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GROUPE III Camille Roger, Emma Castel, Daniela Camargo, Kelly Blasco, Sandrine Rivrain, Christophe Le Gros, Laurent Esnault, Boris Guédel, Ciprian Davidescu.

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GROUPE III

Camille Roger, Emma Castel, Daniela Camargo, Kelly Blasco, Sandrine Rivrain, Christophe Le Gros, Laurent

Esnault, Boris Guédel, Ciprian Davidescu.

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I. Transformation

Objectifs : ajout du plasmide contenant le gène GFP à une bactérie.

bactérie

Gène codant pour la GFP

ADN plasmidiqueGène de résistance à la Kanamycine

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II. Ensemencement

Objectifs : culture de bactéries transformées et non transformées.

L'échantillon T absence de colonies sur milieu avec Kana.

Ne correspond pas au témoin.

Conclusion : problème au niveau de la transformation.

Transformation des bactéries à refaire.

Témoins Échantillons

T+K+ IPTG

T

NT+K

NT

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Deuxième culture bactérienne

NT+K

Témoins Echantillons

NT

T+IPTG

T+IPTG+K T+IPTG

T+K

Conclusion : expérience réussie.

Les bactéries que nous souhaitions transformer se sont développées dans un milieu avec kanamycine, elles ont incorporé le plasmide : transformation réussie.

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Objectifs : récupération du plasmide présent dans les bactéries transformées.

III. Isolation et purification du plasmide

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IV. Double digestion

Objectifs : séparation du gène GFP de l’ADN plasmidique.

On effectue cette séparation grâce aux enzymes Hind III

et Bam H1.

gène de résistance à la Kanamycine

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V. Électrophorèse

Objectifs : vérification de la présence du gène de la GFP dans le plasmide et du fonctionnement des enzymes.

Principes: Le gel d’agarose permet de différencier les fragments d’ADN selon leur taille.

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Résultats de la première l’électrophorèse

Marqueur de poids moléculaire

Plasmide digéré Plasmide non digéré Bactéries non transformées

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Résultats de la seconde électrophorèse

Marqueur de poids moléculaire

Simple digestion avec Hind III

Simple digestion avec Bam H1

Double digestion

H H HB B B B

HB HBHBHB

Gène GFP