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Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias 1 Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias| Guía para Prácticas de Laboratorio IAI215 - Botánica GUÍA PARA PRÁCTICAS DE LABORATORIO

GUÍA PARA PRÁCTICAS DE LABORATORIO - udla.edu.ec · Elaborar un informe que esté compuesto por las siguientes secciones: Introducción (no más de 3 carillas), Objetivos, Materiales,

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Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias| Guía para Prácticas de

Laboratorio

IAI215 - Botánica

GUÍA PARA PRÁCTICAS DE LABORATORIO

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Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias| Guía para Prácticas de

Laboratorio

Ingeniería Agroindustrial y de

Alimentos

Presentación

La presente Guía para Prácticas de Laboratorio ha sido desarrollada para que los

estudiantes de la asignatura de Botánica dispongan de la información necesaria

para la realización de las prácticas correspondientes de acuerdo a los temas,

objetivos y resultados de aprendizaje definidos. En este documento se incluye el

proceso en el laboratorio de experimentación e investigación, con los respectivos

recursos y resultados esperados, para que el estudiante pueda desarrollar su

práctica-taller y la elaboración de sus respectivos informes o cualquier otra

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Laboratorio

evidencia de aprendizaje, que serán evaluadas con las rúbricas que constan en

los anexos.

La Guía presenta una secuencia donde se especifica cada sesión de prácticas en

laboratorio con su respectivo proceso didáctico y formativo.

ASIGNATURA: Botánica

SIGLA: IAI215 PARALELO: PERIODO:

Fecha: Marzo 2017

PRÁCTIC

A No: 1

SESIONES: 1

TEMA: Célula

Vegetal

1 2017-2

1.- OBJETIVO

Objetivo General: Distinguir varios tipos de células vegetales y estimar el tamaño de las mismas. Objetivos Específicos: 1. Disponer correctamente el microscopio para las observaciones.

2. Identificar fácilmente las partes de un microscopio compuesto.

3. Observar estructuras celulares estudiadas en clase.

4. Manejar adecuadamente la técnica de preparar y observar muestras en gota

fresca y utilizando tinciones simples.

5. Determinar el tamaño de la muestra en el microscopio.

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Laboratorio

2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS

El estudiante será capaz de: 1. Preparar muestras para observación en microscopio en gosta fresca y utilizando tinciones a partir de muestras vegetales. 2. Manejar correctamente el microscopio compuesto y observar muestras de forma correcta en el equipo. 3.Estimar tamaños de células en el microscopio. 4. Diferenciar algunos tipos de células vegetales y hacer comparaciones entre las mismas.

Resultados esperados: 1. Disponer correctamente del microscopio compuesto. 2. Observación de células vegetales con y sin tinción. 3. Hacer comparaciones entre los diferentes tipos de células vegetales observadas y determinar el por qué son diferentes morfológicamente.

2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS

Microscopio compuesto 15 Unidades

Estereomicroscopios 15 Unidades

Papel milimetrado

Cubre y portaobjetos

Bisturís

Azas

Gotero o Frasco Lavador

Papel Toalla

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Laboratorio

Hipoclorito 250 ml

Etanol 70% 250 ml

Sudan III 20 ml

Lugol 30 ml

Azul de Metileno 30 ml

Solución salina al 0.1 % (Suero fisiológico) 150ml

3.- ACTIVIDAD FORMATIVA

Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberás dominar lo siguiente:)

Métodos de tinción de células vegetales. Microscopía óptica y utilización del microscopio óptico compuesto. Estructura y partes de la célula vegetal. Tipos de células que forman los tejidos de las plantas.

Descripción de la actividad: 1. OBSERVACIÓN EN MICROSCOPIO Y DETERMINACIÓN DE TAMAÑOS DE

MUESTRAS

1. Medida microscópica: La unidad de longitud más frecuentemente usada en

microscopio es la micra, cuyo símbolo es la letra griega “mu” (µ) y equivale a una

milésima de milímetro.

Coloque un pedazo de papel milimetrado sobre el portaobjeto de tal manera que al

enfocar al microscopio pueda observar: Ponga el papel milimetrado sobre el portaobjetos

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Laboratorio

en el centro. Ponga una gota de agua sobre el papel. Después de esperar unos

segundos (hasta que el agua haya empapado el papel), coloque la laminilla sobre la

preparación, si quedan algunas burbujas de aire se presiona ligeramente la laminilla con

un lápiz hasta que desaparezcan. Enfocar para poder ver las líneas del papel

milimetrado.

2. Mida entonces el diámetro del campo correspondiente al objetivo de menor

aumento contando el número de cuadrículas observadas.

¿Cuánto mide el diámetro del campo del objetivo de menor aumento?

3. Con el dato anterior es posible determinar el diámetro del campo correspondiente

al objetivo de mayor aumento; basta dividir el diámetro encontrado por la razón entre las

magnificaciones del objetivo de mayor aumento y de menor aumento. Por ejemplo, si el

aumento del objetivo de mayor significación es de 45x y el otro es de 15x la razón

mencionada será 45/15 = 3; ahora si el campo correspondiente al objetivo de menor

aumento es de 1.500. el diámetro de campo para mayor aumento es 1.500/3 = 500

micras.

Determinar el tamaño del campo de mayor aumento.

CUIDADO!!!!! No acerque sin observar el objetivo del microscopio. Si lo hace y no

tiene el espacio suficiente PUEDE ROMPER EL OBJETIVO del microscopio.

2. PREPARACIÓN DE MUESTRAS

A) Las cebollas son bulbos formados por células vivas de las cuales pueden crecer

raíces y hojas cuando las cebollas se plantan o se almacenan en un sitio húmedo.

1. Corte un bulbo de cebolla en cuatro partes. Se observa que cada parte se separa

por sí sola en capas llamadas catáfilos. Tome uno de estos catafilos con la superficie

cóncava hacia usted y rómpala, entonces se desprende con facilidad una capa muy

delgada y transparente que es la epidermis.

2. Tome un fragmento de epidermis y colóquelo en un portaobjetos con una gota de

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Laboratorio

agua de modo que la superficie que estaba en contacto con el catafilo quede hacia arriba.

Coloque sobre él un cubreobjetos. Dibuje bajo el campo de observación de menor hasta

el de mayor aumento.

3. Luego saque la preparación del microscopio y coloque una gota de lugol en el

borde del cubre objeto para que la solución penetre por difusión. Extraiga el líquido

sobrenadante con papel toalla.

4. Cubrir la muestra con un cubreobjetos.

5. Observar las estructuras con cada opción de aumento que permita el microscopio.

Empiece primero con el de menor aumento. Usted mismo enfoque con los lentes del

microscopio. CUIDADO!!!!! No acerque sin observar el objetivo del microscopio. Si lo

hace y no tiene el espacio suficiente PUEDE ROMPER EL OBJETIVO del

microscopio.

6. Hacer dibujos para cada observación y calcular el tamaño real de la muestra que

está observando.

7. Vuelva a hacer el procedimiento antes descrito desde el paso 2, pero esta vez en

vez de adicionar lugol, adicione una gota de azul de metileno.

B) El puerro

1. Tomar una sección de epidermis de puerro (se puede extraer con el bisturí)

2. Extender la epidermis sobre un portaobjetos que tenga una gota de solución salina

sobre su superficie. Procurar que la epidermis esté completamente extendida para que

pueda ver las células. Coloque sobre él un cubreobjetos. Dibuje bajo el campo de

observación de menor hasta el de mayor aumento.

3. Luego saque la preparación del microscopio y coloque una gota de azul de

metileno en el borde del cubre objeto para que la solución penetre por difusión. Extraiga

el líquido sobrenadante con papel toalla.

4. Cubrir la muestra con un cubreobjetos.

5. Observar las estructuras con cada opción de aumento que permita el microscopio.

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Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias| Guía para Prácticas de

Laboratorio

Empiece primero con el de menor aumento. Usted mismo enfoque con los lentes del

microscopio. CUIDADO!!!!! No acerque sin observar el objetivo del microscopio. Si lo

hace y no tiene el espacio suficiente PUEDE ROMPER EL OBJETIVO del

microscopio.

6. Hacer dibujos para cada observación y calcular el tamaño real de la muestra que

está observando.

C) La Sábila

1. Tomar una sección de epidermis de sábila (se puede extraer con el bisturí)

2. Extender la epidermis sobre un portaobjetos que tenga una gota de solución salina

sobre su superficie. Procurar que la epidermis esté completamente extendida para que

pueda ver las células. Coloque sobre él un cubreobjetos. Dibuje bajo el campo de

observación de menor hasta el de mayor aumento.

3. Luego saque la preparación del microscopio y coloque una gota de azul de

metileno en el borde del cubre objeto para que la solución penetre por difusión. Extraiga

el líquido sobrenadante con papel toalla.

4. Cubrir la muestra con un cubreobjetos.

5. Observar las estructuras con cada opción de aumento que permita el microscopio.

Empiece primero con el de menor aumento. Usted mismo enfoque con los lentes del

microscopio. CUIDADO!!!!! No acerque sin observar el objetivo del microscopio. Si lo

hace y no tiene el espacio suficiente PUEDE ROMPER EL OBJETIVO del

microscopio.

6. Hacer dibujos para cada observación y calcular el tamaño real de la muestra que

está observando.

D) Pulpa de tomate

1. Extraer un poco de pulpa de tomate con la ayuda de una pinza. sobre un

portaobjetos que tenga una gota de solución salina sobre su superficie.

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Laboratorio

2. Coloque sobre él un cubreobjetos. Dibuje bajo el campo de observación de

menor hasta el de mayor aumento.

3. Luego saque la preparación del microscopio y coloque una gota de azul de

metileno en el borde del cubre objeto para que la solución penetre por difusión. Extraiga

el líquido sobrenadante con papel toalla.

4. Cubrir la muestra con un cubreobjetos.

5. Observar las estructuras con cada opción de aumento que permita el microscopio.

Empiece primero con el de menor aumento. Usted mismo enfoque con los lentes del

microscopio. CUIDADO!!!!! No acerque sin observar el objetivo del microscopio. Si lo

hace y no tiene el espacio suficiente PUEDE ROMPER EL OBJETIVO del

microscopio.

6. Hacer dibujos para cada observación y calcular el tamaño real de la muestra que

está observando.

6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

ACHÁ D., FONTÚRBEL F., MONDACA D., ZAMBRANA I. 1999. Introducción a la

Botánica. Bolivia. 154 p.

FULLER J., ZANE B., PAYNE W., BALBACH M. 1974. Botánica. Interamericana. México D.F. 512 p. Iqbal H. (2008). Agricultural Botany. Delhi, India. 269 p. Peña L. (2011). Manual de Histología Vegetal. México. Mundi Prensa. Ross M., Pawlina W. (2007). Histología. Texto y Atlas a color con Biología Celular y Molecular. Buenos Aires, Argentina. Editorial Médica Panamericana. Vargas G. (2011). Botánica General. Desde los musgos hasta los árboles. Costa Rica. Promade.

7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS

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Laboratorio

Detalle de las guías para la ejecución de las tareas: Elaborar un informe que esté compuesto por las siguientes secciones: Introducción (no más de 3 carillas), Objetivos, Materiales, Métodos, Resultados, Discusión

y Conclusiones

Sistema de Evaluación:

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Laboratorio

Además se incluyen formatos, plantillas, modelos, fotografías u otros, necesarios para la

realización de la tarea.

ASIGNATURA: Botánica

SIGLA: IAI215 PARALELO: PERIODO:

Fecha: Marzo 2017

PRÁCTIC

A No: 2

SESIONES: 1

TEMA:

Observación y

diferenciación de

tejidos Vasculares

y de Protección

2017-2

1.- OBJETIVO

Objetivo General:

Diferenciar tejidos vasculares y de protección mediante tinción y microscopía.

Objetivos Específicos:

1. Observar secciones de plantas correspondientes a tallos con diferentes tejidos de

protección y tejidos vasculares.

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Laboratorio

2. Aprender a diferenciar los tejidos antes mencionados y compararlos con otros

tejidos presentes en los tallos de las plantas estudiadas.

3. Observar e identificar las células que tienen sustancias como la suberina o la

cutina usando dos tipos de tinción.

2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS

El estudiante será capaz de: 1. Preparar muestras para observación en microscopio con tinción para observación de tejidos vasculares y de protección. 2. Diferenciar el tejido de protección y vascular del resto de tejidos presentes en un tallo. 3. Comparar la morfología de tejidos vasculares y de protección con respecto a otros tipos de tejidos.

Resultados esperados: 1. Muestras de tejidos vasculares y de protección con tinción. 2. Diferenciación de Tejidos vasculares y de protección.

2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS

Pinzas

Bisturís

Azul de metileno 60 ml

Goteros

Portaobjetos

Cubreobjetos

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Laboratorio

Suero fisiológico 150 ml

Hipoclorito de sodio 250 ml

Microscopios compuestos 15 Unidades

Alcohol al 70% 250 ml

Sudán III 20 ml

3.- ACTIVIDAD FORMATIVA

Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberás dominar lo siguiente:)

Métodos de tinción de células vegetales. Microscopía óptica y utilización del microscopio óptico compuesto. Estructura de tejidos de protección y vasculares. Estructura, localización y morfología de la epidermis. Estructura, localización y morfología del Xilema y el Floema.

Descripción de la actividad:

A) Detección de Suberina:

1. Hacer cortes transversales muy finos del tallo de geranio y rosa

2. Poner los cortes en una caja petri

3. Sumergir los cortes en alcohol al 70% durante 3 minutos.

4. Pasar los cortes a una caja petri con Sudán III y dejarlos durante 3 a 4 minutos en

la solución.

5. Proceder a lavar los cortes en agua destilada varias veces.

6. Colocar los cortes en un portaobjetos.

7. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio.

8. Mirar las estructuras que se tiñen de naranja: son los tejidos que tienen suberina.

Dibujar lo que observa con los diferentes objetivos del microscopio.

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Laboratorio

9. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejido que tienen color naranja.

Compárelos con los demás tejidos del tallo.

10. Intentar identificar los tejidos vasculares floema y xilema

B) Detección de Cutina:

1. Hacer cortes transversales muy finos del tallo de hiedra.

2. Poner los cortes en una caja petri

3. Sumergir los cortes en Sudán III durante 3 a 4 minutos.

4. Proceder a lavar los cortes en agua destilada varias veces.

5. Colocar los cortes en un portaobjetos.

6. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio.

7. Mirar las estructuras que se tiñen de naranja: son los tejidos que tienen suberina.

Dibujar lo que observa con los diferentes objetivos del microscopio.

8. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejido que tienen color naranja.

Compárelos con los demás tejidos del tallo.

9. Intentar identificar los tejidos vasculares floema y xilema

6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Peña L. (2011). Manual de Histología Vegetal. México. Mundi Prensa. Ross M., Pawlina W. (2007). Histología. Texto y Atlas a color con Biología Celular y Molecular. Buenos Aires, Argentina. Editorial Médica Panamericana. Vargas G. (2011). Botánica General. Desde los musgos hasta los árboles. Costa Rica. Promade. Iqbal H. (2008). Agricultural Botany. Delhi, India. 269 p.

7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS

Detalle de las guías para la ejecución de las tareas: Elaborar un informe que esté compuesto por las siguientes secciones: Introducción (no más de 3 carillas), Objetivos, Materiales, Métodos, Resultados, Discusión

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Laboratorio

y Conclusiones

Sistema de Evaluación:

Además se incluyen formatos, plantillas, modelos, fotografías u otros, necesarios para la

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Laboratorio

realización de la tarea.

ASIGNATURA: Botánica

SIGLA: IAI215 PARALELO: PERIODO:

Fecha: Abril 2017

PRÁCTIC

A No: 3

SESIONES: 1

TEMA:

Observación y

Diferenciación de

tejidos

fundamentales y

de sostén.

2017-2

1.- OBJETIVO

Objetivo General:

Identificar tejidos fundamentales y de sostén en distintos órganos vegetales para determinar la estructura de las células que los conforman.

Objetivos Específicos:

1. Observar secciones de plantas correspondientes a hojas, pétalos y tubérculos de

diferentes tipos de plantas vasculares.

2. Aprender a diferenciar los tejidos diferentes tipos de tejidos parenquimatosos y

compararlos con otros tejidos presentes en los órganos de las plantas estudiadas.

3. Observar e identificar las células de sostén y de parénquima por color y forma;

asociando la estructura con la función.

2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS

El estudiante será capaz de: 1. Preparar muestras para observación en microscopio de tejidos fundamentales y de

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Laboratorio

sostén. 2. Manejar correctamente el microscopio compuesto y observar muestras de forma correcta en el equipo. 3.Diferenciar el tejido de sostén y fundamental en las muestras observadas. 4. Analizar la relación entre la morfología de los tejidos fundamentales y de sostén con la función que cumplen en el vegetal.

Resultados esperados: 1. Muestras de tejidos fundamentales y de sostén. 2. Diferenciación de Tejidos de sostén y fundamentales.

2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS

Pinzas

Bisturís

Azul de metileno 60 ml

Safranina 20 ml

Lugol 60 ml

Goteros

Portaobjetos

Cubreobjetos

Suero fisiológico 150 ml

Hipoclorito de sodio 150 ml

Microscopios compuestos 15 Unidades

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Laboratorio

3.- ACTIVIDAD FORMATIVA

Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberás dominar lo siguiente:)

Métodos de tinción de células vegetales. Microscopía óptica y utilización del microscopio óptico compuesto. Estructura de tejidos de sostén y fundamentales. Estructura, localización y morfología de los diferentes tipos de parénquimas. Estructura, localización y morfología de tejidos de sostén.

Descripción de la actividad:

A) Observación de parénquima de almacenamiento en tubérculos de papa.

1. Hacer cortes transversales muy finos del tubérculo de papa

2. Poner los cortes en una caja petri

3. Sumergir los cortes en lugol durante 5 minutos.

4. Proceder a lavar los cortes en agua destilada varias veces.

5. Colocar los cortes en un portaobjetos.

6. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio.

7. Mirar las estructuras que se tiñen de morado. Dibujar lo que observa con los

diferentes objetivos del microscopio.

8. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejidos que se observan en la placa.

B) Observación de tejidos de sostén en tallos de rosa

1. Hacer cortes transversales muy finos del tallo.

2. Poner los cortes en una caja petri

3. Sumergir los cortes en safranina durante 5 minutos.

4. Proceder a lavar los cortes en agua destilada varias veces.

5. Colocar los cortes en un portaobjetos.

6. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio.

7. Mirar las estructuras que se tiñen de rojo-rosado. Dibujar lo que observa con los

diferentes objetivos del microscopio.

8. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejidos que se observan en la placa.

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Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias| Guía para Prácticas de

Laboratorio

C) Observación de células pétreas en pera

1. Tomar con la punta de un bisturí una pequeña cantidad de pulpa de pera.

2. Poner las porciones de células en un portaobjetos.

3. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio.

4. Identifique y dibuje las células pétreas (esclereidas) de la pulpa de la pera.

D) Observación de tejidos de sostén y parénquimas en hojas y tallos de

geranios:

1. Hacer cortes transversales muy finos del tallo.

2. Poner los cortes en un portaobjetos y depositar una gota de solución salina

3. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio.

4. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejidos de sostén. Compárelos con

los demás tejidos del tallo.

E) Observación de tejidos de parénquima en hojas de muestra

1. Hacer cortes transversales muy finos de las hojas

2. Identifique también los tejidos del parénquima en las hojas de las muestras

entregadas.

3. Poner los cortes en un portaobjetos y depositar una gota de solución salina

4. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio.

5. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejidos de parénquima. Compárelos

con los demás tejidos de la hoja.

F) Observación de tejidos de parénquima en pétalos de muestra

1. Hacer cortes transversales muy finos de los pétalos

2. Identifique también los tejidos del parénquima en los pétalos de las muestras

entregadas.

3. Poner los cortes en un portaobjetos y depositar una gota de solución salina

4. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio.

5. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejidos de parénquima. Compárelos

con los demás tejidos de la hoja.

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Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias| Guía para Prácticas de

Laboratorio

6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Iqbal H. (2008). Agricultural Botany. Delhi, India. 269 p. Peña L. (2011). Manual de Histología Vegetal. México. Mundi Prensa. Ross M., Pawlina W. (2007). Histología. Texto y Atlas a color con Biología Celular y Molecular. Buenos Aires, Argentina. Editorial Médica Panamericana. Otegui M., Totaro M. Atlas de Histología Vegetal. Facultad de Ciencias Exactas Químicas y Naturales. Universidad Nacional de Misiones. Posadas, Argentina. 13 p. Vargas G. (2011). Botánica General. Desde los musgos hasta los árboles. Costa Rica. Promade.

7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS

Detalle de las guías para la ejecución de las tareas: Elaborar un informe que esté compuesto por las siguientes secciones: Introducción (no más de 3 carillas), Objetivos, Materiales, Métodos, Resultados, Discusión

y Conclusiones

Sistema de Evaluación:

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Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias| Guía para Prácticas de

Laboratorio

Además se incluyen formatos, plantillas, modelos, fotografías u otros, necesarios para la

realización de la tarea.

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Laboratorio

ASIGNATURA: Botánica

SIGLA: IAI215 PARALELO: PERIODO:

Fecha: Mayo 2017

PRÁCTIC

A No: 4 SESIONES: 1

TEMA:

Observación y

clasificación de

tipos de hojas.

2017-2

1.- OBJETIVO

Objetivo General:

Clasificar tipos de hojas de diversas plantas para determinar la estructura externa e interna de las hojas..

Objetivos Específicos:

1. Observar secciones de hojas para determinar los diferentes tipos de tejidos

presentes en las hojas de varios tipos de plantas.

2. Clasificar por orden, familia género y especie las plantas que sirvieron de muestra

para elaboración del laboratorio.

3. Aprender a observar con detalle las estructuras externas de diferentes tipos de

hojas.

4. Aprender la clasificación y descripción botánica de hojas de varias plantas de

regiones templadas y tropicales del Ecuador.

2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS

El estudiante será capaz de: 1. Clasificar morfológicamente hojas de diferentes procedencias (materiales vegetales distintos).

Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias

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Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias| Guía para Prácticas de

Laboratorio

2. Diferenciar hojas de distintos tipos de plantas de zonas tropicales y templadas. 3. Diferenciar las estructuras internas y externas de las hojas.

Resultados esperados: 1. Clasificación de hojas 2. Diferenciación de tipos de hojas y asociar con adaptación a distintos climas. 3. Observar de manera óptima las estructuras internas y externas de las hojas.

2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS

Pinzas

Bisturís

Azul de metileno 30 ml

Goteros

Portaobjetos

Cubreobjetos

Suero fisiológico 150 ml

Hipoclorito de sodio 150 ml

Microscopios compuestos 15 Unidades

Estereoscopios

Lugol 30 ml

Sudan III 20 ml

Hojas prensadas de distintas variedades de plantas

Hojas frescas de diferentes tipos de plantas

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Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias| Guía para Prácticas de

Laboratorio

3.- ACTIVIDAD FORMATIVA

Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberás dominar lo siguiente:)

Estructura interna y externa de las hojas. Microscopía óptica y utilización del microscopio óptico compuesto. Conocer cuadros de clasificación de las hojas.

Descripción de la actividad:

1. Observación de los tejidos internos de las hojas

A) Observación de secciones de hojas:

1. Hacer cortes transversales muy finos del limbo de las muestras de hojas

entregadas en clase

2. Colocar los cortes en un portaobjetos.

3. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio.

4. Dibujar lo que observa con los diferentes objetivos del microscopio.

5. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejidos que se observan en la

placa. Tratar de identificar colénquima, parénquima, epidermis, tejidos

vasculares (floema y xilema).

B) Observación de tejidos de los pecíolos de las hojas

1. Hacer cortes transversales muy finos del pecíolo.

2. Colocar los cortes en un portaobjetos.

3. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio.

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Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias| Guía para Prácticas de

Laboratorio

4. Dibujar lo que observa con los diferentes objetivos del microscopio.

5. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejidos que se observan en la

placa. Mencionar las diferencias más significativas con respecto a los tallos

2. Observación externa, clasificación y descripción botánica de

hojas de plantas

Cuadro1. Clasificación botánica de hojas (Romero, 2008 y Achá et al., 1999)

Variables de

descripción de la

hoja

Clasificación

1. Por la

consistencia de

las hojas

herbáceos, escamosos, coriáceos, rígidos, carnosos,

papiráceos

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Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias| Guía para Prácticas de

Laboratorio

2. Por el

crecimiento de

la prefoliación

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Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias| Guía para Prácticas de

Laboratorio

3. Por la

nervadura

4. Por la forma

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Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias| Guía para Prácticas de

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a) Por la forma de

su base

b) Por la forma de

su ápice

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Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias| Guía para Prácticas de

Laboratorio

5. Por los

márgenes de

las hojas

6. Cantidad de

lobulación

Número de lóbulos que forma el limbo

7. División foliar

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8. Por la filotaxia

de las hojas

(disposición en

el tallo).

9. Algunas

modificaciones

de las hojas

Cotiledones

Brácteas

Glumas

Catafilos

Espinas

Zarcillos

Filodios

Ascidias y utrículo

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31

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Laboratorio

6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Achá D., Fonturbel F., Mondaca D., Zambana I. 1999. Introducción a la Botánica. Herbario

Nacional de Bolivia. La Paz, Bolivia.

Iqbal H. (2008). Agricultural Botany. Delhi, India. 269 p. Peña L. (2011). Manual de Histología Vegetal. México. Mundi Prensa. Romero C. 2008. Curso de Botánica General. Escuela Superior de Agricultura.

Universidad Autónoma de Sinaloa. Sinaloa, México.Ross M., Pawlina W. (2007).

Histología. Texto y Atlas a color con Biología Celular y Molecular. Buenos Aires,

Argentina. Editorial Médica Panamericana.

Vargas G. (2011). Botánica General. Desde los musgos hasta los árboles. Costa Rica.

Promade.

7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS

Detalle de las guías para la ejecución de las tareas: Elaborar un informe que esté compuesto por las siguientes secciones: Introducción (no más de 3 carillas), Objetivos, Materiales, Métodos, Resultados, Discusión

y Conclusiones

Sistema de Evaluación:

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ASIGNA

TURA:

BOTÁNI

CA

SIGLA: IAI215 PARALELO: PERIODO: 2017-2

Fecha:

Mayo

2017

PRÁCTICA

No: 7 SESIONES:

2

TEMA:

Organografía de la flor

1.- OBJETIVO

Objetivo General

Reconocer prácticamente la organografía de flores.

Objetivos Específicos

Aprender sobre los distintos órganos de las flores y observarlos detalladamente.

Reconocer distintos tipos de flores usadas como nuestras durante la práctica y

clasificarlos por orden, familia, género y especie.

2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS

Adquirirás las siguientes habilidades:

1. Aprender sobre los distintos órganos de las flores.

2. Catalogar flores de acuerdo a su morfología.

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2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS

Cada grupo contará con microscopio compuesto/estereoscopios, escalpelo, pinza, suero

fisiológico, hipoclorito de sodio, flores de distinta conformación visual. También los

integrantes de los grupos serán responsables de traer consigo al día de práctica cámara

fotográfica y por lo menos 5 flores que visualmente sean distintas, y de cada tipo traerá 2

flores (para diferentes tipos de cortes).

Entre las flores aconsejadas, algunas son descritas a continuación: mora, arveja, flores

del género Prunus, narciso, manzano, pera, ortiga (Urtica) y magnolia.

3.- ACTIVIDAD FORMATIVA

Prerrequisitos

Organografía del tallo.

Organografía de la semilla.

Organografía de la flor.

Descripción de la actividad:

Cada grupo irá removiendo las estructuras más externas de las flores e irá analizando las

flores para su posterior reporte (composición de cada verticilio). Para ello en anexo se

adjunta una tabla de guía para el estudiante.

Durante la práctica se verá la morfología de las distintas flores y se irá nombrando las

estructuras que las componen. Se clasificará las flores de acuerdo a la posición de los

ovarios, simetría por disposición de verticilios; sexualidad. En este primer grupo de flores

(por tipo), se hará un corte longitudinal en el ovario, del cual se espera el dibujo

respectivo.

Con la segunda flor de cada tipo traído por el grupo, se hará cortes transversales de los

ovarios para su estudio: colocar una gota de suelo fisiológico en un portaobjetos, sobre el

cual se pondrá un corte fino de la muestra. Se procederá a tapar con un cubreobjetos y se

procederá a buscar granos de polen en germinación dentro de la cavidad ovárica de la

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flor. De igual manera dibujar el resultado e incluirlo en el informe respectivo.

6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Achá D., Fonturbel F., Mondaca D., Zambana I. 1999. Introducción a la Botánica. Herbario

Nacional de Bolivia. La Paz, Bolivia.

Romero C. 2008. Curso de Botánica General. Escuela Superior de Agricultura.

Universidad Autónoma de Sinaloa. Sinaloa, México.

Santamaría, M.P., Casekkes, J.R. y García Breijo, F.J. (2004). Prácticas de biología y

botánica. Ed Universidad Politécnica de Valencia. España. P 110-120.

UMSNH, 2010. Práctica 2. Flor: Cáliz, corola, androceo y gineceo. Manual de Prácticas de

Botánica III. Facultad de Biología. UMSNH. México.

7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS

A continuación se detalla la rúbrica de evaluación del informe respectivo.

PRÁCTICA Nr 5 PARALELO 1/3

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ANEXO

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ASIGNATUR

A: Botánica SIGLA:

IAI215 PARALELO: PERIODO:

2017-2

Fecha:

Mayo 2017

PRÁCTICA

No: 8

SESIONES:

1

TEMA:

Reconocer las Estructura

morfológicas de los frutos de

cultivos de importancia

agroindustrial

1.- OBJETIVO

General

Conocer e identificar la organografía de las plantas

Específicos

Identificar las diferentes estructuras de los frutos de varias especies de plantas de

importancia agroindustrial

2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS

Adquirirás las siguientes habilidades:

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1. Conocer el procedimiento para identificar las estructuras morfológicas de

los frutos

2. Identificar las diferentes estructuras del fruto y su función dentro del

crecimiento y desarrollo

2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS

Materiales:

Frutos de diferentes especies, papel toalla, bisturí, pinzas

Equipos.

Estereoscopio

3.- ACTIVIDAD FORMATIVA

Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberá conocer lo siguiente:)

La modalidad utilizada fue teórica en el aula (se dio a conocer la temática correspondiente

a su estructura morfológica)

Descripción de la actividad:

Descripción física de las estructuras externas e internas de los frutos de varias especies

6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Prost, J. y Michel, J. (1970) La Botánica y sus Aplicaciones Agrícolas. Editorial

Mundo Prensa. Madrid, España.

Doria J. (2010). Generalidades sobre las semillas: Su producción, conservación y

almacenamiento. Revisión Bibliográfica. Cultivos Tropicales. Vol 31. No.1. p.74-85.

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FAO. (2011). Recursos Fitogenéticos para la Alimentación y la Agricultura en el

Mundo. Resumen. Segundo Informe. 16 p.

7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS

Informe técnico de la práctica

Formato básico:

PRACTICA: Trabajo de campo

CATEGORIA 4 Excelente 3 Bueno 2 Regular NOTA

Trabajo en grupo Cumplimiento de tareas asignadas Presentación del informe

Además se incluyen formatos, plantillas, modelos, u otros, necesarios para la realización de la tarea.

ASIGNATURA: Botánica

SIGLA: IAI215 PARALELO: PERIODO:

Fecha: May 2017

PRÁCTIC

A No: 9

SESIONES: 3

TEMA: Herbarios:

Métodos de

conservación de

muestras secas de

plantas, estudio y

conservación de

Recursos

Fitogenéticos.

2017-2

1.- OBJETIVO

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Objetivo General:

Establecer la importancia de la conservación y estudio de los recursos fitogenéticos.

Objetivos Específicos: 1. Observar los métodos de conservación de muestras de plantas secas.

2. Identificar la importancia de la clasificación sistemática de las plantas

3. Comprender las razones para la conservación de los recursos fitogenéticos.

4. Analizar la biodiversidad vegetal existente en el Ecuador.

2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS

El estudiante será capaz de: 1. Comprender los mecanismos de conservación de muestras secas de vegetales. 2. Identificar la importancia de la conservación de los recursos fitogenéticos. 3. Estimar la gran biodiversidad de recursos fitogenéticos que dispone el Ecuador.

Resultados esperados: 1. Observación de métodos de conservación de vegetales secos. 2. identificar la importancia de toma de muestras de una manera adecuada 3. Observar muestras representativas de la biodiversidad de flora existente en el Ecuador.

2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS

Visita a un museo de plantas. Cámaras fotográficas Cuaderno de campo

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3.- ACTIVIDAD FORMATIVA

Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberás dominar lo siguiente):

Conocimiento sobre importancia de los recursos fitogenéticos. Criterios más importante de clasificación sistemática de vegetales. Definición de herbario

Métodos utilizados en un herbario.

Descripción de la actividad: Observación de procedimientos aplicados para la conservación de muestras secas de vegetales. Visita a la colección de plantas del Ecuador.

6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

ACHÁ D., FONTÚRBEL F., MONDACA D., ZAMBRANA I. 1999. Introducción a la

Botánica. Bolivia. 154 p.

FULLER J., ZANE B., PAYNE W., BALBACH M. 1974. Botánica. Interamericana. México D.F. 512 p. Iqbal H. (2008). Agricultural Botany. Delhi, India. 269 p. Vargas G. (2011). Botánica General. Desde los musgos hasta los árboles. Costa Rica. Promade.

7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS

Detalle de las guías para la ejecución de las tareas: Elaborar un informe que esté compuesto por las siguientes secciones:

Facultad de Ingeniería y Ciencias Agropecuarias

45

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Introducción (no más de 3 carillas), Objetivos, Materiales, Métodos, Resultados, Discusión

y Conclusiones

Sistema de Evaluación:

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ASIG

NATU

RA:

BOTÁ

NICA

SIGLA:

IAI215 PARALELO: PERIODO: 2017-2

Fecha:

Abril

207

PRÁCTIC

A No: 10

SESIONES:

2

TEMA:

Visita al Jardín

Botánico Quito

1.- OBJETIVO

General:

Valorar los diferentes tipos de plantas dado que tienen gran función en su hábitat y

por lo tanto es sumamente importante su conservación y protección.

Específicos:

Distinguir algunas plantas que se encuentran en nuestro país.

Generalizar la importancia ecológica de distintas plantas presentes en el Jardín

Botánico de Quito.

2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS

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1. Identificar las plantas más llamativas del lugar.

2. Asociar el rol de la Botánica en la clasificación y caracterización de

material vegetal para provecho del ser humano.

2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS

Libreta/cuaderno de anotaciones para escribir información mencionada o vista durante la

visita con el fin de crear un informe de la visita, el cual incluirá fotografías a tomarse

durante la visita al Jardín Botánico de Quito.

3.- ACTIVIDAD FORMATIVA

Prerrequisitos

Evolución de las plantas.

Conservación de recursos genéticos vegetales.

Descripción de la actividad:

Durante la visita guiada al Jardín Botánico de Quito, los estudiantes se organizarán en

grupos pequeños para una mejor comprensión de la información proporcionada por los

guías. Durante el recorrido se espera que el estudiante tome nota de lo comentado por el

guía, datos/hechos proporcionados, toma de fotos para la posterior elaboración del

reporte respectivo, el cual debe está determinado en los lineamientos de la materia.

6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

http://www.fao.org/focus/e/96/06/04-e.htm (recuperado el 3 de marzo 2014)

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7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS

Rúbrica de evaluación de la visita con su posterior entrega del informe por medio del aula

virtual.

PRACTICA: 3 PARALELO: 1-

3

CATEGORIA 4

Excelente 3 Bueno 2

Regular 1 por mejorar NOTA

Comportamiento en la

visita

Interacción con los guías

Estructura del informe

Calidad de información

Se espera que los informes presenten referencias bibliográficas que respalden lo

expuesto en el documento.

Los informes serán controlados con Turnitin con el fin de garantizar la honestidad

académica.

ASIGNATURA:

Cultivos

Perecibles

SIGLA:

IAI215 PARALELO

: 3 PERIODO: Marzo-

Junio 2014

Fecha: PRÁCTICA

No:

11

SESIONES:

3

TEMA:

Diversidad y clasificación especies

cultivadas de climas tropicales

1.- OBJETIVO

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General Conocer la diversidad de especies cultivadas en varias regiones del Ecuador

Específicos Identificar y clasificar las especies cultivadas de climas tropicales del Ecuador

2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS

Adquirirás las siguientes habilidades:

1. Conocer e identificar las diferentes estructuras y características de las plantas

morfológicas de las plantas que crecen en climas tropicales del Ecuador

2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS

Materiales: Cámara fotográfica, bolsas de papel y cuaderno de apuntes Equipos. Tijeras

3.- ACTIVIDAD FORMATIVA

Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberá conocer lo siguiente:) La modalidad utilizada fue teórica en el aula (se dio a conocer la temática correspondiente a su diversidad de

plantas en relación a las estructuras morfológicas)

Descripción de la actividad: Visitas al Jardín Botánico de Quito y a bosques de trópico para observar, describir e identificar la

biodiversidad de plantas de clima templado

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6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Prost, J. y Michel, J. (1970) La Botánica y sus Aplicaciones Agrícolas. Editorial Mundo Prensa. Madrid,

España.

Cerón, C, (2003). Manual de Botánica Sistemática, Etnobotánica y métodos de estudios en El Ecuador,

Editorial Universitaria, Quito – Ecuador.

De la Torre L., Alarcón D., Kvist L., Lecaro J. (2008). Usos medicinales de las plantas. En: Enciclopedia de las

Plantas Útiles del Ecuador. Quito, Ecuador. L. de la Torre, H. Navarrete, P. Muriel M., M. J. Macía& H. Balslev

(Eds.). Herbario QCA & Herbario AAU. Quito & Aarhus. 105–114.

FAO. (2011). Recursos Fitogenéticos para la Alimentación y la Agricultura en el Mundo. Resumen. Segundo

Informe. 16 p.

7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS

Informe técnico de la práctica

Formato básico:

PRACTICA: Trabajo de campo

CATEGORIA 3 Excelente 2 Bueno 1 Regular NOTA

Trabajo en grupo Cumplimiento de tareas asignadas Presentación del informe