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1
Epidemiologia e diagnosidell’influenza aviare in Italia
Ana Moreno Martin
Influenza aviare (H5N1) e influenza H1N1Come protteggere me stesso, la mia famiglia e la collettività
Azienda Ospedaliera L. Sacco – Milano5 Ottobre 2009
Istituto Zooprofilattico Sperimentale della Lombardia e dell’Emilia Romagna - Italy
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Influenza aviare: una “nuova”emergenza?
NON è una malattia nuovaSegnalata da un veterinario Perroncito, nel 1878 !!!Identificazione dell’agente causale come un microrganismo filtrabile (1902 Centanni e Savonuzzi) A/Chicken/Brescia/1902 H7N7 Conosciuta ad inizio secolo scorso come peste lombarda (Hutyra & Marek)
3
Eziologia
Orthomyxoviridae
Influenzavirus tipo A
Sottotipi
Haemagglutinin (16)
Neuraminidase (9)
Multiple combinazioniHA-NA
AIV
NA HA
4
Specie ospiti dei virus influenzaliSensibilità ad H e N
H7
H15H16
5
Virus influenzali
Affinità tra proteina H e sito recettoriale2 tipi di recettori:
SAα2,3Gal – Virus aviari, equiniSAα2,6Gal – Virus umani, suini
Specificità recettori - mutazioni aa nella HA L226, S228 SAα2,6Gal Q226, G228 SAα2,3Gal (Vilnes et al, J Virol, 1998)
V135S, A138S >affinità SAα2,6Gal (Das et al, J Comput
Chem, 2009)
6
Distribuzione dei recettori nei tessuti ospiti
Uomo
Recettori SAα2,6Gal - faringe, trachea, bronchi
Recettori SAα2,3Gal – bronchioli, alveoli
Nature(2006), 440:435-436
Prove Istochimica (lectine):Sambucus nigra - SA α2,6 Gal (verde)Maackia amurensis- SA α2,3 Gal (rosso)
7
Distribuzione dei recettori neitessuti ospiti
J Mol Genet Med(2009) 3:143-151
AnatraRecettori SAα2,3Gal – trachea, intestino, reneRecettori SAα2,6Gal - rene
PolloRecettori SAα2,6Gal – trachea, rene Recettori SAα2,3Gal – intestino
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RESERVOIRS
DEAD-END hosts
SPILLOVER
GENE POOL??
Contesto Ecologicointerconnessione tra ospiti serbatioi, spillover, aberranti
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Anseriformi: anatre, oche, cigniCaradriiformi: gabbiani, rondini marine, trampolieri
Mantiene l’infezione Non contrae la malattia o solo in forma lieve Animali giovaniCiclo oro-fecale
Ospite reservoir
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Flussi migratori
Aree di riproduzione
Aree specie presentitutto l’anno
Aree di ivernazzione
Flussi migratori diA.platyrhincos, A. querquedulain Eurasia ed Africa ed A. discors in America
Science 312, 384 (2006)
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Pollame domestico Suscettibile all’infezione se espostoTrasmette l’infezione ad altri ospiti Non mantiene la disseminazione virale per lungo tempo Una malattia più grave dei reservoirCiclo respiratorio
Ospite spillover
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S’infetta raramente di solito contrae una malattia graveininfluenti nella epidemiologia della malattia, ma possono esserne gravemente colpiti
Ospite aberrante
Infezione H5N1:
uomo, cane, gatto, tigre, leopardo
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Distinte per:- Sintomatologia clinica indotta nei volatili - Caratteristiche degli stipiti virali:
Influenza aviaria a bassa patogenicità
(LPAI)
Influenza aviaria ad alta patogenicità
(HPAI)
H5, H7
Influenza aviare:due malattie
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Basi molecolari della patogenicità
Virus a bassa patogenicità
Possiedono un solo aminoacido basico nel sito di “cleavage”
Es. sequenze aminoacidiche H7:
-PEIPKGR*GLF-,
-PENPKGR*GLF-
Virus ad alta patogenicità
Possiedono più aminoacidi basici nel sito di “cleavage”
Es. sequenze aminoacidiche H7:
-PEIPKKKKR*GLF-, -PETPKRKRKR*GLF-,
-PEIPKKREKR*GLF-, -PETPKRRRR*GLF-
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Fusione envelope con membrana cellula ospite
Peptide di fusione dell’emoagglutinina
BASSA
liberato da enzimi presenti solo in tessuti respiratori ed enterici
Patogenesi e patogenicità
ALTA
liberato da enzimi presenti in tutti i
tessuti
Entrata virione nella cellula
Replicazione
Fuoriuscita del virione
16
Virus influenzali H5, H7
Uccelli acquatici selvatici: virus a bassa patogenicità
Pollame domestico: adattamento dei virus influenzali
HA addizione siti di glicosilazione
NA delezione aminoacidi
Virus H5 e H7: variazione della patogenicità
(drift antigenico)
Influenza aviaria a bassa virulenza (H5 e H7) LPAI
Influenza aviaria ad alta virulenza (HPAI)
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Disposizioni legislative
DIR 2005/94/CEEInfluenza aviaria - infezione del pollame o altri volatili causata da virus influenzale A:
sottotipi H5, H7IVPI > 1,2 nei pulcini di 6 sett
Manuale OIE maggio 2005Notifiable Avian Influenza Virus (NAI)HPAIV, tutti AIV H5 e H7LPAIV – tutti i virus non NAI
18
H7N1 LPAI – 1999 (tacchini)
19
H7N1 HPAI -1999-2000 (tacchini)
20
H7N1 HPAI- 1999-2000 (anatre)
21
Influenza aviareItalia
1998 H5N2 (HPAI) Veneto H5N9 (LPAI) Emilia Romagna
1999-2001 H7N1 ca. 500 milioni €Marzo - Dicembre 1999
199 LPAI focolai
Dicembre 1999 – Aprile 2000
413 HPAI focolai
Agosto- Marzo 2001
73 LPAI focolai
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Influenza aviare - Italia
2002-2004 H7N3 (LPAI) ca.45 milioni €Ottobre 2002 – Settembre 2003: 388 focolai
15 settembre 2004 – 06 novembre 2004: 28 focolai
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2005 H5N2 (LPAI) ca.1,8 milioni €12 aprile-10 maggio: 15 focolai Lombardia
Influenza aviare - Italia
24
Influenza aviare - Italia
2007 H7N3 (LPAI)Mag-Ott: 17 focolai
H5N2 (LPAI): 1 focolaio Emilia Romagna
25
Influenza aviare - Italia
2009 H5N7 (LPAI)Apr- Mag: 4 focolai Veneto, Lombardia
H7N3 (LPAI)Apr- 1 Sett: 4 focolai
22 H7
26
AIV in uccelli acquatici
LPAI (H4N6)MALLARDBRESCIA PROVINCE07/11/2005
LPAI (H5N1)MALLARDMODENA PROVINCE2005
LPAI (H10N7)MALLARDCREMONAPROVINCE10/04/2006
LPAI (H11N9)MALLARDPAVIA PROVINCE2005
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Diagnosi
28
Ricerca antigene o genoma virale
Immunofluorescenza: sensibilitàbassa, specificità buona per influenza tipo AELISA sandwich (per nucleoproteina tipo A)Kit immunoenzimaticiRt-PCR: real time
tradizionale
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5F10 Np-AELISA
Sensibilitàequivalente deitre test
AnigenAIV AgAnimalGenetics Inc
DirectigenFlu A BD
C+ C-
TQ -1 -2 -3 -4 -5
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Ricerca genoma viralePCR Tradizionalegene M- Fouchier et al, J Clin Microbiol, 2000 - Sapckman et al, J Clin Microbiol, 2002H5, H7 - Diagnostic manual of avian influenza 2005/94/ECH9- Slomka et al, Av Dis, 2007
Real time Diagnostic manual of avian influenza 2005/94/ECgene M, H5, H7- Sapckman et al, J Clin Microbiol, 2002H9- Monne et al, J Clin Microbiol, 2008
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Diagnosi virologica
ISOLAMENTO VIRALEUova embrionate di pollo 9-11 gg via i.a.Colture cellulari (MDCK)Identificazione
Tipo A Mab based sandwich ELISA (NPA)
Sottotipo tipizzazione antigenicaEmoagglutinina: HI Neuraminidasi: NI
Mab based sandwich ELISAs H5, H7, N1-N9
32
Tipizzazione HemagglutininaN
EGH
1N1
H4N
6H
3N2
H1N
2H
2N2
H7N
7H
7N3
H7N
1H
5N3
H5N
1H
5N2
NEG
PMV2
PMV3
PMV4
H6N
2H
9N2
H9N
8H
10N
4N
DV
H5N
2C
+C
-
NEG
H1N
1H
4N6
H3N
2H
1N2
H2N
2H
7N7
H7N
3H
7N1
H5N
3H
5N1
H5N
2
NEG
PMV2
PMV3
PMV4
H6N
2H
9N2
H9N
8H
10N
4N
DV
H5N
2C
+C
-
Elisa virologica sandwich H5 Mab 5D8
Elisa virologica sandwich H7 Mab 7A4
33
Tipizzazione Neuraminidasi
N1 N2 N3 N4 N5 NpA(Ctrl+)
H8N4H8N4H1N1H1N1H5N2H5N2H6N2H6N2H6N5H6N5H7N3H7N3H9N3H9N3H5N1H5N1
N6 N7 N8 N9 NpA(Ctrl+)
H4N6H9N8H10N7H11N9H3N8H13N6NDVH7N7
Mab platform sandwich ELISA
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Diagnosi sierologica
Ab verso Ag di gruppo (Tipo A):
AGID ELISA ( indiretta o competitiva)
Ab sottotipo specifici Anti-HA (16 H ≠):HI ELISA (H5 o H7)Anti-NA(9 N ≠):IFELISA HeinenHeinen VetVet Science Tomorrow, Science Tomorrow,
20022002
Proteine HA e NAAntigeni superficiali sottotipo-specifici
Proteine M1 e NPAntigeni profondi
tipo-specifici
35
Elisa sierologica H5, H7
H7 C+NEG
H5N2 sieri positivi di campo
H7N3 sieri positivi di campo
H5 C+
H6/9 POS
NEG
H5N2 sieri positivi di campo
H7N3 sieri positivi di campo
H5 C+
H6/9 POS
NEG
H7 C+
H6/9 POS NEG
H6/9 POS
700 sieri pollo, tacchino : 200 –, 331 + H7, 113 + H5, 36 + H7/H 5
Elisa competitiva H7Mab 7A4/7A4HrpSe= 99.7%(IC95%) Sp= 100% (IC95%)
Elisa competitiva H5MAb 5D8/5D8HrpSe= 100% (IC95%) Sp= 98.5%(IC95%)
36
H7
N3
H7
N3
H9
N2
H5
N2
H1
N1
H7
N1
H7
N3
H7
N3
H9
N2
H5
N2
H1
N1
H7
N1
H7
N3
H7
N3
H9
N2
H5
N2
H1
N1
H7
N1
100% NEGATIVI100% NEGATIVI
100% NEGATIVI
H7N1 H5N2 H7N3 100%
H7N1 H5N2 H7N3 100%
H7N1 H5N2 H7N3 100%
ELISA PER AC ANTI-N2ELISA PER AC ANTI-N3
ELISA PER AC ANTI-N1
ELISA % INIBIZI
ONE
SN SP
N1 75 1 0,994
N2 75 0,976 0,995
N3 75 0,990 0,990
1404 sieri: 595 pollo, 717 tacchino, 75 anatra, 14 quaglia, 10 struzzi
Moreno et al, Vaccine, 2009
37
Grazie per l’attenzione
Non fai ridereproprio per niente