Genetyka i biologia eksperymentalna do przedmiotów... · Prof. dr hab. Beata Zagórska-Marek, dr Alicja Dołzbłasz, dr Katarzyna Sokołowska, dr Alicja Banasiak. 12. Wymagania wstępne:

Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia

Genetyka i biologia eksperymentalna

Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych

Załącznik nr 5

SYLABUSY DO PRZEDMIOTÓW OBOWIĄZKOWYCH

1. Filozofia nauk przyrodniczych

2. Philosophy of natural sciences

3. Wydział Nauk Społecznych, Instytut Filozofii

4. Zgodny z USOS

5. obowiązkowy

6. Genetyka i biologia eksperymentalna

7. Poziom studiów II

8. Rok studiów II

9. Semestr IV

10. wykład 20 godz., konwersatorium 10 godz.

11. dr Zbigniew Pietrzak

12. Wymagania wstępne: podstawowa zdolność do interdyscyplinarnego postrzegania

omawianych problemów

13.

Cele przedmiotu: poznanie i zrozumienie zależności między różnymi dyscyplinami

przyrodniczymi oraz zależności między dyscyplinami przyrodniczymi a filozofią na

poziomie umożliwiającym interdyscyplinarną pracę ze specjalistami innych dziedzin

14.

Zakładane efekty kształcenia:

Student zna i w sposób kompleksowy wyjaśnia główne stanowiska w

zakresie współczesnej filozofii nauk przyrodniczych; potrafi

definiować podstawowe pojęcia z zakresu współczesnej filozofii nauk

przyrodniczych i wskazać ich ewentualne źródło w naukach

przyrodniczych.

Student na podstawie dotychczasowej wiedzy przyrodniczej oraz

nabytej wiedzy filozoficznej potrafi wskazać na filozoficzne

(pozaprzyrodnicze) implikacje treści nauk przyrodniczych i ich roli

we współczesnej wiedzy naukowej; potrafi identyfikować i

przedyskutować podstawowe problemy współczesnej filozofii nauk

przyrodniczych.

Student potrafi wypowiadać się w kwestiach istotnych dla

rozumienia współczesnych problemów wynikających z rozwoju nauk

przyrodniczych – w ich filozoficznych, społecznych i kulturowych

aspektach; rozumie odrębność i przydatność filozoficznej

interpretacji nauk przyrodniczych i potrafi argumentować na rzecz

własnego stanowiska;

K_W01

K_U07

K_K01

15.

Treści programowe:

Wprowadzenie do przedmiotu – charakterystyka podstawowych dziedzin filozofii i ich

wzajemnych powiązań; Teoretyczne i filozoficzne ujęcie współczesnych nauk

przyrodniczych. Filozoficzne rozumienie funkcji, struktury, treści nauk przyrodniczych;

Specyfika nauk biologicznych – jej przedmiotowe, metodologiczne i filozoficzne źródła;

Geneza oraz podstawowe problemy współczesnych nauk przyrodniczych – kryteria

demarkacji, status praw/twierdzeń naukowych; Funkcja, cechy i status eksperymentów

we współczesnych naukach przyrodniczych; Znaczenie kategorii prawdy w naukach

przyrodniczych. Wielość koncepcji, definicji i teorii prawdy; Struktura, cechy,

filozoficzne implikacje pojęcia „teorii” w naukach przyrodniczych na podstawie teorii

ewolucji

16.

Zalecana literatura:

– konwersatoria – wybrane rozdziały z następujących pozycji: T. Kuhn, Struktura

rewolucji naukowych; E. Mayr, To jest biologia; I. Hacking, [w:] „Nowy

eksperymentalizm”; K.R. Popper, Nieustanne poszukiwania; J. Woleński,

Epistemologia.




– wykłady – zostanie podana na pierwszym wykładzie.

17.

Forma zaliczenia:

- wykład: zaliczenie na podstawie odpowiedzi ustnej (trzy pytania, na ocenę

dostateczną wymagana poprawna odpowiedź na jedno pytanie); (K_W01; K_U07;

K_K01)

- konwersatorium: zaliczenie na podstawie obecności i aktywności na zajęciach

(K_W01; K_U07; K_K01)

18. Język wykładowy: polski

19. Obciążenie pracą studenta

Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie aktywności

Godziny zajęć (wg planu studiów)

z nauczycielem:

- wykład:

- konwersatoria:

20

10

Praca własna studenta:

- czytanie wskazanej literatury:

- przygotowanie do zaliczenia:

20

10

Suma godzin 60

Liczba punktów ECTS 2

1. Genetyczno-molekularne podstawy rozwoju roślin

2. Molecular genetics of plant development

3. WNB, IBE, Zakład Biologii Rozwoju Roślin

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy


7. Poziom studiów: II

8. Rok studiów: I

9. Semestr: II

10. Wykład 15 godz., laboratorium 30 godz.

11. Prof. dr hab. Beata Zagórska-Marek, dr Alicja Dołzbłasz, dr Katarzyna Sokołowska, dr

Alicja Banasiak.

12. Wymagania wstępne: Podstawowe wiadomości z biologii rozwoju roślin

13. Cele przedmiotu: zapoznanie studenta z najnowszymi osiągnięciami genetyki

molekularnej odnoszącymi się do morfogenezy roślin

14.


Student rozumie znaczenie roślin modelowych w badaniach

naukowych i zna podstawowe zasady fenotypowania.

Charakteryzuje cechy makro- i mikromorfologiczne u roślin typu

dzikiego oraz u mutantów; interpretuje znaczenie badanych

genów dla powstania fenotypu. Student zna podstawy

genetycznej i molekularnej regulacji funkcjonowania

merystemów wierzchołkowych pędu i mechanizmy specyfikujące

tożsamość komórek. Student zna zasady tworzenia planu

budowy rośliny w oparciu o regulowaną w czasie i przestrzeni

ekspresję genów, a także znaczenie interakcji między

K_W02

K_W03




poszczególnymi genami w procesach formowania różnych

struktur roślinnych.

Student potrafi wykorzystywać mikroskop świetlny i

fluorescencyjny; wykonywać zadania badawcze; dbając o

porządek oraz sprzęt; potrafi interpretować uzyskane wyniki i

wyciągać wnioski.

Student jest otwarty na współpracę w grupie, kreatywny, zdolny

do wyciągania wniosków i logicznego myślenia.

K_U01

K_U06

K_K03

15.

Treści programowe:

Zasada powstawania planu budowy ciała rośliny, w oparciu o pierwotną segmentację

apikalno-bazalną, radialną i grzbieto-brzuszną. Tożsamość segmentów i określanie

kierunku ich różnicowania poprzez ekspresję specyficznych genów. Organografia,

wzory tkankowe i komórkowe. Mechanizmy dyfuzji-reakcji. Mutacje homeotyczne w

zarodkach, organach wegetatywnych i generatywnych. Podstawa genetyczna tworzenia

struktur chiralnych. Genetyczna regulacja płci u paprotników i roślin nasiennych.

Nieśmiertelność komórek macierzystych jako strategia przeciwstawna programowanej

śmierci komórkowej. Rola wybranych genów w powstawaniu i rozwoju aparatów

szparkowych. Powiązanie podstaw fenomiki i wizualizacji ekspresji genów do badania

ich funkcji w rozwoju roślin.

16.


wybrane zagadnienia z następujących pozycji literaturowych: Coen E. (1999) The

Art of Genes.How Organisms Make Themselves. Oxford University Press. Oxford,

New York. Howell S.H. (2000). Molecular Genetics of Plant Development. Cambridge

University Press. Cambridge, New York. Hejnowicz Z. (2002). Anatomia i

histogeneza roślin naczyniowych. Organy wegetatywne. Wydawnictwo Naukowe

PWN. Warszawa. Leyser O., Day S. (2003). Mechanisms in Plant Development.

Blackwell Publishing Ltd. Turnbull C.G.N. (Red.). (2005). Plant Architecture and its

Manipulations. Annual Plant Reviews. V. 17. Blackwell Publishing Ltd. CRC Press.

Wojtaszek P., Woźny A., Ratajczak L. (Red.) (2006-7). Biologia komórki roślinnej.

T.1 Struktura i T.2 Funkcja. Państwowe Wydawnictwo Naukowe. Warszawa.

Literatura oryginalna.

17.

Forma zaliczenia:

Wykład: egzamin pisemny (K_W02, K_W03);

laboratorium: zaliczenie na podstawie testu (K_W02, K_W03, K_U01, K_U06) i

aktywności na zajęciach (K_U01, K_U06, K_K03).





z nauczycielem:

- wykład:

- laboratorium:

15

30

Praca własna studenta, np.:

- przygotowanie do ćwiczeń:


- przygotowanie do egzaminu:

10

15

20

Suma godzin 90





1. Hodowle komórek zwierzęcych

2. Animal cell cultures

3. WNB, Katedra Fizjologii i Neurobiologii Molekularnej

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów I

9. Semestr – I

10. Wykład 15 godz.

11. dr hab. Agnieszka Gizak

12. Wymagania wstępne: podstawowa wiedza z genetyki, biochemii i biologii komórki

13.

Cele przedmiotu:

Poznanie metod zakładania i prowadzenia hodowli komórek zwierzęcych; poznanie

czynników i sygnałów biologicznych umożliwiających przeżycie i rozmnażanie się

tych komórek in vitro. Zapoznanie się ze współczesnymi sposobami hodowli

komórkowych i tkankowych oraz z ich zastosowaniami w biotechnologii,

bioinżynierii i medycynie.

14.


Student zna wymagania sprzętowe pracowni hodowli

komórkowych, potrafi opisać zastosowanie znajdującej się tam

aparatury laboratoryjnej; umie określić czynniki niezbędne do

zapewnienia komórkom w hodowli warunków zbliżonych do tych in

vivo i rozumie znaczenia takiego postępowania; rozumie

biologiczne mechanizmy i sygnały regulujące przeżycie i

rozmnażanie się komórek zwierzęcych in vitro; potrafi opisać

wzajemne zależności między róznymi typami komórek w hodowli;

zna techniki zakładania i prowadzenia hodowli komórek

zwierzęcych; zna współczesne narzędzia badawcze pozwalające

wykorzystać potencjał hodowli komórkowych; ma wiedzę na temat

zastosowań hodowli komórkowych i tkankowych w biotechnologii,

bioinżynierii i medycynie oraz na temat uwarunkowań etycznych i

ekonomicznych wpływających na możliwości upowszechnienia

najnowszych odkryć w tej dziedzinie. Potrafi korzystać ze

specjalistycznej literatury naukowej; dysponuje pogłębioną wiedzą

z zakresu zwierzęcych kultur in vitro.

K_W02

K_W03

K_W09

K_W10

K_U02

K_K05

15.

Treści programowe:

Techniki pracy aseptycznej; Czynniki i sygnały biologiczne umożliwiające przeżycie i

rozmnażanie się komórek ssaczych in vitro; Hodowle komórkowe ciągłe –

wyprowadzanie hodowli, metody transformacji komórek komórek ssaczych;

Hodowle komórkowe pierwotne z eksplantów tkankowych; Hodowle komórkowe 3D;

Współczesne sposoby hodowli komórek; Komórki macierzyste i hybrydowe;

Hodowle tkankowe; Zastosowanie hodowli komórek i tkanek zwierzęcych we

współczesnej biotechnologii, bioinżynierii i medycynie oraz związane z tym

problemy etyczne i ekonomiczne.

16.


„Hodowla komórek i tkanek” S. Stokłosa, PWN, 2006; publikacje naukowe

przekazane przez prowadzącego

17. Forma zaliczenia

wykład: zaliczenie na podstawie testu (K_W02, K_W03, K_W09, K_W10; K_U02;




K_K05); obowiązkowa obecność na wykładzie



Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie

aktywności


z nauczycielem:

- wykład:

15



15

Suma godzin 30


1. Immunologia ogólna

2. General immunology

3. WNB, IGiM, Zakład Biologii Patogenów i Immunologii

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów I

9. Semestr I


11. Dr Daria Augustyniak

12. Wymagania wstępne: Student posiada wiedzę podstawową z zakresu biochemii,

mikrobiologii i genetyki niezbędną do zrozumienia immunologii

13. Cele przedmiotu: Celem przedmiotu jest zapoznanie studenta z budową i

funkcjonowaniem układu odpornościowego człowieka

14. Zakładane efekty kształcenia:

Student definiuje podstawowe pojęcia z dziedziny immunologii

takie jak np. odporność wrodzona i nabyta, restrykcja MHC itp,

rozumie podstawy funkcjonowania układu odpornościowego oraz

negatywne skutki jego wadliwego działania; zna działanie

nieswoistych i swoistych mechanizmów obronnych naszego

organizmu oraz ich wzajemną kooperację,

Umie się posługiwać podstawowymi technikami

immunologicznymi, umie zaprojektować proste eksperymenty

immunologiczne i dokonać analizy uzyskanych wyników i na tej

podstawie przygotować pracę pisemną.

Współpracuje z zespołem i postępuje zgodnie z zasadami

bezpieczeństwa i higieny pracy

K_W01

K_W02

K_W06

K_U04

K_U06

K_U09

K_K02

K_K06

15. Treści programowe:

Budowa układu immunologicznego; Rozpoznawanie patogenów w odpowiedzi

nieswoistej; Budowa i funkcje receptorów rozpoznających antygeny w odpowiedzi

swoistej; Generowanie różnorodności przeciwciał i receptorów TCR; Dojrzewanie

limfocytów T i B; Mechanizmy odporności nieswoistej i swoistej oraz ich wzajemna

kooperacja; Przełamywanie mechanizmów obrony przez mikroorganizmy

Regulacja odpowiedzi immunologicznej; Zastosowanie metod immunologicznych w

diagnostyce mikrobiologicznej; Teoretyczne i praktyczne poznanie metod




stosowanych do oceny funkcjonowania układu odpornościowego: (1) ocena

właściwości fagocytarnych wybranych komórek żernych, (2) ocena aktywności

układu dopełniacza, (3) ocena stężenia antygenów w materiale biologicznym

immunoenzymatyczną metodą ELISA.

16. Zalecana literatura:

Gołąb J, Jakóbisiak M, Lasek W, Stokłosa T. Immunologia. PWN, 2011, (wybrane

rozdziały); Abbas A, Lichtman A., Pillai S. Cellular and Molecular Immunology, 6th

edition, Saunders Elsevier, 2006 (wybrane rozdziały); Immunochemia w biologii

medycznej. Metody laboratoryjne. Podręcznik pod red. I. Kątnik-Prastowskiej, PWN

2009. (wybrane rozdziały)

17. Forma zaliczenia:

Wykład: egzamin w formie testu (K_W01, K_W02, K_W06)

Laboratorium: zaliczenie na podstawie pracy pisemnej (K_W01, K_W02, K_W06,

K_U09) i aktywności na zajęciach (K_U04, K_U06, K_K02; K_K06)




aktywności

Godziny zajęć z nauczycielem:

- wykład:

- laboratorium:

30

30


- przygotowanie do zajęć

- opracowanie raportu z zajęć


5

10

35

Suma godzin 110


1. Język obcy nowożytny (angielski): B2+

2. Foreign language course (English): B2+

3. Studium Praktycznej Nauki Języków Obcych, UWr

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów I

9. Semestr II

10. Konwersatorium 60 godz.

11. Zespół lektorów języka angielskiego

12. Wymagania wstępne: biegłość językowa na poziomie B2 zgodnie ze skalą

Europejskiego Systemu Opisu Kształcenia Językowego

13. Cele przedmiotu: biegłość językowa na poziomie B2+

14.


Student zna słownictwo z szerokiego zakresu tematów z

uwzględnieniem słownictwa specjalistycznego związanego z

kierunkiem studiów;

Wykorzystuje poznane słownictwo specjalistyczne w dyskusjach

tematycznych i sytuacjach zawodowych; potrafi rozwijać i

przekonująco uzasadniać własne poglądy, rozumie specjalistyczne

K_U08

K_U09

K_U10




artykuły z zakresu studiowanej dziedziny; rozumie sens wykładów

lub konferencji;

Student jest aktywny na zajęciach z języka angielskiego, jest

świadomy znaczenia poznania języka specjalistycznego ze swojej

dziedziny, kreatywny i otwarty na współpracę w grupie

K_K01

15.

Treści programowe:

Każdorazowo zalecane przez lektora tematy dotyczące wiedzy ogólnej i

specjalistycznej pozwalające na ocenę postępów w kształceniu językowym


Materiały wybrane przez lektora; internet; platform językowa

17.

Forma zaliczenia:

Konwersatorium: egzamin w formie sprawdzianu praktycznego (K_U08; K_U09;

K_U10); ocena aktywności na zajęciach (K_U08; K_U09; K_U10; K_K01)

18. Język wykładowy: angielski



aktywności


- konwersatorium:

60

Praca własna studenta :

- przygotowanie do zajęć:


20

20

Suma godzin 100


1. Metabolizm

2. Metabolism

3. WNB, IBE, Zakład Fizjologii Molekularnej Roślin oraz Katedra Fizjologii i

Neurobiologii Molekularnej

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów: I

9. Semestr: I

10. wykład 30 godz., seminarium 30 godz.

11. prof. dr hab. Grażyna Kłobus, dr hab. prof. Dariusz Rakus, dr Agnieszka Sok-

Grochowska, dr Ewa Młodzińska

12. Wymagania wstępne: podstawowy zakres wiedzy z biochemii, biofizyki i biologii

komórki

13. Cele przedmiotu: uzyskanie wiedzy o organizacji, regulacji oraz zaburzeniach

wybranych szlaków metabolicznych

14.


Student zna podstawy termodynamiki i kinetyki enzymatycznej; ma

wiedzę dotyczącą reakcji i składu enzymatycznego wybranych

procesów metabolicznych. Ma wiedzę dotyczącą znaczenia

izoenzymów, ich subkomórkowej i tkankowej dystrybucji, tworzenia

wieloenzymatycznych kompleksów oraz zaburzeń metabolizmu; ma

wiedzę na temat wielofunkcyjności niektórych enzymów.

K_W02

K_W03

K_W06

K_U02

K_U03




Student wykorzystuje materiały źródłowe tradycyjne i elektroniczne

do opisu i dyskusji problemów związanych z funkcjonowaniem

szlaków metabolicznych (regulacja, zaburzenia); Student analizuje

dane pochodzące z różnych źródeł, poprawnie wnioskuje i interpretuje

zjawiska oraz procesy metaboliczne.

Student dostrzega potrzebę stałego pozyskiwania i uzupełniania

wiedzy przyrodniczej oraz jest świadomy potrzeby podnoszenia

kwalifikacji zawodowych

K_U07

K_K01

K_K05

15.

Treści programowe:

Podstawowe pojęcia termodynamiki, podstawy kinetyki enzymatycznej, sposoby

regulacji aktywności enzymów w komórce zwierzęcej, tworzenie

wieloenzymatycznych kompleksów, zjawisko tunelowania; metabolizm

węglowodanów, białek, tłuszczów i kwasów nukleinowych w komórkach

zwierzęcych; uzyskiwanie energii w warunkach tlenowych i beztlenowych;

wielofunkcyjność enzymów metabolizmu węglowodanów w komórkach zwierzęcych;

metabolizm węglowodanów roślinnych (synteza i degradacja skrobi, sacharozy,

fruktanów oraz polisacharydów ściany komórkowej; regulacja szlaków);

klasyfikacja i budowa związków lipidowych, synteza kwasów tłuszczowych i

tłuszczów prostych (woski, suberyna i kutyna, ciała oleiste), szlak prokariotyczny i

eukariotyczny syntezy błonowych tłuszczowców złożonych; metabolizm białek w

komórkach roślinnych - zaburzenia metaboliczne, sekwencje sygnaturowe, typy i

etapy ubikwitynacji białek – udział kompleksu enzymatycznego E1,E2 i E3,

proteasomy: budowa i mechanizm degradacji białek

16.


“Biochemistry and Molecular Biology of Plants” - Buchanan B.B. i in. 2000, pp. 412

-454 i 456 - 526; „Biochemia”, J.M. Berg, L. Stryer, J. L. Tymoczko, PWN 2005 (lub

nowsze wydanie)

17.

Forma zaliczenia

wykład: egzamin pisemny (K_W02, K_W03, K_W06)

seminarium: zaliczenie na podstawie projektu (K_U02, K_U03, K_U07; K_K01,

K_K05); pracy pisemnej (K_W02, K_W03, K_W06) i prezentacji (K_W03, K_W06;

K_U02; K_K01)

laboratorium: zaliczenie na podstawie pracy pisemnej (K_W03, K_W06, K_U03,

K_U07)





z nauczycielem:

- wykład:

- seminarium:

30

30





20

20

20

Suma godzin 120





1. Molekularna regulacja wzrostu roślin

2. Molecular regulation of plant growth

3. WNB, IBE, Zakład Fizjologii Molekularnej Roślin

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów I

9. Semestr I

10. wykład 15 godz., laboratorium 25 godz.

11. dr hab. Katarzyna Kabała, dr Ewa Młodzińska, dr Małgorzata Reda

12. Wymagania wstępne: wiedza z fizjologii roślin i biologii molekularnej roślin

13.

Cele przedmiotu: uzyskanie wiedzy o procesach fizjologicznych zachodzących w

czasie różnych etapów wzrostu i rozwoju rośliny oraz ich regulacji przez hormony

roślinne i czynniki zewnętrzne

14.


Student zna hormonalną transdukcję sygnału w roślinach (synteza,

transport, receptory). Zna molekularne podłoże działania

morfogenetycznych receptorów światła (przyjęcie bodźca,

przeniesienie sygnału, zmiany właściwości błon i ekspresji genów).

Wskazuje udział fitohormonów i światła w różnych etapach

ontogenezy rośliny.

Student wykorzystuje różne biotesty do wykazania zróżnicowanego

działania fitohormonów. Wylicza parametry wzrostowe. Na

podstawie oznaczania wybranych aktywności ocenia możliwości

wzrostu i rozwoju roślin. Korzysta z materiałów źródłowych.

Student przeprowadza obiektywną autoocenę własnej pracy. Jest

dokładny i obowiązkowy. Potrafi pracować w grupie. Jest świadomy

potrzeby bezpiecznej pracy w laboratorium i dbałości o sprzęt

pomiarowy.

K_W03

K_W04

K_U02

K_U06

K_K02

K_K06

15.

Treści programowe:

Molekularny mechanizm działania hormonów roślinnych - synteza, regulacja

poziomu, receptory (auksyny, gibereliny, cytokininy, brasinosteroidy, etylen, ABA,

jasmoniany, salicylany). Molekularne działanie morfogenetycznych receptorów

światła (fitochrom, kryptochrom, fototropiny). Biotesty wykazujące zróżnicowane

działanie hormonów. Różne metody hodowli i pomiaru wzrostu roślin. Parametry

wzrostowe. Mutanty z zaburzoną syntezą lub percepcją hormonów.

16.


Taiz L, Zeiger E, Plant Physiology, 2010, Sinauer Associates, Inc., wydanie V,

rozdziały: 14,15,16,17,18,19,20,21,22,23,24,25,26; Kopcewicz J, Lewak S,

Fizjologia Roślin, 2012, PWN, str. 143-198 i 474-633

17.

Forma zaliczenia:

wykład: zaliczenie na podstawie testu (K_W03, K_U02)

laboratorium: zaliczenie na podstawie testu (K_W03, K_U02), aktywności na

zajęciach (K_U06, K_K02, K_K06) i pracy pisemnej (K_W04, K_U06)




aktywności





z nauczycielem:

- wykład:

- laboratorium:

15

25



- opracowanie wyników:


- przygotowanie do testów:

5

10

10

20

Suma godzin 85


1. Molekularne mechanizmy komunikacji u roślin

2. Molecular mechanisms of communication in plants

3. WNB, IBE, Zakład Biologii Rozwoju Roślin

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów: II

9. Semestr: III

10. Wykład 15 godz., laboratorium 15 godz., konwersatorium 15 godz.

11. dr Katarzyna Sokołowska, dr Alicja Banasiak, dr Alicja Dołzbłasz, dr Elżbieta

Myśkow

12. Wymagania wstępne: podstawowe wiadomości z biologii rozwoju i fizjologii roślin

13. Cele przedmiotu: Poznanie szlaków komunikacji krótko- i długodystansowej oraz

zrozumienie ich znaczenia dla zintegrowanego rozwoju i funkcjonowania rośliny

14.


Student zna szlaki komunikacji krótko- i

długodystansowej u roślin oraz mechanizmy ich

regulacji na poziomie molekularnym; rozumie

ich znaczenie w prawidłowym rozwoju i

funkcjonowaniu organizmów roślinnych. Zna

narzędzia badawcze wykorzystywane do analizy

szlaków komunikacji międzykomórkowej u

roślin.

Potrafi scharakteryzować komunikację

symplastową i apoplastową, rozumie znaczenie

pasm floemowych i ksylemowych w sygnalizacji

dalekiego zasięgu, a także rolę auksyny w

integracji organizmu roślinnego. Potrafi

zaplanować i przeprowadzić eksperymenty

wyciągając z nich wnioski;

Odczuwa potrzebę studiowania materiałów

naukowych i poszerzania swojej wiedzy

K_W01

K_W03

K_W09

K_U01

K_U06

K_K05

15.

Treści programowe:

Ultrastruktura plazmodezm, regulacja transportu symplastowego, rola kalozy w

komunikacji krótko- i długodystansowej, floemowe cząsteczki sygnalizacyjne,

znaczenie ściany komórkowej dla sygnalizacji apoplastowej, regulacja dystrybucji

auksyny w procesach rozwojowych i jej znaczenie dla komunikacji




międzykomórkowej.

16.


Hejnowicz Z. Anatomia i histogeneza roślin naczyniowych. PWN. 2002. – wybrane

rozdziały; Sokołowska K, Sowiński P [red], Symplasmic Transport in Vascular

Plants. Springer Science+Business Media. 2013 – wybrane rozdziały.

17.

Forma zaliczenia:

wykład: egzamin w formie testu (K_W01, K_W03, K_W09)

laboratorium: zaliczenie na podstawie testu (K_W01, K_W03, K_W09),

konwersatorium: zaliczenie na podstawie prezentacji (K_W01, K_W03, K_U02)

iaktywności na zajęciach (K_W03, K_W09, K_U01, K_U06, K_K05)




aktywności


z nauczycielem:

- wykład:

- laboratorium:

- konwersatorium:

15

15

15


- przygotowanie do zajęć



10

10

15

Suma godzin 80


1. Molekularne mechanizmy różnicowania komórek i tkanek

2. Molecular differentiating mechanisms of cells and tissues

3. WNB, IBE, Zakład Biologii Rozwoju Zwierząt

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów: II

9. Semestr III

10. Wykład 15 godz., konwersatorium 30 godz.

11.

dr hab. prof. Małgorzata Daczewska, dr hab. Bożena Simiczyjew, dr Izabela

Jędrzejowska, dr Marta Mazurkiewicz-Kania, dr Arnold Garbiec, dr Magda

Dubińska-Magiera, dr Marta Migocka-Patrzałek

12. Wymagania wstępne : Podstawowy zakres wiadomości z biochemii, genetyki,

biologii komórki i biologii rozwoju.

13. Cele przedmiotu: Student zapoznaje się z molekularnymi i cytologicznymi

mechanizmami wybranych procesów rozwojowych.

14.


Student zna przebieg wybranych procesów

rozwojowych,

rozumie mechanizmy różnicowania wybranych komórek

i tkanek, zna przebieg i aspekt molekularny

różnicowania mięśni szkieletowych; znaczenie komórek

K_W01

K_W02




macierzystych; mechanizmy migracji komórek;

molekularne mechanizmy śmierci komórkowej.

Student potrafi wyjaśnić: molekularne mechanizmy

migracji komórek, rolę komórek macierzystych w

procesach odnowy komórkowej; potrafi wyjaśnić

przebieg i molekularny mechanizm różnicowania się

mięśni szkieletowych; molekularne mechanizmy śmierci

komórkowej.

Student ma potrzebę uzupełniania wiedzy na temat

molekularnych i cytologicznych mechanizmów

różnicowania komórek i tkanek

K_U02

K_K01

15.

Treści programowe:

Molekularne mechanizmy różnicowania wybranych komórek i tkanek;

przebieg i molekularny mechanizm różnicowania mięśni szkieletowych; komórki

macierzyste; mechanizmy migracji komórek; molekularne mechanizmy śmierci

komórkowej

16.


Podstawy embriologii zwierząt – Jura, Klag (red.) PWN W-wa 2005,

Developmental biology – Scott F. Gilbert Sinauer Associates 2000, Molecular

Prace przeglądowe udostępnione przez prowadzących

17.

Forma zaliczenia:

Wykład: egzamin w formie testu (K_W01; K_W02); warunkiem uzyskania

zaliczenia jest obecność na 5 wykładach.

konwersatorium: zaliczenie na podstawie prezentacji (K_U02, K_K01)




aktywności


z nauczycielem:

- wykład:

- konwersatorium

15

30

Praca własna studenta




15

15

15

Suma godzin 90


1. Neurobiologia komórkowa

2. Cellular neurobiology

3. WNB, Katedra Fizjologii i Neurobiologii Molekularnej

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów I

9. Semestr II

10. Wykład: 20 godz., seminarium: 10 godzin




11. Prof. dr hab. Jerzy Mozrzymas, dr Dominika Drulis-Fajdasz

12. Wymagania wstępne: podstawowa wiedza z biologii komórki, fizjologii i biochemii

13.

Cele przedmiotu: zrozumienie podstawowych mechanizmów funkcjonowania

ośrodkowego układu nerwowego na poziomie molekularnym, komórkowym, sieci

neuronalnych i kognitywnym

14.


Student zna mechanizmy pobudliwości komórek pobudliwych i

potrafi określić rolę poszczególnych kanałów jonowych w tym

procesie. Zna podstawowe techniki elektrofizjologiczne, służące

do opisu pobudliwości i potrafi określić zakres stosowalności

poszczególnych metod. Potrafi zastosować podstawowe

zależności ilościowe do opisu zjawisk pobudliwości neuronalnej.

Student rozumie mechanizmy transmisji synaptycznej

pobudzającej i hamującej oraz potrafi wnioskować na tej

podstawie o funkcjach logicznych lokalnych sieci neuronalnych.

Zna podstawowe rodzaje pamięci i potrafi wskazać

doświadczenia behawioralne, w których mogą być one badane.

Potrafi opisać podstawowe mechanizmy molekularne i

komórkowe, odpowiedzialne za tworzenie śladów pamięciowych

w neuronach ze szczególnym uwzględnieniem zjawisk

plastyczności synaptycznej. Korzysta z materiałów źródłowych.

Ćwiczenia seminaryjne umożliwią studentowi praktyczne

wykorzystanie wiedzy uzyskiwanej na wykładach poprzez

rozwiązywanie konkretnych problemów w formie doświadczeń

neurofizjologicznych in silico (symulacje komputerowe),

rozwiązywanie zadań problemowo-obliczeniowych oraz

samodzielnie przygotowane prezentacje wybranych problemów

neurobiologii w postaci krótkich wystąpień seminaryjnych.

K_W01

K_W02

K_W05

K_U02

K_U05

K_U07

K_K01

K_K02

15.

Treści programowe:

Transmisja synaptyczna i jej modulacja homeostatyczna, rozwojowa i

farmakologiczna. Hamowanie fazowe i toniczne. Opis struktury i funkcji sieci

neuronalnych kory mózgowej i hipokampa w kontekście funkcji kognitywnych i

sensorycznych. Podstawowe rodzaje pamięci oraz doświadczeń behawioralnych

pozwalających na opis uczenia się i zapamiętywania w określonych

paradygmatach. Omówienie podstawowych mechanizmów tworzenia śladów

pamięciowych na poziomie molekularnym i komórkowym w nawiązaniu do

obserwacji w doświadczeniach behawioralnych. Zjawiska plastyczności

synaptycznej i neuroplastyczności – podstawowe mechanizmy molekularne i

komórkowe oraz implikacje kognitywne.

16.


„Podstawy biologii komórki”, Alberts i in., PWN 2005;„Neurobiologia” Longstaff A,

PWN 2005;„Principles of neural science”, Kandel E.R, Schwarz J.H, Jessel T.M,

McGraw-Hill 2000; „Wybrane zagadnienia z biofizyki”, Miękisz S, Hendrich A,

Volumed 1998;“Neuroscience”, Bear M.F., Connors B.W., Paradiso M.A.

(2007);“Ion channels – from structure to function” Kew J, Davies K, Oxford 2010.

– wybrane rozdziały

17.

Forma zaliczenia:

wykład: egzamin w formie testu (K_W01; K_W02)

seminarium: zaliczenie na podstawie prezentacji (K_U02; K_U05; K_U07; K_K01),

projektu (K_W05; K_U05; K_K01; K_K02) i testu (K_W01; K_W02)








z nauczycielem:

- wykład:

- seminarium:

20

10





10

10

10

Suma godzin 60


1. Podstawy przedsiębiorczości

2. Introduction to business management

3. Wydział Prawa, Administracji i Ekonomii

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów: I

9. Semestr: I

10. Wykład 15 godz.

11. Prof. dr hab. Urszula Kalina-Prasznic

12. Wymagania wstępne: brak

13.

Cele przedmiotu: pozyskanie wiedzy związanej z formalnymi wymogami podjęcia

działalności na własny rachunek oraz jej uwarunkowaniami ekonomiczno-

prawnymi.

14.


Student rozumie pojęcia i zasady z zakresu ochrony własności

przemysłowej i prawa autorskiego oraz konieczność zarządzania

zasobami własności intelektualnej, potrafi korzystać z zasobów

informacji patentowej. Zna ogólne zasady tworzenia i rozwoju form

indywidualnej przedsiębiorczości wykorzystującej wiedzę z zakresu

genetyki i biologii eksperymentalnej

Wykazuje umiejętność krytycznej oceny danych pochodzących z

różnych źródeł, formułuje i uzasadnia własne opinie na ich

podstawie; Samodzielnie planuje własną karierę zawodową i

naukową.

Wykazuje inicjatywę i samodzielność w działaniu wdrażając zasady

przedsiębiorczości w pracy.

K_W12

K_W13

K_U07

K_K07

15.

Treści programowe:

Poznanie form organizacyjno-prawnych prowadzenia działalności gospodarczej;

poznanie prawnej regulacji zasady swobody prowadzenia działalności

gospodarczej; zrozumienie roli umów w obrocie gospodarczym /umowy nazwane i

nienazwane/; poznanie przejawów przestępczości menedżerskiej; poznanie form

nieuczciwej konkurencji, ochrona własności przemysłowej, prawo autorskie

16.


P. Harosz, J. R. Antkowiak, Prawne podstawy przedsiębiorczości, Oficyna a Wolters

Kluwer busieness, Warszawa, 2007, T. Szymanej, Swoboda działalności

gospodarczej, Warszawa 2010, C. Kosikowski, Przedsiębiorca w prawie polskim na




tle prawa europejskiego, Warszawa 2003.

17. Forma zaliczenia:

Wykład: zaliczenie na podstawie testu (K_W12; K_W13; K_U07;; K_K07)





z nauczycielem:

- wykład:

15




10

20

Suma godzin 45


1. Postępy w genetyce i biologii eksperymentalnej

2. Progress in genetics and experimental biology

3. WNB, IBE

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów: I, II

9. Semestr: I, II, III, IV

10. seminarium 120 godzin (30 godzin na semestr)

11. pracownicy Instytutu Biologii Eksperymentalnej

12. Wymagania wstępne: brak

13. Cele przedmiotu: wykorzystywanie literatury naukowej do badań własnych

14.


Student wie jak korzystać ze światowej literatury naukowej,

zna zasady pisania i edycji pracy naukowej oraz

przygotowywania prezentacji. Zna zasady przeglądania baz

czasopism i baz danych. Zna zgodne z prawem sposoby

wykorzystania wyszukanych informacji. Rozumie znaczenie

dyskusji tematycznej.

Student wykorzystuje najnowszą literaturę naukową do

opracowania i przedstawienia tematów dotyczących bieżących

badań i osiągnięć naukowych. Wybiera najlepszy sposób jego

omówienia i prezentacji. Prowadzi dyskusję wokół

przedstawianego tematu.

Student jest świadomy znaczenia korzystania z najnowszej

literatury naukowej. Rozumie znaczenie poprawnego

przedstawienia wyników badań oraz pisania prac naukowych i

przygotowywania prezentacji zgodnie z obowiązującymi

zasadami.

K_W03

K_W06

K_W07

K_U02

K_U03

K_U07

K_U08

K_K01

K_K02

K_K04

K_K05

15.

Treści programowe:

Każdorazowo wskazywane przez prowadzącego tematy do opracowania i

zaprezentowania. Szczegółowe treści merytoryczne przynależą do tematyki




badawczej realizowanej przez poszczególne jednostki naukowe w ramach

proponowanych tematów.


Do każdego realizowanego tematu literatura polecana przez prowadzącego.

17.

Forma zaliczenia:

Seminarium: zaliczenie na podstawie prezentacji (K_W03; K_W06; K_W07;

K_U02; K_U03; K_U07; K_U08; K_K01; K_K02; K_K04; K_K05) i aktywności na

zajęciach (K_W03; K_W06; K_W07; K_U07; K_K01; K_K02; K_K04; K_K05)

18. Język wykładowy: polski lub angielski



aktywności


- seminarium:

120 (30 na semestr)




60 (15 na semestr)

60 (15 na semestr)

Suma godzin 240

Liczba punktów ECTS 16 (4 na semestr)

1. Przygotowanie pracy dyplomowej (magisterskiej)

2. Preparation of M.Sc. thesis

3. WNB, IBE

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów: II

9. Semestr: III i IV

10. Praca dyplomowa bez limitu godzin

11. Wyznaczony promotor pracy dyplomowej

12. Wymagania wstępne: wiadomości i umiejętności z zakresu studiów I i II stopnia

13. Cele przedmiotu: przygotowanie pracy dyplomowej

14.


Student ma poszerzoną wiedzę z zakresu tematyki związanej z

tematem pracy dyplomowej; zna zasady planowania i

finansowania badań naukowych, zna i stosuje narzędzia

informatyczne i statystyczne do prowadzenia badań; wie jak

korzystać z literatury naukowej dla prowadzenia własnych

badań z zastosowaniem metod właściwych przedmiotowi analiz

Student prowadzi samodzielne badania związane z tematem

własnej pracy dyplomowej; zbiera, opracowuje i prezentuje

dane; wyciąga wnioski dotyczące badań; dyskutuje uzyskane

wyniki z rezultatami prac o podobnej tematyce korzystając z

najnowszej literatury naukowej; przygotowuje pracę

dyplomową oraz przygotowuje się do egzaminu dyplomowego;

samodzielnie planuje własną karierę zawodową.

K_W03

K_W04

K_W05

K_W08

K_W09

K_W10

K_W11

K_W12

K_U01

K_U02

K_U03

K_U04

K_U05

K_U06

K_U07




Rozumie znaczenie poprawnego przedstawienia wyników badań

oraz pisania prac naukowych i przygotowywania prezentacji

zgodnie z obowiązującymi zasadami.

K_U09

K_K03

K_K04

K_K05

K_K06

15.

Treści programowe:

Szczegółowe treści merytoryczne przynależą do tematyki badawczej związanej z

przygotowywaną pracą dyplomową


Każdorazowo literatura polecana przez promotora

17.

Forma zaliczenia:

Praca dyplomowa: zaliczenie na podstawie pracy pisemnej (K_W03; K_W04;

K_W05; K_W08; K_W09; K_W10; K_W11; K_W12; K_U01; K_U02; K_U03;

K_U04; K_U05; K_U06; K_U07; K_U09; K_K03; K_K04; K_K05; K_K06; K_K07).





- praca dyplomowa:

bez limitu godzin


- zebranie danych:



- napisanie pracy dyplomowej:

bez limitu godzin

bez limitu godzin

bez limitu godzin

bez limitu godzin

Suma godzin bez limitu

Liczba punktów ECTS 30 (15 pkt. w sem. III, 15 pkt. w sem. IV)

1. Regulacja cyklu komórkowego

2. Regulation of cell cycle

3. WNB, IBE, Zakład Genetyki i Fizjologii Komórki

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów II

9. Semestr III


11. prof. dr hab. Robert Wysocki

12. Wymagania wstępne: zaawansowana wiedza z genetyki, biochemii i biologii

molekularnej

13. Cele przedmiotu: zrozumienie mechanizmów regulacji cyklu komórkowego i ich

roli w utrzymaniu stabilności genomu

14.


Student charakteryzuje punkty kontrolne cyklu komórkowego;

rozumie mechanizmy kontroli wzrostu i proliferacji komórek; zna

regulatory cyklu komórkowego; objaśnia jak sygnały

zewnątrzkomórkowe wpływają na zmiany w przebiegu cyklu

komórkowego; rozumie rolę zaburzeń kontroli cyklu komórkowego

w rozwoju nowotworów; zna metody stosowane w badaniach nad

K_W02

K_W04

K_W09

K_W11

K_U01




cyklem komórkowym.

Student posługuje się zaawansowanymi technikami i narzędziami

badawczymi stosowanymi w badaniach na cyklem komórkowym;

wykorzystuje biegle literaturę naukową w zakresie biologii

molekularnej w języku ojczystym i angielskim; zbiera i interpretuje

dane empiryczne, na podstawie wyników formułuje właściwe i

kreatywne wnioski.

Student analizuje zdobytą wiedzę z zakresu nauk biologicznych

odczuwając potrzebę jej stałego pogłębiania; jest otwarty na

dyskusje i aktywnie uczestniczy w pracy zespołowej; wykazuje

odpowiedzialność za ocenę zagrożeń wynikających ze stosowanych

technik i aparatury badawczej; dba o przestrzeganie warunków

bezpiecznej pracy.

K_U04

K_U06

K_K02

K_K03

K_K04

K_K06

15.

Treści programowe:

Fazy cyklu komórkowego, pojęcie punktu kontrolnego cyklu komórkowego.

Kinaza zależna od cyklin jako główny regulator cyklu komórkowego. Regulacja

cyklu komórkowego na poziomie transkrypcji, degradacji białek i modyfikacji

post-translacyjnych białek. Duplikacja i segregacja chromosomów. Regulacja

cyklu komórkowego drożdży. Kontrola podziałów komórkowych i wzrostu

komórek u zwierząt. Kontrola cyklu komórkowego w odpowiedzi na uszkodzenia

DNA. Zaburzenia w kontroli cyklu komórkowego jako przyczyna powstawania

nowotworów. Metody badania dynamiki cyklu komórkowego.

16.


„The Cell Cycle. Principles of Control”; D.O. Morgan, New Science Press 2007;

„Molecular Biology of the Cell”, 5th Ed, Alberts i wsp., Garland Science, 2008.

17.

Forma zaliczenia:

wykład: egzamin w formie testu (K_W02; K_W04; K_W09; K_K04)

laboratorium: zaliczenie na podstawie testu (K_W04; K_W09; K_W11; K_U06) i

aktywności na zajęciach (K_W04; K_W09; K_W11; K_U01,K_U04; K_U06;

K_K02; K_K03; K_K04; K_K06)





z nauczycielem:

- wykład:

- laboratorium:

15

30





10

10

20

Suma godzin 85





1. Regulacja ekspresji genów

2. Regulation of gene expression

3. WNB, IBE, Zakład Genetyki i Fizjologii Komórki

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów I

9. Semestr II


11. dr Iwona Migdał

12. Wymagania wstępne: zaawansowana wiedza z genetyki i biologii molekularnej

13.

Cele przedmiotu: zrozumienie mechanizmów regulacji ekspresji genów u

prokariontów i eukariontów na poziomie transkrypcji, dojrzewania transkryptów,

translacji i modyfikacji post-translacyjnych białek.

14.


Student charakteryzuje etapy ekspresji genów; rozumie

mechanizmy kontroli ekspresji genów; zna różnice w kontroli

ekspresji genów między prokariontami i eukariontami; objaśnia jak

sygnały zewnątrzkomórkowe wpływają na zmiany w ekspresji

genów; rozumie rolę zaburzeń kontroli ekspresji genów w rozwoju

nowotworów; zna metody stosowane w badaniach nad ekspresją

genów.

Student posługuje się zaawansowanymi technikami i narzędziami

badawczymi stosowanymi w badaniach ekspresji genów;

wykorzystuje biegle literaturę naukową w zakresie biologii

molekularnej w języku ojczystym i angielskim; zbiera i interpretuje

dane empiryczne, na podstawie wyników formułuje właściwe i

kreatywne wnioski.

Student analizuje zdobytą wiedzę z zakresu nauk biologicznych

odczuwając potrzebę jej stałego pogłębiania; jest otwarty na

dyskusje i aktywnie uczestniczy w pracy zespołowej; wykazuje

odpowiedzialność za ocenę zagrożeń wynikających ze stosowanych

technik i aparatury badawczej.

K_W03

K_W09

K_W11

K_U01

K_U02

K_U04

K_U06

K_K02

K_K03

K_K04

K_K06

15.

Treści programowe:

Synteza, dojrzewanie i transport kodującego i niekodującego RNA. Synteza

białek. Podstawy regulacji ekspresji genów – etapy regulacji; regulacja inicjacji

transkrypcji; białka regulatorowe przyłączające się do DNA. Regulacja ekspresji

genów prokariotycznych – przykłady operonów. Regulacja ekspresji genów

eukariotycznych – regulacja inicjacji transkrypcji w kontekście chromatyny,

alternatywne dojrzewanie RNA, degradacja RNA i kontrola jakości RNA,

regulacyjne RNA, kontrola post-transkrypcyjna (post-translacyjna obróbka białek,

degradacja białek). Metody stosowane w badaniach regulacji ekspresji genów.

16.


„Podstawy biologii komórki”, Alberts i in., PWN 2009„Molecular Biology of the

Cell”, 5th Ed, Alberts i wsp., Garland Science, 2008.

17.

Forma zaliczenia:

wykład: egzamin w formie testu (K_W03, K_W09, K_W11)

laboratorium: zaliczenie na podstawie testu (K_W03, K_W09, K_W11) i

aktywności na zajęciach (K_U01, K_U02, K_U04, K_U06, K_K02, K_K03, K_K04,

K_K06)








z nauczycielem:

- wykład:

- laboratorium:

15

30





15

10

20

Suma godzin 90


1. Roślinne hodowle in-vitro

2. Plant tissue culture in vitro

3. WNB, Jednostka Ogród Botaniczny – Pracownia Kultur Tkankowych

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów I

9. Semestr I


11. Prof. dr hab. Krystyna Kromer

12. Wymagania wstępne: podstawowa wiedza z zakresu biologii, morfologii, fizjologii,

biochemii i genetyki roślin

13.

Cele przedmiotu:

Współczesne zastosowania roślinnych hodowli komórkowych i tkankowych w

biotechnologii roślin. Potencjał i możliwości jakie niesie technika roślinnych

hodowli in vitro w rozwiązywaniu problemów natury biologicznej, fizjologicznej,

genetycznej oraz jej znaczenie w rolnictwie, ochronie różnorodności biologicznej i

farmakologii. Rola kultury in vitro w statusie zdrowotnym roślin uprawnych i

interakcje z mikroorganizmami.

Poznanie podstawowych technik, osiągnięć i zagrożeń związanych z

biotechnologią. Znaczenie potencjalnych możliwości istniejących w organizmach

roślin w rozwijaniu technologii pro środowiskowych. Od rozwoju nowych odmian

roślin po biogospodarkę i zapewnienie roślinie uprawnej możliwości

odpowiedniego współdziałania z mikroorganizmami.

14.


Student definiuje podstawowe zasady dotyczące procesów

rozmnażania i regeneracji roślin oraz wykazuje znajomość

techniki kultur in vitro. Student potrafi opisać mechanizmy i

sygnały warunkujące rozmnażanie komórek roślinnych in

vitro. Zna techniki zakładania i prowadzenia hodowli. Potrafi

zaplanować badania z wykorzystaniem tych hodowli oraz zna

ich współczesne zastosowania; student opisuje i interpretuje

wyniki prowadzonych doświadczeń i artykułuje zdobytą

wiedzę; student definiuje znaczenie biotechnologii w

K_W03

K_W06

K_W07

K_W09

K_U01

K_U04




zachowaniu gatunków ginących i krytycznie zagrożonych, w

podwyższaniu statusu zdrowego materiału roślinnego,

tworzeniu nowych odmian, produkcji metabolitów wtórnych

w bioreaktorach; student zna terminologię określające

zróżnicowanie biologiczne i ma świadomość rozwoju nowych

kierunków nauk eksperymentalnych; zna zagrożenia i

procedury postępowania związane z bezpieczeństwem i

higieną pracy; rozumie związki między osiągnięciami biologii

a możliwościami ich wykorzystania w życiu społeczno-

gospodarczym

Student stosuje w praktyce podstawowe techniki i narzędzia

badawcze używane w kulturach in vitro, umie prowadzić

proste zadanie badawcze pod okiem opiekuna; wykorzystuje

materiały źródłowe i elektroniczne do opisu i dyskusji

problemów biologicznych; wykonuje zadania badawcze w

laboratorium, i potrafi je interpretować sporządza proste

ekspertyzy

Student dostrzega potrzebę stałego pozyskiwania i

uzupełniania wiedzy przyrodniczej; student jest otwarty na

dyskusje i aktywnie uczestniczy w pracy zespołowej; student

jest świadom konieczności podnoszenia swoich kwalifikacji

K_U05

K_U08

K_K02

K_K05

K_K06

15.

Treści programowe:

Osiągnięcia w hodowli komórek, tkanek i organów roślinnych. Przebieg

różnicowania embrionów somatycznych, pąków, korzeni i kalusa. Metody

klonowania komórek. Otrzymywanie roślin haploidalnych i wykorzystania linii

podwojonych haploidów. Fuzja protoplastów i tworzenia mieszańców

somatycznych - hybrydów i cybrydów. Transformacja genetyczna komórek

roślinnych. Zmienność somaklonalna i inne aplikacyjne zastosowania tej techniki.

Biosynteza metabolitów wtórnych i kultury roślinne w bioreaktorach. Uprawy

molekularne w produkcji białek, przeciwciał i antygenów. Bakterie

wykorzystywane w produkcji roślinnej in vitro. Fitoremediacja. Kontrowersje

związane z niektórymi aspektami biotechnologii.

Technologia rozmnażania klonalnego: inicjacja kultury, eksplantaty pierwotne i

drobnoustroje endogenne (patogeny, saprofity, symbionty). Wykrywanie i

eliminowanie drobnoustrojów bezobjawowo zasiedlających eksplantaty. Terapia

antybiotykowa in vtro, naturalne substancje antybakteryjne i antygrzybowe.

Mikrorozmnażanie z wykorzystaniem różnych procesów rozwojowych, czynniki i

sygnały umożliwiające rozmnażanie komórek, tkanek i organów. Monitoring

mikrobiologiczny podczas namnażania. Ukorzenianie, elongacja pędów i

przygotowanie do ukorzeniania; Aklimatyzacja, stan fizjologiczny roślin,

aktywność fotosyntetyczna i bilans wodny. Biotyzacja (bakteryzacja i mikoryzacji)

kultury w stadium aklimatyzacji, indukowanie molekularnych mechanizmów

odporności jako sposobu zabezpieczenia przed stresem środowiskowym. Rola

szczepionek glebowych w precyzyjnej gospodarce agrarnej.

Znaczenie kultury in vitro w hodowli oraz w poszukiwaniu nowych genotypów

roślin uprawnych odpornych na choroby. Metody uwalniania roślin od wirusów.

16.


„Hodowla komórek i tkanek roślinnych” M. Zenkteler, PWN 1984; „Biotechnologia

roślin” Red. S. Malepszy, PWN, 2005 i 2010; „Podstawy fizjologii roślin” J.

Kopcewicz i S. Lewak, PWN, 2004

17.

Forma zaliczenia:

Wykład: egzamin w formie pracy pisemnej (K_W03; K_W06; K_W07; K_W09)

Laboratorium: zaliczenie na podstawie pracy pisemnej (K_W03; K_W06; K_W07;




K_W09); sprawdzianu praktycznego (K_U01; K_U04; K_U05; K_U08) i

aktywności na zajęciach (K_W06; K_W09; K_U04; K_K02; K_K05; K_K06).



Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin


- wykład:

- laboratorium

15

15




- przygotowanie do egzaminu

10

5

15

Suma godzin 60


1. Techniki badawcze w biologii eksperymentalnej

2. Research techniques in experimental biology

3. WNB, IBE

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów I

9. Semestr I i II

10. Laboratorium 240 godz. (120 godz. na semestr)

11. wyznaczony promotor pracy dyplomowej lub nauczyciele akademiccy

każdorazowo wskazani przez koordynatorów dydaktycznych

12. Wymagania wstępne: wiadomości i umiejętności z zakresu studiów I stopnia

13. Cele przedmiotu: prowadzenie badań w ramach pracy dyplomowej; wstępne

przygotowanie do napisania pracy dyplomowej

14.


Student korzysta z literatury naukowej dla prowadzenia

własnych badań z zastosowaniem metod właściwych

przedmiotowi analiz. Ma pogłębioną wiedze z zakresu tematyki

własnej pracy dyplomowej. Zna zasady pracy w laboratorium.

Prowadzi wstępne badania związane z tematem własnej pracy

dyplomowej. Przy pomocy opiekuna dokonuje wyboru

najlepszych metod oraz stosuje je w badaniach. Zbiera i

opracowuje dane oraz wyciąga wnioski z uzyskanych wyników

badań. Dyskutuje własne wyniki w odniesieniu do danych

literaturowych.

Student jest świadomy znaczenia korzystania z najnowszej

literatury naukowej. Rozumie konieczność korzystania z

dotychczasowych osiągnięć nauki w celu kontynuacji badań.

Rozumie znaczenie poprawnego przedstawienia wyników badań

oraz pisania prac naukowych i przygotowywania prezentacji

zgodnie z obowiązującymi zasadami.

K_W04

K_W05

K_W08

K_W09

K_W11

K_U01

K_U04

K_U05

K_U06

K_K03

K_K04

K_K05

K_K06

K_K07

15. Treści programowe:

Szczegółowe treści merytoryczne przynależą do tematyki badawczej związanej ze




wstępnymi przygotowaniami pracy dyplomowej


Każdorazowo literatura polecana przez promotora lub opiekuna pracowni

17.

Forma zaliczenia:

laboratorium: zaliczenie na podstawie prezentacji wyników badań (K_W04;

K_W05; K_W08; K_W09; K_U01; K_U04; K_U05; K_U06) i aktywności na

zajęciach (K_W11; K_U01; K_U04; K_U05; K_U06; K_K03; K_K04; K_K05;

K_K06; K_K07)




aktywności


- laboratorium:

240 (120 w semestrze)




- przygotowanie prezentacji:

W zależności od formy pracy

min. 120 godz. w semestrze

Suma godzin 480

Liczba punktów ECTS 20 (10 w semestrze)

1. Wielofunkcyjność struktur komórki zwierzęcej

2. Multifunctionality of the animal cell structures

3. WNB, IBE, Zakład Biologii Rozwoju Zwierząt

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów II

9. Semestr IV


11.

dr hab. prof. Małgorzata Daczewska, dr hab. Bożena Simiczyjew, dr Izabela

Jędrzejowska, dr Marta Mazurkiewicz-Kania, dr Arnold Garbiec, dr Magda

Dubińska-Magiera, dr Marta Migocka-Patrzałek

12. Wymagania wstępne: Podstawowa wiedza z biologii komórki, histologii i

biochemii

13.

Cele przedmiotu:

Uzyskanie wiedzy na temat budowy organelli i pozostałych struktur komórkowych

w powiązaniu z ich funkcją i znaczeniem dla komórki i całego organizmu.

14.


Student: zna budowę komórek zwierzęcych, rozpoznaje

poszczególne jej składniki i potrafi opisać ich rolę w

funkcjonowaniu komórki; zna podstawy procesów komórkowych

związanych ze wzrostem, starzeniem, komunikacją

międzykomórkową, ruchem, magazynowaniem rezerw i ich

mobilizacją.

Student: rozumie i analizuje procesy zachodzące w komórkach;

wykorzystuje wiedzę teoretyczną do analizy preparatów

mikroskopowych; sprawnie posługuje się mikroskopem

K_W01

K_W02

K_W11

K_U01

K_U06




świetlnym i fluorescencyjnym oraz oprogramowaniem do analizy

obrazu; potrafi zinterpretować wyniki przeprowadzonych

eksperymentów; jest zdolny do rozpoznania struktur

komórkowych.

Student: analizuje zdobytą wiedzę dotyczącą procesów

komórkowych; wykazuje umiejętność pracy indywidualnej i w

zespole oraz zdolność do krytycznego korzystania ze źródeł; ma

świadomość zagrożeń wynikających z posługiwania się

wybranymi technikami badawczymi; zachowuje zasady

bezpieczeństwa i higieny pracy.

K_K02

K_K03

15.

Treści programowe:

Rola cytoszkieletu w procesach komórkowych. Starzenie i śmierć komórek.

Wzrost komórek i jego regulacja. Procesy endo- i egzocytarne. Komunikacja

międzykomórkowa, macierz zewnątrzkomórkowa. Lipidogeneza. Domeny

jądrowe. Zjawisko ruchu w komórkach. Gromadzenie rezerw oraz ich mobilizacja.

16.


„Cytobiochemia” L. Kłyszejko-Stefanowicz (PWN 2002) Rozdziały:; „Podstawy

Biologii Komórki” red. Alberts i wsp.(tłum.) (PWN 2005), Rozdziały:;, Seminaria z

Cytofizjologii” red. J. Kawiak i M. Zabel (Urban & Partner 2002), publikacje

wskazane przez Prowadzących

17.

Forma zaliczenia:

wykład: zaliczenie na podstawie testu (K_W01, K_W02); warunkiem uzyskania

zaliczenia jest obecność na 5 wykładach

laboratorium: zaliczenie na podstawie testu (K_W01, K_W02, K_W11, K_U01,

K_U06) i aktywności na zajęciach (K_K02, K_K03)




aktywności

Godziny zajęć (wg planu studiów) z

nauczycielem:

- wykład:

- laboratorium:

15

15




- przygotowanie do testów:

10

10

10

Suma godzin 60


1. Wprowadzenie do kognitywistyki

2. An introduction to cognitive science

3. Wydział Nauk Społecznych, Instytut Filozofii

4. Zgodny z USOS

5. Obowiązkowy



8. Rok studiów I

9. Semestr II




10. Wykład 20 godz., konwersatorium 10 godz.;

11. dr Zbigniew Pietrzak

12. Wymagania wstępne: znajomość podstawowych zagadnień z zakresu studiów

licencjackich dotyczących biologii i metodologii nauk przyrodniczych;

13.

Cele przedmiotu: poznanie i zrozumienie zależności między różnymi dyscyplinami

biologicznymi oraz kognitywistyką jako „interdyscyplinarnym programem

badawczym zmierzającym do ujednolicenia interpretacji fenomenów

poznawczych”, na poziomie umożliwiającym interdyscyplinarną pracę ze

specjalistami innych dziedzin

14.


Student zna i rozumie czym jest kognitywistyka i jaką funkcję w jej

ramach pełni filozofia (teoria poznania i filozofia umysłu) oraz

biologia; charakteryzuje i wyjaśnia zmiany zachodzące we

współczesnych naukach biologicznych i filozofii posługując się

podstawowymi pojęciami z zakresu tych nauk;

Student na podstawie nabytej wiedzy filozoficznej potrafi wskazać

na filozoficzne (pozaprzyrodnicze) implikacje treści kognitywistyki

oraz jej roli we współczesnej wiedzy naukowej; potrafi

identyfikować i przedyskutować podstawowe problemy

współczesnej kognitywistyki – na przykład relacje mózg-umysł,

procesy poznawcze, modele umysłu i poznania.

Student potrafi wypowiadać się w kwestiach istotnych dla

rozumienia współczesnych problemów wynikających z rozwoju

kognitywistyki – w jej biologicznych, filozoficznych, społecznych i

kulturowych aspektach; rozumie odrębność i przydatność

filozoficznej interpretacji kognitywistyki oraz potrafi argumentować

na rzecz własnego stanowiska; potrafi organizować dyskusję na

tematy związane z biologicznymi, filozoficznymi, społecznymi i

kulturowymi problemami kognitywistyki.

K_W01

K_U07

K_K01

15.

Treści programowe:

Wprowadzenie do przedmiotu – czym jest kognitywistyka? Rola i miejsce nauk

biologicznych i humanistycznych (lingwistyki, psychologii i filozofii) w

kognitywistyce. Wzajemne relacje; Podstawowe zagadnienia – biologiczne,

filozoficzne i społeczne problemy poznania: percepcja, poznanie jako stosunek

podmiotu i przedmiotu poznania; Podstawowe modele i teorie umysłu w

perspektywie kognitywistyki: zagadnienie relacji mózg i umysł, własności umysłu;

Zagadnienia sztucznej inteligencji.

16.

Literatura – konwersatoria – wybrane rozdziały z następujących pozycji:

Przewodnik po filozofii umysłu, M. Miłkowski, R. Poczobut (red.); P. Jaśkowski,

Neuronauka poznawcza. Jak mózg tworzy umysł; Analityczna metafizyka umysłu,

M. Miłkowski, R. Poczobut (red.); J.R. Searle, Umysł język społeczeństwo; B.

Korzeniewski, Od neuronu do (samo) świadomości.

Literatura do wykładu – zostanie podana na pierwszym wykładzie.

17.

Forma zaliczenia:

- wykład: zaliczenie na podstawie odpowiedzi ustnej (trzy pytania, na ocenę

dostateczną wymagana poprawna odpowiedź na jedno pytanie); (K_W01; K_U07;

K_K01)

- konwersatorium: zaliczenie na podstawie obecności i aktywności na zajęciach

(K_W01; K_U07; K_K01)








z nauczycielem:

- wykład:

- konwersatorium:

20

10




20

10

Suma godzin 60


Documents

Genetyka i biologia eksperymentalna do przedmiotów... · Prof. dr hab. Beata Zagórska-Marek, dr Alicja Dołzbłasz, dr Katarzyna Sokołowska, dr Alicja Banasiak. 12. Wymagania wstępne: