Drosophila suzukii

Ricard Sorribas Royo

Servei de Sanitat Vegetal

Fraga, 4 de diciembre de 2013

Introducción

Los drosofílidos son dípteros de pequeño tamaño,

generalmente asociados a frutos sobremadurados o restos vegetales en

descomposición

Una de las especies más conocidas es Drosophila melanogaster o

mosca del vinagre

Foto: R. Sorribas

Servei de Sanitat Vegetal

1965 Norte de India

1976 Tailandia

1968 Corea del Sur

1977 Taiwan

1991 Birmania

1937 Este de Rusia

1937 Este de China

1937 Corea del Norte

2005 Pakistan

Asia

1931 Japón

Federación Rusa

2008 PRIMERA CITA DE EUROPA España Tarragona

2009 Italia Trento

2009 Francia Montpellier, Minière de Vallauria, Alps

Marítims

2009 España Barcelona

2010 Eslovenia

2010 Córcega

2010 España Girona

Europa

2011 Croacia

2011 Suiza

2011 Bélgica

2011 Alemania

2011 España Navarra, Murcia,

Andalucía…

2012 Austria

2012 Holanda

2008 California Santa Cruz

2010 Utah

~1980 Hawaii

Nord Amèrica

2011 New York

2011 Michigan

2011 Wisconsin

2011 México

2009 Florida

2009 Lousiana

2009 Carolina del Norte

2009 Carolina del Sur

2009 Columbia Británica - Canadá

2009 California20 Condados

2009 Oregon

2009 Washington

2012 Massachusetts

Año 2010 EPPO inclusión en la lista de alertas

Frutos susceptibles

Cerezas

Fresas

Frambuesas

Arándanos

Moras

Ciruelas

Melocotones

Albaricoques

Higos

Uva

Manzanas, Peras, Kiwis, …

Impacto

Problemática global para la producción de fruta en amplias zonas

Amplio rango de hábitats y huéspedes donde se reproduce

Poblaciones del insecto con crecimiento explosivo

Costes adicionales para la protección de cultivos

La Producción ecológica fuertemente amenazada

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Foto: Hannah Burrack

North Carolina State University

Daños en frambuesa

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Daños en arándano

Daños en fresa

Fotos: Ricard Sorribas Royo

Servei de Sanitat Vegetal

Daños en fresa

Fotos: Anna Lekunberri Gómez

Servei de Sanitat Vegetal

Daños en cerezas

Fotos: A. Lekunberri / R. Sorribas

Servei de Sanitat Vegetal

Fotos: Núria Cuch- Andreu Vila- Ricard Sorribas

Drosophila suzukiiRhagoletis cerasi

Fotos: Núria Cuch- Ricard Sorribas

Drosophila suzukiiRhagoletis cerasi

2011

Variedades tempranas 10 al 80%

Variedades media 30%

Variedades tardías cercanas al 100%

Superficie afectada 95 Ha de 3.300 Ha

2012

Baja o nula presencia de la plaga.

Confusión con daños ocasionados por Rhagoletis cerasi

2013

Lenta evolución por bajas temperaturas. Daños en frutos.

Necesidad de protección fitosanitaria.

Cataluña. Daños en cerezas

Características morfológicas

Fotos: Ricard Sorribas Royo /

Anna Garreta Gornals

Servei de Sanitat Vegetal

dos manchas negras alares,

dos pares de pintas tarsales

oviscapto serrado y alargado

Ciclo biológico.

Fotos: Víctor Sarto / J. Orlando Moreno .Servei de Sanitat Vegetal

7-9 días a 21,1ºC

Huevo: En el interior del fruto, donde eclosionan y se

desarrollan las larvas

Larva: Pasan por 3 estadios antes de pupar

Pupa: La pupa puede formarse tanto fuera como dentro

del fruto

Ciclo biológico

7-9 días a 21,1ºC y 12-15 días a 18,3ºC

Entre 3 y 13 generaciones

Los adultos, sexualmente maduros después de 1 a 2 días. Pueden vivir entre

21 y 66 días y una hembra puede poner entre 1 y 3 huevos en cada punto de

oviposición, depositando una media de 380 huevos durante toda su vida

Tan sólo los adultos sobreviven al invierno, hembras principalmente

Prefiere un clima moderado, pero sobreviven en condiciones frías

Isla de Hokkaido (Japón), inviernos con T. medias de - 4º C a -12 º C

Máxima actividad a 20ºC. Reducción a temperaturas > a 30ºC y < a 0ºC

Muy sensible a la desecación

Influencia de la meteorología. Primavera

Monitoreo de las poblaciones

Monitoreo de las poblaciones

Monitoreo de las poblaciones

Consideraciones sobre el monitoreo de D. suzukii

Monitoreo laborioso. Identificación de individuos

Degradación de atrayentes (vinagre, vino, levadura…)

Estandarización de sistemas de monitoreo

Muestreo de zonas cultivadas y limítrofes

Ubicación de las trampas

Interacción plaga/cultivo

Áreas refugio

Fotos: A. Lekunberri / R. Sorribas

Servei de Sanitat Vegetal

Protocolo de monitoreo de D. suzukii . 2013

Objetivos del monitoreo

Determinar zonas de presencia Drosophila suzukii

Establecer puntos de seguimiento poblacional

Material

Trampa: Hemitrap®

Atrayente: SuzukiiTrap®

Medidas de control. Gestión Integrada

Profilácticas

Captura masiva

Tratamientos fitosanitarios

Fauna auxiliar, control biológico

Medidas profilácticas

Recoger también los frutos no comerciales de las parcelas para

evitar la proliferación de la plaga

Gestionarlos correctamente. Contenedores herméticos,

enterrarlos en profundidad

Evitar plantaciones abandonadas. La ley de Sanidad Vegetal

obliga a los propietarios a gestionar correctamente la sanidad

de sus cultivos

Reservorios en huéspedes silvestres: moras, madroños…

Conocer los puntos de entrada, movimiento de la plaga

Medidas mancomunadas

CAPTURA MASIVA. Técnica actualmente en experimentación

Colocación de las trampas con anticipación

Los atrayentes basados en vinagre de sidra, vino, levadura… se

degradan rápidamente y pierden capacidad de atracción. Son buenos

indicadores si se renuevan semanalmente

Necesidad de atrayentes más selectivos y de más lenta degradación

Trampas de alta capacidad para recoger picos de población que

pueden llegar a ser muy altos

Determinar la densidad de trampas

Captura masiva invierno. Cerezo

Invierno: Perimetral cada 4 - 5m.

Captura masiva primavera inicio floración

Primavera: Perimetral cada 4- 5m.

Trampas indicadoras dentro de la parcela

Captura masiva

Cultivo: 200 trampas/ha

Captura masiva fresa y frambuesa

Cultivo: 200 trampas/haFotos: R. Sorribas

Servei de Sanitat Vegetal

Medidas de control. Tratamientos fitosanitarios

Tratamientos fitosanitarios

La erradicación no es posible

Soluciones de urgencia a corto plazo

Rotación de materias activas y modos de acción

Falta de autorizaciones específicas

Riesgo de residuos

Objetivo: Gestión integrada

Autorización excepcional cerezo 2012 / 2013. 120 días

Dimetoato 40%p/v[EC

Dosis: Año 2012: 75 cc/Hl (750 cc/Ha) / Año 2013: 35 cc/Hl (350 cc/ha)

Volumen del caldo: 1000L/Ha

Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo: 1

Plazo de seguridad : Año 2012: 21 días / Año 2013: 14 días

Spinosad 48% p/v[SC]

Dosis: 20-25 cc/Hl

Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo : 3

Plazo de seguridad : Año 2012: 7 días / Año 2013: 14 días

Autorización excepcional cerezo 2013. 120 días

Spinetoram 25% p/p [WG]

Dosis: 30cc/Hl (300 cc/Ha).

Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo: 2

Plazo de seguridad : 3 días

Ensayo insecticidas laboratorio. IRTA-DAAM. 2012

Sobre adultos Sobre huevos Persistencia en hoja

Judit Arnó, Rosa Gabarra, y col. IRTA Cabrils

Eficacia sobre

adultos(residuos 0-3 dd)

Eficacia (fruto

infestado)

Persitencia (edad residuo

mort.>75%)

Materia activa Planta Fruto Fruto Persistencia

B. bassiana (Naturalis) 1 1 1 n Sí (np) Sí (np)

B. bassiana ( Botanigard) 1 2 3 n No No

Azadiractin (Aling) 1 1 2 n Sí (3d) Si (3d)

Azadiractin (Neemazal ) 2 1 1 n Si (3d) No

Spinosad (Spintor) 4 4 4 28-31 dd Sí (1d) No

Deltametrin (Decis) -- 4 -- -- Si (3d) Si (7d)

Lambda Cihalotrin (Karate) 4 4 4 28-31 dd Si (3d) Si (7d)

Acetamiprid (Epik) 4 2 4 0-3 dd No Si (14d)

Emamectina (Affirm) -- 4 -- -- Si (1d) No

Dimetoat (Danadim) 4 4 4 28-31 dd No No

Eficacia (OILB) : 1 - 25 % : 26 - 50 % : 51 - 75 % : >75 %

Judit Arnó, Rosa Gabarra, y col. IRTA Cabrils

Estrategia de control en cerezo

Envero (de color verde a paja) Maduración (de color rosado a rojo)

Inicio de captura masiva

perimetral / total

Según muestreo y

condiciones

meteorológicas. Inicio

de tratamientos

Tratamientos periódicos

Respetar plazo de seguridad

Caída de pétalos

Control biológico

No es habitual que una nueva plaga venga acompañada de

sus enemigos naturales, por lo que será preciso esperar un

tiempo para que los potenciales depredadores y parasitoides

visualicen la nueva fuente de alimento

Parasitoides identificados sobre la plaga en Cataluña

– Pachycrepoideus vindemmiae

– Leptopilina boulardi

Control biológico. Pachycrepoideus vindemmiae

Hembra ovopositando en pupa de tefrítido

Fotos: Max E. Badgley. Cortesia de http://www.bugsinthenews.com

Larva sobre pupa de mosca doméstica

Control biológico. Leptopilina boulardi

Foto:

http://www.plosbiology.org/article/info:doi/10.1371/journal.pbio.0020255

• Endoparásito de larvas de dípteros

• Drosophila sp., activa mecanismos de

autodefensa

• Leptopilina boulardi provoca un aumento

de hematocitos en Drosophila sp. que

encapsula la puesta del parasitoide

• Respuesta inmunitaria

Cicatriz lateral en una hembra de D. suzukii provocada

por el encapsulamiento del parasitoide L. boulardii.

Foto: Mar Ferrer-Suay. Universitat de Barcelona

Control biológico

Potencialmente existen hongos, bacterias, virus, depredadores

o parasitoides. Información sobre D. melanoganster

Prospección de las zonas colindantes a los cultivos y parcelas

con baja presión de tratamientos. Baja compatibilidad con la

mayoría de tratamientos fitosanitarios actuales

Dificultad de control debido a explosión de las poblaciones.

Poblaciones insuficiente de fauna auxiliar

MUCHAS GRACIAS

POR SU ATENCIÓN !!!

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