ME65_Guía Lab 2013-2

ME65 Química para Ciencias de la Salud

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PRE GRADO

AUTORES : Angel Alvarado Yarasca

Hugo Collantes Moschietti

Leslie Córdova Yamauchi

Ana Montalvo Astete

Betty Pérez Zenteno

DOCENTES : Flavio Chullén Galbiati

Pamela Robles Valcarcel

Guillermo Santillán Zea

Edgar Oriundo Walde

ASISTENTE : Hugo Ibáñez Meza

TÍTULO : Guía de Laboratorios de Química para Ciencias de

la Salud

CURSO : QUIMICA PARA CIENCIAS DE LA SALUD

CÓDIGO : ME 65

AREA : Medicina

CICLO : 2013-02


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GUÍA DE LABORATORIOS DE QUÍMICA PARA CIENCIAS DE LA SALUD

UNIVERSIDAD DE CIENCIAS APLICADAS (UPC)

Facultad de Ciencias de la Salud

Carrera de Medicina

Lima – Perú

Angel Alvarado Yarasca

Hugo Collantes Moschietti

Leslie Córdova Yamauchi

Ana Montalvo Astete

Betty Pérez Zenteno

Sétima Edición


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INDICE

Página

Pautas para el trabajo en el laboratorio 3

Medidas de seguridad en el laboratorio 4

Primeros auxilios 5

Pictogramas de seguridad 6

Materiales de laboratorio 8

Laboratorio N° 1 : Preparación de Soluciones

Laboratorio N° 2 : Cinética Química

Laboratorio N° 3 : Medición del pH

9

16

21

Laboratorio N° 4 : Identificación de Alcolholes 32

Laboratorio Nº 5 : Grupo Carbonilo 37

Laboratorio N° 6 : Soluciones amortiguadoras 42


4

PAUTAS PARA EL TRABAJO EN EL LABORATORIO

La metodología a seguir en el laboratorio es la siguiente:

Las sesiones de laboratorio son de 110 minutos. La asistencia es obligatoria y la nota

es no recuperable.

Antes de asistir al laboratorio deberá leer cuidadosamente su guía. En cada

laboratorio se le pide que desarrolle una serie de conceptos previos, los cuales le

permitirán desarrollar con éxito sus experimentos.

El trabajo es grupal (dos ó máximo tres estudiantes). Esto con el fin de que cada

estudiante del grupo tenga la misma oportunidad de experimentar e interpretar los

cambios químicos producidos. Recuerde que se puede aprender más trabajando en

equipo que actuando individualmente.

Cada estudiante debe ingresar al laboratorio con su mandil blanco y su guía. No se

les permitirá el ingreso si no cumple con estos requerimientos.

Los laboratorios se inician con una tolerancia máxima de 5 minutos, pasados los

cuales usted ya no podrá ingresar.

Tan pronto esté en su mesa de trabajo, identifique cada material y reactivo que

aparece en la guía. Verifique que está en condiciones apropiadas, si esto no es así,

informe inmediatamente a su profesor

Antes de empezar a trabajar lea nuevamente con cuidado la descripción completa del

experimento, esto evitará que se produzcan accidentes. Tome en cuenta los avisos de

prevención en la mesa de trabajo o aquellos dados por su profesor.

Al final de cada sesión el grupo entregará un reporte de laboratorio donde se

deberán registrar: los datos experimentales, las mediciones efectuadas, los cálculos

realizados, la discusión de las preguntas propuestas en la guía o por su profesor, y las

conclusiones a las que han llegado.

Antes de retirarse del laboratorio debe verificar que todo esté limpio y en orden.

Los criterios para la evaluación del laboratorio incluyen:

Demostrar que se ha leído la guía anticipadamente

Profesionalismo y eficiencia en el trabajo durante la sesión

Calidad del reporte de laboratorio


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NORMAS DE BIOSEGURIDAD

Este es un laboratorio universitario con fines pedagógicos por ello se opta por trabajar con el

material más inocuo posible para reducir los riesgos. Sin embargo existe algunos materiales

que requieren de mucha precaución en su manipulación y manejo por ello todo trabajo en el

laboratorio debe ser considerado como especial.

ANTES DE INGRESAR AL LABORATORIO

1. Es OBLIGATORIO el uso de un mandil o guardapolvo blanco de laboratorio mientras

esté dentro del laboratorio, para prevenir contaminación y para protegerlo de algún tipo de

accidente.

Ningún alumno sin mandil o guardapolvo blanco será admitido al laboratorio.

.2. Durante la realización de análisis, no se permitirán que los analistas ingresen en

pantalones o faldas cortas, blusas o camisas de manga cero. El calzado deberá ser

cerrado. No se permitirán sandalias, zapatos abiertos en general o zapatos de tacón alto.

No se deberá ingresar con bufandas, pañuelos largos ni prendas u objetos que dificulten tu

movilidad.

3. Si posee el cabello largo deberá traerlo recogido para minimizar posibilidades de

contaminación de muestras o accidentes al manipular materiales o instrumentos.

4. Deberá conocer la ubicación de los equipos de seguridad tales como mangas,

extintores y botiquín de primeros auxilios. De igual forma deberá conocer la ubicación de

las salidas de emergencia y escaleras.

5. Se requerirá el uso de mascarillas descartables cuando exista riesgo de producción de

aerosoles (mezcla de partículas en medio líquido) o polvos, durante operaciones de pesada

de sustancias tóxicas o biopatógenas, apertura de recipientes con cultivos después de

agitación, etc.

DURANTE LA ESTANCIA EN EL LABORATORIO

1. Está terminantemente prohibido fumar, comer, ingerir bebidas, manipular lentes de

contacto y cosméticos en el laboratorio.

2. No se permitirá:

- Faltas de respeto hacia sus compañeros de trabajo y personal de apoyo.

- El uso de vocabulario inapropiado.

- Deambular sin justificación dentro del laboratorio e interrumpir el trabajo de sus

compañeros.

3. Antes de comenzar a trabajar, el trabajador se deberá lavar bien las manos. Se deberán

utilizar guantes apropiados para evitar el contacto con sustancias química o material

biológico. Toda persona cuyos guantes se encuentren contaminados no deberá tocar


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objetos, ni superficies, tales como: teléfono, lapiceros, manijas de cajones o puertas,

cuadernos, etc.

4. Se deberá rotular e identificar todos los materiales, reactivos o cultivos que utilice en los

ejercicios de laboratorio.

5. Se debe mantener el suelo del laboratorio siempre limpio y seco.

6. No se debe forzar las pipetas al colocarlas en los pipeteadores. Usar las pipetas

adecuadas al volumen de muestra que vaya a emplear. NUNCA PIPETEAR CON LA

BOCA, mucho menos material potencialmente tóxico.

7. No se debe jugar con las llaves de agua, vacío o gas. Solo se deben abrir cuando se

requieran usar.

8. Se prohíbe la manipulación de equipos (autoclaves, hornos, centrífuga, termociclador,

gabinetes bacteriológicos, etc.) sin la debida supervisión.

9. Cuando se efectúa una reacción química en tubo de ensayo ó se caliente una sustancia

DEBE CUIDARSE que la boca de éste NO se dirija hacia un compañero o hacia sí mismo,

ya que puede haber proyecciones. Se debe prestar atención cuando se realicen procesos

de calentamiento.

10. Todos los cultivos deberán ser manejados como patógenos potenciales, capaces de

causar enfermedades. Los cultivos deberán cargarse y mantenerse en gradillas adecuadas.

En caso de salpicaduras o derrames de cultivos inoculados, se debe notificar

inmediatamente al instructor o persona encargada del laboratorio en ese momento.

11. Considerando que algunas sustancias químicas son irritantes (sólidos, líquidos y gas)

para la piel y mucosas, debe evitarse el contacto directo de productos con manos y cara;

así como la inhalación directa de gases. Para hacer la inhalación es conveniente formar

una ligera corriente de aire con la mano sobre la boca de los recipientes hacia la nariz.

12. Un accidente (por pequeño que sea) debe comunicarse de inmediato a la persona

responsable en el laboratorio.

13. La gran mayoría de los disolventes orgánicos son volátiles e inflamables, al trabajar con

ellos deberá hacerse en lugares ventilados y nunca cerca de una flama. Los recipientes que

los contienen deben mantenerse cerrados, en lugares frescos y secos.

14. Cualquier quemadura con ácido, base o fuego, requiere que se ponga la parte afectada

bajo el chorro de agua fría durante 15 minutos.

15. Desarrollar el hábito de mantener las manos lejos de la boca, nariz, ojos y cara, para

evitar la auto inoculación

DESPUÉS DE LA ESTANCIA EN EL LABORATORIO (AL SALIR)

1. Al terminar las labores, se deberá limpiar bien el área de trabajo, usando desinfectante si

ha estado trabajando con tejidos o bacterias.

2. Si se ha trabajado con reactivos químicos, se deberá dejar limpia y seca la zona de

trabajo.

3. El analista deberá lavar a conciencia el material que utilice. Se debe prestar atención y

tener cuidado al manipular el material de vidrio mojada. En el caso de materiales que se

vayan a desechar, se debe descartar en los envases adecuados. En el laboratorio habrá


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recipientes de plástico de color rojo para desechar material que haya estado en contacto

con cultivos de células y/o virus. Además, el laboratorio cuenta con bolsas autoclavables

color rojo para material contaminado.

4. Antes de salir del laboratorio, el analista debe volverse a lavar las manos y los

antebrazos.

5. No se debe devolver nunca a los frascos de origen los sobrantes de los productos

utilizados sin consultar al encargado del laboratorio. Nunca se debe dejar los frascos de

reactivos abiertos, es necesario mantenerlos cerrados.

6. Todo equipo con el que haya trabajado deberá ser apagado y cerciorarse de ello, y si

tiene funda, se deberá colocar sobre el equipo.

7. Por ningún motivo se podrá retirar material, reactivo, cultivo u otro componente del

laboratorio sin autorización.

PROCEDIMIENTOS ANTE EMERGENCIAS:

En caso de fuego, terremoto, escape de gas u otra eventualidad, se deberá abandonar el

laboratorio a la mayor brevedad posible, siguiendo las instrucciones del instructor y en

estricto orden.

1. FUEGO EN EL LABORATORIO

-Evacuar el laboratorio.

-Avisar a los compañeros.

-En caso de fuego pequeño y localizado, apagarlo utilizando un extintor adecuado.

-Retirar los productos químicos inflamables que estén cerca del fuego.

-Cortar la llave de paso de gas.

-En caso de fuego en la ropa pedir ayuda, estirarlo en el suelo y rodar para apagar las

llamas. No se debe correr ni intentar llegar a la ducha de seguridad si no se está muy

cerca. Nunca utilizar extintor para eliminar el fuego de la ropa. Una vez apagado el fuego,

mantener a la persona tendida, procurando que no tome frío y dar asistencia médica

inmediata.

2. QUEMADURAS

-Las pequeñas quemaduras producidas por material caliente, por el uso del autoclave o

reactivos, tratarlas lavando la zona afectada con agua fría durante 10-15 minutos.

-Las quemaduras más graves requieren atención médica inmediata.

-No utilizar cremas o pomadas grasas.

3. CORTES

-Los cortes producidos por roturas de material de vidrio son un riesgo común en el

laboratorio.

-Estos cortes se tienen que lavar bien, con abundante agua y jabón, durante 10 minutos

como mínimo.


8

-Si son pequeños y dejan de sangrar en poco tiempo, lavarlos con agua y jabón, taparlos

con una venda o apósito adecuado.

-Si son grandes y no paran de sangrar, solicitar asistencia médica inmediata.

4. DERRAMES DE PRODUCTOS QUÍMICOS SOBRE LA PIEL

-Los productos químicos que se vierten sobre la piel deben ser lavados inmediatamente

con agua abundante, como mínimo durante 15 minutos.

-Las duchas de seguridad son utilizadas en aquellos casos en que la zona afectada del

cuerpo sea grande y no sea suficiente el lavado manual

-Sacar la ropa contaminada a la persona afectada lo antes posible mientras esté bajo la

ducha.

-La rapidez en el lavado es muy importante para reducir la gravedad y la extensión de la

herida.

-Proporcionar asistencia médica a la persona afectada.

5. CONTACTO DE PRODUCTOS QUÍMICOS EN LOS OJOS

-En este caso el tiempo es esencial (menos de 10 Segundos), lavar el(los) ojo(s). Cuanto

menos sea el tiempo menor será el daño producido.

-Lavar los dos ojos con agua abundante durante 15 minutos como mínimo usando el

lavaojos.

-Mantener los ojos abiertos con la ayuda de los dedos para facilitar el lavado debajo de los

párpados.

- Es necesario recibir asistencia médica, por pequeña que parezca la lesión.

.6. INHALACIÓN DE PRODUCTOS QUÍMICOS

-Conducir inmediatamente la persona afectada a un sitio con aire fresco.

-Dar asistencia médica inmediata.

-Si se identifica un paro cardiorrespiratorio, activar sistema de alerta inmediatamente e

iniciar reanimación cardiopulmonar, solo en el caso de estar debidamente entrenado.

-Tratar de identificar el vapor tóxico.

7. ACTUACIÓN EN CASO DE INGESTIÓN DE PRODUCTOS QUÍMICOS

-Antes de cualquier actuación pedir asistencia médica.

-Si la persona está inconsciente, colocarlo en posición lateral de seguida con la cabeza de

lado.

-Taparlo con una manta para que no tenga frío.

-No dejarlo solo.

-No darle bebida alcohólica ni inducir al vómito sin saber de que tipo de producto se trata.

8.- EMISIÒN DE UN AEROSOL POSIBLEMENTE PELIGROSO

-Evacuación inmediata de la zona afectada.


9

-No se deberá entrar al ambiente afectado durante una hora, para que los aerosoles

puedan salir y se depositen las partículas más pesadas.

-Se colocarán señales de PROHIBIDA LA ENTRADA.

-Las personas afectadas consultarán al servicio médico.

9. ROTURA O DERRAME DE RECIPIENTES CON CULTIVOS

-Empapar con hipoclorito de sodio (lejía) el área donde ocurrió el derrame, dejar que actué

durante 30 minutos como mínimo antes de limpiar el área. Se utilizaran guantes en toda la

operación.

10. ACCIDENTE CON MATERIAL SOSPECHOSO QUE CONTENGA UN VIRUS

-Al producirse el accidente, se debe lavar la zona afectada con agua y jabón favoreciendo

el sangrado de la lesión, si es necesario se cubre la lesión con un apósito.

-Se tomará una muestra de sangre a la persona afectada, para VIH y hepatitis B. Los

protocolos de manejo se revisarán con personal médico capacitado.

PICTOGRAMAS DE SEGURIDAD

Los pictogramas son representaciones gráficas que indican una

serie de riesgos relacionados al uso de un reactivo químico.

Aunque se emplean para superar la barrera del idioma en

ocasiones van acompañadas de una palabra en uno o más

idiomas.

Habitualmente son figuras negras en fondo naranja para hacerlas mas visibles y

llamativas pero también pueden ser blanco y negro

Símbolo Peligro Precaución

Compuestos que

pueden inflamar

sustancias

combustibles o

favorecer la

amplitud de

incendios ya

declarados,

dificultando su

Evitar el contacto

con sustancias

combustibles


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extinción

Por contacto con

estas sustancias

se destruye tejido

vivo y otros

materiales

No inhalar los

vapores y evitar

el contacto con

la piel, ojos y

ropa

Sustancias que

pueden explotar

bajo

determinadas

condiciones

Evitar choque,

percusión,

fricción, chispas

y calor

Sustancias

extremadamente

inflamables, bien

de forma

espontánea, o en

contacto con el

aire o el agua.

Aislar de fuentes

de calor, llamas

o chispas

Sustancias

inflamables o

volátiles

Aislar de fuentes

de calor, llamas

o chispas

Material biológico

potencialmente

infeccioso debido

a la posibilidad

de agentes

(hongos, virus,

bacterias)

Utilizar guantes y

mascarillas de

acuerdo a

concentraciones


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Presencia de

material

radioactivo,

peligro de

exposición por

radiación (alfa,

beta y/o gamma)

reducción del

tiempo de

exposición,

aumento del

blindaje y

aumento de la

distancia a la

fuente radiante

Producen

irritación sobre la

piel, ojos y

sistema

respiratorio

No inhalar los

vapores y evitar

el contacto con

la piel

Sustancias que

afectan de

manera

irreversible al

medio ambiente

Evitar su

eliminación de

forma

incontrolada

Sustancias que

por inhalación,

ingestión o

penetración

cutánea pueden

entrañar riesgos

para la salud

Evitar cualquier

contacto con el

cuerpo humano

Sustancias que

por inhalación,

ingestión o

penetración

cutánea pueden

entrañar graves

riesgos para la

salud

Evitar cualquier

contacto con el

cuerpo humano y

en caso de

malestar acudir

al médico


12


Producen efectos

nocivos de poca

trascendencia

Evitar contacto e

inhalación de

vapores

Nuevos Pictogramas de peligro:

Nuevos pictogramas de peligro. Se han modificado el fondo y color del marco, así como la

orientación del cuadrado. Algunos símbolos han sido sustituidos por otros.


13

.


14

MATERIALES DE LABORATORIO

Pipeta

Volumétrica

Bureta

Embudo de Separación

Matraz Kitazato

Condensador

Tubos de

ensayo

Varilla de agitación de

vidrio con punta elástica

(bagueta)

Luna de reloj

Probeta Graduada

Mechero

Bunsen

Pipeta

Graduada

Matraz

Erlenmeyer

Gotero

Embudo

Pizeta

Espátulas


15

LABORATORIO N° 1

PREPARACIÓN DE SOLUCIONES Y DETERMINACION DEL ÁCIDO ACÉTICO EN EL

VINAGRE

1. COMPETENCIAS

Realiza los cálculos para preparar una solución molar en el laboratorio.

Estandariza una solución e hidróxido de sodio 0,2 M molar en el laboratorio.

Determina el porcentaje de acido acético en el vinagre comercial por neutralización

ácido- base.

Valora la importancia de las titulaciones acido-base como método para hallar la acidez

total en una sustancia.

2. INTRODUCCIÓN

El término solución o disolución se usa en química para describir un sistema homogéneo.

Una solución está formada por dos componentes: soluto y solvente. El soluto es el

componente que se encuentra con frecuencia en menor cantidad y proporciona las

características a la solución; el solvente que se encuentra en mayor cantidad. Cuando una

solución tiene como solvente agua se le llama solución acuosa, el agua se conoce como

solvente universal y forma parte de diversas soluciones que se encuentran en la vida

cotidiana.

La solubilidad describe la máxima cantidad de un soluto que se puede disolver en una

cantidad específica de solvente. Así por ejemplo 36 g de NaCl son solubles en 100 g de

agua a 20 ºC, por lo tanto la solubilidad de NaCl a 20 ºC es 36 g de NaCl/100 g de H2O. Por

lo tanto, se está formando una solución saturada a esta temperatura.

Si disolvemos 37 g de NaCl en 100g de agua a 20 ºC no se va a disolver el exceso, va a

precipitar y dejaría de ser una mezcla homogénea. Si aumentamos la temperatura, se

logrará disolver el exceso y al regresar a la temperatura inicial lentamente (20°C) entonces

el resultado sería una solución sobresaturada.

Si disolvemos 30 g de NaCl en 100 g de agua todo se disolverá, entonces se tratará de una

solución insaturada pues no ha logrado llegar a la cantidad máxima posible a ser disuelta.

La concentración de una solución expresa la cantidad de un soluto disuelto en un solvente.

Se conocen unidades físicas para expresar las soluciones tales como los porcentajes en

masa y porcentajes en volumen, para soluciones muy diluidas (poco soluto) se usan los

partes por millón (ppm). Las unidades físicas más comunes son:


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Porcentaje masa (m/m): expresa la masa de un soluto que hay por 100 gramos de

solución. Por ejemplo una solución al 20 % de glucosa, indica que hay 20 gramos de

glucosa por cada 100 gramos de solución. También se puede expresar como:

% m/m = masa soluto (gramos) x 100

masa solución (gramos)

Porcentaje masa-volumen (m/v): expresa la masa de un soluto por 100 mililitros de

solución. Por ejemplo una solución al 10 % de cloruro de solio, indica que hay 10 gramos

de la sal cloruro de sodio por cada 100 mL de la solución.Tambien se puede expresar

como:

% m/v = masa soluto (gramos) x 100

volumen de solución (mL)

Porcentaje volumen-volumen( v/v): expresa el volumen de un soluto por 100 mL de

solución. Así por ejemplo una solución al 5% de etanol expresa que hay 5 mL de etanol por

100 mL de solución .También se puede expresar;

% v/v = volumen soluto (mL) x 100

volumen solución (mL)

Partes por millón (ppm): expresan los miligramos de soluto por litro de solución.

Así por ejemplo una solución de 500 ppm de dióxido de azufre (SO2) , en el aire, se puede

interpretar como 500 mg de SO2 por litro de aire.

Ppm = mg soluto

Litros de solución

* Tener en cuenta que solución = soluto + solvente

La unidad químicas más conocidas es:

Molaridad (moles/litro): expresa el número de moles de un soluto por litro de solución.

M = moles soluto = masa gramos / masa molar

litros solución litros de solución

3. TAREA PREVIA

1. Realice un diagrama sobre el procedimiento experimental de cada experimento.

2. Defina:

Neutralización ácido-base

Indicador ácido-base

Solución estándar

3. Escriba las ecuaciones químicas de las reacciones químicas obtenidas en el

experimento N°2 y N°3.


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4. MATERIALES Y REACTIVOS

Balanza Soporte universal

Vaso de 100 mL NaOH (s)

Fiola de 100 mL Agua destilada

Pipeta Vinagre blanco

Mortero Solución de fenolftaleína

Matraz erlenmeyer Solución valorada de HCl 0,2 M

Bureta Bagueta

5. PROCEDIMIENTO

1. Preparación de 100 mL una solución de NaOH 0,2 M a partir de NaOH sólido.

Calcule la masa de NaOH sólido que se necesita para preparar 100 mL de NaOH

0,2 M

Pesar en la balanza la masa calculada utilizando un vaso de 100 mL

Disuelva el NaOH con unos 50 mL de agua aproximadamente y luego trasvase a

una fiola de 100 mL Complete hasta 100 mL con agua destilada y homogenice la

solución.

Esta solución que ha preparado es la solución de NaOH de aproximadamente una

concentración 0,2 M

2. Estandarización de una solución de NaOH 0,2 M con una solución de HCl de

concentración conocida (Estándar)

Estandarizar una solución significa determinar su concentración real, para ello se

titula con una solución de concentración conocida.

Llene una bureta con la solución de NaOH que preparó.

En un erlenmeyer colocar 10 mL de la solución de HCl de concentración conocida (

la brindará el profesor) y añadir unas 3 gotas de indicador fenolftaleína.

Neutralice (titule) el ácido con la solución básica, hasta obtener una coloración

ligeramente rosada. El cambio de color indica que el ácido (HCl) ha sido

neutralizado por la base (NaOH).

Anote el volumen de NaOH gastado en la titulación.

Halle el valor real de la solución de NaOH que preparó aplicando la siguiente

fórmula:

M(NaOH)x V(NaOH)= M(HCl) x V (HCl)

3. Determinación de acido acético en el vinagre por titulación con una solución de

NaOH 0,2 M.

Se añade en un matraz erlenmeyer 5 mL de vinagre medidos con pipeta, unas

gotas de fenolftaleína y se diluye con aproximadamente 50 mL de agua destilada

Se enrasa la bureta con la disolución de NaOH estandarizada.

Se coloca el erlenmeyer debajo de la bureta y se añade gota a gota la solución de

NaOH agitando continuamente hasta que la disolución cambie a color rasado

permanente.

Se anota el volumen de NaOH gastado.


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Para los cálculos tenga en cuenta que en la titulación:

CH3COOH(ac) + NaOH(ac) ⇄ CH3COONa(ac) + H2O(l)

N° moles de ácido acético = N° de moles de NaOH

Masa acido acético = M NaOH x V NaOH

Masa molar/carga 1000

Masa de ácido acético = (MxV) NaOH x 60

1000

% Acido Acético = Masa acido acético x 100 δ vinagre = 1 g/ml

Masa de vinagre

Forma correcta de titular

Solución de NaOH

Solución de HCl


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REPORTE DE LABORATORIO N° 1

PARTE A: Resultados

1. Calcule la cantidad de NaOH necesario para preparar 100 mL de solución 0,2 M (1

punto)

2. Completa la siguiente tabla de datos (1.5 puntos):

Concentración de la solución de HCl empleado expresado en Molaridad

MHCl

Volumen de HCl empleado en mL

VHCl

Volumen de NaOH gastado en mL

VNaOH

3. Calcule la concentración real de la solución de NaOH expresado en Molaridad (MNaOH)

(Solución estandarizada de NaOH) (1 punto).

4. Completa la siguiente tabla de datos (1 punto):

Volumen de vinagre empleado en mL

Densidad del vinagre en g/ mL

Molaridad de la sol. de NaOH estandarizada

Volumen de NaOH estándar gastado en mL


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5. Calcule la masa de vinagre y del ácido acético (CH3COOH) contenido en el vinagre.

Utiliza las fórmulas adecuadas y brinde todos los cálculos realizados (1.5 puntos).

6. Resultados (1 punto).

Masa de vinagre ( g ) (0.25 puntos)

Masa de ácido acético ( g ) (0.25 puntos)

Porcentaje en peso de ácido acético en el vinagre (% m/m )

(Ojo: Escriba sus cálculos – 0.5 puntos)


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PARTE B: Cuestionario

1. Indique qué instrumentos son necesarios para a) preparar una dilución b) llevar a

cabo una reacción de neutralización (titulación) ácido-base (1 puntos)

2. ¿Por qué se emplea la fenolftaleína en el experimento? ¿Qué indica el cambio de

color en la reacción realizada? ¿Qué otras formas de determinación ácido-base

conoce? (1.5 puntos)

3. A qué se debe la diferencia entre la concentración real y la concentración supuesta

de 0,2 M para el NaOH? Fundamente su respuesta. (1 punto)

4. Escriba las ecuaciones químicas de las reacciones de neutralización obtenidas en

el experimento y brinde una breve conclusión del experimento (1.5 puntos).


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LABORATORIO Nº 2

CINÉTICA QUÍMICA

COMPETENCIAS

Reconoce los factores que afectan la velocidad de una reacción química.

Verifica el efecto del cambio en la concentración y del cambio en la temperatura

sobre la velocidad de reacción.

INTRODUCCION

Muchas reacciones ocurren de manera instantánea. Sin embargo, no todas las reacciones

se comportan de la misma forma. Algunas reacciones se desarrollan en una o mas etapas,

otras veces ocurren reacciones paralelas que compiten con la principal y forman productos

secundarios, otras establecen equilibrios en los cuales los reactantes reaccionan formando

productos y estos productos reaccionan entre si volviendo a regenerar los reactantes, y

algunas tienen una valla energética muy alta de tal forma que hacen que la reacción se

produzca lentamente.

En esta práctica se estudia la cinética de la llamada reacción reloj de yodo que nos

permitirá mostrar la forma en que una reacción es afectada por las concentraciones de los

reactivos, así como por los cambios de temperatura.

El reloj de yodo es una reacción en fase acuosa entre el ión iodato IO3- y el ión bisulfito

HSO3- que ocurre en dos etapas.

La primera etapa puede representarse por la ecuación sin balancear:

IO3- (ac) + HSO3

- (ac) I-(ac) + HSO4-(ac) (1)

En una segunda etapa los iones ioduro I- formados reaccionan con los iones iodatos IO3-

que se encontraban en exceso, produciendo yodo molecular I2 representado según la

siguiente reacción no balanceada:

I-(ac) + H+(ac) + IO3

- (ac) I2(ac) + H2O(l) (2)

Luego que los iones bisulfito HSO3- se han consumido por la reacción (1), el yodo molecular

I2 forma un complejo azul con el almidón que previamente fue añadido con este fin. Esta

coloración azul nos indica que la reacción llegó a su término.

Así como esta existen otros relojes, o reacciones donde se observa

directamente la relación entre la concentración de los productos y la

velocidad, o tiempo que demora en completarse la reacción.


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Además de la concentración de los reactantes o la temperatura en la cual se efectúa la

reacción, existen otros factores que afectan la velocidad de este cambio acelerándola o

retardándola. Algunos de estos factores son importantes dependiendo del estado físico de

los reactantes que participan.

MATERIALES y REACTIVOS

Vaso de 250 mL (3)

Termómetro de 0 a 100º C

Plancha de calentamiento

Gradilla con 30 tubos de ensayo

Tapones para los tubos de ensayo

Gotero

Cronómetro

Agua destilada

Solución A: Iodato de Potasio, KIO3 0,025 M

Solución B: Bisulfito de sodio, NaHSO3 0,025 M

Indicador: Almidón

PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL

Experimento 1: Efecto de la Concentración

Para observar el efecto de la concentración de uno de los reactantes sobre el tiempo de

reacción, se harán diluciones de la solución A para variar la concentración del ión yodato

(IO3-) manteniendo tanto la concentración del bisulfito (HSO3

-) y el volumen total constante.

1. Enumera los tubos de la siguiente manera: 1A, 2A, 3A, 4A y 5A; 1B, 2B, 3B, 4B y

5B.

Los tubos A son grandes, mientras que los B son tubos más pequeños.

2. Mide exactamente con una pipeta el volumen de la solución A según la tabla y

colócalo en cada tubo A, agrega almidón y agua destilada según se indica en la

tabla.

3. Con otra pipeta mide exactamente la solución B y viértela en los tubos B .

Tubo Contenido Tubo Contenido

1A 10 mL A + 2 gotas almidón 1B 8 mL de B

2A 8 mL A + 2 mL de agua + 2 gotas almidón 2B 8 mL de B




4. Registra la temperatura de una muestra de agua al ambiente.

5. Alista un cronómetro a cero.

6. Vierte la solución de 1A en 1B, coloca el tapón e invierte rápidamente el tubo varias

veces para homogeneizar la mezcla reactante. Toma el tiempo desde el instante en

que ambas soluciones entran en contacto. Coloca el tubo en la gradilla.

7. Anota el tiempo que tarda en producirse el cambio visible en segundos.

8. Calcula las concentraciones de yodato de potasio y bisulfito en cada tubo luego de

realizada la mezcla.


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9. Con los datos obtenidos llena la tabla de la ficha registrando la temperatura

ambiente.

10. Repite todos los pasos para los demás pares de tubos.

Experimento 2: Efecto de la Temperatura:

Para investigar el efecto de las variaciones de temperatura se determinará el tiempo de

reacción a una temperatura 10 °C por encima y 10 °C por debajo de la temperatura

ambiental.

Experimento 2A: Aumento de temperatura

11. Repite todos los pasos del experimento anterior a temperatura ambiente, pero esta

vez coloca los tubos en baño María al menos durante 10 minutos para que alcancen

la temperatura deseada (10 °C por encima de la temperatura ambiente). Coloca al

mismo tiempo un tubo con agua destilada con un termómetro para controlar la

temperatura.

Procura que todos los tubos se mantengan a la misma temperatura durante todo el

experimento.

Experimento 2B: Disminución de la temperatura:

12. Repite todos los pasos del experimento a temperatura ambiente, pero esta vez

coloca los tubos en baño de agua helada al menos durante 10 minutos para que

alcancen la temperatura deseada (10 °C por debajo de la temperatura ambiente).

Coloca al mismo tiempo un tubo con agua destilada con un termómetro para

controlar la temperatura.

Procura que todos los tubos se mantengan a la misma temperatura durante todo el

experimento.

Nota: Para calcular la nueva concentración de yodato de potasio (KIO3) en cada

tubo, considera que se trata de una dilución en la cual el volumen final es el volumen

de la mezcla, que es igual para todas las reacciones efectuadas. La concentración

inicial también es igual. En todos los casos sólo varía el volumen inicial empleado en

cada tubo:

finaltubocadaenfinaltubocadaeninic ialinic ial VCVC =

TAREA PREVIA:

Antes de realizar tu laboratorio:

1. Elabora un diagrama indicando el procedimiento a seguir. Señala donde están los

resultados que deben ser anotados.

2. ¿Qué es el orden de una reacción? Explica cómo son las reacciones de primer y

segundo orden y de orden cero.


25

3. ¿Que sucedería con la velocidad de una reacción cuando se triplica la concentración de

un reactante si esta es de segundo orden?

4. ¿Qué es un catalizador? ¿Qué son las enzimas? ¿Qué características tienen?

5. Indica 4 factores que afectan la velocidad de una reacción y explica.


26

REPORTE DE LABORATORIO Nº 2

CINÉTICA QUÍMICA

A. MEDICIONES Y CÁLCULOS

1. Complete la siguiente tabla para el Experimento 1 (1.5 puntos):

Tubo Volumen

Sol. A Volumen

Sol. B Volumen

Total [KIO3] [NaHSO3]

1

2

3

4

5

2. Complete la siguiente tabla para el Experimento 2 (1 punto):

Tubo [KIO3] ____ ºC ___ºC ____ºC

Tiempo (s) Tiempo (s) Tiempo (s)

1

2

3

4

5

3. Grafique tres curvas con los resultados del Experimento 2 a las diferentes temperaturas

(1.5 puntos)


27

B. DISCUSIÓN Y CONCLUSIONES

1. En base a los resultados obtenidos en el Experimento 2: ¿Influye la concentración

de las disoluciones utilizadas? ¿De qué forma? (1 punto)

2. En base a los resultados obtenidos en el Experimento 2: ¿Influye la temperatura a la

que se realiza el experimento? ¿De qué forma? (1 punto)

3. Además de la concentración y la temperatura, ¿qué otros factores afectan la

velocidad de una reacción? Justifique su respuesta y brinde ejemplos (1.5 puntos)

4. ¿Por qué se emplea el almidón en este experimento? ¿Qué sucede si caliento al

mechero un tubo de ensayo que contenga yoduro de potasio y almidón?

Fundamente su respuesta (1.5 puntos)


28

5. ¿Cómo afectarían los factores antes mencionados a las reacciones que se

desarrollan dentro de los seres humanos? Mencione ejemplos (1.5 punto)

6. Brinde sus conclusiones con respecto a la práctica realizada. Incluya en su

respuesta el por qué considera se le conoce a esta práctica como “reacción de reloj”

(1.5 puntos)


29

LABORATORIO Nº 3

MEDICIÓN DEL pH

1. COMPETENCIAS

Determina los valores de pH por el método colorimétrico.

Comprueba la acidez del ácido clorhídrico del jugo gástrico in vitro.

Interrelaciona el pH con los líquidos biológicos del ser humano.

2. INTRODUCCIÓN

El año de 1909 el Químico Danés Sören Sörensen introdujo un método para expresar

la concentración de hidrogeniones (H+) presentes en una solución. La escala de

acidez desarrollada por Sörensen fue conocida posteriormente como la escala de pH,

que proviene de los vocablos franceses pouvoir hydrogene, que significa poder de

hidrógeno.

El pH de una solución se define como el logaritmo negativo en base 10 de la

concentración de iones hidrogeniones, teniendo como expresión matemática:

pH = - log [H+]

Donde [H+] es la concentración del ión hidrógeno en moles/L. Siendo un valor

fraccionario, el logaritmo negativo da como resultado un valor positivo.

Escala [H+] pH Aplicación

Neutro [H+] = 10-7 M pH = 7 En el agua pura por auto-ionización, la concentración de iones H+ es 10-7 moles/L. Determinar el pH: pH = - log [H+] pH = - log (10-7M) pH = -(-7) pH = 7

Ácido [H+] > 10-7 M pH < 7 El HCl se genera en las células parietales del estómago, la misma que tiene una concentración de H+ de 0,1mol/L. Calcular el pH: pH = - log [H+] pH = - log (001M) pH = 1

Básico o alcalino

[H+] < 10-7 M pH > 7 La bilis tiene una concentración de H+ de 10-8 M. Calcule el pH de la bilis y mencionar si la solución es ácida o básica? pH = - log [H+] pH = - log (10-8 M) pH = 8 Por lo tanto, el pH de la bilis es 8 y la solución es básica.


30

Efecto de un antiácido

El ácido clorhídrico es secretado en las células parietales del estómago, el cual activa

al pepsinógeno (secretado en las células principales del estómago) en pepsina, que

es la enzima encargada de iniciar la digestión de las proteínas. Esta enzima tiene

máxima actividad a un pH de 2 y tiende a inactivarse cuando el pH es mayor de 5; por

lo que los antiácidos (compuestos básicos) neutralizan al ácido en la luz gástrica y su

uso está indicado en la gastritis y como coadyuvante del tratamiento de la enfermedad

úlcera péptica.


Materiales

Gradilla con 10 tubos de ensayo (cartilla de colores)

Potenciómetro

Placas petri

Pipetas de 1 mL y de 2 mL

Goteros para medir las muestras

Reactivos

Soluciones de pH del 3-10

Ácido clorhídrico 0,1 N

Un frasco de antiácido en suspensión

Un tarro de leche evaporada

Una gaseosa incolora

Suero fisiológico (NaCl 0,9%)

Fluídos corporales: saliva, orina (de mujer y de hombre)

Tiras reactivas para medición de pH

Indicador universal

Agua destilada

4. PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL

4.1 Preparación de la cartilla de colores

Rotule los tubos de ensayo con los pH que se le indique.

En cada uno coloque 5 mL de las soluciones del pH correspondiente.

Añada a cada tubo 3 gotas del indicador universal y agite.

Observara una carta de colores del pH 3 hasta el pH 11.

Anote los colores observados para cada pH (tabla 1)


31

4.2 Determinación de pH de soluciones

En los tubos de ensayo coloque unos 5 mL de: orina de hombre, orina de

mujer, saliva, antiácido, leche, gaseosa incolora, NaCl 0,9%.

Inmediatamente mida el pH de cada uno de las soluciones, haciendo uso del

potenciómetro. Anote sus resultados.

Luego añada 4 gotas de indicador universal.

Compare con la carta de colores y anote el valor de los pH encentrados.

Determine la concentración de H+ y OH- de cada muestra y complete la tabla 2

4.3 Determinación del pH y capacidad de neutralización

Maque dos placas petri como A y B, luego coloque 2 mL de HCl 0,1 N en

cada uno de ellas.

Inmediatamente proceda a medir el pH de la solución con una tira reactiva.

Anote el valor del pH.

Luego en la placa petri A, adicione 1 mL de antiácido; homogenice la solución.

Medir el pH y observe el color de la solución.

En la placa petri B adicione 1 mL de leche diluida; homogenice la solución.

Medir el pH y observe el color de la solución. Complete la tabla 3

TAREA PREVIA:

Antes de realizar el laboratorio debes:

1. Definir los conceptos siguientes:

a) pH

b) solución ácida y básica

c) Indicador universal

2. Averiguar el pH de los fluidos corporales (sangre, orina, saliva)

3. Deberá llevar una caja de lápices de colores al laboratorio


32


MEDICION DEL pH

A. MEDICIONES Y CALCULOS

Cartilla de colores (1 punto)

En la tabla 1 anote el color y el pH de cada tubo de prueba:

Color

pH

Determinación de pH de soluciones (2 puntos)

Complete la tabla 2 con los siguientes datos:

Sustancia Valor de pH (potenciometro)

Color observado

Valor de pH indicador universal

Deducción de la [H

+]

Deducción de la [

-OH]

Orina de mujer

Orina de hombre

Saliva

Antiácido

Leche

Gaseosa incolora

NaCl 0.9% (suero fisiológico)

Determinación del pH y capacidad de neutralización (1 punto)

Complete la tabla 3 con los siguientes datos:

Placa Solución (2mL)

pH Adicione 1 mL de:

pH de pH

A HCl 0.1N Antiácido

B HCL 0.1N Leche


33


1. ¿Los resultados de pH obtenidos con el potenciómetro y el indicador universal son

iguales? De no ser así explique en qué considera radica la diferencia (1 punto).

2. ¿Qué ingrediente es el principal responsable del valor de pH encontrado en a) la

gaseosa b) el antiácido? Explique mediante una ecuación química (1.5 puntos)

3. Dos pacientes suyos acuden a consulta por un serio problema de gastritis. Uds.

Decide recetarle dos tipos de antiácidos diferentes a cada uno. Al primero, leche

de magnesia (Mg(OH)2) y el segundo, bicarbonato de sodio (NaHCO3) ¿Qué

ocurrirá cuando sus pacientes consuman esos antiácidos? Escriba la ecuación

estequiométrica y explique (2 puntos)

4. Escoja uno de los fluídos corporales analizados. ¿Qué posible función o

importancia para el cuerpo humano tiene el valor de pH registrado? (1.5 puntos)


34

5. La bilis y jugo pancreático que se produce en nuestro organismo tiene un pH de

aprox. 7-8. Explique porque nuestro cuerpo está diseñado de tal forma que el pH

de estos fluidos no es de 2 como en el estómago. ¿Cuál considera será el motivo?

(1 punto)

6. Brinde tres conclusiones relevantes de la práctica realizada (1 punto)


35

LABORATORIO Nº 4

RECONOCIMIENTO DE ALCOHOLES

1. COMPETENCIAS

Conoce la solubilidad de los alcoholes.

Conoce las propiedades físicas y químicas de los alcoholes

Realiza las reacciones de oxidación de los alcoholes

Identifica y diferencia los alcoholes y fenoles

2. INTRODUCCIÓN

Los alcoholes Son compuestos ternarios, (C, H, O) que contienen en su estructura el grupo

funcional hidroxilo u oxidrilo (OH-). Teóricamente resultan de sustituir uno más átomos de H

de un hidrocarburo.

Clasificación:

a. De acuerdo a la ubicación del OH-:

b. De acuerdo a la cantidad de “OH”, pueden ser:


36

c. Según el tipo de cadenas:

OXIDACIÓN DE LOS ALCOHOLES:

Una reacción de oxidación disminuye el número de enlaces C-H o aumenta el número de

enlaces C-O.

Un alcohol primario se oxida inicialmente a un aldehído. Sin embargo, la reacción no se

detiene en el aldehído. En vez de ello, el aldehído se oxida aún más a un ácido carboxílico.

Los alcoholes secundarios se oxidan a cetonas. El K2Cr2O7 es el reactivo de uso común

para oxidar alcoholes.


Materiales

20 Tubos de ensayo

01 Gradilla

02 Ganchos de madera

01 Matraz Erlenmeyer

02 Pipetas de 5 mL y 02 de 10 mL

01 Beaker de 250 mL

01 Espátula

01 bagueta


37

Reactivos

• KMnO

• K2Cr2O7

• NaOH al 10%

• HCl al 10%

• FeCl

• Metanol

• Etanol

• Propanol

• Butanol

• Iso-propanol

• Ter-butanol

Alcohol octílico

Alcohol isoamílico

• Fenol

• Agua destilada • Cloroformo


4.1 Solubilidad de alcoholes

Coloque 1 ml de agua en cada uno de los cinco tubos de ensayo. A cada tubo añádale

0.5 ml de los sgts. Alcoholes: etanol, iso-propanol, ter-butanol, alcohol isoamílico y

alcohol octílico. Agite los tubos y anote sus observaciones. Repita con cloroformo.

4.2 Reacción de oxidación de alcoholes

Coloque 1 mL de muestra problema en cada uno de los doce tubos de ensayo, según

la tabla, luego adicionar 1 mL del oxidante y 0,5 mL del catalizador; dejar en reposo 5

min y luego anotar los resultados.

4.3 Reacción de diferenciación entre alcoholes y fenoles

Coloque 1 mL. de muestra problema (alcohol, fenol) en cada uno de los dos tubos de

ensayo, luego adicionar 0,5 mL del reactivo FeCl. Agite los tubos y anote sus

observaciones.

TAREA PREVIA

Antes de realizar el laboratorio debe:

1. Mencionar 5 alcoholes primarios, 5 alcoholes secundarios y 5 alcoholes terciarios, con

sus respectivas fórmulas.

2. Sobre la oxidación de los alcoholes:

Desarrolle la oxidación de un alcohol primario, un alcohol secundario y un alcohol terciario,

indicando los productos de dicha reacción.

3. Sobre diferenciación de alcoholes. Explique en qué consiste la Reacción de fenoles con cloruro férrico.


38


ALCOHOLES

PARTE A: RESULTADOS (6.5 puntos) 4.1 Solubilidad de alcoholes (2.5 puntos)

Muestra 1: Etanol + agua

Indique su resultado:

Interpretación con justificación:

Muestra 2: Isopropanol + agua



Muestra 3: Etanol + agua



Muestra 4: Alcohol isoamílico + agua



Muestra 5: Alcohol octílico + agua




39

4.2. Reacción de alcoholes (3 puntos – 1.2 por el llenado del cuadro y 1.8 por la justificación)

Justifique sus resultados:

4.3 Reacción de diferenciación (1 punto)

Muestra 1: Etanol + FeCl3



Muestra 2: Isopropanol + FeCl3




40

B. DISCUSIONES Y CONCLUSIONES (5.5 puntos)

1. Indique las diferencias en cuanto a solubilidad que presentan los alcoholes.

Fundamente su respuesta (1 punto).

2. Escriba la ecuación de al menos dos reacciones de oxidación realizadas en la

presente práctica (2 puntos).

3. Indique y fundamente la reacción de diferenciación realizada en la práctica (1.5

puntos)

4. ¿Las reacciones químicas realizadas son REDOX o NO REDOX? Fundamente su

respuesta (1 punto)


41

LABORATORIO Nº 5

RECONOCIMIENTO DE ALDEHÍDOS Y CETONAS

1. COMPETENCIAS

• Determina el comportamiento físico y químico que presentan los aldehídos y

cetonas.

• Realiza las reacciones de oxidación y diferenciación con los aldehídos y cetonas.

2. INTRODUCCIÓN

Los aldehídos y cetonas, son compuestos orgánicos que presentan en su estructura

al grupo funcional:

CARBONILO: C=O

ALDEHÍDOS.- Son compuestos en cuyas moléculas el grupo funcional carbonilo, se

encuentra unido a un átomo de Hidrógeno y un Carbono. Responden a la formula

general:

R - CHO

En donde R puede ser también un grupo Alquilo ( Al) ó Arilo (Ar). Los aldehídos se

pueden formar a partir de Alcoholes, por acción de agentes Oxidantes como: 02, Cu,

Ag, K2Cr2O7, KMnO4

.

CETONAS.- Son compuestos en cuyas moléculas el grupo funcional carbonilo, se

encuentra unido a dos átomos de Carbono. Responden a la fórmula general:

R – CO – R´

En donde R y R´ pueden ser también un grupo Alquilo (Al) ó Arilo (Ar). Las cetonas

se obtienen por oxidación de los alcoholes secundarios.


Materiales:

• 01 gradilla

• 12 tubos de ensayo

• 5 pipetas de 5 ml

• 5 pipetas de 10 ml

• 2 beackers


42

Reactivos:

• Agua destilada

• Formaldehido

• Acetona

• Reactivo de Tollens

• Reactivo de Fehling

• Reactivo de Schiff

• Lugol

• Glucosa, maltosa, sacarosa, lactosa y almidón (al 1%)


4.1 REACCIONES DE CARACTERIZACIÓN CON REACTIVO DE SCHIFF

*El reactivo de Schiff identifica el grupo carbonilo.

Coloque 2 ml de acetona en un tubo de ensayo y adicione 1 ml del reactivo De

Schiff. Proceda de igual forma con el formaldehido. Observe y anote sus resultados.

4.2. REACCIONES DE OXIDACIÓN

Los aldehídos y las cetonas tienen comportamiento químico diferente: los aldehídos

se oxidan fácilmente formando ácidos; en cambio las cetonas no se oxidan.

a. Con el reactivo de Fehling:

Coloque 2ml de glucosa en un tubo de ensayo y adicione 2 ml del reactivo de

Fehling (A y B). Llevar a baño maría por 5 minutos. Observe y anote sus resultados.

Realice el mismo procedimiento con maltosa, lactosa, sacarosa y almidon

b. Con el reactivo de Tollens:

Coloque 2ml de glucosa en un tubo de ensayo y adicione 2 ml del reactivo de

Tollens. Llevar a baño maría por 5 minutos. Observe y anote sus resultados.

Realice el mismo procedimiento con el maltosa, lactosa, sacarosa y almidón.

4.3. REACCION DEL LUGOL

Poner en un tubo de ensayo unos 3 ml de glucosa, maltosa, lactosa, sacarosa y

almidón. Añadir unas gotas de lugol. Si la disolución del tubo de ensayo se torna

de color azul-violeta, la reacción es positiva.


43

Una vez que tengas el tubo de ensayo con el almidón y el lugol, calienta el tubo a la

llama y déjalo enfriar.

TAREA PREVIA:

Antes de realizar el laboratorio debe:

1. ¿Qué diferencia existe entre un azúcar reductor y un azúcar no reductor? Brinde

un ejemplo de cada uno.

2. ¿Cómo se prepara el reactivo de Molisch? ¿El alfa-naftol del reactivo de Molisch,

con que producto reacciona para dar el color púrpura?

3. Mencione y busque el fundamento (reacción) de las pruebas empleadas en el

laboratorio para la identificación de azúcares reductores?


44


RECONOCIMIENTO DE ALDEHIDOS Y CETONAS

A. RESULTADOS(4.5. puntos)

1. Caracterización con el reactivo de Schiff (1 punto):

Muestra 1: Acetona + Reactivo de Schiff



Muestra 2: Formaldehido+ Reactivo de Schiff



2. Reacción de oxidación

2.1 Reactivo de Fehling (1 punto)

Interpretación de resultados con justificación.


45

2.2 Reactivo de Tollens (1 punto)


3. Reconocimiento con Lugol (1.5 puntos)


B. DISCUSIONES Y CONCLUSIONES (7.5 puntos)

1. Indique las características y reacciones que pueden realizar los azúcares

reductores. Menciona como mínimo tres ejemplos (1.5puntos)


46

2. ¿Por qué la sacarosa no es un azúcar reductor? Fundamente tu respuesta (1.5

puntos)

3. Explique el fundamento de una de las dos reacciones realizadas en la práctica del

día de hoy (1.5 puntos).

4. Si la fructosa es una cetosa, explique por qué da positivo a la prueba de Fehling y

Tollens (1.5 puntos)

5. Explique brevemente en qué consiste la prueba con lugol. Mencione porque solo

hay reacción con el almidón. ¿Qué sucede si se calienta el tubo de ensayo al

mechero por unos minutos? (1.5 puntos)


LABORATORIO Nº 6

SOLUCIONES AMORTIGUADORAS

1. COMPETENCIAS

Comprueba la capacidad amortiguadora de las soluciones preparadas en el laboratorio.

Utiliza la ecuación de Henderson-Hasselbach para deducir el grado de ionización de los amortiguadores fisiológicos en la sangre, y de los fármacos a nivel gastrointestinal.

2. INTRODUCCIÓN

Los amortiguadores, tampones o buffers, son soluciones que resisten los cambios de concentración de iones hidrogeniones o de pH, aún cuando se le agregan pequeñas cantidades de un ácido o de una base fuerte. Las soluciones amortiguadoras estan constituídas por un ácido o una base débil y su respectiva sal conjugada; tal como se muestra en la siguiente tabla:

Amortiguador formado pKa Rango de

pH

1. Ácido débil Base conjugada

Amortiguador bicarbonato

Ácido carbónico: H2CO3 Bicarbonato de sodio: NaHCO3 6,36 5,5 - 7,5

Amortiguador fosfato

Fosfato diácido de potasio

KH2PO4

Fosfato ácido de potasio:

K2HPO4

7,21 5,8 - 8,0

Amortiguador acetato

Ácido acético:

CH3-COOH

Acetato de sodio: CH3-COONa 4,76 3,7 - 5,8

Amortiguador borato

Ácido bórico: H3BO3 Borato de sodio: Na3BO3 9,24 8,2 - 10,2

2. Base débil Ácido conjugado

Amortiguador de amonio

Hidróxido de amonio:

NH4OH

Cloruro de amonio: NH4Cl 9,24 8,0 - 10,0


48


Materiales Gradilla con 10 tubos de ensayo (cartilla de colores) Potenciómetro Pipetas de 1 mL y de 2 mL Goteros para medir las muestras

Reactivos Solución ácido acético 0,5 M Solución de acetato de sodio 0,5 M Solución hidróxido de amonio 0,5 M Solución de cloruro de amonio 0,5 M HCl 0,5 M NaOH 0,5 M Suero fisiológico (NaCl 0.9%) Gaseosa incolora Indicador universal Agua destilada


4.1 Preparación de amortiguadores

Marcar cinco tubos con los números del 1 al 5, luego adicionar las soluciones que se indican:

Tubo Adicionar en cada tubo:

1 Amortiguador acetato

5 mL de CH3COOH 0,5M 5 mL de CH3COONa 0,5M

2 Amortiguador de amonio

5 mL de NH4OH 0,5M 5 mL de NH4Cl 0,5M

3 Solución de H2O destilada

10 mL de H2O destilada

4 Suero fisiológico

10 mL de solución de cloruro de sodio al 0,9%

5 Gaseosa

10 mL gaseosa incolora


49

4.2. Capacidad amortiguadora Para comprobar la capacidad amortiguadora de las siguientes soluciones se deberá adicionar los reactivos que se indican en la siguiente tabla; medir el pH en el potenciómetro cuando corresponda:

Tubo Nº

Paso 1 Medir el pH

inicial

Paso 2 Adicionar HCl 0,5M

Paso 3 Volver a

medir el pH

Paso 4 Adicionar

NaOH 0,5M

Paso 5 Medir el pH final

1 I gota II gotas

2 I gota II gotas

3 I gota II gotas

4 I gota II gotas

5 I gota II gotas

TAREA PREVIA: Antes de realizar el laboratorio debe:

1. Definir los conceptos siguientes: a) Acido y base débil y fuerte b) Solución amortiguadora c) Ecuación de Henderson-Hasselbalch

2. Investigar cuáles son los principales sistemas amortiguadores del organismo humano.


50


SOLUCIONES AMORTIGUADORAS

A. MEDICIONES Y CÁLCULOS

1. Usando la ecuación de Henderson-Hasselbalch determine el pH teórico de la solución buffer acetato que preparó (1 punto).

2. Complete la tabla 2 con los siguientes datos (1 punto):

Sustancias Medición de

pH inicial

Valor del pH luego de adicionar

HCl 0,5M (H+)

NaOH 0,5M (–OH)

Buffer acetato 0,5 M

Buffer de amonio 0,5 M

Agua destilada

NaCl 0,9% (suero fisiológico)

Gaseosa

3. En la solución amortiguadora de pH ácido que preparó, indique lo siguiente

(0.5 puntos):

Nombre del amortiguador

Constituyentes del amortiguador

Ácido débil Base del ácido débil

4. En la solución amortiguadora de pH básico que preparó, indique lo siguiente (0.5 puntos):

Nombre del amortiguador

Constituyentes del amortiguador

Base débil Sal de la base débil


51


1. ¿Por qué el pH de una solución amortiguadora no varía al añadir cantidades pequeñas de un ácido o una base? Justifique (2 puntos)

2. ¿Qué entiende por solución patrón? En el experimento realizado, ¿qué ejemplos encuentra y por qué?(1 punto)

3. La afirmación “el suero fisiológico es un buffer”, ¿es verdadera o falsa? Explique (1 punto)

4. Según su investigación previa al laboratorio, describa dos de los sistemas amortiguadores de la sangre (2 puntos)


52

C. PREGUNTAS ADICIONALES (En preparación para el Examen Final) 1. Empleando la ecuación de Henderson-Hasselbalch, calcule el pH teórico de la solución buffer de acetato después de añadir el HCl y compárelo con el pH

teórico que calculó en la pregunta A.1. (Dato adicional: 1 gota = 50µl) (2ptos)

2. Empleando la ecuación de Henderson-Hasselbalch, calcule el pH teórico de la solución buffer de amonio después de añadir el HCl. (1pto)

3. Calcule el pH teórico del agua destilada después de añadir el HCl y compárelo con los valores obtenidos en las dos preguntas anteriores. (1pto)

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ME65_Guía Lab 2013-2