Recogida de muestras en podología para un correcto diagnostico y tratamiento.

Jesús Gaitán Enríquez. Podólogo. Coordinador de la Clínica de Pie Diabético. Hospital de Sant Pau. UAB. Barcelona.

Congreso Nacional Podología Valladolid,             Octubre, 2012.

IntroducciónIntroducción

• La prevalencia de las heridas en ext. inf. en personas mayores 65 a. alcanza un 5% de la poblacion española.

• La prevalencia en EEUU de infecciones micoticas alcanza el 8,1%

FisiopatologiaFisiopatologia

• La sequedad de la piel y la descamacion de las celulas de la epidermis junto conde la epidermis junto con los fallos de mecanismos de protección de dicha pielde protección de dicha piel tras un traumatismo o maceración, y la disminución del sistema inmunitario (diabetes)  hace que aparezcan las infecciones.

Recogida de muestras más frecuentes en podologia

• Piel: Lesiones infectadas • Uñas: onicomicosis

GeneralidadesGeneralidades1‐Recoger en el sitio exacto de1 Recoger en el sitio exacto de 

lesión2‐Buenas condiciones de 

asepsiaasepsia3‐Mantener la muestra 

alejada de antisepticos o desinfectantes.

4‐Intentar obtener la mayor parte de muestraparte de muestra

5‐No haber iniciado tto. medico

6 Si h bi i i i d6‐Si ya se hubiera iniciado, parar 48 horas/2semanas para tomar una muestra.

Generalidades7‐Usar contenedores esteriles 

y especificos8‐Buen etiquetado de la 

muestra/paciente9‐Enviar las muestras al9‐Enviar las muestras al 

laboratorio lo antes posible.

10 Si di10‐Si no pudiera ser, almacenar en frigorifico a 4ºC, en caso de jeringa.

11‐Las escamas se mantienen a tº ambiente

12‐ Las muestras deberan ir12 Las muestras deberan ir acompañadas de su volante correctamente cumplimentadocumplimentado.

Toma de muestras en heridas superficialesToma de muestras en heridas superficiales

• 1.Lavar la herida con s. fisiologico• 2‐Recoger el pus con aguja y jeringa,2 Recoger el pus con aguja y jeringa, aspirandoSi f ibl bill• Si no fuera posible, se recogera con escobillon esteril.

Toma de muestras heridas profundas infectadas

• Aspiracion percutanea• Aspiracion percutanea• Biopsias y tejidos• Torundas

Aspiracion percutanea I• Realizar la puncion con 

aguja y jeringa con • Atraves de la piel integra  g j y j ginclinacion de 45º.

• Se recomienda aspirar t 1 5 l

periulceral.• Donde mayor tejido de 

granulacion y menos esfacelos entre 1 y 5 ml.• En procesos no supurados 

se inyecta suero salino

granulacion y menos esfacelos• Limpiar en forma concentrica 

con alcohol de 70º se inyecta suero salino esteril  que luego se aspira

co a co o de 0• Desinfectar con PVI al 10%• Esperar un minuto• Eliminar el Iodo con alcohol 

de 70º

Aspiracion percutanea IIAspiracion percutanea II• Una vez realizada la aspiracion 

hay que extraer el aire de la jeringa

l j il• Tapar la aguja con gasa esteril impregnada en alcoholCambiar la ag ja por otra esteril• Cambiar la aguja por otra esteril e inocular el contenido en un vial de transporte para anaerobiosde transporte para anaerobios

• Previamente desinfectar el tapon de goma con PVIg

• Puede taparse tambien la jeringa con un tapon para enviarlo al laboratorio

Biospias y tejidosBiospias y tejidos

• Eliminar el pus, el tejido necrotico y los tejidos devitalizadosdevitalizados

• Lavar a chorro con S. FisiologicoFisiologico

• La muestra se obtiene mediante biopsia: psacabocados (puncht) o procedimiento quirurgico abierto de las zonas que manifiesten infeccion

Torundas• Eliminar antimicrobianos topicos• Eliminar esfacelos y tejidos• Eliminar esfacelos y tejidos 

muertos• Lavar cuidadosamente con s. 

Fisiologico• Hay que girar la torunda con 

movimientos rotatorios de derecha a izquierda y viceversa.

• Frotar en las zonas mas infectadasinfectadas

• No frotar con fuerza para evitar el sangrado

• En heridas muy secas: impregnar la torunda en s.fisiologico

• Se recomienda torunda de• Se recomienda torunda de alginato

Transporte de las muestrasTransporte de las muestrasL l d d l l i Si d• Los resultados del cultivo dependen de la demora del transporte y de sus 

• Si son mas grandes en contenedores esteriles impregnados en gasa p y

condiciones de conservaciónL d di

p g gesteriles con s. fisiologico

• Deben enviarse i di d• Las torundas en su medio 

de transporte especifico (anaerobios)

inmediatamente antes de las dos horas. Si el transporte se demora ( )

• Las biospsias si son fragmentos pequeños se i l i l d

pmantener a temperatura ambiente (18/24º)

inoculan en un vial de transporte para anaerobios

Diagnostico de infecciónDiagnostico de infecciónl d d f ó d• El diagnostico de infección de una ulcera cronica se basa unicamente en los signos clasicos: eritema, edema, aumento de la temperatura, dolor.

• El diagnostico microbiologico se reserva para los casos en los que haya habido mala respuesta ahaya habido mala respuesta a tto. antimicrobianos o heridas delarga evolucion que no cicatrizan 

i d d ien un periodo de tiempo razonable.

Lamina ungueal no distroficaLamina ungueal no distrofica

• Solucion Alcoholica de 70º• No secar• Interrumpir el tto. 

Antifungico al menos 2 semanassemanas

Lamina ungueal no distroficaLamina ungueal no distrofica

• No requiere fresado unguealS t t• Se recortara parte mas cercana a la lesion

• Se recoge con bisturi las• Se recoge con bisturi las escamas de la zona lesiva en capsula de Petrip

• En caso de lesion exudativa usar escobillon.

Lamina ungueal distroficaLamina ungueal distrofica

• Fresar toda la uña hasta alcanzar el lecho

Lamina ungueal distroficaLamina ungueal distrofica

• El lecho es la zona de mayor actividad del hongo.

• Se recoge y transporta en capsula de Petri

Recogida de muestras en dermatofitosis

• Lavar con alcohol 70º sin frotar

• Rascar la piel con hoja de bisturi o similar las escamas en la zona central

• Colocar en capsula de Petri.

ObjetivoObjetivo

• La obtencion adecuada de una muestra, su conservación y transporte es la operación más y p pimportante del podologo para llegar a un correcto diagnostico y a un buen tratamientocorrecto diagnostico y a un buen tratamiento.

RecordarRecordar

• Nombre y apellidos del paciente• Inicio del proceso y tiempo de evoluciónInicio del proceso y tiempo de evolución• Datos clinicos y diagnosticos• Tratamiento antiinfeccioso en caso de exisitir.• Tipo de muestra origen y tecnica de recogidaTipo de muestra, origen y tecnica de recogida• Determinaciones solicitadas y fecha de recogida.

BibliografiaBibliografia• A Zalacain y col La importancia de una adecuada recogida de muestras para el• A. Zalacain y col. La importancia de una adecuada recogida de muestras para el 

diagnostico micologico de la tiña ungueal.• De la Rosa, M. Prieto, J. ”Microbiología en ciencias de la salud” Conceptos y 

aplicaciones. Ed.Elsevier II edición, 2003; Cap 15, 126‐127.• Koneman EW, Allen S, Janda W, Schreckenberger P,Win W. ”Diagnóstico 

microbiológico” Texto y atlas color. ed. Panamericana V edición, 1999; cap. 19, 962‐963. 

• Baran R Haneke E “Fungal Nail Infection” in Nail Surgery A Text and Atlas ed by• Baran R, Haneke E. Fungal Nail Infection  in Nail Surgery. A Text and Atlas, ed by EA Krull, EG Zook, R Baran, et al. Lippincott Williams & Wilkins Philadelphia, 2001; p 183.

• García Carmona FJ et al. ”Recogida transporte y conservación de muestras”. ( )Revista Española de Podología, 1999; X (2):113‐121.

• Ropa Moreno JM et al. ”Sesión clínica onicomicosis: ¿son eficaces los cultivos?”. Revista Española de Podología, 2000; XI(4): 282‐285.

• www seimc org• www.seimc.org• A. Murillo. Procedimientos en microbilogia clinica.Recomendaciones de la SEIM. 

2006.