Fecha - CIG · PDF fileCR 3.1 La relación de proveedores se ... Efectuar operaciones para el desarrollo del plan de garantía de calidad en pruebas ... de equipos, control de calidad,

CUALIFICACIÓNPROFESIONAL

Laboratorio de análisis clínicos

Familia Profesional SanidadNivel 3Código SAN124_3Versión 6Situación Contraste externoActualización

Competencia generalRealizar estudios analíticos de muestras biológicas humanas, que sirvan de soporte al diagnóstico,prevención, control y tratamiento de enfermedades, así como a la investigación biomédica, gestionando launidad de un laboratorio de análisis, bajo la supervisión correspondiente, colaborando con el facultativo, segúnla normativa aplicable y los protocolos establecidos.

Unidades de competenciaUC0369_3: Gestionar una unidad de un laboratorio de análisis clínicosUC0370_3: Realizar los procedimientos de las fases preanalítica y postanalítica en el laboratorio clínicoUC0371_3: Realizar análisis de bioquímica clínica en muestras biológicas humanasUC0372_3: Realizar análisis microbiológicos e identificar parásitos en muestras biológicas humanasUC0373_3: Realizar análisis hematológicos y genéticos en muestras biológicas humanas y

procedimientos para obtener hemoderivadosUC0374_3: Realizar técnicas inmunológicas de aplicación en las distintas áreas del laboratorio de análisis

clínicos

Entorno Profesional

Ámbito ProfesionalDesarrolla su actividad profesional en la prestación del servicio sanitario, laboratorios de análisis clínicos y deinvestigación biomédica, perteneciente al área de soporte y ayuda al diagnóstico, en entidades de naturalezapública o privada. Desarrolla su actividad dependiendo, en su caso, funcional y/o jerárquicamente de unsuperior. Puede tener personal a su cargo en ocasiones, por temporadas o de forma estable. Su actividadprofesional está sometida a regulación por la Administración competente. En el desarrollo de la actividadprofesional se aplican los principios de accesibilidad universal de acuerdo con la normativa aplicable.

Sectores ProductivosSe ubica en el sector sanitario (laboratorios hospitalarios de diagnóstico clínico y otros laboratorioshospitalarios como farmacia hospitalaria y medicina y cirugía experimental, laboratorios extra-hospitalariospara análisis prevención, diagnóstico y seguimiento de enfermedades y para análisis preventivos en medicinade empresa, laboratorios de diagnóstico clínico de atención primaria, bancos de sangre intra y extra-hospitalarios, centros de reproducción asistida, laboratorios forenses y de toxicología, laboratorios dereferencia); sector investigación (laboratorios de biomedicina, de experimentación animal, universidades,industria farmacéutica, cosmética, alimentaria y otras industrias con laboratorios de investigación de muestrasbiológicas) y sector veterinario (laboratorios de análisis clínicos veterinarios).

Ocupaciones y puestos de trabajo relevantesLos términos de la siguiente relación de ocupaciones y puestos de trabajo se utilizan con carácter genérico y

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Informe INCUAL-Intranet

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omnicomprensivo de mujeres y hombres.Técnicos superiores en laboratorio de diagnóstico clínicoTécnicos especialistas en laboratorioAyudantes técnicos en laboratorio de investigación y experimentaciónAyudantes técnicos en laboratorio de toxicologíaDelegados comerciales de productos hospitalarios y farmacéuticosTécnicos en laboratorio de diagnóstico clínicoTécnicos en biología molecularTécnicos en biobancosTécnicos en laboratorio de ensayos clínicos biomédicos

Formación Asociada ( 990 horas )

Módulos FormativosMF0369_3: Gestión de una unidad de un laboratorio de análisis clínicos (30 h)MF0370_3: Fases preanalítica y postanalítica clínicas(120 h)MF0371_3: Análisis bioquímicos en muestras biológicas humanas (240 h)MF0372_3: Análisis microbiológicos e identificaciones parasitológicas en muestas biológicas humanas

(240 h)MF0373_3: Hematología, banco de sangre y genética (240 h)MF0374_3: Inmunología clínica aplicada (120 h)

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UNIDAD DE COMPETENCIA 1 Gestionar una unidad de un laboratorio de análisis clínicosNivel 3Código UC0369_3

Realizaciones profesionales y criterios de realización

RP 1: Gestionar archivos de pacientes o usuarios de un laboratorio de análisis clínicos e investigaciónbiomédica, mediante bases de datos para satisfacer las necesidades asistenciales, en función de latecnología disponible, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 1.1 Los archivos de pacientes de un laboratorio se gestionan, mediante sistemas informáticos seleccionados.CR 1.2 La base de datos, se configura, en colaboración con el experto informático, integrando la información remitida y/ogenerada por los pacientes o usuarios.CR 1.3 La información referente a pruebas diagnósticas o exploratorias específicas, se incorpora periódicamente,manteniendo la base de datos actualizada.CR 1.4 Los volcados de seguridad con la información digitalizada, se efectúan, clasificando la documentación para suposterior localización.CR 1.5 Las peticiones de pruebas analíticas, se comprueban, según los protocolos establecidos.CR 1.6 Las peticiones de pruebas analíticas de los pacientes se registran, según protocolos establecidos.CR 1.7 Los informes estadísticos y los resúmenes diarios de la actividad, se elaboran, detectando posibles incidencias.CR 1.8 La terminación de todas las solicitudes, se verifica, así como su validación posterior por la persona responsable.CR 1.9 Los listados con la identificación de las peticiones y órdenes de trabajo, se trasmiten, por medios informáticos, alaboratorios de apoyo y de referencia.CR 1.10 La información recibida, por vía informática de laboratorios de referencia o de otros centros, se integra en la basede datos.

RP 2: Realizar la citación de pacientes o usuarios, para planificar la actividad diaria, según lascaracterísticas del laboratorio de análisis clínicos e investigación biomédica, dispensándoles un tratopersonalizado, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 2.1 La citación de pacientes o usuarios para ensayos clínicos se efectúa, comunicándola a ellos mismos o a susfamiliares, indicando el lugar, fecha, hora de la prueba y preparación previa requerida, en su caso.CR 2.2 Las modificaciones surgidas, respecto a fechas y horario de las citaciones, se comunican al paciente y/o familiares,con antelación.CR 2.3 Las peticiones médicas se recepcionan, aplicando los requerimientos establecidos por las diferentes entidadessanitarias.CR 2.4 La atención al paciente y/o sus acompañantes se presta de forma profesional, personalizada y cordial, informandosobre el proceso de la prueba.CR 2.5 El consentimiento informado de pacientes citados para ensayos clínicos se obtiene, colaborando con el facultativoresponsable.

RP 3: Gestionar el almacenamiento, reposición y adquisición de materiales e instrumental utilizados en ellaboratorio de análisis clínicos e investigación biomédica, para optimizar los recursos, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable.CR 3.1 La relación de proveedores se elabora, según protocolos establecidos.CR 3.2 La reposición de existencias se efectúa, en función de la cantidad mínima de producto en existencias, evitando larotura del stock.CR 3.3 El pedido se efectúa, registrando su solicitud, según protocolos establecidos.CR 3.4 El albarán y el estado de los productos recepcionados se revisan, siguiendo protocolos establecidos.CR 3.5 Los productos recepcionados se registran, según protocolos establecidos.CR 3.6 El material recepcionado, se distribuye, en cada área de trabajo correspondiente, colocándolo en el almacén, segúnlas condiciones requeridas.CR 3.7 Las condiciones de almacenamiento y las caducidades se revisan, considerando la periodicidad establecida.CR 3.8 Las facturas se revisan, comprobando que cumplen los requisitos requeridos.CR 3.9 El inventario, se actualiza con la periodicidad establecida, utilizando aplicaciones informáticas.

RP 4: Realizar operaciones de facturación en aquellos servicios que lo requieran y en centros de titularidadprivada, para la gestión de la unidad de laboratorio de análisis clínicos e investigación biomédica,según protocolos establecidos y normativa aplicable.

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CR 4.1 Los volantes de petición analítica se revisan, comprobando que estén cumplimentados según exigencias de laentidad aseguradora.CR 4.2 Las relaciones y listados de cada proveedor se elaboran, conforme a lo especificado en los protocolos.CR 4.3 Las facturas se comprueban, verificando que cumplen la normativa aplicable.

RP 5: Efectuar operaciones de programación y mantenimiento de equipos del laboratorio de análisisclínicos e investigación biomédica, para la ejecución de las actividades propias del área de trabajo,interpretando la información científico-técnica y procedimientos de utilización de aparatos, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable.CR 5.1 El plan de mantenimiento de los equipos del laboratorio, se establece, fijando los plazos de revisión y el personalresponsable de ejecutarlo.CR 5.2 Las fichas de mantenimiento de equipos y sistemas de gestión, se diseñan basándose en las especificaciones delfabricante.CR 5.3 Las revisiones de los equipos y de los sistemas de medida del laboratorio, se ajustan a los plazos previstos, estandooperativos en el momento requerido.CR 5.4 Las averías y/o fallos en el funcionamiento de un aparato o equipo se detectan, avisando al servicio técnico, bajo lasupervisión del responsable superior.CR 5.5 Las instrucciones sobre funcionamiento, programación y mantenimiento de aparatos se formulan, de formaordenada, siendo comprensibles para el resto de usuarios.CR 5.6 La información contenida en manuales de procedimientos y protocolos de técnicas analíticas, se comprueba,verificando que es la requerida para la realización de las actividades y que está actualizada.

RP 6: Realizar operaciones para el desarrollo del plan de prevención de riesgos laborales en el laboratoriode análisis clínicos e investigación biomédica, colaborando con los responsables superiores, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable.CR 6.1 Los riesgos asociados a cada área de trabajo del laboratorio, se determinan, efectuando su prevención, segúnrecomendaciones de manuales al uso.CR 6.2 La actuación ante emergencias y/o accidentes laborales, se efectúa con arreglo a protocolos establecidos.CR 6.3 Los residuos biológicos, se separan según su nivel de contaminación, para su posterior recogida, según protocolosestablecidos.

RP 7: Efectuar operaciones para el desarrollo del plan de garantía de calidad en pruebas analíticas delaboratorio, colaborando con los responsables superiores, según protocolos establecidos y normativaaplicable.CR 7.1 Las actividades sobre el desarrollo del plan de garantía de calidad se programan, de forma que se cumplan losplazos de entrega.CR 7.2 Los recursos materiales se optimizan, sin afectar a la calidad final del resultado.CR 7.3 Los protocolos de trabajo de los procesos asignados, se revisan, adaptándolos periódicamente al plan de de calidad.CR 7.4 Los procesos y actuaciones del plan de garantía de calidad se registran, siguiendo las indicaciones de losprotocolos.CR 7.5 Las normas de calidad específicas para la acreditación del servicio se cumplen, colaborando en el desarrollo de lagarantía de calidad.

RP 8: Participar en programas formativos, en congresos y reuniones científicas, dentro del ámbito dellaboratorio de análisis clínicos y de investigación biomédica, para intercambio de conocimientos,según criterios del servicio y bajo supervisión facultativa.CR 8.1 La formación relativa al laboratorio de análisis clínicos e investigación biomédica se imparte, según protocolosestablecidos, en colaboración con los responsables y bajo supervisión facultativa.CR 8.2 El programa formativo de alumnos pertenecientes a módulos profesionales, se desarrolla, en colaboración con losresponsables y bajo supervisión facultativa.CR 8.3 Los procedimientos asignados a alumnos se verifican, según indicaciones del facultativo.CR 8.4 La asistencia a cursos y reuniones científicas, se realiza según criterios del servicio.

Contexto profesional

Medios de producciónLibros de registro. Archivos. Ficheros. Redes locales. Equipos informáticos. Sistemas informáticos de gestióndel laboratorio de análisis clínicos. Conexión a Internet e Intranet.

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Productos y resultadosArchivos de pacientes o usuarios, gestionados. Citación de pacientes efectuada. Almacén gestionado.Operaciones de facturación, en centros de titularidad privada, efectuadas. Operaciones para desarrollar laprogramación y mantenimiento de equipos, realizadas. Operaciones para desarrollar plan de prevención deriesgos laborales efectuadas. Operaciones para desarrollar el plan de garantía de calidad, realizadas.Formación impartida. Participación en congresos y reuniones científicas.

Información utilizada o generadaSolicitudes analíticas. Historias y fichas clínicas. Consentimiento informado. Albaranes. Facturas. Volantes desociedades médicas. Pedidos de reactivos, materiales y equipos. Informes analíticos. Resumen deactividades. Listados de citación de pacientes. Listados de facturación. Protocolos técnicos de trabajo.Manuales sobre gestión de una unidad de laboratorio de análisis clínicos. Normativa aplicable sobre:mantenimiento de equipos, control de calidad, prevención de riesgos laborales, protección de datos decarácter personal, derechos del paciente, sistema sanitario, entre otras.

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UNIDAD DE COMPETENCIA 2 Realizar los procedimientos de las fases preanalítica y postanalítica enel laboratorio clínico

Nivel 3Código UC0370_3


RP 1: Efectuar la toma de muestras biológicas, para su posterior análisis, bajo supervisión facultativa,según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 1.1 Los materiales para la toma de muestras, se preparan, según protocolos establecidos.CR 1.2 El manual de toma de muestras se consulta, para resolver posibles dudas que surjan, previamente a su obtención.CR 1.3 Los recipientes se identifican, antes de la toma de la muestra, según soporte y sistema de codificación utilizados enel servicio, comprobando la correspondencia con el volante de solicitud del análisis.CR 1.4 La información sobre la técnica a seguir, se proporciona al paciente o usuario, dispensándole un trato humano ypersonalizado.CR 1.5 Las muestras biológicas humanas se obtienen y/o recogen según los protocolos establecidos, bajo la supervisión delfacultativo.CR 1.6 La muestra se distribuye en recipientes, conforme a los protocolos establecidos.CR 1.7 Las muestras se organizan, para su envío al hospital, clínica o laboratorio, siguiendo protocolos establecidos.

RP 2: Identificar las muestras biológicas a su llegada al laboratorio para su posterior análisis, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable.CR 2.1 Las muestras recibidas de las áreas hospitalarias, periféricas y/o de otros centros, se comprueban, verificando quecumplen los requisitos de obtención o recogida, conservación y transporte, entre otros.CR 2.2 La identificación unívoca de las muestras recibidas con los volantes de solicitud, se comprueba, según protocolosestablecidos.CR 2.3 Los condicionantes predefinidos (anticoagulantes, conservantes, recipientes, tiempo transcurrido), se comprueban,así como el volumen de la muestra, verificando que es suficiente para efectuar las determinaciones analíticas solicitadas.CR 2.4 Los datos de identificación se verifican, para cada paciente o usuario y muestra, según protocolos establecidos.CR 2.5 La identificación de las muestras se valida, considerando el soporte y sistema de codificación empleados en ellaboratorio.

RP 3: Registrar las muestras biológicas para su posterior análisis, según protocolos establecidos ynormativa aplicable.CR 3.1 Los volantes de petición se registran, anotando los datos de identificación y las determinaciones solicitadas.CR 3.2 La solicitud de petición de determinaciones y las muestras correspondientes se comprueban, verificando suidentificación según sistema de codificación del laboratorio.CR 3.3 Las peticiones registradas se remiten, mediante listados de trabajo impresos o mediante conexión informática, a lasdistintas secciones del laboratorio, a otros laboratorios del centro sanitario o a laboratorios colaboradores.

RP 4: Preparar las muestras para su análisis y los listados de trabajo para los diferentes laboratorios oáreas, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 4.1 Las muestras se someten, en su caso, a las operaciones previas al análisis (centrifugación, homogeneización, entreotras), según las determinaciones a realizar.CR 4.2 Las diluciones y alícuotas estipuladas, se realizan en muestras y reactivos, según protocolos de trabajo.CR 4.3 El agua utilizada, se comprueba, verificando que cumple los requisitos de calidad química requeridos.CR 4.4 Los listados de trabajo de las distintas áreas de laboratorio, se elaboran con el sistema informático, o en su caso, deforma manual.CR 4.5 Las muestras se ordenan, según las hojas de trabajo de cada área.

RP 5: Distribuir las muestras en las diferentes áreas de trabajo, para su posterior análisis, registrando lasposibles incidencias, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 5.1 La distribución de listados y de muestras se realiza en el menor tiempo posible, manteniéndose, en caso contrario, lamuestra en las condiciones requeridas para su estabilidad (temperatura, humedad, atmósfera, entre otras), según tipo demuestra y de determinación a realizar.CR 5.2 Las muestras no identificadas o que no cumplan los requisitos establecidos, se rechazan, según protocolos detrabajo.CR 5.3 Las muestras que no se procesan en el día, se almacenan según protocolos establecidos.

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CR 5.4 El transporte y el flujo de muestras en los sistemas modulares, se verifican, según los protocolos establecidos.CR 5.5 Las posibles incidencias que surjan durante el proceso, se registran, según protocolos establecidos, para seranalizadas por el servicio, de acuerdo con el criterio de la mejora continua.

RP 6: Almacenar las muestras seleccionadas para ensayos clínicos, en biobancos, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CR 6.1 El procesamiento de la muestra se efectúa, incluyendo, en su caso, la extracción de ácidos nucleicos, segúnprotocolos.CR 6.2 Las muestras procesadas se recogen, preparándose para su almacenamiento en frigorífico o congelador, según seespecifique en los protocolos.CR 6.3 El registro de las muestras almacenadas se efectúa, facilitándose su localización.CR 6.4 Las muestras, materiales y reactivos se almacenan en frigoríficos y congeladores, en orden, según normativaaplicable, efectuando revisiones periódicas para detectar posibles desajustes.CR 6.5 La temperatura de congeladores y frigoríficos, se controla, según protocolos establecidos.


Medios de producciónRecipientes para especímenes. Pipetas automáticas. Equipos de protección individual (EPI¿s). Etiquetascodificadas. Material para extracción y toma de muestras. Sistemas automáticos de alícuotas. Recipientespara recogida de residuos biológicos. Centrífugas. Frigoríficos. Congeladores. Agitadores. Bañostermostáticos. Estufas. Balanzas. Destiladores de agua. Equipos modulares de distribución de muestras.Sistemas informáticos de gestión. Redes locales. Programa informático de gestión de laboratorio. Libros deregistro. Escáner-lector de etiquetas codificadas.

Productos y resultadosToma de muestras efectuada. Muestras biológicas identificadas para su posterior análisis. Muestras biológicasregistradas. Muestras biológicas procesadas para su posterior análisis. Muestras biológicas distribuidas en lasdiferentes áreas de trabajo. Muestras seleccionadas y almacenadas. Muestras congeladas.

Información utilizada o generadaSolicitud analítica. Datos de identificación. Datos de codificación. Listados de trabajo. Registro de incidencias.Manuales de toma de muestras para el laboratorio clínico. Catálogos de pruebas analíticas. Protocolos deactuación, normalizados, para fases preanalítica y postanalítica en el laboratorio clínico. Manuales técnicos defuncionamiento de equipos y aparatos. Normativa aplicable sobre: prevención de riesgos laborales, garantíade calidad, protección de datos, derechos del enfermo, biobancos, entre otras.

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UNIDAD DE COMPETENCIA 3 Realizar análisis de bioquímica clínica en muestras biológicas humanasNivel 3Código UC0371_3


RP 1: Preparar las muestras, materiales, instrumentos y equipos del laboratorio, para realizar análisisbioquímico, en función de las técnicas a realizar, según protocolos establecidos y normativaaplicable.CR 1.1 Los listados de trabajo de cada sección de laboratorio se preparan manualmente o mediante sistemas informáticos.CR 1.2 Las muestras biológicas recibidas se distribuyen en las distintas secciones del laboratorio de bioquímica, previaverificación de su correspondencia con los listados de trabajo.CR 1.3 Los materiales y equipo instrumental se seleccionan, según tipo de muestra y determinación a realizar,encontrándose operativos y calibrados en el momento requerido.CR 1.4 Las operaciones previas al análisis (centrifugación, homogeneización, entre otras), se efectúan, según la muestra,determinación a realizar y protocolos establecidos.CR 1.5 Los protocolos de aparatos e indicaciones de reactivos se trascriben, interpretándose a partir de textosnormalizados, para su correspondiente manejo y preparación.CR 1.6 La calibración y los controles diarios de los equipos asignados se realizan, siguiendo los protocolos.CR 1.7 Las muestras biológicas que deben ser enviadas a centros colaboradores, se procesan, siguiendo protocolosestablecidos.

RP 2: Efectuar análisis para determinar parámetros bioquímicos solicitados con más frecuencia, así comoparámetros bioquímicos solicitados en procedimientos de laboratorio de urgencias y en unidades decuidados intensivos, considerando equipos y técnicas disponibles en el servicio, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CR 2.1 Los listados de trabajo para determinar parámetros bioquímicos se comparan con las muestras problema,verificando su correspondencia.CR 2.2 La calibración de equipos para la determinación de parámetros bioquímicos y los controles de calidad se efectúan,siguiendo los protocolos establecidos.CR 2.3 La determinación analítica de compuestos metabólicos y de iones se efectúa, según equipos y técnicas disponiblesen cada laboratorio.CR 2.4 La determinación del pH y de gases en sangre se realiza, según el protocolo establecido.CR 2.5 Las medidas de osmolaridad plasmática o urinaria se realizan, según protocolos establecidos.CR 2.6 Los recuentos citológicos y los análisis bioquímicos de líquidos biológicos (orina, semen, LCR, liquido pleural, líquidoascítico, entre otros) se efectúan, según los protocolos establecidos.CR 2.7 Las pruebas de embarazo se realizan, según los protocolos del servicio.

RP 3: Efectuar determinaciones analíticas para detección de drogas de abuso y monitorización defármacos, en procedimientos de urgencia y en unidades de ensayos clínicos, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CR 3.1 Los listados de trabajo para detección de drogas de abuso y monitorización de fármacos, se comparan con lasmuestras problema, verificando su correspondencia.CR 3.2 La calibración de los equipos automáticos para detección de drogas de abuso y monitorización de fármacos, secomprueba, así como los resultados de los controles, que deben estar dentro del rango de valores establecidos.CR 3.3 La determinación de fármacos en las muestras solicitadas, se realiza, utilizando los equipos de diagnósticodisponibles en el laboratorio.CR 3.4 La evolución de los niveles terapéuticos, se comprueba con el sistema informático de monitorización de fármacosdel laboratorio.CR 3.5 Las muestras analizadas se almacenan, para una posible comprobación y/o uso en investigación, según protocolosestablecidos.

RP 4: Realizar análisis electroforéticos para la separación de proteínas y de otras sustancias, y su posteriorcuantificación, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 4.1 Los listados de trabajo, se comparan con las muestras problema, verificando su correspondencia.CR 4.2 Los equipos de electroforesis y los materiales, se preparan en función de la técnica electroforética utilizada.CR 4.3 La electroforesis de proteínas en las muestras se efectúa según el protocolo de trabajo establecido.

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CR 4.4 La separación de las distintas fracciones electroforéticas se comprueba, realizándose posteriormente sucuantificación.CR 4.5 Las técnicas de inmunoelectroforesis inmunofijación e isoelectroenfoque, se efectúan, según los criteriosestablecidos en el laboratorio.CR 4.6 La técnica electroforética específica, se aplica, para la separación de hemoglobinas, lipoproteínas, enzimas, entreotros parámetros de utilidad clínica, según protocolos establecidos.CR 4.7 El mantenimiento específico de cada equipo, se efectúa, notificando las incidencias detectadas al responsablesuperior, según protocolos del servicio.

RP 5: Realizar técnicas cromatográficas para la separación de analitos y su posterior cuantificación, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable.CR 5.1 Los listados de trabajo, se comparan con las muestras problema, verificando su correspondencia.CR 5.2 Los equipos de cromatografía se preparan, en función de las técnicas a realizar (cromatografía de gases,cromatografía líquida de alta resolución, entre otras).CR 5.3 La cromatografía se efectúa, según el protocolo establecido.CR 5.4 La separación de las distintas fracciones del cromatograma, se comprueba, realizándose posteriormente sucuantificación.CR 5.5 La técnica cromatográfica se aplica, según equipos disponibles en el laboratorio y protocolos establecidos.CR 5.6 El mantenimiento específico de cada equipo, se realiza, notificando las incidencias detectadas al responsablesuperior, según protocolos del servicio.

RP 6: Efectuar análisis para la detección de hormonas y marcadores tumorales, entre otros, mediantetécnicas inmunológicas, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 6.1 Los listados de trabajo para la detección de hormonas y marcadores tumorales, se comparan con las muestrasproblema, verificando su correspondencia.CR 6.2 La calibración del equipo para la detección de hormonas y marcadores tumorales, se comprueba, así como losresultados de los controles, verificando que están dentro del rango de valores establecidos.CR 6.3 La técnica a utilizar se selecciona, en función de la muestra y del equipo disponible en el servicio.CR 6.4 Los requisitos de operador de RIA, se cumplen, en caso de realización de técnicas isotópicas, identificándose losriesgos.CR 6.5 Los portaobjetos con los cortes de tejidos o tipos celulares, los anticuerpos marcados y los reactivos a utilizar, sepreparan, para la realización del análisis, manteniéndose a temperatura ambiente.CR 6.6 Las preparaciones se observan al microscopio de fluorescencia, efectuando los ajustes de intensidad de luz yutilizando filtros, en función de la técnica a realizar.CR 6.7 Las técnicas de aglutinación, inhibición de la hemoaglutinación, de búsqueda de antígenos o de anticuerpos, entreotras, se efectúan conforme a protocolos establecidos.CR 6.8 El mantenimiento específico del equipo se realiza, notificando las incidencias detectadas al responsable superior,según protocolos del servicio.

RP 7: Analizar, orina (cualitativa y cuantitativamente), heces y cálculos urinarios, para realizardeterminaciones bioquímicas, dependiendo de las técnicas y equipos disponibles en el servicio,según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 7.1 Los listados de trabajo para análisis de orina, heces y cálculos urinarios, se comparan con las muestras problema,verificando su correspondencia.CR 7.2 El equipo para el análisis químico básico semicuantitativo de orina se prepara, siguiendo protocolos establecidos.CR 7.3 Las orinas para el análisis químico básico semicuantitativo se analizan, mediante espectrofotometría de reflexión porquímica seca.CR 7.4 El análisis del sedimento urinario se efectúa, mediante observación al microscopio óptico, contrastando losresultados con los del análisis semicuantitativo y registrándolos, según protocolos establecidos.CR 7.5 El análisis de orina cuantitativo, se realiza según la técnica y el equipo disponible en el laboratorio, siguiendoprotocolos establecidos.CR 7.6 Las orinas remitidas, que correspondan a una solicitud determinada de recogida de 8, 12, ó 24 horas, se registran,anotándose su volumen y separándose alícuotas para su posterior análisis.CR 7.7 Los cálculos urinarios y heces, se analizan según los protocolos establecidos y en función de las características delservicio.

RP 8: Analizar muestras obtenidas de pacientes con tumores sólidos, para realizar estudios de biologíamolecular, utilizando técnicas de amplificación de ácidos nucleicos aplicadas al laboratorio debioquímica, mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR), según protocolos establecidos ynormativa aplicable.CR 8.1 Los listados de trabajo para realizar estudios de biología molecular se comparan con las muestras problema,verificando su correspondencia.

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CR 8.2 La extracción de ADN y ARN de la muestra se efectúa, manual o automáticamente, según el protocolo establecido yel tipo de muestra.CR 8.3 Las precauciones requeridas se adoptan, evitando la contaminación de muestras y reactivos, conforme a loespecificado en el protocolo.CR 8.4 La técnica de PCR, automática o semiautomática se aplica, según criterios establecidos en el laboratorio y enfunción del equipo disponible.CR 8.5 El material genético obtenido de la PCR se analiza, mediante electroforesis, visualizándose según protocolosestablecidos.CR 8.6 Los resultados de los análisis se procesan, manualmente o por medios informáticos, bajo supervisión facultativa.CR 8.7 Las muestras, tras ser analizadas, se almacenan para posteriores estudios o investigaciones biomédicas.

RP 9: Manejar equipos modulares o analizadores en serie (IPM), para la realización de procedimientosordinarios del área de bioquímica, verificando su funcionamiento, según protocolos establecidos ynormativa aplicable.CR 9.1 Las calibraciones de aparatos de equipos modulares o analizadores en serie (IPM), y el procesamiento de controles,se efectúa, antes de comenzar el trabajo.CR 9.2 Las peticiones solicitadas se trasmiten al analizador, a través del sistema informático.CR 9.3 Los listados de trabajo, se elaboran, preparando los sueros para su colocación en el analizador.CR 9.4 El funcionamiento del analizador se verifica, solucionando las incidencias, según protocolos establecidos.CR 9.5 Los resultados de los controles se comprueban, efectuando repeticiones, según los protocolos establecidos trabajo,transmitiéndose, a continuación, dichos resultados al sistema informático del laboratorio.CR 9.6 La colocación y retirada de muestras en los equipos modulares o analizadores en serie, se comprueban, segúnprotocolos establecidos.CR 9.7 Las incidencias detectadas, antes, durante y después del proceso se registran, según formato establecido, para suposterior análisis.CR 9.8 Los resultados obtenidos se verifican, enviándose a través del sistema informático, para su validación por elfacultativo responsable.

RP 10: Efectuar controles, internos y externos, de los parámetros analizados, para valorar la calidad de losresultados obtenidos en el laboratorio de bioquímica, según protocolos establecidos y normativaaplicable.CR 10.1 Los controles en cada área del laboratorio, se procesan conforme a lo especificado en los protocolos de trabajo.CR 10.2 Los datos de rangos de control se introducen en el sistema informático del laboratorio (SIL) y en el equipo demedida correspondiente, indicando número de lote y fecha de caducidad del control.CR 10.3 Los resultados de los controles de cada serie analítica, se registran y analizan, según los protocolos establecidosen el servicio.CR 10.4 Las muestras del control externo, se procesan periódicamente como una muestra más, en cada área del servicio,para realizar el preceptivo control de calidad de los resultados.


Medios de producciónPipetas automáticas. Recipientes para recogida de residuos biológicos. Equipos de protección individual (EPI).Centrífugas. Microcentrífugas. Frigoríficos. Congeladores. Agitadores. Baños termostáticos. Estufas.Balanzas. Microscopios ópticos. Microscopio de fluorescencia. pH-metro. Destiladores de agua. Equiposautomáticos de química seca. Equipo de electrodos selectivos. Equipos de gases y pH sanguíneos.Osmómetro. Lector de reflexión de tiras de orina. Espectrofotómetro. Equipos de turbidimetría y nefelometría.Sistemas informáticos de gestión de laboratorio. Bases de datos.

Productos y resultadosMuestras, materiales, instrumentos y equipos de laboratorio de bioquímica, preparados. Resultados analíticosbioquímicos, obtenidos. Determinaciones bioquímicas de laboratorio de urgencias y de unidades de cuidadosintensivos, efectuadas. Análisis para detección de drogas de abuso y monitorización de fármacos, realizados.Análisis electroforéticos, efectuados. Análisis cromatográfico realizado. Análisis para detección de hormonas,marcadores tumorales y otros, efectuados. Orina, heces y cálculos urinarios, analizados. Estudios de biologíamolecular, realizados. Equipos modulares o analizadores en serie para procedimientos ordinarios del área de

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bioquímica, manejados. Controles de calidad, efectuados.

Información utilizada o generadaInformes analíticos. Registro de incidencias. Libros de registro. Listados de trabajo. Fichas clínicas.Bibliografía especializada de consulta. Protocolos para análisis de bioquímica en muestras biológicas.Manuales técnicos de manejo y mantenimiento de equipos. Normativa aplicable sobre: control de calidad,prevención de riesgos laborales, protección de datos personales, derechos del enfermo, investigación enmuestras humanas, entre otras.

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UNIDAD DE COMPETENCIA 4 Realizar análisis microbiológicos e identificar parásitos en muestrasbiológicas humanas



RP 1: Preparar los materiales, instrumentos y equipos para realizar análisis microbiológico, en función delas técnicas, las determinaciones a realizar y tipo de muestra, según protocolos establecidos ynormativa aplicable.CR 1.1 La esterilización y desinfección del material se efectúa, mediante autoclave, radiaciones ultravioleta, entre otrastécnicas disponibles, efectuándose el control del proceso.CR 1.2 El material esterilizado se coloca y conserva, manteniendo las condiciones de esterilidad, según protocolosestablecidos.CR 1.3 Los materiales, instrumentos y equipos se encuentran disponibles, estando operativos en el momento requerido.CR 1.4 El material contaminado, se desecha en contenedores específicos, dispuestos para tal fin en el laboratorio.

RP 2: Procesar las muestras biológicas para su análisis bacteriológico, seleccionando medios de cultivo ypruebas de identificación, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 2.1 Los listados de trabajo, se comparan con las muestras problema, verificando su correspondencia.CR 2.2 Las muestras biológicas se procesan, mediante centrifugación, homogeneización, entre otros métodos, en funcióndel tipo de muestra (orina, heces, exudados, necropsias, sangre, entre otras) y tipo de análisis, para su posterior distribuciónen las unidades del servicio.CR 2.3 El análisis bacteriológico de la muestra se efectúa, mediante la siembra en un medio de cultivo específico, segúnprotocolos establecidos, evitando contaminaciones.CR 2.4 Los medios de cultivo se incuban, en función de la muestra y de los microorganismos a estudiar, según temperatura,atmósfera y tiempo establecidos, observando si el crecimiento obtenido es el esperado.CR 2.5 El estudio microscópico de la muestra cultivada se efectúa, observando las tinciones realizadas con microscopioóptico o de fluorescencia, para la identificación del microorganismo patógeno, bajo supervisión facultativa.CR 2.6 Las pruebas bioquímicas de identificación individuales, con sistemas multiprueba o con sistemas automatizados, seefectúan, realizando una selección previa, en función tipo de microorganismo y de las características del laboratorio,permitiendo la identificación del agente.CR 2.7 La identificación de determinadas bacterias se realiza, mediante sondas de hibridación específicas, según losprotocolos de trabajo establecidos.

RP 3: Efectuar antibiogramas para análisis de la sensibilidad de las bacterias a los agentes antibacterianos,dependiendo de la tecnología disponible en el laboratorio, según protocolos establecidos y normativaaplicable.CR 3.1 Los cultivos de muestras biológicas, previamente seleccionados en función de la patología se preparan para elanálisis de sensibilidad frente a antibióticos, según protocolos establecidos.CR 3.2 El perfil antibiótico, se selecciona, en función del tipo de microorganismo a estudiar, y conforme a los protocolos dellaboratorio.CR 3.3 La sensibilidad de las bacterias a los agentes, se detecta mediante el antibiograma, según la técnica disponible en ellaboratorio.CR 3.4 Los resultados obtenidos del antibiograma se verifican, comprobando su fiabilidad desde el punto de vista cualitativoy/o cuantitativo, según protocolos establecidos, permitiendo aplicar la terapia antimicrobiana específica.

RP 4: Realizar operaciones para aislamiento e identificación de micobacterias, dependiendo de latecnología disponible en el laboratorio, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 4.1 Los listados de trabajo referentes a aislamiento e identificación de micobacterias, se comparan con las muestrasproblema, verificando su correspondencia.CR 4.2 Las muestras biológicas se fluidifican, en su caso, descontaminándose según protocolos establecidos.CR 4.3 Las tinciones bacilo ácido alcohol resistente (BAAR), se efectúan, permitiendo el estudio microscópico de lamuestra, según protocolos establecidos.CR 4.4 Los cultivos se revisan, con la periodicidad establecida, evidenciando signos de crecimiento.CR 4.5 La identificación de micobacterias se efectúa, mediante pruebas bioquímicas o sondas de hibridación específicas,según los protocolos de trabajo, permitiendo un alto porcentaje de fiabilidad en la identificación.CR 4.6 Las operaciones para aislamiento e identificación de micobacterias se efectúan en campana de bioseguridad ysegún normas de seguridad establecidas en protocolos.

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RP 5: Realizar análisis para identificación micológica y detección de sensibilidad antifúngica, en función dela muestra a analizar, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 5.1 La correspondencia entre los listados de trabajo referentes a identificación micológica y las muestras problema secomprueba, siguiendo los protocolos establecidos.CR 5.2 El examen microscópico en fresco, se efectúa, cumpliendo condiciones de seguridad establecidas en protocolos,contribuyendo al diagnóstico.CR 5.3 La muestra para análisis micológico se siembra en los medios de cultivo específicos, e incuba, en función del tipo dehongo a estudiar, evitando contaminaciones.CR 5.4 Las pruebas micológicas se efectúan, previa selección, permitiendo la identificación del hongo específico, siguiendolos protocolos establecidos.CR 5.5 Las pruebas de sensibilidad antifúngica se llevan a cabo, según la técnica disponible en el laboratorio.

RP 6: Realizar pruebas para análisis parasitológico, en función de la muestra a analizar y técnica a aplicar,según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 6.1 La correspondencia entre los listados de trabajo referentes a análisis parasitológicos y las muestras problema secomprueba, siguiendo los protocolos establecidos.CR 6.2 El examen macroscópico de las muestras se efectúa, en su caso, colaborando con el parasitólogo.CR 6.3 La observación de huevos y quistes en heces se realiza, aplicando técnicas de concentración de muestras de heces,según los protocolos establecidos.CR 6.4 El estudio microscópico de la muestra de parásitos hemáticos y parásitos en heces se efectúa, medianteextensiones y tinciones de muestras de sangre y de muestras de heces.

RP 7: Realizar técnicas de cultivos celulares para el diagnóstico de enfermedades víricas, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CR 7.1 Las muestras se procesan, en su caso, inoculando los agentes en los cultivos, según protocolos establecidos.CR 7.2 Las condiciones de cultivo de los agentes víricos, se determinan, considerando pH, temperatura, nutrientes, entreotros factores.CR 7.3 Los cultivos se examinan con la periodicidad establecida, verificando el crecimiento en condiciones de esterilidad,evitando contaminaciones, según protocolos establecidos.

RP 8: Realizar pruebas manuales y semiautomáticas para análisis serológico, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CR 8.1 La correspondencia entre los listados de trabajo referentes a análisis serológico y las muestras problema secomprueba, siguiendo los protocolos establecidos.CR 8.2 La actividad del complemento, se elimina, en los sueros, en su caso, según la técnica a realizar, siguiendo losprotocolos establecidos.CR 8.3 Los resultados obtenidos en las técnicas de aglutinación y otras, se interpretan, de forma visual o con la ayuda delmicroscopio.CR 8.4 Las preparaciones se observan al microscopio de fluorescencia, efectuando los ajustes de intensidad de luz yutilizando filtros, en función de la técnica a realizar.CR 8.5 Las técnicas solicitadas de inmunoanálisis, Western Blot, inmunoelectroforesis, fijación del complemento, entreotras, se efectúan según los protocolos establecidos.

RP 9: Manejar equipos modulares y autoanalizadores para aplicación de técnicas serológicas, verificandosu funcionamiento, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 9.1 Las calibraciones de los equipos de técnicas serológicas, se efectúan, procesando los controles antes de iniciar laactividad.CR 9.2 La comunicación entre el sistema informático del laboratorio y el autoanalizador, se verifica, transmitiendo laspeticiones.CR 9.3 Los sueros procesados, se colocan en el autoanalizador, habiéndose elaborado los listados de trabajo.CR 9.4 Los resultados de los controles, se comprueban, realizándose las repeticiones de acuerdo con lo descrito en elprotocolo de trabajo.CR 9.5 Los resultados se transmiten al sistema informático de laboratorio, validándose por el facultativo responsable.CR 9.6 El funcionamiento de los equipos modulares, la colocación y retirada de las muestras, se verifican, según protocolosestablecidos.CR 9.7 Las muestras analizadas, se almacenan, para posteriores comprobaciones, estudios o aplicaciones en investigaciónbiomédica.

RP 10: Efectuar técnicas de amplificación de ácidos nucleicos, mediante la reacción en cadena de lapolimerasa (PCR), para la identificación y cuantificación de microorganismos, siguiendo protocolosestablecidos y normativa aplicable.

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CR 10.1 La extracción de ADN y ARN de la muestra se realiza según el protocolo establecido.CR 10.2 Las precauciones requeridas se adoptan, evitando la contaminación de las muestras y los reactivos, segúnprotocolos establecidos.CR 10.3 La técnica de reacción en cadena de la polimerasa (PCR), se selecciona, según el análisis a realizar y los mediostécnicos del laboratorio.CR 10.4 Las distintas bandas de ADN, obtenidas tras la reacción en cadena de la polimerasa (PCR), se identifican,mediante la utilización de patrones, según los medios técnicos del laboratorio, procesando los resultados bajo supervisiónfacultativa.CR 10.5 El análisis de carga viral y genotipado vírico, se realiza mediante técnicas de biología molecular (PCR), siguiendolos protocolos establecidos.CR 10.6 Las muestras analizadas, se almacenan, según protocolos establecidos y normativa aplicable.


Medios de producciónPipetas automáticas. Equipos de protección individual (EPI).Recipientes para recogida de residuos biológicos.Frigoríficos. Congeladores. Estufas. Mecheros. Microscopios ópticos. Microscopio de fluorescencia.Microscopio invertido. Equipos automáticos de tinción, de identificación, de sensibilidad a antimicrobianos.Equipos para incubación de hemocultivos y micobacterias. Sistemas de incubación en anaerobiosis, CO2 yatmósfera microaerófila. Sistemas automáticos para serología. Campanas de bioseguridad de flujo laminar.Sistemas informáticos de gestión.

Productos y resultadosMateriales, instrumentos y equipos para análisis microbiológico, preparados. Muestras para análisisbacteriológico, procesadas. Antibiograma realizado. Aislamiento e identificación de micobacterias, efectuados.Análisis para identificación micológica y pruebas de sensibilidad antifúngica, realizados. Pruebas para análisisparasitológico, efectuadas. Cultivos celulares para el diagnóstico de enfermedades víricas, realizados.Pruebas para análisis serológico, efectuadas. Equipos modulares y autoanalizadores, para aplicación detécnicas serológicas, manejados. Identificación y cuantificación de microorganismos, mediante técnicas deamplificación de ácidos nucleicos, realizadas.

Información utilizada o generadaListados de trabajo. Fichas clínicas. Resultados analíticos microbiológicos. Informes de resultados analíticosmicrobiológicos. Registro de incidencias. Libros de registro. Bibliografía especializada de consulta. Protocolostécnicos sobre análisis microbiológico e identificación de parásitos. Manuales técnicos de manejo ymantenimiento de aparatos y equipos. Normativa aplicable sobre: calidad, prevención de riesgos laborales,protección de datos, derechos del enfermo, muestras biológicas humanas, entre otras.

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UNIDAD DE COMPETENCIA 5 Realizar análisis hematológicos y genéticos en muestras biológicashumanas y procedimientos para obtener hemoderivados



RP 1: Preparar materiales, instrumentos, equipos y muestras, para efectuar análisis hematológico, enfunción de las técnicas a realizar, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 1.1 Los materiales, instrumentos y equipos se preparan, según protocolos establecidos, encontrándose disponibles yoperativos en el momento requerido.CR 1.2 Los reactivos, calibradores, controles y muestras, se preparan, según protocolos establecidos, colocándolos enbandejas y verificando que se corresponden con el listado de trabajo.CR 1.3 La calibración y controles diarios de los equipos, se efectúan, siguiendo los protocolos de trabajo establecidos.CR 1.4 Las operaciones previas al análisis (centrifugación, homogeneización, entre otras), se efectúan, considerando el tipode muestra y determinación solicitada.CR 1.5 Las operaciones de desfibrinación, de concentración de leucocitos, hemolizado, entre otras, se efectúan,considerando la técnica a realizar y la determinación solicitada.CR 1.6 Las muestras recibidas, se distribuyen a las diferentes unidades del servicio para su análisis.

RP 2: Realizar tinciones sanguíneas y de médula ósea, para identificación morfológica de elementoscelulares, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 2.1 La correspondencia entre los listados de trabajo y las muestras problema, se verifica, según los protocolos detrabajo específicos.CR 2.2 Los frotis sanguíneos y de médula ósea, se efectúan, manual o automáticamente, fijándolos según métodoestablecido y quedando dispuestos para el proceso de tinción.CR 2.3 Las tinciones solicitadas se realizan, dependiendo de la técnica y análisis solicitado, según protocolos establecidos.CR 2.4 Las extensiones analizadas, se almacenan, en su caso, siguiendo protocolos establecidos.

RP 3: Realizar técnicas de hematimetría y recuentos celulares, automáticos y manuales, para análisis desangre periférica y médula ósea, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 3.1 La correspondencia entre los listados de trabajo referentes a recuentos celulares automáticos y manuales y lasmuestras problema, se verifica, según los protocolos.CR 3.2 La selección de técnicas y de equipos para hematimetría se efectúa, en función del tipo de muestra y del parámetroa analizar.CR 3.3 Los resultados obtenidos de la prueba de velocidad de sedimentación y de los recuentos celulares, se verifican,comprobando su coherencia, informando al superior responsable o repitiéndose la determinación, según proceda.CR 3.4 La fórmula leucocitaria se realiza, tras la tinción específica, por diferenciación morfológica, mediante microscopio, ensu caso, según protocolos establecidos.

RP 4: Manejar equipos modulares o analizadores en serie, para determinaciones del laboratorio dehematología y genética, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 4.1 Las calibraciones de equipos modulares o analizadores en serie se realizan, procesándose los controles antes decomenzar el trabajo.CR 4.2 Las peticiones se transmiten mediante el sistema informático del laboratorio, al analizador, según protocolosestablecidos.CR 4.3 Los listados de trabajo se elaboran, preparándose la sangre, el suero, el plasma u otras muestras para sercolocados en el analizador.CR 4.4 Los resultados de los controles se comprueban, realizando las repeticiones de acuerdo con lo descrito en elprotocolo de trabajo, y transmitiendo, a continuación, los resultados al sistema informático de laboratorio.CR 4.5 El funcionamiento de los equipos modulares, se verifica, así como la colocación y la retirada de las muestras.CR 4.6 Los resultados obtenidos, son procesados, siendo enviados mediante el sistema informático para su validaciónfacultativa.

RP 5: Efectuar técnicas para el estudio de hemostasia y coagulación, según las determinacionessolicitadas, protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 5.1 La correspondencia entre los listados de trabajo referentes a los estudios de hemostasia y coagulación y lasmuestras problema, se verifica, según los protocolos.

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CR 5.2 Los estudios de hemostasia se efectúan, según técnica a realizar, determinaciones solicitadas y características delpaciente o usuario.CR 5.3 Los coagulómetros automáticos, se configuran dependiendo de las determinaciones solicitadas.CR 5.4 Las determinaciones para el control de tratamiento anticoagulante, se efectúan según protocolo.CR 5.5 Los estudios de anomalías de factores de coagulación, se efectúan mediante técnicas de biología molecular o conlos medios técnicos disponibles en el servicio.

RP 6: Efectuar técnicas inmunohematológicas para banco de sangre, según las determinacionessolicitadas, protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 6.1 La correspondencia entre los listados de trabajo y las muestras problema se comprueba, según los protocolos detrabajo específicos.CR 6.2 Las determinaciones de grupos sanguíneos solicitadas, se efectúan, de forma manual o automática según elprotocolo establecido por el servicio.CR 6.3 La detección de antiglobulinas en las muestras solicitadas, se efectúa por medio de técnicas de escrutinio deanticuerpos irregulares.CR 6.4 Las pruebas cruzadas se realizan, verificándose por el método de confirmación, bajo supervisión facultativa.

RP 7: Realizar operaciones para preparación y distribución de hemoderivados en un banco de sangre,según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 7.1 Las bolsas de sangre se reciben, verificándose su identificación.CR 7.2 Los controles analíticos, se efectúan en las muestras piloto de las bolsas de sangre recibidas, aceptándose orechazándose las bolsas de sangre.CR 7.3 Las bolsas de sangre aceptadas se etiquetan, anotando los datos inmunohematológicos.CR 7.4 La separación del plasma y de los hematíes, se efectúa por centrifugación, considerando tiempo y temperaturarequeridos.CR 7.5 Los hemoderivados se obtienen, según tecnología disponible en el banco de sangre correspondiente y protocolosestablecidos.CR 7.6 Los hemoderivados se registran, almacenándolos según condiciones recogidas en los protocolos establecidos,hasta su posterior distribución.CR 7.7 Los hemoderivados se distribuyen, según las peticiones cursadas, actualizando los ficheros de existencias.CR 7.8 Los hemoderivados se someten a radiaciones, en su caso, para su posterior utilización en trasplantes, segúnprotocolos establecidos.

RP 8: Efectuar técnicas de obtención y amplificación de ácidos nucleicos, mediante la reacción en cadenade la polimerasa (PCR), para el diagnóstico y seguimiento de enfermedad mínima residual enpacientes oncohematológicos, según protocolos establecidos, normativa aplicable y bajo supervisiónfacultativa.CR 8.1 La correspondencia entre los listados de trabajo referentes a obtención y amplificación de ácidos nucleicos, y lasmuestras problema, se verifica, según los protocolos de trabajo específicos.CR 8.2 La extracción de ADN y de ARN de la muestra, se efectúa, manual o automáticamente, según medios disponibles enel servicio, evitando la contaminación de las muestras y de los reactivos, siguiendo los protocolos establecidos.CR 8.3 La técnica de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) a aplicar, cualitativa o cuantitativa, se selecciona, segúnpatología a analizar y medios técnicos disponibles en el servicio, utilizando reactivos específicos de la patología a detectar(sondas, cebadores), siguiendo los protocolos establecidos.CR 8.4 La separación electroforética del material obtenido mediante PCR manual y su visualización, se realizan, segúnprotocolos establecidos y cumpliendo la normativa referente a utilización de productos contaminantes.CR 8.5 El proceso de detección de transcritos anómalos o mutaciones genéticas (obtenidos tras la realización de la PCR), yde su cuantificación, se efectúa, según protocolos establecidos y bajo supervisión facultativa.CR 8.6 La técnica de secuenciación de fragmentos de ADN, se efectúa en las patologías que lo requieran, según los mediostécnicos disponibles en el laboratorio y protocolos establecidos, y bajo supervisión facultativa.CR 8.7 Las muestras para enviar a centros colaboradores, se preparan para su transporte, según protocolos establecidos ysiguiendo las recomendaciones del centro receptor.CR 8.8 Las muestras analizadas, se almacenan en congeladores, a -80ºC, cumpliendo normas de control de la temperatura.

RP 9: Efectuar cariotipos, para estudios cromosómicos, según métodos convencionales, siguiendoprotocolos establecidos y normativa aplicable.CR 9.1 El tratamiento y el procesamiento de las muestras para estudios cromosómicos, se efectúa, según tipo de muestra(sangre periférica, médula ósea líquido amniótico, explantes, cordón, entre otras), aplicando condiciones asépticas.CR 9.2 El cultivo de las muestras, se realiza durante el tiempo y en las condiciones establecidas en los protocolos.CR 9.3 Las preparaciones cromosómicas se obtienen, disponiéndolas para su posterior observación e identificación.

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CR 9.4 Las extensiones (obtenidas a partir del cultivo) y las tinciones, se efectúan según la técnica específica, obteniéndoselos diferentes tipos de bandeado cromosómico.CR 9.5 El estudio cromosómico se efectúa, mediante microfotografías y ampliaciones, recortando, emparejando yordenando los cromosomas, según plantilla.CR 9.6 Los resultados se anotan en el formato establecido, siendo registrados y archivados.

RP 10: Efectuar técnicas citogenéticas para estudio y análisis de genes en pacientes oncohematológicos,siguiendo protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 10.1 La correspondencia entre los listados de trabajo referentes a estudio y análisis de genes en pacientesoncohematológicos, y las muestras problema, se verifica, según los protocolos establecidos.CR 10.2 Las muestras recibidas se someten, en su caso, a operaciones previas al análisis (homogeneización, incubación),siguiendo protocolos establecidos.CR 10.3 El estudio y análisis de genes en pacientes oncohematológicos se efectúa, mediante técnicas de hibridación "insitu" con fluorescencia (FISH), siguiendo los protocolos.CR 10.4 La detección de mutaciones de genes en pacientes oncohematológicos se efectúa, mediante la aplicación demétodos de análisis directo (Single Strand Conformation Polymorphism o SSCP, Conformational Sensitive GelElectroforesis o CSGE, entre otros), según protocolos del servicio.CR 10.5 La detección de polimorfismo de longitud de fragmentos de restricción, en genes de pacientes oncohematológicos,se efectúa, mediante aplicación de los métodos de análisis indirecto (PLFR), desarrollando sus fases (aislamiento de ADN,obtención de fragmentos de restricción, Southern Blot y detección de las bandas), según medios técnicos disponibles,patología analizada y protocolos establecidos.


Medios de producciónEquipos de protección individual (EPI).Recipientes para recogida de residuos biológicos. Centrífugas.Microcentrífugas. Frigoríficos. Congeladores. Baños termostáticos. Estufas. Microscopios ópticos. Microscopiode fluorescencia. Destiladores de agua. Agitadores rotatorios. Microscopio invertido. Equipos de electroforesis.Fotómetros. Espectrofotómetro. Termociclador. Transiluminador UV. Equipos automáticos para PCR.Secuenciadores de ADN. Bioanalizadores de fragmentos. Equipo de radiación de isótopos. Campanas debioseguridad de flujo laminar. Equipos automáticos de tinción. Velocidad de sedimentación. Coagulación.Hematimetría. Equipos prensa-bolsas. Armarios conservadores de bolsas de sangre y hemoderivados.Sistemas informáticos de gestión.

Productos y resultadosMateriales, instrumentos, equipos y muestras, preparados para efectuar análisis hematológico. Tincionessanguíneas y de médula ósea. Hematimetría y recuentos celulares, efectuados. Determinaciones dellaboratorio de hematología y genética efectuadas con equipos modulares o analizadores en serie. Estudio dehemostasia y de coagulación, realizados. Pruebas inmunohematológicas para banco de sangre, efectuadas.Bolsas de sangre y hemoderivados preparados y distribuidos. Ácidos nucleicos obtenidos y amplificados parael diagnóstico y seguimiento de pacientes oncohematológicos. Cariotipos. Técnicas citogenéticas realizadas.Análisis de genes, genes de fusión y mutaciones. Muestras almacenadas.

Información utilizada o generadaListados de trabajo. Fichas clínicas. Libros de registro. Registro de incidencias. Resultados analíticos.Informes de resultados analíticos hematológicos. Informes de banco de sangre. Informes de citómetro.Gráficas de poblaciones leucocitarias, gráficas de control calidad. Genotecas. Bibliografía especializada deconsulta. Protocolos de actuación para análisis hematológicos, genéticos y de biología molecular. Manualestécnicos de utilización y mantenimiento de aparatos y equipos. Normativa aplicable sobre: control de calidad,prevención de riesgos laborales, muestras humanas, protección de datos, derechos del paciente, entre otras.

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UNIDAD DE COMPETENCIA 6 Realizar técnicas inmunológicas de aplicación en las distintas áreas dellaboratorio de análisis clínicos



RP 1: Preparar materiales, instrumentos, equipos y muestras, para análisis inmunológico con finesdiagnósticos y de investigación biomédica, en función de las técnicas a realizar, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CR 1.1 Los materiales, instrumentos y equipos para el laboratorio de inmunología, se preparan, estando disponibles yoperativos en el momento requerido.CR 1.2 La calibración y los controles diarios de los equipos asignados, se realizan siguiendo los protocolos.CR 1.3 La correspondencia entre los listados de trabajo y las muestras problema se verifica, según los protocolosestablecidos.CR 1.4 Las operaciones de procesamiento de muestras (centrifugación, homogeneización, entre otras), se efectúan, segúnel tipo de muestra y determinación solicitada, para su posterior análisis o distribución a las diferentes unidades del servicio,según protocolos establecidos.

RP 2: Efectuar técnicas inmunoquímicas para el aislamiento, caracterización y cuantificación de proteínas,según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 2.1 La correspondencia entre los listados de trabajo referentes a aislamiento, caracterización y cuantificación deproteínas, y las muestras problema, se comprueba según los protocolos establecidos.CR 2.2 El aislamiento, caracterización y cuantificación de proteínas se efectúa, mediante las técnicas deinmunoelectroforesis e inmunofijación, según protocolos establecidos.CR 2.3 La caracterización de proteínas se efectúa, mediante cromatografía, según el protocolo establecido, verificando laseparación de las fracciones del cromatograma, para su posterior cuantificación.CR 2.4 El nefelómetro, se prepara, utilizándolo según los protocolos específicos de trabajo.CR 2.5 La caracterización de antígenos o estudio de especificidades de anticuerpos se efectúa, mediante el método deWestern Blot, según los protocolos establecidos.CR 2.6 La caracterización y cuantificación de proteínas, se realizan, en su caso, mediante otras pruebas inmunoquímicas deaislamiento.

RP 3: Realizar técnicas de obtención y amplificación de ácidos nucleicos mediante la reacción en cadenade la polimerasa (PCR), para estudios de patología molecular, según protocolos establecidos ynormativa aplicable.CR 3.1 La correspondencia entre los listados de trabajo, referentes al estudio de patologías moleculares, y las muestrasproblema, se verifica, siguiendo los protocolos establecidos.CR 3.2 La extracción de ADN y ARN de la muestra, se realiza, manual o automáticamente, evitando la contaminación demuestras y reactivos, verificando que el material obtenido es suficiente, siguiendo los protocolos establecidos.CR 3.3 La técnica de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) a aplicar, se selecciona, según la patología a analizar,los medios técnicos del servicio y los protocolos establecidos.CR 3.4 La separación electroforética del material obtenido y su visualización, se realizan según protocolos establecidos ynormas de prevención referentes al uso de reactivos contaminantes.CR 3.5 Las bandas de ADN resultantes del proceso, se identifican mediante la utilización de patrones.CR 3.6 La técnica de secuenciación de ADN, se efectúa, según los medios técnicos del servicio y conforme a protocolos.CR 3.7 Las muestras analizadas, se almacenan, en su caso, congelándolas a -80ºC, para estudios posteriores o parainvestigación biomédica.

RP 4: Detectar autoanticuerpos para el diagnóstico de enfermedades autoinmunes, dependiendo de lastécnicas y equipos disponibles en el servicio, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 4.1 La correspondencia entre los listados de trabajo referentes a detección de autoanticuerpos, y las muestrasproblema, se comprueba según los protocolos de trabajo establecidos.CR 4.2 Las muestras se someten a las operaciones previas al análisis (centrifugación, incubación, fijación en portaobjetos,tinción con fluorocromos específicos, entre otras), según las determinaciones a realizar.CR 4.3 La detección y caracterización de los autoanticuerpos, organoespecíficos y no organoespecíficos, se realiza porinmunofluorescencia, enzimoinmunoanálisis, hemaglutinación, inmunodifusión radial y citometría, dependiendo delanticuerpo a analizar, según los equipos disponibles en el servicio y protocolos establecidos.

RP 5: Detectar inmunoglobulinas específicas para el diagnóstico de alergias e hipersensibilidad,

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dependiendo de las técnicas y equipos disponibles en el servicio, según protocolos establecidos ynormativa aplicable.CR 5.1 La correspondencia entre los listados de trabajo de detección de inmunoglobulinas y las muestras problema, secomprueba según los protocolos de trabajo establecidos.CR 5.2 Las operaciones de procesamiento de las muestras, se efectúan, según la determinación a realizar, analizando,posteriormente, o distribuyendo las muestras a las diferentes unidades del laboratorio, en su caso, según protocolosestablecidos.CR 5.3 La cuantificación de inmunoglobulinas plasmáticas se realiza, mediante electroforesis manual o automática, segúnprotocolos establecidos.CR 5.4 Los equipos automáticos para detección de inmunoglobulinas específicas, se verifican, comprobando su calibración,y que los resultados de los controles están dentro del rango de los valores asignados.CR 5.5 La detección de inmunoglobulinas específicas frente a diversos alérgenos, se realiza, utilizando las técnicasradioalergenosorbentes (PRAS), recuento de eosinófilos, enzimoinmunoensayo (ELISA), medida de histamina, entre otras,según equipos disponibles en el servicio y protocolos establecidos.

RP 6: Realizar técnicas específicas para el estudio de subpoblaciones linfocitarias, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CR 6.1 La correspondencia entre los listados de trabajo referentes a estudios de subpoblaciones linfocitarias, y las muestrasproblema, se comprueba según los protocolos establecidos.CR 6.2 Los marcadores de membrana a analizar y los anticuerpos monoclonales correspondientes, se seleccionan,dependiendo de la patología a estudiar.CR 6.3 La fase de incubación de las muestras con los fluorocromos correspondientes, en oscuridad, y fases subsiguientes,se efectúan, según el protocolo establecido.CR 6.4 La preparación y manejo del citómetro de flujo, se realiza, según el protocolo establecido y bajo supervisiónfacultativa.CR 6.5 La muestra problema, se introduce en el citómetro de flujo, según el protocolo establecido.

RP 7: Realizar cultivos celulares para estudios de funcionalidad celular, según protocolos establecidos ynormativa aplicable.CR 7.1 El tratamiento y el procesamiento de las muestras para estudios de funcionalidad celular, se efectúa, segúncaracterísticas de las muestras y aplicando condiciones asépticas.CR 7.2 Las condiciones de rigurosa esterilidad, se mantienen, durante el proceso de cultivos celulares para estudios defuncionalidad celular, evitando contaminaciones.CR 7.3 Los cultivos se examinan con la periodicidad establecida, controlando el pH, la temperatura, los nutrientes, entreotros parámetros, según protocolos establecidos.CR 7.4 El análisis de la proliferación celular, se realiza mediante estimulación con mitógenos y otras técnicas.CR 7.5 Las técnicas isotópicas, se realizan, reuniendo los requisitos de operador de radioinmunoanálisis (RIA) requeridos,identificando los riesgos y cumpliendo estrictamente los protocolos establecidos y la normativa aplicable.CR 7.6 La congelación de células se efectúa, para su conservación y almacenamiento, considerando la viabilidad delcultivo, la fase de crecimiento y usando agentes y técnicas de crioprotección.

RP 8: Realizar técnicas para determinación de antígenos HLA, con diversas aplicaciones en el laboratorio,según protocolos establecidos y normativa aplicable.CR 8.1 La correspondencia entre los listados de trabajo y las muestras problema, se comprueba según los protocolos.CR 8.2 Las muestras se someten a operaciones previas al análisis, según protocolos establecidos.CR 8.3 La determinación de los antígenos de histocompatibilidad (HLA), se realiza, mediante la aplicación de métodosserológicos, (tales como el test de microlinfocitotoxicidad que utiliza anticuerpos monoclonales), visualizando el resultado almicroscopio.CR 8.4 La reacción en cadena de la polimerasa (PCR) se efectúa, para el análisis de genes específicos del complejo HLA,siguiendo protocolos establecidos y bajo supervisión facultativa.

RP 9: Manejar equipos modulares o analizadores en serie para detectar antígenos y/o anticuerpos, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable.CR 9.1 Las calibraciones y preparación de controles, para equipos modulares o analizadores en serie, que detectanantígenos y/o anticuerpos, se efectúan antes de comenzar la actividad, según protocolos establecidos.CR 9.2 Las peticiones de las determinaciones analíticas, se trasmiten desde el sistema informático del laboratorio alanalizador.CR 9.3 Los listados de trabajo se elaboran, preparándose los sueros para ser colocados en el analizador.CR 9.4 El funcionamiento de equipos modulares o analizadores en serie, se verifica, detectando y solucionando incidencias,en su caso.CR 9.5 La colocación y retirada de muestras en el analizador, se verifica, detectando y solucionando incidencias, en sucaso.

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CR 9.6 Las incidencias se registran antes, durante y después del proceso, según protocolos establecidos.CR 9.7 Los resultados obtenidos se transmiten al sistema informático del laboratorio, según protocolos establecidos.


Medios de producciónCentrífugas. Microcentrífugas. Frigoríficos. Congeladores. Secuenciadores de ADN. Microscopios ópticos.Microscopio de fluorescencia. Microscopio invertido. Equipos automáticos de inmunoquímica. Equipos deelectroforesis. Equipos de inmunoblots. Equipos automáticos para EIA. Citómetro de flujo. Sistemasinformáticos de gestión.

Productos y resultadosMateriales, instrumentos, equipos y muestras, preparados para análisis inmunológico. Técnicasinmunoquímicas para análisis de proteínas, realizadas. Estudios de patología molecular, efectuados. Técnicaspara diagnóstico de enfermedades autoinmunes, realizadas. Muestras biológicas, almacenadas. Técnicaspara diagnóstico de alergias e hipersensibilidad, efectuadas. Antígenos HLA determinados. Técnicasespecíficas para el estudio de subpoblaciones linfocitarias, realizadas. Antígenos y anticuerpos, detectadosmediante equipos modulares y autoanalizadores en serie.

Información utilizada o generadaListados de trabajo. Fichas clínicas. Libros de registro. Registro de incidencias. Resultados analíticosinmunológicos. Informes de resultados analíticos inmunológicos. Resultado de análisis de genes. Bibliografíaespecializada de consulta. Protocolos para realizar técnicas inmunológicas en muestras biológicas, con finesdiagnósticos y de investigación biomédica. Manuales técnicos de utilización y mantenimiento de aparatos yequipos. Normativa aplicable sobre: control de calidad, prevención de riesgos laborales, protección yconfidencialidad de datos, muestras biológicas, derechos del enfermo, entre otras.

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MÓDULO FORMATIVO 1 Gestión de una unidad de un laboratorio de análisis clínicosNivel 3Código MF0369_3Asociado a la UC Gestionar una unidad de un laboratorio de análisis clínicosDuración horas 30

Capacidades y criterios de evaluación

C1: Aplicar procedimientos para la gestión de archivos de pacientes o usuarios de un laboratorio de análisisclínicos e investigación biomédica, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE1.1 Explicar el significado y estructura de una historia clínica, describiendo la secuencia para guardar documentos y pruebasdiagnósticas.CE1.2 Describir los mecanismos de circulación de la documentación en las instituciones sanitarias.CE1.3 Especificar sistemas de codificación y registro de documentos sanitarios.CE1.4 Explicar las utilidades de los sistemas informáticos de gestión de laboratorio, identificando y determinando lascaracterísticas de cada área o unidad.CE1.5 Detallar los datos del paciente o usuario, que se deben introducir en la base de datos del sistema informático delaboratorio.CE1.6 Describir documentación relativa a laboratorio de análisis clínicos e investigación biomédica: solicitudes de pruebasanalíticas, resultados de pruebas diagnósticas y exploratorias, informes estadísticos, resúmenes diarios de actividad, listados detrabajo, entre otros.CE1.7 Clasificar documentación relativa a laboratorio de análisis clínicos e investigación biomédica.CE1.8 En un supuesto práctico de gestión de archivos de pacientes o usuarios de un laboratorio de análisis clínicos einvestigación biomédica, según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Incorporar información referente a pruebas diagnósticas o exploraciones específicas de pacientes, manteniendo la base dedatos actualizada.- Comprobar peticiones de pruebas analíticas.- Registrar peticiones de pruebas analíticas.- Elaborar informes estadísticos y resúmenes diarios de actividad.- Verificar la terminación de todas las solicitudes, así como su validación posterior por la persona responsable.- Transmitir listados de trabajo, por medios informáticos, a laboratorios de apoyo y de referencia.- Integrar la información recibida por vía informática, de laboratorios de referencia o de otros centros, en la base de datos.

C2: Aplicar procedimientos para la citación de pacientes o usuarios, según las características del laboratoriode análisis clínicos e investigación biomédica, dispensándoles un trato personalizado, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CE2.1 Interpretar documentos de citación de pacientes o usuarios.CE2.2 Detallar el procedimiento para realizar la citación de pacientes o usuarios, en función de los diferentes tipos de servicios ounidades de diagnóstico.CE2.3 Identificar requisitos establecidos por entidades sanitarias para la recepción de peticiones médicas analíticas y citaciónde pacientes.CE2.4 Explicar consentimiento informado.CE2.5 En un supuesto práctico de citación de un paciente para un ensayo clínico, según protocolos establecidos y normativaaplicable:- Comunicar la paciente lugar, fecha, hora de la prueba y la preparación previa requerida para la misma.- Atender al paciente, de forma profesional, proporcionándole información sobre el proceso a seguir.- Obtener del paciente el consentimiento informado, colaborando con el facultativo responsable.

C3: Aplicar procedimientos para gestión del almacén, reposición y adquisición de materiales e instrumentalutilizados en el laboratorio de análisis clínicos e investigación biomédica, según protocolos establecidosy normativa aplicable.CE3.1 Explicar los métodos y condiciones de almacenamiento y conservación de productos y materiales de laboratorio, enfunción del tipo y características del material.CE3.2 Analizar los métodos de control de existencias y de elaboración del inventario de materiales.CE3.3 Describir los procedimientos generales de distribución de material en las distintas áreas de trabajo.CE3.4 Determinar los documentos utilizados en el laboratorio de análisis clínicos e investigación biomédica para realizaroperaciones de compra.CE3.5 Definir los datos mínimos que debe contener una factura, según normativa aplicable.

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CE3.6 En un supuesto práctico de gestión de almacén, reposición y adquisición de materiales e instrumental utilizados en ellaboratorio de análisis clínicos e investigación biomédica, según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Identificar la necesidad de reposición de existencias, según criterios establecidos.- Emitir órdenes de pedido, transmitiéndolas a proveedores habituales.- Recepcionar un pedido, según criterios establecidos.- Elaborar un inventario de existencias, utilizando aplicaciones informáticas.

C4: Aplicar procedimientos de facturación en aquellos servicios de análisis clínicos e investigación biomédicaque lo requieran y en centros de titularidad privada, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE4.1 Describir los documentos, utilizados en el laboratorio de análisis clínicos e investigación biomédica, para facturación deservicios.CE4.2 Detallar requisitos de cumplimentación de los volantes de peticiones analíticas, considerando exigencias de entidadesaseguradoras.CE4.3 En un supuesto práctico de facturación en un centro de titularidad privada, según criterios establecidos y normativaaplicable:- Comprobar que los volantes de petición analítica cumplen las exigencias de las entidades aseguradoras.- Confeccionar una factura.- Realizar los cálculos para determinar el importe total de la facturación.- Efectuar el desglose de la factura.

C5: Aplicar procedimientos para la programación y mantenimiento de los equipos del laboratorio de análisisclínicos e investigación biomédica, interpretando la información científico-técnica de aparatos, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable.CE5.1 Describir planes de mantenimiento o revisiones de aparatos, equipos y sistemas de medida del laboratorio.CE5.2 Clasificar principales averías y/o fallos en el funcionamiento de aparatos o equipos de laboratorio, indicando cómodetectarlas.CE5.3 Enumerar pautas de funcionamiento, programación y mantenimiento de aparatos o equipos de laboratorio.CE5.4 Describir la documentación relacionada con planes de mantenimiento, revisiones y averías de aparatos o equipos delaboratorio: fichas de mantenimiento, partes de averías, partes de reparación, garantías de reparación, entre otros documentos.CE5.5 En un supuesto práctico de mantenimiento de equipos del laboratorio de análisis clínicos e investigación biomédica,según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Establecer plazos de revisión de equipos del laboratorio, según criterios establecidos.- Formular pautas sobre funcionamiento de aparatos para otros usuarios.- Formular pautas sobre programación y mantenimiento de aparatos para otros usuarios.

C6: Analizar el plan de prevención de riesgos laborales en el laboratorio de análisis clínicos e investigaciónbiomédica, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE6.1 Determinar los factores de riesgo para la salud en las diferentes áreas de trabajo.CE6.2 Relacionar las medidas preventivas utilizadas en el laboratorio, con los medios de prevención establecidos por lanormativa.CE6.3 Describir la simbología, situación física de señales, alarmas, equipos contra incendios, y equipos de primeros auxilios.CE6.4 Clasificar residuos biológicos, según su nivel de contaminación.CE6.5 En un supuesto práctico de prevención de riesgos laborales en el laboratorio de análisis clínicos e investigaciónbiomédica, según protocolos establecidos:- Determinar los riesgos laborales de las diferentes áreas de trabajo.- Relacionar los riesgos con medidas de prevención correspondientes.- Actuar ante un accidente laboral, según protocolos establecidos.

C7: Aplicar procedimientos para el desarrollo del plan de garantía de calidad en pruebas analíticas delaboratorio, colaborando con los responsables superiores, según protocolos establecidos y normativaaplicable.CE7.1 Determinar los factores que determinan la calidad del proceso.CE7.2 Describir los recursos humanos y materiales destinados a garantizar la calidad del proceso.CE7.3 Diferenciar control de calidad interno y externo.CE7.4 Identificar las desviaciones del proceso analítico y los métodos para su solución.CE7.5 Analizar datos suministrados por sistemas de control de calidad externo.CE7.6 Interpretar normativa aplicable para la acreditación del servicio.CE7.7 En un supuesto práctico de desarrollo de calidad en pruebas analíticas, colaborando con los responsables superiores,según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Interpretar protocolos de trabajo de pruebas de laboratorio.- Efectuar la revisión y actualización de protocolos, según el plan de calidad.- Registrar procesos y actuaciones llevadas a cabo en un área de laboratorio, siguiendo indicaciones del responsable superior.

C8: Aplicar procedimientos para la participación en programas formativos, congresos y reuniones científicas

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dentro del ámbito del laboratorio de análisis clínicos y de investigación biomédica, según criterios delservicio y bajo supervisión facultativa.CE8.1 Diferenciar tipos de proyectos en el ámbito del laboratorio de análisis clínicos y de investigación biomédica: proyectosdocentes, proyectos científicos, proyectos I+D+I, proyectos de entidades públicas, proyectos de entidades privadas, entre otros.CE8.2 Distinguir conceptos tales como: sesión clínica, ponencia, comunicación, publicación, sesión bibliográfica, programasexternos de calidad nacionales, programas externos de calidad internacionales, tesis doctoral, reunión científica, congresosnacionales, congresos internacionales, entre otros.CE8.3 Identificar asociaciones profesionales, organismos, instituciones, tanto públicos como privados, de interés científico en elámbito del laboratorio de análisis clínico y de la investigación biomédica.CE8.4 Identificar revistas científicas especializadas de publicación periódica.CE8.5 Interpretar programas formativos de alumnos en prácticas pertenecientes a módulos profesionales, y programas decursos de formación continuada dependientes de planes de formación del servicio, bajo supervisión facultativa.CE8.6 En un supuesto práctico de seguimiento de alumnos en periodo de formación, bajo supervisión facultativa:- Colaborar en la adaptación de un programa formativo para alumnos en prácticas.- Colaborar en la cumplimentación de la documentación de seguimiento de alumnos sobre los procesos asignados.- Colaborar en la elaboración de la memoria final del proceso de formación.

Capacidades cuya adquisición debe ser completada en un entorno real de trabajoC1 respecto a CE1.8; C2 respecto a CE2.5; C3 respecto a CE3.6; C4 respecto a CE4.3; C5 respecto a CE5.6; C6 respecto a CE 6.5; C7 respecto a CE 7.7 y C8 respecto a CE 8.6.Otras capacidades:Proponerse objetivos retadores que supongan un nivel de rendimiento y eficacia superior al alcanzadopreviamente.Demostrar cierto grado de autonomía en la resolución de contingencias relacionadas con su actividad.Aprender nuevos conceptos o procedimientos y aprovechar eficazmente la formación utilizando losconocimientos adquiridos.Favorecer el desarrollo profesional y personal en el equipo de trabajo.Adaptarse a la organización, a sus cambios organizativos y tecnológicos; así como a situaciones o contextosnuevos.Demostrar resistencia al estrés, estabilidad de ánimo y control de impulsos.

Contenidos

1. Organización y gestión del laboratorio de análisis clínicos y de investigación biomédica

Análisis de la estructura organizativa del sector sanitario. Sistemas sanitarios. Tipos. Sistemas sanitarios

en España. Salud pública y comunitaria. Indicadores de salud. Funciones, áreas y organización del trabajo

en el laboratorio de análisis clínicos y de investigación biomédica. Funciones del profesional en el

laboratorio. Economía sanitaria. Normativa aplicable.

Identificación de la documentación del laboratorio. Documentación clínica y no clínica. Tipos de

documentos, utilidades, aplicaciones y criterios de cumplimentación. Procedimientos de tramitación y

circulación de documentos. Modelos de historias clínicas de pacientes. Normativa aplicable en materia de

documentación y protección de datos. Libros y documentos administrativos.

Gestión de existencias. Almacén sanitario. Productos sanitarios. Equipos. Gestión de compras.

Presupuestos. Contratación. Hoja de pedido. Albarán. Factura. Obligaciones tributarias. Administración de

suministros. Inventarios. Sistemas informáticos de gestión de la documentación.

Reactivos químicos, radioactivos y biológicos. Riesgos físicos, químicos, biológicos y radioactivos en el

desempeño de la actividad profesional. Prevención de riesgos relativos a equipos de laboratorio. Medidas

de prevención y protección en las diferentes áreas de trabajo. Señalización relativa a prevención de

riesgos laborales. Equipos de protección y seguridad. Gestión de residuos. Normativa aplicable. Medidas de

prevención y protección personal. Actuación ante emergencias. Técnicas de soporte vital básico. Plan de

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emergencias. Normativa aplicable sobre prevención de riesgos laborales.

Calidad en la prestación del servicio del laboratorio. Proceso de prestación del servicio.

Garantía de calidad en el laboratorio de análisis clínico. Garantía de calidad y planificación del control de

calidad. Control de calidad interno y externo. Evaluación de la calidad en el laboratorio. Normativa

aplicable a la garantía de calidad.

2. Intercambio de información científica en el ámbito del laboratorio de análisis clínicos y de investigación

biomédica

Proyectos científicos.

Programas formativos.

Multimedia (video-conferencia, buscadores de páginas de interés científico, bancos de datos, bancos de

imágenes, plataformas virtuales y otros recursos multimedia).

Asociaciones profesionales y científicas en el ámbito del laboratorio de análisis clínicos y de investigación

biomédica.

Reuniones científicas: sesión clínica, sesión bibliográfica, congresos nacionales, congresos internacionales,

entre otros.

Publicaciones científicas.

Parámetros de contexto de la formación

Espacios e instalaciones:Los espacios e instalaciones darán respuesta, en forma de aula, aula-taller, taller de prácticas, laboratorio oespacio singular, a las necesidades formativas, de acuerdo con el Contexto Profesional establecido en laUnidad de Competencia asociada, teniendo en cuenta la normativa aplicable del sector productivo, prevenciónde riesgos, salud laboral y protección medioambiental.

Perfil profesional del formador o formadora:1. Dominio de los conocimientos y las técnicas de gestión de una unidad de laboratorio de análisis clínicos,que se acreditará mediante una de las dos formas siguientes:- Formación académica de nivel 2 (Marco Español de Cualificaciones para la Educación Superior) o de otrasde superior nivel relacionadas con el campo profesional.- Experiencia profesional de un mínimo de 3 años en el campo de las competencias relacionadas con estemódulo formativo.2. Competencia pedagógica acreditada de acuerdo con lo que establezcan las Administraciones competentes.

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MÓDULO FORMATIVO 2 Fases preanalítica y postanalítica clínicasNivel 3Código MF0370_3Asociado a la UC Realizar los procedimientos de las fases preanalítica y postanalítica en el

laboratorio clínicoDuración horas 120


C1: Aplicar procedimientos para la obtención de muestras, en función de las características del paciente ousuario y de las determinaciones analíticas solicitadas, según protocolos establecidos y normativaaplicable.CE1.1 Identificar material, instrumental, equipos de protección individual (EPI) y recipientes utilizados en la toma de muestrasrelacionándolo con las diferentes técnicas utilizadas.CE1.2 Describir criterios de calidad en la toma de muestras.CE1.3 Enumerar las localizaciones anatómicas donde sea posible efectuar una toma de muestra sanguínea.CE1.4 Describir técnicas de toma de muestras sanguíneas, diferenciando sus indicaciones.CE1.5 Diferenciar la utilización de anticoagulantes y aditivos, en función de las características de los mismos, tipo de muestra ydeterminación analítica solicitada.CE1.6 Explicar los procedimientos para muestras que pueden ser recogidas directamente por el paciente o usuario (orina,heces, esputo y semen), especificando el recipiente de transporte.CE1.7 Distinguir métodos para la obtención de muestras tales como exudados, frotis, heridas, identificando el procedimiento y elrecipiente de transporte.CE1.8 Precisar criterios de asepsia local y de terapia farmacológica a tener en cuenta, principalmente, en la toma de muestraspara estudios microbiológicos y parasitarios.CE1.9 En un supuesto práctico de toma de muestras, según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Seleccionar el material requerido para una extracción sanguínea.- Seleccionar anticoagulantes indicados según determinación solicitada.- Realizar en un modelo anatómico el proceso de extracción de muestras sanguíneas.

C2: Aplicar procedimientos para identificación y registro de muestras biológicas, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CE2.1 Establecer los criterios de exclusión y de rechazo de las muestras.CE2.2 Describir métodos para identificación de muestras biológicas.CE2.3 Explicar sistemas de registro de peticiones analíticas.CE2.4 En un supuesto práctico de registro de una muestra biológica, según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Comprobar, en la muestra, los condicionantes predefinidos (anticoagulante, conservante, recipiente, tiempo transcurrido desdela obtención de la muestra).- Verificar que el volumen de la muestra, es suficiente para efectuar las determinaciones analíticas solicitadas.- Comprobar la identificación de la muestra.- Efectuar registros de peticiones analíticas.

C3: Aplicar procedimientos para la preparación de muestras y listados de trabajo, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CE3.1 Especificar normas de prevención de riesgos laborales en la preparación de muestras biológicas.CE3.2 Explicar la finalidad, los fundamentos, materiales, instrumentos, equipos y parámetros de control, de las operacionesindicadas para la preparación de muestras (homogeneización, centrifugación, filtrado pesaje, entre otras).CE3.3 Analizar el fundamento, materiales y procedimiento para la preparación de disoluciones y diluciones.CE3.4 Describir criterios para manipulación y procesamiento de muestras obtenidas por procedimientos invasivos o quirúrgicostales como: líquido cefalorraquídeo (LCR), abscesos, líquido peritoneal, entre otros.CE3.5 Detallar criterios para ordenación de muestras, según hojas de trabajo.CE3.6 Describir listados de trabajo.CE3.7 Diferenciar métodos de obtención de agua para su utilización en el laboratorio de análisis.CE3.8 Describir requisitos de calidad química del agua utilizada para pruebas de laboratorio.

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CE3.9 En un supuesto práctico de preparación de muestras biológicas para análisis, según protocolos establecidos y normativaaplicable:- Centrifugar muestras de sangre, obteniendo diferentes fracciones.- Centrifugar muestras de orina para obtener sus diferentes fracciones.- Realizar disoluciones y diluciones en el laboratorio.

C4: Aplicar procedimientos para la distribución y almacenamiento de muestras, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CE4.1 Establecer criterios de exclusión y de rechazo de las muestras, antes de su distribución y almacenamiento, estimando laestabilidad de las muestras.CE4.2 Describir mecanismos de distribución y transporte de muestras.CE4.3 Explicar condiciones de conservación y transporte de muestras biológicas.CE4.4 Enumerar métodos de transmisión y distribución de listados de trabajo.CE4.5 Detallar criterios para la selección de muestras destinadas a ensayos clínicos.CE4.6 Describir procedimientos de registro para distribución y almacenamiento de muestras.CE4.7 Identificar normativa aplicable referente al almacenamiento de muestras.CE4.8 En un supuesto práctico de almacenamiento de muestras seleccionadas para ensayos clínicos, según protocolosestablecidos y normativa aplicable:- Procesar las muestras, para su almacenamiento en frigorífico o congelador.- Efectuar el almacenamiento en orden, según normativa aplicable.- Realizar el registro de muestras almacenadas facilitando su localización posterior.- Efectuar una revisión periódica, detectando posibles desajustes.- Realizar controles de temperatura del congelador o frigorífico, según protocolos.

Capacidades cuya adquisición debe ser completada en un entorno real de trabajoC1 respecto a CE1.9; C2 respecto a CE2.4; C3 respecto a CE 3.9 y C4 respecto a CE 4.8.Otras capacidades:Proponerse objetivos retadores que supongan un nivel de rendimiento y eficacia superior al alcanzadopreviamente.Demostrar cierto grado de autonomía en la resolución de contingencias relacionadas con su actividad.Aprender nuevos conceptos o procedimientos y aprovechar eficazmente la formación utilizando losconocimientos adquiridos.Favorecer el desarrollo profesional y personal en el equipo de trabajo.Adaptarse a la organización, a sus cambios organizativos y tecnológicos; así como a situaciones o contextosnuevos.Demostrar resistencia al estrés, estabilidad de ánimo y control de impulsos.

Contenidos

1. Materiales, equipos, y técnicas utilizadas en un laboratorio de análisis clínicos en la fase preanalítica

Materiales y equipos de laboratorio. Tipos de materiales. Reactivos químicos y biológicos. Material

volumétrico. Equipos de protección individual (EPI).

Limpieza del material.

Técnicas empleadas en la fase preanalítica. Medidas de masa y volumen. Preparación de disoluciones y

diluciones. Modo de expresar la concentración. Filtración. Centrifugación.

2. Proceso general de obtención, identificación, procesamiento, conservación, almacenamiento, transporte

y envío de muestras biológicas

Clasificación de muestras biológicas: líquidas, de tejidos, y citológicas.

Toma de muestras. Diferencia entre obtención y recogida de muestras. Materiales para toma de muestras.

Muestras biológicas habituales. Muestras que pueden ser recogidas por el propio paciente. Muestras

obtenidas mediante procedimientos invasivos o quirúrgicos. Recursos tecnológicos de imagen para la

obtención de muestras.

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Sustancias analizables. Análisis cualitativo y cuantitativo. Determinación analítica. Perfil analítico. Batería

de pruebas. Errores en la manipulación preanalítica. Prevención en la manipulación de la muestra.

Identificación de muestras. Sistemas de registro.

Características generales del procesamiento de muestras en función de las mismas. Requisitos mínimos

para el procesamiento de la muestra.

Conservación de muestras biológicas humanas. Criterios de conservación. Métodos de conservación de las

muestras.

Almacenamiento de muestras. Muestras en biobancos. Normativa aplicable.

Transporte de las muestras. Sistemas de envasado, transporte y envío. Registro, codificación e

identificación de muestras para transporte y envío. Normativa aplicable.

3. Muestras biológicas humanas

Muestras sanguíneas. Anatomía y fisiología del aparato cardio-vascular. Tipos de muestras sanguíneas:

venosa, arterial y capilar. Recomendaciones preanalíticas. Técnicas de extracción sanguínea.

Anticoagulantes. Prevención de errores y manejo de las complicaciones más comunes en la extracción de

una muestra de sangre. Sustancias o elementos analizables a partir de una muestra sanguínea. Muestras

del aparato cardio-vascular: líquido pericárdico y su estudio.

Muestras de orina. Anatomía y fisiología del aparato urinario. Características de la orina. Obtención de una

muestra de orina para estudios rutinarios, cuantificación de sustancias o elementos formes y estudios

microbiológicos. Prevención de errores más comunes en la manipulación de una muestra de orina.

Sustancias o elementos formes analizables en una muestra de orina.

Muestras de origen digestivo. Anatomía y fisiología del aparato digestivo. Características generales de las

heces. Obtención de una muestra de heces para estudios rutinarios, cuantificación de sustancias o

elementos formes y estudios microbiológicos. Prevención de errores más comunes en la manipulación de

una muestra de heces. Sustancias o elementos formes analizables en una muestra de heces. Obtención de

otras muestras de origen digestivo: jugo gástrico, líquido ascítico, contenido duodenal, jugo pancreático,

entre otras. Estudios analíticos en otras muestras de origen digestivo.

Muestras procedentes del aparato reproductor masculino y femenino. Anatomía y fisiología del aparato

reproductor. Anatomía y fisiología de la mama. Características generales del semen. Obtención de una

muestra de semen para estudios rutinarios, cuantificación de sustancias o elementos formes y estudios

microbiológicos. Prevención de errores más comunes en la manipulación de una muestra de semen.

Sustancias o elementos formes analizables en una muestra de semen. Obtención de otras muestras

procedentes del aparato reproductor masculino y femenino: exudados uretrales, vaginales, endocervicales

y balanoprepuciales, líquido amniótico, entre otras. Estudios analíticos de otras muestras procedentes del

aparato reproductor masculino y femenino.

Muestras de origen respiratorio. Anatomía y fisiología del aparato respiratorio. Muestras de tracto

respiratorio inferior. Características generales de las muestras del tracto respiratorio inferior. Obtención de

una muestra del tracto respiratorio inferior para estudio microbiológico. Prevención de errores más

comunes en la manipulación de una muestra del tracto respiratorio inferior. Sustancias o elementos

formes analizables en una muestra del tracto respiratorio inferior. Muestras del tracto respiratorio

superior, para análisis microbiológico-parasitológico: exudados faríngeos, nasofaríngeos y nasales. Otras

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muestras procedentes del aparato respiratorio.

Otras muestras para análisis. Anatomía y fisiología del sistema nervioso. Líquido cefalorraquídeo (LCR).

Anatomía y fisiología del aparato locomotor. Líquido articular. Anatomía y fisiología de la piel y de los

órganos de los sentidos. Exudados conjuntivales. Exudados óticos: oído externo y oído medio. Muestras

cutáneas para el estudio de micosis: piel, pelo y uñas. Abscesos.



Perfil profesional del formador o formadora:1. Dominio de los conocimientos y las técnicas de realización de procedimientos de las fases preanalítica ypostanalítica en el laboratorio clínico, que se acreditará mediante una de las dos formas siguientes:- Formación académica de nivel 2 (Marco Español de Cualificaciones para la Educación Superior) o de otrasde superior nivel relacionadas con el campo profesional.- Experiencia profesional de un mínimo de 3 años en el campo de las competencias relacionadas con estemódulo formativo.2. Competencia pedagógica acreditada de acuerdo con lo que establezcan las Administraciones competente

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MÓDULO FORMATIVO 3 Análisis bioquímicos en muestras biológicas humanasNivel 3Código MF0371_3Asociado a la UC Realizar análisis de bioquímica clínica en muestras biológicas humanasDuración horas 240


C1: Analizar las técnicas empleadas en el laboratorio de bioquímica para separar, detectar y cuantificarconstituyentes de muestras biológicas humanas, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE1.1 Clasificar las técnicas empleadas en el laboratorio de bioquímica clínica.CE1.2 Describir las técnicas bioquímicas de separación de moléculas: centrifugación, electroforesis y cromatografía.CE1.3 Identificar las técnicas basadas en los métodos de detección de la radiación electromagnética para análisis molecular:espectrofotometría de absorción molecular, espectrofluorometría, turbidimetría, nefelometría, fotometría de reflectancia, entreotras.CE1.4 Identificar técnicas basadas en los métodos de detección de la radiación electromagnética para análisis atómico:fotometría de llama, espectroscopia de absorción atómica, entre otras.CE1.5 Identificar técnicas electroquímicas, potenciométricas y amperométricas, indicando sus aplicaciones en el laboratorio debioquímica clínica.CE1.6 Reconocer otras técnicas de análisis: inmunoanálisis, osmometría, técnicas de biología molecular, técnicas deamplificación de ácidos nucleicos mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR), entre otras.CE1.7 En un supuesto práctico de espectrofotometría, en el laboratorio de bioquímica, según protocolos establecidos ynormativa aplicable:- Realizar un espectro de absorción.- Realizar una gráfica de calibración.- Interpolar resultados obtenidos en una gráfica de calibración.

C2: Aplicar procedimientos para preparar muestras, materiales, instrumentos y equipos, del laboratorio debioquímica, en función de las técnicas a realizar, según protocolos establecidos y normativa.CE2.1 Describir el material auxiliar del laboratorio de bioquímica, en función de los equipos.CE2.2 Definir los conceptos de calibrador y control, sus funciones y condiciones de uso en el laboratorio de bioquímica.CE2.3 Describir tipos de reactivos, explicando procedimientos de preparación.CE2.4 Describir los equipos e instrumentos del laboratorio de bioquímica.CE2.5 En un supuesto práctico de preparación de materiales, instrumentos y equipos habituales del laboratorio de bioquímica,según protocolos establecidos y normativa aplicable.- Seleccionar el material e instrumental para efectuar una medida de pH.- Preparar la substancia de pH a determinar.- Ajustar el pH metro, utilizando los controles de pH correspondientes.

C3: Aplicar procedimientos para determinar los parámetros bioquímicos más frecuentemente solicitados, asícomo parámetros bioquímicos del laboratorio de urgencias y de unidades de cuidados intensivos,considerando equipos y técnicas disponibles en el servicio, según protocolos establecidos y normativaaplicable.CE3.1 Explicar conceptos como: perfil o batería de pruebas, linealidad entre dos parámetros, prueba basal, prueba funcional,entre otros.CE3.2 Describir métodos empleados para determinaciones bioquímicas relacionadas con el metabolismo de los hidratos decarbono, lípidos, lipoproteínas, proteínas y productos finales del metabolismo.CE3.3 Analizar los métodos de estudio enzimático.CE3.4 Explicar métodos empleados para determinaciones bioquímicas de iones.CE3.5 Describir procedimientos para determinación del pH y gases en sangre.CE3.6 Explicar técnicas para la determinación de osmolaridad plasmática o urinaria.CE3.7 Explicar fundamento, materiales y métodos para efectuar pruebas de embarazo.CE3.8 Identificar valores de referencia de los parámetros a determinar, en función de técnicas y equipos utilizados, relacionandolos resultados con la posible patología asociada.

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CE3.9 En un supuesto práctico de determinación de una glucemia basal, según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Seleccionar material y equipo instrumental, según tipo de muestra y determinación a realizar.- Procesar la muestra de sangre venosa.- Preparar los reactivos correspondientes.- Interpretar los protocolos de manejo de aparatos.- Efectuar las calibraciones y los controles de los equipos, según protocolos establecidos.- Valorar el resultado obtenido de la glucemia basal.

C4: Aplicar procedimientos para la detección de drogas de abuso y monitorización de fármacos, enprocedimientos de urgencia y en unidades de ensayos clínicos, según protocolos establecidos ynormativa aplicable.CE4.1 Describir equipos automáticos para la detección de drogas de abuso y monitorización de fármacos.CE4.2 Explicar técnicas para determinación de: fármacos, drogas de abuso y otros en el laboratorio.CE4.3 Detallar métodos de almacenamiento de muestras analizadas para determinación de fármacos y drogas de abuso.CE4.4 En un supuesto práctico de aplicación de técnicas para determinar drogas de abuso, en el laboratorio de bioquímica,según protocolos establecidos y normativa aplicable.- Verificar la calibración de los equipos automáticos.- Comprobar que los resultados de los controles están dentro del rango de los valores establecidos.- Almacenar las muestras analizadas para su uso en investigación o comprobación posterior.

C5: Aplicar técnicas electroforéticas y cromatográficas para separación de moléculas y su cuantificación,empleando equipos y reactivos en función del parámetro a determinar, según protocolos establecidos ynormativa aplicable.CE5.1 Explicar las técnicas de separación de moléculas en función de carga eléctrica, punto isoeléctrico, tamaño, pesomolécular, entre otros factores, enumerando sus aplicaciones analíticas.CE5.2 Explicar fundamento, utilización y mantenimiento de aparatos y equipos para electroforesis y cromatografía.CE5.3 Seleccionar los equipos y los reactivos para la realización de electroforesis, en función de la técnica y el parámetro adeterminar.CE5.4 Distinguir diferentes técnicas de cromatografía.CE5.5 Describir equipos y reactivos para la realización de cromatografía, en función de la técnica y el parámetro a determinar.CE5.6 Identificar valores de referencia de los parámetros a determinar, en función de técnicas y equipos utilizados.CE5.7 Relacionar resultados obtenidos con la posible patología asociada.CE5.8 En un supuesto práctico de aplicación de técnicas para separación de moléculas, según protocolos establecidos ynormativa aplicable:- Realizar una electroforesis de proteínas.- Efectuar la cuantificación de las fracciones resultantes de la electroforesis, según técnica disponible en el laboratorio.- Realizar un cromatograma, según protocolos establecidos.

C6: Aplicar procedimientos para la detección de hormonas y marcadores tumorales, entre otros, mediantetécnicas inmunológicas, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE6.1 Describir equipos para la detección de hormonas y marcadores tumorales, entre otros, mediante técnicas inmunológicas,detallando su fundamento, utilización y mantenimiento.CE6.2 Seleccionar equipos y reactivos en función de las técnicas inmunológicas a aplicar para la detección de hormonas ymarcadores tumorales, entre otros.CE6.3 Explicar técnicas de aglutinación, inhibición de la hemoaglutinación, de búsqueda de antígenos o de anticuerpos, entreotras.CE6.4 Identificar los requisitos del operador de radioinmunoanálisis (RIA).CE6.5 Describir los riesgos y medidas preventivas del operador de radioinmunoanálisis (RIA).CE6.6 Relacionar los resultados obtenidos de las determinaciones con la posible patología asociada.CE6.7 Identificar valores de referencia de los parámetros a determinar, en función de técnicas y equipos utilizados.CE6.8 En un supuesto práctico de aplicación de técnicas inmunológicas, en el laboratorio de bioquímica, utilizando microscopiode fluorescencia, según protocolos establecidos y normativa aplicable.- Preparar los portaobjetos con los cortes de tejidos o tipos celulares, los anticuerpos marcados y los reactivos a utilizar.- Observar las preparaciones al microscopio de fluorescencia.- Efectuar los ajustes de intensidad de luz y utilizando filtros, en función de la técnica a realizar.

C7: Aplicar técnicas en el laboratorio de bioquímica, para análisis (cualitativo y cuantitativo) de orina, ycálculos urinarios, dependiendo de las técnicas y equipos disponibles en el servicio, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CE7.1 Describir las características normales y patológicas de una muestra de orina, enumerando las determinaciones analíticasa realizar.CE7.2 Describir las características de cálculos urinarios, enumerando las pruebas para su estudio.

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CE7.3 Explicar las características microscópicas del sedimento urinario, distinguiendo la normalidad de la patología.CE7.4 Explicar el concepto de aclaramiento renal.CE7.5 Seleccionar equipos y reactivos en función de la técnica y parámetro a determinar en orina o cálculos urinarios.CE7.6 Identificar valores de referencia de los parámetros a determinar, en función de técnicas y equipos utilizados.CE7.7 Relacionar los resultados obtenidos con la posible patología asociada.CE7.8 En un supuesto práctico de análisis de orina y cálculos urinarios, según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Realizar análisis físico-químicos, microscópicos y bioquímicos de muestras de orina.- Realizar la determinación de sustancias excretadas en orina de: 8, 12 y 24 horas.- Realizar análisis de cálculos urinarios, siguiendo los protocolos establecidos.

C8: Aplicar procedimientos para análisis bioquímico (cualitativo y cuantitativo) de otras muestras biológicashumanas, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE8.1 Describir las características de: heces, semen, liquido cefalorraquídeo (LCR), jugo gástrico, líquidos serosos, amniótico,sinovial, entre otras muestras.CE8.2 Enumerar las posibles determinaciones analíticas a realizar en: heces, semen, liquido cefalorraquídeo (LCR), jugogástrico, líquidos serosos, amniótico, sinovial, entre otras muestras.CE8.3 Explicar las técnicas de análisis cualitativo y cuantitativo de: heces, semen, liquido cefalorraquídeo (LCR), jugo gástrico,líquidos serosos, amniótico, sinovial y otras muestras biológicas.CE8.4 Seleccionar los equipos y reactivos, en función de la técnica y parámetro a determinar.CE8.5 Relacionar los resultados obtenidos con la posible patología asociada.CE8.6 Identificar valores de referencia de los parámetros a determinar, en función de técnicas y equipos utilizados.CE8.7 En un supuesto práctico de análisis bioquímico de heces, según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Procesar la muestra, según protocolos establecidos.- Preparar los reactivos requeridos, según parámetros a determinar y técnica a seguir.- Efectuar el análisis bioquímico de la muestra heces, atendiendo a protocolos.- Valorar los resultados obtenidos.

C9: Aplicar procedimientos de análisis de muestras obtenidas de pacientes con tumores sólidos, paraestudios de biología molecular, utilizando técnicas de amplificación de ácidos nucleicos aplicadas allaboratorio de bioquímica, mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR), según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CE9.1 Describir distintas técnicas de extracción de ADN y ARN.CE9.2 Seleccionar los equipos y reactivos, en función del tipo de muestra y tipo de técnica a realizar.CE9.3 Determinar medidas preventivas de la contaminación de muestras y reactivos, según protocolos.CE9.4 Diferenciar técnicas de reacción en cadena de la polimerasa (PCR).CE9.5 Describir el análisis de material genético obtenido.CE9.6 Relacionar los resultados obtenidos con la patología asociada.CE9.7 En un supuesto práctico de análisis de muestras obtenidas de pacientes con tumores sólidos, para estudios de biologíamolecular, según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Seleccionar técnica de extracción de ADN y ARN, en función del tipo de muestra.- Aplicar medidas para la prevención de la contaminación de muestras y reactivos.- Seleccionar la técnica de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) a aplicar, según criterios establecidos y equiposdisponibles.

C10: Aplicar procedimientos para el manejo de equipos modulares o analizadores en serie (IPM), del área debioquímica, verificando su funcionamiento, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE10.1 Describir la automatización en las fases preanalítica, analítica y postanalítica.CE10.2 Describir equipos modulares o analizadores en serie (IPM), del área de bioquímica, indicando fundamento, manejo ymantenimiento.CE10.3 Indicar las ventajas y los inconvenientes de la automatización.CE10.4 Explicar la labor del técnico en el control, manejo y mantenimiento de los equipos modulares.CE10.5 Identificar la secuencia de operaciones para la utilización de estos sistemas.CE10.6 Describir los métodos de transmisión de resultados.CE10.7 Establecer las bases para solución de incidencias y su registro.

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CE10.8 En un supuesto práctico de manejo de equipos modulares o analizadores en serie (IPM), del área de bioquímica, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable:- Preparar los controles y sueros.- Efectuar la calibración del equipo.- Comprobar los resultados de los controles, efectuando repeticiones en casos establecidos.- Verificar el funcionamiento del equipo, detectando incidencias.- Registrar incidencias surgidas a lo largo del proceso.- Verificar los resultados obtenidos.- Trasmitir los resultados a través del sistema informático, para su validación por el facultativo.

C11: Aplicar procedimientos para la realización de control de calidad, interno y externo, de los parámetrosanalizados en el área de bioquímica, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE11.1 Diferenciar control de calidad interno y externo.CE11.2 Explicar sistemas de control de calidad de los resultados obtenidos en el laboratorio.CE11.3 Describir métodos de análisis de los resultados de los controles de cada serie analítica.CE11.4 En un supuesto práctico de aplicación de procedimientos para la realización de control de calidad, según protocolosestablecidos y normativa aplicable:- Introducir datos de rangos de control en el sistema informático del laboratorio (SIL) y en el equipo de medida correspondiente.- Registrar los resultados de los controles de cada serie analítica.- Analizar los resultados de los controles, según criterios establecidos.

Capacidades cuya adquisición debe ser completada en un entorno real de trabajoC1 respecto a CE1.7; C2 respecto a CE2.5; C3 respecto a CE3.9; C4 respecto a CE4.4; C5 respecto a CE5.8;C6 respecto a CE6.8; C7 respecto a CE7.8; C8 respecto a CE8.7; C9 respecto a CE9.7; C10 respecto aCE10.8 y C11 respecto a CE11.4.Otras capacidades:Proponerse objetivos retadores que supongan un nivel de rendimiento y eficacia superior al alcanzadopreviamente.Demostrar cierto grado de autonomía en la resolución de contingencias relacionadas con su actividad.Aprender nuevos conceptos o procedimientos y aprovechar eficazmente la formación utilizando losconocimientos adquiridos.Favorecer el desarrollo profesional y personal en el equipo de trabajo.Adaptarse a la organización, a sus cambios organizativos y tecnológicos; así como a situaciones o contextosnuevos.Demostrar resistencia al estrés, estabilidad de ánimo y control de impulsos.

Contenidos

1. Bioquímica clínica y control de calidad en el laboratorio de bioquímica

Bioquímica clínica. Semiología y valor semiológico de las determinaciones bioquímicas. Sensibilidad

diagnóstica, especificidad diagnóstica y prevalencia. Curvas de rendimiento diagnóstico. Teoría de los

valores de referencia.

Control de calidad en el laboratorio de bioquímica. Control de calidad interno y externo en la fase analítica.

Valores de referencia. Estadística de laboratorio.

2. Técnicas de análisis bioquímico de muestras biológicas

Técnicas de separación de moléculas. Centrifugación. Electroforesis y técnicas relacionadas.

Cromatografía.

Medida de analitos por métodos de detección de la radiación electromagnética. Interacción de la radiación

con la materia. Ley de Lambert-Beer. Concepto de linealidad. Tipos de medida: punto final, dos puntos y

cinética. Fotometría y espectrofotometría: tipos y utilidades. Espectrofluorometría. Fotometría de llama.

Absorción atómica. Turbidimetría y nefelometría. Refractometría de líquidos. Fotometría de reflectancia:

química seca.

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Electroquímica y medición del pH. Valoraciones ácido-base. Soluciones tampón. Ecuación de Nernst.

Métodos potenciometricos y amperometricos. Tipos de electrodos. El electrodo de vidrio para

determinación del pH. Electrodos selectivos.

Otras técnicas de análisis. Osmometría. Inmunoanálisis. Técnicas de biología molecular. Reacción en

cadena de la polimerasa (PCR). Hibridación de ácidos nucleicos.

Automatización y novedades tecnológicas y metodológicas en el laboratorio de bioquímica clínica.

Descripción de grandes sistemas automáticos y su manejo. Tipos y fundamentos de medida. Utilidad y

aplicaciones.

3. Determinaciones para analizar el metabolismo básico de principios inmediatos: hidratos de carbono,

lípidos, proteínas y otros componentes metabólicos

Metabolismo hidrocarbonado. Determinaciones. Patrones de alteración.

Metabolismo lipídico y de lipoproteínas. Determinaciones. Patrones de alteración.

Metabolismo proteico. Determinaciones. Patrones de alteración proteica.

Metabolismo intermediario. Determinaciones. Patrones de alteración de estos metabolitos. Vitaminas.

Tipos y aplicaciones.

4. Enzimología diagnóstica

Estudio enzimático: características, fisiología y cinética enzimática. Descripción de enzimas analizados en

diagnóstico clínico. Metodología del análisis de enzimas en fluidos biológicos. Patrones de alteración

enzimática.

5. Estudio del equilibrio hidroelectrolítico y ácido-base

Fisiopatología del equilibrio hidroelectrolítico (EHE) y del equilibrio ácido-base (EAB). Determinación de

iones tales como: Na, K, Cl, Ca, P. Patrones de alteración del EHE. Determinación de pH y gases en sangre

arterial. Patrones de alteración de gases en sangre. Evaluación de la función respiratoria.

6. Estudio de la orina, otros líquidos corporales y heces

Estudio de la orina. Fisiopatología de la orina. Determinación de sustancias eliminadas por orina. Pruebas

cualitativas y cuantitativas (orina de 8, 12 y 24 horas). Análisis del sedimento urinario. Evaluación de la

función renal: urea, creatinina y aclaramientos. Osmolalidad y pruebas funcionales.

Estudio bioquímico de otros líquidos corporales. Líquido cefalorraquídeo. Líquido seminal. Líquido sinovial.

Líquidos serosos: pleurales, pericárdicos y peritoneales. Otros líquidos corporales.

Estudio de las heces. Características organolépticas de las heces. Determinación de sustancias eliminadas

por heces: digestión de principios inmediatos. Síndromes de malabsorción. Técnicas analíticas relacionadas

con el estudio de las heces.

7. Estudio de la función hepática, endocrina y estudios especiales

Estudio de la función hepática. Fisiopatología hepática. Determinaciones analíticas asociadas a la función

hepática. Patrones de alteración hepática.

Estudio de la función endocrina. Fisiopatología hormonal. Estudio de hormonas. Determinaciones analíticas

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para el estudio de la función endocrina. Patrones de alteraciones hormonales.

Estudios especiales. Monitorización de fármacos terapéuticos. Detección de drogas de abuso. Diagnóstico y

seguimiento de neoplasias: marcadores tumorales.

Análisis de cálculos urinarios, biliares, salivares y otros.

Embarazo y neonatología. Estudio del semen y pruebas de fecundación.



Perfil profesional del formador o formadora:1. Dominio de los conocimientos y las técnicas de realización de análisis de bioquímica clínica en muestrasbiológicas humanas, que se acreditará mediante una de las dos formas siguientes:- Formación académica de nivel 2 (Marco Español de Cualificaciones para la Educación Superior) o de otrasde superior nivel relacionadas con el campo profesional.- Experiencia profesional de un mínimo de 3 años en el campo de las competencias relacionadas con estemódulo formativo.2. Competencia pedagógica acreditada de acuerdo con lo que establezcan las Administraciones competentes.

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MÓDULO FORMATIVO 4 Análisis microbiológicos e identificaciones parasitológicas en muestasbiológicas humanas

Nivel 3Código MF0372_3Asociado a la UC Realizar análisis microbiológicos e identificar parásitos en muestras

biológicas humanasDuración horas 240


C1: Aplicar técnicas para preparación de materiales, instrumentos y equipos de análisis microbiológico, enfunción de las técnicas, las determinaciones a realizar y tipo de muestra, según protocolos establecidos ynormativa aplicable.CE1.1 Explicar las diferentes técnicas de desinfección y esterilización.CE1.2 Describir medidas de prevención de riesgos que deben aplicarse durante la manipulación de muestras biológicas.CE1.3 Clasificar diferentes tipos de residuos generados en el laboratorio de análisis.CE1.4 Diferenciar procedimientos de eliminación de residuos generados en los laboratorios de análisis.CE1.5 En un supuesto práctico de preparación de materiales, instrumentos y equipos para análisis microbiológico, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable:- Aplicar técnicas de esterilización del material, manejando el autoclave.- Efectuar el control del proceso.- Aplicar medidas para trabajar en un ambiente estéril, según normativa aplicable.

C2: Aplicar procedimientos para análisis bacteriológico de muestras biológicas humanas, seleccionandomedios de cultivo, pruebas de identificación y de sensibilidad de las bacterias a los agentesantimicrobianos, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE2.1 Diferenciar las bacterias del resto de microorganismos susceptibles de estudio en el laboratorio de microbiología.CE2.2 Determinar las características de las bacterias, en cuanto a morfología, crecimiento en medios de cultivo, tinciones,pruebas bioquímicas y sensibilidad a agentes antibacterianos.CE2.3 Describir los medios de cultivo o técnicas de recuperación, según tipo de muestra y microorganismo objeto de estudio,teniendo en cuenta las condiciones de incubación.CE2.4 Reconocer técnicas de inoculación, siembra y aislamiento de bacterias, relacionándolas con el tipo de muestra ymicroorganismo a aislar.CE2.5 Especificar las técnicas de observación microscópica utilizadas habitualmente en un laboratorio de microbiología:examen en fresco, tinción de Gram, tinción de Ziehl e inmunofluorescencia directa.CE2.6 Explicar los procedimientos de identificación y recuento de microorganismos, en función del tipo de microorganismoaislado, describiendo las características morfológicas típicas de las unidades formadoras de colonias (UFC).CE2.7 Identificar las diferentes pruebas de sensibilidad a antimicrobianos indicando las baterías de antimicrobianos de cadagrupo de microorganismos.CE2.8 En un supuesto práctico sobre procedimientos para análisis bacteriológico de una muestra, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.- Procesar una muestra para su análisis bacteriológico.- Aplicar técnicas de siembra en el medio de cultivo específico.- Incubar el medio de cultivo en las condiciones establecidas.- Observar las tinciones realizadas, al microscopio óptico.- Realizar antibiograma.

C3: Aplicar procedimientos para aislamiento e identificación de micobacterias, según tecnología disponible,protocolos establecidos y normativa aplicable.CE3.1 Diferenciar las micobacterias del resto de microorganismos susceptibles de estudio en el laboratorio de microbiología.CE3.2 Describir las características de las micobacterias.CE3.3 Describir el procesamiento de muestras biológicas humanas para aislamiento e identificación de micobacterias.CE3.4 Describir la técnica de tinción bacilo ácido alcohol resistente (BAAR), para estudio microscópico de la muestra.CE3.5 Explicar métodos de identificación de micobacterias: pruebas bioquímicas o sondas de hibridación específicas.CE3.6 Describir el fundamento, utilización y mantenimiento de campanas de bioseguridad.

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CE3.7 En un supuesto práctico sobre aislamiento e identificación de micobacterias, según protocolos establecidos y normativaaplicable.- Procesar una muestra para aislamiento e identificación de micobacterias.- Realizar una tinción bacilo ácido alcohol resistente (BAAR), para estudio microscópico de la muestra.- Efectuar pruebas bioquímicas para identificación de micobacterias.

C4: Aplicar procedimientos para identificación micológica, según tecnología disponible, protocolosestablecidos y normativa aplicable.CE4.1 Describir las características de los hongos, diferenciándolos de otros microorganismos susceptibles de estudio en ellaboratorio de microbiología.CE4.2 Describir el examen microscópico en fresco para identificación micológica, indicando condiciones de seguridad.CE4.3 Describir técnicas de siembra e incubación en medios de cultivo específicos, según tipo de hongo a estudiar, evitandocontaminaciones.CE4.4 Seleccionar pruebas micológicas para identificación de hongos.CE4.5 Explicar fundamento y técnicas para efectuar pruebas de sensibilidad antifúngica.CE4.6 En un supuesto práctico de identificación micológica, según protocolos establecidos y normativa aplicable.- Efectuar un examen microscópico en fresco, cumpliendo condiciones de seguridad.- Realizar una siembra en el medio de cultivo específico, según tipo de hongo a estudiar.- Incubar el medio de cultivo, evitando contaminaciones.

C5: Aplicar procedimientos para análisis parasitológico, en función de la muestra a analizar y técnica aaplicar, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE5.1 Describir las características de los principales parásitos humanos.CE5.2 Distinguir métodos de obtención de muestras para estudio de parásitos.CE5.3 Describir la macroscopía de muestras susceptibles de análisis parasitológico.CE5.4 Explicar técnicas de concentración de muestras de heces para observación de huevos y quistes.CE5.5 Describir técnicas para realizar extensiones y tinciones de muestras de sangre y heces para estudio de parásitos.CE5.6 Describir la microscopía de extensiones para identificación de parásitos hemáticos y parásitos en heces.CE5.7 En un supuesto práctico de análisis parasitológico, en función de la muestra a analizar y técnica a aplicar, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable:- Efectuar un análisis macroscópico de una muestra de heces.- Realizar la concentración de muestras de heces para observación de huevos y quistes.- Efectuar una extensión de muestra de heces para estudio parasitológico.- Realizar la tinción correspondiente para estudio parasitológico de una muestra de heces.- Enfocar la preparación para observación microscópica.

C6: Aplicar procedimientos para la realización de técnicas de cultivos celulares utilizadas en el diagnósticode las enfermedades víricas, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE6.1 Describir los materiales y reactivos utilizados para la realización de técnicas de cultivos celulares.CE6.2 Detallar los tipos de líneas celulares utilizadas más frecuentemente.CE6.3 Diferenciar las distintas fases del proceso.CE6.4 Explicar el efecto citopático y describir sus tipos.CE6.5 Indicar la forma de identificar el crecimiento viral en ausencia de efecto citopático: hemadsorción, neutralización u otras.CE6.6 En un supuesto práctico de realización de técnicas de cultivos celulares para diagnóstico de las enfermedades víricas,según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Procesar una muestra para el diagnóstico de una enfermedad vírica.- Determinar las condiciones del cultivo del agente vírico.- Inocular los agentes en el cultivo, según protocolos establecidos.- Examinar los cultivos, con la periodicidad establecida, verificando el crecimiento viral y posibles contaminaciones.

C7: Aplicar procedimientos para análisis serológicos, manuales o semiautomáticos, utilizados en eldiagnóstico y el seguimiento de las enfermedades infecciosas, según protocolos establecidos ynormativa aplicable.CE7.1 Distinguir los términos infección aguda, crónica o en evolución, relacionándolos con métodos serológicos deidentificación.CE7.2 Explicar el fundamento de las técnicas basadas en reacciones antígeno-anticuerpo para el estudio cuantitativo ocualitativo de anticuerpos específicos: técnicas de precipitación, aglutinación, inmunoensayos, Western Blot, entre otras.CE7.3 Describir los equipos y reactivos utilizados en serología, en función de la técnica y parámetro a determinar, considerandolos rangos de referencia.

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CE7.4 En un supuesto práctico de análisis serológico, utilizado para el diagnóstico de enfermedades infecciosas, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable:- Obtener el suero, procesándolo según técnica a aplicar.- Realizar una técnica de aglutinación.- Interpretar los resultados obtenidos, de forma visual y con ayuda del microscopio.

C8: Aplicar procedimientos para el manejo de equipos modulares y autoanalizadores en técnicasserológicas, verificando su funcionamiento, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE8.1 Describir la automatización en las fases preanalítica, analítica y postanalítica.CE8.2 Describir equipos modulares o analizadores en serie (IPM), del área de serología, indicando fundamento, manejo ymantenimiento.CE8.3 Indicar las ventajas y los inconvenientes de la automatización en la realización de pruebas serológicas.CE8.4 Identificar la secuencia de operaciones para la utilización de estos sistemas.CE8.5 Describir los métodos de transmisión de resultados.CE8.6 Establecer las bases para la solución de incidencias y su registro.CE8.7 Explicar las funciones del profesional del laboratorio de microbiología en el control, manejo y mantenimiento de losequipos modulares.CE8.8 En un supuesto práctico de manejo de equipos modulares o analizadores en serie, del área de serología, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable:- Preparar los controles y sueros.- Efectuar la calibración del equipo.- Verificar el funcionamiento del equipo, detectando incidencias.- Comprobar los resultados de los controles, efectuando repeticiones en casos establecidos.- Registrar incidencias surgidas a lo largo del proceso.- Verificar los resultados obtenidos.- Trasmitir los resultados a través del sistema informático, para su validación por el facultativo.

C9: Aplicar procedimientos de extracción y amplificación de ácidos nucleicos, (PCR) mediante la reacción encadena de la polimerasa (PCR), para la identificación y cuantificación de microorganismos, siguiendoprotocolos establecidos y normativa aplicable.CE9.1 Identificar la secuencia de realización de la técnica y los reactivos utilizados.CE9.2 Describir los procesos de obtención de ácidos nucleicos de diferentes muestras biológicas.CE9.3 Esquematizar el proceso de amplificación y los sistemas de detección.CE9.4 Valorar la extrema importancia de las medidas preventivas de contaminación en la consecución de la técnica.CE9.5 Estimar la utilidad de la técnica para detección de agentes infecciosos que se encuentran en pequeña concentración oque afectan a un número muy reducido de células.CE9.6 Valorar la utilidad de la técnica para detectar agentes patógenos no cultivables.CE9.7 En un supuesto práctico de extracción y amplificación de ácidos nucleicos, mediante la reacción en cadena de lapolimerasa (PCR), para la identificación y cuantificación de microorganismos, según protocolos establecidos y normativaaplicable:- Realizar la extracción de ADN de la muestra a estudiar, según el protocolo establecido.- Aplicar medidas para la prevención de la contaminación de muestras y reactivos.- Seleccionar técnica de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) a aplicar, según criterios establecidos y equipo disponible.

C10: Aplicar procesos que garanticen la calidad de los parámetros determinados en análisis microbiológico,según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE10.1 Explicar el concepto de cepa control, control de calidad interno y control de calidad externo.CE10.2 Explicar el proceso de control de calidad analítico en las determinaciones cualitativas.CE10.3 En un supuesto práctico de garantía de calidad de una determinación cuantitativa, en el laboratorio de microbiología,según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Realizar controles.- Registrar los resultados obtenidos.- Valorar los resultados, según protocolos establecidos.

Capacidades cuya adquisición debe ser completada en un entorno real de trabajoC1 respecto a CE1.5; C2 respecto a CE2.8; C3 respecto a CE3.7; C4 respecto a CE4.6; C5 respecto a CE5.7;C6 respecto a CE6.6; C7 respecto a CE7.4; C8 respecto a CE8.8; C9 respecto a CE9.7 y C10 respecto aCE10.3.Otras capacidades:Proponerse objetivos retadores que supongan un nivel de rendimiento y eficacia superior al alcanzadopreviamente.

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Demostrar cierto grado de autonomía en la resolución de contingencias relacionadas con su actividad.Aprender nuevos conceptos o procedimientos y aprovechar eficazmente la formación utilizando losconocimientos adquiridos.Favorecer el desarrollo profesional y personal en el equipo de trabajo.Adaptarse a la organización, a sus cambios organizativos y tecnológicos; así como a situaciones o contextosnuevos.Demostrar resistencia al estrés, estabilidad de ánimo y control de impulsos.

Contenidos

1. Laboratorio de microbiología

Características del laboratorio de microbiología. Secciones. Materiales y aparatos del laboratorio de

microbiología. Métodos de esterilización.

Prevención de riesgos en el laboratorio de microbiología. Tipos de residuos y su eliminación.

Fundamentos de microbiología clínica. Flora habitual de la especie humana. Principales microorganismos

implicados en procesos infecciosos humanos.

Procedimientos de trabajo en el laboratorio de microbiología. Muestras procedentes de tracto urinario,

tracto genital, tracto intestinal, tracto respiratorio, fluidos estériles y secreciones contaminadas. Toma,

transporte y procesamiento de muestras para análisis bacteriológico.

Control de calidad en el laboratorio de microbiología. Control de la fase analítica. Cepas control: controles

interno y externo.

Automatización en el laboratorio de microbiología. Descripción de grandes sistemas automáticos y su

manejo. Utilidad, y aplicaciones. Pautas de manejo y mantenimiento.

2. Diagnóstico de laboratorio de enfermedades provocadas por bacterias. Antibiograma

Cocos Gram positivos y Gram negativos. Bacilos Gram positivos y Gram negativos. Micobacterias.

Anaerobios. Otras bacterias.

Medios de cultivo y técnicas de siembra para análisis bacteriológico. Medios de cultivo para crecimiento y

aislamiento primario de bacterias. Características del crecimiento de microorganismos. Características y

clasificación de los medios de cultivo. Descripción de los medios de cultivo más habituales. Preparación de

medios de cultivo. Técnicas de siembra para análisis bacteriológico. Técnicas de inoculación. Técnicas de

aislamiento. Recuentos celulares bacterianos.

Observación de microorganismos. Técnicas de observación en fresco. Observación de preparaciones

teñidas. Tipos de tinciones: simples, diferenciales y estructurales. Descripción de las tinciones más

habituales.

Identificación de bacterias de interés clínico y pruebas de sensibilidad antimicrobiana.

Pruebas de identificación. Sistemas comerciales y automatizados. Técnicas de biología molecular. Pruebas

de susceptibilidad antimicrobiana. Clasificación de las sustancias antimicrobianas. Técnicas de realización

de las pruebas de susceptibilidad antimicrobiana. Conceptos relacionados: sensibilidad, resistencia,

concentración mínima inhibitoria (CMI), concentración mínima bactericida (CMB). Interpretación de los

antibiogramas.

3. Diagnóstico de laboratorio de enfermedades provocadas por hongos. Antifungigrama

Características generales. Clasificación. Obtención y transporte de muestras. Diagnóstico de laboratorio:

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examen directo, cultivo, identificación y antifungigrama.

4. Diagnóstico de laboratorio de enfermedades provocadas por parásitos

Características. Clasificación. Toma y transporte de muestras. Diagnóstico de laboratorio: observación,

concentración, tinciones, cultivo e identificación.

5. Diagnóstico de laboratorio de enfermedades provocadas por virus

Características. Clasificación. Toma y transporte de muestras. Técnicas de cultivo celular y aislamiento

viral. Medios de cultivo. Líneas celulares. Técnicas. Observación de cultivos. Detección de proliferación

viral. Diagnóstico de laboratorio: inmunológico, molecular, entre otros.

6. Diagnóstico serológico de enfermedades infecciosas

Técnicas de análisis basadas en las reacciones antígeno-anticuerpo. Aglutinación. Precipitación. Técnicas

de fijación de complemento. Inmunoanálisis: radioinmunoanálisis, enzimoinmunoanálisis, inmunoanálisis,

y fluoroinmunoanálisis. Inmunofluorescencia. Western Blott. Otras técnicas serológicas.

7. Diagnóstico de enfermedades infecciosas mediante técnicas de biología molecular

Técnicas de biología molecular en diagnóstico microbiológico. Técnicas de extracción y amplificación de

ácidos nucleicos: PCR, RT-PCR. Otras técnicas de biología molecular aplicadas al laboratorio de

microbiología.



Perfil profesional del formador o formadora:1. Dominio de los conocimientos y las técnicas para realización de análisis microbiológicos e identificación deparásitos en muestras biológicas humanas, que se acreditará mediante una de las dos formas siguientes:- Formación académica de nivel 2 (Marco Español de Cualificaciones para la Educación Superior) o de otrasde superior nivel relacionadas con el campo profesional.- Experiencia profesional de un mínimo de 3 años en el campo de las competencias relacionadas con estemódulo formativo.2. Competencia pedagógica acreditada de acuerdo con lo que establezcan las Administraciones competentes.

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MÓDULO FORMATIVO 5 Hematología, banco de sangre y genéticaNivel 3Código MF0373_3Asociado a la UC Realizar análisis hematológicos y genéticos en muestras biológicas humanas

y procedimientos para obtener hemoderivadosDuración horas 240


C1: Aplicar procedimientos para la preparación de materiales, instrumentos, equipos y muestras, utilizadosen análisis hematológico, en función de las técnicas a realizar, según protocolos establecidos ynormativa aplicable.CE1.1 Describir materiales, instrumentos, aparatos y equipos utilizados en el laboratorio de hematología, explicando sufundamento, utilización y mantenimiento.CE1.2 Distinguir las operaciones previas al análisis hematológico (centrifugación, homogeneización, entre otras), considerandotipo de muestra y determinación solicitada.CE1.3 Describir operaciones de desfibrinación, concentración de leucocitos, hemolizados, entre otras, según técnica a realizar ydeterminación solicitada.CE1.4 Definir controles y calibradores, indicando sus aplicaciones.CE1.5 Describir operaciones para preparación de reactivos, controles y calibradores.CE1.6 En un supuesto práctico de preparación de materiales, instrumentos, equipos y muestras, utilizados en análisishematológico, según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Seleccionar materiales instrumentos y equipos para realización de pruebas hematológicas.- Procesar una muestra de sangre, según determinación solicitada y técnica a realizar.- Preparar los reactivos correspondientes, según muestra a analizar, determinación solicitada y técnica a realizar.- Efectuar la calibración y los controles diarios de un equipo del laboratorio de hematología.

C2: Aplicar procedimientos para realización de tinciones sanguíneas y de médula ósea, e identificaciónmorfológica de elementos celulares, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE2.1 Explicar la hematopoyesis y el funcionalismo leucocitario, eritrocitario y plaquetario.CE2.2 Explicar las tinciones utilizadas para la identificación y estudio de los elementos formes de la sangre.CE2.3 Diferenciar los leucocitos según clasificaciones funcionales, morfológicas, tintoriales o inmunológicas.CE2.4 Describir marcadores de poblaciones linfocitarias.CE2.5 Analizar las técnicas utilizadas para preparación y tinción de médula ósea.CE2.6 En un supuesto práctico de realización de una tinción, según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Realizar frotis sanguíneos y de médula ósea.- Fijar los frotis, en su caso, según protocolos establecidos.- Efectuar las tinciones correspondientes, según determinación solicitada y técnica a realizar.

C3: Aplicar procedimientos para análisis cuantitativo de sangre periférica y médula ósea, utilizandoprocedimientos manuales o automáticos, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE3.1 Explicar parámetros de la serie roja tales como número de eritrocitos, hemoglobina, hematocrito, entre otros,describiendo los índices derivados de ellos.CE3.2 Determinar elementos formes susceptibles de cuantificación en sangre periférica y médula ósea, así como las técnicascorrespondientes, indicando los rangos de referencia.CE3.3 Describir los equipos y reactivos requeridos, en función del parámetro solicitado y técnica a realizar.CE3.4 En un supuesto práctico de realización de análisis cuantitativo de sangre periférica, según protocolos establecidos ynormativa aplicable:- Realizar recuentos de hematíes, según técnica disponible en el laboratorio.- Determinar hemoglobina, según protocolos establecidos.- Efectuar un hematocrito en una muestra de sangre venosa.

C4: Aplicar procedimientos para el manejo de equipos modulares y autoanalizadores en los laboratorios dehematología y genética, verificando su funcionamiento, según protocolos establecidos y normativaaplicable.CE4.1 Describir la automatización en las fases preanalítica, analítica y postanalítica.CE4.2 Describir equipos modulares o analizadores en serie (IPM), del área de hematología y genética, indicando fundamento,manejo y mantenimiento.CE4.3 Indicar las ventajas y los inconvenientes de la automatización.

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CE4.4 Identificar la secuencia de operaciones para la utilización de estos sistemas.CE4.5 Describir los métodos de transmisión de resultados de equipos modulares y autoanalizadores, en los laboratorios dehematología y genética.CE4.6 Establecer las bases para solución de incidencias y su registro.CE4.7 Explicar las funciones del profesional del laboratorio de hematología en el control, manejo y mantenimiento de losequipos modulares.CE4.8 En un supuesto práctico de manejo de equipos modulares o analizadores en serie, del área de hematología, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable:- Preparar los controles y muestras de sangre.- Efectuar la calibración del equipo.- Verificar el funcionamiento del equipo, detectando incidencias.- Comprobar los resultados de los controles, efectuando repeticiones en casos establecidos.- Registrar incidencias surgidas a lo largo del proceso.- Verificar los resultados obtenidos.- Trasmitir los resultados a través del sistema informático, para su validación por el facultativo.

C5: Aplicar procedimientos para estudios de hemostasia y coagulación según las determinacionessolicitadas, protocolos establecidos y normativa aplicable.CE5.1 Describir las distintas fases de la hemostasia y los métodos para evaluar su función.CE5.2 Explicar los mecanismos de la coagulación, en condiciones fisiológicas: vía intrínseca, vía extrínseca y los métodos parasu evaluación.CE5.3 Explicar el mecanismo de fibrinolisis y el control de la misma, así como los métodos para su evaluación.CE5.4 Describir los análisis que permiten el control de tratamientos con anticoagulantes, en función del tipo y dosis del mismo.CE5.5 Describir los procedimientos automatizados (coagulómetros) para estudio de la coagulación, según técnicas y parámetrosa determinar, identificando los rangos de referencia.CE5.6 En un supuesto práctico de realización de pruebas de coagulación, según protocolos establecidos y normativa aplicable.- Preparar muestras y reactivos para efectuar un estudio de coagulación.- Configurar el coagulómetro, según determinaciones a realizar.- Valorar los resultados obtenidos.

C6: Aplicar técnicas inmunohematológicas para banco de sangre, según las determinaciones solicitadas,protocolos establecidos y normativa aplicable.CE6.1 Explicar las técnicas de determinación del grupo sanguíneo sérico y eritrocitario del sistema AB0 y del factor Rh.CE6.2 Explicar las técnicas para la determinación de la compatibilidad entre sangre de donante y de receptor.CE6.3 Describir otros sistemas sanguíneos, que pueden interferir en reacciones transfusionales.CE6.4 En un supuesto práctico de determinación de grupos sanguíneos, según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Preparar muestras y reactivos, cumpliendo normas de prevención de riesgos.- Determinar sistema AB0, según protocolos establecidos.- Determinar el factor Rh, visualmente y utilizando microscopio.

C7: Aplicar procedimientos para preparación y distribución de hemoderivados en un banco de sangre, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable.CE7.1 Explicar los procedimientos de obtención de sangre de donantes con fines terapéuticos.CE7.2 Explicar los componentes sanguíneos que se pueden obtener de una unidad de sangre total, relacionándolos con susindicaciones.CE7.3 Diferenciar técnicas de fraccionamiento, manual o automático, de una unidad de sangre, en función de los componentesa obtener.CE7.4 Describir los procedimientos de leucoaféresis o plaquetoaféresis, indicando ventajas e inconvenientes respecto a otrossistemas de fraccionamiento.CE7.5 Explicar métodos de conservación, aditivos, y condiciones de estabilidad de componentes sanguíneos obtenidos porfraccionamiento de una unidad de sangre.CE7.6 Describir los procedimientos de identificación, control y reconocimiento de los hemoderivados conservados en un bancode sangre.CE7.7 En un supuesto práctico de preparación y distribución de hemoderivados en un banco de sangre, según protocolosestablecidos y normativa aplicable:- Recepcionar bolsas de sangre, verificando su identificación.- Efectuar controles analíticos en las muestras piloto de las bolsas de sangre, aplicando los criterios de aceptación o rechazoestablecidos.- Etiquetar las bolsas de sangre aceptadas, anotando datos inmunohematológicos.

C8: Aplicar procedimientos de obtención y amplificación de ácidos nucleicos, mediante la reacción en cadenade la polimerasa (PCR), para el diagnóstico y seguimiento de enfermedad mínima residual en pacientesoncohematológicos, según protocolos establecidos y normativa aplicable.

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CE8.1 Identificar la secuencia de realización de la técnica y los reactivos utilizados.CE8.2 Describir los procesos de obtención de ácidos nucleicos de diferentes muestras biológicas.CE8.3 Esquematizar el proceso de amplificación y los sistemas de detección.CE8.4 Valorar la extrema importancia de las medidas preventivas de contaminación de muestras y reactivos, en la consecuciónde la técnica.CE8.5 Enumerar las diversas aplicaciones de la PCR y sus variantes en estudios hematológicos.CE8.6 En un supuesto práctico de extracción y amplificación de ácidos nucleicos, mediante la reacción en cadena de lapolimerasa (PCR), para diagnóstico y seguimiento de enfermedad mínima residual en pacientes oncohematológicos, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable:- Realizar la extracción de ADN de la muestra a estudiar, según el protocolo establecido.- Aplicar medidas para la prevención de la contaminación de muestras y reactivos.- Seleccionar la técnica de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) a aplicar, según protocolos establecidos y equipodisponible.

C9: Aplicar procedimientos para efectuar cariotipos, según métodos convencionales, siguiendo protocolosestablecidos y normativa aplicable.CE9.1 Describir los puntos clave para el desarrollo de la técnica.CE9.2 Distinguir tipos de tinciones cromosómicas.CE9.3 Diferenciar el cariotipo convencional de otros cariotipos.CE9.4 En un supuesto práctico de realización de un cariotipo, según método convencional, siguiendo protocolos establecidos ynormativa aplicable:- Ampliar una microfotografía de cromosomas.- Recortar los cromosomas.- Emparejar y ordenar los cromosomas, utilizando una plantilla.

C10: Aplicar técnicas citogenéticas para estudio y análisis de genes en pacientes oncohematológicos,siguiendo protocolos establecidos y normativa aplicable.CE10.1 Enumerar los tipos de técnicas de hibridación "in situ" con fluorescencia (FISH) utilizadas en estudios de citogenéticamolecular.CE10.2 Distinguir métodos de análisis citogenético directo e indirecto.CE10.3 Describir técnicas utilizadas para la detección de mutaciones y polimorfismos, indicando las limitaciones de las mismasy las fases clave para su realización.CE10.4 En un supuesto práctico de análisis de genes, siguiendo protocolos establecidos y normativa aplicable:- Preparar una muestra para estudio citogenético.- Seleccionar la técnica a aplicar para detectar mutaciones.- Seleccionar técnica a aplicar para detectar polimorfismos.- Relacionar los cambios en una secuencia de ADN con cambios fenotípicos.

C11: Describir el proceso que garantice la calidad de los parámetros analizados en los laboratorios dehematología, genética y banco de sangre, siguiendo protocolos establecidos y normativa aplicable.CE11.1 Explicar el concepto de muestra control, control de calidad interno y control de calidad externo.CE11.2 Explicar el proceso de control de calidad analítico en las determinaciones cualitativas.CE11.3 En un supuesto práctico de garantía de calidad de determinaciones cuantitativas en los laboratorios de hematología,genética y banco de sangre:- Realizar controles de una serie analítica.- Registrar los resultados obtenidos.- Efectuar un análisis de los resultados.

Capacidades cuya adquisición debe ser completada en un entorno real de trabajoC1 respecto a CE1.6; C2 respecto a CE2.6; C3 respecto a CE3.4; C4 respecto a CE4.8; C5 respecto a C5.6;C6 respecto a CE6.4; C7 respecto a CE7.7; C8 respecto a CE8.6; C9 respecto a CE9.4; C10 respecto aCE10.4 y C11 respecto a CE11.3.Otras capacidades:Proponerse objetivos retadores que supongan un nivel de rendimiento y eficacia superior al alcanzadopreviamente.Demostrar cierto grado de autonomía en la resolución de contingencias relacionadas con su actividad.Aprender nuevos conceptos o procedimientos y aprovechar eficazmente la formación utilizando losconocimientos adquiridos.Favorecer el desarrollo profesional y personal en el equipo de trabajo.Adaptarse a la organización, a sus cambios organizativos y tecnológicos; así como a situaciones o contextosnuevos.

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Demostrar resistencia al estrés, estabilidad de ánimo y control de impulsos.

Contenidos

1. Laboratorio de hematología, genética y banco de sangre. Instrumentación básica

Laboratorio de hematología, genética y banco de sangre. Características generales. Secciones.

Instrumentación básica. Microscopios: fundamentos, propiedades ópticas y elementos. Tipos de

microscopía: campo luminoso, campo oscuro, luz ultravioleta, fluorescencia, contraste de fases y de

transmisión electrónica.

Automatización del laboratorio de hematología, genética y banco de sangre. Equipos automáticos en el

laboratorio de hematología: contadores hematológicos, citómetro flujo, coagulómetro y otros. Descripción

de grandes sistemas automáticos. Utilidad y aplicaciones. Pautas de manejo y mantenimiento.

Control de calidad en el laboratorio de hematología, genética y banco de sangre. Control de calidad de la

fase analítica. Control interno y control externo.

2. Composición y funciones de la sangre

Origen y formación de las células sanguíneas: hematopoyesis. Características morfológicas de las células

sanguíneas.

3. Fisiopatología de la serie eritrocitaria y pruebas analíticas para el diagnóstico y seguimiento de los

trastornos eritrocitarios

Recuento de hematíes. Metabolismo del hierro y de la hemoglobina. Valor hematocrito e índices

eritrocitarios. Trastornos cuantitativos y cualitativos del sistema eritrocitario: anemias, alteraciones

morfológicas, trastornos de membrana. Alteraciones inmunológicas del sistema eritrocitario: anemias

hemolíticas. Pruebas analíticas para el diagnóstico y seguimiento de los trastornos eritrocitarios.

4. Fisiopatología de la serie leucocitaria y pruebas analíticas para el diagnóstico y seguimiento de los

trastornos leucocitarios

Recuento de leucocitos. Diferenciación de las distintas líneas de la serie leucocitaria. Técnicas

histoquímicas e inmunológicas para identificación leucocitaria. Trastornos de la serie leucocitaria.

Leucemias. Pruebas para el diagnóstico y seguimiento de trastornos leucocitarios.

5. Fisiopatología de las plaquetas y pruebas analíticas para el diagnóstico y seguimiento de los trastornos

del sistema plaquetario

Recuento de plaquetas. Alteraciones morfológicas. Alteraciones funcionales de las plaquetas. Pruebas

analíticas para el diagnóstico y seguimiento de los trastornos del sistema plaquetario.

6. Fisiopatología de la hemostasia y pruebas analíticas para el diagnóstico y seguimiento de los trastornos

de la hemostasia

Estudio de hemostasia primaria, proceso de la coagulación y fibrinolisis. Alteraciones de la coagulación.

Alteraciones de la fibrinolisis. Pruebas analíticas para el diagnóstico y seguimiento de los trastornos de la

hemostasia. Control del tratamiento anticoagulante.

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7. Inmunohematología y técnicas para determinación de compatibilidad sanguínea

Estudio de los grupos sanguíneos humanos y su identificación: sistema AB0, sistema Rh, otros antígenos y

anticuerpos eritrocitarios. Técnicas de determinación.

8. Banco de sangre y preparación de hemoderivados

Organización y función. Concepto de unidad de sangre y fases en el proceso de obtención. Procedimientos

y técnicas empleadas en el banco de sangre: preparación y selección de componentes y derivados

sanguíneos. Técnicas de conservación sangre. Dispensación de sangre y hemoderivados. Pruebas pre-

transfusionales: tipificación AB0/Rh, detección de anticuerpos. Determinación de anticuerpos inesperados.

Reacciones transfusionales.

9. Genética y estudios genéticos

Estructura del material genético. Estructura del cromosoma. Mutaciones y polimorfismos. Cariotipo

humano. Alteraciones cromosómicas: numéricas (aneuploidias, poliploidias) y estructurales (delecciones,

duplicaciones, inversiones, entre otras).

Aplicaciones de estudios genéticos en el diagnóstico y prevención de enfermedades. Aplicaciones de

estudios genéticos en el diagnóstico prenatal, estudios de esterilidad e infertilidad, pruebas de paternidad

y medicina legal y forense.

Técnicas para el estudio de cromosomas humanos. Técnicas de biología molecular utilizadas en los

estudios genéticos.



Perfil profesional del formador o formadora:1. Dominio de los conocimientos y las técnicas para realización de análisis hematológicos y genéticos enmuestras biológicas humanas y procedimientos para obtener hemoderivados, que se acreditará mediante unade las dos formas siguientes:- Formación académica de nivel 2 (Marco Español de Cualificaciones para la Educación Superior) o de otrasde superior nivel relacionadas con el campo profesional.- Experiencia profesional de un mínimo de 3 años en el campo de las competencias relacionadas con estemódulo formativo.2. Competencia pedagógica acreditada de acuerdo con lo que establezcan las Administraciones competentes.

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MÓDULO FORMATIVO 6 Inmunología clínica aplicadaNivel 3Código MF0374_3Asociado a la UC Realizar técnicas inmunológicas de aplicación en las distintas áreas del

laboratorio de análisis clínicosDuración horas 120


C1: Aplicar procedimientos para la preparación de materiales, los instrumentos, equipos y muestras,utilizados en análisis inmunológico, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE1.1 Describir los materiales, instrumentos y equipos utilizados en el laboratorio de inmunología, explicando su fundamento,utilización y mantenimiento.CE1.2 Enumerar mecanismos de distribución de muestras en el laboratorio.CE1.3 Distinguir las operaciones previas al análisis inmunológico (centrifugación, homogeneización, entre otras), considerandotipo de muestra y determinación solicitada.CE1.4 Definir controles y calibradores de equipos, indicando aplicaciones.CE1.5 Describir operaciones para preparación de reactivos, controles y calibradores para el laboratorio de inmunología.CE1.6 En un supuesto práctico de preparación de materiales, instrumentos, equipos y muestras, utilizados en análisisinmunológico, según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Seleccionar materiales instrumentos y equipos para realización de pruebas inmunológicas.- Procesar una muestra para análisis inmunológico, según determinación solicitada y técnica a realizar.- Preparar reactivos para la aplicación de técnicas inmunológicas, según muestra a analizar, determinación solicitada y técnica arealizar.- Efectuar la calibración y los controles diarios de un equipo del laboratorio de inmunología.

C2: Aplicar técnicas inmunoquímicas para el aislamiento, caracterización y cuantificación de proteínas,según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE2.1 Analizar las aplicaciones que las técnicas de aislamiento, caracterización y cuantificación de proteínas tienen pararealizar el diagnóstico de laboratorio de ciertas enfermedades.CE2.2 Explicar las técnicas utilizadas: inmunoelectroforesis, inmunofijación, cromatografía, Western Blot, técnicas moleculares,entre otras.CE2.3 Describir aparatos y equipos utilizados en inmunoelectroforesis, inmunofijación, cromatografía, Western Blot, técnicasmoleculares, entre otras, explicando su fundamento y detallando pautas de utilización y mantenimiento.CE2.4 En un supuesto práctico de caracterización de proteínas, mediante técnicas inmunoquímicas, según protocolosestablecidos y normativa aplicable:- Seleccionar materiales y equipos, según técnica a aplicar.- Efectuar una cromatografía, según protocolos establecidos.- Verificar la separación de las fracciones del cromatograma.- Cuantificar las diferentes fracciones.

C3: Aplicar técnicas de obtención y amplificación de ácidos nucleicos mediante la reacción en cadena de lapolimerasa (PCR), para estudios de patología molecular en el laboratorio de inmunología, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable.CE3.1 Identificar la secuencia de realización de la técnica y los reactivos utilizados.CE3.2 Describir los procesos de obtención de ácidos nucleicos, según tipo de muestras biológicas.CE3.3 Esquematizar el proceso de amplificación y los sistemas de detección.CE3.4 Estimar la extrema importancia de la ausencia de contaminaciones para el desarrollo de la técnica.CE3.5 Enumerar las aplicaciones de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) y sus variantes, así como sus posiblesaplicaciones futuras.CE3.6 Describir equipos para obtención y amplificación de ácidos nucleicos mediante la reacción en cadena de la polimerasa(PCR), detallando su fundamento y pautas de utilización y mantenimiento.CE3.7 En un supuesto práctico de realización de técnicas de obtención y amplificación de ácidos nucleicos mediante la reacciónen cadena de la polimerasa (PCR), para estudios de patología molecular en el laboratorio de inmunología, según protocolosestablecidos y normativa aplicable:- Aplicar medidas para evitar contaminación de muestra y reactivos.- Realizar operaciones previas para la extracción de ADN de una muestra, según protocolos establecidos.- Seleccionar la técnica de reacción en cadena de la polimerasa (PCR), a seguir, según patología a estudiar y medios técnicosdisponibles.

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C4: Aplicar técnicas de detección de autoanticuerpos para el diagnóstico de enfermedades autoinmunes,según técnicas y equipos disponibles en el servicio, protocolos establecidos y normativa aplicable.CE4.1 Explicar el concepto de autoinmunidad.CE4.2 Describir enfermedades autoinmunes y su relación con anticuerpos.CE4.3 Citar los reactivos y técnicas utilizadas en el laboratorio para el estudio de autoanticuerpos.CE4.4 Reconocer los patrones de inmunofluorescencia en sueros que contienen anticuerpos antinucleares.CE4.5 Describir técnicas para detección y caracterización de autoanticuerpos tales como inmunofluorescencia,enzimoinmunoanalisis, hemaglutinación, inmunodifusión radial y citometría.CE4.6 Describir operaciones de procesamiento de muestras tales como centrifugación, incubación, fijación en portaobjetos,tinción con fluorocromos especificos, entre otras.CE4.7 En un supuesto práctico de detección de autoanticuerpos para el diagnóstico de enfermedades autoinmunes, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable:- Seleccionar técnica dependiendo del anticuerpo a analizar y equipos disponibles.- Someter la muestra a operaciones previas al análisis, según determinación a realizar.- Realizar la determinación de anticuerpos, según técnicas disponibles en el laboratorio.

C5: Aplicar procedimientos para detección de inmunoglobulinas específicas para el diagnóstico de alergias ehipersensibilidad, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE5.1 Explicar la hipersensibilidad y sus tipos.CE5.2 Describir técnicas para el estudio de alergias, tales como técnicas radioalergenosorbentes (PRAS), recuento deeosinófilos, enzimoinmunoensayo (ELISA), medida de histamina, entre otras.CE5.3 Identificar equipos y reactivos utilizados en las pruebas de alergia e hipersensibilidad, según determinación solicitada ytécnica a aplicar, indicando los rangos de referencia correspondientes.CE5.4 Describir equipos automáticos utilizados en esta área de diagnóstico, explicando su fundamento y detallando pautas deutilización y mantenimiento.CE5.5 En un supuesto práctico de detección de inmunoglobulinas específicas para el diagnóstico de alergias ehipersensibilidad, según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Realizar el procesamiento de una muestra para el diagnóstico de alergias e hipersensibilidad, según protocolos establecidos.- Efectuar una electroforesis de inmunoglobulinas plasmáticas, según medios disponibles.- Realizar la cuantificación de inmunoglobulinas plasmáticas, según medios disponibles.

C6: Aplicar técnicas para el estudio de subpoblaciones linfocitarias, según protocolos establecidos ynormativa aplicable.CE6.1 Explicar el fundamento y componentes del citómetro de flujo, así como su aplicación en el estudio de subpoblacioneslinfocitarias.CE6.2 Describir técnicas específicas y reactivos para el estudio de subpoblaciones linfocitarias.CE6.3 Detallar los procesos preparatorios, para el estudio de poblaciones linfocitarias, previos a la introducción de la muestraproblema en el citómetro de flujo.CE6.4 Describir pautas de preparación y manejo del citómetro de flujo.CE6.5 En un supuesto práctico de aplicación de técnicas para el estudio de subpoblaciones linfocitarias, según protocolosestablecidos y normativa aplicable:- Seleccionar marcadores de membrana a analizar y los anticuerpos monoclonales correspondientes.- Incubar muestras con los fluorocromos específicos, según condiciones requeridas.- Efectuar fases subsiguientes, previas a la introducción de la muestra en el citómetro de flujo.

C7: Aplicar técnicas de cultivos celulares para estudios de funcionalidad celular, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CE7.1 Analizar el fenómeno y técnicas de estudio de la proliferación celular.CE7.2 Describir materiales y reactivos usados en cultivos celulares, así como los tipos de líneas celulares utilizadas másfrecuentemente.CE7.3 Identificar condiciones de los cultivos celulares: pH, temperatura, nutrientes, entre otros.CE7.4 Diferenciar las fases de mantenimiento, expansión y congelación de líneas celulares.CE7.5 Describir técnicas isotópicas, identificando riesgos asociados, medidas de prevención y requisitos que debe reunir unoperador de radioinmunoanálisis (RIA).CE7.6 Estimar la importancia de la aplicación de condiciones de rigurosa esterilidad en la realización de los estudios.CE7.7 Describir métodos de conservación y almacenamiento celular.CE7.8 En un supuesto práctico de aplicación de técnicas de cultivos celulares para estudios de funcionalidad celular, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable:- Tratar una muestra para hacer un estudio de funcionalidad celular, considerando sus características.- Aplicar condiciones de rigurosa esterilidad.- Examinar los cultivos celulares, controlando condiciones de pH, la temperatura, nutrientes, entre otros parámetros, segúnprotocolos establecidos.

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C8: Aplicar técnicas de determinación de antígenos HLA con diversas aplicaciones en el laboratorio, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable.CE8.1 Describir el complejo principal de histocompatibilidad y los antígenos HLA.CE8.2 Explicar mecanismos de rechazo de trasplantes.CE8.3 Describir relación entre ciertas enfermedades y antígenos de histocompatibilidad.CE8.4 Enumerar técnicas utilizadas en el laboratorio para el estudio de los antígenos HLA tales como el test demicrolinfocitotoxicidad.CE8.5 Explicar fundamento y componentes de los equipos, describiendo pautas de utilización y mantenimiento.CE8.6 Identificar reactivos, en función de la técnica y determinación, indicando los rangos de referencia.CE8.7 En un supuesto práctico de aplicación de técnicas de determinación de antígenos HLA, según protocolos establecidos ynormativa aplicable:- Seleccionar materiales y equipos requeridos, según tecnología disponible.- Efectuar en la muestra las operaciones previas al análisis, según protocolos establecidos.- Preparar los reactivos requeridos, según protocolos establecidos.

C9: Aplicar procedimientos para el manejo de equipos modulares y autoanalizadores en el laboratorio deinmunología, verificando su funcionamiento, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE9.1 Describir la automatización en las fases preanalítica, analítica y postanalítica.CE9.2 Describir equipos modulares o analizadores en serie (IPM), del área de inmunología, indicando fundamento, manejo ymantenimiento.CE9.3 Indicar las ventajas y los inconvenientes de la automatización.CE9.4 Identificar la secuencia de operaciones para la utilización de estos sistemas.CE9.5 Describir los métodos de transmisión de resultados de equipos modulares y autoanalizadores, en el laboratorio deinmunología.CE9.6 Establecer las bases para solución de incidencias y su registro.CE9.7 Explicar las funciones del profesional del laboratorio de inmunología en el control, manejo y mantenimiento de losequipos modulares.CE9.8 En un supuesto práctico de manejo de equipos modulares o analizadores en serie, del área de inmunología, segúnprotocolos establecidos y normativa aplicable:- Preparar los controles y muestras.- Efectuar la calibración del equipo.- Verificar el funcionamiento del equipo, detectando incidencias.- Comprobar los resultados de los controles, efectuando repeticiones en casos establecidos.- Registrar incidencias surgidas a lo largo del proceso.- Verificar los resultados obtenidos.- Trasmitir los resultados a través del sistema informático, para su validación por el facultativo.

C10: Aplicar técnicas antígeno-anticuerpo en el diagnóstico microbiológico y hematológico, según protocolosestablecidos y normativa aplicable.CE10.1 Distinguir términos como infección aguda, crónica o en evolución, relacionándolos con métodos serológicos deidentificación.CE10.2 Explicar el fundamento de las técnicas basadas en reacciones antígeno-anticuerpo para el estudio cuantitativo ocualitativo de antígenos y anticuerpos específicos (técnicas de precipitación, aglutinación, inmunoensayos, Western Blot, entreotras).CE10.3 Explicar las técnicas de determinación del grupo sanguíneo sérico y eritrocitario del sistema AB0 y del factor Rh.CE10.4 Definir título de anticuerpos.CE10.5 En un supuesto práctico de detección de antígenos o anticuerpos en el diagnóstico microbiológico y hematológico,según protocolos establecidos y normativa aplicable:- Realizar técnicas de inmunofluorescencia y observar las preparaciones en el microscopio de fluorescencia.- Realizar pruebas de aglutinación en porta.- Realizar técnicas de enzimoinmunoanálisis en tubo y microplaca.- Realizar determinación de grupo sanguíneo del sistema AB0 y determinación del factor Rh.

C11: Aplicar procedimientos que garanticen la calidad de los parámetros analizados en el laboratorios deinmunología, según protocolos establecidos y normativa aplicable.CE11.1 Explicar el concepto de muestra control, control de calidad interno y control de calidad externo.CE11.2 Explicar el proceso de control de calidad analítico en las determinaciones cualitativas.CE11.3 En un supuesto práctico de garantía de calidad de determinaciones cuantitativas en el laboratorio de inmunología:- Realizar controles.- Registrar los resultados obtenidos.- Efectuar un análisis de los resultados.

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Capacidades cuya adquisición debe ser completada en un entorno real de trabajoC1 respecto a CE1.6; C2 respecto a CE2.4; C3 respecto a CE3.7; C4 respecto a CE4.7; C5 respecto a C5.5;C6 respecto a CE6.5; C7 respecto a CE7.8; C8 respecto a CE8.7; C9 respecto a CE9.8; C10 respecto aCE10.5 y C11 respecto a CE11.3.Otras capacidades:Proponerse objetivos retadores que supongan un nivel de rendimiento y eficacia superior al alcanzadopreviamente.Demostrar cierto grado de autonomía en la resolución de contingencias relacionadas con su actividad.Aprender nuevos conceptos o procedimientos y aprovechar eficazmente la formación utilizando losconocimientos adquiridos.Favorecer el desarrollo profesional y personal en el equipo de trabajo.Adaptarse a la organización, a sus cambios organizativos y tecnológicos; así como a situaciones o contextosnuevos.Demostrar resistencia al estrés, estabilidad de ánimo y control de impulsos.

Contenidos

1. Sistema inmunitario. Tipos de inmunidad. Alteraciones del sistema inmunitario

Características generales. Tipo y mecanismos de respuesta inmunitaria. Antígenos y determinantes

antigénicos.

Inmunidad celular. Órganos y tejidos linfoides. Células del sistema inmune.

Inmunidad humoral. Anticuerpos. Inmunoglobulinas. Sistema del complemento. Reacciones antígeno-

anticuerpo.

Complejo principal de histocompatibilidad y aplicación de estudios de tipificación HLA.

Características bioquímicas y genéticas. Función del MHC. Clases de antígenos de histocompatibilidad y

enfermedades asociadas. Estudios de histocompatibilidad. Aplicaciones de los estudios de

histocompatibilidad.

Inmunodeficiencias. Tipos: primarias y secundarias.

Autoinmunidad. Enfermedades autoinmunes y anticuerpos asociados. Anticuerpos órganoespecíficos y no

organoespecíficos.

Hipersensibilidad. Fundamentos. Tipos.

2. Aplicación de técnicas basadas en reacciones antígeno-anticuerpo

Tipos de reacciones antígeno-anticuerpo: reacciones primarias y secundarias.

Reacciones de aglutinación y precipitación. Técnicas de fijación del complemento. Diagnóstico serológico y

seguimiento de las enfermedades infecciosas. Otras técnicas.

Técnicas de inmunoelectroforesis. Inmunoensayos. Inmunofluorescencia. Técnicas de Inmunoelectroblot.

Otras técnicas.

3. Aplicación de técnicas de biología molécular al diagnóstico de enfermedades inmunológicas

Aislamiento de ADN y ARN. Técnicas de PCR, RT-PCR. Otras técnicas de biología molecular.

4. Técnicas para estudio de células del sistema inmune

Caracterización estructural: estudios de subpoblaciones linfocitarias mediante citometría de flujo.

Funcionamiento de un citómetro de flujo. Aplicaciones de la citometría de flujo. Otras técnicas para

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caracterización estructural.

Caracterización funcional: cultivos celulares. Obtención de líneas celulares. Mantenimiento y expansión de

líneas celulares. Congelación de células. Estudios de funcionalidad celular. Otras técnicas de

caracterización funcional.

5. Automatización del laboratorio de inmunología

Automatización. Descripción de sistemas automáticos. Manejo. Utilidad y aplicaciones.

6. Control de calidad en el laboratorio de inmunología

Control de calidad. Control de calidad de la fase analítica. Control interno y control externo.



Perfil profesional del formador o formadora:1. Dominio de los conocimientos y las técnicas para realización de técnicas inmunológicas de aplicación en lasdistintas áreas del laboratorio de análisis clínicos, que se acreditará mediante una de las dos formassiguientes:- Formación académica de nivel 2 (Marco Español de Cualificaciones para la Educación Superior) o de otrasde superior nivel relacionadas con el campo profesional.- Experiencia profesional de un mínimo de 3 años en el campo de las competencias relacionadas con estemódulo formativo.2. Competencia pedagógica acreditada de acuerdo con lo que establezcan las Administraciones competentes.

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Fecha - CIG · PDF fileCR 3.1 La relación de proveedores se ... Efectuar operaciones para el desarrollo del plan de garantía de calidad en pruebas ... de equipos, control de calidad,