oseana_ix(2)57-65

8/19/2019 oseana_ix(2)57-65

1/9

Oseana, Volume IX, Nomor 2: 57 - 65. 1984 ISSN 0216 - 1877

TEKNIK PENETASAN DAN PEMANENAN ARTEMIA SALINA

Oleh

Maria Goretti Lili Panggabean1)

ABSTARCT

TECHNIQUES FOR HATCHING AND HARVESTING ARTEMIA SALINA. Artemia salina are

widely used as live food in mariculture. In this case, the most importance thing is the skill on the

aplication of the technology for hatching and separation of the hatched nauplii from the unhatched

of the empty cysts. The system introduced by SORGELOOS & PERSOONE (1975) for hatching and

harvesting nauplii is recommended. The recent system in preparing nauplii, "decapsulation ", was

briefly explained. The factors that control larval growth of A. salina was also discribed.

PENDAHULUAN

Keberhasilan suatu usaha budidaya

biota laut sangat dipengaruhi oleh berbagai

macam kegiatan penunjang, salah satu ke-

giatan penunjang tersebut adalah penyediaan

makanan hidup bagi biota yang dibudidaya-

kan. Makanan hidup dapat berupa zooplank-

ton dan fitoplankton. Salah satu makananhidup yang biasa diberikan ialah A. salina.

Artemia masuk golongan udang-udang-

an yang kecil ukurannya. Bentuk dewasanya

mencapai ukuran 1 cm, kurang lebih sama

ukurannya dengan jambret (Mysidanceae).

Hidup di perairan yang kadar garamnya ting-

gi sekali, dimana hanya beberapa jenis bakte-

ri serta algae yang dapat bertahan hidup.

Hewan ini makan plankton, detritus serta

butiran halus dalam air yang dapat masuk ke

dalam mulutnya, jadi termasuk "filter fee-

der" Dalam kondisi kadar garam tinggi

Artemia akan menghasilkan kista yaitu

telur yang diseliputi oleh selubung kuat un-

tuk melindungi embryo dari perubahan ling-

kungan yang merugikan. Pada kadar garam

yang tinggi, kista akan mengapung dan

mudah dikumpulkan, dibersihkan, dikering-

kan selanjutnya dikalengkan dan dijual. Bila

akan digunakan sebagai makanan hidup, kista

direndam dalam air laut dan akan menetas

menjadi nauplius. Nauplius inilah yang digu-

nakan untuk makanan larva udang atau ikan.

Artemia mempunyai nama lokal ber-

macam-macam : brine shrimp (Inggris),

brineworm (Belanda), saltzierchen dan fez-

zanwurum (Jerman), Verme de sale (Italia,

Spanyol), Sofereg (Rusia), bahar el dud

(Arab) dan Iain-lain nama. Biasanya dijual

dalam kaleng dengan berat bermacam-ma-

cam : 365 g, satu pond (453 g), bahkan ada

yang seberat 5 kg. Dihasilkan oleh beberapa

negara dan biasanya namanya disesuaikan

dengan daerah dimana dihasilkan, seperti

San Fransisco Bay, Great Salt Lake (Ameri-

ka Serikat), Macau (Brasilia), Buenos Aires

(Argentina), Laval duc (Perancis), Tientsin

(RRC), Chaplin Lake (Kanada), Salinera Es-

panola, San Fernando, Ibiza (Spanyol) dan

masih banyak lagi. Artemia yang baru menetas disebut

nauplius, ini merupakan makanan hidup

bagi larva udang dan benih ikan. Dengan

makanan hidup ini, mutu air dalam bak pe-

meliharaan larva udang atau ikan akan tetap

baik karena tidak ada sisa makanan yang

membusuk. Lagi pula makanan ini mempu-

1). Pusat Penelitian Ekologi Laut, Lembaga Oseanologi Nasional-LIPI, Jakarta.

57

sumber:www.oseanografi.lipi.go.id

Oseana, Volume IX No. 2, 1984

8/19/2019 oseana_ix(2)57-65

2/9

nyai nilai gizi yang tinggi serta mudah

dicer-na. Nilai nutrisi nauplius yang baru

menetas sebagai berikut : protein 40%—

50%, karbo-hidrat 15%-20%, lemak 15%-

20%, abu 3% -4% sedangkan nilai kalori

adalah 5000 — 5500 kalori per gram berat

kering. Larva dapat makan (menangkap)

nauplius kapan saja dia mau selama

persediaan nauplius masih ada dalam

tempat pemeliharaan larva itu.

Dibandingkan dengan zooplankton

yang lain penyediaan nauplius A. salina lebih

mudah dan efisien. Kista-kista A. salina da-

pat disimpan beberapa tahun. Setiap saat di-

perlukan, kista-kista dapat diambil secukup-

nya untuk ditetaskan dan nauplius yang di-

hasilkan dapat segera dimanfaatkan sebagai

makanan larva ikan.

Untuk pertama kalinya pada tahun

1939 ROLLEFSEN memanfaatkan nauplius

A. salina sebagai makanan larva ikan secara

memuaskan (NASH 1973). Keberhasilan ini

mengundang para pengusaha untuk mengum-

pulkan kista-kista A. salina untuk diperda-

gangkan di kalangan budidayawan. Kini A.

salina dipergunakan secara luas di kalangan

budidayawan dan harganya cukup mahal.Harga kista-kista Artemia sekitar US $

15.000,- per pound (ADISUKRESNO 1983).

Mengingat harganya yang mahal, para budi-

dayawan harus mengusahakan daya tetas dan

hasil panenan yang maksimal. Hal yang pen-

ting dalam penyediaan A. salina sebagai

makanan hidup adalah teknik penetasan,

pemanenan atau pemisahan nauplius dari

kista-kista kosong dan kista-kista tidak me-

netas serta cara pembesaran.

PENETASAN

A. salina berkembang biak secara sek-

sual. Artemia menjadi dewasa setelah ber-

umur 10-14 hari. Mulai umur ini Artemia

sudah mulai berenang bergandengan (riding

position), yang jantan mencapit perut yang

betina. Capit ini merupakan perubahan

antenae kedua, sedangkan pada yang betina

tetap merupakan antenae. "Riding position"

dapat berlangsung sampai sepekan, sedang-

kan kopulasi hanya berlangsung singkat.

Artemia betina segera membentuk telur pada

dua kantong telur dan kedua kantong telur

tersebut akan bergabung yang mempunyaisatu saluran telur. Dari satu ekor induk betina

dihasilkan sekitar 20 - 50 butir telur.

Sementara telur masih dalam kantong telur,

induk telah mulai memproduksi calon telur

dan begitu seterusnya. Telur dapat dikeluar-

kan dalam bentuk kista atau langsung mene-

tas menjadi nauplius tergantung dari kondisi

lingkungannya. Pada kondisi lingkungan yang

baik perkembangan embryonal di dalam

kantong telur akan berlanjut sehingga akhir-

nya terjadi penetasan. Hasil penetasan merupakan nauplius yang berenang bebas. Pada

kondisi lingkungan yang buruk perkembang-

an embryonal akan terhenti pada stadium

gastrula dan terbentuklah cangkang telur

dari khitin. Dengan demikian terjadilah kista-

kista atau sering disebut "resting eggs". Sifat

"diam" dari telur-telur A. salina ini amat

bermanfaat bagi budidaya bahari yaitu se-

bagai makanan hidup. Setiap saat diperlu-

kan, kista-kista dapat ditetaskan dan nau-

plius dapat dipanen untuk makanan larvaudang atau ikan.

Telur Artemia yang baru dibuka dari

kaleng berbentuk bola kempes, jadi bukan

seperti bola bundar, Hal ini disebabkan kare-

na waktu pemrosesan telur tersebut didehi-

drasi sehingga kadar air tinggal sekitar 10 %.

Telur yang dimasukkan dalam air dalam

waktu satu sampai dua jam telah menyerap

air dan bentuknya menjadi bulat. Sekitar 15

jam kemudian telur mulai menetas, dari da-

lam telur keluar bentuk bulat telur yang ma-sih terbungkus dalam selaput tipis, bentuk

ini disebut "umbrella stage". Setelah bebe-

rapa jam, maka lapisan tipis ini pecah dan

keluarlah nauplius (Gambar 1). Untuk men-

dapatkan hasil penetasan yang baik, maka

perlu diperhatikan beberapa faktor :

1. Hidrasi dari kista-kista. Kista-kista yang

58



8/19/2019 oseana_ix(2)57-65

3/9

dimasukkan ke dalam media air laut akan

segera mengalami hidrasi dan terjadilah

perkembangan embryonal di dalam kista.

Hidrasi ini dapat terjadi pada kisaran sali-

nitas antara 5‰ — 70‰.

2. Erasi. Oksigen sangat dibutuhkan untuk

perkembangan embryonal A. salina.

Oleh karena itu erasi harus diberikan

terus sampai terjadi penetasan, Selain

untuk mencukupi kebutuhan akan oksi

gen, erasi dapat mencegah terjadinya

pengendapan kista-kista di dasar tangki.

Pengendapan kista-kista dapat menimbul-

kan kondisi "anaerob" pada kista-kista

tersebut sehingga perkembangan embryo

akan terhambat. Kandungan oksigen yangminimal untuk penetasan A. salina adalah

3 ppm.

3. Penyinaran pada kista yang sudah menga

lami hidrasi. Cahaya dapat merangsang

pengaktifan kembali perkembangan em

bryo A. salina. Rangsangan cahaya ini ha-

nya efektif pada hidrasi aerob. Dengan

demikian kista-kista yang sudah mengala

mi hidrasi dapat dirangsang dengan penyi

naran bersama-sama dengan erasi.

4. Suhu. Suhu yang optimum untuk mem-

peroleh hasil penetasan yang baik adalah

berbeda-beda menurut strain yang diper-

gunakan. Suhu optimum untuk strain

California-USA adalah 28°C, untuk

strain Utah-USA adalah 30°C dan untuk

strain RRC adalah 35°C.

5. pH (derajat keasaman). Proses pecahnya.

lapisan tipis pada saat "umbrella stage"

sangat dipengaruhi oleh enzym penetas,

dimana enzym ini pada pH 8,0 — 9,0

mempunyai aktivitas yang optimum. Pe

netasan tidak terjadi bila pH kurang dari

7,0 terutama bila kepadatan telur yang

tinggi. Untuk menaikkan pH air laut da

pat ditambah dengan 1 — 2 g kapur

per liter atau dengan NaOH 0,5 N seba-

nyak 1,5 per liter air.

6. Kepadatan. Untuk penetasan yang effi-

sien kepadatan 10 g/1 memberi hasil yang

memuaskan. Pada saat proses penetasan,

telur menghasilkan enzym trehalose dan

ini akan mempercepat penetasan telur

di sekitarnya. Dengan kepadatan yangcukup maka trehalose ini cepat mempe-

ngaruhi telur di sekitarnya dan proses

penetasan dapat berlangsung lebih seren-

tak.

Gambar 1. Nauplius Artemia salina.

Karena telur-telur Artemia cukup ma-

hal harganya maka perlu diusahakan hasil

penetasan yang maksimal. Untuk mendapat-

kan hasil penetasan yang baik, dapat diguna-

kan wadah yang dasarnya berbentuk keru-cut, atau wadah berbentuk corong dari gelas

atau plastik (Gambar 2) seperti yang dianjur-

kan oleh SORGELOOS & PERSOONE

(1975). Bentuk dasar kerucut ini tidak me-

merlukan erasi yang terlampau kuat. Sedikit

erasi dari dasar kerucut sudah dapat membe-

rikan adukan pada telur-telur Artemia.

Meskipun kepadatan tinggi (10 g/1) telur-

telur Artemia dapat tetap melayang dan

mendapat oksigen cukup.

Wadah dibuat dari bahan gelas atau plastik yang memungkinkan cahaya masuk.

Dengan demikian kista-kista yang terhidrasi

dalam kondisi aerob dapat dirangsang

dengan cahaya yang masuk. Rangsangan

cahaya dapat dilakukan selama kurang lebih

5 jam - 10 jam setelah telur direndam, sete-

lah itu tidak diperlukan cahaya lagi. Jadi

sebaiknya penetasan telur mulai dari pagi ha-

59



8/19/2019 oseana_ix(2)57-65

4/9

ri di saat masih cukup sinar rnatahari. Penyi-

naran secara langsung harus dihindari karena

sinar matahari mengandung sinar ultra violet

yang dapat merusakkan embryo telur.

Gambar 2. Alat penetasan Artemia salina

(Menurut PERSOONE &

SORGELOOS 1975)

PEMANENAN DAN PEMISAHAN

NAUPLIUS

Nauplius A. salina yang baru menetas

merupakan makanan yang baik sekali untuk

larva ikan. Oleh karena itu nauplius harus

langsung dipanen setelah menetas. Nauplius

yang terlambat dipanen mempunyai nilai

gizi yang kurang baik dibandingkan dengan

nauplius yang baru menetas. Yang harus

dilakukan setelah terjadinya penetasan A.

salina adalah pemisahan nauplius dari kista-

kista yang tidak menetas maupun kista-kista

yang sudah kosong. Hal ini penting dilaku-

kan karena kista-kista dapat mengganggu

atau membahayakan larva ikan, karena

apabila termakan akan menyebabkan pe-nyumbatan pada ususnya.

Pemanenan nauplius ada beberapa

cara. Cara lama yang biasa dilakukan pada

pemanenan A. salina adalah mematikan

erator dan kemudian dilakukan sifonisasi.

Setelah erator dimatikan, maka kista-kista

yang tidak menetas dan kista-kista yang ko-

song akan mengambang di permukaan. Kista-

kista yang belum menetas akan mengendap

di dasar. Nauplius yang berenang-renang di

bawah kista-kista yang tidak menetas dapatdisifon keluar. Cara lama ini ada kelemahan-

nya, antara lain : Pertama, memerlukan wak-

tu yang agak lama tanpa erasi sehingga

mungkin berpengaruh terhadap nauplius

yang baru menetas. Kedua, membutuhkan

ketrampilan supaya nauplius tidak banyak

tercampur dengan kista-kista yang kosong.

Cara kedua, memanfaatkan sifat nau-

plius A. salina yang bergerak kearah cahaya

(fototaksis positif). Prinsip dasarnya adalah

menempatkan cahaya pada salah satu sudutatau celah. Nauplius akan berkumpul pada

bagian yang intensitas cahayanya lebih tinggi

dan mudah dipanen. Cara ini kurang efektif

untuk wadah yang besar. Hal ini disebabkan

karena sifat nauplius cenderung berkumpul

pada sudut-sudut, Rangsangan cahaya pada

sudut yang lain terlalu jauh bagi nauplius

tersebut.

60



8/19/2019 oseana_ix(2)57-65

5/9

Cara yang ketiga, adalah sistem pema-

nenan menurut SORGELOOS & PERSOO-

NE (1975). Pemanenan nauplius mengguna-

kan alat yang berbentuk silinder (Gambar 3).

Silinder PVC ini dibagi menjadi 3 bagian :

1. Silinder dalam yang melekat pada dasar

silinder besar. Silinder dalam ini raem-

punyai celah-celah horisontal yang berha-

dap-hadapan. Lebar celah 1 cm dan pan-

jangnya kurang dari ¼ diameter silinder.

2. Silinder luar yang dapat diputar juga

mempunyai celah-celah yang tepat sama

dengan celah-celah silinder dalam.

3. Penutup silinder dalam bagian atas.

Cara kerja dari sistem ini adalah sebagai

berikut : mula-mula campuran nauplius dan

kista-kista yang terkontaminasi dengan bakte-

ri dicuci dengan air laut yang bersih, kemu-

dian baru dituangkan ke dalam silinder da-

lam. Celah-celah masih dalam keadaan tertu-

tup. Kemudian bagian luar silinder diisi de-

ngan air laut yang bersih sama tinggi dengan

permukaan air silinder dalam . Kemudian

bagian atas silinder dalam ditutup dan silin-

der luar diputar sehingga celah-celah terbu-ka. Bagian luar silinder dirangsang dengan

cahaya sehingga nauplius berpindah keluar.

Setelah 10 menit - 15 menis silinder dalam

ditutup kembali, maka akan diperoleh

90 % - 95 % nauplius. Nampak bahwa sistem

pemanenan ini cukup efektif.

DEKAPSULASI

Cara terbaru sebelum penetasan A. sa-Una adalah "dekapsulasi" (HAINES et al.

1980). "Dekapsulasi" adalah suatu teknik

pengupasan untuk membuka lapisan luar kis-

ta A salina. Menurut HAINES et al. (1980),

95 % kista-kista yang telah mengalami "de-

kapsulasi" dapat menetas. Apabila diperhi-

tungkan secara ekonomis, cara ini 2,7 kali

lebih menguntungkan dari pada cara lama

(penetasan tanpa dekapsulasi). Untuk mem-

buka kista, nauplius A, salina menggunakan

20 % energi cadangannya. Dengan demikian

nauplius yang menetas dari kista yang telah

di "dekapsulasi" akan mempunyai nilai nut-

risi yang lebih tinggi. Nauplius dari hasil penetasan dengan dekapsulasi dapat langsung

dipanen untuk makanan benih ikan atau

udang karena lapisan kista telah hilang. Cara

dekapsulasi

Seratus gram kista-kista Artemia dihi-

drasi dengan 51 air laut dan dierasi selama

1 jam. Kista-kista kemudian dituang kedalam

saringan, dibilas lagi dengan 31 air atau lebih

untuk membersihkan kotoran-kotoran yang

menempel. Setelah ditiriskan kista-kista di-

rendam dalam 700 ml air laut. Sambil di-aduk ditambahkan 33 ml larutan NaOH

40 % dan 600 ml Clorox (5,25 % NaOCl).

Pengadukan dilakukan terus menerus hingga

membentuk pusaran air. Suhu harus sering

diperiksa. Apabila suhu mendekati 35°C,

harus didinginkan dengan menambah es batu.

Suhu tidak boleh mencapai 40°C karena da-

pat membunuh embryo. Pengadukan dilaku-

kan sampai terjadi perubahan warna dari

coklat menjadi putih dan akhirnya berwarna

jingga. Warna jingga menandakan bahwa de-kapsulasi hampir sempurna. Setelah warna

jingga, pengadukan dilakukan terus sampai

lebih kurang 7 menit — 15 menit. Setelah

dekapsulasi, campuran kista-kista disaring

dan dicuci dengan 5l air atau lebih hingga

kotoran dan bau clorine hilang, kemudian

ditiriskan dengan baik untuk menetralkan

chlorine yang tertinggal. Selanjutnya telur-

telur direndam dalam air yang ditambah

dengan 5,3 ml larutan 1 % sodium thisulfat

selama 3 menit. Kemudian ditiriskan, dicuci

dengan 5 1 air atau lebih dan ditiriskan kem-

bali. Telur-telur lalu dimasukkan ke dalam

667 ml larutan garam (1 mangkok NaCl/l

air) dan dierasi selama 3 jam — 4 jam. Se-

telah erasi dihentikan, maka, telur-telur

yang sudah tidak mengandung kista akan

mengendap di dasar dan kista-kista yang

masih utuh mengambang dipermukaan. Kista-

61



8/19/2019 oseana_ix(2)57-65

6/9

Gambar 3. Alat penetasan Artemia.

1. Silinder boks. 4. Tutup.

2. Silinder dalam 5. Celah-celah

3. Silinder luar 6. Kran pembuangan.

62



8/19/2019 oseana_ix(2)57-65

7/9

kita tersebut dapat diambil dan disimpan

dalam larutan garam untuk diproses kembali.

Prosedur "dekapsulasi" yang telah di-

terangkan di atas berlaku untuk telur-telur

dan California. Untuk telur-telur jenis lain

mungkin dosis larutan yang dipakai dapat berbeda. Prinsip dasarnya hampir sama.

Telur-telur yang sudah mengalami

''dekapsulasi" dapat langsung diberikan pada

benih ikan udang, langsung ditetaskan atau

disimpan. Penyimpanan dapat dilakukan de-

ngan cara perendaman dalam larutan garam

dan disimpan dalam ruang gelap untuk bebe-

rapa hari. Dapat pula disimpan pada suhu

4°C atau kurang selama 8 pekan.

PEMBESARAN

Nauplius A. salina yang baru menetas

merupakan makanan yang baik sekali untuk

larva ikan. Tetapi sebagai makanan larva

yang lebih besar, nauplius dapat diberi ma-

kanan yang bergizi sehingga tumbuh lebih

besar. A. salina bersifat "filter feeder", cara

makannya adalah dengan menyaring fito-

plankton. Dengan fitoplankton yang cukup

maka pertumbuhannya sangat cepat.

Menurut REEVE (1963), A. salina da-

pat menyaring Platymonas sp. sebanyak

40260 sel/jam. Di samping fitoplankton dapat

pula diberikan makanan buatan, misal-nya

orang Jepang menggunakan tepung kedelai,

tetapi pertumbuhannya kurang baik.

Pertumbuhan A. salina pernah diteliti oleh

REEVE pada tahun 1963. Nauplius yang

baru menetas panjangnya 0,44 mm dan be-

ratnya sekitar 0,003 mg, setelah dewasa pan-

jangnya menjadi 8 mm dan beratnya 1 mg.

Berarti ada pertambahan panjang sekitar

200 x dan pertambahan biomassa sekitar

500 x. Sedangkan waktu yang dibutuhkan

untuk mencapai kedewasaan hanya sekitar

6 sampai 12 hari. Dalam pertumbuhannya, A.

salina akan mengalami penurunan kadar

lemak dan peningkatan kadar protein, se-

hingga meningkatkan daya cerna larva.

Kadar lemak per satuan berat kering pada

nauplius adalah 23,2 %; pada metanuplius 16,5

% dan 7 % pada awal kedewasaan. Sedangkan

kadar protein pada nauplius yang baru menetas

adalah 42,5 % dan pada A. salina dewasa

adalah 62,78 %.

Adapun teknologi pada pembesaran A.

salina tidak akan dibahas karena masih dalam

taraf pengembangan. Akan tetapi faktor-

faktor yang berpengaruh selama pembesaran

A. salina telah dipelajari. MOFFET &

FISHER pada tahun 1978 menghubungkan

faktor-faktor tersebut dengan produksi amo-

nia. Amonia ditimbulkan dari sisa-sisa meta-

bolisme orgnisme yang dibudidayakan. Amonia

ini kadarnya harus rendah karena dapat.

merupakan racun bagi mereka. Adapunfaktor-faktor yang harus diperhatikan pada

pembesaran A. salina adalah :

1. Padat Penebaran. Padat penebaran yang

telah diuji untuk A. salina dewasa adalah

antara 200 ekor-1600 ekor/l. Hasil pengujian

tidak menunjukkan beda yang nyata. Pada

kepadatan 1600 ekor/l belum nampak adanya

gejala kelebihan amonia. SORGELOOS &

PERSOONE (1975) mencoba membesarkan A.

salina dengan kepadatan 3 ekor/ml dan hasilnyacukup baik. Dengan padat penebaran 3

ekor/ml, air laut harus diganti setiap hari. Dalam

hal penebaran A. salina kepadatan nauplius juga

harus diperhatikan. Padat penebaran yang telah

diuji pada nauplius adalah antara 1000 ekor-

9000 ekor/l. Pada nauplius ini ada gejala yang

menarik. Ternyata kandungan amonia justru

lebih tinggi pada kepadatan rendah. Produksi

amonia pada padat penebaran 6000 ekor/l tidak

berbeda nyata dengan padat penebaran

9000 ekor/l. Padat penebaran rendah terjadi peningkatan aktifitas dengan semakin besarnya

ruang gerak sehingga produksi amonia

bertambah karena metabolisme meningkat.

Sebaliknya dengan padat penebaran nauplius

yang tinggi akan mengurangi raung gerak se-

hingga akan mengurai metabolisme nauplius dan

produksi amenia akan menurun.

63



8/19/2019 oseana_ix(2)57-65

8/9

2. Suhu. A. sa lina sebaiknya dipeliha-

ra dengan suhu yang rendah karena suhu

tinggi akan meningkatkan metabolisme A.

salina sehingga produksi amonia akan ber-

tambah.

3. Salinitas. Saalinitas yang tinggi akan

mengurangi respirasi pada A. salina. Sebalik-

nya, pada salinitas yang rendah atau larutan

hipotonik, konsumsi O2 akan meningkat dan

ekskresi NH3 juga bertambah.

Lingkungan dengan salinitas 10 ‰

adalah isotonik dengan cairan haemolymph

di dalam tubuh A. salina (ROVERTSON

1960). Tetapi penurunan produksi amonia

terjadi pada salinitas di atas 15 ‰.

4. pH. Kenaikan pH dari 7 menjadi 9

tidak mempengaruhi kandungan amonia to

tal (NH3 + NH4+). Walaupun demikian kan

dungan NH3 yang tidak terionisasi mening

kat sampai 50 kali dan NH3 ini bersifat ra-

cun bagi A. salina.

5.

Pemberian makanan. A. salina yang

diberi makan dengan algae maupun A salina

yang tidak diberi makan akan mengekskresi-

kan amonia hampir sama banyaknya A. sali-

na yang diberi makan mengkoversikan algae

menjadi jarangan tubuh. Sedangkan A. sali-

na yang tidak diberi makan membongkar

cadangan makanan di dalam tubuhnya.

Dengan demikian produksi amonia menjadi

lebih banyak atau hampir sama dengan pro

duksi amonia pada A. salina yang diberi

makan.

6. Erasi. Menurut SORGELOOS (1973),

erasi yang terus menerus akan menghambat

pertumbuhan larva A. salina. 9a membesarkan A. salina dengan erasi secara

periodik yaitu satu menit setiap setengah

jam.

7. Cahaya. Cahaya dapat menghambat per

tumbuhan A. salina, karena ia bersifat

fototaksis positif. Kemungkinan adanya ca-

haya menyebabkan aktifitas yang tinggi dari

larva, dengan demikian energi yang seharus-

nya dipergunakan untuk pertumbuhan diper-

gunakan untuk aktifitas pergerakannya.

KESIMPULAN

Sistem penetasan dan pemanenan A.

salina menurut SORGELOOS & PERSOONE

(1975) yang menggunakan rangsangan cahaya

dapat diterapkan untuk menunjang budidaya

biota laut. Sistem ini cukup sederhana dan

hasilnya cukup memuaskan.

Sistem penetasan terbaru adalah dengan

melakukan "dekapsulasi" sebelum penetas-

an. Sistem ini sangat praktis karena pemisah-

an nauplius dari kista-kista kosong atau yang

tidak menetas tidak perlu dilakukan. Dansistem ini menghasilkan nauplius dengan kan-

dungan nutrisi yang tinggi.

Teknik pembesaran A. Salina belum

dapat dirumuskan secara pasti walaupun

demikian pembesaran A. salina dapat dilaku-

kan dengan meperhatikan faktor-faktor

yang mempengaruhi pertumbuhannya. Nam-

paknya untuk pembesaran A. salina dibutuh-

kan peralatan yang agak khusus. Untuk fak-

tor suhu, diperlukan ruangan AC yang dapat

membuat suhu ruangan sekitar 15°C. Kom- presor untuk erasi harus dilengkapi dengan

alat otomatis yang dapat mengatur periode

pemberian erasi. Berbeda dengan sistim

penetasnnya, dalam pembesaran A. salina

cahayanya harus dikurangi sebanyak mung-

kin.

DAFTAR PUSTAKA

ADISUKRESNO, S. 1983. Mengenal Arte-mia. Buletin Warta Mina. 2 (4) : 11 - 16.

HAINES, P.B., R.G. HOWEY dan G.L.

THEIS 1980. Decapsulation of brine

shrimp (Anemia salina) cysts. Lamar

Information Leaflet 80 - 106 Lamar

Fish cultural Development Center, Pen-

sylvania, U.S.A.

64



8/19/2019 oseana_ix(2)57-65

9/9

MOFFET, W.L. dan W.S. FISHER 1978.

Ammonia production rates of Artemia sa-

lina under various culture conditions.

J. Fish. Res. Board Can. 35 : 1643 -

1649.

NASH, C.E. 1973. Antomated mass produc-

tion of Artemia salina nauplius for hat-

cheries. Aquaculture 2 : 289 - 298.

PERSOONE, G. dan P. SORGELOOS 1975.

Technological imporvements for the

cultivation of invertebrates as food for

fishes and crsutaceans I. Devices and

methods. Aquaculture 6 : 275 - 289.

REEVE, R.M. 1963. Browth efficiency in

Artemia under laboratory conditions. Biol. Bull. 125 : 135 - 145.

ROBERTSON, J.D. 1960. Osmotic and ionic

regulation. In : The physiology of crusta-

cean (T.H. WATERMAN ed) I. Metabo-

lism and growth. Academic Press, New

York and London, 670 hal.

SORGELOOS, P. 1973. High density cultu-

ring of the brine shrimp (Artemia salina

L). Aquaculture 1 : 385 - 391.

SORGELOOS, P. dan G. PERSOONE 1975.

Technological imporvements for the culti-

vation of invertebrates as food for fishes

and crsutaceans II. Hatching and cultu-

ring of the brine shrimp Artemia salina L.

Aquaculture 6 : 303-317.

65



Documents

oseana_ix(2)57-65