3にて156.6units/小麦粒100

    gと最も高し、活性を確認した。そこで,次に小麦PDIポ

    リクローナル抗体 (mouseAntiserum to wPDI)をリ

    ガンドさせたがしPDI抗体アフイニティークロマトグラフ

    ィー (HiTrap NHS-activated HP) をmい, A 31由i分のさらなる精製を試みたところ,未l吸着画分 (C1)お

    よび吸着回分 (C2) にタンパク質 ピークを確認した

  • ( 33 )

    3.5

    3

    2,5

    〈号2

    0,5

    O

    O

    〔研究ノート〕 小麦粒PDIの分離精製 247

    1.2

    0,8 a

    0,6 ~ Z

    0,4

    0,2

    O

    190

    A-2 : A-4

    A-3

    50 100 150

    Fraction No, (5 me!tub巴)

    Fig. 1 DEAE -Sepharose chromatography of PDI

    extracted from Haruyutaka grain

    Column : DEAE-S巴pharoseFast Flow (中20x160mm)

    BlIffer : 20miVl Tris-HCl bll任巴1・(pH8.0)

    Speed : 1 me/min

    20 m~句hosphate , O.lS 1.0 ¥,1 glycindlCI. 0,5 1.0 111 glycine-I-ICI. 0,5 M NaCI (pH iO) 111 l¥aCl (pH .¥0) ~l NaCI (pH 30)

    .‘・

    006F;

    0,05

    0,04

    e、,‘,言a ・

    0,02

    0,01

    O

    O 5 10

    '‘

    15 20

    Fraction No, (2mIVtube)

    Fig. 2 Antibody affinity chromatography of poolcd

    eluates (A 3 ) from thc DEAE -Sepharos巴

    25

    chromatography column

    Column : HiTrap :¥iHS-acti¥'at巴dIIP (5 me)

    Speed : 1 me/min

    Table 1 Purification summary of PDI fromHaruyutakagrain

    PDI Activity Protein Step

    (0) (mg)

    Fl 642,2 2948.8

    F2 323.9 1565.4

    A1 N,D 714,8

    A2 59. 1 259.8

    A3 156.6 150.6

    A4 N,D, 21. 1

    C1 N,D, 8.5

    C2 30.7 0.4

    Specific Purifica tion Yield

    actlvlty rate (%)

    (U/mg)

    0.22 1 100

    0.21 0.95 50.4

    0.23 1. 04 9.2

    1. 04 4.77 24.4

    74.8 341 4.8

    (Bas巴don lOOg ¥Yh巴atgrain)

    (Fig.2)0 C 1およびC2のPDIi丹性測定を行った結果 (Fig.4)。その結果, 63kDaタンパク質のN末端配列は,

    (Table 1 ),アフィニティークロマトグラフィーの吸着 筆者らがi宣伝情報より発現に成功したリコンビナント小

    l町分であるC2において30.74units/小麦粒100g の活'I~I: 麦PDI (wPDI)射の26残基白からと 79%の相向性を示し

    がfljられた。 たことから, 63kDaタンパク質は,小麦粒1"1'に存在する

    2. SDS-PAGEおよび‘ウエスタンフロットを用いた解析 PDIであることが明らかとなった。

    アフィニティークロマトグラフィーによって伴られた

    各画分をSDS-PAGE (Me +)に供し銀染色にてタンパ

    ク質のf食出を行ったところ (Fig.3A), C 2にて50および、63kDaのタンパク質バンドを確認した。さらに,小麦

    PDIおV木を用いたウエスタンブロ ットにて, PDIのシグ

    ナルを官'(g認したところ (Fig.3B), 63kDaに強いシグナ

    ルが得られ,この63kDaのバンドが小麦粒1-1:1のPDIであ

    ることが示唆された。

    3. N末端アミノ酸配列解析

    SDS-PAGEおよびウエスタンブロッドにて確認した63

    kDaタンパク質のN末端アミノ椴配列を解析 し た

    要 約

    囲内産パン用小麦で、あるハルユタカの小麦粒より,

    Protein Disulfide Isomeraseの分離精製を試みたO

    DEAE-Sepharose Fast Flowおよび子元PDHJtイ本アフイニ

    ティークロマトにて4食言すを行ったところ,アフィニティークロマトグラフィーの吸着四分に, 30. 7 4uni ts/小麦

    粒100gのPDI活性が得られた。さらに, SDS-PAGEおよ

    びPDI抗体を用いたウエスタンブロットにより 63kDaの

    タンパク質にPDIのシグナルが俄認された。また,この

    63kDaタンパク質のN末端アミノ般配列を解析したとこ

  • 248 日本食品保蔵科学会誌 VOL. 37 NO.5 2011 ( 34 )

    180 .回・・

    = dl骨山 . ー'.崎|骨63kDa ..11 58 ー圃.=円を

    39 ー・29

    1・U圃.20

    A

    (kDa) C1 C2

    ハHVA川U

    ハ川VFhd

    -hピh

    d

    n

    U

    7

    4

    つ41i1i

    50

    37

    25

    20

    B

    (kDa) おI C1 C2

    (T=12.5% : Me+)

    Fig. 3 SDS -PAGE (A) and western blot (B) of antibody affinity

    chromatography ofHaruyutaka grain

    ;¥11: lvlolecular slandard. C 1 and C 2 Eluled fraclions by A.ntibody affinily chromatography

    Puri五edPDI from Haruyutaka grain: C2 (63 kDa)

    Recombinant PDI

    N-terminal amino acid homology: 79%

    Fig.4 N-Terminal amino acid sequ巴nceof recombinant PDI and pllrified PDI from

    HaruYlltaka grain

    ろ,小麦遺伝情報より取得したwPDIの配列と79%の相

    向性がfぜられたことから,ハルユタカ粒より取得した63

    kDaタンパク質は,小麦PDIであることが明らかとなっ

    た。

    文 献

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    ( rl~成23年 3 月 31 日 受付, 平成23年 7 月 21 日受理)