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TEMA: CINETICA DEL CRECIMIENTO MICROBIANO
CURSO: biotecnología de los pai
ALUMNO:
MEDINA GARCIA SANDRAminchola gutierrez Rosmer edgarVILLANUEVA CHUNQUE YONEL
DOCENTE: MsC. Guillermo linares lujan
CICLO: IX
TRUJILLO – PERÚ
2011
OBTENCION DE PREPARADO ENZIMATICO CRUDO
I. INTRODUCCIÓN
La tecnología enzimática tiene como objetivo la superación de todos aquellos inconvenientes que parecen retrasar la aplicación de las enzimas en estos procesos a escala industrial, las enzimas son proteínas cuya función biológica es catalizar las reacciones que suceden en las células. Esta área tiene aplicaciones desde tiempos remotos como la fermentación, actualmente en diferentes industrias a diferentes niveles, ya que implica la utilización de sistemas enzimáticos diversos que optimizan el procesamiento en la obtención de detergente, aditivos alimenticios, productos químicos y farmacéuticos. La tecnología enzimática se presenta como alternativa biotecnológica basada en que las industrias desarrollen productos de calidad homogénea, aprovechen óptimamente sus materias primas, aceleres sus procesos de producción, minimicen desperdicios y disminuyan el deterioro del medio ambiente.Las enzimas son catalizadores de origen biológico que parecen cumplir muchos de los requisitos necesarios para impulsar esta nueva industria química. Son catalizadores muy activos en medios acuosos y en condiciones muy suaves de temperatura, presión, pH, etc. Son catalizadores muy específicos: pueden modificar un único substrato en una mezcla de substratos muy similares e incluso pueden discernir entre dos isómeros de una mezcla racémica de un compuesto quiral, Son catalizadores muy selectivos: pueden modificar un único enlace o un único grupo funcional en una molécula que tenga varias posiciones modificables.A pesar de esas excelentes propiedades catalíticas, las enzimas han ido evolucionando a través de los siglos para cumplir mejor las necesidades fisiológicas de los seres vivos y no para ser utilizadas en sistemas químicos industriales. Así, las enzimas son catalizadores solubles, generalmente muy inestables y que sufren inhibiciones por substratos y productos. Además, las enzimas muchas veces no poseen todas las propiedades ideales (actividad, selectividad, etc.) cuando queremos que catalicen procesos distintos de los naturales (por síntesis en lugar de hidrólisis), sobre substratos no naturales, en condiciones experimentales no convencionales (en disolventes orgánicos no-tóxicos).
II. OBJETIVOS
Obtener preparados enzimáticos crudos a partir de semillas de habas, de guaba, hígado de pollo, pulpa de papaya.
III. MATERIALES Y MÉTODOS
A. Material
a. Material BiológicoSemillas de guabaPulpa de papaya.Hígado de polloSemillas de haba.
b. Reactivos y SolucionesPrueba de yodoSolución de KCl 0.54 M.HCl 0.1 N
c. Material de Vidrio y otrosBeaker de 400 mlMatraces de 100 mlPipetas de 1 y 2 mlPipetas de 5 y 10 mlTubos de ensayo.MorterosGradillasCuchillos
d. EquiposBalanza analítica
Equipo de baño maría
Centrífuga
B. Metodología
Se procedió a triturar cada muestra respectiva en el mortero (20g), en un medio frio para evitar la desnaturalización de las proteínas al momento de presionar contra la muestra.Luego se adiciono el KCL para lograr un medio isotónico parecido a la concentración celular.
Seguidamente se procedió a filtrar el medio atravez de una gasa doblada en cuatro.
Se centrifugo a 4000 rpm por 10 minutos. Separar el sobrenadante en tubos de ensayos lo cual sería el preparado
enzimático crudo.
V. RESULTADOS
COMPONENTES TESTIGO PROBLEMA BLANCOSolución almidón 400 ppm (ml) 2.5 2.5 --Agua destilada (ml). 0.4 0.4 2.9Pre incubar a 35°C por 5´.Preparado enzimático crudo (ml) -- 0.1 0.1Incubar a 35°C por 15´HCl 0.1N, (ml). 2.5 2.5 2.5Preparado enzimático crudo (ml) 0.1 -- --Solución yodada, (ml) 0.5 0.5 0.5Mezclar y dejar en reposo 5´
Figura 1. Prueba cualitativa de actividad enzimática en las 4 muestras tomadas
(T: testigo, P: problema, B: blanco)
Figura 2. Muestra cualitativa de enzimas de semillas de guabas
T P B
SEMILLAS DE GUABA
T P B
PULPA DE PAPAYA
T P B
MUESTRA DE HIGADO
T P B
SEMILLAS DE HABAS
Figura 3. Muestra cualitativa de enzimas de papaya
Figura 4. Muestra cualitativa de enzimas de higado
Figura 5. Muestra cualitativa de enzimas de semillas de habas.
VI. DISCUSIONES
En el laboratorio se realizó la extracción de enzimas de cuatro fuentes diferentes las cuales producían sus propias enzimas, añadiendo que para la obtención de enzimas a gran escala, es de gran importancia seleccionar el organismo adecuado y el órgano, tejido o tipo celular apropiado que sea capaz de sintetizar una gran cantidad de la enzima deseada. Normalmente se utilizan microorganismos, ya que son una fuente apropiada de la mayoría de las enzimas industriales y son fáciles de manipular y de cultivar en grandes fermentadores industriales. (Castillo, 2005)
Generalmente, los organismos sintetizan sus enzimas en pequeñas cantidades, por lo que en muchas ocasiones se recurre a utilizar como material de partida organismos mutantes seleccionados por su capacidad de producir en gran cantidad la enzima deseada.(Castillo, 2005)
Las enzimas juegan un papel importante en las reacciones químicas que tiene lugar en los organismos, el identificar y conocer los cambios y los efectos que ejercen los factores externos son aspectos que facilitan el entendimiento en los procesos fisiológicos durante el desarrollo ontogénico. Estos parámetros ayudan a la industria alimentaria para buscar, desarrollar y formular dietas especializadas que optimicen los recursos y resultados en la acuacultura, particularmente en la larvicultura. (Arenal, 2002).
En el laboratorio se procedió a inactivar enzimas con el HCL, logrando bajar el pH y aumentando los iones H+ ayudando a desdoblar las cadenas y cambiando las estructuras. Logrando así desactivar las enzimas ya que a pH bajos se produce una desnaturalización enzimática. (Mathews, 1998)
Toda reacción enzimática dependerá siempre de la temperatura a la que se encuentre, ya que si aumentamos la temperatura aumentara la reacción enzimática hasta que cierto punto máximo sea alcanzado, así el número de moléculas estarían aumentando estando ricas en energía pasando la barrera energética del estado de transición. Si la temperatura es excesiva en el medio enzimático, empezara a disminuir la velocidad de reacción ya que estas se estarán desnaturalizando, fue por esto que se tomó siempre el valor de la temperatura y acompañando con hielo al momento de triturar las muestras con el mortero para así evitar la desnaturalización de las enzimas. (Doran, 1998)
VII. CONCLUSIONES
Se Obtuvo los preparados enzimáticos respectivos de hígado de pollo, pulpa de papaya,
semillas de haba y guaba.
VIII. RECOMENDACIONES
Tener cuidado de no triturar las muestras en un medio con temperatura ambiente ya que
puede haber una desnaturalización de las proteínas de la muestra al momento de triturar,
por ello se procederá a colocar hielo para un mejor trabajo.
Triturar bien las muestras para así obtener mayor solución ante el filtrado.
Lavar bien las pipetas ante el cambio de muestra a pipetear.
IX. BIBLIOGRAFÍA
Castillo Rodríguez F. y col., BIOTECNOLOGIA AMBIENTAL, Editorial TEBAR S.L., Madrid,
2005.
Arenal, F., A. Espinosa, C. garcía, A. Arenal, J. Fajardo, E. Cabrera, E. Pimentel. 2002.
Estudio de la actividad enzimática de ß-Galactosidasa en la ontogenia del camarón
Litopenaeus schmitti (Crustacea-Decapoda). I Congreso Iberoamericano Virtual de
Acuicultura. Pp 898-805.
MATHEWS, C. K. Y VAN HOLDE, K. E. 1998. Bioquímica, McGraw Hill Interamericana, 2ª. Ed., España,1998.
DORAN, P. “Principios de Ingeniería de los bioprocesos”. Editorial acribia SA. Zaragoza–
España,1998.