Guía de Prácticas Farmaco 2016-I

8/19/2019 Guía de Prácticas Farmaco 2016-I

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UNIVERSIDAD PRIVADA SAN JUAN BAUTISTAFACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD

ESCUELA PROFESIONAL DE MEDICINA HUMANA

CURSO DE FARMACOLOGÍA GENERAL

V CICLO

GUÍA DE PRÁCTICA Y SEMINARIO

PROFESOR JEFE DEL CURSO:

Dr. Raúl SOTELO CASIMIRO

PROFESOR COORDINADOR DE SEDE:

Dr. Milciades CORTEZ GUTIÉRREZ - CHORRILLOS

Dra. Mery EZETA ESPINOZA – LIMA NORTE

Dr. Marco LARA SILVA – SAN BORJA

Dr. Ángel AGUADO CORONEL - ICA

Dr. Josué TOREZ SANTIAGO – CHINCHA

Semestre 2016 - I


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UNIVERSIDAD PRIVADA SAN JUAN BAUTISTA

FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUDESCUELA PROFESIONAL DE MEDICINA HUMANA

CURSO DE FARMACOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA N° 01

BASES QUIMICAS DEL METABOLISMO FARMACOLOGICO

I. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER:

Atomística, enlace iónico, enlace covalente Hidrocarburos alicíclico, cíclico, heterocíclico Alcohol, aldehído, cetona, carboxilo, amina Éter, Ester, amida, fosfatos, fosfolípidos Aminoácidos, polipeptidos, proteínas

Monosacárido, disacárido, polisacárido Base nitrogenada, nucleosido, nucleótido

II. OBJETIVOS:

Aprender que el fármaco es un reactivo químico Reconocer que el metabolismo celular es actividad química Mostrar las diferentes moléculas como reactivas farmacológicas. Determinar los blancos farmacológicos químicamente

PRÁCTICA N° 02

DETERMINACION DE LAS DOSIS FARMACOLOGICAS Y

MANIPULACION DE LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACION

III. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER:

Definir una solución y sus componentes Concentración de los solutos en una solución

Relación masa-masa y masa-volumen Conversión de unidades de masa y de volumen Bioseguridad al manipular animales Técnicas para manipular animales en experimentación Técnicas de administración de fármacos

IV. OBJETIVOS:

Aprender a calcular la cantidad del fármaco a administrar Asegurar una adecuada administración del fármaco Evitar riesgos que vulneren la bioseguridad.


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UNIVERSIDAD PRIVADA SAN JUAN BAUTISTA

FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUDESCUELA PROFESIONAL DE MEDICINA HUMANA


PRÁCTICA N° 03

VÍAS DE ADMINISTRACIÓN Y EFECTO DE LOS MEDICAMENTOS

II. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER:

Farmacocinética de los medicamentos. Vías de administración, ventajas y desventajas. Factores que modifican el efecto farmacológico. Periodo de latencia (P.L). Intensidad de Efecto (I.E).

Duración del efecto (D. E.).

V. OBJETIVOS:

Aprender el correcto manejo de animales de experimentación. Mostrar y comparar las diferentes vías de administración. Determinar la influencia de las vías de administración en el periodo

de latencia (P.L) y duración del efecto (D.E.)

VI. MATERIALES:

Ratones Cronómetro Estricnina sol 0.36 mg/ml

Balanza Pentobarbital sol 0.4% Jeringas de 1 ml.

VII. PROCEDIMIENTOS:

1. Tomar los datos basales, reflejos, actividad espontánea.2. Pesar y marcar los ratones.3. Determinar, según el peso el volumen de la sustancia a inyectar.4. Administrar una dosis de 50 mg/Kg de pentobarbital sódico por:

Vía intraperitoneal (en el cuadrante inferior izquierdo del abdomen),Vía intramuscular (zona muscular)Vía subcutánea (zona dorsal levantando la piel del lomo).

5. Repetir administrando una dosis de 1.8 mg/Kg de estricnina.6. Registrar la hora de administración, anotar los efectos que produce.7. Registrar el periodo de latencia y duración del efecto.8. Discutir y sacar conclusiones.


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ESCUELA PROFESIONAL DE MEDICINA HUMANACURSO DE FARMACOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA N° 04

SINERGISMO Y ANTAGONISMO

CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER:

Generalidades sobre interacciones. Sinergismo: Definición, tipos. Antagonismo: Definición, tipos. Farmacología de: Adrenalina, Tropicamida, Pentobarbital, Estricnina.

SINERGISMO: TROPICAMIDA – ADRENALINA

I. OBJETIVOS:

Observar experimentalmente el sinergismo entre la tropicamida y laadrenalina por administración simultánea.

II. MATERIALES:

Conejo albino. Adrenalina 1 mg/ml. Jeringas de 1 ml. Gotero. Tropicamida 10 mg/ml.

III. PROCEDIMIENTOS:

Medir el diámetro pupilar basal y determinar la sensibilidad corneal,aspecto de la conjuntiva.

Instilar en el saco conjuntival derecho 2 gotas de Tropicamida,después de 5 min. medir el diámetro pupilar y controlar lasensibilidad corneal y aspecto de la conjuntiva.

Luego instilar 2 gotas de solución de adrenalina en ambos ojos,esperar 5 min. y hacer los controles correspondientes.

Registren los datos y hacer el análisis del sinergismo para sudiscusión.

IV. RESULTADOS:

Diámetro Pupilar

Basal Tropicamida AdrenalinaTropicamida

+Adrenalina

Ojo Derecho

Ojo Izquierdo


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ANTAGONISMO: PENTOBARBITAL – ESTRICNINA.

I. OBJETIVOS:

Observar experimentalmente el antagonismo entre unneurodepresor y un neuroestimulante por administración simultánea.

II. MATERIALES:

Ratones Jeringas de 1 ml BalanzaPentobarbital sódico 0.4 % Estricnina 1/1000.

III. PROCEDIMIENTOS:

Determinar los datos basales: reflejos de enderezamiento, actividadespontánea.

Al ratón 1, administrar por vía I.P. pentobarbital sódico (40 mg/Kg),determinar el P.L. (Tiem. de pérdida del reflejo de enderezamiento). Al ratón 2, administrar por vía I.P estricnina (4 mg/Kg). Al ratón 3, administrar por vía I.P. pentobarbital sódico (10 mg/Kg),

cuando empiecen a observarse los efectos depresores, administrarpor la misma vía, estricnina (4 mg/Kg).

Tomar nota de los efectos, discutir y sacar conclusiones.

IV. RESULTADOS:

FármacosVolumen

(ml.)Hora de

administraciónP.L. Observaciones

Control.

Pentobarbital.

Estricnina.

Pentobarbital +Estricnina.


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CURSO DE FARMACOLOGÍA MEDICA

PRÁCTICA N° 05

ANESTESIA LOCAL


Anestésicos locales: Concepto. Farmacocinética. Farmacodinamia. Tipos.

II OBJETIVOS:

Obtener la perdida de la sensibilidad sin afectar el estado de alerta Observar las diferencias de los anestésicos locales al asociarse con un

vasoconstrictor

III MATERIALES:

Sapo Lidocaína al 2% Bupivacaina 0,5%Solución salina Equipo de disección Jeringas de 1 mlGotero

IV PROCEDIMIENTO:

EXPERIMENTO: An estesia tronc ular

a) Descerebrar un sapo y poner en descubierto los nervios ciáticos procurandono lastimarlos y medir la irritabilidad de ambos nervios mediante estímuloseléctricos débiles.

b) Poner en contacto cada nervio ciático con lidocaína al 2% (izquierdo) ybupivacaina al 0,5 % (derecho) dos minutos después estimular ambos nerviospor encima y por debajo de la zona en que estuvo en contacto con elanestésico.

c) Observar y comparar los resultados y hacer un cuadro explicativo.


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PRACTICA No 06

ANESTESIA GENERAL


Anestesia General: Periodos de la anestesia general. Clasificación. Farmacología de los Barbitúricos, Ketamina. Fisiología del Sistema Nervioso Central.

Fisiología del Sistema Límbico.II. OBJETIVOS:

Producir un cuadro de anestesia general en modelos experimentales. Observar y constatar las características de la anestesia general.

III MATERIALES:

Ratones (Mus musculus) Cronometro AlgodónCampana de vidrio o Jaula para medir Jeringas 1 mlFrasco de boca ancha Consumo de oxigeno Cloruro de Etilo

Ketamina 50 mg/ml Pentobarbital sod. 0,4% Balanza

IV PROCEDIMIENTO:

EXPERIMENTO 1:

a) Tomar los datos basales de la sensibilidad, motilidad y estado de alerta.b) Colocar dentro de la campana un ratón y un algodón impregnado con éter.c) Anotar los tiempos en que se empieza a perder la sensibilidad, la motilidad y el

estado de alerta, y el tiempo de recuperación.

RESULTADOS:

E T E R

Control Perdida Recuperación

Sensibilidad

Motilidad

Estado de alerta


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EXPERIMENTO 2: An estesia diso ciativ a.

a) Tomar los datos basales de la sensibilidad, motilidad y estado de alerta.b) Administrar por vía i. p. 45 mg/kg de Ketamina.c) Anotar y observar los efectos que se presentan.

EXPERIMENTO 3: Consum o d e oxigeno en anestesia general .

a) Determinar el consumo normal de oxigeno en un ratón.b) Administrar por vía i. p. pentobarbital (50 mg/kg) cuando se encuentre en

anestesia profunda determinar el consumo de oxigeno a los 5, 10, 15, 30, 45 y 60minutos.

RESULTADOS:

Cosumo de oxigeno

5° 10° 15° 30° 45° 60°

BASAL

PENTOBARBITAL

Consumo de O2( cm)

5 10 15 30 45 60Tiempo


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PRACTICA No 07

ACTIVIDAD ANTICONVULSIVANTE

I. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE CONOCER:

Bioquímica y neurotransmisión en el SNC. Convulsiones, etiología y tipos. Características de las convulsiones. Farmacología del Fenobarbital, Difenilhidantoina y Diazepam.

II OBJETIVOS:

Demostrar la actividad anticonvulsivante de los fármacos frente a la estricnina.

III MATERIALES:

Ratón (Mus musculus) Fenobarbital 5 mg/ml Jeringas de 1 mlDiazepam 0,3 mg/ml Estricnina 0,5% Difenilhidantoina 3 mg/mlBalanza Suero fisiológico

IV PROCEDIMIENTO:

a) Observar en el control la actividad espontánea, reflejo de enderezamiento.b) Pesar y marcar a los ratones.c) Determinar el volumen de cada fármaco que se inyectara por vía i.p. en el

siguiente orden:

Suero fisiológico 10 ml/kg Fenobarbital 50mg/kgDifenilhidantonia 30mg/kg Diazepam 9 mg/kg

d) Esperar 15 minutos y hacer las observaciones anteriores.e) Administrar por vía i.p. estricnina 20 mg/kg y anotar la hora.f) Observar el grado de protección de los fármacos comparando el P.L.,

intensidad y tipo de convulsiones con respecto al control.g) Anotar los resultados, discutir y sacar conclusiones.

FARMACO HORA ESTRICTA P.L. INTENSIDAD OBSERVACIONES

Suero Fisiológico

Fenobarbital

Difenilhidantonia

Diazepam


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PRACTICA No 08

ACTIVIDAS ANALGESICA

I CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE CONOCER

Mecanismo del dolor Mediadores químicos Farmacología de la morfina, metamizol y tramadol

II OBJETIVOS:

Comparar los efectos analgésicos de la Morfina, Metamizol, Paracetamol yTramadol frente al dolor térmico y al dolor inducido por una sustancia químicaen animales de experimentación

Determinar la potencia analgésica de los fármacos utilizados.

III MATERIALES:

Ratones (Mus musculus) Jeringas de 1 ml Paracetamol 5 mg/mlMetamizol 5 mg/ml Suero fisiológico Tramadol 2.5 mg/ml Ácido acético 1% Balanza

IV PROCEDIMIENTO:

EXPERIMENTO 2: ANALGESIA QUIMICA

a) Pesar y marcar los animalesb) Al control administrar por vía i.p. suero fisiológica 1ml/kgc) Al segundo ratón administrar por vía i.p. Morfina 10 mg/kgd) Al tercer ratón administrar por vía i.p. Metamizol 30 mg/kge) Al cuarto ratón administrar vía i.p. Tramadol 20 mg/kgf) Al quinto ratón administrar vía peroral paracetamol 50 mg/kg. Después de 15

min. de administración los fármacos administrar 0,3 ml de acido acético 1% ycontabilizar el numero de contorsiones (retorcimientos y estiramiento) que se

produce durante 30 min.

RESULTADOS

RATON No Contorsiones % analgesia %analgesia

Control 100 0

Metamizol

Tramadol

Paracetamol


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ESCUELA PROFESIONAL DE MEDICINA HUMANACURSO DE FARMACOLOGÍA MEDICA

PRÁCTICA No 09

ASMA EXPERIMENTAL

I CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER:

Fisiopatología del asma bronquial Farmacología de los broncodilatadores Histamina: Efectos farmacológicos. Acciones sobre el músculo liso. Receptores

histaminergicos Farmacología de los Antihistaminicos

II OBJETIVOS:

Producir asma bronquial experimental por nebulización de histamina Observar los efectos de los fármacos empleados

III MATERIALES:

Cobayo 02 por mesa Clorfenamina 10 mg/ml Jeringa de 1mlHistamina 10 mg/ml Balón de oxigeno Campana de vidrio Adrenalina 10 mg/ml Nebulizador

IV PROCEDIMIENTO:

a) Al cobayo control administrar por vía i.p. suero fisiológico 1ml/kgb) Al segundo cobayo administrar por vía i.p. clorfenamina 20 mg/kgc) Después de 20 minutos tomar los datos basales sobre la frecuencia respiratoria y

tipo de respiración.d) Colocar ambos cobayos dentro de la campana de vidrio y nebulizar con

histaminae) Observar los cambios respiratorio en ambos animales P.L. y DEf) Si es necesario administrar al control adrenalina 0,2 por vía i.p. y 0,2 ml por vía

s.c.


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PRACTICA No 10

ACTIVIDAD INOTROPA Y CRONOTROPA


Fisiología cardiovascular Farmacología de los cardiotónicos y cardioestimulantes Efectos de la adrenalina acetilcolina atropina y deslanosido sobre el corazón Farmacocinética y farmacodinamia de los cardiotonicos y cardioestimulantes

II OBJETIVOS:

Demostrar experimentalmente los efectos de los fármacos sobre el miocardio Comparar las variaciones de la fuerza de contracción y la frecuencia cardiaca

provocada por los fármacos

III MATERIALES:

Sapo Adrenalina 1/1000 Acetilcolina /1000Solución salina Atropina 0,25 mg/ml Deslanosido C 0,2 mg/mlEquipo de disección Gotero

IV PROCEDIMIENTO:

a) Inmovilizar el sapo mediante destrucción de la medula espinalb) Colocarlo y fijarlo de sus patas con ayuda de alfileres en un tableroc) Apertura a nivel del esternon y poner en descubierto el corazón.d) Registrar la fuerza de contracción y la frecuencia cardiaca basal mediante el

promedio de 3 mediciones cada 15 segundose) Instilar 5 gotas de cada fármaco a nivel del seno venenoso y anotar los

resultados.

RESULTADOS:

CONTROL Ach ATROPINA ADRENALINA DESLANOSIDO C

Fuerza decontracción

Frecuenciacardiaca


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PRACTICA No 11

PRUEBAS DE CONCENTRACIÓN Y DILUCIÓN URINARIAS


Fisiología Renal y Fisiopatología del balance hidroelectrolítico. Farmacología de los diuréticos.

II OBJETIVOS:

Determinar diuresis, concentración y sobrecarga hídrica. Determinar efectos farmacológicos de los diuréticos.

III MATERIALES: Sujeto de prueba. Beaker 1 l Probeta graduadaFrascos para orina 1 amp. de furosemida 1 amp. de ADH (Pitressin)

IV PROCEDIMIENTO

Experim ento No 01: Prueba de dilu ción, test de so brecarga hídric a.

Colocar al sujeto de prueba en reposo durante la misma.

Evacuar la vejiga por micción espontánea y marcar la muestra. Ingerir 20 ml de agua por Kg. de peso en 15 minutos. Al terminar la ingesta de

agua, marcar la hora e iniciar la recolección de la orina cada 20 minutos pormicción espontánea, en muestras separadas por tres horas.

Determinar el momento en que se produce la mayor diuresis. Determinar el volumen de orina evacuado en cada una de las muestras. Determinar la densidad urinaria de cada una de las muestras.

Experim ento No 02: Prueba de con centración, test de hidrop enia

Colocar el sujeto de prueba en dieta seca durante 10 horas. Evacuar la vejiga por micción espontánea y marcar la muestra. Marcar la hora e iniciar la recolección de la orina cada 20 minutos por micción

espontánea, en muestras separadas. Determinar el volumen de orina evacuado en cada una de las muestras. Determinar la densidad urinaria de cada una de las muestras. Aplicar por vía I.M. ADH o fumar dos cigarrillos y observar los resultados.

Experim ento No 03: Control

Colocar al sujeto de prueba en reposo durante la misma. Evacuar la vejiga por micción espontánea y marcar la muestra. Iniciar la recolección de la orina cada 20 min por micción espontánea, en

muestra separadas por tres horas. Determinar el momento en que se produce la mayor diuresis. Determinar el volumen de orina evacuado en cada una de las muestras. Determinar la densidad urinaria de cada una de las muestras.


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PRACTICA No 12

ACTIVIDAD HIPOGLICEMINANTE

I CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCEER:

Fisiopatología de la diabéticos Farmacología de los antidiabéticos

II OBJETIVOS:

Evaluar la actividad hipoglucemiante de los fármacos en ratasnormoglicemicas.

Determinar la curva de actividad hipoglucemiante.

III MATERIALES:

Ratas Suero fisiológico JaulaInsulina 5 U/ml Glucómetro Sonda de metalGlibenclamida 1mg/ml Cronometro Tiras reactivasJeringa de 1 ml

IV PROCEDIMIENTO

EXPERIMENTO: Efecto hip ogluc emiante en ratas norm ogl icem icas

a) Tomar los datos basales de glicemia animalb) Al control administrar por vía i.p. suero fisiológico 10 ml/kgc) A la segunda rata administrar por vía i.p. insulina 3U/kgd) A la tercera rata administrar por vía peroral Glibenclamida 1,5 mg/kge) Determinar el nivel de glucosa utilizando el glucómetro en el tiempo cero 5, 30,

60 y 90 min.f) Anotar los resultados y discutir

RESULTADOS:

RATAS c 0 5 10 15 20 30

BASAL

GLIBENCLAMIDA

INSULINA


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PRACTICA No 13

ACTIVIDAD ANTICOAGULANTE


Mecanismo de la Hemostasia Coagulación sanguínea Mecanismos Farmacología de los anticoagulantes

II OBJETIVOS:

Evaluar experimental la acción anticoagulante en sangre de sapo y Evaluar el tiempo de coagulación de los fármacos

III MATERIALES:

Sapo Heparina Placas de porcelanaSolución salina Gotero Jeringa de 1mlEquipo de disección Protamina Warfarina

IV PROCEDIMIENTO:

a) Inmovilizar el sapo mediante destrucción de la medula espinalb) Colocarlo y fijarlo de sus patas con ayuda de alfileres en un tableroc) Apertura a nivel del esternon y poner en descubierto el corazónd) Extraer 0,1 ml de sangre y colocarlo sobre una placa de porcelana que

contiene 2 gotas de cada fármacoe) Determinar el tiempo en que demora en formar coágulos anotarlos y discutir

RESULTADOS:

FARMACOS Tiempo de Coagulación Observaciones

Solución salina

Heparina

Protamina

Warfarina

Protamina + Heparina

Citrato de sodio

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