Morfología Bacteriana

    Coco: esférica; pueden agregarse en pares (diplococo), en cadena (estreptococo), en racimos (estafilococo), en tétrada o sarcina.Bacilo: en forma de bastoncillo; puede tender a ser esférico (cocobacilo) o alargado (bacilo fusiforme).Espirilo: en forma helicoidalVibrioEspiroqueta: en forma de tirabuzón

     

OTRAS TÉCNICAS BACTERIOLÓGICAS

 

Tinción de Gram

Primer colorante (cristal violeta): básico, en contacto con las bacterias cargadas negativamente reacciona coloreándolas. Solución mordiente (Yodo de Gram): fija las tinciones y aumenta la afinidad entre el colorante y las bacterias. Agente decolorante (alcohol-acetona): disolvente orgánico que se utiliza como lavado para eliminar colorante no fijado.Colorante de contraste (safranina): colorante básico de distinto color al primer colorante.

Bacterias Gram (+) se tiñen de púrpura por el cristal violeta y retienen la coloración por su gruesa capa de peptidoglicanos.

Bacterias Gram (-) perderán la coloración inicial del cristal violeta por su delgada capa de peptidoglicanos y se teñirán de rojo debido a la safranina. 

     

OTRAS TÉCNICAS BACTERIOLÓGICAS

 

Tinción de Anthony

Las cápsulas no se tiñen normalmente con colorantes básicos como el cristal violeta o la safranina. Tinción negativa de cápsulas en que la leche litmus se tiñe con violeta cristal como contraste de un fondo morado con el halo transparente de la cápsula incolora.

OTRAS TÉCNICAS BACTERIOLÓGICAS

 

Tinción de Möeller

Las esporas permiten a las bacterias pasar a un estado latente en condiciones ambientales adversas. Su principal componente es Ca2+ fijado a ácido dipicolínico. El calor después de la tinción con carbol-fuscina con permite que rompa la estructura que protege la espora para que así pueda penetrar el colorante. Con el lavado de agua se retira todo tinte que se adhirió a la bacteria, para después teñirse con azul de metileno.Resalta de color rojo la espora y de color azul, la bacteria.

     

OTRAS TÉCNICAS BACTERIOLÓGICAS

 

Método de estrías y vertido

El método de estrías es el más utilizado para el aislamiento de colonias bacterianas. Método rápido y simple de agotamiento progresivo y continuo del inóculo sobre un medio sólido para obtener un número reducido de bacterias distribuidas individualmente sobre la superficie de la placa de Petri que al incubar, cada una originará una colonia.  El método de vertido es el más utilizado para el recuento bacteriano, es importante el conteo de colonias para conocer la velocidad con que se reproducen y calcular el número de bacterias por volumen de solución (UFC: unidades formadoras de colonias). 

   

OTRAS TÉCNICAS BACTERIOLÓGICAS

 

Antibiograma Método de difusión en plato

La bacteria inoculada se enfrenta sobre la superficie del medio de agar a una solución antibiótica absorbida en discos de papel de filtro o en pastillas. El medio de cultivo más frecuentemente empleado es el de Müeller-Hinton. Su pH debe estar entre 7,2-7,4 y grosor entre 4-6 mm. El inóculo bacteriano debe tener una turbidez similar al 0,5 de la escala de McFarland y la inoculación se debe efectuar con hisopo de algodón estéril. La lectura se realiza entre 18-24 h, adecuado únicamente para bacterias patógenas de rápido crecimiento.

  

OTRAS TÉCNICAS BACTERIOLÓGICAS

 

Antibiograma Método de dilución en plato

 

Los métodos de dilución pueden realizarse en medio sólido (en agar) o en medio líquido (en caldo). La adaptación a microplatos de 96 pocillos utilizando volúmenes de 50-200 uL permite testar un gran número de antibióticos de forma sencilla, rápida y económica. 

OTRAS TÉCNICAS BACTERIOLÓGICAS

 

Antibiograma E-test

Técnica que combina los métodos de difusión en agar y dilución para determinar la CIM. La sistemática es similar al método de difusión en agar pero en lugar de discos utiliza tiras de Etest. Estas tiras contienen un gradiente del antimicrobiano en la superficie inferior que difunde en el agar estableciendo un gradiente continuo del mismo a lo largo de la tira. Después de la incubación se forma una zona elíptica de inhibición del crecimiento y la CMI corresponde con el punto donde el área de inhibición del crecimiento intersecciona con la tira. CIM (concentración inhibitoria mínima): menor concentración de antimicrobiano capaz de inhibir el desarrollo de una cepa bacteriana dada. CBM (concentración bactericida mínima): menor

  

 

     

concentración de antimicrobiano capaz de destruir una cepa

OTRAS TÉCNICAS BACTERIOLÓGICAS

 

Esta ha sido una producción más del Club de Informática Médica y Telemedicina, trabajando en pro de la educación médica continua, caminando a mano de la tecnología.

 

Si quiere emitir sus comentarios o sugerencias puede escribirnos a: kativonhe@yahoo.comAgradeceríamos mucho su cooperación enviándonos fotos adicionales u otra información que desea agregar. Última actualización: febrero 2005

 

 

 COCOS GRAM (+) PIÓGENOS DE IMPORTANCIA MÉDICA

Morfología de cocos con tinción de Gram Prueba de catalasa Prueba de manitol sal Prueba de coagulasa Prueba de nitrato

Prueba de hemólisis en agar sangre      Alpha-hemolíticos          Antibiograma con optoquina          Prueba de sales biliares     Beta-hemolíticos          Antibiograma con bacitracina          Prueba de CAMP     Gamma-hemolíticos          Prueba de bilis esculina

 

Morfología de cocos con tinción de Gram

Los cocos Gram positivos pueden ser:Staphylococcus o Streptococcus

  

OTRAS PRUEBAS PARA COCOS GRAM (+)

 

Prueba de manitol sal para Staphylococcus

Medio selectivo y diferencial para el aislamiento e identificación de Staphylococcus aureus. NaCl 7,5% le proporciona lo selectivo ya que sólo estos microorganismos osmotolerantes u osmófilos pueden multiplicarse en él. Manitol es el único azúcar fermentado por las cepas patógenas de este género bacteriano. La producción de ácidos proveniente de la fermentación del manitol es detectada por el viraje del indicador de pH presente en el medio (rojo fenol) a amarillo. Staphylococcus epidermidis no fermenta el manitol, dará lugar a colonias pequeñas rodeadas de un halo púrpura. 

 

OTRAS PRUEBAS PARA COCOS GRAM (+)

 

 Prueba de catalasa distinguir Staphylococcus de Streptococcus

 Bacterias que viven en ambientes aerobios requieren de catalasa para convertir el peróxido de hidrógeno en agua y oxígeno molecular.Es positiva la prueba cuando se ponen en contacto una bacteria con actividad catalasa con H2O2 3% y se producen burbujas de oxígeno. Se emplea para diferenciar el género Staphylococcus (catalasa positivo) del género Streptococcus (catalasa negativo).

     

 

OTRAS PRUEBAS PARA COCOS GRAM (+)

 

Prueba de coagulasa para Staphylococcus

 Permite diferenciar Staphylococcus aureus (coagulasa positivo) del resto de especies de Staphylococcus (coagulasas negativos). La técnica en tubo detecta coagulasa libre y ligada. Mecanismo de acción de la coagulasa libre: procoagulasa (enzima extracelular bacteriana) reacciona con un factor activador presente en el plasma sanguíneo similar a la protrombina, dando lugar a un complejo análogo a la trombina (coagulasa propiamente dicha) que reacciona con fibrinógeno formando un coágulo de fibrina en ausencia de Ca2+.  La coagulasa ligada o factor de agregación actúa directamente sobre el fibrinógeno y lo convierte en fibrina. No requiere la presencia de activadores plasmáticos.

     

OTRAS PRUEBAS PARA COCOS GRAM (+)

 

Prueba de hemólisis en agar sangre

Detecta la presencia de hemolisina, enzima que permite la clasificación de los Streptococcus en alfa (hemólisis parcial, incompleta que torna color verdoso), beta (hemólisis total) y gamma hemolíticos (no existe hemólisis) .Muchas otras bacterias, aparte de los Streptococcus, pueden tener esta enzima como B. megaterium; se usa el cultivo para demostrar el grado de hemólisis (hemólisis beta) en la cual se puede observar claramente por detrás de la siembra.

   

OTRAS PRUEBAS PARA COCOS GRAM (+)

 

Antibiograma con optoquina para Streptococcus alfa-hemolíticos

 Permite diferenciar Streptococcus pneumoniae que es sensible a optoquina (etilhidroxicupreína, Taxo P) de otras especies de Streptococcus alfa-hemolíticos, en especial del grupo viridans que son resistentes.

OTRAS PRUEBAS PARA COCOS GRAM (+)

 

Antibiograma con bacitracina para Streptococcus beta-hemolíticos

 

Permite diferenciar estreptococos beta-hemolíticos del grupo A (S. pyogenes), que son sensibles a bacitracina, del resto de estreptococos beta-hemolíticos que son resistentes. Solo un porcentaje muy pequeño de Streptococcus de los grupos B, C y G son sensibles a la bacitracina (Taxo A).

OTRAS PRUEBAS PARA COCOS GRAM (+)

 

Prueba de CAMP para Streptococcus beta-hemolíticos

  Los estreptococos del grupo B (S. agalactiae) producen una proteína difusible y termoestable (factor CAMP) que aumenta la beta-hemólisis de Staphylococcus aureus. S. aureus (sembrado desde la parte superior hasta la parte inferior de la placa) produce esfingomielinasa C que se puede unir a las membranas de los eritrocitos. Cuando son expuestas al factor CAMP del grupo B, las células sufren hemólisis.     

OTRAS PRUEBAS PARA COCOS GRAM (+)

 

Prueba de bilis esculina para Streptococcus gamma-hemolíticos

Los enterococos crecen en presencia de NaCl 6,5%, toleran las sales biliares y pueden hidrolizar la esculina. Estas propiedades se pueden usar para distinguir los enterococos de otros cocos Gram (+) catalasa-negativos. En la prueba positiva, el tubo torna de color chocolate oscuro, característico al desdoblar la bilis esculina. Enterococcus faecalis es la antigua categoría taxonómica para Streptococcus faecalis.  

 

OTRAS PRUEBAS PARA COCOS GRAM (+)

 

 BACILOS GRAM (+) AEROBIOS

Cultivo de Bacillus en medio agar almidón Tinción de Gram y Möeller a Bacillus Prueba SIM Prueba de glucosa y salicina Prueba de gelatinasa Prueba de leche litmus

Prueba de amilasa

 

Cultivo de Bacillus en medio agar almidón

   

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (+) AEROBIOS

 

Tinción de Gram y Möeller a Bacillus

 

 

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (+) AEROBIOS

 

Prueba SIM

  En el medio de SIM se mide la motilidad de las bacterias, es positiva cuando se existe turbidez en el medio pero negativo, cuando se observa la penetración del inóculo.

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (+) AEROBIOS

 

Prueba de glucosa y salicina

 

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (+) AEROBIOS

 

Prueba de gelatinasa

Permite medir la presencia de gelatinasa. Si luego de cierto tiempo de refrigeración, la gelatina sigue en estado líquido, es indicativo de que la prueba resultó positiva y por tanto la bacteria tiene gelatinasa al licuar el medio.

En este caso, el B. subtilis no posee la enzima gelatinasa, y por ende, el medio se solidificó en refrigeración. 

     

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (+) AEROBIOS

 

Prueba de leche litmus

 

   

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (+) AEROBIOS

 

Prueba de amilasa

Utilizando agar almidón, se siembra el B. megaterium en cuatro puntos equidistantes. Se deja incubar, y luego para definir si hubo o no consumo de almidón, y por ende presencia de amilasa en la bacteria, se añade yodo de Gram. La prueba positiva muestra un halo incoloro en donde hubo crecimiento. 

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (+) AEROBIOS

Esta ha sido una producción más del Club de Informática Médica y Telemedicina, trabajando en pro de la educación médica continua, caminando a mano de la tecnología.

 

Si quiere emitir sus comentarios o sugerencias puede escribirnos a: kativonhe@yahoo.comAgradeceríamos mucho su cooperación enviándonos fotos adicionales u otra información que desea agregar. Última actualización: febrero 2005

 

 MICROORGANISMOS TRANSMITIDOS SEXUALMENTE Neisseria gonorrhoeae

      Tinción de Gram      Agar chocolate Thayer Martin

Treponema pallidum       Tinción argéntica de Fontana

Candida albicans     Tinción de Gram en raspado vaginal

 

Neisseria gonorrhoeae con tinción de GramEs el agente etiológico de la gonorrea, se trata de cocos negativos que se disponen en pares (diplococos) cuyas caras adyacentes están aplanadas. No son móviles ni forman endosporas. Son oxidasa positivo y la mayoría de este género producen catalasa. N. gonorrhoeae es una bacteria exigente, necesita medios de cultivo complejos para crecer y se puede ver afectado de manera adversa por la desecación y por los ácidos grasos. La temperatura óptima de crecimiento es de 35 a 37ºC adicionado una atmósfera suplementada con CO2.

 

OTROS MICROORGANISMOS TRANSMITIDOS SEXUALMENTE

 

Medio de agar chocolate Thayer Martin para Neisseria gonorrhoeae

Medio enriquecido preparado con un medio base tal como agartripticasa (TSA) o agar infusión cerebro corazón (BHIA) suplementado con sangre animal desfibrinada y calentada a 80ºC durante 10 min. A veces el calentamiento excesivo destruye el factor V (NAD), por lo que se suele adicionar este factor. Es un medio adecuado para el cultivo de N. gonorrhoeae varias especies de Haemophilus, entre otras bacterias.  

     

OTROS MICROORGANISMOS TRANSMITIDOS SEXUALMENTE

 

Treponema pallidum con tinción argéntica de FontanaEs el agente etiológico de la sífilis, se trata de una bacteria con morfología de espiroqueta delgada y en forma de espiral que no puede crecer en cultivos acelulares. Las espiroquetas son demasiado delgadas como para ser vistas al microscopio óptico en las muestras teñidas con Gram o con Giemsa. Sin embargo, las formas móviles se pueden ver con un microscopio de campo oscuro o mediante la tinción con anticuerpos específicos antitreponema marcados con colorantes fluorescentes.

   

OTROS MICROORGANISMOS TRANSMITIDOS SEXUALMENTE

 

Candida albicans con tinción de Gram en raspado vaginal

Es el agente etiológico de la candidiasis, no es una bacteria sino una levadura que ante la tinción de Gram es positiva. Con una excepción, una característica morfológica llamativa de las levaduras del género Candida es que multiplican formando blastosporas, pseudohifas e hifas septadas.

Ver ATLAS VIRTUAL DE MICOLOGÍA (Levaduras)   

OTROS MICROORGANISMOS TRANSMITIDOS SEXUALMENTE

Esta ha sido una producción más del Club de Informática Médica y Telemedicina, trabajando en pro de la educación médica continua, caminando a mano de la tecnología.

 

Si quiere emitir sus comentarios o sugerencias puede escribirnos a: kativonhe@yahoo.comAgradeceríamos mucho su cooperación enviándonos fotos adicionales u otra información que desea agregar. Última actualización: febrero 2005

 

 

 BACILOS GRAM (-) FERMENTADORES Y NO FERMENTADORES

Tinción de Gram con Bacilos Gram (-) Medio de agar MacConkey Medio de agar SS (Salmonella, Shigella) Medio de agar EMB (eosin methylene blue) Medio con citrato de Simmons Prueba de urea Prueba SIM (sulfuro indol motilidad) Medio con TSI (triple sugar iron) Prueba de fermentación de azúcares Medio MRVP (rojo metilo Voges-Proskauer) Prueba de fenilalanina Prueba de oxidasa

Sistema API para enterobacterias

 

Tinción de Gram con Bacilos Gram (-)

   Las enterobacterias son bacilos cortos gram negativos no esporulados, que pueden o no tener motilidad. Son anaerobios facultativos o anaeróbicos. 

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (-)

 

Medio de agar MacConkey

Medio selectivo por contener sales biliares y violeta cristalque inhiben el crecimiento de bacterias no entéricas. También es un medio diferencial porque contiene lactosa y un indicador de pH (rojo neutro).Las bacterias capaces de fermentar lactosa producirán un cambio en el pH del medio por liberación de productos ácidos. Como consecuencia sus colonias aparecerán de color fucsia/violeta, contrastando con la coloración amarillenta de las colonias incapaces de fermentar la lactosa.  

 

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (-)

 

Medio de agar SS

Medio de cultivo selectivo para Salmonella y Shigellacompuesto por sales biliares que inhiben el crecimiento de coliformes, lactosa y rojo neutro (indicador de pH). Las colonias fermentadoras de lactosa producirán ácidos y cambiará el color del medio a rosa. Como Shigella y Salmonellautilizan este azúcar forman colonias transparentes. El tiosulfato es la fuente de azufre para la producción de ácido sulfhídrico de las bacterias sulfato-reductoras. Este ácido reacciona con la sal de hierro y se forma sulfuro de hierro de color negro. Las colonias de Salmonella se observan transparentes con un precipitado negro en el centro.

   

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (-)

 

Medio de agar EMB (eosin methylene blue)

Contiene sucrosa y lactosa. Utiliza como inhibidor e indicador a eosina azul de metilenoPrueba negativa si se mantiene igual color al medio (rojo), indicativo de la no fermentación de azúcares.

Escherichia coli produce un color verde metálico característico para esta prueba positiva.

   

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (-)

 

Medio con citrato de Simmons

Este medio indica la capacidad de las bacterias de metabolizar el citrato. Contiene citrato como única fuente de carbono, de amonio como única fuente de fosfato y azul de bromotimolcomo como indicador de pH. Únicamente las bacterias capaces de metabolizar citrato podrán multiplicarse en este medio, al utilizar los fosfatos presentes liberan iones amonio (básicos) que junto con la eliminación de citrato (ácido) generará una fuerte basificación del medioserá aparente con un cambio de color del indicador de pH de verde a azul.

 

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (-)

 

Prueba de urea

El indicador de pH utilizado es el rojo fenol. Esta prueba detecta la presencia de la enzima ureasa metabolismo bacteriano, la cual al hidrolizar urea forma productos amoniaco que alcalinizan el medio y se evidencia con el cambio de color del medio desde un amarillo pálido hasta un fucsia.

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (-)

 

Prueba SIM (sulfuro indol motilidad)

La prueba de indol se emplea para detectar la presencia de la enzima triptofanasa en bacterias, que degrada el aminoácido triptófano a indol. Al añadir al medio SIM el reactivo de Kovacks o de Erlich que contiene p-dimetilaminobenzaldehído, reacciona tanto con el indol como con el triptófano produciendo compuestos de color rojizoevitar la interferencia del triptófano, el reactivo está disuelto en alcohol isoamílico inmiscible en agua. A diferencia del triptófano, el indol es soluble en el alcohol y sólo este compuesto reaccionará con el aldehído produciendo el anillo coloreadocaracterístico de esta prueba.

 

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (-)

 

Medio con TSI (triple sugar iron)

Medio diferencial complejo (de color rojo) compuesto por 3 azúcares: lactosa, 10% sucrosa y 1% dextrosa y un ligador que es en este caso el hierro. La siembra se realiza tanto en la superficie del agar (aerobiosis) como en la profundidad de éste (anaerobiosis).

Medio K (alcalino) de color rojo. Medio A (ácido) de color amarillo.K/ASi la bacteria metaboliza sólo la glucosa: en la superficie la utilizará por vía respiratoria, y donde la tensión de oxígeno disminuya lo suficiente, empleará una pequeña proporción por vía fermentativa. Esto generará una pequeña cantidad de ácidos que serán neutralizados por las aminas derivadas de la decarboxilación oxidativa de las proteínas. Como resultado, el medio mantendrá su color rojo en la superficie, al no haber cambiado de pH. Por el contrario, las bacterias crecidas en la profundidad emplearán desde el primer momento la glucosa por vía fermentativa, generando ácidos que no serán neutralizados, provocándose un descenso del pH y el color del medio en el fondo del tubo cambiará a amarillo.A/ASi la bacteria, además fermenta lactosa: los ácidos producidos modificarán también el pH de la superficie del medio. Las aminas no son capaces de neutralizar la cantidad de ácidos producidos en esta fermentación, ya que la lactosa se encuentra en el medio a mayor concentración que la glucosa. El color del medio en la superficie cambiará a amarillo.K/KSi la bacteria es aerobia estricta (no fermentadora), el medio permanece de color rojo. Los azúcares son respirados, degradándose completamente hasta CO2, que se elimina y no modifica el pH. A/A(g)aparición de burbujas, rotura o elevación del agar del fondo del tubo. K/A(H2S)aparición de un precipitado de color negro en el fondo del tubo. Algunas bacterias respiradoras anoxobiónticas son capaces de emplear el tiosulfato sódio como aceptor final de electrones en la cadena transportadora. Este compuesto se reduce a ácido sulhídrico que reacciona con el hierro Fe2+ presente en el medio formando un precipitado negro de sulfuro de hierro.

 

   

   

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (-)

 

Prueba de fermentación de azúcares

 

 

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (-)

 

Medio MRVP (rojo metilo Voges-Proskauer)

  Las enterobacterias son anaerobios facultativos que utilizarán la glucosa en 2 fases: 1. Metabolismo aeróbico (respiración oxibióntica) consumiendo rápidamente el oxígeno del medio 2. Metabolismo anaeróbico (fermentación) que puede ser de 2 tipos dependiendo de los productos finales obtenidos:

     2.1 fermentación ácido-mixta: productos finales son ácidos orgánicos(fórmico, acético, láctico y succínico) y etanol     2.2 fermentación butilén glicólica: productos finales son compuestos neutros como el butanodiol y el etanol, produciéndose acetoína como intermediario.

La liberación de ácidos orgánicos  generará un acusado descenso del pH que podrá ser detectado añadiendo al medio un indicador de pH como el rojo de metilo (rojo a pH 4.0).Si la fermentación que se ha llevado a cabo produce acetoína puede ser detectada añadiendo al medio KOH y alfa-naftol que reaccionarán con este compuesto produciendo rojo característico.

  

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (-)

 

Prueba de fenilalanina

En este medio, el aminoácido presente es la fenilalaninaempleado para determinar la presencia de la enzima fenilalanina desaminasa en bacterias. La acción de esta enzima se evidencia por la aparición en el medio del producto resultado (ácido fenilpirúvico) que se detecta mediante adición de cloruro férrico, resultando un compuesto de coloración verde oscuro.

 

   

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (-)

 

Prueba de oxidasa

 

Se basa en la capacidad del colorante tetrametil-p-fenilendiamonio de oxidarse al ceder electrones al citocromo c en su presencia, produciendo formas coloreadas (azul/morado). Permite diferenciar el grupo Enterobacteriaceae (que carecen de citocromo c) del género Pseudomonas (que posee citocromo c).

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (-)

 

Sistema API para enterobacterias

    Sistema que permite obtener todos los resultados de las mismas pruebas realizadas arriba, de manera simultánea, rápida y con una menor cantidad de muestras y reactivos.

OTRAS PRUEBAS PARA BACILOS GRAM (-)

Esta ha sido una producción más del Club de Informática Médica y Telemedicina, trabajando en pro de la educación médica continua, caminando a mano de la tecnología.

 

Si quiere emitir sus comentarios o sugerencias puede escribirnos a: kativonhe@yahoo.comAgradeceríamos mucho su cooperación enviándonos fotos adicionales u otra información que desea agregar. Última actualización: febrero 2005

 

MICROBIOLOGÍA DEL AGUA Y DE LOS ALIMENTOS

Plato Petrifilm     Aerobic count plate     Coliform count plate

Agua peptorada

Homogenizador de muestra Stomacher

Estudio de líquido Colilert

 

Petrifilm Aerobic count plate

Es similar a un medio de cultivo en agar, se observan pequeñas colonias rojas de E. coli y es muy útil para realizar el conteo de colonias.

 

MICROBIOLOGÍA DEL AGUA Y DE LOS ALIMENTOS

 

Petrifilm Coliform count plate

 

 

MICROBIOLOGÍA DEL AGUA Y DE LOS ALIMENTOS

 

Homogenizador de muestra Stomacher

   

MICROBIOLOGÍA DEL AGUA Y DE LOS ALIMENTOS

 

Estudio de líquido Colilert

En la extrema derecha se puede observar la coloración fluorescente que responde a la presencia de E. coli en la muestra analizada. 

MICROBIOLOGÍA DEL AGUA Y DE LOS ALIMENTOS

 

Esta ha sido una producción más del Club de Informática Médica y Telemedicina, trabajando en pro de la educación médica continua, caminando a mano de la tecnología.

 

Si quiere emitir sus comentarios o sugerencias puede escribirnos a: kativonhe@yahoo.comAgradeceríamos mucho su cooperación enviándonos fotos adicionales u otra información que desea agregar. Última actualización: febrero 2005