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Facultad de Farmacia, UAEM
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Laboratorio Modular de Anatomía y
Fisiología [Primer semestre]
[Imagen alusiva al manual correspondiente]
Autores: M.C. Ma. Antonieta Castelló Leyva, M.F. Priscila S. Rendón Vallejo,
Dr. Alfonso Leija Salas
Revisores:
Universidad Autónoma del Estado de Morelos
Facultad de Farmacia
Manual del Laboratorio Modular de … 2
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CONTENIDO
Contenido ................................................................................................................................. 2
Introducción. ............................................................................................................................ 3
Organización del Laboratorio: ................................................................................................ 3
Reglas de Laboratorio ....................................................................................................... 3
Medidas de Seguridad ....................................................................................................... 4
Practica I. Posición anatomica y planos corporales ......................................................... 6
Objetivos: ........................................................................................................................... 6
Competencias: ................................................................................................................... 6
Introducción: ...................................................................................................................... 6
Actividades Preliminares: ................................................................................................. 8
Material y reactivos: .......................................................................................................... 9
Toxicologìa:...................................................................................................................... 31
Metodologia: ...................................................................................................................... 9
Resultados: ........................................................................................................................ 9
Discusion de resultados: ................................................................................................ 10
Conclusiones: .................................................................................................................. 10
Bibliografia: ...................................................................................................................... 10
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INTRODUCCIÓN.
El objetivo del manual de prácticas del laboratorio modular 1 es que el estudiante de
farmacia, mediante una serie de prácticas de laboratorio basada en el modelo de
competencias de la UAEM, refuerce los conocimientos de anatomía y la fisiología,
relacionándolos con la práctica profesional y generando así información que facilite la
elaboración e integración de procesos de atención farmacéutica en relación al individuo
sano y de esta forma le permita detectar con más facilidad los estados patológicos.
ORGANIZACIÓN DEL LABORATORIO:
[Incluya en este apartado las recomendaciones de una correcta organización de dicho
laboratorio]
REGLAS DE LABORATORIO
1. El alumno deberá asistir puntual al laboratorio y permanecer en él durante toda la
clase.
2. La asistencia deberá de ser por lo menos del 80% de las sesiones.
3. Una vez iniciada la práctica, no se permitirá el acceso a los alumnos.
4. Antes de realizar una práctica, deberá leerse el manual para adquirir una idea clara
de su objetivo, fundamento y técnica. Los resultados deben ser siempre anotados
cuidadosamente apenas se conozcan.
5. Durante las sesiones de laboratorio, quedará estrictamente prohibido jugar, comer,
beber o hacer uso equipos electrónicos tales como celulares, equipos de cómputo, I-
pads o tablets.
6. En caso de requerir ausentarse de clase, deberá solicitarse autorización al
responsable del laboratorio.
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Después de cada sesión, el alumno deberá investigar, responder y entregar resultados,
discusión y conclusiones planteados al final de cada práctica
MEDIDAS DE SEGURIDAD
Durante todo el desarrollo de la práctica el alumno deberá portar bata de algodón
de manga larga, lentes de seguridad y guantes.
Todo aquel alumno que posea cabello largo deberá traerlo debidamente recogido
para evitar accidentes.
Los zapatos adecuados a emplear en todas las sesiones de laboratorio serán
aquellos de piel que cubran completamente el pie.
Antes de realizar una práctica, debe leerse detenidamente para adquirir una idea
clara de su objetivo, fundamento y técnica. Los resultados deben ser siempre
anotados cuidadosamente apenas se conozcan.
El orden y la limpieza deben presidir todas las sesiones de laboratorio. En
consecuencia, al terminar cada práctica se procederá a limpiar cuidadosamente el
material y la mesa que se ha utilizado.
Antes de utilizar un compuesto hay que fijarse en la etiqueta para asegurarse de
que es el que se necesita y de los posibles riesgos de su manipulación.
No devolver nunca a los frascos de origen los sobrantes de los productos utilizados
sin consultar con el profesor.
No tocar con las manos y menos con la boca los productos químicos.
Los productos inflamables (gases, alcohol, éter, etc.) deben mantenerse alejados
de las llamas de los mecheros. Si hay que calentar tubos de ensayo con estos
productos, se hará al baño María, nunca directamente a la llama. Si se manejan
mecheros de gas se debe tener mucho cuidado de cerrar las llaves de paso al
apagar la llama.
Cuando se manejan productos corrosivos (ácidos, álcalis, etc.) deberá hacerse con
cuidado para evitar que salpiquen el cuerpo o los vestidos. Nunca se verterán
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bruscamente en los tubos de ensayo, sino que se dejarán resbalar suavemente por
su pared.
Cuando se quiera diluir un ácido, nunca se debe echar agua sobre ellos; siempre al
contrario: ácido sobre agua.
No pipetear nunca con la boca. Se debe utilizar la bomba manual, una jeringuilla o
artilugio que se disponga en el laboratorio.
Al enrasar un líquido con una determinada división de escala graduada debe
evitarse el error de paralaje levantando el recipiente graduado a la altura de los ojos
para que la visual al enrase sea horizontal.
Cuando se calientan a la llama tubos de ensayo que contienen líquidos debe
evitarse la ebullición violenta por el peligro que existe de producir salpicaduras. El
tubo de ensayo se acercará a la llama inclinado y procurando que ésta actúe sobre
la mitad superior del contenido y, cuando se observe que se inicia la ebullición
rápida, se retirará, acercándolo nuevamente a los pocos segundos y retirándolo
otra vez al producirse una nueva ebullición, realizando así un calentamiento
intermitente. En cualquier caso, se evitará dirigir la boca del tubo hacia la cara o
hacia otra persona.
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PRACTICA I. POSICIÓN ANATOMICA Y PLANOS CORPORALES
OBJETIVOS:
El alumno conocerá la terminología anatómica: posición anatómica, planos secantes y
términos relacionados con éstos.
COMPETENCIAS:
- El alumno comprende el significado de los planos anatómicos y su importancia en la
anatomía y la clínica
- Identifica los órganos y su situación dentro del plano corporal.
INTRODUCCIÓN:
Es indispensable que para la comprensión de la anatomía tengamos parámetros específicos
del cuerpo humano ya que con ellos se nos facilitará su estudio y nos permitirá hablar un
mismo idioma. Los parámetros más significativos son la posición anatómica que nos permite
ubicar al cuerpo humano en un espacio tridimensional al conocer las cavidades y sus
contenidos ya que dependiendo de la morfología de éstas, los órganos encuentran acomodo
para su funcionamiento adecuado.
El cuerpo humano está constituido por millones de células que son la unidad básica morfo-
funcional del cuerpo humano. La unión de células forman tejidos; los órganos son una
organización de distintos tejidos; y un sistema es un conjunto de órganos.
Se entiende por posición anatómica a la que considera a la persona erecta, de frente al
observador, con los miembros superiores pendientes a los lados del cuerpo, las palmas de
las manos hacia el frente, los pies ligeramente separados y con la vista al horizonte. Los
planos principales son: sagital, frontal o coronal y transverso.
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http://www.anatolandia.com/2013/10/planos-anatomicos.html
ACTIVIDADES PRELIMINARES:
Revisa las siguientes páginas y videos
http://www.anatolandia.com/2013/10/planos-anatomicos.html
https://www.youtube.com/watch?v=D0ZqyH1hQm8
https://www.youtube.com/watch?v=Nxgby8DaHMY
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MATERIAL Y REACTIVOS:
METODOLOGÍA:
1. En un modelo anatómico de torso humano y en otro de plastilina, plástico o esquema
de piezas anatómicas, trate de explicar los diferentes planos anatómicos.
2. En un segmento del organismo o en un órgano (puede utilizarse esquema o maqueta)
explique los siguientes términos: distal, proximal, medial, lateral, interno y externo.
3. Localizar en piezas anatómicas o en el esquema las distintas cavidades corporales
(craneal, torácica, abdominal, raquídea y pélvica).
RESULTADOS:
Definir los siguientes planos:
1. Sagital
2. Frontal o coronal
3. Transverso
4. Superior o cefálico34
5. Inferior o caudal
6. Anterior o ventral
7. Medial
8. Lateral
9. Posterior
Escriba el significado de los siguientes prefijos y términos anatómicos.
CANTIDAD MATERIAL CANTIDAD REACTIVOS
10
Tarjetas 12 x 5 cm.
Imagen o esquema del cuerpo humano.
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• SUPRA • HIPO
• INFRA • HIPER
• EPI • PERI
• SUB • VISCERAL
• PRE • INTER
• POST • INTRA
• RETRO • PROXIMAL
• INTERNO • DISTAL
• EXTERNO • PARIETAL
MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS
[Introduzca las especificaciones para el tratamiento de los residuos generados por la
metodología realizada]
DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
CONCLUSIONES:
BIBLIOGRAFÍA:
1. http://www.anatolandia.com/2013/10/planos-anatomicos.html
2. http://www.saludalia.com/atlas
3.http://www.intercambiosvirtuales.org/software/human-anatomy-atlas-v3-0-1-atlas-de-
anatomia-humana-completo
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PRACTICA II. HISTOLOGIA Y TEJIDOS BASICOS
OBJETIVOS:
El alumno comprende el concepto de la histología.
Identifica los 4 tejidos básicos en el cuerpo y sus características.
COMPETENCIAS:
Reconoce los 4 tejidos básicos
Comprende la diferencia entre ellos y la importancia de cada uno
Identifica características morfológicas especiales de cada tejido
INTRODUCCIÓN:
Las células se agrupan de acuerdo a sus características formando tejidos. Un
tejido es un conjunto de células similares que suelen tener un origen embrionario
común y que funcionan en asociación para desarrollar actividades
especializadas. Los tejidos no sólo incluyen células, sino en algunos casos fibras
y sustancia o matriz extracelular. La matriz es secretada por las mismas células
y en algunos tejidos es casi nula, mientras que en otros es abundante y contiene
estructuras y moléculas importantes desde el punto de vista estructural y
funcional.
La histología es la ciencia que estudia los tejidos, su estructura, su desarrollo y
sus funciones.
Existen 4 tipos de tejidos básicos en el organismo:
1. Epitelial
2. Conectivo
3. Muscular
4. Nervioso
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www.construyendoaprendemos.blogspot.com
ACTIVIDADES PRELIMINARES:
Investiga los 4 tejidos básicos y su función y dibuja en tarjetas bibliográficas su apariencia al
microscopio.
MATERIAL Y REACTIVOS:
CANTIDAD MATERIAL CANTIDAD REACTIVOS
1 caja 1 1 caja
Preparaciones histológicas de los 4 tejidos básicos del cuerpo (laminillas)
Microscopio
Colores
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METODOLOGÍA:
1. Toma cuidadosamente las laminillas de los diversos tejidos que se te proporcionaron y
obsérvalos detalladamente al microscopio con los aumentos de 10x y 40x.
2. Identifica las diferencias entre cada tejido.
RESULTADOS:
Dibuja cada una de las laminillas que observaste con los diversos aumentos.
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DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
Revisa acerca de los tejidos que observaste e identifica a qué grupo pertenece. Lee acerca
de sus características y trata de relacionar las funciones del tejido con sus características
morfológicas.
CONCLUSIONES:
En base a lo observado y lo que investigaste, plantea tus conclusiones.
BIBLIOGRAFÍA:
1. Paniagua et (2007). ”Citología e Histología Vegetal y Animal”. Editorial Mc Graw Hill. 4ª
edición. Madrid.
2. Ross M.H., Pawlina W. Histología. (2012). Editorial Panamericana. 6ta. Edición.
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PRACTICA III A. TEJIDO EPITELIAL
OBJETIVOS:
Que el alumno reconozca al tejido epitelial de revestimiento y glandular y comprenda su
importancia.
COMPETENCIAS:
1. El alumno identifica al tejido epitelial.
2. Reconoce las diferencias entre tejido de revestimiento y glandular
3. Clasifica el tejido epitelial de revestimiento por el número de células que lo constituyen y
por la forma de las mismas
4. Reconoce la diferencia entre glándulas unicelulares y pluricelulares
INTRODUCCIÓN:
El tejido epitelial es uno de los 4 tejidos básicos del organismo. Este es una verdadera
cubierta en órganos y cuerpo (como la piel). Tapiza y protege las superficies internas o
externas de los organismos o estructuras derivadas del exodermo embrionario; es un tejido
de escasa sustancia intercelular y tiene las células muy agrupadas.
Generalmente formado por varias capas de células, en la lámina basal (colágeno y
proteínas asociadas: entactina, laminina y fibronectina) descansan células que se irán
diferenciado y migrando a la superficie para luego morir y descamarse (proliferación,
diferenciación y descamación) .Cubre las superficies del cuerpo y el interior de órganos
huecos. Las células están sobre una membrana basal y tejido conectivo. Por lo general no
están irrigados, por lo que se nutren por difusión desde los vasos del tejido conectivo
subyacente.
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Se divide en dos grandes grupos
a) De revestimiento
Se distinguen y se clasifican de acuerdo con tres características principales:
* El número de las capas celulares en el epitelio (monoestratificado simple,
estratificado pseudoestratificado y de transición).
* La altura y forma de la capa superficial de las en el epitelio (plano, cúbico o
cilíndrico).
* La presencia de especializaciones de membrana (microvellosidades, ribete en
cepillo, chapa estriada, estereocilios; cilios o flagelos, etc)
b) Glandular
Se distingue y clasifica por:
a) Tipo de secreción
b) Forma de secretar
c) Lugar a donde vierte su secreción
d) Integridad glandular al secretar
e) Célula blanco de la secreción
www.efn.uncor.edu
ACTIVIDADES PRELIMINARES:
Investiga sobre el tejido epitelial su función y clasificación.
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Lee acerca de sus características
MATERIAL Y REACTIVOS:
1 caja Preparaciones histológicas varias de tejido
epitelial de revestimiento y glandular
1 caja Colores
METODOLOGÍA:
1. Toma cuidadosamente las laminillas de tejido epitelial de revestimiento y glandular y
obsérvalos detalladamente al microscopio con los aumentos de 10x y 40x.
2. Identifica las diferencias entre cada laminilla.
RESULTADOS:
Dibuja cada una de las laminillas que observaste con los diversos aumentos.
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DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
Revisa acerca de los tejidos que observaste e identifica a qué grupo pertenece, si
revestimiento o glandular.
Identifica el número de capas que presenta el tejido epitelial de revestimiento y clasifícalo en
base a ello.
También observa la forma de las células y menciona si son cúbicas, cilíndricas o
columnares o planas.
Observa si no existen especialidades en la superficie celular como estereocilios,
microvellosidades etc.
Lee acerca de sus características y trata de relacionar las funciones del tejido con sus
características morfológicas.
CONCLUSIONES:
En base a lo observado y lo que investigaste, plantea tus conclusiones.
BIBLIOGRAFÍA:
1. Paniagua et (2007). ”Citología e Histología Vegetal y Animal”. Editorial Mc Graw Hill. 4ª
edición. Madrid.
2. Ross M.H., Pawlina W. Histología. (2012). Editorial Panamericana. 6ta. Edición.
3. www.efn.uncor.edu
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PRACTICA III B. TEJIDO CONECTIVO
OBJETIVOS:
Que el alumno reconozca al tejido conectivo no especializado y especializado investigue sus
características y comprenda su importancia.
COMPETENCIAS:
1. El alumno identifica al tejido conectivo no especializado y especializado
2. Reconoce las diferencias entre tejido conectivo
3. Clasifica el tejido conectivo en especializado (adiposo, óseo, cartilaginoso, sanguíneo) o
no especializado.
INTRODUCCIÓN:
El tejido conectivo o conjuntivo, forma parte de los cuatro tejidos básicos del cuerpo. Su
función principal es sostener y mantener unidos a otros tejidos (hueso, sangre y tejido
linfoide. Está formado por células (fibroblastos y células reticulares) y componentes
extracelulares como fibras (colágena, elastina y fibrilina) y sustancia fundamental (sustancia
gelatinosa formada por carbohidratos asociados a proteínas (glucosaminoglucanos) en las
que se encuentran las células y fibras).
Clasificación:
1. Tejido conectivo no especializado:
1.1 Tejido conectivo laxo: (es siempre irregular)
– Tejido conjuntivo mucoso o gelatinoso
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– Tejido conjuntivo reticular
– Tejido mesenquimal
1.2 Tejido conectivo denso:
– Tejido conectivo denso regular
– Tejido conectivo denso irregular
2. Tejidos conectivos especializados:
– Tejido adiposo
– Tejido cartilaginoso
– Tejido óseo
– Tejido hematopoyético
www.conceptodefinicion.de
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ACTIVIDADES PRELIMINARES:
Investiga sobre el tejido conectivo su función y clasificación.
Lee acerca de sus características tanto del especializado como en no especializado y
realiza un mapa conceptual.
MATERIAL Y REACTIVOS:
1 caja Preparaciones histológicas varias de tejido
conectivo no especializado y especializado
(cartílago, sangre, adiposo, conectivo laxo, etc)
1 caja Colores
METODOLOGÍA:
1. Toma cuidadosamente las laminillas de tejido conetivo no especializado y especializado
2. Obsérvalos detalladamente al microscopio con los aumentos de 10x y 40x
2. Identifica las diferencias entre cada laminilla.
RESULTADOS:
Dibuja cada una de las laminillas que observaste con los diversos aumentos.
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DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
Revisa acerca de los tejidos que observaste e identifica a qué grupo pertenece, si
especializado o no especializado y porque.
Observa la morfología de las células que lo componen y sus características.
Lee acerca de sus características y trata de relacionar las funciones del tejido con sus
características morfológicas.
CONCLUSIONES:
En base a lo observado y lo que investigaste, plantea tus conclusiones.
BIBLIOGRAFÍA:
1. Paniagua et (2007). ”Citología e Histología Vegetal y Animal”. Editorial Mc Graw Hill. 4ª
edición. Madrid.
2. Ross M.H., Pawlina W. (2012). Histología. Editorial Panamericana. 6ta. Edición.
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PRACTICA IV. TEJIDO SANGUINEO
OBJETIVOS:
1. El alumno conocerá los niveles de organización en biología
2. Reconocerá el significado e importancia de la citología como la rama de la medicina
encargada del estudio de las células.
3. Reconocerá el significado e importancia de la histología como la rama de la medicina
encargada del estudio de los tejidos, su agrupación y sus relaciones.
4. Reconocerá a la sangre como un tipo especializado de tejido conectivo.
5. Conocerá la morfología y fisiología de los componentes sanguíneos : células
(eritrocitos, leucocitos), restos celulares (plaquetas) y matriz líquida conocida como
plasma sanguíneo.
COMPETENCIAS:
Aprende los niveles de organización biológica presentes en los organismos
Investiga, analiza y distingue la diferencia entre citología e histología y reconoce los 4
tejidos básicos presentes en un organismo
Identifica a la sangre como parte del tejido conectivo y los elementos que la
conforman
Discute sus resultados y plantea conclusiones
INTRODUCCION:
Para estudiar los organismos pluricelulares, es indispensable comprender los niveles de
organización presentes en ellos. Así, el nivel más simple encontrado en un organismo es el
átomo, constituido por partículas subatómicas. Los átomos se unen formando moléculas,
entre las cuales podemos distinguir a los hidratos de carbono, los lípidos, las proteínas y los
ácidos nucléicos, conocidas como macromoléculas. Estas moléculas se agrupan en
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orgánulos con funciones definidas en la célula, el siguiente nivel jerárquico de organización
de los seres vivos. Células con función y estructura similar se agrupan formando tejidos.
Cabe mencionar que existen cuatro tejidos que conforman a los seres vivos:
1. epitelial,
2. conectivo,
3. muscular
4. nervioso.
Los tejidos se agrupan formando órganos, y los órganos a su vez se agrupan realizando la
misma función conformando sistemas. Finalmente los sistemas se integran y relacionan
formando aparatos presentes en los organismos.
Dentro del tejido conectivo, entre otros, se agrupa al tejido sanguíneo. Se le llama
hematopoyesis al proceso de formación, desarrollo y maduración de la sangre (glóbulos
rojos, blancos, plaquetas y plasma) a partir de una célula madre pluripotencial no
diferenciada (Steam cell). El proceso consta de tres fases en base a sus sitios
hematopoyéticos:
• Fase mesoblástica: Fase inicial, en el Pedúnculo del tronco y el Saco vitelino, ocurre en la
2ª semana embrionaria.
• Fase hepática: En la 6ª semana de vida embrionaria, el hígado es sembrado por células
madres del saco vitelino.
• Fase mieloide: El bazo y la médula ósea fetal presentan células madres hepáticas
En el adulto, la médula ósea roja es el sitio de hematopoyesis:
Médula ósea roja, tejido esponjoso de los huesos planos, como el esternón, las vértebras,
la pelvis y las costillas: función hematopoyética (40% agua + 40% grasa + 20% proteínas).
Médula ósea amarilla, tejido adiposo de se los canales medulares de los huesos largos.
Es inactiva (15% agua + 80% grasa + 5% proteínas).
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anatomiafisamuniversity.wordpress.com
La sangre está formada por células (eritrocitos y leucocitos), fragmentos celulares
(trombocitos o plaquetas) y plasma. Tiene un color rojo debido a la presencia de un
pigmento presente en los glóbulos rojos: la hemoglobina. Cuando la sangre no coagulada
se centrifuga, las células sedimentan en el fondo del tubo observándose tres estratos, uno
superior color ámbar llamado plasma, uno blanquecino, muy delgado constituido por
glóbulos bancos o los leucocitos y las plaquetas y uno inferior de color rojo oscuro formado
por eritrocitos o glóbulos rojos.
Los eritrocitos hematíes o glóbulos rojos al microscopio se observan como discos rojos
bicóncavos anucleados en mamíferos y con núcleo en reptiles, aves y algunos otros
vertebrados. Su principal función es el transporte de oxígeno y dióxido de carbono. En
solución hipotónica, los eritrocitos se hinchan volviéndose más redondeados hasta
Manual del Laboratorio Modular de … 30
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destruirse (hemólisis). En cambio en solución hipertónica, entonces pierden líquido y se
arrugan, dándole a la célula un aspecto de estrella.
Los glóbulos blancos o leucocitos son células nucleadas, esférica en el torrente sanguíneo
pero pueden modificarse al salir del vaso sanguíneo o en el portaobjetos. Su función
principal es la defensa del organismo contra agentes patógenos.
Por la forma del núcleo y la presencia o no de gránulos citoplasmáticos, los leucocitos se
pueden clasificar en:
a) polimorfos nucleares o granulocitos: Poseen diversidad morfológica en el núcelo, o
núcleos lobulados y gránulos citoplasmáticos que se tiñen selectivamente, lo que los
clasifica en neutrófilos, eosinófilos y basófilos.
b) mononucleares o agranulocitos, poseen núcleos redondos bien definidos y no
lobulados y no contienen granulaciones. Se clasifican en linfocitos y monocitos.
Las plaquetas o trombocitos son fracciones celulares de una célula localizada en la médula
ósea roja llamada megacariocito. Su principal función es la coagulación sanguínea.
http://raulcalasanz.wordpress.com
ACTIVIDADES PRELIMINARES:
Vista y descarga las siguientes páginas y lee acerca del tejido sanguíneo y su origen
http://www.facmed.unam.mx/deptos/biocetis/PDF/Portal%20de%20Recursos%20en%20Line
a/Apuntes/Tejido-sanguineo.pdf
Manual del Laboratorio Modular de … 31
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MATERIAL Y REACTIVOS:
CANT. DESCRIPCION OBSERVACIONES
1 Colorantes para citología: Giemsa
10 Portaobjetos y cubreobjetos
6 Lancetas para obtención de sangre
1 Microscopio
1 Hueso largo de res o de cerdo (fémur o húmero) Partido por mitad y con epífisis y diáfisis
1 Resina para fijar
1 Paquete pequeño de algodón
1 Rollo de papel secante
1 Frasco de alcohol al 70%
TOXICOLOGÌA:
Investiga de los reactivos a utilizar la toxicidad de los mismos (si existe) y medidas de
primeros auxilios en caso de intoxicación (inhalación, digestión, contacto piel y ojos)
METODOLOGÍA:
Observación de tejido sanguíneo:
1. Lavar las manos con agua y jabón.
2. Limpiar y desinfectar muy bien con un algodón humedecido en alcohol, las yemas de
los dedos
3. Obtener una gota de sangre de la yema de alguno de los dedos ya desinfectados con
alcohol (se sugiere el dedo anular)
4. Colocarla en el portaobjetos la gota de sangre, extendiéndola rápidamente con
ayuda de otro portaobjetos en forma de frotis.
5. Dejarla secar la muestra de sangre para fijarla posteriormente en metanol durante 4
minutos.
Manual del Laboratorio Modular de … 32
Facultad de Farmacia
6. Realizar tinción de Giemsa y colocar el cubreobjetos con la resina, sobre el frotis.
7. Observar al microscopio, describir e identificará células:
a) Eritrocitos de color rojo, sin núcleo (en el caso de mamíferos), pequeños y
homogéneos.
b) Leucocitos polimorfo nucleares, identificables por la presencia como su
nombre lo indica, de núcleos irregulares teñido de color azul, escaso
citoplasma y gránulos citoplásmicos (rojos en el caso de eosinófilos, rojos;
azules en el caso de basófilos e incoloros en el caso de neutrófilos.
c) Leucocitos monomorfonucleares o linfocitos con núcleo redondo azul y escaso
citoplasma eosinófilo.
http://raulcalasanz.wordpress.com
Observación de tejido hematopoyético (Médula ósea roja):
1. Tomar el hueso largo observando características presentes en él
2. Cuidadosamente evaluar consistencia y características del tejido presente en el interior
de las epífisis
3. Revisar características y consistencia del tejido presente en la diáfisis del hueso.
4. Notar diferencias, hacer dibujo y sacar conclusiones.
Manual del Laboratorio Modular de … 33
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RESULTADOS:
DIBUJA Y COMPARA:
ERITROCITOS
LEUCOCITOS
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PLAQUETAS
EPIFISIS:
DIAFISIS:
Manual del Laboratorio Modular de … 35
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MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS:
[Introduzca las especificaciones para el tratamiento de los residuos generados por la
metodología realizada]
DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
1. ¿Qué estudia la citología?
2. ¿Qué estudia la histología?
3. ¿Cuáles son los niveles de organización biológica?
4. ¿A qué tejido pertenece la sangre?
5. ¿Dónde se origina el tejido sanguíneo en un embrión y en un individuo adulto?
6. ¿Cuál es la función de cada uno de los elementos del tejido sanguíneo?
CONCLUSIONES:
En base a tus observaciones, comenta con los integrantes de tu equipo y plantea
conclusiones.
BIBLIOGRAFÍA:
1. Aranda F. A., León R. J.R., Morales B, J. Anatomía y Fisiología. “Manual de
prácticas de laboratorio” (2003). ENEO UNAM. p.21-26
2. Paniagua R, Nistal M, Sesma P, Álvarez-Uría M, Fraile B, Anadón R, Sáez F.
“Histología vegetal y animal” (2007). Mc Graw Hill Interamericana. Vol. 2. 4t.
Edición. Madrid. España. p.527-584
3. http://www.facmed.unam.mx/deptos/biocetis/PDF/Portal%20de%20Recursos%
20en%20Linea/Apuntes/Tejido-sanguineo.pdf
4. www.anatomiafisamuniversity.wordpress.com
Manual del Laboratorio Modular de … 36
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PRACTICA V A. TEJIDO MUSCULAR
OBJETIVOS:
Que el alumno reconozca al tejido muscular, revise las diferencias entre el músculo estriado
esquelético, liso o visceral y cardiaco y comprenda su importancia.
COMPETENCIAS:
1. El alumno identifica al tejido muscular
2. Reconoce las diferencias entre tejido muscular estriado esquelético, liso o visceral y
cardiaco
3. Clasifica al tejido muscular por la forma de las células, la presencia o no de estriaciones y
la localización de sus núcleos
4. Investiga el papel del músculo estriado esquelético, liso visceral y cardiaco, su papel en la
contracción muscular y su importancia
INTRODUCCIÓN:
El tejido muscular forma parte de los cuatro tejidos básicos del cuerpo. Está formado por
células alargadas con núcleos en la periferia (estriado) o en el centro (liso) pero formando
filamentos que se orientan paralelamente a la dirección del movimiento.
Se clasifica en:
a) Estriado voluntario o esquelético, aquel que mueve al cuerpo,
b) Liso involuntario o visceral el que se encuentra en órganos como estómago, intestino,
útero, etc
c) Estriado cardiaco
Manual del Laboratorio Modular de … 37
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www.biología-test.blogspot.com
ACTIVIDADES PRELIMINARES:
Investiga sobre el tejido muscular su función y clasificación.
Lee acerca de sus características tanto del músculo liso o visceral, estriado o esquelético y
cardiaco así como su localización y función
MATERIAL Y REACTIVOS:
1 caja Preparaciones histológicas varias de tejido
muscular estriado o esquelético, liso o visceral y cardiaco
1 caja Colores
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METODOLOGÍA:
1. Toma cuidadosamente las laminillas de tejido muscular estriado esquelético, liso o
visceral y cardiaco
2. Obsérvalos detalladamente al microscopio con los aumentos de 10x y 40x
2. Identifica las diferencias entre cada laminilla.
RESULTADOS:
Dibuja cada una de las laminillas que observaste con los diversos aumentos con sus
diferencias.
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DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
Revisa acerca de los tejidos que observaste e identifica a qué grupo pertenece, si al
músculo estriado esquelético, liso involuntario y cardiaco y porque reciben estos nombres
Observa la morfología de las células que lo componen y sus características.
Lee acerca de sus características y trata de relacionar las funciones del tejido con sus
características morfológicas.
CONCLUSIONES:
En base a lo observado y lo que investigaste, plantea tus conclusiones.
BIBLIOGRAFÍA:
1.Paniagua et (2007). ”Citología e Histología Vegetal y Animal”. Editorial Mc Graw Hill. 4ª
edición. Madrid.
2. Ross M.H., Pawlina W. Histología. (2012). Editorial Panamericana. 6ta. Edición.
Manual del Laboratorio Modular de … 41
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PRACTICA V B. TEJIDO NERVIOSO
OBJETIVOS:
Que el alumno reconozca al tejido nervioso, revise como se clasifica y cuál es su
importancia.
COMPETENCIAS:
1. El alumno identifica al tejido nervioso
2. Investiga el papel del músculo tejido nervioso, su papel en la irritabilidad y su importancia.
INTRODUCCIÓN:
El tejido nervioso forma parte de los cuatro tejidos básicos del cuerpo. Constituido por
neuronas, transmite mensajes de todo el cuerpo.Las neuronas son la unidad anatómica y
fisiológica del tejido nervioso y son clasificadas en aferentes si viajan de forma centrípeta
desde las células sensoriales receptoras de estímulos nerviosos hacia el Sistema Nervioso
Central o Eferentes si van del Sistema Nervioso Central hacia los órganos efectores de la
respuesta, llámense glándulas o músculos. Así, pueden clasificarse también en neuronas
sensitivas, motoras e interneuronas o de asociación (las que conectan a las sensitivas con
las motoras).
El Sistema Nervioso se divide en:
I. Central.- Cerebro, cerebelo, bulbo raquídeo y medula espinal.
II. Periférico.- Nervios espinales y pares craneales.
Clasificación:
II. I Autónomo o vegetativo
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II. II Somático o de la vida de relación
www.mapamental.es
ACTIVIDADES PRELIMINARES:
1. Investiga sobre el tejido nervioso, su función y clasificación.
2. Lee acerca de sus características tanto del sistema nervioso central como del sistema
nervioso periférico, y de éste último, las características del autónomo y somático
3. Revisa a que se conoce como sistema nervioso simpático y parasimpático y sus
características y realiza con toda la información anterior un mapa conceptual
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MATERIAL Y REACTIVOS:
1 caja Preparaciones histológicas varias de tejido
nervioso
1 caja Colores
METODOLOGÍA:
1. Toma cuidadosamente las laminillas de tejido nervioso
2. Obsérvalos detalladamente al microscopio con los aumentos de 10x y 40x
2. Identifica las diferencias entre cada laminilla.
RESULTADOS:
Dibuja cada una de las laminillas que observaste con los diversos aumentos con sus
diferencias.
DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
Revisa los tejidos que observaste e identifica
Observa la morfología de las células que lo componen y sus características.
Lee acerca de sus características y trata de relacionar las funciones del tejido con sus
características morfológicas.
CONCLUSIONES:
En base a lo observado y lo que investigaste, plantea tus conclusiones.
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BIBLIOGRAFÍA:
1. Paniagua et (2007). ”Citología e Histología Vegetal y Animal”. Editorial Mc Graw Hill. 4ª
edición. Madrid.
2. Ross M.H., Pawlina W. Histología. (2012). Editorial Panamericana. 6ta. Edición.
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PRACTICA VI. COMPARACION MORFO-FISIOLOGICA DE APARATOS
DIGESTIVOS ANIMALES Y SUS ESTRUCTURAS
OBJETIVOS
El alumno identificará las principales estructuras relacionadas con la alimentación en los
animales y comprenderá la relación ESTRUCTURA-FUNCIÓN en los sistemas digestivos,
en organismos inferiores y superiores.
COMPETENCIAS
Observa el aparato digestivo de aves, peces y monogástricos
Investiga, analiza y distingue las partes que conforman el aparato digestivo y órganos
accesorios a él.
Observa y compara las diferencias entre tractos digestivos de diversas especies.
INTRODUCCION
El aparato digestivo, es un tubo largo, con glándulas asociadas, siendo su función la
transformación de moléculas complejas presentes en los alimentos en sustancias más
simples y fácilmente utilizables por el organismo.
En el humano adulto, el tubo digestivo mide unos once metros de la boca al ano. En la boca
empieza propiamente la digestión. Los dientes trituran los alimentos y las secreciones de las
glándulas salivales los humedecen e inician su descomposición química. Luego, el bolo
alimenticio atraviesa la faringe, sigue por el esófago y llega al estómago, bolsa muscular de
litro y medio de capacidad, en condiciones normales, cuya mucosa secreta el potente jugo
gástrico, rico en ácido clorhídrico y enzimas. Aquí, el alimento es mezclado hasta
convertirse en una papilla llamada quimo.
Manual del Laboratorio Modular de … 46
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A la salida del estómago, el tubo digestivo se prolonga con el intestino delgado, de unos
cinco metros de largo, aunque muy replegado sobre sí mismo. Su primera porción o
duodeno recibe las secreciones de las glándulas intestinales, del páncreas y de la vesícula
biliar. El jugo entérico o intestinal es rico en enzimas. El páncreas presenta dos tipos de
secreciones, una rica en bicarbonatos y otra rica en enzimas que actúan sobre los
principales nutrimentos presentes en los alimentos. La secreción de la vesícula biliar no
contienen enzimas sino sales biliares cuya función es saponificar y emulsificar las grasas
presentes en los alimentos. Es en el duodeno donde se realiza la absorción de la mayor
cantidad de nutrimentos.
El tubo digestivo continúa por el intestino grueso, de algo más de metro y medio de
longitud. Su porción final es el recto, que termina en el ano, por donde se evacuan al
exterior los restos indigeribles de los alimentos.
es.slideshare.net
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ACTIVIDADES PRELIMINARES
Busca, revisa e investiga diferencias y función de cada porción del aparato digestivo de:
Humano
Conejo
Ave
Pez
MATERIAL Y REACTIVOS
CANT DESCRIPCION OBSERVACIONES
1 Tabla de disección
1 Estuche de disección
1 Guates
1 Papel secante
1 Paquete gasa
1 Paquete algodón
1 Tracto digestivo completo de conejo * (con órganos accesorios: hígado, vesícula
biliar, páncreas)
1 Tracto digestivo completo de ave * (con órganos accesorios: hígado, vesícula
biliar, páncreas)
*Escoger por equipo un tracto digestivo completo para realizar la práctica y comparar
con los aparatos digestivos de los demás equipos.
TOXICOLOGÌA
Investiga de los reactivos a utilizar la toxicidad de los mismos (si existe) y medidas de
primeros auxilios en caso de intoxicación (inhalación, digestión, contacto piel y ojos)
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METODOLOGÍA
1. Disecar el tracto digestivo de cada especie e identificar cada una de sus partes.
2. Identifican cada especie, glándulas accesorias (Hígado, páncreas y vesícula biliar)
3. Compararlos con las láminas e ilustraciones que obtuviste en la actividad preliminar a
la práctica
4. Hacer esquemas del tracto digestivo de cada ejemplar
5. Hacer un cuadro comparativo con los ejemplares observados
6. Investigar la función de cada parte del tracto digestivo incluyendo órganos y glándulas
accesorias
RESULTADOS
Realizar dibujos de todas las observaciones
EJEMPLAR: ORGANO U
ESTRUCTURA:
FUNCION: ESQUEMA:
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MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS
DISCUSIÓN DE RESULTADOS
1. Describa brevemente el aparato circulatorio humano. Mencione las similitudes y
diferencias con el aparato circulatorio de las diferentes especies: ave, pez y
monogástrico (conejo).
2. Explica cómo cambia la capacidad digestiva de los mamíferos en relación a la edad o
a una enfermedad específica.
3. ¿Puede la forma y número de dientes ayudar a explicar los hábitos alimenticios en los
vertebrados?, explica y menciona dos ejemplos.
Manual del Laboratorio Modular de … 50
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CONCLUSIONES
Con base a tus observaciones, comenta con los integrantes de tu equipo y plantea
conclusiones.
BIBLIOGRAFÍA
1. Byrd-Bredbenner C, Moe G, Beshegetoor D, Berning J. “Perspectives in
Nutrition” (2010). Ninth edition. Mc Graw Hill. Nueva York.
2. http://digestive.niddk.nih.gov/spanish/pubs/yrdd/
3. http://www.juntadeandalucia.es/averroes/~29701428/salud/digesti.htm
Manual del Laboratorio Modular de … 51
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PRACTICA VII. RESPIRACIÓN EN VERTEBRADOS E INVERTEBRADOS
TERRESTRES Y ACÚATICOS
OBJETIVOS:
Observar la anatomía y función de diferentes órganos respiratorios (branquias,
tráqueas y pulmones)
Evaluar la función del sistema respiratorio en fases diferentes tales como reposo y
actividad física.
COMPETENCIAS:
Observa el aparato respiratorio en diferentes fases de reposo o actividad física.
Investiga, analiza y distingue las partes que conforman el aparato respiratorio y
órganos accesorios a él.
INTRODUCCIÓN:
El sistema respiratorio está formado por un conjunto de órganos que tiene como principal
función llevar el oxígeno atmosférico hacia las células del organismo y eliminar del cuerpo el
dióxido de carbono producido por el metabolismo celular. Los órganos que componen el
sistema respiratorio son cavidades nasales, la faringe, la laringe, la tráquea, los bronquios,
los bronquiolos y los dos pulmones. Los pulmones son los órganos centrales del sistema
respiratorio donde se realiza el intercambio gaseoso. El resto de las estructuras, llamadas
vías aéreas o respiratorias, actúan como conductos para que pueda circular el aire inspirado
y espirado hacia y desde los pulmones, respectivamente. Aunque la cavidad bucal permite
la entrada de aire a las vías respiratorias no forma parte el sistema respiratorio.
La parte interna de las vías respiratorias está cubierta por:
- Una capa de tejido epitelial, cuyas células muy unidas entre sí protegen de lesiones e
infecciones.
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- Una mucosa respiratoria, responsable de mantener las vías bien húmedas y una
temperatura adecuada.
La superficie de la mucosa respiratoria posee dos tipos de células:
- Células mucosas: elaboran y segregan moco hacia la entrada de las vías respiratorias.
- Células ciliadas: poseen cilios en constante movimiento con el fin de desalojar el moco y
las partículas extrañas que se fijan en la mucosa respiratoria.
Seguramente nunca te has puesto a pensar: "Debo respirar". Lo haces sin darte cuenta, ya
que es algo que se ejecuta en forma mecánica, incorporando oxígeno cuando inspiras (o
inhalas) y expeliendo anhídrido carbónico cuando espiras (o exhalas). Para mantenerse
activas, las células del organismo necesitan oxígeno. El sistema respiratorio realiza esta
función mediante la respiración, que es un proceso involuntario, controlado por los centros
respiratorios ubicados en el tronco cerebral. Lo accionan ciertos órganos y estructuras como
las vías respiratorias o aéreas (cavidad nasal, faringe, laringe, tráquea y bronquios) y los
pulmones. Luego de que el aire llega a los pulmones, el suministro de oxígeno es
transportado por la sangre, para distribuirlo a todos los tejidos del cuerpo. Paralelamente,
este sistema se encarga de expulsar el dióxido de carbono hacia el exterior del organismo.
El sistema respiratorio está formado principalmente por dos grandes secciones:
Las vías respiratorias
El aparato pulmonar
El sistema respiratorio es el encargado, en el organismo humano, de la respiración. Ahora
bien, ¿qué se entiende por respiración? La podemos definir como el conjunto de
mecanismos por los cuales las células toman oxígeno (O2) y eliminan el dióxido de carbono
(CO2) que producen. Por lo tanto la respiración es un proceso complejo que puede dividirse
en cinco sucesos funcionales importantes:
1) Ventilación alveolar, que es el intercambio de aire entre la atmósfera y los alvéolos
pulmonares, y viceversa;
Manual del Laboratorio Modular de … 53
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2) Hematosis o intercambio de gases entre los alvéolos pulmonares y la sangre del capilar
pulmonar;
3)Transporte de gases, que se realiza a través de la sangre;
4)Difusión de gases entre la sangre y las células a nivel tisular; y
5)Respiración real, que es la utilización de O2 y producción de CO2 por parte de las células.
ACTIVIDADES PRELIMINARES:
El alumno realizará la elaboración personal de un diagrama que represente la secuencia de
operaciones experimentales a partir del guión de la práctica a elaborar.
El alumno investigará los usos y manejos de materiales y reactivos que se utilizarán en la
práctica, así como la toxicidad de los reactivos empleados.
MATERIAL Y REACTIVOS:
CANTIDAD MATERIAL CANTIDAD REACTIVOS
3 Peceras
1 Bisturí o navaja
1
Tabla de unicel de 15 x 15
cm.
Alfileres
1 Reloj con segundero
1 Regla de 30 cm.
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TOXICOLOGÌA:
Investiga de los reactivos a utilizar la toxicidad de los mismos (si existe) y medidas de
primeros auxilios en caso de intoxicación (inhalación, digestión, contacto piel y ojos)
METODOLOGÍA:
RESPIRACIÓN EN PECES (REPOSO Y ACTIVIDAD)
1. Registrar el peso y tamaño de los peces.
2. Introducir tres peces de diferente tamaño en una pecera o vaso con agua de la
pecera.
3. Contar el número de respiraciones (movimientos operculares) por minuto de cada pez
en reposo.
4. Someter a los peces al movimiento durante uno o dos minutos, posteriormente
cuente el número de respiraciones durante cinco minutos anotando la frecuencia
respiratoria por cada minuto.
5. Observar cuidadosamente como se efectúan los movimientos respiratorios, con la
finalidad de ventilar las branquias.
6. Registrar sus datos.
1
3
3
Balanza
Peces vivos (diferentes
tamaños)
Mamíferos (Homo sapiens)
de diferentes tallas y sexos
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RESPIRACIÓN EN MAMÍFEROS (REPOSO Y ACTIVIDAD)
1. Se necesitan tres voluntarios de tu equipo, de sexo y tallas diferentes.
2. Otro compañero, registrará el número de respiraciones y palpitaciones a un voluntario
en condiciones de reposo, se hará lo mismo para cada voluntario.
3. Cada voluntario se sujetará a ejercicios intensos durante cinco minutos (carrera,
lagartijas, subir escaleras, abdominales, etc.).
4. Terminados los cinco minutos, se registrará nuevamente el número de respiraciones
y palpitaciones de cada voluntario después del ejercicio, hasta alcanzar las
condiciones que se tenían en reposo, con la finalidad de establecer el tiempo de
recuperación
5. Registre sus datos.
RESULTADOS:
TABLAS DE RESULTADOS
REPOSO
PEZ PESO TAMAÑO RESPIRACIONES
INICIALES
RESPIRACIONES
FINALES
VOLUNTARIO PESO TALLA RESPIRACIONES PALPITACIONES
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ACTIVIDAD
MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS
Los desechos biológico-infecciosos se almacenaran de la siguiente manera y de acuerdo al
reglamento interno del almacén de desechos.
DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
De acuerdo a los datos obtenidos, discute cuales son los parámetros que se modifican al
estar en reposo o realizando alguna actividad física.
Indica si las actividades físicas planteadas modifican la respiración del individuo y que tipo
de ejercicios modifican en mayor proporción el proceso de respiración.
VOLUNTARIO PESO TALLA RESPIRACIONES PALPITACIONES
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CONCLUSIONES:
Con base a tus observaciones, comenta con los integrantes de tu equipo y plantea
conclusiones.
BIBLIOGRAFÍA:
1. Enciclopedia de salud y seguridad en el trabajo, El cuerpo humano, Capitulo X
Aparato Respiratorio Directores del capítulo: Alois David y Gregory R. Wagner
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PRACTICA VIII A. COMPARACION MORFO-FISIOLOGICA DE APARATOS
GENI-TO-URINARIOS DE DIVERSOS ANIMALES Y SUS ESTRUCTURAS
OBJETIVOS
El alumno identificará las principales estructuras relacionadas con el aparato genito-urinario
en animales y comprenderá la relación ESTRUCTURA-FUNCIÓN en organismos inferiores
y superiores.
COMPETENCIAS
Observa e identifica el aparato genito-urinario de aves, peces y monogástricos
Investiga, analiza y distingue las partes que conforman el aparato genito-urinario y
órganos accesorios a él (vesículas seminales, próstata, etc)
Observa y compara las diferencias entre tractos genito-urinarios de diversas
especies.
INTRODUCCION
Revisa la introducción de la práctica VIIIB.
ACTIVIDADES PRELIMINARES
Busca, revisa e investiga diferencias y función de cada porción del aparato genito-urinario
de:
Humano
Conejo
Ave
Pez
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MATERIAL Y REACTIVOS
CANT DESCRIPCION OBSERVACIONES
1 Canal de conejo
1 Canal de ave
1 Canal de pez
1 Tabla de disección
1 Estuche de disección
1 Guantes
1 Papel secante
1 Paquete gasa
1 Paquete algodón
TOXICOLOGÌA
Investiga de los reactivos a utilizar la toxicidad de los mismos (si existe) y medidas de
primeros auxilios en caso de intoxicación (inhalación, digestión, contacto piel y ojos)
METODOLOGÍA
RESULTADOS
MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS
DISCUSIÓN DE RESULTADOS
1. Describa brevemente el aparato genito-urinario en humanos.
Manual del Laboratorio Modular de … 60
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2.¿Cuál es el origen embriológico del aparato renal?
3. Origen embriológico del aparato reproductor (genitales y órganos accesorios)
4. ¿Qué factores alimenticios o de la edad pueden afectar la excreción renal?
CONCLUSIONES
Con base a tus observaciones, comenta con los integrantes de tu equipo y plantea
conclusiones.
BIBLIOGRAFÍA
Manual del Laboratorio Modular de … 61
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PRACTICA VIII B. APARATO URINARIO
OBJETIVOS:
6. El alumno revisará las partes del aparato urinario y su función
7. Identificará los cambios tanto en volumen como en composición y características
físicas y químicas de la orina
8. Analizará efectos de diferencias fisiológicas sobre la función renal
COMPETENCIAS:
Investiga y comprende las partes que componen al aparato urinario y su función
Analiza las características de la orina y sus variaciones en composición y volumen
bajo diversas situaciones
INTRODUCCION:
Se conoce como aparato urinario al conjunto de órganos que producen la orina. Está
formado por:
Riñones (2)
Uréteres (2)
Vejiga (1)
Uretra (1)
Algunas de las principales fas funciones del aparato urinario son:
Balance hídrico y electrolítico del cuerpo.
Fabricación y excreción de orina.
Control de la presión arterial mediante el sistema renina angiotensina (no confundir
con la enzima digestiva renina o quimiosina).
Manual del Laboratorio Modular de … 62
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Producción de eritropoyetina
Activación, junto con el hígado, de la vitamina D (para fijación de calcio en huesos)
La unidad anatómica y fisiológica del riñón es la nefrona y está formada por:
1. Glomérulo y capsula de Bowman (constituyen el corpúsculo de Malpighi)
2. Túbulos renales:
a) contorneados proximales
b) Asa de Henle
c) Túbulos contorneados distales
3. Túbulos colectores
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La formación de orina tiene tres pasos:
a) Filtración: La arteria renal aferente filtra iones, glucosa, a.a, urea, creatinina y otras
sustancias disueltas en la sangre hacia la cápsula del Bowman en el glomérulo.
El líquido filtrado hacia la cápsula contiene tanto sustancias de desecho como moléculas
aún útiles al organismo.
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b) Reabsorción: Al llegar a los túbulos contorneados proximales, son reabsorbidas
sustancias aún útiles para el organismo (glucosa, aminoácidos, sales y agua) y regresadas
nuevamente a la sangre.
El 80% de la reabsorción del agua ocurre en el túbulo contorneado proximal mediante
osmosis y 20% en el túbulo contorneado distal y el túbulo colector. Así, la orina se
concentra.
c) Filtración: Sustancias de desecho desde los capilares renales a todo lo largo del túbulo
renal son filtradas para eliminarse.
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www.zonagratuita.com
La orina es un líquido amarillo claro, transparente, formada por 96% de agua y un 4% de
sólido (urea, creatinina, NaCl, N2, P, cloruros, amonio, ácido úrico, etc). Esta es conducida
por los uréteres hacia la vejiga donde es almacenada para posteriormente contraerse de
forma involuntaria por medio de nervios parasimpáticos y excretar la orina al exterior por la
uretra. Aproximadamente se eliminan 1.5 litros de orina/día.
ACTIVIDADES PRELIMINARES:
Vista y descarga las siguientes páginas y lee acerca del aparato urinario
www.youtube.com/watch?v=1VqHdRLbjPk
www.youtube.com/watch?v=gyxu38fVtgk
http://www.educarchile.cl/ech/pro/app/detalle?id=136113
Manual del Laboratorio Modular de … 66
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MATERIAL Y REACTIVOS:
CANT. DESCRIPCION OBSERVACIONES
200 mL Solución de NaCl al 0.9%
200 mL Solución de NaCl al 1.8%
300 mL Solución bicarbonato de sodio al 0.4%
400 mL Café negro
1L Jugo de arandano
1L Agua de Jamaica concentrada
1L Agua purificada
500L Agua destilada
8 Esparragos verdes cocidos
8 Frascos nuevos y limpios para colectar muestras de orina
15 Vasos desechables para tomar agua
Tiras reactivas para detectar múltiples metabolitos en orina
1 Paquete pequeño de algodón
1 Rollo de papel secante
1 Paquete plastilina de colores
TOXICOLOGÌA:
Investiga de los reactivos a utilizar la toxicidad de los mismos (si existe) y medidas de
primeros auxilios en caso de intoxicación (inhalación, digestión, contacto piel y ojos)
METODOLOGÍA:
1. Llegar al laboratorio COMPLETAMENTE EN AYUNAS y recolectar la orina en un frasco
limpio hasta vaciar completamente la vejiga. Este será denominado tiempo cero.
2. Ingerir el total de la solución o el alimento que corresponda a cada voluntario del equipo
en un tiempo no mayor a diez minutos.
Manual del Laboratorio Modular de … 67
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3. Recolectar muestras de orina cada 30 minutos e identificarlas como tiempo uno (30 min
después de ingerida la solución), tiempo dos (60 min) y tiempo tres (90 min).
4. A cada muestra se le determinará volumen, color y apariencia.
5. Posteriormente se sumergirá la tira reactiva (una por muestra obtenida), se sacudirá el
exceso de orina y una vez seca se procederá a leer el resultado para determinar
concentración y componentes presentes en cada muestra (proteínas totales, bilirrubina,
urobilinógeno, NO2, NH4, glucosa, etc)
Mientras esperas los tiempos de colección de orina, realiza con tus compañeros de
equipo con plastilina una maqueta del aparato urinario y la nefrona.
Grupo Solución o alimento a ingerir al llegar al laboratorio posterior a la toma de muestra inicial
A Ingerir agua destilada a razón del 1% del peso corporal (Ejemplo:50 kg=500 mL agua)
B Ingerir solución de NaCl al 0.9% equivalente al 0.25% del peso corporal (Ejemplo: 50 kg=125 mL)
C Ingerir solución de NaCl al 1.8% equivalente al 0.25% del peso corporal (Ejemplo: 50 kg=125 mL)
D Ingerir solución de bicarbonato de sodio al 0.4% equivalente al 0.6% del peso corporal (Ejem 50kg=300 mL)
E Ingerir agua de jamaica a razón del 1% del peso corporal (Ejemplo 50kg=500 mL)
F Ingerir agua potable 10 mL por kg de peso corporal
G Ingerir tres esparragos con 10 mL de agua por kg de peso corporal
H Ingerir jugo de arándano a razón del 1% del peso corporal (Ejemplo 50Kg=500 mL)
I Ingerir 500 mL de café negro
J No ingerir líquido alguno (grupo control)
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RESULTADOS: LLENAR TABLA PARA T0, T1, T2 Y T3
TO:
Grupo Vol Color Olor Aspecto Urobil Bilirru Gluco Ceton Prot NO2 celulas pH
A
B
C
D
E
F
G
H
I
J
T1:
Grupo Vol Color Olor Aspecto Urobil Bilirru Gluco Ceton Prot NO2 celulas pH
A
B
C
D
E
F
G
H
I
J
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T2:
Grupo Vol Color Olor Aspecto Urobil Bilirru Gluco Ceton Prot NO2 celulas pH
A
B
C
D
E
F
G
H
I
J
T3:
Grupo Vol Color Olor Aspecto Urobil Bilirru Gluco Ceton Prot NO2 celulas pH
A
B
C
D
E
F
G
H
I
J
Manual del Laboratorio Modular de … 70
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MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS:
Investiga y describe en este apartado, donde y como desecharás los materiales utilizados
en la práctica de hoy.
DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
Compara los resultados obtenidos con cada uno de los grupos experimentales. Observa que
diferencias hubo en la cantidad, apariencia y características físicas y químicas de las
muestras de orina en los 4 tiempos (t0, t1, t2 y t3). Analiza y comenta con tus compañeros.
CONCLUSIONES:
En base a la observación y discusión de tus resultados, investiga y plantea tus conclusiones.
BIBLIOGRAFÍA:
1. Aranda F. A., León R. J.R., Morales B, J. Anatomía y Fisiología. “Manual de
prácticas de laboratorio” (2003). ENEO UNAM. p.21-26
2. Paniagua R, Nistal M, Sesma P, Álvarez-Uría M, Fraile B, Anadón R, Sáez F.
“Histología vegetal y animal” (2007). Mc Graw Hill Interamericana. Vol. 2. 4t.
Edición. Madrid. España. p.527-584
3. www.aula2005.com
4. www.icarito.cl
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PRACTICA IX A. IDENTIFICACION DEL APARATO CIRCULATORIO DE LA
RATA Y SUS ESTRUCTURAS
OBJETIVOS
El alumno identificará las principales estructuras relacionadas con el aparato circulatorio
animal y comprenderá la relación ESTRUCTURA-FUNCIÓN en organismos inferiores y
superiores.
COMPETENCIAS
Observa el aparato circulatorio de la rata
Investiga, analiza y distingue las partes que conforman el aparato circulatorio y sus
funciones
INTRODUCCION
El aparato circulatorio
.
http://www.texasheart.org/HIC/Anatomy_Esp/images/fig1_crosslg_sp.jpg
Manual del Laboratorio Modular de … 72
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ACTIVIDADES PRELIMINARES
Busca, revisa e investiga diferencias y función de cada porción del aparato digestivo de:
Humano
Rata
MATERIAL Y REACTIVOS
CANTIDAD DESCRIPCION OBSERVACIONES
1 Frasco grande (que quepa una rata)
1 Tabla de disección
1 Estuche de disección
1 carrete Hilo grueso
1 par Guates
1 frasco para anestesia
200 ml éter etílico
1 Papel secante
1 paquete gasa
1 paquete algodón
1 Rata Servirá también para la práctica IX B
TOXICOLOGÌA
Investiga de los reactivos a utilizar la toxicidad de los mismos (si existe) y medidas de
primeros auxilios en caso de intoxicación (inhalación, digestión, contacto piel y ojos)
METODOLOGÍA
Manual del Laboratorio Modular de … 73
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1. Anestesiar a la rata colocando una gasa o algodón impregnado en éter dentro del frasco
2. Hacer una incisión a lo largo de la parte media ventral de la pared abdominal y observar
in situ aparato circulatorio del animal.
3. Disecar el aparato circulatorio e identificar cada una de sus partes.
4. Compararlos con las láminas e ilustraciones que obtuviste en la actividad preliminar a la
práctica
5. Hacer esquema del aparato circulatorio de cada ejemplar
6. Investigar la función de cada parte del aparato circulatorio y su origen embriológico
NO DESCARTAR AL ANIMAL PUES SE CONTINUARA CON LA PRACTICA IX B
RESULTADOS
Realizar dibujos de todas las observaciones
ORGANO U
ESTRUCTURA:
FUNCION: ESQUEMA:
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MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS
Menciona en cómo se deben desechar los residuos animales utilizados durante la práctica.
Igualmente menciona donde deben desecharse material como: guantes, algodón y gasa
utilizados.
DISCUSIÓN DE RESULTADOS
Describa brevemente el aparato circulatorio humano.
CONCLUSIONES
Con base a tus observaciones, comenta con los integrantes de tu equipo y plantea
conclusiones.
BIBLIOGRAFÍA
1. Alberts B, Johnson A, Lewis J, Raff M, Roberts K, Walter P. (2007) “Molecular
Biology of the cell” 5th edition. Garland Science. New York.
2. Aranda F. A., León R. J.R., Morales B, J. Anatomía y Fisiología. “Manual de
prácticas de laboratorio” (2003). ENEO UNAM. p.21-26
Manual del Laboratorio Modular de … 75
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PRACTICA IX B. SISTEMA CARDIOVASCULAR Y MICROCIRCULACIÓN
(IDENTIFICACION DE FACTORES QUE AFECTAN LA ACTIVIDAD DEL
APARATO CIRCULATORIO)
OBJETIVOS:
1. El alumno analizará algunos factores que alteran la circulación capilar y observará
las características del flujo capilar en la aorta aislada de rata.
2. Por otro lado, el alumno observará el efecto farmacológico de la adrenalina e
histamina sobre la circulación capilar.
3. Adicionalmente, el alumno aplicará sus conocimientos para identificar los distintos
planos de orientación del corazón.
COMPETENCIAS:
INTRODUCCION:
El sistema cardiovascular humano está conformado por el corazón, los vasos sanguíneos y
el suministro de sangre. Estos actúan como un sistema para suministrar el vital oxígeno,
nutrientes y hormonas a los tejidos y eliminar el dióxido de carbono y productos de
desechos metabólicos. Este sistema también juega un papel central en la estabilización de
los niveles de temperatura y el pH del cuerpo, así como mantener la homeostasis.
La fuerza que necesita la sangre para circular se la entrega un motor que está ubicado casi
en el centro del pecho: el corazón, que es una bomba que funciona sin parar un solo
segundo. Estos elementos, junto a otros que apoyan la labor sanguínea, conforman el
Sistema o Aparato circulatorio. El sistema o aparato circulatorio es el encargado de
transportar, llevándolas en la sangre, las sustancias nutritivas y el oxígeno por todo el
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cuerpo, para que, finalmente, estas sustancias lleguen a las células. También tiene la misión
de transportar ciertas sustancias de desecho desde las células hasta los pulmones o
riñones, para luego ser eliminadas del cuerpo. El
sistema o aparato circulatorio está formado, entonces, por la sangre, el corazón y los vasos
sanguíneos.
ACTIVIDADES PRELIMINARES:
El estudiante deberá leer y estudiar previamente el sistema circulatorio y sus funciones.
Adicionalmente deberá tener conocimientos sobre las funciones de la adrenalina e
histamina.
MATERIAL Y REACTIVOS:
Tabla de disección Rata hembra o macho (la misma de la
práctica IX A)
Estuche de disección Glutaraldehído al 2%
Hilo grueso Cajas Petri
Guantes Corcho
Eter etílico Jeringas de 10 ml
Portaobjetos Micropipeta con puntas de un ml
Cubreobjetos Solución de Noradrenalina 1x10-3M
Frasco grande para anestesia Solución de Histamina 1x10-3M
Algodón Regla graduada en mm.
Gasa Vernier
Toallas de papel
TOXICOLOGÌA:
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METODOLOGÍA:
Obtención de la aorta torácica
7. Anestesie a la rata por la técnica acostumbrada.
8. Coloque a la rata en posición para realizar una incisión de la parte media ventral de la
pared abdominal, procurando fijar las asas intestinales con alfileres en el anillo de
corcho sin producir mucha tensión.
9. Saque la aorta a través de la incisión.
10. Coloque la aorta de rata en una caja de Petri con solución Ringer Krebs y corte un
pequeño anillo de 3-5 mm, el cuál colocará sobre la platina del microscopio.
11. Seleccione objetivo de 10, 25, o 40 enfocando de tal manera que se visualice
fácilmente la circulación, venas, arterias, capilares, etc., del mesenterio. (La solución
Ringer Krebs debe cambiarse cada 10 minutos, para evitar calentamiento y
resequedad de la aorta).
Efecto de Adrenalina:
1. Escoja una arteria o arteriola y una vena dentro del campo, de preferencia elegir un
fragmento de la aorta obtenida anteriormente, mida su diámetro y grosor de paredes.
2. Agregue 1 ml de Adrenalina a la solución Krebs y observe los cambios.
3. De varios lavados con la solución Ringer Krebs a la aorta de rata con la idea de
retirar la adrenalina y observe los cambios.
Efecto de Histamina:
1. Escoja una arteria o arteriola y una vena dentro del campo, mida su diámetro y grosor
de paredes.
2. Posteriormente agregue 1 ml de Histamina al recipiente con la arteria o arteriola y la
solución de krebs, y observe los cambios.
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3. De varios lavados a la aorta con solución krebs con la idea de retirar la Histamina.
4. Comente los cambios observados.
Efecto de temperatura
1. Escoja una arteria o arteriola y una vena dentro del campo, mida su diámetro y
grosor de paredes.
2. Agregue solución Ringer Krebs frío 0º C y observe los cambios.
3. De varios lavados con la solución Ringer krebs a la aorta a temperatura ambiente.
4. Por otro lado, escoja una arteria o arteriola y una vena dentro del campo, mida su
diámetro y grosor de paredes.
5. Agregue solución Ringer Krebs caliente 40º C, y observe los cambios.
Disección de corazón
1. Por otro lado, se realizará la disección del corazón del animal utilizando a la rata en la
misma posición para realizar una incisión de la parte media ventral de la pared
abdominal.
2. Posteriormente se deberá obtener el corazón disectandolo cuidadosamente,
procurando dejar las arterias y venas que irrigan este importante órgano.
Adicionalmente se deberá quitar con ayuda de los dedos las acumulaciones de grasa
que recubren el corazón, lavándolo después bajo el grifo.
3. A continuación, se orientará el corazón, para lo cual, obsérvese que tiene una cara
más plana (cara posterior) y otra más convexa (cara anterior) y acabada en punta en
el extremo inferior. Colocar el corazón sobre la bandeja de disección, descansando
sobre la cara posterior.
4. Identificar externamente las partes del corazón, así como los vasos que entran y
salen de este órgano.
A) Cara anterior B) Cara posterior
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5. Con las tijeras gruesas se dará un corte siguiendo la línea A de la figura 1,
iniciándose en la arteria pulmonar. Se descubrirá el ventrículo derecho: observar las
válvulas sigmoideas o semilunares en la base de la arteria y la válvula tricúspide, que
comunica este ventrículo con la aurícula derecha.
6. Adicionalmente se debe realizar otro corte siguiendo la línea B de la figura 1,
iniciándose en la arteria aorta. Se descubrirá el ventrículo izquierdo: observar las
válvulas sigmoideas en la base de la aorta los orificios de salida de las arterias
coronarias y la válvula bicúspide o mitral.
7. Comparar el diferente grosor de la pared de ambos ventrículos y dar una explicación
sobre esta diferencia.
8. Finalmente realizar un corte en ángulo siguiendo la línea C de la figura 2. Se abrirá la
aurícula derecha: observar la pared interna de la aurícula y, si es posible, la entrada
de la vena coronaria (recubierta de una pequeña válvula) y la fosa oval, que consiste
en un residuo de la comunicación entre ambas aurículas durante la vida fetal del
animal.
RESULTADOS:
Adrenalina
ESTRUCTURA
(Imagen)
Medidas arterias y
venas inicial
Medidas arterias y
venas final
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Histamina
ESTRUCTURA
(Imagen)
Medidas arterias y
venas inicial
Medidas arterias y
venas final
Efecto de la Temperatura
ESTRUCTURA
(Imagen)
Medidas arterias y
venas inicial
Medidas arterias y
venas final
Descripción e imagen de las posiciones del corazón.
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MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS:
El alumno depositará los residuos peligroso biológico infecciosos generados de acuerdo a
las normas establecidas en el laboratorio.
DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
CUESTIONARIO:
4. Describa brevemente el aparato circulatorio humano. Mencione las similitudes y
diferencias con el aparato circulatorio de una rata.
5. ¿Cuál es el mecanismo de acción de la histamina y adrenalina?
6. Describa los tipos de vasos sanguíneos que componen el aparato circulatorio.
7. Enumere algunos fármacos utilizados en las patologías del sistema circulatorio y su
mecanismo de acción.
8. ¿Qué son y qué función tienen los repliegues membranosos que se observan en la
base de la arteria aorta?
9. ¿Cuál de las dos cavidades ventriculares es más grande y por qué?
CONCLUSIONES:
Con base a las observaciones, comenta con los integrantes de tu equipo y plantea
conclusiones con referencia a las funciones normales del corazón y el sistema circulatorio.
BIBLIOGRAFÍA:
Manual del Laboratorio Modular de … 82
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1. Capítulo 2. Anatomía del corazón Dra. Paloma Aragoncillo Ballesteros Médico
especialista en Anatomía Patológica. Servicio de Anatomía Patológica II del Hospital
Clínico San Carlos, Madrid. 2007.
2. La circulación en el organismo humano BIOLOGÍA III Prof.: Emiliana de Rosas 3º.
Pag.7. 2013
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PRACTICA X. COORDINACIÓN Y CONTROL DEL SISTEMA NERVIOSO.
LA MEMORIA Y FISIOLOGÍA SENSORIAL
OBJETIVOS:
El alumno evaluará la influencia y participación de los procesos relacionados con la
memoria y la fisiología sensorial.
COMPETENCIAS:
Investiga las funciones del sistema nervioso en los diversos procesos relacionados
con la memoria.
Investiga, analiza y distingue las partes que conforman el sistema nervioso y órganos
accesorios a él.
INTRODUCCIÓN:
La función primordial del sistema nervioso es la de captar y procesar rápidamente las
señales ejerciendo control y coordinación sobre los demás órganos para lograr una
adecuada, oportuna y eficaz interacción con el medio ambiente cambiante. Esta rapidez de
respuestas que proporciona la presencia del sistema nervioso diferencia a la mayoría de los
animales de otros seres pluricelulares de respuesta motil lenta que no lo poseen como
los vegetales, hongos, mohos o algas. Las neuronas son células especializadas, cuya
función es coordinar las acciones de los animales por medio de señales químicas y
eléctricas enviadas de un extremo al otro del organismo. Para su estudio desde el punto
de vista anatómico el sistema nervioso se ha dividido en central y periférico, sin embargo
para profundizar su conocimiento desde el punto de vista funcional suele dividirse
en somático y autónomo.
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Las partes anatómicas de las neuronas se dividen en cuerpo celular neuronal o
soma, axones o cilindroejes y las dendritas.
La memoria se puede definir de forma sencilla, como la capacidad de recordar cosas. Para
que una experiencia, o información adquirida por el aprendizaje, constituya memoria, ha de
producirse algún cambio en el encéfalo. Esta modificación puedes ser de tipo bioquímico o
estructural, más o menos permanente, y da lugar a un archivo o huella de memoria que se
denomina engrama. El engrama se refuerza cada vez que se utiliza, y esta repetición forma
parte del proceso que se conoce como consolidación de la memoria.
Según el tiempo que permanece en el encéfalo la información que le llega, podemos
clasificar la memoria en memoria sensorial o inmediata, memoria a corto plazo y memoria a
largo plazo.
La MEMORIA SENSORIAL corresponde al tiempo en que las sensaciones son procesadas
en las áreas de asociación. Es de corta duración, mantiene la información escasos
segundos y o bien alcanza el siguiente nivel de memoria o se pierde sustituida por nueva
información entrante. La retención momentánea de un número de teléfono o una pequeña
lista de nombres (de 6 a 9) son ejemplos de este tipo de memoria.
En la MEMORIA A CORTO PLAZO o MEMORIA RECIENTE, la información o las
experiencias recién aprendidas se almacenan durante un corto y variable periodo de tiempo
(segundos, minutos, a veces más tiempo). La cantidad de información almacenada es
limitada y si no se vuelca en la memoria a largo plazo se olvida rápidamente, así el recuerdo
de una cita, o de una lista de compra son ejemplos de este tipo de memoria. Normalmente,
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una vez utilizada, si no tiene un significado especial se olvida. Existe una memoria
especial, denominada MEMORIA DE TRABAJO, relacionada con el razonamiento y con
diversas actividades cognitivas y en cuyo establecimiento participan los ganglios de la base.
Es la que se utiliza por ejemplo para recordar la localización de diferentes herramientas en
un campo de trabajo. Su situación debe recordarse mientras se está desarrollando una tarea
determinada y la memoria desaparece cuando aquélla finaliza.
La MEMORIA A LARGO PLAZO, también denominada MEMORIA REMOTA, se
caracteriza por su gran capacidad y larga duración, ya que en ella se almacena información
o experiencias durante un tiempo, que puede variar desde minutos a meses, o incluso toda
la vida. La conversión de la memoria a corto plazo en memoria a largo plazo, necesita un
proceso de consolidación, que se facilita por la repetición y, sobre todo, por la creación de
un estado emocional que se asocie a la nueva información o experiencia. La capacidad de
retención es grande y la velocidad de acceso a los datos es rápida.
ACTIVIDADES PRELIMINARES:
El alumno realizará la elaboración personal de un diagrama que represente la secuencia de
operaciones experimentales a partir del guión de la práctica a elaborar.
El alumno investigará los usos y manejos de materiales y reactivos que se utilizarán en la
práctica, así como la toxicidad de los reactivos empleados.
MATERIAL Y REACTIVOS:
CANTIDAD MATERIAL CANTIDAD REACTIVOS
1
Lista de palabras
proporcionada por el
profesor
2 juegos de diagramas o
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TOXICOLOGÌA:
Investiga de los reactivos a utilizar la toxicidad de los mismos (si existe) y medidas de
primeros auxilios en caso de intoxicación (inhalación, digestión, contacto piel y ojos)
METODOLOGÍA:
FENÓMENO DE AGRUPAMIENTO
fotografías
2 juegos de 20 tarjetas de
diagrama con nombre
1 Lápiz
1 Regla en milímetros
1 Compás de doble punta
1 Vaso de agua a 4°, 25° y
45°C
1 Aguja grande
5 Monedas
4
Tarjetas blancas de 10 a 15
cm
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1.- Lea la lista de 30 palabras por su profesor solamente una vez.
2.- En su cuaderno de trabajo anote tantas palabras como usted recuerde, use el
orden que usted desee.
3.- Cuando usted no pueda recordar ninguna otra palabra, cuente las palabras
recordadas y compare con sus demás compañeros.
CODIFICACIÓN VERBAL VERSUS VISUAL
Este procedimiento será realizado en equipo de 2 estudiantes.
1. Pida a su compañero que se siente confortablemente con su cuaderno de trabajo.
2. Obtenga un juego de 20 diagramas y muestre a su compañero las ilustraciones una a
una y solamente una vez.
3. Después de que hayas mostrado a tu compañero las ilustraciones pida a su
compañero que escriba los nombres de todas las estructuras que pueda recordar.
4. Consiga el juego de 20 cartas conteniendo términos individuales de estructuras
anatómicas. Muestre las tarjetas una a una y solamente una vez.
5. Cuando usted haya mostrado todas las cartas a su compañero, pida que escriba
todos los nombres que pueda recordar.
6. Ahora cambie de lugar con su compañero.
RECEPTORES DE CALOR Y FRÍO DE LA PIEL
Este procedimiento será realizado en equipos de 2 estudiantes.
1. Trace un rectángulo de 4 x 14 mm, dividido en cuadros de 2 mm, en el antebrazo de
su compañero con un marcador lavable y permita que se seque.
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2. Coloque una aguja metálica en cada uno de los vasos con agua y deje la aguja por 5
minutos antes de su uso.
3. Toque un cuadro con una aguja de uno de los vasos y toque el mismo cuadro con
una aguja de otro vaso, una a un tiempo. Pida a su compañero que identifique cada
uno de los estímulos como frío, temperatura ambiente o caliente. Anote si cada una
de las respuestas es correcta.
4. Mantenga la temperatura de las agujas en el vaso que le corresponda.
5. Repita el paso 3 sobre cada uno de los cuadros restantes y varía el orden de las
agujas.
6. Cambia de lugar con tu compañero y repite los pasos 1 a 5.
DISCRIMINACIÓN DE ESTIMULOS
Este procedimiento se realiza por equipos de 2 estudiantes.
1. Pida a su compañero que se siente con los ojos cerrados y que coloque un brazo
sobre la mesa de trabajo.
2. Ajuste el compás de manera que las puntas queden separadas por 3 cm. ¿Su
compañero puede sentir 1 o 2 puntos?
3. Mueva las puntas del compás tan cerca como sea posible y presione otra vez sobre
el brazo. Pregunte a su compañero si siente uno o los 2 extremos. Mueva ahora las
puntas lo suficientemente lejos para ser detectado como 2 puntos. Este es el umbral
de los 2 puntos. Mida la distancia entre los 2 puntos del compás en milímetros y
anótela.
4. Determine el umbral de 2 puntos para la punta del dedo índice y el pulgar, la palma
derecha e izquierda, el dorso de ambas manos, y el dorso del cuello. Registre sus
hallazgos.
Manual del Laboratorio Modular de … 89
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5. Cambie ahora de lugar con su compañero.
DETECCIÓN DE PRESIÓN
Este procedimiento se realiza por equipos de 2 estudiantes.
1. Coloque la palma de la mano sobre una superficie plana.
2. Observe los finos pelos en el dorso de la mano.
3. Pida a su compañero que mueva un pelo en varias direcciones con una aguja
¿Puede sentir el movimiento?
4. Repita este procedimiento con un vello en el antebrazo.
5. Pida a su compañero que golpee varias veces un vello ¿Puede sentir alguna
sensación?
6. Describa las sensaciones en su cuaderno y cambie de lugar con su compañero.
DEMOSTRACIÓN DE LA LOCALIZACIÓN DE CIEGO
Este procedimiento se realiza por equipos de 2 estudiantes.
1. Coloque las 5 monedas en línea recta separadas por 8 a 10 mm.
2. Mire las monedas y concentre su atención sobre la moneda de la mitad.
3. Cierre su ojo derecho y detenga una tarjeta sobre este. ¿Cuántas monedas puede
ver? Anota tus observaciones.
4. Repite el paso 3 con tu ojo izquierdo y cambia de lugar con tu compañero.
REFLEJO DE LA LUZ Y ACOMODACIÓN
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Este procedimiento se realiza por equipos de 2 estudiantes.
1. Toma una regla que contenga divisiones en mm, coloquelá sobre el ojo de tu
compañero y determina el diámetro de la pupila.
2. Con la regla en la misma posición ilumina el ojo con una lámpara y mide rápidamente
el diámetro de la pupila.
3. Retira la fuente de luz y registre sus hallazgos.
4. Repita nuevamente el paso1.
5. Con la regla en la misma posición pida a su compañero que mida un objeto situado al
otro extremo del laboratorio y luego otro objeto por encima del hombro. Mida el
diámetro de la pupila.
6. Cambie de lugar con su compañero.
ILUSIÓN ÓPTICA
Este procedimiento se realiza de forma individual.
1. Examine los 3 cuadros que le proporcionará su profesor.
2. Determine visualmente cuál de los cuadros es más pequeño y cual es más grande.
3. Mida cada cuadro con una regla y anote sus mediciones.
4. Examine el segundo diagrama proporcionado y determine si las líneas son de igual
longitud anotando sus observaciones.
5. Mida las líneas con una regla.
6. Diseñe un diagrama de ilusión óptica de su propia invención.
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RESULTADOS:
TABLAS DE RESULTADOS
FENÓMENO DE AGRUPAMIENTO
PALABRAS RECORDADAS
CODIFICACIÓN VERBAL VERSUS VISUAL
FIGURAS RECORDADAS
RECEPTORES DE CALOR Y FRÍO DE LA PIEL
DISCRIMINACIÓN DE ESTIMULOS
TEMPERATURA RESPUESTA
CORRECTA
UMBRAL
DEDO INDICE
UMBRAL
DEDO
PULGAR
UMBRAL
PALMA
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DEMOSTRACIÓN DE LA LOCALIZACIÓN DE CIEGO
REFLEJO DE LA LUZ Y ACOMODACIÓN
DERECHA
UMBRAL
PALMA
IZQUIERDA
UMBRAL
DORSO
MANO
DERECHA
UMBRAL
DORSO
MANO
IZQUIERDA
UMBRAL
PALMA
DERECHA
UMBRAL
DORSO
CUELLO
MONEDAS
OJO
DERECHO
MONEDAS
OJO
IZQUIERDO
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ILUSIÓN ÓPTICA
ACTIVIDAD
MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS
Los desechos biológico-infecciosos se almacenaran de la siguiente manera y de acuerdo al
reglamento interno del almacén de desechos.
DIAMETRO
DE PUPILA 1
DIAMETRO
DE PUPILA 2
TRIANGULO
1
TRIANGULO
2
TRIANGULO
3
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DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
Observa tus datos y discute los parámetros evaluados.
Compara con tus compañeros los datos obtenidos y discute los motivos por los cuales
pueden estar modificados.
CONCLUSIONES:
Con base a tus observaciones, comenta con los integrantes de tu equipo y plantea
conclusiones.
BIBLIOGRAFÍA:
1. Fisiología Humana, Sistema Nervioso (2011), María José Noriega Borge,
Departamento de Fisiología y Farmacología.
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PRACTICA XI. IDENTIFICACIÓN DE ESTADIOS DEL DESARROLLO
EMBRIONARIO EN UN POLLO CRIOLLO
OBJETIVOS:
Conocer la embriología del pollo durante los principales estadios del embrión posterior a la
fecundación.
COMPETENCIAS:
El estudiante hará uso de los conocimientos e información adquirida en su clase teórica para
aplicarla a la parte práctica de la materia.
El estudiante analizará, evaluará y sistematizará información de artículos de arbitraje
nacional e internacional para conocer las diversas etapas de desarrollo en la embriogénesis
en las aves
El estudiante expresará y planteará procedimientos o alternativas que den solución a
problemas de validación de métodos analíticos
INTRODUCCIÓN:
La reproducción es uno de los milagros de la vida que va ligado a la evolución de las
especies, debido al continuo desplazamiento de los antecesores con nueva vida, la cual da
a los animales una razón para responder y adecuarse a las modificaciones del ambiente así
como el planeta lo ha hecho por años (Hickman et al., 2001). Todos los animales que nacen
de un huevo fecundado, atraviesan por varias fases de desarrollo embrionario, que difieren
según la especie, aunque el orden cronológico es el mismo: primero la fase de partición
(división del zigoto en dos células, cuatro células, ocho células, etc.), fase de la mórula,
seguida de la fase de blástula, continuando con el movimiento de las capas celulares hasta
formar las capas germinales, a la cual se denomina gástrula y por último la neurulación
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(Alfonso, 1968). El desarrollo embrionario de las aves comienza en el oviducto, posterior a
la fecundación, donde se originan las primeras segmentaciones celulares en el momento de
la formación del huevo (Sauveur, 1992). Durante su desarrollo fuera del útero de la madre,
el embrión se alimenta del material nutritivo almacenado dentro del huevo, a diferencia de
los mamíferos que se alimentan por aporte sanguíneo proveniente de la madre (North,
1986). Realizándose la mayor parte del desarrollo embrionario del huevo fuera del útero y
cubierto por una cascara porosa de carbonato de calcio (Mehner1, 1969), dentro de la
cascara del huevo, se empieza a desarrollar tres membranas (los anexos embrionarios)
(Sauveur, 1992;
Interiano y Urla, 2010). De la mayoría de las aves, el pollo ha sido un eficiente modelo
biológico para los estudios en el campo de la embriología (Mehner, 1969; Sequera et al.,
2003), pero como sólo son estudios relacionados con la biología celular y no enfocados en
el desarrollo embrionario.
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Figura 1. P1) Muestra el ovario de una gallina con huevos aún sin fecundar. P2)
Muestra un huevo con 4-5 horas aproximadamente de fecundación. P3) Huevo dentro
del útero en etapa de segmentación temprana.
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Figura 2. Desarrollo embrionario a partir de la incubación. H3) Inicio de la
organogénesis a las 48 horas de incubación. H4) La elipse representa el embrión
dentro de los anexos embrionarios a los 3 días de la incubación. H5) Muestra el
desarrollo embrionario a los 4 días de incubación. H6) Desarrollo del embrión a los 5
días de incubación. H7) Formación del embrión a los 7 días de incubación. H9)
Embrión a los 10 días de incubación. H11) Desarrollo embrionario a los 17 días de
incubación. H12) Embrión a los 20 días de incubación, las flechas indican la
invaginación del vitelo hacia la cavidad abdominal. e: Embrión; ca: Cámara de aire; c:
Corion; Oc: Ojo compuesto; Vo: Vesícula ótica; p: pico; Sc: Sistema circulatorio; cr:
Cerebro; al: Ala; pr: Pierna; V: Vitelo; Am: Amnios; pt: Pata; Cl: Cloaca; Ec: Esbozo de
la Cresta; Sm: Somitas; cv: Columna vertebral; pr: Parpado; Cb: Cabeza; gr: Garra.
ACTIVIDADES PRELIMINARES:
Investigar en Internet en páginas acreditadas y científicas:
-Fases de desarrollo embrionario
-Diferencias entre fase de partición (división del zigoto en dos células, cuatro células, ocho
células, etc.), fase de la mórula, seguida de la fase de blástula, continuando con el
movimiento de las capas celulares hasta formar las capas germinales, a la cual se denomina
gástrula y por último la neurulación
-Hacer una diagrama con secuencia de las fases de partición
-Hacer un resumen del tema personal no por equipo y entregarlo.
MATERIAL Y REACTIVOS:
-Incubadora o estufa
-Huevos 15
- Un gallinero de 5 x 3m se construirá un nido con una caja de 60 x 40cm y con una altura
de 40cm.
-Cajas Petri
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-Vasos de vidrio
-Charola de disección
-Guantes de latex
-Microscopio
TOXICOLOGÌA:
No aplica
METODOLOGÍA:
El presente trabajo se realizará en 3 partes: incubación, laboratorio y escritorio.
Incubación:
En un gallinero de 5 x 3m se construirá un nido con una caja de 60 x 40cm y con una altura
de 40cm, se le introducira pasto seco (cama) a manera de llenar las ¾ partes del nido, en
esta se depositaron 12 huevos, los cuales seran empollados por una gallina criolla durante
21 días (tabla 2), y 3 huevos de una segunda gallina criolla a las 30 horas postfecundación
(tabla 1).
Periodo de segmentación de los huevos postfecundación.
Huevos Nomenclatura (Nomclta) Periodo de segmentación
1 P1 Residen fecundado (0 hrs)
2 P2 4-5 hrs.
3 P3 18-25 hrs.
Tabla 2. Periodo de desarrollo embrionario durante la incubación.
Huevos Nomenclatura (Nomclta) Periodo de incubación
4 H1 12 hrs
5 H2 24 hrs
6 H3 48 hrs
Manual del Laboratorio Modular de … 101
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7 H4 3 días
8 H5 4 días
9 H6 5 días
10 H7 7 días
11 H8 8 días
12 H9 10 días
13 H10 13 días
14 H11 17 días
15 H12 20 días
Laboratorio:
Se abrirán 12 huevos fertilizados durante diferentes periodos de incubación (tabla 2), para
observar el desarrollo embrionario del pollo, haciendo énfasis en la organogénesis. Al
romper el cascaron, el embrión de los huevos del H1-H6 fueron depositados en una caja
petri, por otra parte los embriones de los huevos H7-H12 se vaciaran en un recipiente hondo
y transparente con agua; ambos para observar y tomarle fotos al desarrollo externo, también
se medirá la longitud del embrión con una regla graduada de 30 cm. Únicamente a los
embriones de los huevos H7-H12 se trasladaran a una charola de disección, con la ayuda
de un estuche de disección SharpVet y guantes de látex se separaran los anexos
embrionarios del embrión. Se hará un corte en la zona ventral del embrión y se extraerán
todos los órganos visibles, los cuales seran observados con un microscopio estereoscópico.
Los huevos P1-P3 fueron extraídos de la segunda gallina antes del ciclo de postura.
Escritorio:
Con la ayuda de las fotos tomadas por cada embrión y el modelo de etapas de desarrollo
de Hamburger y Hamilton (1951), se identificaron las estructuras formadas y estadios
embrionarios en las que se encontraban los embriones.
RESULTADOS:
Manual del Laboratorio Modular de … 102
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TABLAS DE RESULTADOS
Resultados Periodo de segmentación de los huevos postfecundación.
Huevos (Nomclta) P. de
segmentación Fotografía Observación
1 P1 R fecun. (0 hrs)
2 P2 4-5 hrs.
3 P3 18-25 hrs.
Resultados Tabla 2. Periodo de desarrollo embrionario durante la incubación.
Huevos Nomenclatura
(Nomclta)
P de
incubación Fotografía Observación
4 H1 12 hrs
5 H2 24 hrs
6 H3 48 hrs
7 H4 3 días
8 H5 4 días
9 H6 5 días
10 H7 7 días
11 H8 8 días
12 H9 10 días
13 H10 13 días
14 H11 17 días
15 H12 20 días
MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS
Desechar el material en los botes de basura convencional de materia orgánica.
DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
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-Con la ayuda de las fotos tomadas por cada embrión y el modelo de etapas de desarrollo
de Hamburger y Hamilton (1951), se identificaran las estructuras formadas y estadios
embrionarios en las que se encontraban los embriones
-El maestro del Laboratorio y los alumnos discutirán los resultados obtenidos,
-Mencionar las observaciones e identificar las fases de desarrollo en la embriogénesis.
-Discutir los posibles errores o mejorar la práctica.
-Discutir conclusiones.
CONCLUSIONES:
Los alumnos serán capaces de hacer un resumen de sus resultados y observaciones y será
entregado a su carpeta de prácticas, en el mismo día o entregar antes de la próxima
practica
BIBLIOGRAFÍA:
-El alumno incluirá y completara esta bibliografía con las paginas o libros consultados para
realizar esta practica
Alfonso H. E. 1968. Blastogenesis (idea general del desarrollo embrionario).
Compendio y atlas de embriología. Ed. Atika S. A. Madrid, España. 1ra ed. Pp. 25-36.
Hamburger V. y Hamilton H. L. 1951. A series of normal stages in the development of
the chick embryo. Developmental dynamics 195. 88:(1). Pp 231-272. PDF.
Hickman Jr., C. P., Roberts L. S y Larson A. 2001. The reproductive process.
Integrated principles of zoology. Ed. MacGraw Hill. New York, USA. 11th ed. Pp 135-
155.
Interiano C. A: y Urla X. J.C. 2010. Desarrollo embrionario del pollo. Pp 4. PDF.
Mehner A. 1969. Fundamentos de la producción. La gallina. Ed. Acribia. Zaragoza,
España. Pp 107-170.
Manual del Laboratorio Modular de … 104
Facultad de Farmacia
Mehner1 A. 1969. Particularidades anatomicas y fisiológicas de la gallina. La gallina.
Ed. Acribia. Zaragoza, España. Pp 34-105.
North M. O., 1986. Desarrollo del embrión de pollo. Manual de producción avícola.
Ed. El manual moderno, S.A. de C.V. DF, México. 2da ed. Pp 45-53.
Sauveur B., Reviers M. 1992. Desarrollo embrionario.
Reproducción de las aves. Ed. Mundi-Prensa. Madrid, España. Pp 295-314.
Sequera, D., Ercolino J. M. y Álvarez M. 2003. Embrión de pollo: un modelo con
cardiovideograma para el estudio de la toxicidad experimental inducida
por Tfevatia peruviana. 37 pp.
Manual del Laboratorio Modular de … 105
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PRACTICA XXII A. CHOQUE INSULINICO EN PECES
OBJETIVOS:
Conocer cómo se puede realizar el equilibrio (insulina-glucosa) en los organismos
COMPETENCIAS:
El estudiante hará uso de los conocimientos e información adquirida en su clase
teórica para aplicarla a la parte práctica de la materia.
Correlacionara el funcionamiento de la insulina como una hormona y sus funciones.
El estudiante expresará y planteará procedimientos o alternativas que den solución a
problemas de validación de en enfermedades de diabetes.
INTRODUCCIÓN:
La glucemia constante. La glucemia va a estar actuando como un regulador de la glucosa
en la sangre, y si no se mantiene constante se correría el riesgo de hiperglucemia
(incremento de glucosa) e hipoglucemia (niveles bajos de glucosa en la sangre). Regula el
nivel de glucagon e insulina en la sangre.
Mucha insulina: funcionamiento del glucagon en la hipoglucemia el glucagon comienza a
producir glucosa para que pueda entrar a las células y tenga una mejor absorción.
Mucho glucagon: se libera insulina a partir del páncreas así también suprime la secreción de
glucagón. El glucagón estimula la secreción de insulina y SS y, cada una de ellas, es capaz
de suprimir su propia secreción (acción autocrina). Libera la glucosa almacenada para elevar
los niveles de azúcar en la sangre
Diabetes mellitus?
Es un conjunto de trastornos metabólicos, que afecta a diferentes órganos y tejidos, dura
toda la vida y se caracteriza por un aumento de los niveles de glucosa en la sangre:
hiperglucemia. La causan varios trastornos, siendo el principal la baja producción de la
hormona insulina, secretada por las células β de los Islotes de
Manual del Laboratorio Modular de … 106
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Langerhans del páncreas endocrino, o por su inadecuado uso por parte del cuerpo.
• La insulina baja la glucemia por dos mecanismos. Explica cuáles son: La insulina
transporta la glucosa al interior de la célula
• Estimula al almacenamiento de glucosa en el hígado en forma de glucógeno
La hiperglucemia se produce cuando la glucosa en la sangre, se encuentra por encima de lo
normal.
Prueba de tolerancia a la glucosa. La prueba más común de tolerancia a la glucosa es la
prueba de tolerancia a la glucosa oral (TGO). Usted no puede comer ni beber nada después
de la media noche antes del examen. Para el examen, a usted se le solicita que tome un
líquido que contiene una cierta cantidad de glucosa. Se le toman muestras de sangre antes
de hacer esto y de nuevo cada 30 a 60 minutos después de beber la solución. El examen
demora hasta 3 horas.
La prueba de tolerancia a la glucosa intravenosa (PTGIV) rara vez se utiliza. En esta prueba,
se inyecta la glucosa en una vena durante tres minutos. Los niveles de insulina en la sangre
se miden antes de la inyección y de nuevo en los minutos uno y tres después de ésta,
aunque el tiempo puede variar.
ACTIVIDADES PRELIMINARES:
El alumno investigara y contestara al siguiente cuestionario.
1.- ¿Por qué es tan importante mantener la glucemia constante?
2.- ¿Cómo se regula el nivel de glucagon e insulina en la sangre?
3.- ¿Cuál es el funcionamiento del glucagon en la hipoglucemia?
4.- ¿Qué es la diabetes mellitus?
5.- La insulina baja la glucemia por dos mecanismos. Explica cuáles son:
6.- Explica que es la hiperglucemia
7.- Explica en qué consiste la prueba de tolerancia a la glucosa
Manual del Laboratorio Modular de … 107
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MATERIAL Y REACTIVOS:
TOXICOLOGÌA:
No aplica
METODOLOGÍA:
Preparar las soluciones de 250 ml de agua en los vasos de precipitado, adicionar la glucosa
y la insulina en los vasos marcados referidos en la tabla siguiente.
Colocar un pez en cada vaso y observar movilidad y tiempos de actividad de los peces en
las diferentes condiciones. Anotar las observaciones en una tabla similar a la de abajo.
pez Agua solución de
glucosa 10% (250
ml de agua)
insulina 25 unidades/250 ml
de agua (hiperinsulinismo)
CANTIDAD MATERIAL CANTIDAD REACTIVOS
[5]
vasos de precipitado de 500 ml.
[1. 5 Ml] [agua destilada]
25 Gr. Glucosa 100 U Insulina
5 Peces comerciales
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A, B - +
C, D
E (control)
agua
+ -
El pez del lado derecho (observando de frente) se distingue un movimiento más acelerado en el agua ya que es el que contiene la insulina.
Manual del Laboratorio Modular de … 109
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RESULTADOS:
TABLAS DE RESULTADOS
HACER UNA TABLA INCLUYENDO FOTOGRAFIAS O VIDEO Y TIEMPOS DE LOS
COMPORTAMIENTO, EN CADA CONDICION
pez Observaciones y
foto o video
Agua
Observaciones y
foto o video
solución de
glucosa 10% (250
ml de agua)
Observaciones y
foto o video
insulina 25 unidades/250 ml
de agua (hiperinsulinismo)
A, B - +
C, D
E (control)
agua
+ -
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MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS
Desechar en la tarja, no es toxico
DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
El profesor con los alumnos discutirán sobre el comportamiento de los peces en cada
condición tratando de relacionarlo con los siguientes puntos
Regulación del nivel de glucagón e insulina en la sangre
funcionamiento del glucagón en la hipoglucemia
Definir diabetes mellitus
¿Porque la insulina baja la glucemia?
Explicar la hiperglucemia
Manual del Laboratorio Modular de … 111
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El alumno elaborara un resumen del resultado y discusión que entregara en su próxima
práctica para su evaluación.
CONCLUSIONES:
Se debe de observar con mucha claridad el descenso de glucosa en el organismo ya que al
aumentar la insulina comienza a haber una mejor absorción de la glucosa. Su
comportamiento tan acelerado se deberá a que el pez libero adrenalina (choque insulinico),
al pasarlo a la solución de glucosa su comportamiento fue más tranquilo debido al equilibrio
de glucosa en la sangre.
Así que es muy importante el conocer cómo se puede realizar este equilibrio
(insulinaglucosa) en el organismo, en México se han dado muchos casos de diabetes que es
una aplicación medica de esta práctica.
BIBLIOGRAFÍA:
-Universidad Veracruzana Facultad de Química Farmacéutica Bióloga Química Orgánica.
Tema del Trabajo: Practicas de Laboratorio Morfofisiología Catedrático: Dra. Luz Irene
Pascual Mathey Alumnos: Fredy Tornero Conde, Betzabelt García Muñoz, Amalia Gpe.
Rodríguez Gómez, Sthephane Pastrana Cruz, Huitzilli Y. Córdoba Gómez. Miguel A. Castillo
Ortega.
- http://umm.edu/health/medical/spanishency/articles/prueba-de-
tolerancia-a-la-glucosa
http://www.dmedicina.com/enfermedades/digestivas/diabetes.html
Organización Mundial de la Salud
http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs312/es/
Manual del Laboratorio Modular de … 112
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PRACTICA XII B. DETERMINACION DE HORMONAL: GONADOTROPINA
CORIONICA HUMANA EN ORINA
OBJETIVOS
El alumno analizará el proceso de la fecundación para perpetuar las especies
Observará y comprenderá las etapas subsecuentes a la fecundación
El alumno entenderá la importancia de cada etapa en el desarrollo embrionario de un
organismo
Observa el proceso desde la fecundación hasta el nacimiento de un ser humano
COMPETENCIAS
- Analiza y comprende el proceso de fecundación
- Identifica las etapas del desarrollo embrionario posteriores a la fecundación y hasta el
nacimiento
INTRODUCCION
La fecundación es el fenómeno que ocurre tras la unión de un espermatozoide con un óvulo
y la consecuente fusión de los núcleos de ambas células (haploides) para dar origen a un
embrión (diploide) con información genética del padre y la madre. Solo un espermatozoide
fecundará al óvulo. Un espermatozoide del macho se fusionará con los receptores de la
superficie del ovocito secundario de la hembra (ovulo), atravesará la zona pelúcida y
desencadenará la ruptura de los gránulos corticales y los mismos gránulos conducirán a una
serie de cambios en la zona pelúcida que impedirán la entrada de otros espermatozoides
(mecanismo preventivo de la polispermia).
En humanos, éste suceso ocurre en las trompas de Falopio de la hembra para luego
descender hasta el útero donde comenzará la fase de implantación del embrión. El
Manual del Laboratorio Modular de … 113
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endometrio uterino se engrosa preparándose para la implantación del embrión por su capa
trofoblastica. Doce días luego de la fecundación el trofoblasto ya ha formado las dos capas
del corion.
El corion segrega la Gonadotropina coriónica humana (HCG) que prolonga la vida del
cuerpo lúteo hasta que placenta comienza a segregar estrógenos y progesterona. Las
estructuras del embrión y de la madre interaccionan para formar la placenta, la "interfase
alimentaria" entre la madre y los sistemas del embrión. El cordón umbilical se extiende
desde la placenta al embrión y transporta alimentos hacia él y desechos desde él.
taverabiologia.blogspot.com
Después de la fecundación, la segmentación es la primera etapa del desarrollo de TODOS
los organismos multicelulares. Por mitosis, (una sola célula) se vuelve un embrión
multicelular. La primera división origina dos células (la línea divisoria se conoce como
"primer surco" por su aspecto externo), la segunda división es perpendicular a la primera
(cuatro células) y la tercera corta el plano ecuatorial. El espermatozoide fecunda el óvulo y
Manual del Laboratorio Modular de … 114
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forma el cigoto que durante las 24 horas posteriores a la fecundación comienza a dividirse
en un proceso conocido como blastogénesis dando lugar a la mórula que se implantará en
el útero materno (donde comenzará a alimentarse).
El proceso de segmentación da origen a una "pelota" de células que por su aspecto se
denomina mórula. En su interior se origina una cavidad llena de líquido: el blastocele,
tomando entonces el nombre de blástula o blastocisto (en mamíferos). Es el proceso que
va desde la primera división celular hasta el final de la gastrulación, desde el día 1 al 28 en
humanos, incluye:
1. Implantación del blastocisto maduro en la pared del útero y establecimiento de la
circulación materno-embrionaria/fetal
2. Embriogénesis (masa indiferenciada pluripotencial de células), en las que solo un
número de células formará el embrión definitivo
3. Gastrulación comprende una serie de migraciones celulares a posiciones en las cuales
formarán tres capas celulares.
• Ectodermo forma la capa externa.
• Endodermo forma la capa interna.
• Mesodermo forma la capa media.
La blastulación y la gastrulación establecen el eje principal del cuerpo.
La formación de los órganos mediante la división celular acompañada de procesos de
migración y agregación.
El mesodermo forma la notocorda (que originará las vértebras).
En los cordados a partir del ectodermo se forma el tubo neural que dará origen al sistema
nervioso.
ACTIVIDADES PRELIMINARES
Revisa videos en la red acerca de procesos de fecundación y desarrollo embrionario
Manual del Laboratorio Modular de … 115
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MATERIAL Y REACTIVOS
CANTIDAD DESCRIPCION OBSERVACIONES
1 Video de la fecundación y las etapas embrionarias
1 Modelo anatómico de las etapas embrionarias
Laminillas con muestras de espermatozoides y óvulos
1 proyector
1 Laptop
METODOLOGÍA
1. Observar el video proyectado por el profesor referente a fecundación y desarrollo
embrionario y tomar nota de los eventos más importantes
2. Revisar e identificar las etapas del desarrollo embrionario en el modelo anatómico.
3. Revisar al microscopio con objetivos 10x y 40x las laminillas correspondientes a
espermatozoides y ovulos. Revisar las estructuras presentes en cada uno y dibujarlos
RESULTADOS
Realizar dibujos y mapas conceptuales de los conceptos más importantes aprendidos
DISCUSIÓN DE RESULTADOS
1. ¿Qué es la gametogénesis y donde se lleva a cabo?
2. Explica detalladamente la espermatogenesis mencionando sus 4 fases y que ocurre en
cada una
3. Función de las células de Sertolli
4. Explica detalladamente la ovogénesis mencionando sus 4 fases y que ocurre en cada
una
5. ¿En qué etapa se detiene la ovogénesis al nacer la hembra?
Manual del Laboratorio Modular de … 116
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6. ¿Cuando continúa la meiosis en la hembra?
7. ¿En qué etapa se realiza la ovulación y cuando termina el desarrollo?
8. ¿Donde se realiza la fecundación del óvulo?
9. ¿En qué etapa se implanta el embrión en el útero?
10. Haz un esquema de placentación del humano
11. ¿A que se refiere el mecanismo preventivo de la poliespermia?
12. ¿Cómo se forma el corion y que secreta?
13. ¿Qué es la mórula?
14. ¿Qué es la blástula y el blastocele?
15. ¿Qué es la blastulación y que etapas comprende?
16. ¿Qué es la etapa de gastrulación y cual es su importancia?
17. ¿Qué tejidos formará el ectodermo?
18. ¿Qué tejidos formará el mesodermo?
19. ¿ Qué tejidos formará el endodermo?
20. ¿En qué consiste la etapa de organogénesis?
21. ¿Qué se forma en la etapa de neurulación y a que originará la notocorda?
22. ¿Qué es la inducción en embriología?
CONCLUSIONES
En base a tus observaciones, comenta con los integrantes de tu equipo y plantea
conclusiones.
BIBLIOGRAFÍA
Manual del Laboratorio Modular de … 117
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PRACTICA XIII. VISITA ANFITEATRO
OBJETIVOS:
El alumno identificará las generalidades de forma y estructura de todos los sistemas
orgánicos de un ser humano, generando hábitos de estudio, observación y análisis para
poder describir y localizar en el cadáver la anatomía macroscópica de estructuras y órganos
incluyendo sus implicaciones funcionales de las mismas.
Adicionalmente el alumno conocerá el reglamento y las diferentes áreas del anfiteatro.
COMPETENCIAS:
INTRODUCCION:
El anfiteatro anatómico es un complejo arquitectónico, que puede ser utilizado como centro
de estudio y enseñanza de la anatomía macroscópica y microscópica, así como del
desarrollo humano. Históricamente, fue una creación romana que tenía la finalidad de
ofrecer al pueblo sus grandes espectáculos de sangre y violencia, se caracterizaba por ser
una construcción circular ascendente en forma de embudo en la cuál la periferia era el
espacio de mayor diámetro al centro, que era el escenario donde se desarrollaban las
matanzas de seres humanos; con este tipo de construcción el público tenía una amplia
visión de lo que se realizaba en el escenario desde cualquier lugar en que se estuviese
ubicado y así los anfiteatros anatómicos se diseñaron para disecar y enseñar la anatomía
mediante demostraciones públicas de cuerpos humanos y animales.
El anfiteatro es el espacio que permite al alumno adquirir habilidades propias, ampliando,
profundizando, consolidando, y finalmente comprobar los fundamentos teóricos de la
materia de Anatomía y Fisiología, observando y/o realizando disecciones de regiones
Manual del Laboratorio Modular de … 118
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anatómicas en cadáveres con propósitos educativos, para así relacionarlo con la práctica
clínica a la que podrá enfrentarse posteriormente.
ACTIVIDADES PRELIMINARES:
El estudiante deberá leer y estudiar previamente el reglamento del laboratorio de anatomía y
disección (anfiteatro). Adicionalmente, el alumno deberá revisar profundamente la
terminología médica utilizada por los profesionales de la salud, para así poder identificar lo
revisado en el anfiteatro.
MATERIAL Y REACTIVOS:
- Guantes quirúrgicos
- Cubrebocas
- Bata blanca
- Estuche de disección
TOXICOLOGÌA:
Todos los restos y sus fluidos corporales deberán ser considerados como potencialmente
infectantes, por lo cual se deben tomar las precauciones necesarias para prevenir que
ocurran accidentes
NORMAS GENERALES
1. Maneje todo material como potencialmente infectante.
2. Un accidente por pequeño que sea debe comunicarse al docente responsable de la
práctica de laboratorio o en su defecto a la Dirección General de Laboratorios.
3. No use joyas durante la realización de procedimientos en su área de trabajo.
4. Lávese cuidadosamente las manos antes y después de cada procedimiento, con estricto
rigor si se tiene contacto con material patógeno.
Manual del Laboratorio Modular de … 119
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5. Los desechos corto punzantes deberán manejarse con estricta precaución, dispóngalos o
deséchelos en los contenedores especializados para dichos desechos.
6. Realice limpieza y desinfección a las superficies, elementos y equipos de trabajo al final
de cada procedimiento y al finalizar la jornada de trabajo.
7. No está permitido comer, beber, fumar, manipular lentes de contacto, maquillarse o
almacenar alimentos para uso humano en aéreas de trabajo.
METODOLOGÍA:
1.-Los alumnos junto con el catedrático y/o responsable del anfiteatro, realizarán un
recorrido por las diferentes áreas del anfiteatro. El responsable explicará el funcionamiento
de cada área, además del funcionamiento de las mesas de disección.
2.- Por otro lado, el catedrático explicará la función de cada uno de los instrumentos de
disección y el responsable de la manipulación de los cadaverés realizara una pequeña
demostración en los mismos.
3.- Posteriormente el alumno deberá identificar y describirá verbalmente las estructuras
óseas, musculares, órganos y sistemas revisados previamente en el laboratorio de anatomía
y fisiología.
4.- Finalmente, el alumno debe correlacionar las estructuras anatómicas estudiadas, con la
función normal, la valoración clínica y sus implicaciones al lesionarse.
RESULTADOS:
1.- Descripción breve y gráfica del anfiteatro anatómico.
2.- Listado de los instrumentos de disección indicando sus respectivas funciones.
3.- Describe brevemente 5 órganos, músculos, estructuras óseas y sistemas observados en
el cuerpo humano.
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ESTRUCTURA
(Imagen)
DESCRIPCIÓN FUNCIÓN
ESTRUCTURA
(Imagen)
DESCRIPCIÓN FUNCIÓN
ESTRUCTURA
(Imagen)
DESCRIPCIÓN FUNCIÓN
ESTRUCTURA
(Imagen)
DESCRIPCIÓN FUNCIÓN
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MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS:
El alumno depositará los residuos peligroso biológico infecciosos generados de acuerdo a
las normas establecidas según el reglamento interno del anfiteatro.
DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
CUESTIONARIO:
1.- ¿Cómo está conformado el esqueleto humano?
2.- ¿Cómo se dividen los músculos del cuerpo humano de acuerdo a su función? 3.- ¿Cómo
está constituido el corazón y cuáles son sus principales funciones? 4.- Enlista los
principales órganos intra abdominales.
CONCLUSIONES:
Con base a las observaciones, comenta con los integrantes de tu equipo y plantea
conclusiones con referencia a las funciones normales de los órganos y su valoración clínica.
BIBLIOGRAFÍA:
3. Laboratorio de Anatomía humana: El anfiteatro. Facultad de medicina Hipolito
Unanue. Disponible en: http://www.unfv.edu.pe/facultades/fmhu/index.php/cm-
laboratorios.
Manual del Laboratorio Modular de … 122
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4. Manual de prácticas de disección. Universidad autónoma “Benito Juárez” de Oaxaca,
Facultad de medicina y cirugía. Departamento de anatomía y disección. Dr. Moisés
Becerril Méndez, Jefe del laboratorio de anatomía y disección.
5. Reglamento del anfiteatro. Facultad de Medicina, Xalapa, Ver. Área: Departamento
de Morfología. Realizó: Biol. Mercedes Acosta Avilés. 17 de Mayo del 2011.
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PRACTICA XIV. HEMOSTASIA PRIMARIA
OBJETIVOS:
Analizar los resultados obtenidos en las pruebas de coagulación en
presencia de anticoagulantes en una muestra de sangre.
COMPETENCIAS:
El estudiante hará uso de los conocimientos e información adquirida en su clase teórica para entender las enzimas y factores que intervienen en la cascada de la coagulación.
El estudiante analizará, evaluará y sistematizará información de artículos de arbitraje
nacional e internacional para conocer las diversas y nuevos conocimientos en farmacología
en relación al control de la coagulación, en pacientes con estas patologías.
INTRODUCCION
Coagulación
Académica, y clínicamente hablando, la hemostasia consta de tres partes:
1) Hemostasia primaria 2) Fase plasmática de la coagulación 3) Fase fibrinolítica
Manual del Laboratorio Modular de … 124
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Hemostasia primaria se divide en:
1) Integridad vascular (la fase vascular):
Factores que afectan el endotelio vascular: Traumáticos, daño, infecciones,
medicamentos, etc.
2) Número y función plaquetaria.
En una lesión del endotelio o fase vascular, primero entran en juego los mecanismos locales de vasoconstricción y los mecanismos del endotelio que hacen que lleguen plaquetas al sitio de la lesión.
Plaquetas: En un daño vascular también participan plaquetas que en su superficie tienen glicoproteínas que tienen receptores en el endotelio: Producen entonces lo que se conoce como ADHESIVIDAD PLAQUETARIA.
Las plaquetas también tienen sustancias como por ejemplo ADP, que al liberarse atrae
más plaquetas al sitio de la lesión y les permite interaccionar con otras.
Entonces se forma el TAPON PLAQUETARIO PRIMARIO, cuya formación depende de
los siguientes factores:
1) Número adecuado de plaquetas 2) Plaquetas íntegras con GP necesarias en su superficie, para la adhesividad y
agregabiliidad 3) Plaquetas con sucficientes sustancias: ADP 4) Exposición al colágeno
Las plaquetas derivan de la médula ósea, sus precursores son los megacariocitos (8 a 10 por campo) que liberan las plaquetas a la sangre periférica en un número normal de 150-350 mil plaquetas.
La vida media promedio normal es de 8-10 días.
Si hay < 20 mil plaquetas hay riesgo de presentar sangrado espontáneo. Si hay > 100 mil plaquetas, la hemostasis es normal en cuanto al número de plaquetas y
entonces depende de su funcionamiento. Si hay < 100 mil plaquetas, y el paciente tiene trauma o cirugía, no tiene el número
suficiente para resolver la hemorragia pero sin embargo no sangra espontáneamente.
Causa de la disminución en el número de plaquetas:
Manual del Laboratorio Modular de … 125
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1) Disminución o falta en la producción en la médula ósea, o incapacidad de producir plaquetas a. Aplasia medular: Anemia aplásica b. Mieloptisis: Infiltración medular neoplásica por hongos, VIH, etc. c. Reemplazo de la médula ósea. d. Mielofibrosis: Fibrosis de la médula ósea.
2) Por trastornos de maduración que producen una trombocitopenia a. Anemia megaloblástica b. Trombopoyesis ineficaz c. Síndrome mielodisplásico con hematopoyesis ineficaz
3) Aumento de la destrucción de plaquetas a. Por causas inmunológicas
Mediada por anticuerpos: Púrpura trombocitopénica inmune (PPI) asociada a infección viral, neoplasia, medicamentos, enfermedades autoinmunes (LES, etc).
b. Por causas no inmunológicas
Hiperesplenismo (secuestro esplénico, que es muy diferente a esplenomegalia) que se caracteriza por un aumento en la función del bazo captando elementos de la sangre periférica. Este puede ocurrir en patologías como: 1. Esferocitosis hereditaria 2. Metaplasia mieloide agnogénica aguda 3. Cirrosis hepática 4. Leucemia de células vellosas 5. Crisis de anemia falciforme: Paciente falcémico doble heterocigoto en niños 6. Síndrome de Felty: Donde hay hiperesplenismo asociado a artritis reumatoide.
Coagulación Intravascular diseminada
Inducida por fármacos1
Metabolismo de las plaquetas con relación al ácido araquidónico (AAQ):
La principal enzima es la ciclooxigenasa (COX), que determina la formación de
tromboxano (que produce agregabilidad plaquetaria y vasoconstricción).
La inhibición de la COX lleva a la producción de prostaciclinas (que causan
vasodilatación y desagregación plaquetaria) Importancia: Manipulación de este metabolito
con fármacos.
Prueba para valorar la hemostasia primaria:
1 Extra de los apuntes
Manual del Laboratorio Modular de … 126
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1) Tiempo de sangría: Con el método físico coloca un esfigmomanómetro al paciente a una presión constante. Se realiza la incisión en el antebrazo y se mide el tiempo. El valor normal oscila entre 5 y 10 minutos. Si tiene menos de 100,000 plaquetas aumenta el tiempo de sangría.
2) Adhesividad plaquetaria 3) Agregabilidad plaquetaria: Si se tiene un plasma rico en plaquetas y se coloca frente
a una fuente de luz, ésta refracta. Entonces al colocar sustancias agregantes de plaquetas (ADP, colágeno, adrenalina y un AB llamado ristocetina), las plaquetas se unen unas a otras, y la liberación de sustancias de sus gránulos trae más plaquetas. Entonces cambia la refracción de la luz, lo cual se puede graficar en curvas características para cada sustancia. La pendiente es donde hay mayor agregación y todas terminan en un plano.
La prueba de agregabilidad nos permite
hacer el diagnostico:
Al agregar plasma normal y hacer la
prueba de agregabilidad plaquetaria;
Síndrome de Bernard-Soulier: La curva de ristocetina es plana (anormal), por que a pesar de ser AB agrega las plaquetas siempre y cuando haya presencia del factor de Von Willebrand, y estos pacientes no tienen los receptores de este factor. El ADP, colágeno y adrenalina van a ser normal.
Tromboastenia de Glazman: Si sale la curva de ristocetina normal, y ADP, colágeno, adrenalina planos.
Enfermedad de Von Willebrand: La curva de ristocetina sale plana (anormal) pero se corrige al agregar plasma normal. La de ADP, colágeno y adrenalina van a ser normales. También tiene TP aumentado por deficiencia de factor VIII. Nota: La curva de agregabilidad es igual a la de Síndrome de Bernard-Soulier, pero el diagnóstico se hace además por la disminución del factor VIII y la presencia de macroplaquetas en sangre periférica.
Alteraciones de la fase vascular
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Causas del daño al endotelio
1. Vasculitis a. Leucoplástica b. Púrpura de Henoch-Scholein: Caracterizada por púrpura en las extremidades, nefritis,
sangrado por mucosas en pacientes pediátricos después de un cuadro faríngeo con un número de plaquetas normal, pero con lesiones a los vasos sanguíneos (vasculitis).
c. LES d. Reacción alérgica a medicamentos: AINES
2. Deficiencia de vitamina C (Escorbuto) causa disminución del soporte al endotelio. 3. Trastornos en el endotelio. El Síndrome de hiperelasticidad de Erhles Danlos produce
hemorragia. 4. Síndrome de Rendow-Osler-Weber que se asocia con trastornos en el endotelio como
telangectasias con fragilidad y se rompe en el pulmón, TGI, Piel y mucosas. 5. Trastornos de causa infecciosa:
a. Bacterianas: Meningococcemia (produce lesión hemorrágica EC) b. Virales: Dengue hemorrágico c. Por endocarditis infecciosa productora de émbolos sépticos que dañan al endotelio
vascular.
Agregabilidad
El GP IIb-IIIa es el receptor del fibrinógeno que le permite interaccionar con otras
plaquetas. Su deficiencia produce TROMBASTENIA DE GLANZMAN. Es congénita. La
disminución de las GP receptoras de fibrinógenos lo que produce es una disminución de la
agregabilidad plaquetaria que conlleva a equimosis, hematomas o traumas pequeños. En la
mujer cuando se desarrolla lleva a hipermenorrea o aumento de la menstruación. En las
pruebas de laboratorio hay disminución del número de plaquetas (ligera) mayor de 100000,
y tiempo de sangría aumentado.
GP 1b es el receptor del factor de vW. Su deficiencia produce el síndrome de Bernard
Soulier, donde hay una disminución de plaquetas pero con macroplaquetas en sangre
periférica. El tiempo de sangría está aumentado.
El factor plasmástico de la coagulación es el factor de vW:
Es imporante para la interacción y agregación plaquetaria Funciones:
o Agregar plaquetas o Transportar el factor VIII
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Su deficiencia produce enfermedad de vW: Entonces tiene deficiencia de la
función plaquetaria y trastornos de la fase plasmática y una disminución del
factor VIII. Entonces puede producir en ambos sexos manifestaciones clínicas
de hemorragias (altera la fase plasmática y la primaria) como equimosis,
sangrado incontrolable en extracción dentaria, etc. EL tiempo de sangría está
aumentado. En la historia clínica tenemos: cordón umbilical, fácilmente se
hacen moretones por traumas, caída de los primeros dientes con mucha
sangre, etc.
La fase plasmática es activada con las plaquetas por el factor de vW; así las
plaquetas también participan en la fase plasmática de la coagulación.
En conjunto la agregación depende de; GP IIIb-IIa, GP 1b y F vW.
Tratamiento:
Bernard Soulier y Trombastenia de Glazman: Reemplazar con concentración de plaquetas.
Enf. de vW varía de acuerdo al tipo o Tipo I: Deficiencia de F vW pero el poco que hay funciona Se caracteriza
por aumento del tiempo de sangría y TP, más una curva plana de agregación plaquetaria con ristocetina.
o Tipo II Deficiencia de F vW pero el que existe es disfuncional, por lo que hay hipoagregabilidad plaquetaria y entonces hay aumento del tiempo de sangría y TP, agregabilidad con ristocetina normal o un poco aumentada.
o Tipo III: Ausencia total de F vW. Se comporta como una hemofilia, hay aumento del tiempo de sangría y el TP. La curva de agregabilidad plaquetaria con ristocetina es plana, hay disminución del factor VIII Hay menos de 1% de factor VIII lo que produce muchas hemorragias.
Se usa vasopresina (desmopresina) que libera f vW del endotelio vascular.
Tipo I + hemorragia que no es severa (como en extracción de dientes o en menstruación)
dar desmopresina
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Tipo II NO DAR desmopresina porque produce trombocitopenia con predisposición a
hemorragias.
Tipo III Se le da factor VIII (crioprecipitado).
En todas las anteriores, si es hemorragia excesiva se tiene que dar factor VIII rico en f
vW, que se obtiene del plasma fresco congelado que contiene IX, X, f VW, fibrinógeno (no
es recomendable dar si no es tratado al calor y con solvente detergente como ocurre en el
interior, si no más bien usar el producido mediante fase industrial del plasma en donde se
prepara el compoennte plasmático y se separa por el VIH+.
Enfermedad de vW Hallazgos de laboratorio:
1) Tiempo de sangría elevado. 2) FC VIII 3) F vW disminuido 4) Agregabilidad disminuido 5) Adhesividad disminuida 6) Número de plaquetas normal 7) TPR anormal 8) TT anormal 9) TP normal 10) Ristocetina anormal que corrige al echar plasma normal.
Disfunción plaquetaria por medicamentos:
Aspirina (ASA): Inhibe COX durante toda la vida media de la plqueta. Se puede dar en profilaxis de trombosis venosa profunda, tromboembolismo. No usa en pacientes con riesgo de IAM o ECV.
Versantin: Tipridanol, inhibe el AMPc. Diclopidina, ticlin: Actúa en el peróxido de las plaquetas, es inhibidor de la función
plaquetaria. Medicamentos que inhiben las GP: Clopidogrel y Plabix. AINES: Naproxeno, voltaren, motrin.
Disfunción (inhibición de la función plaquetaria) por alteraciones no hematológicas:
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IRC (Debido a toxinas circulantes) Mieloma múltiple porque las proteínas se pegan a la superficie de las plaquetas En síndromes mieloproliferativos:
- Trombocitosis primaria - LMC - Policitemia Vera - Metaplasma mieloide
Púrpura Trombocitopénica Inmune o Idiomática (PTI):
Es importante la historia clínica si es:
1- Pacientes Pediátricos: o Generalmente la trombocitopenia inmunológica es autolimitada y no requiere
tratamiento. o Generalmente hay pródromo de infección faríngea viral: ↓ plaquetas y hay
petequias en las extremidades. Su curso es mayor y se cree que es producida por cualquier virus como rubéola, varicela, VEB.
2- Adolescentes y adulto joven: o Mujer: La causa de trombocitosis es por enf. autoinmune: LES ( Historia de
eritema facial, caída del cabello, artralgias) o Hombre o mujer sexualmente activo con factores de riesgo: VIH +
3- Adulto mayor: Preguntar por medicamentos o AINES o Sulfas: Productoras de anemia hemolítica por deficiencia de G6PDH y anemia
megaloblástica por ser antimetabolito o Sales de Oro: Pacientes con artritis reumatoide. o Uso de antiarrítmicos: Quinidina, procainamida en px de mayor edad.
4- Tercera edad o La PTI se produce por trastornos linfoproliferativos, clásicamente es LLC,
hipogamaglobulinemia, AHAI. La médula ósea es hipercelular con ↑ de megacariocitos con superficie lisa (con poca producción de plaquetas).
o Linfoma de bajo grado de malignidad
Manual del Laboratorio Modular de … 131
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o Hepatitis viral
Causas de PTI
Aguda Crónica
2aria a infecciones virales (niños) LES
2aria a fármacos: Heparina, sales de
oro
Síndrome de Evans: PTI con anemia
hemolítica
Neonatal HIV
Hijo de madre con PTI LLC
Post-transfusional Hepatopatías crónicas
Transplante de m.o.
Hipertiroidismo
Diagnóstico general:
- Trombocitopenia de moderada a severa - Sólo una línea celular afectada: Plaquetas - GB y Hb normal - En la M.O. hay hiperplasia megacariocítica sin producción suficiente de plaquetas ya
que no se liberan
Tratamiento inicial:
- Esteroides de 1-2mg/Kg de prednisona 4-6 sem: 1/3 responde bien al tx único con esteroides (↑ plaquetas)
Manual del Laboratorio Modular de … 132
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- Algunos se tratan con dosis elevadas de metilprednisolona - Si tiene recaída o necesita esteroides constantemente
Tx fase 2º: Esplenectomía si ha tenido recaída con los esteroides (hay aumento de
plaquetas o se produce trombocitopenia) De los cuales 1/3 responden bien.
Al 1/3 que no responde a fase inicial y 2º, se le da Tx inmunosupresor: Vincristina,
Vinblastina, Gammaglobulina humana (reduce púrpura trombocitopénica neonatal) Danazol
(andrógeno que también se usa en Anemia aplásica) Azatriopina, Ciclofosfamida
PTI es una enfermedad grave: hemorragia en sitio notable
Tx en embarazada: Gammaglobulina humana hiperinmune que disminuye sangrado, no hay
efecto colateral de los esteroides y disminuye la púrpura neonatal.
Púrpura Vascular:
1- Daño al endotelio vascular o Infecciones de bacterias productoras de endotoxinas: émbolos sépticos o Complejos inmunes circulantes: LES o Accidentes y mordeduras de ofidios
2- Daño a la estructura de soporte de la microcirculación o Escorbuto o Amiloidosis o Trastornos del tejido conectivo hereditario o Excesote corticoides o La más típica de todas las púrpuras es la púrpura senil: lesión por daño en
endotelio vascular por la edad en miembros inferiores 3- Vasculitis leucocitoclásica
o Enfermedad reumática o Disproteinemia o Enfermedad mediada por complejos inmunes: Púrpura de Henoch-Schonlein,
caracterizada por ser en pacientes pediátricos después de un cuadro infeccioso faríngeo, produce nefritis por vasculitis y el Tx es la disminución de los complejos inmunes con esteroides
4- Daño a la microcirculación por émbolos sépticos 5- Púrpura autoeritrocítica
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El Tx es igual: corticoides, esplenectomía o inmunosupresión.
Trombocitopenia de causa no inmunológica: Em embarazo-preeclampsia, síndrome de Hell
- Por aumento de la destrucción de plaquetas ( por HT + aumento de enzimas hepáticas)
- CID por consumo de plaquetas - Por Púrpura Trombocitopénica Trombótica: Aumento en el consumo de plaquetas
Laboratorios:
La prueba de torniquete: ya no se usa porque depende de demasiados factores (fase plaquetaria, fase plasmática, fibrinolítica)
Adhesividad plaquetaria: generalmente no se usa porque depende de demasiados factores
Las más útiles y específicas son: o Recuento plaquetario: por el método de Coulter (en los labs automáticos) puede ser
una pseudotrombocitopenia cuando se usa EDTA en el tubo (plaquetas agregadas) por lo que hay que ver el frotis de sangre periférica y correlacionar con el volumen medio de plaquetas.
o Tiempo de sangría o Retracción del coágulo que depende de varios factores:
Nº de plaquetas Fx plaquetaria Fase plasmática Fase fibrinolítica
8 a 10 plaquetas por campo es lo normal
Correlación de VMP y RDW
RDW 20 + VCM 60: Déficit de Fe
RDW 14 + VCM 65: Talasemia
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VMP ↑ y trombocitopenia, lo más probable es que sea por aumento de la destrucción porque
se envían plaquetas jóvenes o macroplaquetas a sangre periférica.
VMP ↓ y trombocitopenia, lo más probable es que sea por la falta de producción: Anemia
aplásica y trombocitopenia secundaria a quimioterapia
VMP ↑ y pseudotrombocitopenia: Anemia megaloblástica, Síndrome mieloproliferativo,
Enfemedad de Bernard-Soulier.
VMP ↑:
1- Anemia megaloblástica 2- Trombocitopenia 3- Síndrome Mieloproliferativo 4- Enfermedad de Bernard-Soulier
Caso clínico:
Mujer de 32 años, dos abortos, dolor torácico, disnea, sensación de pesadez en el miembro
inferior. Signo de Homans en miembro inferior derecho, ruidos respiratorios normales,
equimosis y no es diabética.
Signos vitales: Fc: 130/min Fr: 28cpm afebril
Laboratorio:
Hb 11g/dl
Plt 90000 (trombocitopenia)
WBC N
TP 15/normal 14
TPT 50/normal 30
Posibles diagnósticos:
- Tromboembolismo Pulmonar - PTI - Déficit de algunos inhibidores fisiológicos - Déficit de un factor de la coagulación - Anticuerpos antifosfolípidos: 1º
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2º a LES
Dx:
- Abortos recurrentes - Embolismo pulmonar - TPT pronlongados - Ac antifosfolípidos 1º(Trombocitopenia) - Ac antifosfolípidos 2º a LES
Tx:
- Fraxiheparina no se monitoriza - Heparina IV y si se monitoriza con TPT: 5000-1000/h por 7-10 días - Cumarin, monitorizar con INR con 2.5-3(TP) - Corticoides para Ac. Antifosfolípidos 2º a LES - Aspirina para: Ac antifosfolípidos 1º(trombocitopenia) - Si se quiere embarazar debe pasar 3-6 meses con warfarina (teratogénica), se le
quita la warfarina y se mantiene con aspirina. Dar heparina subcutánea durante todo el embarazo y si el paro es por cesárea quitar aspirina 7 días antes.
-
CITA Dr. Aparicio Díaz
INVESTIGACIÓN:
-El estudiante, investigará y leerá sobre el tema de la enzimas y factores en la cascada de coagulación. Su regulación y componentes. -El estudiante será capaz de conocer e investigar el tema de anticoagulantes -Estudiará los compuestos químicos, que actúan como anticoagulantes Heparina, Citrato de Sodio.
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MATERIAL Y REACTIVOS:
MATERIAL BIOLOGICO
Sangre de un voluntario
INSTRUMENTAL Y/O EQUIPO
Jeringas de 10 ml.
Tubos de ensayo
Gradilla
Papel parafilm
Micropipetas.
REACTIVOS Y/O FÁRMACOS
Solución Heparina al 1%
Solución de Citrato de Sodio al 3.8%
Solución Cloruro de Sodio al 0.9%
Solución de Cloruro de Calcio al 5%
TOXICOLOGÌA:
El material no es altamente toxico. El cuidado del uso de la sangre se debe de hacer con
guantes.
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METODOLOGÍA:
PROCEDIMIENTO
1. Determinación del tiempo de coagulación
1.1.Con una jeringa desechable obtener 10 ml de sangre venosa
de un voluntario.
1.2.Colocar directamente en dos tubos de ensayo chicos sin
anticoagulante, 2 ml de sangre en cada uno y taparlos
herméticamente con papel parafilm.
1.3.Uno de los tubos se deja en la gradilla y cada minuto
inclinarlo suavemente a 45 grados para ver si se formó el
coagulo.
1.4.El otro tubo debe mantenerse tibio (es decir agarrado de la
mano y con el puño cerrado) y cada 15 segundos invertir el
tubo totalmente hasta observar la formación del coagulo.
1.5.Para esta prueba, el tiempo de ambas muestras debe
tomarse desde el momento en que comienza a fluir la sangre
al interior de la jeringa durante el proceso de extracción.
2. Estudio de anticoagulantes in Vitro
2.1.Marcar tres tubos de ensayo del 1 al 3 y colocarlos en una
gradilla.
2.2.A cada tubo añadirle lo siguiente:
Tubo número 1 añadir 0.2 ml de solución salina al 0.9%
Tubo número 2 añadir 0.2 ml de solución de Citrato de Sodio al
3.8%
Manual del Laboratorio Modular de … 138
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Tubo número 3 añadir 0.2 ml de solución de Heparina al 1%
2.3.Posteriormente añadir a cada uno de los tres tubos
marcados previamente, 0.8 ml de sangre, se tapan con el
papel parafilm y se mezcla cada tubo por rotación.
2.4.Dejarlos reposar por 15 minutos y al cabo de ese tiempo
observar y anotar lo ocurrido.
2.5.Añadir 0.2 ml de cloruro de Calcio al 5% a los tubos 2 y 3.
2.6.Mezclar los tubos por rotación suave, sellarlos y dejar
reposar otros 15 minutos.
2.7.Observar y anotar al cabo de ese tiempo lo ocurrido.
RESULTADOS:
TABLAS DE RESULTADOS
TABLA 1 TIEMPOS DE COAGULACION EN TEMPERATURA AMBIENTE A Y
TEMPERATURA A LA DEL CUERPO HUMANO. B
TUBO TEMPERATURA TIEMPOS COAGULACION
A
B
TUBO TEMPERATURA TIEMPO COAGULACION
A
B
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C
CÁLCULOS
[Introduzca los cálculos requeridos que el alumno debe realizar para el cumplimiento de
objetivos y competencias establecidos]
MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS
El manejo de los residuos, serán colocados en bolsas apropiadas para ello y serán
depositado en el lugar de deshechos por el o la encargada.
DISCUSIÓN DE RESULTADOS:
El profesor con los alumnos podrán discutir ampliamente, sobre los factores que participan
en la coagulación y el papel de algunos compuestos como anticoagulantes.
Discutirán los resultados obtenidos así como los tiempos de coagulación de cada tubo con
las características que presenten en función de los tiempos y el grado de coagulación de la
sangre.
CONCLUSIONES:
Los alumnos serán capaces de resumir brevemente las conclusiones generales
Los alumnos serán capaces de hacer un resumen de los resultados y de las
conclusiones del experimento y entregarlo antes de la otra practica.
BIBLIOGRAFÍA:
1. Hall J.E. Guyton y Hall. (2011) Tratado de Fisiología Médica.
12ª ed. España:
Editorial Elsevier;
2. Kim Barret (2013). Fisiología Médica de Ganong 24ª ed. Mc
Graw Hill.
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3. Bertram G. Katzung et al. (2013).Farmacología básica y
clínica. 12ª ed. Editorial Mc Graw Hill;
4.
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8#q=hemostasia+primaria+pruebas+de+laboratorio