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UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA FACULTAD DE AGRONOMIA MAESTRIA DE FRUTICULTURA PROPAGACION Y VIVEROS PROPAGACION DE MANGO. MARIO ALBERTO AGREDA RODRIGUEZ GUATEMALA, MAYO DE 2009

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UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA

FACULTAD DE AGRONOMIA

MAESTRIA DE FRUTICULTURA

PROPAGACION Y VIVEROS

PROPAGACION DE MANGO.

MARIO ALBERTO AGREDA RODRIGUEZ

GUATEMALA, MAYO DE 2009

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1 TABLA DE CONTENIDO 1 TABLA DE CONTENIDO .............................................................................................................................i

2 ÍNDICE DE FIGURAS: ............................................................................................................................... iii

3 INDICE DE GRÁFICOS .............................................................................................................................. iii

4 INTRODUCCIÓN: ........................................................................................................................................ 1

5 OBJETIVOS .................................................................................................................................................... 1

5.1 OBJETIVO PRINCIPAL ..................................................................................................................... 1

5.2 OBJETIVO ESPECIFICO ................................................................................................................... 1

6 CULTIVO DE MANGO ................................................................................................................................ 2

6.1 ORIGEN DEL CULTIVO DE MANGO ............................................................................................ 2

6.2 DESCRIPCIÓN BOTÁNICA: ............................................................................................................ 3

6.3 PROPAGACION DEL MANGO: ....................................................................................................... 4

6.3.1 Propagación por semilla: ...................................................................................................... 4

6.3.2 Propagación por acodo: ........................................................................................................ 4

6.3.3 Propagación por estaca: ........................................................................................................ 4

6.3.4 Propagación por Injerto: ...................................................................................................... 4

6.4 NECESIDADES CLIMATICAS:........................................................................................................ 8

6.4.1 Clima y Suelo: ............................................................................................................................ 8

6.4.2 Temperatura: ............................................................................................................................ 8

6.4.3 Luminosidad:............................................................................................................................. 8

6.4.4 Precipitación: ............................................................................................................................ 8

6.4.5 Altitud: ......................................................................................................................................... 9

6.4.6 Suelos: .......................................................................................................................................... 9

6.5 ESTABLECIMIENTO DEL CULTIVO............................................................................................ 9

6.5.1 Material de siembra: .............................................................................................................. 9

6.5.2 Distancia de siembra: ............................................................................................................. 9

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6.5.3 Densidad de plantas: .............................................................................................................. 9

6.5.4 Época de la plantación:........................................................................................................10

6.5.5 Desarrollo de la plantación: ..............................................................................................10

6.5.6 Inicio de cosecha:...................................................................................................................10

6.5.7 Vida Económica: .....................................................................................................................10

6.6 MEJORAMIENTO EN LA PROPAGACIÓN DE MANGO: ......................................................10

6.6.1 Embriogénesis: .......................................................................................................................10

6.6.2 Mejoramiento ..........................................................................................................................11

6.6.3 Poliembrionía ..........................................................................................................................12

6.7 INVESTIGACIONES REALIZADAS DE MANGO .....................................................................12

6.7.1 Transformación de embriones somáticos de mango por bio-balística: Ariadne, M.C.; Zambrano, A.Y.; Demey J.R. 2004. Interciencia 29(5):261-266. ..............12

6.7.2 Inducción de la embriogénesis somática en mango de hilacha (Mangifera indica L.). Córdova J.M.; Perrea M. 2005. Acta Biológica Colombiana, 10(1):79 ............14

6.7.3 Embriogénesis somática, transformación y regeneración de mango (Mangifera indica L.) cv. Ataulfo e Hindi. Rivera M. 2005. Centro de Investigación y de Estudios Avanzados del Instituto Politécnico Nacional, Irapuato; México. ......................15

6.7.4 Evaluación de algunas características biométricas de cuatro cultivares de mango (Mangifera indica L.) usados como portainjertos. Merida, M.; Vargas, G.; Sergent, E. 1996. Bioagro 8(2): 48-52. ............................................................................................16

6.7.5 Efecto del ácido indolbutirico en el enraizamiento de estacas terminales de ecotipos criollos de mango (Manguifera indica L.). Valladares E.L. 1999. Universidad Nacional Autónoma de Honduras. ....................................................................................................16

6.7.6 Estimación de la diversidad genética entre cultivares de mango (Mangifera indica) de Florida mediante marcadores RAPD. Vidal M.C.; García E. 2002. Universidad Nacional Experimental “Simón Rodríguez”. Venezuela. .................................17

6.7.7 Germinación de algunas variedades de mango con bajo y mediano porte para ser usadas como patrones. Avilán L.R.; Rodríguez M.; Ruiz J. 1995. Agronomía tropical. 45(3):445-456. ........................................................................................................................18

7 BIBLIOGRAFIA: .........................................................................................................................................22

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8 ANEXOS. .......................................................................................................................................................24

8.1 Características, métodos de propagación de algunas variedades de mango y periodo de germinación de semillas. (Alix y Duarte, 1999). .......................................................24

8.2 Tipos de Injertos en Mango (Alix y Duarte, 1999). ...........................................................25

8.3 Otras especies de Mangifera (Alix; Vargas y Lobo, 1999). .............................................35

2 ÍNDICE DE FIGURAS: Figura 1 El área sombreada representa el área de distribución natural aproximada del mango. ..................................................................................................................................................................... 2

Figura 2 Distribución del mango en el mundo (zonas rojas). ........................................................... 3

Figura 3 Embrión de mango, Figura 4 Siembra de semilla de mango, Figura 5 germinación de la semilla ........................................................................................................................................................... 5

Figura 6 Embrión germinado, Figura 7 Aparición de las primeras hojas, Figura 8 Planta completamente germinada. ............................................................................................................................ 5

Figura 9 Planta totalmente desarrollada. .................................................................................................. 5

Figura 10 Porta Injerto (B) y yema a injertar (A) ................................................................................. 6

Figura 11 Colocación del Injerto con el porta Injerto. .......................................................................... 7

Figura 12 Algunas variedades de mango. .................................................................................................. 8

Figura 13 Distanciamiento de siembra. ..................................................................................................... 9

Figura 14 Embriones somáticos de mango variedad Kent utilizados para propagación in vitro de mango. ..................................................................................................................................................11

3 INDICE DE GRÁFICOS Gráfico 1 Esquema de la producción de mango según el año productivo en que se encuentre. ............................................................................................................................................................10

Gráfico 2 Dendrograma basado en el análisis de similaridad genética (UPGMA) utilizando el Coeficiente de Jaccard para 97 marcadores RAPD en 10 variedades de Mango de la Florida. ..................................................................................................................................................................17

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4 INTRODUCCIÓN: El mango (Mangifera indica L.) posee como centro de origen el continente asiático, entre la

zona geográfica del noreste de la India y el norte de Burma. En India se menciona cultivo de mango a más de 4,000 años. Su distribución en el mundo es relativamente reciente. Siendo ocurrido después del siglo XV, a través de las rutas del descubrimiento del nuevo mundo. Los portugueses llevaron para el continente africano y a Brasil y de aquí se distribuye al resto del continente americano. Los españoles introdujeron el cultivo directamente de Filipinas a México en 1779 y de aquí para la florida en 1883.

Actualmente el mango es cultivado en todo el mundo, bajo condiciones tropicales y subtropicales, constituye en el mundo una de las frutas de mayor importancia por su gran aceptación en la dieta de los seres humanos, se cultiva en todos los trópicos y sub-trópicos del mundo. De acuerdo con la Organización Mundial de la Alimentación y Agricultura y la Organización de las Naciones Unidas, la producción de mango para el año 1998 fue de 22 millones de toneladas métricas cosechadas a nivel mundial. En el año 1991, esta producción era de 16 millones de toneladas métricas. Actualmente la india es el principal productor pero México es el principal exportador mundial, siendo su principal mercado de exportación Estados Unidos.

Los principales mercados importadores están dominados por un solo proveedor. Los Estados Unidos recibe la mayor parte de sus importaciones de México. Brasil es el mayor proveedor para Europa. Los mercados de mango han experimentado un continuo y estable crecimiento, Ecuador está tomando importancia en las exportaciones. El éxito para el mango en el futuro depende de la obtención de nuevas variedades, avances en manejo del cultivo, inducción de la floración, control de plagas y enfermedades, desarrollo de tecnologías para el transporte y el manejo pos cosecha.

5 OBJETIVOS

5.1 OBJETIVO PRINCIPAL Dar a conocer información básica para el manejo de viveros y propagación

en el cultivo de mango.

5.2 OBJETIVO ESPECIFICO Describir el origen del cultivo de mango, posibles fuentes de mejoramiento

y posibles metodologías para el mismo. Conocer las variedades más importantes del cultivo de mango. Conocer los métodos de propagación del cultivo de mango y conocer los

portainjertos más utilizados en el país.

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6 CULTIVO DE MANGO

6.1 ORIGEN DEL CULTIVO DE MANGO A pesar de que se desconoce su punto de origen exacto, el mango es

probablemente nativo a los bosques montanos bajos del este de la India, Bangladesh y Myanmar (Burma) entre los 16° y 28° de latitud Norte (Opeke, 1982; Bodner y Gereau, 1988).

Otros son de la creencia de que su distribución natural tal vez incluya los cerros boscosos del centro y sudoeste de la India, Tailandia, Laos, Vietnam, Kampuchea y la península Malaya (USDA, 1960).

El mango ha sido cultivado por los últimos 4,000 años en el sur y sudoeste de Asia y se menciona frecuentemente en la literatura temprana en Sánscrito en la India. Durante los siglos quinto y cuarto antes de Cristo, monjes budistas llevaron el mango de la India a la península Malaya y a otras partes del sudeste y este de Asia (Bailey, 1941).

Fuente: USDA

Figura 1 El área sombreada representa el área de distribución natural aproximada del mango.

Durante el siglo décimo después de Cristo, los persas lo transportaron de la India al Medio Oriente. Durante el siglo dieciséis se introdujo de Goa (India) al África del este y del oeste por comerciantes portugueses (Mukherjee, 1972).

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Su distribución en el mundo es relativamente reciente. Siendo ocurrido después del siglo XV, a través de las rutas del descubrimiento del nuevo mundo. Los portugueses llevaron para el continente africano y a Brasil y de aquí se distribuye al resto del continente americano (Mukherjee, 1972).

Los españoles introdujeron el cultivo directamente de Filipinas a México en 1779 y de aquí para la florida en 1883 (Mukherjee, 1972).

Actualmente el mango es cultivado en todo el mundo, bajo condiciones tropicales y subtropicales, constituye en el mundo una de las frutas de mayor importancia por su gran aceptación en la dieta de los seres humanos, se cultiva en todos los trópicos y sub-trópicos del mundo.

Fuente: FAO

Figura 2 Distribución del mango en el mundo (zonas rojas).

6.2 DESCRIPCIÓN BOTÁNICA: El mango pertenece a la familia de Anacardiáceas, la especie es Mangifera Indica L. también se pueden encontrar el “bauno” Mangifera caesia Jack, “Kuwini” Mangifera odorata Griff, el cruce entre el “Bauno” y “Kuwini” da frutos de buena calidad.

El mango pertenece a la familia Anacardiaceae, la cual comprende 64 géneros, incluyéndose marañón (Anacardium occidentale). El género Mangifera comprende de muchas especies, entre las más conocidas se encuentran: Mangifera altissima, M. caesia, M. odorata, M. indica. Las cuales son cultivadas comercialmente. Las demás especies son cultivadas como patrones o portainjertos (Galán, 1999).

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6.3 PROPAGACION DEL MANGO:

6.3.1 Propagación por semilla: La propagación por semilla del mango tiene interés principalmente para la producción de patrones para este objetivo se recomienda, utilizar semillas de variedades poliembriónicas que dan plantas nucelares homogéneas e idénticas a la planta madre. Generalmente en estos clones, el embrión sexual se degenera, por lo que los embriones vegetativos se desarrollan en un número variado de 3 a 8 habitualmente (Alix y Duarte, 1999).

6.3.2 Propagación por acodo: La respuesta a este método de propagación cambia de una variedad a otra. En la India se han obtenido los mejores resultados en ramas anilladas con aplicación de AIB a 5,000 ppm o mezcla de ANA e AIB a 10,000 ppm lográndose a los 90 días un 70% de éxito. Sin embargo, este método no es recomendable para el ámbito comercial (Alix y Duarte, 1999).

6.3.3 Propagación por estaca: Hace algunos años se desarrollo en Alemania un sistema de propagación por estacas terminales con hojas maduras bajo nebulación. En la base de la estaca se hacen dos cortes en cruz, rajándola y en el interior de estas rajaduras se coloca la auxina como IBA a 4,000 ppm. Los porcentajes de enraizamiento son muy altos, superiores al 50% de pegue (Alix y Duarte, 1999).

6.3.4 Propagación por Injerto: A escala comercial la mejor forma la mejor forma de propagar vegetativamente el mango es el injerto, usándose técnicas diferentes de un país a otro. Las más utilizadas son el injerto de enchape lateral, de empalme de vareta con patrón decapitado y el injerto de astilla con patrones de 9 meses a 1 año. En algunos viveros se practica el de escudete de T invertida con patrones de 2 a 3 centímetros de diámetro (18 meses), cuando la corteza del patrón se despega bien. Para los injertos de yemas se debe preparar previamente la vareta, defoliándola y cortando la yema terminal para eliminar la dominancia apical muy fuerte en el mango, y favorecer de esta manera la concentración de los fotosintatos en las yemas axilares que provocan su desarrollo (Alix y Duarte, 1999).

6.3.4.1 Siembra del patrón: Escoger las mejores semillas de los árboles que crezcan bien en su zona. Escoger la fruta del árbol, no del suelo. Se pueden poner primero en un balde de agua las semillas malas flotarán y se eliminaran del proceso. Luego hay que sembrar las semillas en bolsas de plástico para árboles, macetas o en su defecto latas con huecos en la base. Deje que un sólo tallo crezca por seis u ocho meses. Cuando esté tan grueso como su dedo meñique, está listo para el injerto de tallo (Alix y Duarte, 1999).

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Fuente: Flickr

Figura 3 Embrión de mango, Figura 4 Siembra de semilla de mango, Figura 5 germinación de la semilla

Fuente: Flickr

Figura 6 Embrión germinado, Figura 7 Aparición de las primeras hojas, Figura 8 Planta completamente germinada.

Fuente: Flickr

Figura 9 Planta totalmente desarrollada.

To: Max Guiller, Flickr To: Max Guiller, Flickr To: Max Guiller, Flickr

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P á g i n a | 6 6.3.4.2 Injerto de patrones:

Seleccionar y preparar el brote (la yema). De las puntas de las ramas de la mejor variedad, escoger los brotes que aún no han retoñado pero que estén gruesos. cortarlos, que midan como 15 cm de largo quitarle todas las hojas cuidadosamente. El brote cortado deberá tener el mismo grosor que el tallo del rizoma.

Con un cuchillo muy afilado cortar la parte de abajo del brote de la rama con dos cortes diagonales de 3 ½ cm de largo (A).

Cortar la parte de arriba de la planta-base cuando esté 30 cm por encima de la tierra. Hacer un solo corte vertical de 3 cm en la parte superior de la planta-base (B).

Fuente: FHIA

Figura 10 Porta Injerto (B) y yema a injertar (A)

Introducir el brote firmemente dentro del corte del tallo de la planta-base. Dejar ½ cm del brote cortado fuera de la planta-base como se ve en la figura 11.

Hay que usar cinta adhesiva transparente (o bolsas plásticas cortadas) para envolver y unir firmemente el injerto. No hay que quitar la cinta hasta que no empiece a crecer el brote – así sabemos que el injerto tuvo éxito. Habría que quitar cualquier brote que crezca debajo del injerto.

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Fuente: FHIA

Figura 11 Colocación del Injerto con el porta Injerto.

Si el injerto se muere, hay que dejar que crezca un brote debajo del injerto y se deberá esperar unos meses antes de intentar de nuevo.

6.3.4.3 Portainjertos Los portainjertos utilizados en el mango son normalmente variedades nativas de la región, mangos conocidos como mango de coche o de pashte son utilizados como portainjertos, dependiendo de las necesidades que uno desee se puede seleccionar arboles, algunas características utilizadas para seleccionar los arboles son: achaparramiento, vigorosidad, compatibilidad, tiempo de entrada en producción o resistencia a ciertas enfermedades, no existe una variedad específica para porta injerto en mango pero es preferible utilizar las variedades criollas poliembriónicas que demuestren buena compatibilidad con las que se propagan.

6.3.4.4 Variedades comerciales Se estima que existen cerca de 1,500 variedades cultivadas de mango, todas dependerán del mercado donde se enfoque comercializar, y las necesidades del clima para combatir enfermedades fungosas o ataque de insectos (Alix, Vargas y Lobo; 1999).

Algunas variedades de mayor importancia que podemos mencionar son:

Variedades Rojas: Edward, Haden, Kent, Tommy Atkins, Zill, Keitt. Variedades Verdes: Alphonse, Julie y Amelie. Variedades Amarillas: Ataulfo y Manila.

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Fuente: USDA

Figura 12 Algunas variedades de mango.

6.4 NECESIDADES CLIMATICAS:

6.4.1 Clima y Suelo: El mango es cultivado desde zonas marginales, que presenta excesiva sequia y suelos pobres hasta zonas adecuadas que tiene climas secos con terrenos sueltos, fértiles y profundos.

6.4.2 Temperatura: El mango puede desarrollarse bajo temperaturas medianas entre 24 y 27ºC temperaturas inferiores a 6ºC detienen el crecimiento del árbol. Esta planta no acepta heladas.

6.4.3 Luminosidad: El mango es muy exigente en radiación solar, especialmente para incrementar productividad, maduración y adecuada coloración de frutos.

6.4.4 Precipitación: El mango necesita de una estación seca alternándose de una época lluviosa. Es cultivada en zonas con precipitaciones desde 200 hasta 5,000 mm anuales. Ideal es

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una precipitación anual alrededor de 1,000 mm y un periodo de sequia de cuatro a seis meses. Lluvia en periodo de floración y maduración de frutos causa problemas fitosanitarios especialmente con antracnosis.

6.4.5 Altitud: El mango es explotado desde el nivel del mar hasta 1,500 msnm, pero lo más común es su cultivo hasta 600 msnm.

6.4.6 Suelos: Los suelos para cultivos de mango deben tener buena profundidad debido a su gran sistema radical. Esta profundidad no debe ser inferior a un metro. El drenaje es muy importante para el desarrollo de la planta sin duda suelos sin adecuado drenaje puede afectar al crecimiento del árbol, floración, amarre del fruto y otros problemas fitosanitarios, como la pudrición del sistema radical por deficiencia de aireación y Phytophthora.

6.5 ESTABLECIMIENTO DEL CULTIVO

6.5.1 Material de siembra: Plantas de vivero injertadas de 6-8 meses, con un diámetro de 2 a 3 centímetros.

6.5.2 Distancia de siembra: Puede ser de 8x8 metros y 8x6 metros de distancia, 7x7 para variedades pequeñas amarillas, 10x10 variedades verdes medianas y 14x14 metros para variedades rojas grandes.

Fuente: FHIA

Figura 13 Distanciamiento de siembra.

6.5.3 Densidad de plantas: Aproximadamente entre 156 y 208 plantas por Hectárea.

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6.5.4 Época de la plantación: La más adecuada es el comienzo de la estación de lluvias. En algunas ocasiones se puede modificar la época normal de plantación, en tales casos se debe completar el cultivo con riegos cuando sea necesario.

6.5.5 Desarrollo de la plantación: De 24 a 26 meses.

6.5.6 Inicio de cosecha: Al Trigésimo sexto mes de sembrado (1 año y medio).

6.5.7 Vida Económica: 20 años o más siempre que las condiciones de manejo sean optimas. Si es comercial no se recomienda mayor de 20 años.

Fuente: ENTA

Gráfico 1 Esquema de la producción de mango según el año productivo en que se encuentre.

6.6 MEJORAMIENTO EN LA PROPAGACIÓN DE MANGO:

6.6.1 Embriogénesis: Recientes avances en la genética molecular han hecho posible bloquear o expresar actividades específicas de enzimas involucradas en los procesos de la maduración. Se ha visto que al utilizar las técnicas de ingeniería genética en antisentido, así como la cosupresión es posible bloquear la expresión de genes involucrados en procesos de la maduración de frutos y de esta manera extender su vida comercial.

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Dentro de las técnicas de cultivos de tejidos, la embriogénesis somática es un método biotecnológico de propagación de plantas que permite obtener embriones a partir de células somáticas (no sexuales) desde cualquier tipo de tejido, por lo que representa una vía eficiente para la regeneración y la propagación de plantas. La embriogénesis es una característica intrínseca de ciertos genotipos de mango, los niveles de embriogénesis, el potencial morfogénico de los explantes nucelares y el establecimiento de cultivos embriogénicos proliferantes dependen del cultivar. Las variedades de mango difieren en su respuesta de las condiciones de maduración y el tiempo requerido para la diferenciación embriogénica, por lo que cada fase de la embriogénesis debe ser determinada empíricamente para cada variedad. Actualmente se ha reportado la embriogénesis somática de 34 variedades de mango (Ariadne, Zambrano y Demey, 2004).

De acuerdo a los resultados de investigaciones realizadas, se requieren aproximadamente 3.6 meses para llevar un embrión del estado globular a plántulas, y en general, 5 meses para obtener plántulas a través de embriogénesis somática utilizando explantes nucelares.

Figura 14 Embriones somáticos de mango variedad Kent utilizados para propagación in vitro de mango.

6.6.2 Mejoramiento El mango se ha considerado tradicionalmente como una especie difícil de manejaren un programa de mejora. Así, Algunos de los aspectos negativos en la mejora del mango los siguientes aspectos (Galán, 1999):

Larga fase juvenil. Alto nivel de heterocigosis. Producción de una sola semilla por fruto. Escaso cuajado y retención de fruta. Poliembrionía.

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Necesidad de grandes parcelas para evaluación de híbridos. Escaso conocimiento de la heredabilidad de las diferentes características productivas y de las correlaciones genéticas entre las mismas. Fuerte interacción genotipo x medio ambiente.

6.6.3 Poliembrionía Como la mayoría de las especies de cítricos, Mangifera indica exhibe poliembrionía (o embrionía nuclear) en donde se producen embriones adventicios por la nucelas alrededor del embrión cigótico de la semilla en desarrollo. Al contrario que ocurre en los cítricos donde las plantas producidas por semilla, de origen nuclear, se pueden detectar por la utilización de Poncirus trifoliata como el progenitor masculino (las plantas cigóticas producidas por semilla del cruce muestran el carácter trifoliado fuertemente dominante), las plantas de mango producidas por semilla se deben cultivar hasta el tamaño de fructificación, antes de que se pueda determinar si acaso el embrión fertilizado en cada semilla se suprimió o no.

El porcentaje de poliembrionía varía de acuerdo con la variedad de raza, lo mismo que con las condiciones ambientales durante la floración y el desarrollo de la fruta; algunas variedades, tales como Mulgoba, Haden y Alphonse, rara vez tienen semillas poliembriónicas; otras, como Turpentine producen casi el 100 % de plantas nucleares obtenidas de semilla y algunas, como Saigón y Manila entre otras, poseen un porcentaje variable de acuerdo con las condiciones.

El comportamiento de floración y fructificación del mango también ha sido adverso a un mejoramiento y selección más amplios. Existen muchas variaciones en el número de panículas, el número de flores por panícula y la proporción de flores perfectas a estaminadas, aun dentro de la misma variedad o árbol individual, de año a año. El número de panículas puede variar de 200–300 hasta 2,000–3,000 por árbol y el número de flores por panícula, de 500 a 10,000.

6.7 INVESTIGACIONES REALIZADAS DE MANGO

6.7.1 Transformación de embriones somáticos de mango por bio-balística: Ariadne, M.C.; Zambrano, A.Y.; Demey J.R. 2004. Interciencia 29(5):261-266. Con la finalidad de transformar genéticamente mango mediante biobalística, se bombardearon embriones somáticos de las variedades Haden, Madame Francis y Kent. Se determinó la dosis máxima de PPT en que los embriones somáticos sobreviven, cultivándolos en el medio Gamborg, Miller y Ojima en concentraciones de 0; 0,5; 1 y 2mg/l de PPT durante 3 meses y subcultivando mensualmente para evaluar peso fresco y seco. Los embriones somáticos fueron bombardeados con el plásmido CAMBIA 3201 que contiene los genes GUS y BAR, con dos tamaños de partículas de

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tungsteno (0,7 y 1,3µm), presión de 80psi, dos distancias de bombardeo (10,0 y 16,5cm) y 5µg de ADN. Se seleccionaron los embriones transformados en medio Gamborg, Miller y Ojima con 0,5mg/l de PPT. Las condiciones de bombardeo escogidas fueron el tamaño de partícula de 0,7µm y la distancia de bombardeo de 16,5cm. Después de tres meses de selección en las concentraciones de PPT utilizadas se hizo evidente la sobrevivencia de los embriones transformados en la variedad Kent, mientras que los embriones no transformados sobrevivieron en concentración de 0,5mg/l. Las variedades Haden y Madame Francis fueron sensibles a las condiciones de bombardeo y selección suministrados, muriendo después de este proceso. Se logró una sobrevivencia de 4% y la regeneración de 3 clones por 0,5g de tejido bombardeado. Se evidenció la actividad enzimática de la expresión transitoria del gen GUS pero no la estable y la incorporación de los genes GUS y BAR mediante PCR.

Prueba de selección con PPT. Los embriones bombardeados de la variedad Kent se cultivaron durante 6 meses en el medio B5, antes de someterlos a las pruebas de selección con PPT. Se encontraron diferencias significativas en las variables peso fresco y seco de los embriones somáticos con relación a las diferentes dosis del herbicida, en la prueba de selección después del bombardeo. La prueba de medias de rangos múltiples de Duncan indicó que el tratamiento testigo T1 (0mg·l-1 de PPT) no produjo efecto negativo sobre el crecimiento evaluado a través de los pesos fresco y seco. Los tratamientos T2 (0,5 mg·l-1 de PPT), T3 (1 mg·l-1 de PPT) y T4 (2 mg·l-1 de PPT) no muestran diferencias significativas para el peso fresco de los embriones, en tanto que se evidencia diferencias entre los tratamientos T2 y T3 y T4, los cuales muestran un comportamiento similar para el peso seco de los embriones.

Los resultados evidencian que en la medida que se incrementó la dosis del herbicida PPT disminuyó el crecimiento y, finalmente, ocurrió muerte celular. La concentración de 0,5mg·l-1 del herbicida fosfinotricina (PPT) permitió la sobrevivencia y crecimiento de los embriones somáticos de mango en estudio. No obstante, se podrían

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utilizar concentraciones menores de PPT a las empleadas en esta investigación, ya que es posible que todavía sea demasiado alta en periodos prolongados de tiempo. Igualmente, el tiempo de selección con herbicida también podría ser reducido, debido a que un periodo superior a un mes constituye una presión de selección muy fuerte.

6.7.2 Inducción de la embriogénesis somática en mango de hilacha (Mangifera indica L.). Córdova J.M.; Perrea M. 2005. Acta Biológica Colombiana, 10(1):79

En esta investigación se estudió el establecimiento de un medio de cultivo para la inducción de la embriogénesis somática a partir de embriones cigóticos y tejido nuclear de frutos inmaduros de mango de hilacha. Se ensayaron nueve tratamientos de desinfección resultantes de la combinación de tres concentraciones de hipoclorito de sodio (2,5, 3,5 y 4,5%), aplicadas durante tres intervalos de tiempo (30, 45 ó 60 min.). Para el establecimiento del medio de cultivo para la inducción de la embriogénesis somática se probaron 18 medios de cultivo, cinco adicionados con 0, 0,5, 1, 2 y 3 mg/l de 2,4-D y 13 medios suplementados con 0, 0,5, 1, 1,5 y 2 mg/l de TDZ en combinación con 0, 1,0 y 2,0 mg/l de 2,4-D. Adicionalmente, se experimentó con cuatro medios de cultivo adicionados con 0, 0,5, 1 y 2 mg/l de ácido giberélico para la germinación de los embriones somáticos. Mediante observación, se estudió la influencia de las diferentes concentraciones de ácido diclorofenoxiacético y de thidiazurom sobre los explantes utilizados; adicionalmente, se evaluó la formación de las diferentes etapas de la embriogénesis somática. Por medio de cortes histológicos, se estableció el origen de los embriones somáticos y las diferencias, a nivel celular, entre cada uno de sus estadios. Se estudió el proceso de formación del callo friable y embriogénico. Todos los tratamientos de desinfección fueron igualmente efectivos, pero se recomienda el uso de una concentración de 4,5% de hipoclorito de sodio, durante 60 minutos. El medio de cultivo más favorable para la inducción de la embriogénesis somática es el que contiene 0,5 mg/l de TDZ y 1 mg/l de 2,4-D y para la germinación, el carente de reguladores de crecimiento. En los medios de cultivo suplementados únicamente con 2,4-D se formaron embriones indirectos, mientras que en los que contenían 2,4-D más TDZ se observaron embriones directos e indirectos, de acuerdo con el regulador de crecimiento empleado, su concentración y con las células que los originaron. La tasa de oxidación, el crecimiento vegetativo, la germinación de los explantes, la formación de callo y de embriones somáticos, dependen de la composición del medio de cultivo. Finalmente, se sembraron los embriones somáticos, que permanecieron cinco semanas en los medios de germinación, en un medio para la regeneración de plántulas, carente de reguladores de crecimiento. Las primeras plántulas se observaron entre la quinta y la onceava semana, dependiendo del medio de germinación del que proviniera.

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6.7.3 Embriogénesis somática, transformación y regeneración de mango (Mangifera indica L.) cv. Ataulfo e Hindi. Rivera M. 2005. Centro de Investigación y de Estudios Avanzados del Instituto Politécnico Nacional, Irapuato; México.

Recientes avances en la genética molecular han hecho posible bloquear o expresar actividades específicas de enzimas involucradas en los procesos de la maduración. Se ha visto que al utilizar las técnicas de ingeniería genética en antisentido, así como la cosupresión es posible bloquear la expresión de genes involucrados en procesos de la maduración de frutos y de esta manera extender su vida comercial.

La manipulación genética de plantas se ha desarrollado con gran precisión en las últimas tres décadas, debido al desarrollo de técnicas avanzadas de DNA recombinante y a los sistemas más eficientes de cultivos de tejidos. Para llevar a cabo la transformación genética de las plantas, se han desarrollado varias técnicas, entre ellas, la transformación mediada por Agrobacterium tumefaciens y la biobalística son las metodologías más ampliamente utilizadas. El cultivo de tejidos no es un pre-requisito para llevar a cabo la transformación genética de plantas, pero se utiliza casi siempre para llevar a cabo un trabajo eficiente en la transferencia del gen, en la selección y en la regeneración de las plantas transformadas. El cultivo de tejidos juega un papel muy importante dado que actúa como un intermediario entre los avances realizados mediante la ingeniería genética y la obtención de plantas transformadas.

De acuerdo a los resultados aquí obtenidos, se requieren aproximadamente 3.6 meses para llevar un embrión del estado globular a plántulas, y en general, 5 meses para obtener plántulas a través de embriogénesis somática utilizando explantes nucelares de mango “Ataulfo”. También, se obtuvieron embriones de “Ataulfo” transformados genéticamente vía Agrobacterium tumefaciens con el gen de la ACC oxidasa en sentido y de “Hindi” transformados vía biobalística con el gen de la ACC oxidasa en antisentido, los cuales no respondieron a la producción de etileno. Aproximadamente el 75 al 80% de los embriones transformados a los cuales se les determinó la producción de etileno mostraron niveles muy bajos de esta hormona. La reducción de los niveles del etileno para “Ataulfo” (mediante co-supresión) fue del 61% y para “Hindi” (utilizando el antisentido) fue del 77%. Los niveles tan bajos detectados de etileno en los embriones transformantes nos indican que el gen introducido en antisentido y en sentido fueron suficientes para reprimir la expresión del gen endógeno correspondiente, en este caso el gen de la ACC oxidasa, así como su acción, y por lo tanto, la producción del etileno.

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Es bien conocido, que el mango es uno de los cinco frutos más importantes en el mundo y que se ha resistido al mejoramiento convencional debido principalmente a su largo ciclo de generación y a su baja deposición de frutos. La aplicación de la biotecnología tiene un alto potencial para proveer alternativas de solución a problemas que afectan directamente a los productores de mango. Por esto, es prioritario el refinamiento de los sistemas de regeneración in vitro para la propagación clonal, la conservación de germoplasmas y para la transformación genética de los diferentes cultivares de mango de importancia comercial en México.

6.7.4 Evaluación de algunas características biométricas de cuatro cultivares de mango (Mangifera indica L.) usados como portainjertos. Merida, M.; Vargas, G.; Sergent, E. 1996. Bioagro 8(2): 48-52.

Se utilizaron los cultivares Bocado, Hilacha, Manga Criolla y Rosado con el propósito de medir y comparar la germinación, poliembrionía, crecimiento y grosor a nivel de injertación, para ser usados como patrones en la injertación del mango. El cultivar Rosado presentó el mayor grosor de injertación, y el “Bocado” la mayor altura, germinación y poliembrionía. Estos dos cultivares presentaron una mayor altura que los cultivares Manga Criolla e Hilacha, a los 8 meses de edad, tiempo en el cual todos alcanzaron grosores adecuados para la injertación. El cultivar Rosado alcanzó el grosor adecuado en un tiempo relativamente más corto que los otros. El "Hilacha" presentó el mayor porcentaje de prendimiento de injertos entre los grosores estudiados; y el "Bocado" presentó los menores valores. Debido a su mayor prendimiento, los resultados sugieren al cultivar Hilacha como el mejor, aunque no se descarta el uso de los otros cultivares estudiados.

6.7.5 Efecto del ácido indolbutirico en el enraizamiento de estacas terminales de ecotipos criollos de mango (Manguifera indica L.). Valladares E.L. 1999. Universidad Nacional Autónoma de Honduras.

El presente trabajo se realizó en el Vivero, perteneciente al Departamento Académico de Producción Agrícola de la Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad Nacional de Tumbes, entre los meses de noviembre de 1998 a enero de 1999.

Los objetivos fueron evaluar el efecto de la aplicación del A.I.B. sobre el enraizamiento de estacas de cinco ecotipos criollos de mango (Manguifera indica L.). Se utilizó un arreglo bifactorial con diseño completamente aleatorio, con 25 tratamientos incluyendo el testigo, el factor ECOTIPO con 5 niveles (agua tibia, de chupar, manzano, morropano y palto) y el factor DOSIS con 5 niveles (0,0; 250; 500; 750 y 1 000 ppm, respectivamente). Las unidades experimentales estuvieron constituidas por ¼ de caja enraizadora en la que se ubicaron 20 estacas. Las estacas se recolectaron en San Jacinto, Cruz Blanca y Sector El Piojo (Tumbes), y se utilizaron estacas de tipo terminal

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provenientes de ramas jóvenes. Como medio enraizante se utilizó arena de río de textura media desinfectada con formol comercial (40 %) a razón de 50 ml/10 L de agua por m2. Se obtuvo como resultado 59 estacas con brotes foliares entre todos los tratamientos llegando a formar 143 hojas, en cuanto a la emisión de raíces en todos los tratamientos no se dieron resultados positivos.

6.7.6 Estimación de la diversidad genética entre cultivares de mango (Mangifera indica) de Florida mediante marcadores RAPD. Vidal M.C.; García E. 2002. Universidad Nacional Experimental “Simón Rodríguez”. Venezuela.

Los 16 iniciadores utilizados en este estudio, generaron 106 fragmentos nítidos, intensos y reproducibles. Se registraron un total de 51 bandas monomórficas y 55 bandas polimórficas a partir de las amplificaciones con estos iniciadores. El número promedio de bandas polimórficas por iniciador fue de 3.67.

Los iniciadores OPA utilizados permitieron la diferenciación entre Tommy Atkins y Van Dyke, pero siguen siendo los cultivares más similares entre sí. La redistribución de los cultivares está en concordancia con su origen Se pudiera inferir sobre el origen de Van Dyke.

Gráfico 2 Dendrograma basado en el análisis de similaridad genética (UPGMA) utilizando el Coeficiente de Jaccard para 97 marcadores RAPD en 10 variedades de Mango de la Florida.

Los marcadores RAPD son una herramienta útil y sencilla que permiten evaluar la diversidad genética existente entre cultivares de mango de la Florida.

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Las agrupaciones obtenidas entre los cultivares de mango de la Florida indican que los iniciadores seleccionados son apropiados para estimar las relaciones genéticas presentes entre ellos. Debido a que la información sobre el origen del cultivar `Glenn´ es incierta, y tomando en cuenta las relaciones genéticas encontradas en esta investigación, se puede sugerir que su origen no es a partir de una semilla de `Haden´, como se había sugerido anteriormente, sino que los parientes pudieran ser otros cultivares. Se puede sugerir que el cultivar Tommy Atkins está involucrado en el origen de Van Dyke, debido a la similitud encontrada entre ambos cultivares.

6.7.7 Germinación de algunas variedades de mango con bajo y mediano porte para ser usadas como patrones. Avilán L.R.; Rodríguez M.; Ruiz J. 1995. Agronomía tropical. 45(3):445-456.

Semillas de las variedades de mango Currucai, Ceylon, Tetenene Manzana, CENIAP-2, Divine, Pig, Perú, Julie, Tolbert, Blackman, Irwin, Fresa, Pico de loro, Selección 80, Rosa y Camphor, seleccionadas por sus portes bajo y mediano para ser empleadas como patrones, fueron evaluadas en su proceso de germinación y comparadas con `Hilacha' y “Bocado”, usualmente utilizadas en el país, las cuales se caracterizan por su elevado vigor vegetativo. Las variedades estudiadas fueron descritas de acuerdo con sus características y las "semillas" fueron sembradas en bolsas de polietileno negro, utilizando suelo previamente desinfectado y expuestas a condiciones ambientales durante 120 días. Semanalmente se determinó la emergencia de los epicotilos en las 108 semillas utilizadas por variedad. Además se calcularon los porcentajes, número medio de días, coeficiente de velocidad y valor de germinación. Las variedades CENIAP-2 y Pico de loro, por sus caracteres de poliembrionía, altos porcentajes y valor de germinación constituyen las mejores opciones.

CUADRO 1. Condiciones climatológicas durante el período del ensayo (junio-septiembre, 1991)1.

Variables M E S E S

Junio Julio Agosto Septiembre

Temperatura oC

Altura del suelo 10 cm Máx. 34.8 35.3 35.2 35.7 Mín. 28.7 27.4 26.8 27.2 Pro.31.7 31.3 31.0 31.4

180 cm Pro.26.3 25.6 24.6 25.3 Precipitación (mm) 47.2 159.5 263.6 103.2 Humedad Relativa % 76.0 75.0 81.0 80.0

1 Datos suministrados por la Estación Meteorológica del Centro Nacional de Investigaciones Agropecuarias (CENIAP). Maracay, estado Aragua. Máx. = Máxima; Mín. = Mínima; Pro. = Promedio.

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El Cuadro 2 muestra algunas de las características de las variedades seleccionadas, donde se destaca que Tolbert, Julie, Divine, Ceylon, Currucai, Tetenene Manzana, Fresa, Irwin y Blackman son monoembriónicas y las restantes, incluyendo los materiales Hilacha y Bocado, tradicionalmente empleadas como patrones poliembriónicos. Vale destacar que en el caso de la variedad Julie, generalmente descrita como monoembriónica, la mitad (50%) de las "semillas" se comportaron como poliembriónicas durante este estudio. Tal versatilidad seminal concuerda con las observaciones de SINGH (1978) quien indica que algunas variedades monoembriónicas pueden tornarse poliembriónicas fuera de sus lugares de origen. De acuerdo con a CHANDLER (1962), la variedad Julie se originó en la isla Reunión (21º LS y 55º LE) como una cruza de las variedades Divine y Or, ambas descendientes de plantas de "semillas" introducidas desde la India.

CUADRO 2. Porte, variedad, tipo de embrionía, peso del fruto, de la "semilla" (1) y almendra, y porcentaje de ocupación de la cavidad.

Porte Variedad Embrionía

Peso Fruto

(g)

Peso Semilla

(g)1

Semilla (% en

el Fruto)

Peso Almendra

(g)

Semilla (%

Ocupación en el

Fruto)

BAJO

Perú Poli2 114,4±12,8 17,53±1,4 15,2 10,1±1,3 90

Julie Mono3 241.2 ± 16.8

23.26 ± 0.2 9.6 11.8 ± 2.5 50

Divine Mono 148.3 ± 18.3 24.6 ± 3.7 16.5 13.3 ± 3.2 50 - 70

Ceylon Mono 177.7 ± 16.5 22.0± 2.1 12.3 14.0 ± 4.2 80

Currucai Mono 126.6 ± 17.5 31.7± 3.4 25.0 19.5 ± 2.2 100

Ceniap-2 Poli 329.1 ± 23.4 29.5± 3.2 8.9 22.3 ±

3.20 90

Pig Poli 213.6 ± 68.2 37.6 ± 6.0 17.6 21.7 ±

5.02 90

Tetenene Mono 196.8 ± 20.9 18.5± 4.5 9.4 11.3 ± 4.4 90

Manzana - - - - - -

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MEDIO

Selección-80 Poli 298.2 ±

29.6 20.6± 3.1 6.9 11.6 ± 2.0 90

Irwin Mono 345.8 ± 45.6 25.1 ± 8.4 7.2 13.4 ± 7.0 40 - 70

Camphor Poli 735.0 ± 111.9 40.8 ± 5.8 5.5 27.0 ± 4.5 50 - 80

Fresa Mono 140.9 ± 20.7 21.7 ± 3.8 15.4 13.9 ± 2.5 90

Rosa Poli 308.9 ± 62.8 34.9 ± 9.7 11.2 21.2 ± 6.9 90

Blackman Mono 207.6 ± 37.7 25.2 ± 7.7 12.1 15.8 ± 6.4 50

Tolbert Poli 465.6 ± 54.2 38.2 ± 4.9 8.2 26.7 ± 3.6 90

Pico de Loro Poli 205.9 ±

21.0 33.4± 2.5 16.2 22.8 ± 1.9 90

ALTO Hilacha Poli 259.7 ±

20.3 39.9± 5.0 15.3 25.6 ± 2.17 100

Bocado Poli 136.5 ± 23.6 19.7± 3.4 14.4 13.6 ±

1.05 100

1 "Semilla" (hueso) = endocarpio * almendra 2 Poli = poliembrionía 3 Mono = monoembrionía

En general, las semillas de variedades monoembriónicas se caracterizaron por presentar un número menor de días promedio para germinar cuando son comparadas con las del tipo poliembriónico.

Los niveles mayores de porcentajes de germinación lo presentaron las variedades Currucai y Pico de loro con 100%, CENIAP-2 con 99%, Perú, Hilacha y Bocado con 96%, respectivamente y Tolbert con 89%.

Los niveles más bajos de germinación los presentaron las variedades Pig (13%), Tetenene Manzana (35%) y Selección 80% (39%).

De acuerdo con el "valor de germinación" los materiales que ocuparon los primeros lugares fueron Tolbert (1.39), CENIAP-2 (1.34), Currucai (1.31), Blackman y Pico de loro (1.14) y Ceylon (1.02).

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Las variedades CENIAP-2 y Pico de loro, por sus características de poliembrionía y altos porcentajes de germinación, constituyen las mejores opciones para obtener patrones que induzcan portes bajos y medios a copas comerciales.

Las variedades Tolbert, Julie, Divine, Ceylon, Currucai, Tetenene Manzana, Fresa, Irwin y Blackman, por su carácter de monoembrionía, no garantizan una homogeneidad del genotipo al emplear su semilla como medio de propagación.

Dada su precocidad en la floración, carácter poliembriónico y alto porcentaje de germinación, a pesar de su elevado promedio de días para germinar, se recomienda el empleo de Camphor como patrón inductor de mediano porte sugiriéndose emplear tratamientos de corte en sus "semillas", como una alternativa para acelerar el proceso de germinación.

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10. Cumare, J.; Avilán, L.R. 1994b. Descripción y caracterización de nueve variedades de mango para ser usadas como patrones. II. Evaluación del vigor y de la eficiencia. Agronomía Tropical 44(3): 393-416.

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8 ANEXOS. 8.1 Características, métodos de propagación de algunas variedades de

mango y periodo de germinación de semillas. (Alix y Duarte, 1999).

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8.2 Tipos de Injertos en Mango (Alix y Duarte, 1999).

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8.3 Otras especies de Mangifera (Alix; Vargas y Lobo, 1999).

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