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©2016 Nihon Waters K.K. 1
バイオ医薬品のLC/MSによる定量と特性解析に
必要な基礎知識と応用例
日本ウォーターズ株式会社
BioPh 2016 実践研修講座
April 2016
©2016 Nihon Waters K.K. 2
トピックス
イントロダクション
バイオ医薬品分析におけるLC/MSの注意点と推奨条件
– HPLC
– MS
バイオ医薬品分析におけるLC/MSの応用事例
– 抗体医薬品バイオアナリシス
– 糖タンパク質N型糖鎖解析
サマリー
Q&A
2
©2016 Nihon Waters K.K. 3
バイオ医薬品の例
MW 1,000 ~5,000
MW 34,000
MW 147,000
ペプチド
エリスロポエチン
モノクローナル抗体 DNA
RNA
MW 6,000
インシュリン
©2016 Nihon Waters K.K. 4
Trastuzumab (Herceptin®) MW 148,000 Light Chain: (C1032H1603N277O335S6) Heavy Chain: (C2192H3387N583O671S16)
モノクローナル抗体医薬品の例
3
©2016 Nihon Waters K.K. 5
Monoclonal Antibody
Monoclonal Antibody
Monoclonal Antibody
Fusion Protein
Monoclonal Antibody
Monoclonal Antibody
GEN Report 2014
製薬マーケットの状況
In 2014, 4 of the top 5 selling drugs ere protein-based.
In 2008, 1 of the top 5 selling drugs was protein-based.
Evaluate Pharma
©2016 Nihon Waters K.K. 6
血友病薬
抗がん剤
ホルモン製剤
感染症治療薬
中枢神経系薬
リウマチ薬
Modified slide from McKinsey and Company Data Source: Evaluate Pharma
2015 2014 2013 2012 2011 2010
PEGIntron
Erbitux
NovoRapid/NovoLog
4.3 Lantus Neulasta
Avonex Rebif
NovoSeven Kogenate Procrit/Eprex
Tysabri
Pegasys
5.7
Avastin Rituxan Herceptin Remicade
6.1
2020 2019 2018 2017 2016
Enbrel
Humira
Levemir
Norditropin SimpleXx
NovoMix
Humalog
モノクローナル抗体 Other protein
US Patent Expiration Date
バイオ医薬品の成長
2021
2009 sales ($Billion)
1.1
0.8
4
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低分子医薬品と高分子医薬品の違い
MW = 148,000 Daltons MW = 558 Daltons
“Concept of Biosimilars” – Kirankaur Oberoi
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5
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トピックス
イントロダクション
バイオ医薬品分析におけるLC/MSの注意点と推奨条件
– HPLC
– MS
バイオ医薬品分析におけるLC/MSの応用事例
– 抗体医薬品バイオアナリシス
– 糖タンパク質N型糖鎖解析
サマリー
Q&A
©2016 Nihon Waters K.K. 10
1
1
k
k
4
NRs
最大化するには : 幅広いケミストリラインアップ 複数のパーティクル基材 幅広い使用pH範囲 [BEH] 高い保持能 [HSS] 幅広い選択性 [CSH™]
最大化するには : 超低分散システム 小さい粒子径[< 2 µm] 高耐圧性 適切に設計されたカラム
分離への影響 Nを2倍 kを2倍 αを2倍
改善% 20 – 40% 15 – 20% > 400%
初期値 (理論段数:N=10000段、保持係数:k=5、分離係数:α=1.1)の場合
液体クロマトグラフィー 分離に影響を与えるファクター
6
©2016 Nihon Waters K.K. 11
バンド拡散: 1) インジェクターからカラム手前まで 2) カラム入口からカラム出口まで 3) カラム出口から検出器まで カラム外
カラム内
どこでピークの拡散が起こるか?
©2016 Nihon Waters K.K. 12
カラム内拡散を理解するために van Deemter 式 :基礎
van Deemterの式1)は拡散に影響する要因を実験的に示しており、移動相の線速度および粒子径の関数として得られる
A項は粒子径(dp)に一定に比例すると考えられていて、 フローの 不均一性について考慮
B項はカラム軸方向の拡散で、線速度が高くなると低減
C項は移動相と固定相間の物質移動で、線速度が高くなると
上昇
0
2
4
6
8
10
0 5 10 15 20 25 30
Linear Velocity u
0
2
4
6
8
10
0 5 10 15 20 25 30
Linear Velocity u
0
2
4
6
8
10
0 5 10 15 20 25 30
Linear Velocity u
0
2
4
6
8
10
0 5 10 15 20 25 30
Linear Velocity u
H-u
A-term
B-term
C-term
HETP(H) = A + B / u + C u =a・dp+B/u+c・dp
2・u
1) J.J.van Deemter, F.J.Zuiderweg, and A.Klinkenberg, Chem.Eng.Sci.5,271(1956)
7
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拡散についての理解: van Deemterプロット
A Term
(Eddy Diffusion)
C Term
(Mass Transfer)
B Term
(Axial Diffusion)
HETP(H) = A + B / u + C u =a・dp+B/u+c・dp
2・u
©2016 Nihon Waters K.K. 14
拡散についての理解: van Deemterプロット
カラム効率(理論段数:N)∝カラム長 (L)/粒子径 (dp)
理論段高(HETP:H)=L/N~1理論段あたりのカラム長
カラム圧(Δp) ∝カラム長 (L)/粒径 2(dp2)
8
©2016 Nihon Waters K.K. 15
粒子径2 µm以下のパーティクルの耐圧試験結果
圧力
流速
理想的なプロフィール
HPLC Silica until 2004
可変圧力 (MeOH)
流速をモニター
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Anal. Chem. 2003, 75, 6781-6788
シリカマトリックス中の架橋エタン
BEH パーティクル合成法
2004: 第二世代 エチレン架橋型ハイブリッドパーティクル
U.S. Patent No. 6,686,035 B2
UPLC技術の具現化 エチレン架橋型ハイブリッドパーティクル
9
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粒子径2 µm以下のパーティクルの耐圧試験結果
圧力
流速
理想的なプロフィール
HPLC Silica
ACQUITY UPLC BEH 1.7 µm
可変圧力 (MeOH)
流速をモニター
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ACQUITY UPLC BEH パーティクル
5 μm 分析カラム用パーテイクル (毛髪の1/12)
1.7 μm ACQUITY UPLC BEHパーティクル 圧力下で最高のカラム効率を発揮 するために最適化された パーティクルディストリビューション
60 μm ヒト毛髪
(very fine) エチレン架橋型ハイブリッドパーティクル 一般的なシリカパーティクル
10
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1997
2004
1996
UPLC技術の具現化 超高耐圧&超低拡散システムの開発
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Dm m2/sec = 1.4 e-10
Dm m2/sec = 1.99 e-10
Dm m2/sec = 3.46 e-10
Dm m2/sec = 7.12 e-10
Plate Height vs. flow Rate
0
10
20
30
40
50
60
0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
Flow rate (mL/min)
H (
um
)
MW 300
MW 1000
MW 2500
MW 4500
バイオ医薬品 van Deemterプロットによる予測: 分析種サイズの最適流速への影響
3.5 µm particle
11
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0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
Flow rate (mL/min)
H (
um
)
3.5 um
1.7 um
Plate Height vs. Flow Rate
バイオ医薬品 van Deemterプロットによる予測: 充塡剤粒径の影響
1.7 µm 充塡剤が顕著に性能を向上させる
2500 MW Peptide
Gilar et al, Journal of separation science 2005, 28, 1694
©2016 Nihon Waters K.K. 22
Time 0.20 0.40 0.60 0.80 1.00 1.20 1.40 1.60 1.80 2.00 2.20 2.40 2.60 2.80
%
0
100
0.20 0.40 0.60 0.80 1.00 1.20 1.40 1.60 1.80 2.00 2.20 2.40 2.60 2.80
%
0
100
0.92
0.94
0.95
130 Å Pore Size
300 Å Pore Size
バイオ医薬品 細孔径の影響: Teriparatide MW 4118
50° C
2.1 X 50mm ACQUITY UPLC BEH C18, 1.7 µm
12
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ペプチドのためのUPLC 技術: スクリーニングプロトコール
ACQUITY UPLC BEH300 C18 2.1 X 50 mm, 1.7 µm Peptide Separation
Technology (PST) カラム
– ペプチドスタンダードでQC 試験
– 300Å PST カラムが幅広いペプチドにオーバーオールで(特にピーク形状)最適な性能を発
揮
– 2.1 X 50 mmが十分なスループットを提供
ゼネリックグラジエント
o 移動相 A = 0.1% ギ酸
o 移動相 B = 0.1% ギ酸アセトニトリル溶液
o 流速 = 0.4 mL/min
o 15% B to 75% B over 2 minutes
• 高極性ペプチドについては5% B から開始
o 全サイクルタイム:3.5 minutes
Note: 移動相に使用されたギ酸はTFAでおこるMSサプレッションを回避
©2016 Nihon Waters K.K. 24
広範囲のペプチドを単一メソッドでスクリーニング
Time 0.20 0.40 0.60 0.80 1.00 1.20 1.40 1.60 1.80 2.00 2.20 2.40 2.60 2.80
%
0
MRM of 5 Channels ES+ 1 3 2 4
5
3.5分サイクルのグラジエントでピーク幅 2-3秒で充分なMSデータポイントが取得されている
Analyte MW
Peak
Width
(seconds)
MS Data
Points
Across
Peak
1. Vasopressin 1084 1.8 15
2. Angiotensin II 1046 2.2 15
3. Desmopressin 1069 2.2 18
4. Bivalirudin 2180 2.4 18
5. Enfuvirtide 4492 2.1 16
13
©2016 Nihon Waters K.K. 25
トピックス
イントロダクション
バイオ医薬品分析におけるLC/MSの注意点と推奨条件
– HPLC
– MS
バイオ医薬品分析におけるLC/MSの応用事例
– 抗体医薬品バイオアナリシス
– 糖タンパク質N型糖鎖解析
サマリー
Q&A
©2016 Nihon Waters K.K. 26
質量分析計の構成
INLET ANALYSER SOURCE ION DETECTER DATA SYSTEM
試料導入 ②イオンの分離 ①イオン化 ③イオンの検出 データ処理
④真空システム
14
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イオン化の種類 真空下 or 大気圧下
真空下におけるイオン化:non-API
– 電子イオン化
Electron Ionization - EI
– 化学イオン化
Chemical Ionization – CI
GC/MSで一般的
大気圧下におけるイオン化:API
– エレクトロスプレーイオン化
ElectroSpray Ionization - ESI
– 大気圧化学イオン化
Atmospheric Pressure Chemical
Ionization – APCI
– 大気圧光イオン化
Atmospheric Pressure
Photoionization - APPI
LC/MS向きのイオン化法
©2016 Nihon Waters K.K. 28
イオン化法の適応範囲 (ESI, APCI, APPI)
Analyte polarity
MW
100
1,000
10,000
10
ESI
APCI
APPI
ionic nonpolar
バイオ医薬品(高分子)にはESIが適している
15
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排気
ターボモレキュラー ポンプ
ロータリー ポンプ
ネブライザーガス
サンプル
アナライザー 脱溶媒ガス
サンプル コーン
エキストラクション コーン
RF レンズ
プローブ ステンレスキャピラリー
エレクトロスプレーイオン化法 (ESI) インターフェース
©2016 Nihon Waters K.K. 30
ESI法におけるイオン化の過程
プラスまたはマイナスの高電圧
ポジティブ:2-4kV
ネガティブ:2-3kV
①帯電液滴の形成
高温のガス
イオン蒸発 フロー
ステンレス
キャピラリー
③気相イオンの生成 ②溶媒蒸発と液滴の分裂
+ ++
++
+
+
++
+++ ...+ ++
++
+
+
++
+++ ...
半径≦10nmの液滴では、 液滴の分裂よりも、静電斥力による液滴表面からのイオン蒸発が起こる イオンは液相から気相に変わる
16
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ESI の特徴
ソフトなイオン化
– [M+H]+、[M+NH4]+、[M+Na]+、[M+K]+ など
– [M–H]-、[M+CH3COO]-、[M+Cl]- など
中~高極性及びイオン性、低~高分子 (蛋白質では 150 kDa 程度まで) と
広い範囲の化合物を比較的高感度にイオン化できる
生体高分子、ポリマーでは多価イオンを生成
– [M+nH]n+, [M+n(NH4)]n+
– [M–nH]n-
熱に不安定な化合物もイオン化できる
非共有結合複合体もイオン化できる
©2016 Nihon Waters K.K. 32
質量分析計の構成
INLET ANALYSER SOURCE ION DETECTER DATA SYSTEM
試料導入 ②イオンの分離 ①イオン化 ③イオンの検出 データ処理
④真空システム
17
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イオンの分離 四重極
イオンは四重極の中で、 DCとRFにより
振動しながら、そのm/zに固有の軌道を
描く。DCとRFの比をある範囲に保ち、
その大きさを変えると、特定のイオン
のみを通過させることができる。 検出器
Nonresonant Ion
Resonant Ion
pos:V(t)= +(U+Vcos wt) neg:V(t)= - (U+Vcos wt)
DC:直流電圧 RF:交流電圧
+ +
-
-
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タンデム四重極
イオン化部 – 加熱ガスのスプレーにより生成したイオンをMS内部に導入させる
光学輸送系 – 真空下へ導入されたイオンを収束させる
MS1 – 質量数の選択
コリジョンセル – コリジョンガスと衝突させてイオンを解離(衝突誘起解離)させフラグメントにする。解離時の
イオンの分散を抑制する
MS2 – 質量数の選択
MS1 MS2
Collision Cell
光学輸送系 (Q0)
イオン化部 (大気圧)
18
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SIMクロマトグラム
ターゲット1 ターゲット2 MRM*クロマトグラム
妨害物質
タンデム四重極: マルチプルリアクションモニタリング(MRM*)
MS1でプリカーサーイオンを選択し コ
リジョンセルでアルゴンガスと衝突誘起
解離、MS2で特長あるプロダクトイオ
ンを選択
– イオン量は減るがケミカルノイズが大幅に
下がるため、S/Nが向上
– 高選択性で高感度定量分析に最適
– ターゲット化合物のための分析手法
*MRM=selected reaction monitoring (SRM)
©2016 Nihon Waters K.K. 36
四重極MSの取り込み(Dwell Time)
コリジョンセル
100msec
10msec 切り替え時に排除
100 msecの平均値 > 10 msecの平均値
19
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四重極MSの取り込み(Dwell Time) イオンが等速で輸送される場合
©2016 Nihon Waters K.K. 38
四重極MSの取り込み(Dwell Time) イオンがパケット輸送される場合
20
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四重極MSの取り込み (データポイントとDwell Time)
各ピークのデータポイントの確認
・12~15ポイント/ピークが目安、これ以下だと面積値の再現性が低下
Dwell Timeの最大化
・ポイント数が確保できる範囲内で最大のDwell Timeを設定
設定Dwell Timeでの再現性
・設定したDwell Timeで再現性を確認する
©2016 Nihon Waters K.K. 40
質量分離の原理 -TOFの場合
同時に加速した後、一定の距離を飛行させ 検出器に到達するまでの時間を測定する。
・分解能が高いので精密質量測定が可能 ・飛ばしたイオンはすべて検出するので、スキャン測定の感度が高い
pusher
M1
M2
M3
M2
M1
M3
TOF-MSとは Time-of-flight mass spectrometerのこと。
21
©2016 Nihon Waters K.K. 41
イオンサプレッション
80% ion suppression
No ion suppression
0.50 1.00 1.50 2.00 2.50 3.00 3.50 4.00 4.50 5.00
%
0
100
0.50 1.00 1.50 2.00 2.50 3.00 3.50 4.00 4.50 5.00
%
0
100
MRM472.2 > 436.4
1.27e6
1.89
MRM472.2 > 436.4
1.27e61.91
ミックスモード固相抽出Oasis® MCX
タンパク沈澱処理Terfenadine
Terfenadine
tg = 1.5 min
80% ion suppression
No ion suppression
0.50 1.00 1.50 2.00 2.50 3.00 3.50 4.00 4.50 5.00
%
0
100
0.50 1.00 1.50 2.00 2.50 3.00 3.50 4.00 4.50 5.00
%
0
100
MRM472.2 > 436.4
1.27e6
1.89
MRM472.2 > 436.4
1.27e61.91
0.50 1.00 1.50 2.00 2.50 3.00 3.50 4.00 4.50 5.00
%
0
100
0.50 1.00 1.50 2.00 2.50 3.00 3.50 4.00 4.50 5.00
%
0
100
MRM472.2 > 436.4
1.27e6
0.50 1.00 1.50 2.00 2.50 3.00 3.50 4.00 4.50 5.00
%
0
100
0.50 1.00 1.50 2.00 2.50 3.00 3.50 4.00 4.50 5.00
%
0
100
MRM472.2 > 436.4
1.27e6
1.89
MRM472.2 > 436.4
1.27e6
1.89
MRM472.2 > 436.4
1.27e61.911.91
ミックスモード固相抽出Oasis® MCX
タンパク沈澱処理Terfenadine
Terfenadine
tg = 1.5 min
ESIによるイオン生成の過程において様々な要因によりイオン化効率が変動することがある
減少 → イオンサプレッション 増加 → イオンエンハンスメント
©2016 Nihon Waters K.K. 42
イオンサプレッション
サンプルマトリックス成分の影響 – マトリックス効果
o 分析対象化合物と同時にイオン源内に入ってきた化合物によって起こる
o 汚いサンプル(例:血漿、尿などの生体サンプル、食品、環境サンプルなど)にてサンプルマトリックス成分と分析対象成分が未分離の場合に発生
移動相 – TFA、ギ酸、etc…
カラム – 汚染 – カラムブリード
バイアル – 汚染 – 抽出物
MS/MSのクロマト上に妨害がなくても
「見えない夾雑成分」が存在するため
LC-MS/MSにおいてもLCによる分離は重要 3.80 4.00 4.20 4.40 4.60 4.80 5.00 5.20 5.40 5.60
min 20
100
%
F2:SIR of 8 channels,ES+ 411
4.920e+004
29Jan_24 10ppb 82 pesticide mix in Avocado Extract (SIR)
3.61
4.30
5.53 Nicosulfuron
3.80 4.00 4.20 4.40 4.60 4.80 5.00 5.20 5.40 5.60 min 0
100
%
F2:MRM of 8 channels,ES+
411
8.084e+003
29Jan_30
10ppb 82 pesticide mix in Avocado Extract (MRM)
Nicosulfuron MS/MS
MS
22
©2016 Nihon Waters K.K. 43
マトリックス効果を回避するためには
LC上で完全分離
安定同位体を内部標準として使用
マトリックス成分を添加した標準で検量線を作成
サンプル前処理
©2016 Nihon Waters K.K. 44
m/z 400 600 800 1000 1200 1400 1600 1800
%
0
100
Scan ES+ 9.91e7
m/z 1494 1495 1496 1497 1498 1499 1500 1501 1502 1503
%
0
100 ENFUVIRTIDE Scan ES+
1498.32
1498.01
1498.64
1498.89
1499.34
バイオ医薬品分析におけるトリプル四重極MSの選択: プリカーサーイオンのためのMSレンジの重要性
Enfuvirtide
MW 4492
可能性のあるプリカーサー推算値 – 3+ at m/z 1498
– 4+ at m/z 1124
MSスキャン実施
3+ 価のイオンが最も高いシグナル値 – 少なくても1500 amu以上のレンジがMS1に必要
1498
Enfuvirtide Sequence: Ac-Y-T-S-L-I-H-S-L-I-E-E-S-Q-N-Q-Q-E-K-N-E-Q-E-L-L-E-L-D-K-W-A-S-L-W-N-W-F-aM
23
©2016 Nihon Waters K.K. 45
m/z 400 600 800 1000 1200 1400 1600
%
0
100
バイオ医薬品分析におけるトリプル四重極MSの選択: フラグメントのためのMSレンジの重要性
Bivalirudin (MW 2180) 2価のプリカーサーイオン
1価のフラグメントイオン
650
1091 1530
2価のプリカーサーイオン
©2016 Nihon Waters K.K. 46
バイオ医薬品分析におけるイオン選択:ペプチド イミニウムイオン: 高強度、だけど…
24
©2016 Nihon Waters K.K. 47
バイオ医薬品分析におけるイオン選択:ペプチド イミニウムイオンフラグメントの回避
02-Mar-2012
Time 0.20 0.40 0.60 0.80 1.00 1.20 1.40 1.60 1.80 2.00 2.20 2.40 2.60 2.80 3.00 3.20 3.40
%
0
100
0.20 0.40 0.60 0.80 1.00 1.20 1.40 1.60 1.80 2.00 2.20 2.40 2.60 2.80 3.00 3.20 3.40
%
0
100
1: MRM of 4 Channels ES+ 867 > 136 (Lantus)
9.40e5 0.99
0.56
1.68
1.58
1.20 1.15
1.30 1.49 1.40
1: MRM of 4 Channels ES+ 867 > 984 (Lantus)
8.97e5 0.99
867 -> 136 (チロシンのイミニウムイオン)
867 -> 984
特異性消失
©2016 Nihon Waters K.K. 48
Time 0.50 1.00 1.50 2.00 2.50 3.00 3.50
%
0
0.50 1.00 1.50 2.00 2.50 3.00 3.50
%
0
MRM of 2 Channels ES- 1031.5 > 1026.8
3.20e4 2.48
3.36
MRM of 2 Channels ES- 825 > 821.3
3.26e4 2.48
1.67
1.22 1.63
1.96 2.49
m/z の大きなプリカーサ―および フラグメントイオンを使用
Human Plasma Extract
4th charge state 1031.5 -> 1026.8
5th charge state 825 -> 821.3
25
©2016 Nihon Waters K.K. 49
m/z1000 1100 1200 1300 1400 1500 1600 1700 1800 1900
%
0
100
1: TOF MS ES+ 4.91e41162.3542
1162.3403
1162.1512
1161.9482
1161.7524
1129.9305
1107.3191
1162.5503
1162.7603
1162.9493
1163.1523
1163.3553
1452.69471166.7542
1452.42861167.3573
1452.19381167.55371453.17981458.4440
m/z1000 1100 1200 1300 1400 1500 1600 1700 1800 1900
%
0
100
1: TOF MS ES+ 4.91e4
m/z1000 1100 1200 1300 1400 1500 1600 1700 1800 1900
%
0
100
1: TOF MS ES+ 4.91e41162.3542
1162.3403
1162.1512
1161.9482
1161.7524
1129.9305
1107.3191
1162.5503
1162.7603
1162.9493
1163.1523
1163.3553
1452.69471166.7542
1452.42861167.3573
1452.19381167.55371453.17981458.4440
5+
4+
m/z1000 1100 1200 1300 1400 1500 1600 1700 1800 1900
%
0
100
TOF MS ES+ 1.16e51452.8917
1452.3910
1162.3069
1162.1110
1110.7625
1104.7563
1452.14061162.7130
1162.9159
1163.11891246.7325
1163.3151
1166.9028
1451.89031382.7155
1262.7163
1453.1422
1453.3927
1936.5212
1453.6432 1936.1780
1458.3903
1458.6412
1458.8763 1935.8528
1459.1431
1463.63211518.6868 1935.5095
1936.8464
1937.1898
1937.5151
1943.8459
1944.5157
1944.84181951.16631958.4913
m/z1000 1100 1200 1300 1400 1500 1600 1700 1800 1900
%
0
100
TOF MS ES+ 1.16e5
m/z1000 1100 1200 1300 1400 1500 1600 1700 1800 1900
%
0
100
TOF MS ES+ 1.16e51452.8917
1452.3910
1162.3069
1162.1110
1110.7625
1104.7563
1452.14061162.7130
1162.9159
1163.11891246.7325
1163.3151
1166.9028
1451.89031382.7155
1262.7163
1453.1422
1453.3927
1936.5212
1453.6432 1936.1780
1458.3903
1458.6412
1458.8763 1935.8528
1452.8917
1452.3910
1162.3069
1162.1110
1110.7625
1104.7563
1452.14061162.7130
1162.9159
1163.11891246.7325
1163.3151
1166.9028
1451.89031382.7155
1262.7163
1453.1422
1453.3927
1936.5212
1453.6432 1936.1780
1458.3903
1458.6412
1458.8763 1935.8528
1459.1431
1463.63211518.6868 1935.5095
1936.8464
1937.1898
1937.5151
1943.8459
1944.5157
1944.84181951.16631958.4913
5+
4+
3+
m/z1452 1453 1454 1455
%
0
100
TOF MS ES+ 1.16e51452.89171452.6415
1452.3910
1452.1406
1451.8903
1453.1422
1453.3927
1453.6432
1453.8936
1454.1284
1454.3947
m/z1452 1453 1454 1455
%
0
100
TOF MS ES+ 1.16e5
m/z1452 1453 1454 1455
%
0
100
TOF MS ES+ 1.16e51452.89171452.6415
1452.3910
1452.1406
1451.8903
1453.1422
1453.3927
1453.6432
1453.8936
1454.1284
1454.3947
特異的プリカーサーイオンのフォーメーションに与える流速の影響
200 µL/min
10 µL/min
©2016 Nihon Waters K.K. 50
トピックス
イントロダクション
バイオ医薬品分析におけるLC/MSの注意点と推奨条件
– HPLC
– MS
バイオ医薬品分析におけるLC/MSの応用事例
– 抗体医薬品バイオアナリシス
– 糖タンパク質N型糖鎖解析
サマリー
Q&A
26
©2016 Nihon Waters K.K. 51
トピックス
抗体医薬品バイオアナリシス
– タンパク質バイオアナリシスワークフロー
o 概説と課題
o タンパク質レベルにおけるクリーンアップ
o 消化
o ペプチドレベルにおけるクリーンアップ
– ProteinWorks:標準化され再現するキットベースアプローチ
o 概容
o 適用
o ProteinWorksのアドバンテージ
• モノクローナル抗体
• 抗体薬物複合体(ADC:Antibody Drug Conjugates)
©2016 Nihon Waters K.K. 52
タンパク質定量メソッド
リガンドバインディングアッセイ
Ligand Binding Assay(LBA)
– 高感度
– ハイスループット
– 少容量サンプルに適合
– 簡単
– 交叉反応 不正確な結果
– 抗体作成に時間とコストを要する
LC-MS/MS
– 高い特異性と真度
– 1度に多成分を分析可能
– 高い直線性と広いダイナミックレンジ
– 迅速メソッド開発
http://www.bioanalysis-zone.com/wp-content/uploads/2014/07/Bio-figure.jpg
27
©2016 Nihon Waters K.K. 53
LC-MS/MS タンパク質バイオアナリシス: サロゲートペプチドアプローチ
血清/血漿 タンパク質
LC/MS Data
タンパク質レベル クリーンアップ (オプション)
ペプチドレベル クリーンアップ (オプション)
ペプチド 消化
精製された タンパク質
精製された ペプチド
高感度
ではありますが…
©2016 Nihon Waters K.K. 54
ワークフローの課題と選択
標準化されていない, 多くの選択
時間と労力を要するサンプル調製 (8-24 hr)
消化 - 長い消化時間,主たる変動要因
メソッド移管 - 課題、実験者間、ラボ間
メソッド開発 - 課題、時間を浪費
専門性 – 低分子の研究者は“高分子”の課題(例:分子の複雑性、可変性、高い
内因性バックグラウンド、非特異的吸着)と直面
28
©2016 Nihon Waters K.K. 55
タンパク質レベル(消化前) クリーンアップ法の選択
タンパク質 クリーンアップ
一般的な タンパク質
モノクローナル抗体 創薬 開発 感度 時間 コスト
無し x x x low Fastest none
MWカットフィルター x x x x low $
除タンパクプレート x x x x low $
タンパク沈殿 (ペレット消化)
x x x x medium $
Protein A/G x x x medium $$
Kappa (ヒト抗体) x x high $$$
特異的抗体の開発 x x x high $$$$
目的に合わせ、これらのクリーンアップ技術のいずれか一つを使用
血清/血漿 タンパク質
精製された タンパク質
©2016 Nihon Waters K.K. 56
特異性 & 感度: タンパク質レベルクリーンアップ
100uL SPE, Kappa
Time7.50 8.00 8.50 9.00
%
0
100
7.50 8.00 8.50 9.00
%
0
100
7.50 8.00 8.50 9.00
%
0
100
7.50 8.00 8.50 9.00
%
0
100
500ngmL_plasma_051314_003 MRM of 6 Channels ES+ 485.2 > 721.4 (FTISADTSK HC)
1.30e5Area
100ngmL_plasma_051314_003 MRM of 6 Channels ES+ 485.2 > 721.4 (FTISADTSK HC)
1.30e5Area
8.43810
50ngmL_plasma_051314_003 MRM of 6 Channels ES+ 485.2 > 721.4 (FTISADTSK HC)
1.30e5Area
8.43401
blank_plasma_051314_003 MRM of 6 Channels ES+ 485.2 > 721.4 (FTISADTSK HC)
1.30e5Area
8.43 3412
100uL SPE, Protein A, 1:5 Worthington, DTT, 17hr digestion
Time7.50 8.00 8.50 9.00
%
0
100
7.50 8.00 8.50 9.00
%
0
100
7.50 8.00 8.50 9.00
%
0
100
7.50 8.00 8.50 9.00
%
0
100
500ngmL_plasma_051514_002 MRM of 6 Channels ES+ 485.2 > 721.4 (FTISADTSK HC)
6.43e4Area
100ngmL_plasma_051514_002 MRM of 6 Channels ES+ 485.2 > 721.4 (FTISADTSK HC)
6.43e4Area
8.49722
50ngmL_plasma_051514_002 MRM of 6 Channels ES+ 485.2 > 721.4 (FTISADTSK HC)
6.43e4Area
8.50345
blank_plasma_051514_002 MRM of 6 Channels ES+ 485.2 > 721.4 (FTISADTSK HC)
6.43e4Area
8.49163
8.50 1707
Trastuzumab 485.2>721.4 (FTISADTSK)
50uL SPE, whole plasma, 1:12.5 Worthington, DTT
Time7.50 8.00 8.50 9.00
%
0
100
7.50 8.00 8.50 9.00
%
0
100
7.50 8.00 8.50 9.00
%
0
100
7.50 8.00 8.50 9.00
%
0
100
500ngmL_plasma_052114_003 MRM of 6 Channels ES+ 485.2 > 721.4 (FTISADTSK HC)
2.60e4Area
8.38493
100ngmL_plasma_052114_003 MRM of 6 Channels ES+ 485.2 > 721.4 (FTISADTSK HC)
2.60e4Area
8.4179
50ngmL_plasma_052114_003 MRM of 6 Channels ES+ 485.2 > 721.4 (FTISADTSK HC)
2.60e4Area
blank_plasma_052114_003 MRM of 6 Channels ES+ 485.2 > 721.4 (FTISADTSK HC)
2.60e4Area
特異的: ヒト抗体 in ラット血漿
汎用的: Protein A in ヒト血漿
無し:ヒト血漿直接消化
タンパク質レベルのクリーンアップは必要とする感度と特異性により決定される
500 ng/mL
100 ng/mL
Blank Plasma
50 ng/mL
29
©2016 Nihon Waters K.K. 57
シンプルで低コストな方法: タンパク沈殿( PPT :Protein Precipitation) アルブミン削減とハーセプチンペプチド強度
Solvent 4 によるタンパク沈殿はアルブミンペプチドの半分以上を除去し、ハーセプチンペプチドの感度と特異性を増加させた
Technology Brief 720005574EN
% A
rea
(Norm
alized to
no P
PT)
©2016 Nihon Waters K.K. 58
消化: メソッド開発の課題
タンパク質変性 最適化
実験 消化 再現性
5 STEPS •変性 •還元 •アルキル化 •酵素消化 •消化停止
還元/アルキル化最適化 試薬濃度、時間、温度、試薬
選択、; Or..省略?
選択 酵素 ベンダー タンパク/酵素比 温度
ペプチド 消化
タンパク質
消化時間 最適化
30
©2016 Nihon Waters K.K. 59
消化: メソッド開発の課題
©2016 Nihon Waters K.K. 60
ペプチドレベルクリーンアップ: 課題
ペプチド
精製された ペプチド
より低濃度の ターゲット分析種
マトリックス効果による感度低下
消化酵素、バッファー、塩、 リン脂質などの妨害
ターゲットペプチドの回収率
高レベルの 必要が無い 内因性ペプチド
どうしてペプチドを クリーンアップしなければ
いけないの?
ペプチドレベル クリーンアップ (オプション)
システムの頑健性
31
©2016 Nihon Waters K.K. 61
トピックス
抗体医薬品バイオアナリシス
– タンパク質バイオアナリシスワークフロー
o 概説と課題
o タンパク質レベルにおけるクリーンアップ
o 消化
o ペプチドレベルにおけるクリーンアップ
– ProteinWorks:標準化され再現するキットベースアプローチ
o 概容
o 適用
o ProteinWorksのアドバンテージ
• モノクローナル抗体
• 抗体薬物複合体(ADC:Antibody Drug Conjugates)
©2016 Nihon Waters K.K. 62
ProteinWorks
A Family of (5) Sample Preparation Kits for
簡単で, 標準化され再現する
LC-MS/MS タンパク質定量
32
©2016 Nihon Waters K.K. 63
ProteinWorks キットワークフロー
血清/血漿 タンパク質
LC/MS Data
タンパク質レベル クリーンアップ (オプション)
ペプチドレベル クリーンアップ (オプション)
ペプチド 消化
精製された タンパク質
精製された ペプチド
eXpress 消化キット •変性 •還元 •アルキル化 •酵素消化 •消化停止
µElution SPE キット ターゲットペプチドの精製
©2016 Nihon Waters K.K. 64
ProteinWorks eXpress 消化キット
消化
タンパク質
最大5 ステップ •変性 •還元 •アルキル化 •酵素消化 •消化停止
ProteinWorks 紹介キット*
eXpress 消化キット
アフィニティー精製されたサンプル用
eXpress Direct 消化キット
アフィニティー精製されていないサンプルの直接消化用
* 初めの容量が15-70 µLのサンプルに最適化
5 ステップ消化
~ 3 時間
または
3 ステップ消化
– 還元アルキル化無し
– ~2 時間
新変性フォーマット サンプル量に最適化されたMS- フレンドリーな変性剤RapiGestが96本の反応用チューブに秤量
ペプチド
33
©2016 Nihon Waters K.K. 65
eXpress 消化キット & Direct 消化キット 構成品
室温保存品 冷蔵保存品
還元剤 アルキル化剤
トリプシン
変性剤入り1 mL チューブ, 12x8 strips
チューブキャップ
消化バッファー
消化停止剤
トリプシン溶解溶液
©2016 Nihon Waters K.K. 66
ProteinWorks μElution SPE クリーンアップキット
1 キット:
• アフィニティ精製したタンパク質の消化サンプルおよび
直接消化サンプルどちらにも使用可能
• 構成:
•Oasis MCX µElution プレート
•700µL コレクションプレート
•キャップマット
•SPE プロトコール
ペプチド
精製された ペプチド
µElution SPE キット ターゲットペプチドの精製
34
©2016 Nihon Waters K.K. 67
ProteinWorks μElution SPE クリーンアップキット
Oasis MCX μElution プレート
700 μL コレクションプレート&キャップ
分析を妨害する消化試薬とバッファーを除去 高効率な単一のSPEメソッドによりユニークおよびジェネリックペプチドを回収 乾固工程を排除するµElutionフォーマットにより最少のサンプルロス µElutionフォーマットにより最大15倍濃縮
トリプシンペプチドのクリーンアップのための、ユニバーサルで最適医会されたSPEキットとプロトコール
Technology Brief p/n 720005544EN
©2016 Nihon Waters K.K. 68
キットに含まれないもの 推奨品
ヒートブロック(製品番号 186007985)
ACQUITY Peptide BEH C18 300A, 1.7μm, 2.1 x 150mmカラム
インキュベーター (Boekel or comparable)
8連ピペッター
Intact mAb Check スタンダード (製品番号 186006552)
(スタートアップキットに同梱)
•ワークフローの練習 •システムチェック •ジェネラルインターナルスタンダード
ペプチドシークエンス クロマトグラフィー条件 MRM条件 完備
35
©2016 Nihon Waters K.K. 69
Intact mAb Check スタンダード
製品番号186006552, 1mg/vial
スタートアップキットに同梱
ワークフローの練習
システムチェック
ジェネラルインターナルスタンダード– 創薬研究向け
ジェネリック内標準とタンパク質バイオアナリシスワークフローチェック用スタンダードとしての
マウス由来インタクトモノクローナル抗体
ペプチドシークエンス クロマトグラフィー条件 MRM条件 完備
ワークフローの初回練習用に最適!
Technology Brief 720005543JA
©2016 Nihon Waters K.K. 70
ProteinWorks Kit キットの適用範囲
eXpress 消化キット*
– Protein A/G などでアフィニティー精製したサンプル用
– Protein A/G アフィニティー精製とOasis MCX µElution による精製の組み合わせにより高感度を達成 (10ng/mL, 100ng/mL)
– タンパク量 ~0.2 – 1.0 mg に適応
* Protein A/G 等のアフィニティー精製用品は含みません
eXpress Direct 消化キット
– 血漿、血清の直接消化用
– タンパク質レベルの精製無し
– LOQ > 100 ng/mL
– ペレット消化と併用
– 総タンパク量~1.0 – 5.25 mgに適応
スタートアップキット
– Oasis MCX µElution SPEキットと Intact mAb Mass check スタンダードをお求めやすい価格で同梱
36
©2016 Nihon Waters K.K. 71
ProteinWorks Kit キットの適用範囲 : 創薬 & 早期開発
血清/血漿
LBA アフィニティー
精製
消化
SPE
LC MS
アフィニティー
精製
消化
LC MS
消化
LC MS
消化
SPE
LC MS
eXpress 消化スタートアップ
キット
eXpress 消化キット
eXpress Direct 消化スタートアップキット
eXpress Direct 消化キット
176003695
176003696
176003689
176003688
©2016 Nihon Waters K.K. 72
The ProteinWorks アドバンテージ: 以下を兼ね備え、簡易化され加速されたワークフロー
再現性
標準化
柔軟性
感度
37
©2016 Nihon Waters K.K. 73
ProteinWorks 再現性
0.00
20.00
40.00
60.00
80.00
100.00
%CV
of P
eptid
e Ar
ea C
ount
s
Intra-Kit (Within Kit) ReproducibilityeXpress Direct Digest Kit
Kit #1
Kit #2
Kit #3
Kit #4
Kit #5
Intra-Kit: Each bar is 6 replicate injections Inter Kit: 5 Different Lots of Trypsin Raw Area Counts, No Internal Standard
Inter-kit and Intra-kit Reproducibility ProteinWorks eXpress Direct Digest Kit
Technology Brief 720005570en
キット内 (avg 3.4% CV) 、キット間 (avg 6.2% CV) と、バイオアナリシスガイドライン(15%以下)よりも低い10%未満の相対標準偏差
©2016 Nihon Waters K.K. 74
ProteinWorks 再現性
38
©2016 Nihon Waters K.K. 75
ProteinWorks eXpress 消化キットを使用したInfliximabの高感度定量
ProteinWorks eXpress Digest Kit
QCサンプルに優れた真度と精度, SINSATHYAESVK ペプチドの平均相対標準偏差 < 3%
Time 2.20 2.40 2.60 2.80 3.00 3.20 3.40 3.60 3.80 4.00 4.20 4.40 4.60 4.80 5.00 5.20 5.40
%
0
100
2.20 2.40 2.60 2.80 3.00 3.20 3.40 3.60 3.80 4.00 4.20 4.40 4.60 4.80 5.00 5.20 5.40
%
0
100
MRM of 11 Channels ES+ 469.6 > 603.8 (Remicade SINSATHYAESVK )
2.20e4 Area
4.15 361
MRM of 11 Channels ES+ 469.6 > 603.8 (Remicade SINSATHYAESVK )
2.20e4 Area
Blank plasma
SINSATHYAESVK Unique Signature Peptide
10 ng/mL infliximab
35 µL plasma
% P
eak H
eig
ht
Retention Time
% P
eak H
eig
ht
Application Note 720005535en
©2016 Nihon Waters K.K. 76
ProteinWorks uElution SPE キット 優れた回収率
0
20
40
60
80
100
120
Oasis MCX
トリプシンペプチドに優れた回収率; 装置稼働時間と感度を最大化
イオン交換と逆相と全く異なる保持原理のミックスモード固相が低濃度定量のための高感度を提供
39
©2016 Nihon Waters K.K. 77
抗体薬物複合体 Antibody-Drug Conjugates
ADCはモノクローナル抗体の特異性と癌細胞を殺す細胞毒薬物を組み合わすこと
により、健康細胞と病的細胞の識別を可能にする
ADCに複合する薬物の数にはバリエーションがある
ProteinWorks はADCの全mAb 濃度を測定
– 全mAbの測定はADCの薬物動態プロファイルに重要
©2016 Nihon Waters K.K. 78
ProteinWorks によるADC 分析: 全抗体量の定量
Bioconjugate Chemistry 2014, 25, 1223-1232
低分子ペイロード薬物+ Linker 956.3644 Da
(Linker) 219.0895 Da
Drug Maytansinoid
Data courtesy of Liuxi Chen Applications Note 720005619
ADC Trastuzumab Emtansine,T-DM1 (Kadcyla™)
Trastuzumab-based
Lysine-conjugated
40
©2016 Nihon Waters K.K. 79
アプリケーション
Application Notes
キットベースの標準化された迅速なアプローチでラット血漿中のインフリキシマブを高感度定量[720005535]
ProteinWorks eXpress Digest キットを用いた Bevacizumab (Avastin) のシンプルで標準化された高
感度定量 [720005534]
創薬研究サンプルの直接消化における、モノクローナル抗体医薬品定量の汎用キットベースアプローチ
[720005541]
キットベースの汎用アプローチによる、血漿中抗体医薬品トラスツズマブとその抗体薬物複合体トラスツズマブエム
タンシン (T-DM1) 定量
[720005619]
Technology Briefs
タンパク質バイオアナリシスにおけるトリプシンペプチドのクリーンアップに最適化されたユニバーサル SPE プロトコール
[720005544]
ジェネリック内標準とタンパク質バイオアナリシスワークフローチェック用スタンダードとしてのマウス由来インタクトモノク
ローナル抗体 [720005543]
ProteinWorks eXpress 消化キットによる相対標準偏差10%未満の再現性[720005570]
ProteinWorks eXpress 消化キットを使用した抗体定量 [720005575]
ペレット消化(タンパク質を沈殿後に消化)とProteinWorks eXpress Direct 消化キットを使用した
TrastuzumabのLC-MS定量 [720005574]
ProteinWorks eXpress 消化キット
©2016 Nihon Waters K.K. 80
Protein Works 今後の予定
ライブWebinar 「LC/MSによるタンパク質バイオアナリシスソリューション~トリプシン消化からペプチド精製までのワークフローを標準化~」
日時】5月11日(水) 15:00-16:00
【場所】オンライン
【参加費】無料
◆ ライブWebinar 詳細・お申し込みはこちら
http://www.waters.com/waters/eventInstance.htm?eiid=134884318
ProteinWorks eXpress 消化キット
41
©2016 Nihon Waters K.K. 81
トピックス
イントロダクション
バイオ医薬品分析におけるLC/MSの注意点と推奨条件
– HPLC
– MS
バイオ医薬品分析におけるLC/MSの応用事例
– 抗体医薬品バイオアナリシス
– 糖タンパク質N型糖鎖解析
サマリー
Q&A
©2016 Nihon Waters K.K. 82
糖鎖は生体において 重要な役割を担う
糖鎖の役割は… タンパク質のフォールディング 細胞間連絡 生物活性 抗体活性(ADCC) 血清半減期 タンパク質半減期 細胞接着
全てのタンパク質の約50%は 糖鎖が結合した糖タンパク質
IgG-Fc / RIIIa Interaction
42
©2016 Nihon Waters K.K. 83
バイオ医薬品の糖鎖解析に関するICHの動向
ICH ガイドライン Q6B 一部抜粋
糖鎖特性解析は、バイオ医薬品の重要品質特性(CQA)特定に必要な評価・
試験の一つ
©2016 Nihon Waters K.K. 84
FDA がバイオ医薬品分析の具体的な改革を要望
Steven Kozlowski, M.D. Director, Office of Biotechnology Products Office of Pharmaceutical Science Center for Drug Evaluation and Research Food and Drug Administration
1. Post-translation Modifications As indicated previously, proteins contain added structural features, such as attached sugar chains, that may be critical for their clinical activity. These attached modifications can be complex and heterogeneous, and we currently lack standardized analytical methods to qualitatively and quantitatively assess the structure as it relates to the intact protein and understand the relationship of the modifications to potency and clinical performance. We are particularly interested in better methods for analyzing the sugars (glycosylation) and other modifications known to affect the medicinal activity of these products.
TESTIMONY BEFORE THE SUBCOMMITTEE ON TECHNOLOGY AND INNOVATION COMMITTEE ON SCIENCE AND TECHNOLOGY U.S. HOUSE OF REPRESENTATIVES SEPTEMBER 24, 2009
43
©2016 Nihon Waters K.K. 85
日本薬局方17改正
©2016 Nihon Waters K.K. 86
糖タンパク質キャラクタリゼーション ワークフロー
糖タンパク質
糖ペプチド & ペプチド N- 結合型糖鎖
MALDI 蛍光/MS標識
MW Profile ESI MS
Peptide Mapping UPLC-UV UPLC-MS
HILIC UPLC-FL, UPLC-MS
44
©2016 Nihon Waters K.K. 87
今までの糖タンパク質糖鎖解析プロトコール例
糖タンパク質
可溶化 & 糖鎖切り出し 酵素またはヒドラジン分解で糖鎖切り出し
1
切り出した糖鎖の抽出・精製 2
糖鎖の蛍光標識 3
過剰な標識試薬の除去 4
蛍光標識糖鎖
MALDI MS
LC-FLR
LC-FLR-MS
数時間~ オーバーナイト
数時間
数時間
5時間~ 2日
©2016 Nihon Waters K.K. 88
酵素による糖鎖切り出し
課題
– 糖鎖切り出しに時間がかかる
– 再現性が低い
– 収率が悪い
IgG Fc 領域のN結合型糖鎖
45
©2016 Nihon Waters K.K. 89
酵素による糖鎖切り出し
IgG Fc 領域のN結合型糖鎖
RapiGest SF は上記条件を満たす界面活性剤 酸性条件下で分解し、分解物はLC、LC/MS、MALDI MS分析の妨害とならない
効率化
– 酵素の活性を維持した状態で糖タンパク質を可溶化
– 再現性良く完全な切り出しが行われるように変性
©2016 Nihon Waters K.K. 90
迅速糖鎖切り出し RapiGest SF Assisted
46
©2016 Nihon Waters K.K. 91
糖鎖標識
課題
– 標識に時間と手間がかかる
– 収率が悪い
– 再現性が低い
IgG Fc 領域のN結合型糖鎖
©2016 Nihon Waters K.K. 92
糖鎖標識 RapiFluor-MS 試薬による効率化
アミノ酸分析用の迅速蛍光標識にMS用イオン化部位を追加し 糖鎖解析用標識に活用: •迅速 •高い蛍光強度 •高いMSイオン化効率
Patent Pending
RapiFluor-MS
AccQ·Fluor
Rapid Fluorescence
47
©2016 Nihon Waters K.K. 93
糖鎖標識 RapiFluor-MS 試薬による効率化
PNGase F
+
Protein N-Glycan
切り出した N-Glycan (グリコシルアミン)
Protein
Rapi Fluor標識
©2016 Nihon Waters K.K. 94
標識糖鎖の精製
課題
– 精製に時間と手間がかかる
– 収率が悪い
IgG Fc 領域のN結合型糖鎖
48
©2016 Nihon Waters K.K. 95
Labeled Glycan Labeled Deglycosylated Protein
Byproducts
Colle
ct
Labeled Glycan
Reaction Byproducts
標識糖鎖精製 HILIC SPEによる効率化
標識後の1回の精製で高純度サンプルを取得可能
©2016 Nihon Waters K.K. 96
標識糖鎖の精製 HILIC μElutionプレートによる効率化
SPE Recovery
~74%
Mixture of hIgG and bovine fetuin N-glycans
0.0E+0
1.9E+6
0 5 10 15
0.0E+0
2.3E+6
0 5 10 15
After SPE (1x SPE)
No SPE
Crude Reaction Mixture
FA2 FA2G2S1
A3S1G3S3
A3G3S3
FLR
49
©2016 Nihon Waters K.K. 97
標識糖鎖のMS検出
課題
– 蛍光とMS感度が両立できない
– 糖鎖構造によりシグナル強度が大きく異なる
– シアル酸が付加した糖鎖のシグナル強度が著しく低い
©2016 Nihon Waters K.K. 98
比較的最近開発された糖鎖標識試薬
Procainamide
Klapoetke, S.; Zhang, J.; Becht, S.; Gu, X.; Ding, X., J Pharm Biomed Anal 2010, 53 (3), 315-24.
Rapid Tagging for MS
Rapid Tagging for FLR
Rapid
FLR
MS Cook, K. S.; Bullock, K.; Sullivan, T., Biologicals 2012, 40 (2), 109-17.
Gong, B.; Hoyt, E.; Lynaugh, H.; Burnina, I.; Moore, R.; Thompson, A.; Li, H., Anal Bioanal Chem 2013, 405 (17), 5825-31.
50
©2016 Nihon Waters K.K. 99
標識糖鎖のMS検出効率化 標識試薬による感度比較 1
0.0E+0
4.0E+6
3 4 5 6 7 8 9 10
0.0E+0
3.0E+4
3 4 5 6 7 8 9 10
0.0E+0
4.0E+6
3 4 5 6 7 8 9 10
0.0E+0
3.3E+6
3 4 5 6 7 8 9 10
100x zoom
0.0E+0
3.3E+6
3 4 5 6 7 8 9 10
FA2 (2.2 pmol)
FA2
FA2 (2.6 pmol)
FA2
105.8
7.4
126.9
0.8
0
50
100
150
RapiFluor-MS 2-AB
Reponse F
acto
rs(P
eak A
rea p
er
pm
ol Labele
d FA2 /
1000)
RapiFluor-MS Labeled
FLR
MS (BPI)
FLR
MS (BPI)
2-AB Labeled
RapiFluor-MS Labeled N-Glycans from Pooled Human IgG
FLR
MS (BPI)
Response F
acto
rs
(Peak A
rea p
er
pm
ol of
Labele
d F
A2 G
lycan /
1000)
2-AB Labeled N-Glycans from Pooled Human IgG
RapiFluor-MS
2-AB
©2016 Nihon Waters K.K. 100
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
Fluorescence MS (BPI)
Instant AB Labeled
RapiFluor-MS Labeled
2-AB Labeled
Rela
tive P
erf
orm
ance (
%)
52.5
7.0
0.1 0.6
Procainamide Labeled
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
30.0*
7.0*
(*) Comparative result extrapolated from a published comparison of N-glycans, wherein it was found that procainamide provided comparable fluorescence and up to 50 fold greater ESI-MS sensitivity when compared to 2-AB(Klapoetke et al. 2010).
標識糖鎖のMS検出効率化 標識試薬による感度比較 2
51
©2016 Nihon Waters K.K. 101
Conventional 2-AB Glycan from 10 µg of Protein 1.5 Day Sample Prep
RapiFluor-MS Glycan from 0.1 µg Protein <1 hr Sample Prep
糖鎖構造解析 UPLC/FLR/Xevo G2-XS
100x Sensitivity
10 20 min
Time (minutes)
5.50 10.00 15.00 20.00 25.00
1: TOFMSES+BPI
6.93e6
1: TOFMSES+BPI
6.93e6
Example courtesy of Y. Yu
Characterization
High Resolution LC-MS(/MS)
©2016 Nihon Waters K.K. 102
Time (minutes)
5.50 10.00 15.00 20.00 25.00
1: TOFMSES+BPI
6.93e6
1: TOFMSES+BPI
6.93e6
Conventional 2-AB Glycan from 10 µg of Protein 1.5 Day Sample Prep
RapiFluor-MS Glycan from 0.1 µg Protein <1 hr Sample Prep 100x
Sensitivity
Example courtesy of Y. Yu
10 20 min
0.3 ugp/ul Refi ma
m/z800 1000 1200 1400 1600
%
0
100
RapiFluor-MS-NIST Refimab_yqy_11212014_01 443 (7.810) Sm (SG, 100x5.00); Cm (442:446)2.07e5
800 1600 m/z
1130.921, 2+
Characterization
High Resolution LC-MS(/MS)
糖鎖構造解析 UPLC/FLR/Xevo G2-XS
FA2G2Ga1
52
©2016 Nihon Waters K.K. 103
FA2BG2S2
糖鎖構造解析 ESIイオン化の促進
5.3e2
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
RapiFluorMS_hIgG_14pmol_18Nov14_04 283 (5.065)3.47e6
2AB_hIgG_halfload_20Nov14_10 235 (4.234)2.89e4
2AB_hIgG_halfload_20Nov14_10 495 (8.689)529
RapiFluorMS_hIgG_14pmol_18Nov14_04 507 (8.892)1.15e5
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
RapiFluorMS_hIgG_14pmol_18Nov14_04 283 (5.065)3.47e6
2AB_hIgG_halfload_20Nov14_10 235 (4.234)2.89e4
2AB_hIgG_halfload_20Nov14_10 495 (8.689)529
RapiFluorMS_hIgG_14pmol_18Nov14_04 507 (8.892)1.15e5
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
RapiFluorMS_hIgG_14pmol_18Nov14_04 283 (5.065)3.47e6
2AB_hIgG_halfload_20Nov14_10 235 (4.234)2.89e4
2AB_hIgG_halfload_20Nov14_10 495 (8.689)529
RapiFluorMS_hIgG_14pmol_18Nov14_04 507 (8.892)1.15e5
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
RapiFluorMS_hIgG_14pmol_18Nov14_04 283 (5.065)3.47e6
2AB_hIgG_halfload_20Nov14_10 235 (4.234)2.89e4
2AB_hIgG_halfload_20Nov14_10 495 (8.689)529
RapiFluorMS_hIgG_14pmol_18Nov14_04 507 (8.892)1.15e5
500 2000 m/z
500 2000 m/z
500 2000 m/z
500 2000 m/z
2.9e4
1.2e5
3.5e6 2+
3+
2+ 2+
1+
FA2
2-AB RapiFluor-MS
©2016 Nihon Waters K.K. 104
標識糖鎖HPLC分離
課題
– 分離が悪い
– 分離に時間がかかる
– 分離カラムの耐久性が低い
– 再現性が悪い
HILICカラムによる効率化
– アミドHILIC結合相
– 1.7 µmパーティクル
– 耐久性の高いエチレン架橋型ハイブリッドパーティクル
– 2-AB標識ヒト型IgG糖鎖スタンダードでパーティクルバッチのQCテスト実施
53
©2016 Nihon Waters K.K. 105
ACQUITY UPLC BEH Glycan カラムケミストリー
官能基タイプ: トリファンクショナル結合型アミド
粒子径: 1.7 µm (HPLC用:2.5μm, 3.5μm)
エンドキャッピング: None
推奨使用pH範囲: 2 - 11
BEH Particle
©2016 Nihon Waters K.K. 106
30.00 10.00 12.00 14.00 16.00 18.00 20.00 22.00 24.00 26.00 28.00
24.00 28.00 32.00 36.00 40.00 44.00 48.00 52.00 56.00 60.00 64.00
Alliance HPLC XBridge Glycan BEH Amide, 130Å, 2.5µm 3.0 X 225 mm total length (150 mm + 75 mm) Flow Rate: 0.56 mL/minute
H-Class BIO UPLC ACQUITY UPLC Glycan BEH Amide, 130Å, 1.7µm 2.1 X 150 mm Flow Rate: 0.40 mL/minute
Total Run Time = 55 minutes
Total Run Time = 121.3 minutes
Flu
ore
scence (
rela
tive)
Time (minutes)
HPLCにおいても同等な感度と分離 ~サンプルロード容量3倍 、分析時間2倍の場合
LC装置が異なるラボ間におけるメソッド移管
RapiFluor-MS 標識糖鎖 UPLC ⇔ HPLCメソッド移管
54
©2016 Nihon Waters K.K. 107 Patent Pending
GlycoWorks RapiFluor-MS N-Glycan キット たった30分でサンプル調製が終了
©2016 Nihon Waters K.K. 108
FA2 Rep #1
1.6 pmol Rep #2
1.7 pmol
100% Theoretical Yield = 2.3 pmol
1.5x107 pg IgG1 pmol
150,000 pg
2 pmol glycan
1 pmol IgG0.45 pmol FA2
1 pmol total
glycan pool
10 μL injection
400 μL
sample
prepared
X X X X = 2.3 pmol
Step Yield Testing to confirm minimal bias
Deglycosylation Complete Intact mass analysis Gel shift assays Subunit LC-MS
Labeling >95% Released glycan profile vs subunit derived glycan information
SPE ~74% Recovery measurements
Glycan profile before vs after SPE
Entire Workflow (experimentally
determined) ~73% Yield
GlycoWorks RapiFluor-MS N-Glycan キット 高い収率
55
©2016 Nihon Waters K.K. 109
GlycoWorks RapiFluor-MS N-Glycan キット 糖鎖モニタリングから特性解析まで同じワークフロー
サンプル調製 分離 検出&データー解析
GlycoWorks RapiFluor-MS キット
ACQUITY FLR/QDa and Empower 3
Software
FLR/Xevo G2-XS QTof MS and UNIFI Scientific Information System
ACQUITY UPLC Glycan BEH Amide
カラム
糖鎖切り出し、標識と精製を 30分で完了
蛍光とMS検出共に比類の無い感度
FLR Quantification GU Retention
MS Confirmation
FLR Quantification GU Retention
Accurate Mass Confirmation MS/MS Fragmentation
FLR
TIC
MS/MS
©2016 Nihon Waters K.K. 110
GlycoWorks RapiFlour-MS N-Glycanキット 蛍光もMSも高感度~確実な糖鎖モニタリング
56
©2016 Nihon Waters K.K. 111
QDa MS検出器が可能にする 迅速製造プロセス開発
EU
0
20
40 蛍光
Inte
nsity
0
1x10 6
2x10 6
Minutes 1 2 3 4 5 6
QDa SIR Overlay
Trastuzumab N-Glycan Analysis RapiFluor-MS labeled glycans - 10 minute method In
tensity
0
50000
Inte
nsity
0
200000
Inte
nsity
0
1x10 6
2x10 6
Inte
nsity
0
50000
100000
Inte
nsity
0
1x10 6
Inte
nsity
0
200000
400000
Inte
nsity
0
20000
Minutes
1 2 3 4 5 6
A2G(4)1 896.4 m/z
F(6)A2 888.4 m/z
F(6)A2G(4)1 969.4 m/z
F(6)A2G(4)2 1050.5 m/z
A2 815.3 m/z
F(6)A2G(4)2S1 865.5 m/z
M5 774.1 m/z
©2016 Nihon Waters K.K. 112
QDa MS検出器による重要な糖鎖比のモニタリング – Keeping Tabs on Mannose 5
Time 1 Time 2 Time 3
Low Medium High
Mean 0.58 0.91 1.16
StDev 0.03 0.05 0.04
% RSD 5.44 5.47 3.85
Inte
nsity
0
60000
120000
180000
240000
Minutes 2.00 2.50 3.00 3.50 4.00
Inte
nsity
0.0
35000.0
70000.0
105000.0
140000.0
Minutes 2.00 2.50 3.00 3.50 4.00
F(6)A2G(4)1 SIR: 969.4 m/z
M5 SIR: 774.1 m/z
Man5: F(6)A2G(4)1 Ratio
57
©2016 Nihon Waters K.K. 113
GlycoWorks RapiFlour-MS N-Glycanキット+QDa MS検出器が可能にするソリューション
GlycoWorks RapiFluor-MS N-Glycan キットにより30分でサンプル調製
RapiFluor-MS 標識によりN型糖鎖がシンプルなQDa MS検出器でモニター可能
QDa により高い選択性、ハイスピード分析と
MSデータによる確実な糖鎖帰属が可能となり、信頼性と生産性が向上
MS確認と信頼性を伴った、 迅速で強力なN型糖鎖モニタリングソリューション
RapiFluor-MS
+ ACQUITY QDa
©2016 Nihon Waters K.K. 114
GlycoWorks RapiFlour-MS N-Glycanキット +Xevo G2-XS QTofが可能にするソリューション
58
©2016 Nihon Waters K.K. 115
Conventional 2-AB Glycan from 10 µg of Protein 1.5 Day Sample Prep
RapiFluor-MS Glycan from 0.1 µg Protein <1 hr Sample Prep
糖鎖構造解析 UPLC/FLR/Xevo G2-XS
100x Sensitivity
10 20 min
Time (minutes)
5.50 10.00 15.00 20.00 25.00
1: TOFMSES+BPI
6.93e6
1: TOFMSES+BPI
6.93e6
Example courtesy of Y. Yu
Characterization
High Resolution LC-MS(/MS)
©2016 Nihon Waters K.K. 116
Time (minutes)
5.50 10.00 15.00 20.00 25.00
1: TOFMSES+BPI
6.93e6
1: TOFMSES+BPI
6.93e6
Conventional 2-AB Glycan from 10 µg of Protein 1.5 Day Sample Prep
RapiFluor-MS Glycan from 0.1 µg Protein <1 hr Sample Prep 100x
Sensitivity
Example courtesy of Y. Yu
10 20 min
0.3 ugp/ul Refi ma
m/z800 1000 1200 1400 1600
%
0
100
RapiFluor-MS-NIST Refimab_yqy_11212014_01 443 (7.810) Sm (SG, 100x5.00); Cm (442:446)2.07e5
800 1600 m/z
1130.921, 2+
Characterization
High Resolution LC-MS(/MS)
糖鎖構造解析 UPLC/FLR/Xevo G2-XS
FA2G2Ga1
59
©2016 Nihon Waters K.K. 117
FA2BG2S2
GlycoWorks RapiFlour-MS キット シアル酸付加糖鎖のMS検出効率化
5.3e2
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
RapiFluorMS_hIgG_14pmol_18Nov14_04 283 (5.065)3.47e6
2AB_hIgG_halfload_20Nov14_10 235 (4.234)2.89e4
2AB_hIgG_halfload_20Nov14_10 495 (8.689)529
RapiFluorMS_hIgG_14pmol_18Nov14_04 507 (8.892)1.15e5
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
RapiFluorMS_hIgG_14pmol_18Nov14_04 283 (5.065)3.47e6
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2AB_hIgG_halfload_20Nov14_10 495 (8.689)529
RapiFluorMS_hIgG_14pmol_18Nov14_04 507 (8.892)1.15e5
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%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
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%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
m/z500 1000 1500 2000
%
0
100
RapiFluorMS_hIgG_14pmol_18Nov14_04 283 (5.065)3.47e6
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RapiFluorMS_hIgG_14pmol_18Nov14_04 507 (8.892)1.15e5
500 2000 m/z
500 2000 m/z
500 2000 m/z
500 2000 m/z
2.9e4
1.2e5
3.5e6 2+
3+
2+ 2+
1+
FA2
2-AB RapiFluor-MS
シアル酸
©2016 Nihon Waters K.K. 118
糖タンパク質キャラクタリゼーション ワークフロー
糖タンパク質
糖ペプチド & ペプチド N- 結合型糖鎖
MALDI 蛍光/MS標識
MW Profile ESI MS
Peptide Mapping UPLC-UV UPLC-MS
HILIC / UPLC-FL, UPLC-MS
60
©2016 Nihon Waters K.K. 119
Glycoprotein Characterization Multiple Strategies – Complementary Information
HILIC Hydrophilic Interaction Chromatography
©2016 Nihon Waters K.K. 120
Proof of Concept on Large Molecule HILIC RNase B
PDB: 1RBB
Glycan structure shown to scale with protein
High Mannose Man5 to Man9
Modified from Structure 1999, 7 (7), R155-60.
61
©2016 Nihon Waters K.K. 121
0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
0.6
0.7
5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15
A214
Time (min)
Unbonded BEH 130Å
HILIC Stationary Phases
©2016 Nihon Waters K.K. 122
0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
0.6
0.7
5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15
A214
Time (min)
Unbonded BEH 130Å
Amide Bonded BEH 130Å
HILIC Stationary Phases
Increased Retentivity (>10% H2O) Improved Resolution
BEH
Particle
62
©2016 Nihon Waters K.K. 123
0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
0.6
0.7
5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15
A214
Time (min)
Unbonded BEH 130Å
Amide Bonded BEH 130Å
Amide Bonded BEH 300Å
HILIC Stationary Phases
BEH 300Å 1.7 μmBEH 130Å 1.7 μm
Improved Resolution for Large Analytes
Highly Branched Glycans
Intact mAbs
Patent pending
©2016 Nihon Waters K.K. 124
0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
0.6
0.7
5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15
A214
Time (min)
Unbonded BEH 130Å
Amide Bonded BEH 130Å
Amide Bonded BEH 300Å
HILIC Stationary Phases
BEH 300Å 1.7 μmBEH 130Å 1.7 μm
Improved Resolution for Large Analytes
Highly Branched Glycans
Intact mAbs
Patent pending
130Å
300Å
63
©2016 Nihon Waters K.K. 125
Orthogonality and LC-MS
0
0.09
0.18
0.27
6 8 10 12 14 16 18 20
A214
Time (min)
RNase B
aglycosylated
+Man5
+Man6+Man7+Man8
+Man9
Reversed PhaseBEH C4300Å
©2016 Nihon Waters K.K. 126
0
0.02
0.04
0.06
6 8 10 12 14 16 18 20
A214
Time (min)
+Man5
+Man6
+Man7
+Man8
+Man9
RNase B
aglycosylated
HILICBEH Amide300Å
Orthogonality and LC-MS
0
0.09
0.18
0.27
6 8 10 12 14 16 18 20
A214
Time (min)
RNase B
aglycosylated
+Man5
+Man6+Man7+Man8
+Man9
Reversed PhaseBEH C4300Å
Patent pending
64
©2016 Nihon Waters K.K. 127
0
0.02
0.04
0.06
6 8 10 12 14 16 18 20
A214
Time (min)
+Man5
+Man6
+Man7
+Man8
+Man9
RNase B
aglycosylated
HILICBEH Amide300Å
Orthogonality and LC-MS
0
0.09
0.18
0.27
6 8 10 12 14 16 18 20
A214
Time (min)
RNase B
aglycosylated
+Man5
+Man6+Man7+Man8
+Man9
Reversed PhaseBEH C4300Å
Patent pending
13500 14000 14500 15000 15500 16000
m/z
Man9 Glycoform
©2016 Nihon Waters K.K. 128
Orthogonal Peptide Mapping Techniques Trastuzumab Lys-C Digest
0.0
0.5
1.0
0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 70 75 80 85 90
A214
Time (min)
0.0
0.5
1.0
0 5 10 15 20 25 30 35 40 45
A214
Time (min)
Peptide BEH C18 300Å 1.7 µm
Glycoprotein BEH Amide 300Å 1.7 µm
Non-glycosylated Peptides
Glycopeptides
Non-glycosylated Peptides
Peptide Reversed
Phase
HILIC
65
©2016 Nihon Waters K.K. 129
Assaying Deglycosylation and Glycan Occupancy on Intact mAbs
Intact
2 N-Glycans
1 N-Glycans
0 N-Glycans
©2016 Nihon Waters K.K. 130
Assaying Deglycosylation and Glycan Occupancy on Intact mAbs
Intact
2 N-Glycans
1 N-Glycans
0 N-Glycans
Patent pending
5.0 10.0 min
2 N-Glycans
1 N-Glycan 21.5%
0 N-Glycans 3.1%
Trastuzumab Partially Deglycosylated
Intr
insic
Flu
ore
scence D
ete
ction
66
©2016 Nihon Waters K.K. 131
Trastuzumab Native
5.0 10.0 min
2 N-Glycans
1 N-Glycan 1.0%
2 N-Glycans
1 N-Glycan 21.5%
0 N-Glycans 3.1%
Trastuzumab Partially Deglycosylated
Trastuzumab (2 N-Glycans)
Trastuzumab (1 N-Glycan)
FA2/FA2 148,057 Da
FA2/FA2G1 148221 Da
FA2 146,614 Da
FA2G1 146,773 Da
1,000 5,000 m/z
1,000 5,000 m/z
145 149 kDa
145 149 kDa
Assaying Deglycosylation and Glycan Occupancy on Intact mAbs
Intact
Intr
insic
Flu
ore
scence D
ete
ction
Patent pending
5.0 10.0 min
©2016 Nihon Waters K.K. 132
0E+0
1E+7
7 8 9 10 11 12 13 14 157 15 min 8 9 10 11 12 13 14
HILIC of Intact N-Deglycosylated EPO O-Linked Glycan Characterization
Intact O-Linked Glycan
N-Linked Glycans
Rapid Deglycosylation
O-Linked Glycan
Intr
insic
Flu
ore
scence D
ete
ction
Patent pending
67
©2016 Nihon Waters K.K. 133
0E+0
1E+7
7 8 9 10 11 12 13 14 15
Aglycosylated
18000 18500 19000 19500 20000
18000 18500 19000 19500 20000
PNGase F
18237.4 Da
+TFA
18893.8 Da
19185.3 Da
+TFA
+TFA
*Truncated C-terminus
7 15 min 20 kDa 18 8 9 10 11 12 13 14
HILIC of Intact N-Deglycosylated EPO O-Linked Glycan Characterization
Intact
O-Linked Glycan
O-Linked Glycan
Intr
insic
Flu
ore
scence D
ete
ction
Patent pending
* *
*
©2016 Nihon Waters K.K. 134
サマリー
イントロダクション
バイオ医薬品分析におけるLC/MSの注意点と推奨条件
– HPLC
– MS
バイオ医薬品分析におけるLC/MSの応用事例
– 抗体医薬品バイオアナリシス
– 糖タンパク質N型糖鎖解析
68
©2016 Nihon Waters K.K. 135
Questions ?