Upload
barbra
View
56
Download
0
Embed Size (px)
DESCRIPTION
Wyjście mysich oocytów z II metafazy wymaga nienaruszonego wrzeciona podziałowego podczas wewnątrzkomórkowego wzrostu stężenia wapnia. Nicola J. Winston, Orla McGuinness, Martin H. Johnson, Bernard Maro – 1995 rok, journal of cell science. Irma Otrębska. Co wiemy do tej pory?. - PowerPoint PPT Presentation
Citation preview
Nicola J. Winston, Orla McGuinness, Martin H. Johnson, Bernard Maro – 1995 rok, journal of
cell science
Irma Otrębska
Co wiemy do tej pory?Dojrzałe, owulowane oocyty zatrzymują się w II
metafazie dopóki nie zostaną aktywowane lub zapłodnione
Pociąga to za sobą serię oscylacyjnych zmian stężenia jonów wapnia
Wzrost stężenia wapnia powoduje inaktywacje MPF
Cyklina jest regulatorowym substratem MPF i jej destrukcja jest wymagana do wyjścia z metafazy
Do degradacji cykliny B niezbędna jest obecność nienaruszonego wrzeciona podziałowego, ponieważ w obecności nokodazolu poziom degradacji cykliny spada.
NokodazolDziała depolimeryzująco na mikrotubule komórekWejście w interfazę może być opóźnione jeżeli
oocyty zostaną zapłodnione w obecności nokodazolu
Wrzeciono podziałowe ulega degradacji, a chromosomy ulegają rozproszeniu
Usunięcie nokodazolu powoduje gromadzenie się wokół grup chromosomów skupisk mikrotubul
Każde powstałe wrzeciono kończy podział i odłączanych jest wiele ciałek kierunkowych
Oocyt przechodzi w interfazęW przypadku aktywacji, np. etanolem oocyty nie
kontynuują mejozy samoistnie
kontrola
1 minuta
3 minuty
6 minut
Materiały i metody od sześcio- do dziesięcio- tygodniowe samiceDootrzewna iniekcja PMSG 48h przed sekcjąhCG 13 godzin przed sekcją Komórki pęcherzykowe usunięte przez
hialuronidazęOsłonki przejrzyste usunięte przez Tyrode Hodowane in vitro w pożywce M2+BSA
Barwienia immunocytochemiczneBadanie aktywności kinazy histonu H1Badanie poziomu wapnia wewnątrz komórki
fura-2 (barwnik fluoroscencyjny wiążący się w wolnymi jonami wapnia)
Aktywacja etanolemOocyty były hodowane jeszcze przez 5 godzin
po izolacji, a potem podzielone na 6 grup
Brak aktywacji w grupie kontrolnej i u tych oocytów które wcześniej były poddane działaniu nokodazolu
O połowę zmalał poziom aktywacji między aktywowanych etanolem, a etanolem z dodatkiem nokodazolu
kontrola
Po 60 minutach
Oocyty pozostawiono w M2+BSA na godzinę i znowu poddano aktywacji
Zaobserwowano drugie uwolnienie wapniaOocyty zostały aktywowane i wyrzuciły II
ciałka kierunkowe, co zostało potwierdzone po wybarwieniu preparatów (oocyty były w telofazie)
Kinaza odpowiadająca za kondensację chromatyny
Wysoka aktywność w nieaktywnych oocytach
Spada gwałtownie po aktywacji
Oocyty po inkubacji z nokodazolem nie wykazują spadku aktywności
Po godzinnej inkubacji w zwykłej pożywce, i po kolejnej aktywacji etanolem, aktywność kinazy spada
Aktywność kinazy histonu H1
Zapłodnienie w obecności nokodazolu Oocyty w obecności
nokodazolu uległy zapłodnieniu, ale nie opuściły metafazy jeśli ich nie przeniesiono do czystej pożywki
Wtedy Wyrzucają liczne ciałka
kierunkowe i tworzą przedjądrza
Wrzeciona odtwarzane są w przeciągu godziny
Poziom wapnia zmienia się w oocycie zapłodnionym w obecności nokodazolu w bardzo podobny sposób jak w kontroli bez nokodazolu.
Oocyt nie zapłodniony
Oocyt nie zapłodniony inkubowany z nokodazolem a potem przeniesione do zwykłej pożywki
Zapłodniony oocyt
Oocyt zapłodniony w pożywce z nokodazolem i przeniesiony do czystej pożywki
Zablokowanie wzrostu stężenia wolnych jonów wapniaOocyty zostały podzielone na dwie grupy1- przeniesione bezpośrednio po zapłodnieniu do
pożywki zawierającej BAPTA-AM (bufor zapobiegający zmianom stężenia wapnia)
2- najpierw przeniesione do pożywki z nokodazolem, bez wapnia (by wyczerpać wewnątrzkomórkowe zasoby tego pierwiastka). Potem do pożywki bez wapnia.
1Tylko dwa z 249 wyszły z metafazy po 6 godzinach
inkubacjiOocyty znakowane fura pokazały że po przeniesieniu do
BAPTA poziom wapnia przestał się zmieniać Chromosomy we wszystkich oocytach były podzielone
na grupy i skondensowaneKażda grupa zgromadziła wokół siebie mikrotubule, ale
nie uformowało się prawidłowe wrzeciono
Ten sam eksperyment powtórzono z dodatkiem cytochalazyny D podczas inseminacji (zapobiega rozejściu się chromosomów)
Powstało wrzeciono podziałowe ale w lekko nieprawidłowym kształcie
Tylko 1% oocytów wyszło z metafazy na 186 w porównaniu z kontrolą 51/196 (26%)
+BAPTA +cytochalazyna D
2Grupa znajdująca się w pożywce bez wapniaPo godzinie część oocytów została przeniesiona z
powrotem do zwykłej pożywki29% po pięciu godzinach inkubacji przeszło do
interfazyW oocytach zatrzymanych w II metafazie powstały
3,4 skupiska chromosomów każde z własnym wrzecionem podziałowym
Oocyty zatrzymane w metafazie II
Oocyty które wyszły z metafazy
Znakowanie furaPrzeniesienie
oocytów z powrotem do pożywki z wapniem spowodowało powrót zmian stężenia wapnia (8/10)
Dwa z nich wyrzuciły drugie ciałka kierunkowe
WnioskiOocyty inseminowane w obecności nokodazolu, czyli takie
które nie utworzyły wrzeciona podziałowego, nie wychodzą z metafazy II
Nie wytwarzanie wrzeciona nie działa hamująco na zmiany stężenia wapnia
Usunięcie z nokodazolu powoduje możliwość wznowienia cyklu mejotycznego
W oocytach inseminowanych cały czas po przeniesieniu trwają zmiany stężenia wapnia i nie potrzebują żadnego dodatkowego bodźca do przejścia do interfazy
Oocyty wcześniej aktywowane etanolem, żeby kontynuować podział, muszą być aktywowane jeszcze raz
Przy braku wapnia i usunięciu nokodazolu, wrzeciona podziałowe zostały odnowione, ale mejoza nie była kontynuowana
Po przeniesieniu do pożywki z wapniem oocyty przechodzą do mejozy
Wnioski 2Do wyjścia z metafazy wymagana jest degradacja
cykliny i dezaktywację MPFDegradacja cykliny B wymaga obecności wrzeciona
i jest kontynuowana podczas trwania metafazy II na podobnym poziomie, i jest rekompensowana jednoczesną syntezą
Wapń nie rozpoczyna degradacji cykliny, a raczej podnosi jej poziom
Inseminowane oocyty „ pamiętają o aktywacji” . Cały czas obserwowane są skoki stężenia wapnia
Aktywacja mechanizmu degradacji cykliny zachodzi tylko podczas podwyższonego stężenia wapnia
Dziękuje za uwagę!