Guia de Practica Autonoma Unad 2016 I

8/18/2019 Guia de Practica Autonoma Unad 2016 I

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ESCUELA DE CIENCIAS AGRICOLAS, PECUARIAS Y DEL MEDIO AMBIENTE

358027 – "#$%'#()* *+,%-."*'Guía de actividades componente práctico. Año 2016_I

UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIAESCUELA DE CIENCIAS AGRICOLA, PECUARIAS Y DEL MEDIO AMBIENTE

ECAPMA

GUÍA DE ACTIVIDADES COMPONENTE PRÁCTICOPRACTICA AUTONOMA

2016 – I

MODULO ELECTIVO TOXICOLOGÍA AMBIENTAL CÓDIGO - 358027

Directora

Angélica Rocío Guzmán Lenis

2016


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I - ACTIVIDADES PARA EL ESTUDIANTE

1. IDENTIFICACIÓN DE LA PRÁCTICANombre del curso Modulo electivo Toxicología Ambiental

Código de curso 358027

Valor de esta actividad práctica 150 puntos.Nombre del director de curso Angélica Rocío Guzmán Lenis

CEAD al que pertenece Acacías.

Contacto del director del curso [email protected] – Skype: angelicargl

Espacio donde se debedesarrollar la práctica

Libre escogencia

Objetivos de la práctica • Identificar los tipos de bioensayos utilizados para

pruebas de toxicidad.

• Realizar autónomamente un bioensayo de ecotoxicidad,siguiendo el procedimiento establecido.

• Interpretar los resultados de un bioensayo para evaluarel nivel de toxicidad de una muestra.

Justificación de la práctica Uno de los aspectos más importantes dentro del área de latoxicología ambiental son los protocolos de monitoreo yseguimiento. Dentro de estos, los bioensayos constituyen

una de las herramientas de mayor aplicabilidad y flexibilidadpara ser realizados en cualquier ambiente y para diferentes

contaminantes.

Por tal motivo es de gran trascendencia que los estudiantes

realicen uno y evalúen sus resultados.Competencias a desarrollar El estudiante adquiere habilidades prácticas e investigativas

de observación, registro y análisis de datos, aumentando sucapacidad de interpretación cualitativa y cuantitativa de

datos de toxicología ambiental.

Duración de la práctica 2 jornadas de 3 horas.

Mecanismo mediante el cual seevaluará la práctica:

A través de la rúbrica de evaluación del componentepráctico, la cual se detalla en el punto E del presente

documento.

El bioensayo de toxicidad con semillas de lechuga (Lactuca sativa) es una prueba estática d

toxicidad aguda (120 horas de exposición) en el que se pueden evaluar los efectos fitotóxicos d

compuestos puros o de mezclas complejas en el proceso de germinación de las semillas y en e

desarrollo de las plántulas durante los primeros días de crecimiento. A continuación se describe e

procedimiento.


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2. METODOLOGIA

A. Actividades a desarrollar

Revisión de porcentaje de germinación de las semillas compradas

Previamente al montaje del experimento con la muestra recolectada y los controles, es importanthacer una prueba de germinación inicial, para comprobar que las semillas están en buen estado

que tienen un porcentaje de germinación cercano al que dice el empaque en el que vienen

usualmente del 85%, el mínimo permitido será del 75%.

Para esta prueba se montará una caja de Petri con agua limpia y se seguirá el procedimiento que sdescribe más adelante para cálculo del porcentaje de germinación. Si el porcentaje de germinacióestá por debajo del 75% entonces se deberán cambiar las semillas por unas más nuevas.

Una vez que la prueba arroje el porcentaje de germinación deseado se proseguirá con las siguienteactividades.

Obtención de la muestra

Si su tema de proyecto es la contaminación de algún cuerpo de agua con tóxicos podrá recolectauna muestra de esta agua para utilizarla en el bioensayo. Si el proyecto que están trabajando e

sobre contaminación del suelo o lodos, deben tomar una muestra y llevarla a un laboratorio de aguao suelos de su ciudad y solicitar que se haga un proceso de centrifugación para extraer una solució

liquida a partir de ese suelo o lodo, que pueda utilizarse en el bioensayo, el tamaño de la muestrlíquida debe ser de 500mL.

Si el desarrollo de este procedimiento no es posible, o usted no se encuentra cerca al sitio de

proyecto elegido por su grupo, puede tomar una muestra de agua de cualquier sitio que se presumcontaminado para efectos del desarrollo la práctica.

Toma de muestra de agua

Los materiales requeridos para el muestreo dependerán del lugar donde se planee recolectar l

muestra. Se recomienda seguir el protocolo establecido por el IDEAM en la Guía de monitoreo dvertimientos, aguas superficiales y subterráneas, disponible en el linhttp://www.corponor.gov.co/control_calidad/2014/Guia_monitoreo_IDEAM.pdf

El muestreo que harán es puntual, pero deberá seguir las indicaciones para preparación de

recipiente, llenado de la botella, marcación, preservación y transporte de la muestra hasta el sitdonde hará el montaje de su bioensayo. Sin embargo, como materiales generales se recomiend

llevar para el muestreo: balde, soga, un recipiente limpio para recolectar 1 Litro de muestra (puedeser botellas de agua lavadas y desocupadas), toalla para secar, cinta de enmascarar para marcar e

recipiente donde se pondrá la muestra, marcador indeleble, nevera de icopor con hielo, guantes d

caucho, formato de campo para recolectar información del sitio como nombre del lugar, del cuerpo d


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agua, hora, fecha, etc. (En la guía del IDEAM encontrarán ejemplos de estos formatos), important

también tomar fotos del sitio de muestreo y no ir solos a tomar la muestra.

Ilustración 1. Toma de muestra de agua con un balde

Fuente: Aquatox (2010)

IMPORTANTE: la muestra no debe tener más de 24 horas de recogida antes del montaje de

bioensayo.

La muestra a trabajar será idealmente del entorno contaminado que están investigando en e

proyecto del curso, pero si no es posible, simplemente deberán escoger un cuerpo de agua diferentdonde se presuma contaminación industrial, no solo doméstica, ya que ésta contiene contaminanteque al contrario favorecen el crecimiento de las plantas. La práctica se podrá elabora

individualmente o en grupos de máximo 3 personas del mismo CEAD, así si desean trabajar egrupo deberán ponerse en contacto entre ustedes para que alisten materiales, recojan la muestren grupo y desarrollen el bioensayo en el lugar que ustedes dispongan, puede ser su casa o emismo CEAD si se lo permiten, pero no es práctica con acompañamiento de tutor práctico, potal motivo no la encontrarán programada en los CEAD. Si deciden realizar el trabajo en grupo, sdebe publicar en el foro la conformación de los grupos para el desarrollo de la práctica (no enecesario que el grupo de la práctica sea el mismo grupo del campus).

La guía del IDEAM habla de medir algunos parámetros in situ a las muestras, pero estos análisis nse realizarán.

Toma de muestra de suelo

Si su tema de proyecto es contaminación de suelos, el procedimiento para toma de muestra es esiguiente:

A- Se debe remover entre 2-3 cm de la superficie del terreno (capa vegetal superficial) en el puntescogido con el fin de limpiar y eliminar los residuos frescos de materia orgánica, polvo de lcarretera u otros contaminantes. Utilizar guantes de látex con el objetivo de evitar contaminación d

la muestra.


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B- Las muestras deben ser tomadas a una profundidad de 0-15 cm. Una vez tomada la muestra deb

homogenizarse, destruir terrones y remover material orgánico como: hojas, raíces y animales. Unvez realizado esto, incorporar la muestra de aproximadamente 250 g en las bolsas ziploc

asegurándose que queden bien selladas.

Las bolsas ziploc deben estar adecuadamente rotuladas con el nombre de quien toma la muestratipo de sistema agrícola o cobertura vegetal que hubiera tenido, hora y fecha de muestreo.

Una vez tomada la muestra deberá dirigirse a un laboratorio de aguas o suelos de su ciudad dondsea posible hacer una extracción líquida de la muestra, ya que solo de esta manera podrá ser usad

en la práctica.

Nota: Recuerde que si este procedimiento no es posible de realizarlo, deberá hacer el bioensay

entonces con una muestra de agua.

Ejecución del ensayo

A. Preparación de las soluciones

Solución de control positivo:

Las soluciones de control positivo están diseñadas para obtener resultados similares de los que s

obtendrían con agua contaminada. Esta solución le permitirá observar cómo reaccionan las semillaal agua contaminada.

Se preparará una solución salina de 5g/L, se requerirá 1 litro de agua limpia, puede ser agu

destilada o de bolsa que no contenga cloro ni gas, si se cuenta con una balanza o una gramera s

podrán pesar directamente los 5 gramos y adicionarlos al litro de agua. Se debe mezclar bien y luegmarcar el recipiente que diga "Control (+) 5g/L".

Si no se cuenta con gramera o balanza entonces se tendrá que calcular dicha cantidad a ojo con un

cucharita de cocina, llenándola solo la mitad y se prepara la solución.

Solución de control negativo

Será una muestra de agua sin gas y sin saborizante, alistar mínimo 200 mL para el bioensayo.

Soluciones de muestras contaminadas

Se utilizará la muestra recolectada, si se presume de una alta contaminación, por ejemplo que teng

un color u olor muy fuerte, será mejor realizar una dilución de la muestra para el bioensayo, l

dilución puede ser del 50%, es decir llenar un recipiente de volumen 100mL y llenarlo con 50mL dmuestra y 50mL de agua destilada o embotellada sin gas, se mezcla bien y se marca con el nombr

de “Muestra Dilución 50%”. Si por el contrario se usa la muestra sin diluir entonces se marca con enombre de Muestra.


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B. Montaje del bioensayo:

Colocar en cada caja de Petri un disco de papel filtro o un recorte de papel absorbente con la form

de la circunferencia de la caja de Petri.

Marcar correctamente cada caja de Petri con la dilución correspondiente y la solución que saplicará, así como la fecha y hora de inicio del bioensayo. Cada estudiante o grupo de 3 persona

deberá tener 6 cajas de Petri y marcarlas de la siguiente manera:

Ilustración 2. Caja de Petri con su tapa

Colocar 4 mL de cada solución en la caja de Petri correspondiente, saturar el papel filtro absorbente dispersando homogéneamente la solución sobre éste evitando que se formen bolsas daire. Utilizar pipetas (o goteros o jeringas) distintos para la aplicación de la muestra y los controle

positivos y negativos.

Con la ayuda de una pinza, colocar cuidadosamente 20 semillas (cinco hileras de cuatro semillas,

cuatro hileras de cinco semillas), dejando espacio suficiente entre las semillas para permitir lelongación de las raíces. Seleccione semillas de tamaño, forma y color similar.

Ilustración 3. Caja de Petri con semillas de lechuga

Tapar las cajas de Petri, y cubrirlas de la luz inmediatamente después de colocar las semillas en sinterior, dado que algunas variedades de semillas de lechuga requieren de oscuridad para que s

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produzca la germinación (semillas fotoblásticas negativas). Para esto debe envolverse cada caja d

Petri con papel aluminio.

Repetir el procedimiento pero utilizando el agua embotellada (control negativo) y la solución de sa(NaCl) como control positivo.

Marcar con cinta de enmascarar cada caja de Petri envuelta con papel aluminio. Los controle

negativos se marcarán como C(-)1 y C(-)2, el control positivo con una C(+) y las muestras como MM2, M3, según la réplica correspondiente.

Asegúrese de no voltear (no dar vuelta) las cajas de Petri boca abajo, etiquetando "Parte de arriba

en cada placa envuelta para que no se confunda.

Colocar las cajas de Petri envueltas en papel aluminio dentro de una bolsa plástica (ziploc) parprevenir que se escape la humedad.

Colocar las cajas en un lugar seguro, a temperatura ambiente por cinco días, a resguardo de la lu

solar directa.

C. Ejecución de las observaciones y mediciones

Después de cinco días, o aproximadamente 120 horas:Cada punto final se evalúa comparando el efecto generado en los organismos expuestos a

muestra con respecto a la respuesta en los organismos del control negativo, sujetos a las mismacondiciones de ensayo, excepto por la ausencia de la muestra contaminada.

• Desenvolver cuidadosamente cada placa de Petri, luego se deberá contar y apuntar

número de semillas germinadas en cada placa.

Ilustración 4. Semillas de lechuga germinadas


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• Se evalúa el efecto en la germinación, para esto se registra el número de semillas qu

germinaron normalmente, considerando como criterio de germinación la aparición visible de radícula.

• Segundo se observa el efecto en la elongación de la radícula e hipocótilo (ilustración 5

utilizando una regla o papel milimetrado se deberá medir cuidadosamente la longitud de radícula y del hipocotilo de cada una de las plántulas, correspondientes a cada concentraciódel compuesto tóxico o dilución de muestra y a los controles. La medida de elongación de l

radícula se considera desde el nudo (región más engrosada de transición entre la radícula

el hipocotilo) hasta el ápice radicular. La medida de elongación del hipocotilo se considerdesde el nudo hasta el sitio de intersección de los cotiledones.

Ilustración 5. Partes de la semilla

Fuente: Ramírez & Mendoza (2008).

Antes de retirar las plántulas de las cajas petri para evaluar el efecto en los puntos finale

anteriormente mencionados, es importante realizar una observación detallada del estadgeneral de las mismas y del crecimiento de la radícula sobre el papel de filtro. Informacualquier indicador de fitotoxicidad o de crecimiento anormal en las plántulas tratadas y en lo

controles (ápices radiculares con necrosis, pelos absorbentes poco desarrollados, radículacon crecimiento ensortijado, necrosis en los cotiledones, etc.). La necrosis (presencia d

tejido muerto) se evidencia como manchas localizadas de coloración parda, blanca o marrón

Al evaluar el efecto en la germinación, consignar además aquellas semillas con germinacióanormal (emergencia de cotiledones o cotiledones e hipocotilo solamente, pero semergencia de la radícula) o con desarrollo de hongos.

• Posteriormente se saca cada semilla germinada, se mide y se apunta el largo de cada raíz e

la libreta de notas. Para medir el largo de la raíz, puede ser más sencillo colocando las raíce

contra un fondo oscuro. Pegue la regla con cinta adhesiva a ese fondo oscuro y luegocuidadosamente, "estire" las raíces a su longitud máxima, apunte la medida obtenida parcada semilla de cada tratamiento.

La siguiente ilustración muestra los estadios por los que atraviesa la semilla durante el ensayo dgerminación y elongación:


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Ilustración 6. Estadios de la semilla durante el ensayo

Fuente: Ramírez & Mendoza (2008).

D. Expresión de resultados

1. Cálculo de porcentaje de germinación

Primero se anotaran el número de semillas germinadas en cada caja de Petri y se calculará e

porcentaje de germinación:Tabla 1. Número de semillas germinadas

Cajas de Petri

Variables C(-)1 C(-)2 C(+) M1 M2 M3Número desemillasgerminadas

Promedio delos controlesnegativos

Porcentajedegerminación*

*Se calcula dividiendo el número de semillas germinadas sobre el promedio del número de semilla

germinadas de los controles negativos, luego se multiplica por 100.

2. Cálculo del porcentaje de inhibición de la germinación

% Inhibición germinación = (SgCneg - SgMR) * 100

SgCneg

SgCneg= semillas germinadas control negativo (promedio C(-)1 y C(-)2)SgMR= semillas germinadas muestra (promedio de las 3 cajas de Petri: M1, M2 y M3)

Se calcula con el promedio de semillasgerminadas en las repeticiones de Control (-)


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3. Medida de elongación de hipocotilo (EH) en cada caja de Petri

Se podrá llenar una tabla como la siguiente para la presentación de los datos:

"/01/ 23 '456789: :; 48714 ?@@A'456789: :; 48714 ?@@A

B;@711/ &/C/ :; D;8E7&?FAG

&/C/ :; D;8E7&?FA2

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G,3/."


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El promedio EH del control negativo se sacará a partir de los promedios de las dos repeticiones

siempre y cuando ambas cumplan con el CV menor o igual al 30%.

El promedio EH de la muestra se saca de los promedios de las tres repeticiones calculados en ltabla 2 (M1, M2 y M3)

5. Medida de elongación de radícula (ER) en cada caja de Petri

"/01/ I3 '456789: :; J/:K>91/ ?@@A

'456789: :; J/:K>91/ ?@@A

B;@711/ &/C/ :; D;8E7&?FAG

&/C/ :; D;8E7&?FA2

&/C/ :; D;8E7&?HA

&/C/ :; D;8E7+G

&/C/ :; D;8E7+2

&/C/ :; D;8E7+I

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D*'9,:.' E6

G,3/."


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6. Cálculo de la inhibición de radícula

% Inhibición Desarrollo Radícula = (PromedioERCneg - PromedioER_M) x 100PromedioERCneg

El promedio ER del control negativo se sacará a partir de los promedios de las dos repeticionessiempre y cuando ambas cumplan con el CV menor o igual al 30%.

El promedio ER de la muestra se obtiene de los promedios de las tres repeticiones calculados en tabla 3 (M1, M2 y M3)

7. Cálculo de índice de germinación IG

El índice de germinación (IG) se calcula multiplicando el número de semillas germinadas por llongitud media de la raíz, expresando ambos parámetros como porcentaje respecto al testigo,

sea al control negativo, es decir, que cada dato de longitud de radícula y de semillas germinadadeben pasarlo a porcentaje, utilizar la siguiente formula:

% Longitud de radícula muestra = Longitud radícula Muestra (mm) x 100

Longitud radícula Control neg (mm)

Para germinación:

% Germinación muestra = Número de semillas germinadas muestra x 100Número de semillas germinadas Control neg

Ojo: Tanto para la muestra como para el control negativo se usan solo los promedios.

Después de tener calculados ambos porcentajes se halla el índice de germinación como se muestra continuación, solo se debe calcular un índice de germinación, ya que sólo se recolecto unmuestra, y las réplicas no son muestras.

IG = Longitud de radícula muestra (%) x Germinación de la muestra (%)

100

8. Análisis de resultados

Se deberá buscar indicadores de fitotoxicidad en las cajas de Petri de las muestras, es decir si ha

semillas cafés, con deformaciones en el crecimiento, etc., para esto es importante comparar loresultados de las semillas de las cajas de Petri con la muestra y las semillas con el control positivoya que en éste las semillas están expuestas a un tóxico que es la sal.

Luego se analizarán los resultados de los porcentajes de inhibición en todas las variables

germinación, elongación hipocotilo y elongación de radícula, compararán en qué parte de la plant

tuvo más efecto la posible presencia de tóxicos de su muestra, es decir, en la raíz, en el hipocotilo, en la germinación de la semilla.


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El índice de germinación tendrá valores entre 0 y 100, entre más cerca a cero esté, significará un

mayor inhibición en crecimiento y en germinación, mientras que si es superior a cien, se concluirentonces que no hubo inhibición, sino por el contrario, un mayor desarrollo con respecto al testig

(control negativo)

Por último deberá concluirse si la muestra es tóxica o no, según el ensayo realizado.

El informe requiere conclusiones que respondan a las siguientes preguntas:

1. ¿Su muestra supera el porcentaje de inhibición de germinación, crecimiento de radícula o d

hipocotilo en un 50%?

2. ¿Qué indica el índice de germinación obtenido?3. ¿Hay riesgo de toxicidad en la muestra tomada?

Nota: Para la participación grupal en la wiki, cada estudiante publicará el IG calculado con s

muestra en el foro del entorno de aprendizaje práctico (Foro momento 3) y por grupo escogerán lmuestra con mayor toxicidad, es decir con el IG más bajo, y realizarán un párrafo en inglés qudescriba el cuerpo de agua donde se tomó la muestra, el tipo de contaminación que le llega, e

cálculo de inhibición de crecimiento de radícula e hipocotilo y el índice de germinación, comparado

con los demás bioensayos realizados en el grupo. A continuación se mencionan dos link co

artículos de estudios científicos hechos usando el bioensayo de lechuga para que se fijen en lo

términos técnicos que se usan:

Determination of phytotoxicity of soluble elements in soils, based on a bioassay with lettuce (Lactuc

sativa L.). Publicación en línea:

http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0048969707000484

Evaluation of the phytotoxicity of polycontaminated industrial effluents using the lettuce plant (Lactuc

sativa) as a bioindicator. Publicación en línea:

http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0147651311002120

El párrafo que se aporte en la wiki, no debe tener tablas ni datos sueltos con viñetas, todo va d

manera descriptiva en un párrafo, tampoco se acepta más de un aporte por grupo, debe mencionars

al inicio o al final del párrafo el número del grupo que hace el aporte. El párrafo debe tener mínim

100 palabras, máximo 150.

B. Elementos necesarios para la práctica

- 1 sobre de semillas de lechuga (Lactuca sativa L.) (Que no sean tan antiguas, ver fecha dlote).

- 6 cajas de Petri (de vidrio o plástico, de 100 mm de diámetro).- 3 Goteros o jeringas de 5mL que permitan medir 4mL.- 1 Probeta de 250mL o un recipiente que este graduado cada 100mL o 50mL.


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- Papel de filtro Whatman No. 3 (o 5 pedazos de papel absorbente de cocina cortado) d90mm de diámetro, deben ajustar bien en las cajas de Petri.

- Pinzas o algo similar para coger las semillas.- Sal de cocina- 1 L de agua destilada o agua en bolsa sin gas.

- 1 recipiente o botella de 1,5 L limpia.- Papel aluminio (el suficiente para envolver sus 5 cajas de Petri).- Cinta de enmascarar- Libreta de apuntes- Regla- Guantes de látex.- 1 Litro de muestra de agua a evaluar, mínimo 500mL.

C. Productos a entregar

Informe de máximo de 10 hojas tamaña carta, letra Arial 11, espacio 1.15, con fotografías d

experimento (máximo 6).

Las partes del informe serán:

- Portada- Introducción- Un mapa conceptual sobre los tipos de bioensayos usados en toxicología ambiental par

muestras de agua y suelo.- Diagrama de flujo de la práctica elaborada.- Descripción de la muestra llevada al bioensayo.- Resultados.- Análisis de resultados.- Conclusiones.

- Bibliografía.

Los estudiantes deben subir individualmente el informe en el entorno de Evaluación seguimiento. Previo a subir el documento deberán participar en el foro del entorno de aprendizajpráctico (Foro momento 3), donde intercambiarán sus ideas e inquietudes sobre los resultado

obtenidos en la práctica y así podrán colaborarse mutuamente en el análisis de resultados. Si práctica se desarrolló en grupo, cada integrante del grupo debe subir al entorno de evaluación seguimiento el informe desarrollado de forma grupal.

D. BIBLIOGRAFIA

Centro Internacional de Investigaciones para el Desarrollo de Canadá (CIID). (2000). Aquatox 2000Canadá: Autor. Disponible en http://idl-bnc.idrc.ca/dspace/bitstream/10625/31600/1/118283.pdf

Sobrero, M. C. & Ronco, A. (2008). Ensayo de toxicidad aguda con semillas de lechuga Lactuc

sativa L. En Ramírez, P. & Mendoza, A. (ed.). Ensayos toxicológicos para la evaluación d

sustancias químicas en agua y suelo. La experiencia en México . (pp. 55-68). México: Secretaría dMedio Ambiente y recursos Naturales. Instituto Nacional de Ecología. Recuperado dhttp://www2.inecc.gob.mx/publicaciones/download/573.pdf


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E. FORMATO DE RÚBRICA DE EVALUACIÓN

La siguiente tabla denominada rúbrica de evaluación, es la forma como se les calificará

actividad práctica y la actividad del campus virtual, por favor tenerla en cuenta para la entrega deproducto final y posteriores reclamaciones:

ACTIVIDADEVALUADA

CRITERIOEVALUADO

VALORACI N PUNTAJMÁXIMOBAJO MEDIO ALTO

Momento 3

Participación

en el foro del

momento 3

Práctica de

toxicología

ambiental

El estudiante no

participó en el

foro.

El estudiante

participó, pero no

aportó a la discusión

de resultados de sus

compañeros.

El estudiante hace

aportes significativos

para el análisis del

bioensayo y discute

los resultados de sus

compañeros.

20

(Puntos = 0) (Puntos = 5 - 15) (Puntos = 20)

Wiki con las

conclusiones

de cada

grupo sobre

la muestra

más tóxica

trabajada.

El grupo no

participa en la wiki

El aporte del grupo

en la wiki es poco

técnico y/o no

presenta los datos

completos que se

solicitan.

El grupo hace unaporte significativo,

en inglés y con la

información completa

solicitada.

30


Resultados

del

bioensayo

El estudiante no

realizó el

bioensayo o se

evidencia copy-

paste de otrostrabajos o de

internet.

El estudiante

presenta sus

resultados, pero hay

errores en los

cálculos y/o unanálisis deficiente de

éstos.

Los resultados del

bioensayo y los

cálculos son

correctos, además

presenta un buenanálisis de sus

resultados.

40


Mapa

conceptual

No se presenta

este punto dentro

del informe o se

evidencia un copy-

paste de otros

trabajos o de

internet.

El mapa conceptual

está incompleto, o

no muestra la

información acorde

a los materiales del

curso.

El mapa conceptual

está completo y usa

los documentos del

curso.25

(Puntos = 0) (Puntos = 5 - 20 ) (Puntos = 25)

Realización

del Informe

final de la

práctica con

los ítems

solicitados

No presenta

informe individual

El informe contiene

los ítems solicitados,

pero no son

coherentes ni

pertinentes para dar

respuesta a lo

solicitado en la guía

El informe es preciso,

pertinente y

coherente, y describe

lo solicitado en la guía

20



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ACTIVIDADEVALUADA

CRITERIOEVALUADO

VALORACI N PUNTAJMÁXIMOBAJO MEDIO ALTO

Redacción,

ortografía y

citación

El informe no es

claro, ni presenta

coherencia

interna, no tienebuen uso de

ortografía, ni da

las citas

correspondientes

cuando se

requieren.

El informe presenta

coherencia pero

tiene fallas en

redacción y

ortografía o citación

El informe tiene

buena redacción,

coherencia interna y

excelente ortografía.

La citación se realiza

siguiendo normas

APA.

15


PUNTOS TOTALES MOMENTO 3 150

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