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ACTUALIDADES EN EL MANEJO DE LOS LIQUIDOS CORPORALES
M en C Carmen Melchor Díaz
TOLUCA MEXICO NOVIEMBRE 2016
GENERALIDADES
• Todos estamos familiarizados con el uso de sangre y orina como muestras clínicas que permiten hacer diagnóstico de enfermedades.
• Los líquidos corporales nos pueden decir mucho mas acerca de un paciente, sobre la presencia o ausencia de enfermedad, su severidad o su pronóstico.
• Analysis of body fluids in Clinical Chemistry : Approved Guideline. CLSI. C49-A . April 2007
GENERALIDADES
• Todos ellos son ultrafiltrados del plasma y que se distribuyen a través del cuerpo por transporte activo.
• Estos líquidos pueden contener biomarcadores que no se encuentran en sangre o que se encuentran en diferentes concentraciones.
• Estos líquidos se presentan en la población sana y se elevan en estado de enfermedad.
Analysis of body fluids in Clinical Chemistry : Approved Guideline. CLSI. C49-A . April 2007
ESTUDIO INTEGRAL DE LOS LIQUIDOS
CORPORALES
• FISIOLOGIA DE LOS LIQUIDOS
• ASPECTOS FISICOS
• ASPECTOS MICROBIOLOGICOS
• ASPECTOS BIOQUIMICOS
• ASPECTOS CITOLOGICOS
• HALLAZGOS EN LOS LIQUIDOS
• VERIFICACION Y REPORTE DE RESULTADOS
MUESTRA ESTERIL
MICROBIOLOGIA CARACTERISTICAS FISICAS HEMATOLOGIA
INACTIVACION CUENTA CELULAR
COAGLUTINACION (L.C.R.)
SIEMBRA DIRECTA
CENTRIFUGACION CENTRIFUGACION
SEDIMENTO SOBRENADANTE SOBRENADANTE SEDIMENTO
SIEMBRA PRUEBAS QUIMICAS PRUEBAS INMUNOLOGICAS CUENTA DIFERENCIAL
•GELOSA SANGRE
•GELOSA CHOCOLATE
•E.M.B.
•Mc CONKEY
•CALDO TIOGLICOLATO
•TINTA CHINA
•GRAM
•BAAR
OBSERVAR CRITERIOS DE MALIGNIDAD
BUSQUEDA DE BLASTOS
BUSQUEDA DE AMIBAS
ESTUDIO INTEGRAL DE UN LIQUIDO CORPORAL
OBJETIVOS DEL LABORATORIO
• Conocer el origen de los líquidos • Volumen (Espacio virtual, cantidad) • Aspecto • Componentes bioquímicos y celulares
• Conocer las condicionantes de sus patologías • Relaciones anatómicas • Comunicación vascular con otras estructuras • Biología celular • Definir los criterios de oportunidad y adecuación de la
muestra • Sitios y tiempos de obtención • Volúmenes posibles de obtención • Viabilidad de la muestra.
Deisenhammer F, Bartos A, Egg R, Gilhus NE, Giovannoni G, Rauer S, Sellebjerg F, EFNS Task Force. Guidelines on routine cerebrospinal fluid analysis. Report from an EFNS task force. Eur J Neurol 2006 Sep;13(9):913-22.
El agua corporal se mantiene constante
La variación intersexual e interindividual es función inversa de la cantidad de tejido graso
LÍQUIDO EXTRACELULAR
COMPARTIMIENTOS DE LOS LÍQUIDOS CORPORALES
LÍQUIDO INTRACELULAR
REPRESENTA DEL 30
AL 40% DEL PESO
CORPORAL
Con una gran variedad en la
composición y volumen entre
las diferentes células. Algunas
moléculas pueden servir de
marcadores
COMPARTIMIENTOS DE LOS LÍQUIDOS CORPORALES
LÍQUIDO EXTRACELULAR
INTERSTICIAL
TRANSCELULAR
PLASMA: 4.5% DEL PESO
CORPORAL
LINFA: 2% DEL PESO CORPORAL
INTERSTICIAL: 16% DEL PESO
CORPORAL
LÍQUIDO TRANSCELULAR
• En este compartimento la separación con el plasma se da por el endotelio y un tejido epitelial (mesotelio)
Ma
triz
su
nen
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eso
telia
l (I
nte
rsti
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)
mesotelio
endotelio
MEMBRANAS
• Consisten de un epitelio de cobertura con tejido conectivo laxo que une a tejidos subyacentes
• Por ejemplo: membrana cutánea, membranas mucosas, MEMBRANA SINOVIAL y MEMBRANAS SEROSAS
Membrana basal
Superficie apical
Cemento intercelular
Filamentos intermedios
TEJIDO CONECTIVO
MEMBRANA
EPITELIO
MEMBRANAS SEROSAS
• Recubren las cavidades ventrales del cuerpo.
• Una capa VISCERAL envuelve a los órganos dentro de la cavidad.
• La capa parietal tapiza las paredes de la cavidad
• Secretan en pequeña cantidad un líquido seroso lubricante
MESOTELIO
• La capa única de células planas o cuboideas que forma la membrana serosa se conoce como MESOTELIO
• Estas células tienen un núcleo oval o redondo de cromatina homogéneamente dispersa
Objetivo de un análisis de laboratorio Clínico
para el Estudio de los líquidos
o Evaluar el estado fisiopatológico de un paciente a fin de
contribuir con el diagnóstico o controlar el tratamiento.
o Para que un análisis tenga valor en la toma de decisiones clínicas
el resultado debe tener un error total lo suficientemente pequeño
para poder reflejar el estado clínico que se evalúa.
W.G. Miller, capitulo 10, Henry’s Diagnosis and Manegement of Laboratory Methods, 22ª Edición
Pasos del proceso de análisis
Preanalítico: (Selección del análisis correcto,, identificación correcta
del paciente, recolección de las muestras apropiadas, rotulación,
transporte, manipulación de las muestras, procesamiento)
Analítico (Preparación de muestras, Instrumento y método de análisis y
consentimientos teóricos y prácticos especialización del personal, solución
de problemas, resultados de los análisis e informes)
Post-analítico (Formato de presentación de informes, respuestas a
resultados y medidas tomadas, resultados que incluyen al usuario final
indicado, estadísticas, valores críticos)
El médico evalúa al
paciente y solicita la
prueba de
laboratorio Médico emite un
diagnóstico
El lab recibe
la orden
Toma de
muestra
Transporte de la
muestra
Procesa la
muestra
Se analiza la
muestra
Reporta el
resultado
Médico
interpreta el
resultado
Los resultados de calidad, requieren de una serie de «correcciones» a través
del ciclo entero de trabajo, y empieza con la solicitud de la prueba
PROCESO MEDICO
IDENTIFICACION VALORACION * PUNCION OBTENCION DE MUESTRA *TRANSPORTE DE MUESTRA ENTREGA DE MUESTRA AL LABORATORIO
M e
n C
Carm
en
Me
lcho
r D
íaz
PACIENTE
FACTORES QUE INFLUYEN EN LA CALIDAD
OBTENCIÓN DE LA MUESTRA
MANEJO
TRANSPORTE
RECEPCIÓN DE LA MUESTRA
PROCESAMIENTO
DE
LA MUESTRA
RESULTADOS
REPORTES
INTERPRETACIÓN
MÉDICO
PACIENTE
SOLICITUDES
PREPARACIÓN DEL PACIENTE
FACTORES PRE-ANALITICOS
FACTORES ANALITICOS
FACTORES POST-ANALITICOS
(Errores 45-71%)
(Errores 13-18%)
(Errores 11– 45%)
Mario Plebani. Errors in clinical laboratories or errors in
laboratory medicine? Clin Chem Lab Med 2006;44(6):750–759
VARIABLES PREANALITICAS (pre examen)
Ordenes de examen equivocadas.
Recolección de la muestra.
Falta de ordenes de laboratorio especificas para líquidos corporales.
Muestras para estudios microbiológicos contaminadas.
Muestra hemolizadas y coaguladas.
Recipientes adecuados
Tubos o jeringas de plástico causan adherencia celular
Tubos de propileno son los recomendables
INSTITUTO MEXICANO DEL SEGURO SOCIAL
SUBDIRECCION GENERAL MÉDICA
FECHA DE ESTA SOLICITUD
FECHA DE PROXIMA CONSULTA
PACIENTE EXTERNO
CAMA N°
HACER EXAMENES EL DIA
PRESENTARSE EN EL LABORATORIO A LAS HRS
MEDICO TRATANTE
DIAGNOSTICO DE PRESUNCION O DATOS CLINICOS
ESTUDIO INTEGRAL DE
LIQUIDO________________________________________________________
COLOR ___________________________ ASPECTO _________________________ COAGULABILIDAD__________________ SEDIMENTO_______________________ SOBRENADANTE____________________ Ph_______________________________ GLUCOSA _________________________ PROTEINAS______________________ LDH___________________________ AMILASA_________________________ COLESTEROL _____________________ ACIDO URICO______________________ CRISTALES________________________ SUERO:___________________________ GLUCOSA________________________ PROTEINAS________________________ LDH______________________________ COLESTEROL_______________________
REL. PROT LIQ/PROT SUERO GRAM
TINTA CHINA
REL PROT LDH/PROT SUERO COAGLUTINACION
BAAR
CELULAS _____________mm3
CULTIVO:
BACTERIAS
ERITROCITOS__________ mm3 CRENOCITOS__________%
HONGOS
MICOBACTERIAS
CUENTA DIFERENCIAL OTRAS:
ANORMALIDADES CELULARES
SECCION DE URGENCIAS “LIQUIDOS CORPORALES “ QUIMICO RESPONSABLE _____________
NOBRE DEL PACIENTE
NSS
NOMBRE Y FIRMA DEL MEDICO
FORMATOS O SOLICITUDES
DATOS QUE DEBE LLEVAR LA REQUISICIÓN Y ETIQUETA DEL ESPÉCIMEN
• Nombre del paciente • Edad y sexo del paciente • Número de afiliación que tiene en el hospital,
lugar donde localizarlo o dirección • Nombre del médico solicitante • Lugar de donde fue tomada la muestra • Fecha y hora de recolección de la muestra • y procedimiento requerido
Un resultado de «calidad» requiere de:
• Solicitud correcta
• Paciente correcto
• Tiempo Correcto para la toma de la muestra
• Muestreo correcto y procesamiento correcto
• Resultado correcto Analítico
• Resultado correctamente reportado
• Correcta interpretación clínica Post-analítico
• Permite una correcta respuesta al paciente
• Cuando «lo incorrecto» reemplaza «lo correcto»
• La Calidad esta comprometida
Pre-Analítico
ARTROCENTESIS PUNCION LUMBAR
AMNIOCENTESIS TORACOCENTESIS
PARACENTESIS
PERICARDIOCENTESIS
TOMA DE MUESTRAS
RECOLECCION DE MUESTRAS DE LOS LIQUIDOS
CORPORALES
Los procedimientos para la toma de muestras de los
Líquidos Corporales puede afectar al reporte de
Resultados .
Es por esto que se recomienda que los procedimientos
Se estandaricen para que los errores se disminuyan o se
eliminen durante la recolección
Analysis of body fluids in Clinical Chemistry : Approved Guideline. CLSI.
C49-A . April 2007
CONTENEDORES ADECUADOS
El tipo de contenedores tubos
o frascos que se utilizan para
recolectar los líquidos pueden
afectar de manera directa los
resultados.
El material de plástico puede
causar adherencia celular dando
como resultado: cuentas celulares
así como diferenciales erróneas.
Por lo que es recomendable utilizar
tubos de poliestiereno polipropileno.
En el caso de la muestras donde
Se soliciten estudios microbiológicos
Los recipientes deberán ser estériles.
VARIABLES PREANALITICAS
Tipo de anticoagulante:
Usar anticoagulante (que no se requiere para el LCR) puede
afectar la cuenta tanto de células blancas como de eritrocitos
Usar Anticoagulante (líquidos serosos) no adecuado, como en
el líquido sinovial puede llegar a introduce artefactos y
confundir con elementos celulares.
EDTA puede utilizarse para llevar a cabo la cuenta celular
HEPARINA: para determinación de proteínas, LDH, glucosa.
SPS: (polianetol-Sulfanato de Sodio) o cualquier otro
anticoagulante que no tenga efecto bactericida o
bacteriostático) Para estudios bacteriológicos.
VARIABLES PREANALITICAS
Transporte y manejo de la muestra:
Los líquidos corporales deben ser transportados al laboratorio a
temperatura ambiente inmediatamente después de recolectados.
Para estudios microbiológicos NO DEBE REFRIGERARSE. La
mayoría de los microorganismos son sensibles a los cambios de
temperatura.
Temperatura y tiempo de transporte que mantenga la integridad de
la muestra.(la degeneración celular empieza en la primera hora
después de tomadas las muestras).
la degradación significativa de neutrófilos ocurre en las dos
primeras horas (25 %)
LOCALIZACION ANATOMICA DE LOS SITIOS DE DONDE
SON TOMADAS LAS MUESTRAS DE LOS LIQUIDOS CORPORALES
CAVIDAD PERICARDICA
CAVIDAD
PLEURAL
CAVIDAD PERITONEAL
CAVIDAD VENTRICULAR
CAVIDAD ARTICULAR
Analysis of body fluids in Clinical Chemistry : Approved Guideline. CLSI.
C49-A . April 2007
Objetivos del Control de Calidad
El producto del laboratorio clínico es un resultado numérico
Los médicos utilizan este resultado para diagnosticar, evaluar y/o
Monitorear el estado del paciente
El objetivo del laboratorio es generar un resultado confiable de alta
Precisión y exactitud
Objetivos del Control de Calidad
Requisito de las Normas Oficiales (Guías
Internacionales)
Generar RESULTADOS CONFIABLES
Exactos y precisos
Detectar y corregir errores/problemas
Evitar informes de resultados erróneos
GUÍA PARA EL ANÁLISIS RUTINARIO DEL LCR
PRINCIPALES RECOMENDACIONES:
Debe ser analizado en la primera hora después de su
recolección
Un volumen de 12 mL debe ser alicuotado en tres o cuatro
tubos estériles, antes de que se sedimente la muestra.
En ciertos casos, como la búsqueda de M. tuberculosis,
hongos y parásitos se requieren 10 a 15 mL de muestra
Permite almacenamiento breve a 4-8°C o en otro caso a -
20°C
La muestra almacenada sólo se usará para examen de
componentes proteicos o de RNA
Deisenhammer F, Bartos A, Egg R, Gilhus NE, Giovannoni G, Rauer S, Sellebjerg F, EFNS
Task Force. Guidelines on routine cerebrospinal fluid analysis. Report from an EFNS task
force. Eur J Neurol 2006 Sep;13(9):913-22.
GUÍA PARA EL ANÁLISIS RUTINARIO DEL LCR
PRINCIPALES RECOMENDACIONES:
•Para la Esclerosis múltiple lo recomendable es
detectar bandas oligoclonales de IgG
•En otras enfermedades con componente
inflamatorio se determinará la síntesis de IgA e IgM
con fórmulas no lineares
Deisenhammer F, Bartos A, Egg R, Gilhus NE, Giovannoni G, Rauer S, Sellebjerg F,
EFNS Task Force. Guidelines on routine cerebrospinal fluid analysis. Report from
an EFNS task force. Eur J Neurol 2006 Sep;13(9):913-22.
GUÍAS PARA EL ANÁLISIS BIOQUÍMICO DE LÍQUIDOS CORPORALES
• Valores de referencia y uso razones (radios o cocientes)
• Matriz para el ensayo
• Control de calidad
• Validación
• Metodologías para medir masa absoluta
Deisenhammer F, Bartos A, Egg R, Gilhus NE, Giovannoni G, Rauer S, Sellebjerg F, EFNS Task Force. Guidelines on routine cerebrospinal fluid analysis. Report from an EFNS task force. Eur J Neurol 2006 Sep;13(9):913-22.
Analysis of body fluids in Clinical Chemistry : Approved Guideline. CLSI. C49-A . April 2007
ENSAYOS BIOQUÍMICOS EN LCR
• PROTEÍNA • GLUCOSA • ESPECIALES:
• Índice de IgG • Lactato • Análisis de Xantocromía • Bandas oligoclonales • Proteína básica de mielina • Péptido amiloide b 42 y Proteína Tau • Otros neurotransmisores
• ACBI Biochemistry of the body fluids Alan Balfe,Stan Barry 2009
1. Alteraciones de Presión hidrostática (falla
cardiovascular) Trasudado
2. Alteraciones de Presión coloidosmótica
Trasudado
3. Alteraciones por daño de membrana
endotelial
Exudado
CAUSAS DE LOS DERRAMES EN
COMPARTIMENTOS
EXUDADO
Exceso de líquido (> 0,2-0,3 mL/Kg) formado
por la difusión de plasma a través de endotelio y
mesotelio dañados (inflamación)
CARACTERÍSTICAS:
Proteína pleural/proteína sérica > 0,5
DHL pleural/DHL sérica >0,6
DHL > 2/3 (60%) del límite superior de DHL sérica
Proteína líquido pleural >2.9 g/dL
Colesterol pleural > 45 mg/dL
Analysis of body fluids in Clinical Chemistry : Approved Guideline. CLSI.
C49-A . April 2007 .
CRITERIOS DE LIGHT
Exudado
Cociente de proteína >
0.5
Cociente de DHL > 0.6
DHL del líquido > en
2/3 que el límite
superior de referencia
En casos de
Insuficiencia cardiaca,
puede ser necesario
medir colesterol para
definir un exudado (1.6
mmol/L)
Analysis of body fluids in Clinical Chemistry : Approved Guideline. CLSI.
C49-A . April 2007 .
MANUAL DE PROCEDIMIENTOS
Examen químico
Validar método ( MR, TRAZABILIDAD DE
PATRONES)
Identificar especificaciones de calidad para
cada examen
Evaluar estadísticamente el desempeño de
cada examen en el laboratorio
Especificaciones de calidad (incertidumbre en
la magnitud medida)
Utilidad clínica específica
Utilidad clínica general
Utilidad por consenso
Analysis of body fluids in Clinical Chemistry : Approved Guideline.
CLSI. C49-A . April 2007 .
VALORACION CUANTITATIVA
Contar por microscopia de luz usando el
colorante
Azul de Unna . (colorante supra vital que
mejora el
Reconocimiento de las células).
Para realizar la cuenta celular se utilizan:
Cámara de Neubauer
Cámara de Fush Rosenthal
CLSI. Body Fluid Analysis for Cellular
Composition; Proposed Guideline. H56-P. August 2005
CUENTA CELULAR
Cámara de Neubauer Cámara de Fush-Rosenthal
CLSI. Body Fluid Analysis for Cellular
Composition; Proposed Guideline. H56-P. August 2005
Usando el objetivo de baja resolución
(10X)
ajustar para ver distribución celular.
Ajustar a objetivo de 40X y llevar a cabo
La cuenta celular..
Si hay un estimado de 200 células
presentes en los 9 cuadros, contar todos
los cuadros.
Si hay mas de 200 células en los 9
cuadros contar los 4 cuadros de las
esquinas.
Si hay mas de 200 células en uno de los
cuadros contar los 5 cuadros del centro.
Cuenta celular
CLSI. Body Fluid Analysis for Cellular
Composition; Proposed Guideline. H56-P. August 2005
CUENTA CELULAR
REPORTE DE CUENTA CELULAR
Numero de células x mm3
Numero de eritrocitos x mm3
% de crenocitos
Nº de células/mm3 = Nº cel contadas X inverso de la dilución
Nº cuadros contados X vol. del cuadro
CUENTA CELULAR
LIMITES DE CUENTA
Liquido cefalorraquídeo > 10 células
Líquidos serosos > 100 células
Liquido de diálisis > 100 células
Liquido sinovial > 200 células
Si se superan los limites de cuenta
Se realiza Cuenta diferencial
CLSI. Body Fluid Analysis for Cellular
Composition; Proposed Guideline. H56-P. August 2005
INFECCION POR
BACTERIAS
HONGOS
VIRUS
MICOBACTERIAS
PARASITOS
TOXOPLASMA
AVL
RECHAZO A
DERIVACIONES
INFILTRACION DE
LEUCEMIAS
CELULAS RA
(AR)
CELULAS LUPUS
ERITEMATOSO
IRRITACION PLEURAS
IRRITACION DE
VELLOSIDADES
ARACNOIDEAS
CANCER LOCALIZADO
METASTASIS
MANUAL DE PROCEDIMIENTOS
EXAMEN CITOLÓGICO Control de tinciones
Revisión por un experto de las laminillas
informadas
Discusión intralaboratorio de las laminillas examinadas
Capacitación. Pruebas de aptitud
Análisis de imagen
MANEJO BACTERIOLOGICO DE
FLUIDOS CORPORALES
La identificación del agente causal
de la infección.
Lograr un tratamiento rápido y
preciso que lleve al manejo
adecuado del paciente
TINCION DE GRAM
Informe inmediato
LIQUIDO
CEFALORRAQUIDEO
Frasco o tubo estéril
Centrifugar muestra
(2.500 rev x 10 min)
36°C
Reincubar
Agar C. Negativo
Positivo 18 – 24 h
Negativo**
Positivo
36°C
48 h
Pruebas bioquímicas
Antibiograma
Pruebas bioquímicas
Antibiograma
Sedimento
CULTIVO AEROBICO
Presencia de
bacterias
Agar chocolate*
Agar sangre
Caldo de Tioglicolato
Inactivaciòn Prueba de
coaglutinaciòn
Clinical Microbiology proceddures handbook, ASM, Washington D.C. 2010
PROCESAMIENTO DE LOS LIQUIDOS CORPORALES ESTERILES
Recolección de la muestra
Concentración
Hacer Frotis para Tinción Sembrar en medios de cultivo
De Gram primarios (Sol. y Líq.)
Condiciones Aerobias Incubación Condiciones Anaerobias
35 ◦C, CO2 35 ◦C, 48 hrs
60-80% humedad
Examinar placas Examinar placas
Crecimiento No crecimiento
No Crecimiento Crecimiento
Checar aerobiosis Reincubar
Anaerobicamente
35C, 24 hrs
Reincubar Aerobios Anaerobios Crec. No Crec
Tinción Gram
Beta Lactamasas Reporte
Final
Reexaminación de Placas Identificación y
Diariamente durante 4 días PSA Identificación
Re-examinar Caldos durante
4 días
REPORTE FINAL
Clinical Microbiology proceddures handbook, ASM,
Washington D.C. 2010
M e
n C
Carm
en
Me
lcho
r D
íaz
ETAPA PRE-EXAMEN
Quién recolecta la muestra:
El médico.
Volumen de la muestra:
1-5 mL es adecuado (un mayor volumen puede
dar mejores resultados)
Tiempo de procesamiento:
Los líquidos deben ser tratados como las muestras
de LCR “deben procesarse inmediatamente después
de su llegada al laboratorio.
Almacenamiento:
Mantener la muestra a Temperatura ambiente
(NO REFRIGERAR)
M e
n C
Carm
en
Me
lcho
r D
íaz
ETAPA DE EXAMEN
El liquido debe ser concentrado por centrifugación, y
el sedimento se debe sembrar en medios enriquecidos
como son: Agar sangre, Agar chocolate, Agar de Maconkey
y caldo de tioglicolato.
Todos los líquidos se deben procesar para hacer una examinación
microscópica directa (Tinción de Gram). En general si un microorganismo
es capaz de observarse en objetivo de inmersión. Esto quiere decir
que al menos hay 10 5 organismos por mL.
Si se sospecha de la presencia de hongos todas la muestras deben observarse
preparando
una observación directa en fresco con KOH al 10%.
Para la búsqueda de M. tuberculosis una tinción de Alcohol Acido.
M e
n C
Carm
en
Me
lcho
r D
íaz
ETAPA POST EXAMEN
Factores que interfieren en los resultados:
- Pacientes con terapia antimicrobiana
- Recepción inapropiada de las muestras
Reporte de resultado:
- Resultados urgentes:
- Tinción de Gram, observación con KOH y Tinción BAAR.
- Resultados Finales:
- Reporte del patógeno aislado con sus pruebas de susceptibilidad
- Antimicrobiana.
Tiempos de Respuesta:
- Tinción de Gram y observación en fresco deben estar disponibles
- 1 hora después de llegada la muestra al laboratorio.
- El aislamiento del posible patógeno de 2-4 días.
- Cultivos negativos deben reportarse 2-3 días después de recibida
- La muestra
MANUAL DE PROCEDIMIENTOS
EXAMEN BACTERIOLÓGICO
◦ Control de tinción Gram y otras
◦ Cultivo y análisis bioquímicos de cepas bacterianas tipo ATCC
◦ Experimentos de control de esterilidad para materiales y
reactivos
ASEGURAMIENTO DE LA CALIDAD EN
EL EXAMEN DE LÍQUIDOS
Formato de informe • Identificación de paciente, muestra y
médico o servicio
• Descripción de muestra procesada • Informes preliminares
• Lenguaje científico sin ambigüedades
• Exámenes efectuados
• Rangos de referencia
• Metodologías
• Profesional ejecutante y responsable
• Notas de referencia educativa o
comentarios
Este programa surge de la necesidad de mejora constante y
ascendente de la ejecución analítica en el laboratorio clínico.
PEEC PARA LIQUIDOS CORPORALES
Desde hace aproximadamente 20 años el grupo de expertos dio inicio
con una serie de cursos sobre el manejo de líquidos corporales en el
laboratorio clínico. Durante este tiempo se identificaron, gracias a la
participación de los alumnos, aquellos enfoques necesarios para
examinar líquidos corporales en la práctica clínica
De esta manera es cómo surge la inquietud, de iniciar un pequeño
programa de comparación inter laboratorios, donde se invitó a
participar a 5 laboratorios, dentro de los cuales se incluyen desde
grandes Centros Médicos hasta Unidades de 2° Nivel.
HOJA DE ENVIO DE MUESTRAS DEL PROGRAMA COMPARACION
INTERLABORATORIOS PARA LIQUIDOS CORPORALES
A continuación estamos enviando a Ud.(s) el formato de registro para la captura de datos del
PROGAMA DE COMPARACION INTERLABORATORIOS DE LA CUENTA CELULAR DE LOS
LIQUIDOS CORPORALES. Así como el algoritmo de trabajo y la formula general para el conteo de
células. (SI NO CUENTA CON COLORANTE AZUL DE UNNA, UTILIZAR EL QUE SE ANEXA
JUNTO CON LA MUESTRA, MEZCLAR MUY BIEN ANTES DE UTILIZARLO)
Estamos incluyendo junto con el primer envió la calendarización de envió de las muestras, así
como la fecha límite de reportes y la entrega de resultados que se podrán enviar vía correo
electrónico a la siguiente dirección: [email protected]
ALGORITMO DE TRABAJO PARA LLEVAR A CABO LA CUENTA CELULAR
Se envía una suspensión de células y se deben realizar entre 30 y 40 inversiones del frasco para
resuspender adecuadamente
Colocar 10µl de colorante Azul de UNNA en un tubo,
de 12X75 más 100µl de la suspensión de células (dilución 10:11)
llenar adecuadamente la cámara de Neu Bauer (ó Fush Rosenthal)
de la muestra con el colorante de UNNA, (dejar reposar 1 minuto aprox.) Leer a 40X
Calcular el número de células/ mmᴈ, aplicando la formula general:
No .cel
𝑚𝑚 3 =𝑛o.cel contadas X inverso de la dilucion
𝑛𝑜 .𝑑𝑒 𝑐𝑢𝑎𝑑𝑟𝑜𝑠 𝑐𝑜𝑛𝑡𝑎𝑑𝑜𝑠 𝑋 𝑣𝑜𝑙𝑢𝑚𝑒𝑛 𝑑𝑒𝑙 𝑐𝑢𝑎𝑑𝑟𝑜 * ver ejemplo
Reportar Células/𝑚𝑚3
*ejemplo: No .cel
𝑚𝑚 3 =15 X
11
10
9 𝑋 0.1 𝑚𝑚 3 = (15 )(1.1) = 18 cel./𝑚𝑚3
0.9
Lab Central
# de envío 2 CLAVE DE LABORATORIO EAHDK7 Fecha de envío 26/02/2015
Programa LÍQUIDOS CORPORALES
Tipo de
suscripción
RESULTADO RESULTADOS ESTADÍSTICOS DEL GRUPO PAR Criterio de evaluación: COMPARACIÓN
CON GRUPO EXPERTO
218 n Mediana Desv std IDE Prom
Ponderado
de expertos
Error
absoluto
Error
relativo
6 263.5 14.8 -3.1 -46 82.6
264
Coef de Variación %: 5.6
GRUPO DE EXPERTOS:
QFB ISAIAS SANCHEZ GONZALEZ
QBP MIGUEL ANGEL GONZALEZ OLVERA
DR RAFAEL E. PAREDES GARCIA
M en C CARMEN MELCHOR DÍAZ
Cuauhtémoc 40, Col Sn Javier, Centro Histórico de Tlalnepantla de Baz, México. Código postal 54030.Teléfono 5378-5196
![[Lab] Laboratorio Clínico - Líquidos Corporales](https://img.pdfslide.tips/doc/110x75/577c802e1a28abe054a7912c/lab-laboratorio-clinico-liquidos-corporales.jpg)
