Embed Size (px)
Citation preview
OPTIMASI PERTUMBUHAN DAN KADAR FLAVONOID TANAMAN
SAMBUNG NYAWA (Gynura procumbens [LOUR.] MERR.) PADA
HIDROPONIK SISTEM DFT (Deep Flow Technique)
SKRIPSI
Disusun Oleh :
IKHLASOTUL FAWAIDAH
NIM: H01216011
PROGRAM STUDI BIOLOGI
FAKULTAS SAINS DAN TEKNOLOGI
UNIVERSITAS ISLAM NEGERI SUNAN AMPEL
SURABAYA
2020
ii
LEMBAR PERSETUJUAN PEMBIMBING
Skripsi oleh
NAMA : IKHLASOTUL FAWAIDAH
NIM : H01216011
JUDUL : OPTIMASI PERTUMBUHAN DAN KADAR FLAVONOID
TANAMAN SAMBUNG NYAWA (Gynura procumbens
[LOUR.] MERR.) PADA HIDROPONIK SISTEM DFT
(Deep Flow Technique)
Telah diperiksa dan disetujui untuk diujikan.
Surabaya, 22 Juli 2020
Dosen Pembimbing I
Irul Hidayati, M.Kes.
NIP 198102282014032001
Dosen Pembimbing II
Hanik Faizah, M.Si.
NUP 201409019
vii
ABSTRAK OPTIMASI PERTUMBUHAN DAN KADAR FLAVONOID TANAMAN
SAMBUNG NYAWA (Gynura procumbens [LOUR.] MERR.) PADA
HIDROPONIK SISTEM DFT (Deep Flow Technique)
Gynura procumbens (Lour.) Merr. atau sambung nyawa adalah tanaman obat
yang memiliki banyak aktivitas farmokologis seperti antikanker, antioksidan,
antiinflamasi, dan antimikroba. Aktivitas tersebut berkaitan dengan tingginya
kandungan senyawa flavonoid pada tanaman sambung nyawa sehingga perlu
dilakukan kultivasi tanaman. Namun kultivasi secara konvensional menggunakan
tanah memiliki banyak kelemahan, sehingga dilakukan alternatif lain yakni
dengan sistem DFT. Tujuan penelitian ini adalah untuk mengetahui perbedaan
pertumbuhan dan kadar flavonoid antara tanaman sambung nyawa pada kultivasi
sistem hidroponik DFT dengan media tanah. Penelitian ini menggunakan
perbandingan dua kelompok yakni sistem DFT sebagai kelompok perlakuan dan
media tanah sebagai kelompok kontrol dengan bahan stek batang dari tanaman
sambung nyawa. Stek batang kemudian ditanam pada sistem DFT dan media
tanah selama 30 hari. Setelah panen dilakukan pengukuran dan analisa variabel
pertumbuhan. Sedangkan penetapan kadar flavonoid dilakukan dengan
spektrofotometer UV-Vis. Data variabel pertumbuhan dianalisa menggunakan uji
T independent dan uji Mann Whitney untuk jumlah daun. Hasil penelitian
menunjukan terdapat perbedaan yang signifikan (p<0,05) antara jumlah daun,
berat segar dan berat kering tanaman pada sistem DFT dengan media tanah.
Sedangkan jumlah akar tidak terdapat perbedaan yang signifikan. Adapun nilai
rata-rata pada semua variabel pertumbuhan dalam sistem DFT diketahui lebih
tinggi jika dibandingkan dengan kultivasi pada media tanah. Selain itu perlakuan
hidroponik sistem DFT dapat meningkatkan kadar kuersetin pada ekstrak akar dan
daun dengan nilai masiing-masing 2,322mgQE/gr and 0,747 mgQE /gr.
Kata kunci : kadar flavonoid, media tanah, pertumbuhan, sistem DFT , tanaman
sambung nyawa
viii
ABSTRACT OPTIMIZATION OF GROWTH AND FLAVONOID LEVELS ON
SAMBUNG NYAWA’S PLANT (Gynura procumbens [LOUR.] MERR.) AT
DFT (Deep Flow Technique) HYDROPONIC SYSTEM
Gynura procumbens (Lour.) Merr. or sambung nyawa is medicinal plant that has
many pharmacological activities such as anticancer, antioxidant, antiinflammatory
and anti-microbial. Those activities relates with the flavonoid contents on
sambung nyawa’s plant to the point needed plenteous act. Conventional plant
cultivation using soil has a lot weakness. Therefore the using of other method
which is in this case is DFT system is recommended. The study aimed to
investigate the effect of defferent between DFT cultivation and soil cultivation to
plants growth and flavonoid content on sambung nyawa’s plant. The study using
two group experiment first system DFT as group treatment and soil media as
control. This study using stem cutting from sambung nyawa’s plant then it plant at
DFT system and soil system. Plant growth was observed by measuring and
analyzing growth variables of the plant at the end of the planting period after 30
days of planting. Growth variable data were analyzed by independent T test and
Mann Whitney test. While the measurement of flavonoid content was performed
by UV-Vis spectrophotometer. Result showed that there was significant defferent
(p<0,05) between the number of leaves, fresh weight and dry weight in DFT
system and soil media. However number of root have no significant defferent.
Besides, the avarage growth variable on DFT system was highest than soil system.
The DFT system can increase flavonoid levels of root and leaves sambung
nyawa’s plant with the respective values of 2,322mgQE/gr and 0,747 mgQE /gr.
Keyword : DFT system, soil, kuersetin levels, growth, sambung nyawa’s plant
xi
DAFTAR ISI
Halaman Sampul ...................................................................................... i
Lembar Persetujuan ................................................................................. ii
Lembar Pengesahan ................................................................................. iii
Halaman Pernyataan Keaslian Karya Ilmiah............................................. iv
Halaman Pernyataan Publikasi ................................................................. v
Halaman Persembahan ............................................................................. vi
Abstrak .................................................................................................... vii
Kata Pengantar ......................................................................................... ix
Daftar Isi .................................................................................................. xi
Daftar Tabel ............................................................................................. xiv
Daftar Gambar ......................................................................................... xv
Daftar Lampiran....................................................................................... xvi
BAB I PENDAHULUAN ....................................................................... 1
1.1 Latar Belakang ............................................................................. 1
1.2 Rumusan Masalah ........................................................................ 5
1.3 Tujuan Penelitian ......................................................................... 5
1.4 Manfaat Penelitian........................................................................ 6
1.5 Batasan Penelitian ........................................................................ 6
1.6 Hipotesis Penelitian ...................................................................... 7
BAB II TINJAUAN PUSTAKA ............................................................ 8
2.1 Tanaman Sambung Nyawa ........................................................... 8
2.1.1 Klasifikasi Tanaman ............................................................ 8
2.1.2 Nama Daerah Tanaman........................................................ 9
2.1.3 Penyebaran Tanaman ........................................................... 9
2.1.4 Morfologi Tanaman ............................................................. 9
2.1.5 Budidaya Tanaman .............................................................. 10
2.1.6 Kandungan Tanaman Sambung Nyawa ................................ 11
2.2 Sistem Hidroponik........................................................................ 13
2.2.1 Media Tanam ...................................................................... 16
2.2.2 Unsur Zat Hara .................................................................... 16
2.2.3 Oksigen ............................................................................... 18
2.2.4 Aerasi dan Temperatur ........................................................ 18
xii
2.2.5 pH ....................................................................................... 19
2.2.6 Air ....................................................................................... 19
2.3 Hidroponik Sistem DFT .............................................................. 20
2.3.1 Mekanisme Penyerapan Nutrisi pada sistem DFT ................ 21
2.4 Senyawa Flavonoid ...................................................................... 23
2.4.1 Kuersetin ............................................................................. 26
2.5 Ekstraksi....................................................................................... 28
2.6 Spektrofotometer UV-V .............................................................. . 30
BAB III METODE PENELITIAN ........................................................ 32
3.1 Rancangan Penelitian ................................................................... 32
3.2 Tempat dan Waktu Penelitian ....................................................... 33
3.3 Alat dan Bahan ............................................................................. 33
3.4 Variabel Penelitian ....................................................................... 34
3.5 Prosedur Penelitian ....................................................................... 34
3.5.1 Pembuatan Larutan AB Mix ................................................ 34
3.5.2 Perakitan Pipa Hidroponik ................................................... 34
3.5.3 Penanaman .......................................................................... 35
3.5.4 Pemanenan .......................................................................... 36
3.5.5 Analisis Flavonoid ............................................................... 36
A. Ekstraksi Sampel ............................................................. 36
B. Penentuan Kadar Flavonoid Total Menggunakan
Spektrofotmetri UV Vis ................................................... 37
1. Pembuatan Larutan standar kuersetin .......................... 37
2. Pembuatan Kurva Baku Kuersetin ............................... 38
3. Penetapan Kadar Flavonoid Ekstrak ............................ 38
3.6 Analisis Data ................................................................................ 39
BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN................................................. 40
4.1 Perbedaan Pengaruh Kultivasi Hidroponik Sistem DFT
(Deep Flow Technique) dan Media Tanah terhadap Pertumbuhan
G. procumbens ........................................................................... 40
4.1.1 Jumlah Akar ................................................................... 42
xiii
4.1.2 Jumlah Daun ................................................................... 47
4.1.3 Berat Segar Tanaman ...................................................... 50
4.1.4 Berat Kering Tanaman .................................................... 52
4.2 Perbedaan Pengaruh Kultivasi Hidroponik Sistem DFT
(Deep Flow Technique) dengan Media Tanah terhadap Kadar
Flavonoid Akar dan Daun G.procumbens ................................... 55
BAB V PENUTUP ................................................................................. 61
5.1 Kesimpulan .............................................................................. 61
5.2 Saran ........................................................................................ 61
DAFTAR PUSTAKA ............................................................................. 62
LAMPIRAN
xiv
DAFTAR TABEL
Tabel 3.1 Rancangan Penelitian .............................................................. 32
Tabel 3.2 Jadwal Pelaksanaan Penelitian .................................................. 33
xv
DAFTAR GAMBAR
Gambar 2.1 Tanaman Sambung Nyawa (G.procembens [Lour.] Merr),
Batang dan Akar Tanaman Sambung Nyawa, Daun
Tanaman Sambung Nyawa 8 ............................................... 8
Gambar 2.2 Sistem Hidroponik DFT (Deep Flow Technique) ................. 21
Gambar 2.3 Penyerapan Ion oleh Akar Tanaman ..................................... 22
Gambar 2.4 Struktur Dasar Flavonoid ...................................................... 24
Gambar 2.5 Reaksi Sintesis Senyawa Flavonoid ..................................... 24
Gambar 2.6 Struktur Kuersetin ................................................................ 27
Gambar 3.1 Sistem Hidroponik DFT ....................................................... 35
Gambar 4.1 Tanaman Sambung Nyawa (G.procumbens) yang
Telah Berumur 30 hari pada Sistem Hidroponik DFT (a)
dan Media Kontrol Tanah (b) ................................................. 40
Gambar 4.2 Diagram Perbandingan Nilai Rata-Rata Perlakuan Kultivasi
Sistem DFT dan Media Tanah terhadap Jumlah Akar Tanaman
G.procumbens........................................................................ .. 43
Gambar 4.3 Diagram Perbandingan Nilai Rata-Rata Perlakuan Kultivasi
Sistem DFT dan Media Tanah terhadap Jumlah Daun Tanaman
G.procumbens........................................................................ .. 48
Gambar 4.4 Diagram Perbandingan Nilai Rata-Rata Perlakuan Kultivasi
Sistem DFT dan Media Tanah terhadap Berat Segar Tanaman
G.procumbens........................................................................ .. 51
Gambar 4.5 Diagram Perbandingan Nilai Rata-Rata Perlakuan Kultivasi
Sistem DFT dan Media Tanah terhadap Berat Kering Tanaman
G.procumbens........................................................................ .. 53
Gambar 4.6 Kurva Standar Kuersetin pada Panjang Gelombang 514 ........ 55
xvi
DAFTAR LAMPIRAN
Lampiran 1 Hasil Uji T Independent pada Jumlah Akar
G. procumbens ....................................................................... I-1
Lampiran 2 Hasil Uji Kruskal Wallis dan Mann Whitney pada Jumlah
Daun G. procumbens ............................................................. II-1
Lampiran 3 Hasil Uji T Independent pada Berat Segar G. procumbens .... III-1
Lampiran 4 Hasil Uji T Independent pada Berat Kering G. procumbens... IV-1
Lampiran 5 Perhitungan Kadar Kuersetin ................................................. V-1
Lampiran 6 Kegiatan Penelitian ............................................................... VI-1
1
BAB I
PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang
Gynura procumbens (Lour.) Merr. atau dikenal dengan sambung nyawa
adalah tanaman obat yang berasal dari famili Asteraceae (Rahman dan Asad,
2013). Tanaman ini tersebar hampir keseluruh penjuru Asia tropis
sepertiIIndonesia, China, Myanmar, Malaysia danTThailand. Setiap negara
memiliki cara yang berbeda-beda untuk memanfaatkannya. Secara umum
sambung nyawa dikonsumsi sebagai obat herbal yang dapat menyembuhkan
beberapa penyakit seperti hipertensi, ginjal, menjaga sistem kardiovaskuler, dan
meningkatkan kesuburan (Wiart,2006). Berbagai penelitian menunjukkan bahwa
terdapat aktivitas farmakologis pada tanaman ini seperti anti-kanker, anti-oksidan,
anti-hiperglikemik, anti-inflamasi, dan anti-mikroba (Tan et al., 2016). Aktivitas
tersebut berkaitan dengan adanya senyawa bioaktif pada tanaman tersebut, seperti
flavonoid, alkaloid, kumarin dan glikosid (Akowuah et al., 2002).
Flavonoid adalah salah satu jenis metabolit sekunder yang banyak
ditemukan pada tanaman sambung nyawa. Pada penelitian yang dilakukan
Kaewseejan et al. (2015), terdapat lima komponen flavonoid yaitu kuersetin,
apigenin, rutin, kaempferol, mirisetin yang berhasil diisolasi dari daun sambung
nyawa. Flavonoid yang memiliki ciri khas rangka atom C6 - C3 - C6
berkemampuan untuk menangkap radikal bebas (Peterson dan Dwyer, 1998).
Banyak penelitian yang secara intensif mempelajari mengenai senyawa tersebut.
Pada penelitian Afandi dkk. (2014), ekstraksi tanaman sambung nyawa diketahui
2
mengandung total flavonoid dengan jumlah yang tinggi berkisar 0.67 – 1.17 mg
dan mampu berperan sebagai inhibitor enzim CYP3A4 dan CYP1A2, serta
berpotensi sebagai zat anti karsinogen. Flavonoid banyak dimanfaatkan dalam
berbagai bidang antara lain bidang makanan, kosmetik dan industri farmasi
(Jedinak et al., 2004). Oleh karena manfaatnya yang beragam, maka perlu
dilakukan upaya untuk memproduksi senyawa flavonoid. Salah satunya dengan
kultivasi tanaman sambung nyawa.
Kultivasi tanaman sambung nyawa dapat dilakukan secara vegetatif,
melalui teknik stek batang. Adapun perbanyakan secara generatif jarang
dilakukan, hal tersebut karena tanaman sambung nyawa tidak menghasilkan biji
(Herti dan Suharmiati, 2006). Teknik stek batang mempunyai beberapa
keuntungan diantaranya biaya produksi yang murah, tidak membutuhkan alat
khusus dan dapat dilakukan sepanjang tahun (Kantarli, 1993). Umumnya
penanaman stek secara konvensional, memerlukan media tanah yang cukup
banyak sehingga kurang efektif. Selain itu pertumbuhan tanaman membutuhkan
waktu yang lama (Fanesa, 2011). Salah satu cara untuk mengatasinya adalah
menanam stek melalui sistem hidroponik.
Hidroponik adalah metode kultivasi tanaman tanpa menggunakan tanah
dan dilakukan dalam aliran nutrisi atau soilless (Resh, 2001). Metode hidroponik
merupakan salah satu cara untuk mengatasi keterbatasan lahan tanam di daerah
perkotaan dan iklim yang tidak menentu (Seikh, 2006). Selain itu sistem
pengairan pada sistem hidroponik dapat diatur sedemikian rupa sehingga
ketersediaan nutrisi dan air yang diperlukan untuk produktivitas tanaman dapat
terjaga. Manfaat lainnya adalah dapat mengurangi penggunaan pestisida (Bar
3
Yosep, 2008). Prasad et al., (2012) melaporkan bahwa budidaya tanaman Centella
asiatica (L.) dengan sistem hidroponik mampu menghasilkan tanaman dengan
kualitas yang tinggi dan bebas pestisida.
Komponen utama pada kultivasi hidroponik secara umum adalah air.
Pentingnya keberadaan air telah dijelaskan di dalam Al-Qur’an pada surat An-
Nahl ayat 10 berikut:
اب وموى شجر فيى تسيمن لذكم موى ش ماء ماء هزل من ٱلسذي أ ٱلذ ١٠ي
Artinya: ―Dia-lah, yang telah menurunkan air hujan dari langit untuk kamu,
sebahagiannya menjadi minuman dan sebahagiannya (menyuburkan) tumbuh-
tumbuhan, yang pada (tempat tumbuhnya) kamu menggembalakan ternakmu’’
(QS An-Nahl/16:10)
Ayat ini menerangkan berbagai kenikmatan yang diberikan Allah kepada
makhluk-Nya dalam hal ini air. Air diperlukan sebagai kebutuhan utama manusia,
hewan maupun tumbuhan. Pada penggalan ayat ‘’ منه شجر yang berarti ’‘ و
menyuburkan tanaman memiliki penjelasan bahwa Allah yang menumbuhkan
berbagai macam tumbuhan dengan bantuan air hujan. Allah mengeluarkan air dari
dalam bumi, kemudian dapat tumbuhlah berbagai tumbuhan dengan aneka rasa,
warna dan bentuk (Shihab, 2002).
Ayat diatas juga mengingatkan manusia agar selalu mensyukuri segala
bentuk kenikmatan yang diberikan Allah (Shihab, 2002). Sesuai dengan uraian
ayat tersebut, hidroponik yang memiliki konsep bertanam tanpa tanah memiliki
media utama berupa air. Air menjadi sumber utama untuk menopang kehidupan
tanaman secara hidroponik. Melalui air, nutrisi dapat dialirkan ke dalam sistem
dan diserap oleh akar tanaman untuk diedarkan ke seluruh bagian tanaman.
4
Saat ini hidroponik telah berkembang menjadi 8 jenis yaitu Nutrien Film
Technique (NFT), Ebb and Flow Technique (EFT), Static Aerated Technique
(SAT), Deep Flow Technique (DFT), Aerated Flow Technique (AFT), Drip
Irigation Technique (DIT), Fog Fedd Technique (FFT) dan Root Mist Technique
(RMT) (Chadirin, 2007). Diantara sistem hidroponik tersebut, sistem Deep Flow
Technique (DFT) dinilai mampu meningkatkan pertumbuhan dan biomassa
tanaman. Prinsip kerja dari sistem DFT adalah menyirkulasi larutan nutrisi dengan
aerasi secara terus menerus, selama 24 jam dalam aliran tertutup (Atmajaya,
2009). Penggunaan sistem hidroponik DFT dapat meningkatkan biomassa
tanaman, seperti pada kultivasi tanaman mint jepang (Mentha arvensis L. var.
piperascens Malinv) (Vimolmangkang et al.,2010), tanaman jombang (Taraxacum
officanale L.) (Gill, 2015) dan tanaman spearmint (Mentha spicata)
(Chrysargyrisa et al., 2019).
Selain dapat meningkatkan pertumbuhan tanaman, kultivasi hidroponik
DFT juga dapat meningkatkan produksi metabolit sekunder pada tanaman karena
lingkungan yang terkontrol dan nutrisi tanaman yang selalu tersedia secara terus
menerus. Penggunaan hidroponik sistem DFT telah banyak diketahui
keberhasilannya dalam meningkatkan metabolit sekunder, seperti senyawa
saponin bakosida pada Bacopa monnieri (Maneeply et al., 2018), minyak atsiri
pada mint jepang (Mentha arvensis L. var. piperascens Malinv) dan mint umum
atau spearmint (Mentha spicata) (Vimolmangkang et al., 2010) serta asam sikorat
pada Echinacea angustifolia (Zheng et al., 2006).
Sejauh yang telah diketahui belum terdapat penelitian mengenai
optimalisasi pertumbuhan dan kadar flavonoid tanaman sambung nyawa secara
5
hidroponik dengan sistem DFT (Deep Flow Technique). Oleh karena itu,
penelitian ini dilakukan untuk mengetahui perbandingan optimasi pertumbuhan
dan kadar flavonoid tanaman sambung nyawa (G.procumbens [Lour.] Merr.) pada
hidroponik sistem DFT (Deep Flow Technique) dan media tanah.
1.2 Rumusan Masalah
Adapun permasalahan pokok dalam penelitian ini adalah
1. Bagaimana perbedaan pertumbuhan tanaman sambung nyawa (Gynura
procumbens [Lour.] Merr.) pada kultivasi hidroponik sistem DFT (Deep
Flow Technique) dan media tanah?
2. Bagaimana perbedaan kadar flavonoid tanaman sambung nyawa (Gynura
procumbens [Lour.] Merr.) pada kultivasi hidroponik sistem DFT (Deep
Flow Technique) dan media tanah?
1.3 Tujuan Penelitian
Adapun tujuan dalam penelitian ini adalah
1. Untuk mengetahui perbedaan pertumbuhan tanaman sambung nyawa
(Gynura procumbens [Lour.] Merr.) pada kultivasi hidroponik sistem
DFT (Deep Flow Technique) dan media tanah.
2. Untuk mengetahui perbedaan kadar flavonoid tanaman sambung nyawa
(Gynura procumbens [Lour.] Merr.) pada kultivasi hidroponik sistem
DFT (Deep Flow Technique) dan media tanah.
6
1.4 Manfaat Penelitian
Adapun manfaat yang dapat diberikan dari penelitian ini adalah :
1. Bagi Mahasiswa/Peneliti
Menambah wawasan keilmuan dan sebagai dasar untuk melakukan penelitian
terkait pengaruh penggunaan hidroponik sistem DFT (Deep Flow Technique)
bagi pertumbuhan dan kadar flavonoid tanaman sambung nyawa (Gynura
procumbens [Lour.] Merr.).
2. Bagi Masyarakat dan Instansi Pendidikan
a. Sebagai sumber belajar untuk mendalami metode kultivasi tanaman
sambung nyawa (Gynura procumbens [Lour.] Merr.) pada hidroponik
sistem DFT (Deep Flow Technique).
b. Memberikan informasi dan tata cara mengenai penerapan hidroponik sistem
DFT sebagai salah satu metode kultivasi tanaman yang dapat dilakukan
pada lahan terbatas serta memberikan hasil yang maksimal
1.5 Batasan Penelitian
Berdasarkan tujuan penelitian, agar tidak terjadi kesalahan dalam penafsiran
judul maka perlu dijelaskan mengenai batasan penelitian yang diteliti.
Adapun batasan penelitiannya adalah sebagai berikut.
1. Subjek penelitian adalah sistem kultivasi dengan sistem hidroponik DFT
(Deep Flow Technique) dan media tanah.
2. Objek penelitian adalah tanaman sambung nyawa (Gynura procumbens
[Lour.] Merr.).
3. Nutrisi yang digunakan untuk penelitian adalah nutrisi AB mix dengan
takaran 12 ml untuk 1 liter air.
7
1.6 Hipotesis Penelitian
Terdapat perbedaan pertumbuhan dan kadar flavonoid tanaman sambung
nyawa (Gynura procumbens [Lour.] Merr.) pada kultivasi hidroponik sistem
DFT (Deep Flow Technique) dan kultivasi media tanah.
8
BAB II
TINJUAN PUSTAKA
2.1 Tanaman Sambung Nyawa (G. procumbens)
2.1.1 Klasifikasi Tanaman
Klasifikasi dari tanaman sambung nyawa atau dengan nama latin Gynura
procumbens [Lour.] Merr adalah sebagai berikut:
Kingdom : Plantae
Division : Spermatophyta
Class : Angiospermae
Order : Asterales
Family : Asteraceae
Genus : Gynura
Species : Gynura procembens[Lour.] Merr.
(Backer, A, dan Van de Brink1965)
Gambar 2.1. (A) Tanaman Sambung Nyawa (G.procembens [Lour.] Merr), (B) Batang dan
Akar Tanaman Sambung Nyawa, (C) Daun Tanaman Sambung Nyawa.
(Sumber : Dokumentasi Pribadi, 2019)
C B A
9
2.1.2 Nama Daerah Tanaman
Tanaman sambung nyawa memiliki banyak nama daerah, diantaranya
adalah beluntas cina (melayu), daun sambung nyawa (Sumatra), ngokilo
(Jawa), akar sabiak (Malaysia), Paetumpung (Thailand) dan san qi cao(Cina)
(Pujiasmanto, 2010).
2.1.3 Penyebaran Tanaman
Tanaman sambung nyawa (G. procumbens) adalah tanaman herba dengan
pertumbuhan yang cepat. Tanaman ini berasal dari China dengan nama lokal
‘’baibingca’’. Genus Gynura memiliki 44 spesies yang tersebar luas dari
Afrika Selatan, Asia seperti China, Indonesia, Malaysia, Thailand, Philipina
dan Myanmar hingga Australia. Keragaman tertinggi spesies Gynura
ditemukan di bagian Asia Selatan (Pujiasmanto, 2010).
2.1.4 Morfologi Tanaman
Tanaman sambung nyawa atau G. procumbens termasuk dalam jenis
tanaman herba dengan jenis batang basah, sekilas menyerupai rumput
berbatang tegak dengan bentuk perduLtegak saat berusiaLmuda
danLmerambat setelah mulaiLtua. Bentuk batang segiempat beruas-ruas, ruas
memanjang dari pangkal hingga ke ujung berwarna hijau dengan bercak ungu
seperti yang ditunjukan pada gambar 2.1(b). Daun tunggal berbentuk bulat
telur tersebar atau elips memanjang. Tepi daun bertoreh dan berambut halus.
Ujung dan pangkal daun lancip. Panjang tangkai antara 0,5- 3,5 cm, panjang
helai daun berkisar 3,5-12,35 cm dengan lebar 1-5,5 cm. Daun berwarna
hijau pada bagian bawah berwarna hijau muda mengkilat seperti pada gambar
2.1.(c). Jenis pertulangan daun menyirip. Daun berdaging dan berletak
10
berseling. TiapLpangkalLruas terdapatLtunasLberwarna hijau kekuningan.
Tidak berbunga daan tidak berbiji. Setiap tangkai daun serta helai daun
menghasilkan kelenjar minyak. Tanaman ini memiliki sistem perakaran
berjenis serabut dan tidak menghasilkan buah (Herti dan Suharmiati, 2006).
Tanaman sambung nyawa memiliki kemiripan dengan daun dewa atau
G. pseudochina. Sekilas keduanya memiliki bentuk yang serupa, yang
membedakan diantara keduanya adalah pada daun dewa memiliki struktur
daun yang runcing, berbunga, daun berambut halus dan tangkai daun pendek.
Selain itu pembeda lainnya adalah jika pada tanaman sambung nyawa sistem
perakaran tidak membentuk umbi sedangkan pada daun dewa membentuk
umbi. Daun tanaman sambung nyawa beraroma sedap, tidakLmengandung
racun dan bertesktur lembut sehingga aman untuk dikonsumsi (Herti dan
Suharmiati, 2006).
2.1.5 Budidaya Tanaman
Tanaman sambung nyawa dapat tumbuh pada hampir semua jenis
tanah asalkan tanah tersebut gembur. Sambung nyawa dapat tumbuh optimal
di dataran tinggi hingga ketinggian 1250 mdpl dengan curah hujan 1500
hingga 3000 mm/per tahun. Umumnya sambung nyawa ditanam di tempat
yang teduh dengan intesitas cahaya berkisar 60% dan suhu 20-30 derajat
celcius(Herti dan Suharmiati, 2006).
Pembibitan tanamanLdilakukan dengan cara stek batang. Umumnya
pada media polibag, menggunakan stek batang dengan panjang 5-7 cm.
Semua daun pada batang stek dipotong kecuali daun ke 3 atau 4 disisakan
namun ujung daun dipotong. Hal tersebut bertujuan untuk fotosintesis
11
tanaman. Saat satu tahun pertama, tanaman sambung nyawa tidak boleh
terkena langsung sinar matahari. Hal tersebut untuk mencegah peristiwa
menguning pada daun dan pertumbuhan tanaman yang tidak optimal (Mou
and Dash, 2016). Intensitas penyiraman dilakukan setiap hari tergantung pada
media. Jika media tidak kering maka tidak dilakukan penyiraman. Saat
tanaman sudah memiliki helai daun berjumlah 4 sampai 6 helai, maka
dipindahkan ke dalam polybag besar agar tidak menghambat pertumbuhan
tanaman (Winarto dan Tim Karyasari 2003).
2.1.6 Kandungan Tanaman Sambung Nyawa
Islam telah menjelaskan bahwa Allah menciptakan tumbuhan dengan
berbagai manfaat di dalamnya salah satunya kandungan senyawa aktif pada
tumbuhan, yang dapat dimanfaatkan oleh makhluk hidup yang lain. Seperti
tertera pada firman Allah dalam surat Asy-Syuára ayat 7 berikut
زوج كريم ا من ك نبتوا في
رض كم أ
و لم يروا إل ٱل
٧أ
Artinya : ―Dan apakah mereka tidak memperhatikan bumi, berapakah
banyaknya Kami tumbuhkan di bumi itu pelbagai macam tumbuh-tumbuhan
yang baik? ’’ (QS Asy-Syu`ara/42:7) .
Penggalan kata ‘’ila’’ pada awal kalimat bermakna batas akhir. Kata tersebut
bertujuan memperluas wawasan manusia terhadap tanah dan berbagai
fenomena yang dijumpai pada tumbuhan. Sedangkan kata ‘’zaujah’’berarti
berpasangan. Maksud dari kata ini adalah setiap tanaman memiliki dua
kelamin yakni putik sebagai alat kelamin betina dan benang sari sebagai alat
kelamin jantan. Sedangkan kata ‘’karim’’ menggambarkan sesuatu yang baik
(Shihab, 2002).
12
Ayat tersebut didalamnya juga terdapat kalimat yang berarti ‘’tumbuh-
tumbuhan yang baik’’, makna dari kalimat tersebut adalah tumbuhan yang
baik memilikiLbentuk dan warna (Al-Qurthubi ,2009). Tumbuhan dikatakan
baik apabilaLmemiliki manfaatLdan berpotensi sebagai tanaman obat, salah
satunya adalah tanaman sambung nyawa. Berbagai penelitian menunjukan
terdapat aktivitas farmakologis pada tanaman ini seperti antikanker,
antioksidan, antihiperglemik, antiinflamasi, dan antimikroba (Tan et al.,
2016).
Tanaman sambung nyawa (G. procembens[Lour.] Merr) mengandung
sejumlah senyawa aktif. Senyawa tersebut diantaranya, flavonoid, asam
kafeat, asam vanilat, triterpenoid, saponin, steroid,minyak atsiri, asam p-
hidroksi benzoate dan asamLp-kumarat. Pada penelitian Afandi et al. (2014),
ekstraksi daun tanaman sambung nyawa diketahui mengandung total
flavonoid dengan jumlah yang tinggi berkisar 0,67 – 1,17 mg dan mampu
berperan sebagai inhibitor enzim CYP3A4 dan CYP1A2. Serta berpotensi
sebagai zat anti karsinogen. Flavonoid merupakan golongan terbesar dari
senyawa fenolik. Selain pada daun, ekstrak akar tanaman sambung nyawa
juga tinggi dengan aktivitas flavonoid. Hal ini seperti pada penelitian
Muthoharoh et al., (2019) jika pemberian glukosa 3% pada kultur akar
adeventif tanaman sambung nyawa dapat meningkatkan kadar kuersetin dan
kaempferol tanaman sebesar 7,08 g/L per berat kering dan 25,44 g/L per berat
kering. Flavonoid memiliki ciri khas rangka atom berupa C6 - C3 - C6 dan
berkemampuan untuk menangkap radikal bebas. Selain itu flavonoid juga
bermanfaat bagi kesehatan manusia seperti sebagai antikanker, antioksidan,
13
antitumor dan antialergi (Peterson and Dwyer, 1998). Penelitian lainnya
diketahui bahwa ekstrak daun sambung nyawa mengandung lima komponen
flavonoid yaitu quercetin, apigenin, rutin, kaempferol, miricetin (Kaewseejan
et al., 2015).
Sambung nyawa memiliki aktivitas farmakologis seperti antikanker,
antioksidan, antihiperglemik, antiinflamasi, dan antimikroba (Tan et al.,
2016). Pada penelitian Sofia et al. (2011) melaporkan pemberian ekstrak
etanol daun tanaman sambung nyawa (G. procumbens) sebesar 150 mg/kg
dan 200 mg/kg pada mencit jantan (Mus musculus) strain Swiss- Webster
yang diinduksi senyawa aloksan, mampu menurunkan kadar gula darah pada
tubuh mencit. Aktivitas tersebut berkaitan dengan adanya senyawa bioaktif
pada tanaman, antara lain flavonoid dan glikosid (Akowuah et al., 2002).
Ekstrak daun sambung nyawa tidak bersifat toksik. Hal tersebut senada
dengan penelitian Zahra et al. (2011), pemberian ekstrak etanol daun
sambung nyawa (G. procumbens) pada tikus jantan strain Sprague-Dawaley
tidak menunjukkan toksisitas. Hal ini dibuktikan dengan analisa histopatologi
lambung tikus, dimana tidak terdapat kerusakan dan perubahan pada
histopatologinya.
2.2 Sistem Hidroponik
HidroponikLmerupakan istilah cara bercocok tanam tanpa tanah. Kata
hidroponik berasal dari bahasa latin hydro yang mempunyai makna airLdan ponos
yang berartiLkerja. Jadi definisi dariLhidroponik adalah ilmu yang mempelajari
kultivasi tanaman menggunakan medium selain tanah, seperti rockwoll, batu,
cocopeat dan sebagainya yang ditambahkan larutan nutrisi yang diperlukan
14
tanaman (Beibel, 1964). Hidroponik diperkenalkan pertama kali oleh W.A Setchle
pada tahun 1936 setelah Gerickle berhasil mengembangkan teknik bercocok
tanam menggunakan air. Prinsip dari hidroponik adalah nutrisi disediakan melalui
bentuk larutan yang diberikan dengan cara disemprot, disiram atau dialirkan
kepada tanaman. Tanaman dapat tumbuh pada sistem hidroponik karena adanya
nutrisi yang terpenuhi dan suplai oksigen yang tercukupi (Early, 2004). Kubicki et
al. (2019) melaporkan sistem hidroponik dapat mempelajari mengenai distribusi
metalaxyl pada akar tanaman tomat. Selain itu Samreen et al. (2017), menyatakan
bahwa penambahan mikronutrien Zn 2 µm pada kultivasi tanaman kacang hijau
(Vigna radiata) secara hidroponik mampu meningkatkan kadar klorofil dan
protein pada tanaman.
Sistem hidroponik ideal dikembangkan bagi pelaku industri maupun rumah
tangga. Menurut Handoko (2003), sistem hidroponik memiliki banyak kelebihan,
yakni sebagai berikut.
1. Tidak membutuhkan lahan luas, sehingga dapat memaksimalkan lahan
dengan kerapatan tinggi.
2. Kebutuhan nutrisi, cahaya dan air diatur secara mekanik atau elektrik
tergantung dengan kebutuhan tanaman.
3. Dapat digunakan untuk menanam lebih dari satu jenis tanaman.
4. Media tertentu dapat digunakan lebih dari sekali seperti bata, kerikil.
5. Menghemat tempat dan tenaga.
6. Lebih mudah untuk mengontrol hama.
7. Keadaan lingkungan dapat dikontrol.
15
Dari segi kerugian sistem hidroponik adalah sebagi berikut:
1. Biaya relatif mahal untuk membuat kontruksi hidroponik.
2. Penyebaran nematode dan seed born disease relatif cepat jika menggunakan
sistem tertutup.
3. Pengamatan perkembangan tanaman dilakukan setiap hari.
Hidroponik dibedakan menjadi dua berdasarkan pemberian larutan yakni
hidroponik sistem tertutup dan hidroponik sistem terbuka. Pada hidroponik sistem
tertutup, kelebihan larutan nutrisi yang telah diberikan ditampung dan
disirkulasikan kembali ke perakaran tanaman. Nutrisi yang telah ditampung lama
kelamaan akan mengalami perubahan. Sedangkan pada sistem terbuka, kelebihan
nutrisi dibiarkan hilang (Giurgiu et al., 2014). Penelitian Kafle et al. (2017),
menunjukkan pada tanaman stevia (Stevia rebaudiana Bertoni) yang ditanam
tanpa mikronutrien Mo dengan sistem hidroponik memiliki kandungan senyawa
steviol glikosida tertinggi yakni sebanyak 414,3 mg/tanaman. Berdasarkan
tumbuh akarnya hidroponik dibedakan menjadi kultur air dan hidroponik agregat.
Hidroponik kultur air adalah sistem hidroponik yang membuat akar tumbuh dan
berkembang di dalam larutan. Sedangkan hidroponik agregat, merupakan sistem
hidroponik yang membuat akar tumbuh pada media agregat seperti pasir, kerikil,
batu bata dan rockwool atau campuran media organik. Terdapat 8 macam teknik
hidroponik yang berkembang saat ini yaitu meliputi Nutrien Film Technique
(NFT), Ebb and Flow Technique (EFT), Static Aerated Technique (SAT), Deep
Flow Technique (DFT), Aerated Flow Technique (AFT), Drip Irigation
Technique (DIT), Fog Fedd Technique (FFT) dan Root Mist Technique (RMT)
(Chadirin, 2007).
16
Menurut Nichol (2010), keberhasilan sistem hidroponik diperoleh dengan
memperhatikan beberapa faktor penting antara lain sebagai berikut.
2.2.1 Media Tanam
Sistem hidroponik memerlukan mediaLtanam yang dapat menahan air. Media
tanam adalah media yang digunakan sebagai tempat bakal akar dan tanaman
tumbuh. Media tanam berfungsi sebagai tempat pertukaran gas dari akar ke
tanaman, penyedia air dan nutrisi bagi tanaman serta penyokong tanaman agar
tegak berdiri. Syarat dari media hidroponik adalah pH netral, bersifat poros, steril
dan inert serta tidak menimbulkan reaksi kimia. Media tanam memiliki banyak
jenis antara lain rockwool, arang sekam, cocopeat, batu bata dan pakis. Namun
secara umum media rockwool adalah yang paling sering digunakan. Rockwool
merupakan media yang popular di kalangan petani hidroponik. Rockwool sendiri
adalah media tanam yang bersifat ramah lingkungan yang terbentuk dari
percampuran berbagai jenis batu, seperti batuan basalt, batu bara serta batu kapur
yang dipanaskan pada suhu 1600°C hingga menyerupai lava yang kemudian saat
dingin berubah bentuk menyerupai serat-serat. Setelah dingin serta-serat tersebut
dipotong-dipotong sesuai keperluan. Media rockwool memiliki pH cenderung
tinggi pada sebagian tanaman. Sehingga diperlukan perlakuan khusus sebelum
digunakan (Mulyadi et al., 2015).
2.2.2 Unsur Zat Hara
Pemberian larutan hara dengan porsi yang cukup sangat penting pada sistem
hidroponik. Hal tersebut karena media tidak menyediakan nutrisi bagi tanaman,
dan hanya berperan sebagai penopang serta sarana untuk meneruskan kelebihan
17
air. Pemberian larutan hara dilakukan dengan melarutkan garam-garam pupuk
dalam air.
Nutrisi yang digunakan pada sistem hidroponik berupa nutrisi anorganik yang
terlarut dalam bentuk ion. Salah satu contoh nutrisi utama dalam bentuk kation
adalah Ca2+
dan K+. Sedangkan untuk anion yaitu berupa H2PO4
- dan SO4
-.
Tanaman hidroponik membutuhkan unsur mikro dan makro sama halnya seperti
tanaman konveksional. Unsur makro meliputi oksigen (O), karbon (C), nitrogen
(N), fosfor (P), kalsium (Ca), magnesium (Mg) dan sulphur (S). Sedangkan unsur
mikro meliputi besi (Fe), boron (B), mangan (Mn) dan seng (Zn). Menurut
Lakitan (2011), unsur-unsur tersebut merupakan penyusun molekul atau organ
yang esensial bagi tumbuhan. Seperti nitrogen sebagai penyusun protein dan
magnesium sebagai penyusun klorofil. Unsur mikro dibutuhkan dalam jumlah
yang sedikit sebagai nutrisi penunjang tumbuh dan kembang tanaman. Serta
meningkatkan kekebalan tanaman terhadap hama (Bugbee, 2003).
Unsur dalam nutrisi dikelompokkan menjadi 3 jenis berdasarkan kecepatan
hilang dalam larutan. Kelompok pertama adalah unsur secara aktif diserap oleh
akar dan keberadaannya hanya beberapa jam dalam larutan. Unsur tersebut
meliputi N, P, K, dan Mn. Kelompok kedua adalah unsur dengan tingkat
penyerapan yang sedang oleh akar. Unsur yang demikian dapat hilang dengan
cepat bila dibandingkan dengan air. Jenisnya meliputi Mg, S, Fe, Zn, Cu, Mo, dan
Cl. Kelompok terakhir adalah unsur yang secara pasif diserap larutan dan
tertumpuk pada larutan. Unsur tersebut meliputi Ca, B, P, K, dan Mn. Unsur P, K,
dan Mn, harus dijaga konsentrasinya agar tetap berada dalam jumlah yang kecil,
hal tersebut karena akumulasi dari ketiga unsur tersebut mengakibatkan tanaman
18
keracunan. Sedangkan dalam jumlah tinggi mengakibatkan ketidakseimbangan
hara (Bugbee, 2003). Umumnya semua nutrisi yang dibutuhkan tanaman
hidroponik sudah tersedia dalam bentuk nutrisi AB mix.
Nutrisi AB mix merupakan nutrisi yang umum digunakan pada sistem
hidroponik. Nutrisi AB mix terdiri atas dua komponen yakni nutrisi B dan nutrisi
A. Pengenceran nutrisi A dan B dilakukan secara terpisah karena perbedaan ion
dan pH. Berikut komposisi nutrisi A dan B:
Nutrisi A = kalsium nitrat (1100 g), kalimu nitrat (575 gr), dan Fe EDTA (38 gr).
Nutrisi B = kalium dihidro fosfat (560 gr), ammonium sulfat (30 g), magnesium
sulfat (1,050 g), cupri sulfat ( 0,4 g), zinc sulfat (1,5 g), asam borat
(4,0 g), mangan sulfat ( 8 g), dan ammonium hepta molibdat (0,1 g)
(Yudi and Novi, 2016).
2.2.3 Oksigen
Keberadaan oksigen dalam hidroponik sangat penting karena mempengaruhi
pertumbuhan tanaman. Oksigen yang rendah dapat menurunkan permeabilitas
membran sel, yang mengakibatkan dinding sel sukar ditembus. Sehingga tanaman
akan kekurangan air. Alasan tersebut yang membuat tanaman layu saat tanah
tergenang.
2.2.4 Aerasi dan Temperatur
Aerasi berhubungan erat dengan suplai oksigen dalam media tanam. Akar
memerlukan oksigen untuk respirasi sehingga akar dapat melakukan penyerapan.
Jumlah oksigen dalam media juga mempengaruhi pertumbuhan rambut akar.
Pertumbuhan rambut akar terjadi karena adanya kondisi yang aerob dan
ketersediaan ruang berpori. Ketersediaan oksigen dipengaruhi oleh temperatur.
19
Semakin tinggi suhu maka ketersediaan oksigen semakin menipis. Pemberian
oksigen dapat dilakukan melalui pemberian gelembung-gelembung udara,
mengganti larutan kultur serta mencuci akar serta memberikan lubang ventilasi
pada sistem hidroponik agregat.
2.2.5 pH
Nilai pH larutan nutrisi pada budidaya tanaman hidroponik berkisar 5,5 – 6,5.
Apabila terjadi kelebihan atau kekurangan nilai pH dapat diatasi dengan
penambahan larutan asam atau basa. Tinggi rendahnya pH dapat mempengaruhi
ketersediaan unsur mineral yang diperlukan tanaman. Saat nilai pH rendah maka
akan mempengaruhi penyerapan unsur hara oleh akar. Begitu juga saat pH tinggi
maka akan terjadi pengendapan unsur mikro sehingga akar juga tidak dapat
menyerap unsur hara tersebut dan mengakibatkan defesiensi pada tanaman. Nilai
pH larutan nutrisi mudah berubah karena tidak adanya keseimbangan antara
kation dan anion yang diserap tanaman.
2.2.6 Air
Idealnya sistem hidroponik menggunakan air dengan tingkat salinitas tidak
melebihi 2500 ppm, atau memiliki nilai EC tidak lebih dari 6,0 mmhos/cm, serta
tidak mengandung logam berat dalam jumlah besar yang dapat mematikan
tanaman.
Electrical Conductivity atau disingkat dengan EC secara singkat merupakan
daya hantar listrik. Adapun penjelasannya adalah kemampuan untuk
menghantarkan ion-ion listrik pada larutan nutrisi ke akar tanaman. Nilai EC
menjadi indikator yang melihatkan konsentrasi ion terlarut dalam nutrisi.
Umumnya nilai EC menjadi parameter pengamatan pada budidaya tanaman secara
20
hidroponik. Tinggi rendahnya nilai EC mempengaruhi proses metabolisme
tanaman seperti fotosintesis, penyerapan ion oleh tanaman dan proses enzimatis
yang terjadi pada tanaman (Sutiyoso, 2004).
Nilai EC diperoleh dengan mengukur nilai resistensi larutan nutrisi.
Pengukuran tersebut dapat dilakukan dengan alat EC meter. Semakin tinggi nilai
EC maka kepekatan larutan nutrisi semakin tinggi. Namun demikian nilai
optimum EC juga bergantung pada jenis tanaman yang dibudidayakan. Kepekatan
larutan nutrisi dipengaruhi oleh total garam dan akumulasi ion-ion pada larutan
(Wijayani dan Widodo, 2005). Selain hal tersebut, kadar EC juga dipengaruhi
tingkat kelembapan, cahaya, dan angin. Pemberian nutrisi pada tanaman
hidroponik dianjurkan mengambil nilai EC yang tinggi. Hal ini bertujuan untuk
mempercepat panen dan meningkatkan ukuran tanaman. Secara umum nilai
ambang batas EC pada larutan nutrisi adalah 4,6 mS/cm (Suryani, 2015).
2.3 Hidroponik Sistem DFT
Sistem Deep Flow Technique (DFT) adalah salah satu metode hidroponik
dimana nutrisi diberikan dalam bentuk genangan. Tanaman dibudidayakan di
dalam larutan nutrisi yang mengalir secara terus menerus setinggi 4 sampai 6 cm.
Akar dari tanaman akan terendam dengan larutan nutrisi. Kemudian larutan nutrisi
akan dipompakan kembali ke dalam bak penampungan nutrisi, kemudian
didistribusikan kembali melalui pipa-pipa ke kolam penanaman secara terus-
menerus. Sistem DFT (gambar 2.2) memiliki prinsip kerja hampir sama dengan
sistem NFT, perbedaannya adalah pada instalasi sistem DFT tidak digunakan
kemiringan, sedangkan pada sistem NFT sebaliknya. Kelebihan dari sistem DFT
adalah saat listrik padam, tanaman masih dalam kondisi aman karena masih
21
terdapat genangan nutrisi, pertumbuhan lebih optimal, tanaman memiliki umur
panen yang lebih cepat dan perawatan lebih mudah. Sedangkan kekurangan dari
sistem DFT adalah tanaman yang terkena jamur dan virus akan tersebar dengan
cepat, dapat menimbulkan endapan pada pipa dan resiko busuk pada taanaman
karena genangan nutrisi yang terlalu banyak (Chadirin, 2007).
Gambar 2.2. Sistem Hidroponik DFT (Deep Flow Technique)
Sumber : (Vimolmangkang et al., 2010)
Penggunaan sistem DFT sebaiknya dilakukan di kolam berbentuk persegi
empat. Hal tersebut bertujuan untuk memudahkan pengaturan dan ruangan tidak
terbuang sia-sia. Perawatan DFT lebih mudah dibandingkan dengan sistem
hidroponik lainnya, yakni dengan mengontrol saluran irigasi pada pompa dan pipa
(Lingga, 1999).
2.3.1 Mekanisme Penyerapan Nutrisi pada Sistem DFT
Umumnya nutrisi pada hidroponik diserap tanaman dalam bentuk ion
yang diikuti dengan hidrolisis garam yang terlarut pada larutan nutrisi. Akar
menjadi organ yang utama dalam penyerapan nutrisi tanaman hidroponik.
Selanjutnya terjadi penyerapan anion dan kation yang berasal dari larutan
nutrisi dan yang berada dalam tubuh tumbuhan. Hal ini menyebabkan
lepasnya atom H+ dan OH
- yang menjaga keseimbangan elektrik (Haynes,
1990). Selama proses tersebut guna mempertahankan keseimbangan ionik
22
maka terjadi perubahan pH yang menyebabkan perubahan pada kualitas dan
kuantitas nutrisi yang diserap tanaman seperti pada gambar 2.3. Oleh karena
itu terdapat dua implikasi dari proses tersebut, pertama tersedianya buffer
pada larutan nutrisi (dengan penambahan bikarbonat) dan terjadi perubahan
sedikit pada pH.
Gambar 2.3. Penyerapan Ion Oleh Akar Tanaman
Sumber : (Goddek et al, 2019)
Seperti pada contoh pengambilan nutrien N, dimana umumnya diserap
dalam bentuk nitrit nitrogen (NO-3). Saat nilai pH turun, maka nitrogen
dapat disalurkan dalam bentuk amonium nitrogen (NH+
4). Pada bentuk ini,
terjadi pelepasan H+ sehingga larutan nutrisi memiliki pH asam.
Kondisi iklim, khususnya udara dan suhu substrat serta kelembapan
menjadi faktor utama yang mempengaruhi penyerapan nutrisi (Cortella et
al., 2014). Umumnya, pertumbuhan tanaman yang terbaik terjadi dengan
sedikit perbedaan pada ketiga faktor tersebut. Apabila terjadi kenaikan suhu
maka akan berdampak negatif pada akar. Suhu yang sub optimal dapat
mengurangi penyerapan nitrogen (Dong et al., 2001). Sementara amonium
nitrit secara efektif dapat diserap pada suhu optimum. Sedangkan suhu yang
rendah menyebabkan oksidasi pada bakteri menurun sehingga terjadi
23
akumulasi pada tanaman. Hal ini dapat mengakibatkan simpton yang
bersifat toksik pada tanaman serta dapat merusak akar. Selain itu, suhu
rendah juga dapat menghambat asimilasi atom K dan P, yang digunakan
sebagai P translaksi (Fageria et al, 2002 ; Tindall et al, 1990).
2.4 Senyawa Flavonoid
Flavonoid adalah metabolit sekunder yang ditemukan pada tanaman
berpembuluh. Kata ‘’flavonoid’’ berasal dari kata ‘’flavos’’ yang berarti kuning
seperti sifat alami flavonoid (Rao et al., 2017). Flavonoid termasuk ke dalam
golongan senyawa fenolik alami, umumnya ditemukan di buah, sayuran, akar,
batang, bunga, biji-bijian dan kulit pohon. Flavonoid memiliki beragam fungsi
pada tanaman, antara lain sebagai antioksidan, skrining cahaya, fotoreseptor dan
antimikroba. Ciri khas flavonoid tersusun atas 15 kerangka karbon yang terdiri
dari ikatan antara dua cincin benzen (C6) dengan rantai propana (C3) sehingga
membentuk C6 – C3 – C6 (Peterson and Dwyer, 1998). Ikatan tersebut
dihubungkan oleh rangka alifatik. Flavonoid kecuali jenis cetachine umumnya
dijumpai dengan bentuk glikosida yang terikat dengan gula. Molekul yang terikat
dengan gula tersebut disebut dengan aglikon. Glikosida sendiri adalah ikatan
antara gula dan alkohol (Lenny, 2006). Umumnya flavonoid (gambar 2.3)
berbentuk monosakarida, namun ada juga yang berbentuk disakarida, atau
oligosakarida dengan gugus hidroxil.
24
Gambar 2.4. Struktur Dasar Flavonoid
(Sumber : Kumar and Pandey, 2013.)
Flavonoid disintesis melalui dua jalur seperti pada gambar 2.4 yakni jalur
asam sikhimat dan jalur asetat malonat. Jalur sikhimat menghasilkan cincin B dan
C. Sedangkan jalur asetat malonat menghasilkan cincin A. Cincin A dan B
tersambung dengan 3 karbon yang terhubung dengan oksigen hetercicle atau
cincin C. Pada jalur sikhimat phenylalanine yang merupakan derivat asam amino,
bertransformasi menjadi 4-coumaric-CoA dan 4-coumaric-CoA. Selanjutnya
berkonjugasi dengan melonil-CoA untuk menghasilkan calkon. Calkon terdiri atas
2 cincin phenyl. Konjugasi antara cincin penutup pada calkon menghasilkan 3
cincin yang memiliki bentuk yang sama dengan flavonoid yang disebut flavon.
Jalur ini berlanjut dengan bantuan berbagai enzim untuk membentuk flavonon,
dihidroflavonol dan antocianin. Berikut gambar sintesis senyawa flavonoid.
Gambar 2.5. Reaksi Sintesis Senyawa Flavonoid (Sumber : Grotewold, 2006)
25
Sejak 1993, telah diidentifikasi terdapat 6000 jenis flavonoid dan jumlah
tersebut terus meningkat seiring dengan kemajuan teknologi dalam penelitian
flavonoid(Ferrer et al., 2008). Flavonoid dibedakan berdasarkan variasi jumlah
dan substitusi pola gugus hidroksil dan cincin heterosiklik-oksigen. Flavonoid
dibagi menjadi beberapa kelas diantaranya calcon, flavonol, flavon, flavan-3-ols,
isoflavon, antocianidin, flavanon, dan flavanonol (Tapas et al., 2008).
Selanjutnya kelas-kelas tersebut dibagi menjadi beberapa subkelas sebagai contoh
flavon, apigenin dan luteolin yang merupakan golongan dari flavon, kuersetin,
kaemferol, miresetin, fisetin golongan flavonols serta golongan flavanons yang
terdiri atas flavanon, hesperetin dan naringenin (Middleton,1998). Jenis senyawa
tersebut berkemampuan sebagai antikanker, berdasarkan sifatnya sebagai
penangkap radikal bebas, antioksidan dan dapat menonaktifkan kation poliven
(Kumar et al., 2011).
Flavonoid mempunyai fungsi utama sebagai antioksidan dimana dapat
mengirim sebuah elektron kepada senyawa radikal bebas sehingga membentuk
kompleks dengan logam. Mekanisme tersebut mengakibatkan beberapa dampak
pada flavonoid diantaranya menekan kerusakan jaringan oleh senyawa radikal
bebas, menghambat peroksidasi lipis, serta menghambat beberapa enzim
(Nijveldt et al., 2001). Aktivitas antioksidan pada flavonoid dilakukan dengan
menekan pembentukan spesies oksigen reaktif, baik berperan sebagai penghambat
kerja enzim ataupun dengan mengikat logam yang berperan dalam produksi
radikal bebas (Kumar et al., 2011) (Kumar et al., 2011).
Selain sebagai antioksidan flavonoid termasuk dalam jenis senyawa metabolit
sekunder yang paling sering ditemukan pada tanaman. Senyawa ini dapat
26
melindungi tanaman dari infeksi patogen serta serangan hewan. Hal tersebut
seperti pada penelitian Schenke et al., (2011), diketahui bahwa elisitasi pada
tanaman Arabidopsis menggunakan elisitor biotik (bakteri flg 22) dan abiotik
(radiasi UV-B), mampu membuat tanaman mensintesis senyawa metabolit
sekunder berupa phytoalexins dan lignin. Senyawa tersebut berperan sebagai
pelindung tanaman yang membatasi penyebaran patogen. Salah satu komponen
flavonoid yang digunakan untuk dianalisis metabolit sekunder adalah kuersetin.
Berikut penjelasannya.
2.4.1 Kuersetin
Kuersetin adalah senyawa flavonoid polifenolik yang banyak ditemukan
di buah dan sayuran. Kuersetin (3,3’,4’,5,7- pentahidroxiflavon) yang
memiliki rumus molekul C15H10O7 seperti pada gambar 2.5 adalah senyawa
polifenol yang bersifat polar tetapi memiliki daya larut yang rendah pada air
dan cenderung dapat larut pada pelarut organik dan senyawa alkohol (Sofyan
et al., 2008). Kuersetin sering dijumpai dalam bentuk glikosida (derivate
gula) sebagai contoh rutin yang merupakan golongan hidrogen R-4 hidroksil
digantikan dengan disakarida. Kuersetin termasuk dalam golongan aglikon,
atau senyawa tanpa gula yang dibentuk dari rutin (Cody, 1988). Kuersetin
beserta 2000 jenis flavonoid yang lain adalah produk dari kondensasi P-
glikosida. Hewan tidak dapat mensintesis kuersetin di dalam tubuhnya, oleh
sebab itu kuersetin banyak ditemukan dalam tubuh tumbuhan
(Herrman,1976).
27
Gambar 2.6. Struktur Kuersetin
(Sumber :Satyendra et al., 2016)
Kuersetin berwarna kuning, berbentuk padatan kristal dengan rasa yang
pahit. Kuersetin tidak dapat larut dalam air, tetapi dapat larut dalam alkohol
dan asam asetik glacial serta larutan alkalin (Windholz, 1983). Kuersetin
adalah senyawa yang tahan panas, hal ini karena kuersetin memiliki titik
lebur 310 °C (Sofyan et al., 2008). Kuersetin merupakan senyawa flavonoid
yang memiliki inti flavon yang tersusun atas dua cincin benzena yang
dihubungkan melalui cincin piron heterocyclic. Kuersetin banyak ditemukan
pada berbagai produk makanan dan tumbuhan termasuk buah, biji, sayuran,
kopi, tea, dan pakis-pakisan. Umumnya kuersetin disintesis melalui hidrolisis
rutin (kuersetin-3-rutinosida), dan secara alami terjadi dalam bentuk
flavonoid glikosida (Herrman, 1976).
Proses biosintesis kuersetin dimulai dengan kondensasi yang dilakukan
enzim stilbene synthase (STS) dan enzim chalcone synthase (CHS) yang
menggunakan 3 reaksi sekuensial dengan malonyl CoA. Hasil dari proses
tersebut berupa senyawa antara tetrakerida, dan pada akhir proses STS
membentuk cincin sedikit berbeda. Tetrakerida linier yang dihasilkan
selanjutnya bergantung pada aktivitas kedua enzim tersebut apabila CHS
muncul dan aktif maka akan membentuk kuersetin. Sedangkan jika STS yang
lebih dominan maka membentuk reservatrol (Jusuf, 2010). Biosintesis
28
kuersetin sama seperti fitochemical seperti flavonoid, dimana merupakan
respon tanaman terhadap keadaan lingkungan hidup (Mariani et al., 2008).
Pada penelitian Mohle et al. (1985), menunjukkan bahwa kultur sel yang
diberi radiasi sinar UV, mampu memproduksi senyawa kuersetin 3-O-β-
glucorunid. Pembentukan tersebut diindikasikan sebagai respon pertahanan
tanaman terhadap keadaan lingkungan yang tidak mendukung.
Kuersetin adalah salah satu senyawa antioksidan yang dapat berikatan
dengan radikal bebas dengan menyumbangkan atomnya. Karena itu radikal
bebas tidak berikatan dengan sel tubuh sehingga dapat mencegah kerusakan
sel. Selain itu kuersetin juga dapat berfungsi sebagai antikanker dan
antiperadangan. Kuersetin dapat melindungi sel dari stress oksidatif yang
diakibatkan reaksi oksidatif dalam suatu spesies (Balazs and Leon, 1994) .
Pada penelitian Ferry et al. (1996) juga menyatakan bahwa pemberian
kuersetin pada tikus yang diinduksi sel kanker payudara 4TI dapat menekan
pertumbuhan tumor dan memperpanjang kelangsungan hidup tikus.
2.5 Ekstraksi
Ekstraksi merupakan proses penarikan suatu senyawa aktif yang berasal dari
campuran padatan atau cairan yang menggunakan pelarut tertentu. Prosesnya
berupa pemisahan senyawa antara komponen yang terlarut dengan komponen
yang tidak terlarut. Ekstraksi menjadi langkah awal pada penelitian tanaman obat,
untuk mengisolasi dan memurnikan senyawa aktif yang terdapat padaLtanaman
(Mandal and Yogesh, 2007). Perlakuan pendahuluan sebelum ekstraksi sangat
penting agar dapat mempermudah ekstraksi. Ekstraksi bahan alam seperti pada
tanaman herba dapat melalui perebusan, maserasi, perkolasi, penyeduhan atau
29
cara lain sesuai dengan sifat senyawa aktif yang didalamnya. Umumnya pada
ekstraksi dilakukan dengan mematikan jaringan tumbuhan sebagai pencegahan
terjadinya hidrolisis dan oksidasi jaringan. Ketika dilakukan ekstraksi ulang pada
ampas kemudian terlihat tidak berwarna hijau maka dianggap semua komponen
senyawa dengan berat molekul rendah telah terangkat (Harborne, 1996).
Proses ekstraksi pada dasarnya terdapat dua jenis yakni ekstraksi secara panas
dan secara dingin. Pada ekstraksi secara panas terdiri atas metode destilasi uap
dan refluks. Sedangkan ekstraksi dengan metode kering terdiri atas maserasi,
perkolasi dan sokhletasi (Sudjadi, 2009). Syarat pelarut yang digunakan untuk
ekstraksi adalah tidak korosif, harganya murah, tidak toksik, tidak meninggalkan
residu, aman dan tidak mudah meledak (Wientarsih dan Prasetyo, 2006). Selain
pemilihan pelarut juga berdasarkan sifat kepolaran senyawa yang dilarutkan.
Senyawa polar akan larut dalam pelarut polar seperti metanol dan etanol. Begitu
juga sebaliknya senyawa non polar juga dapat larut pada senywa non polar juga
seperti n-heksan (Gritter et al., 1991).
Maserasi adalah salah satu metode ekstraksi yang dilakukan dengan cara
merendam simplisia ke dalam suatu pelarut pada suhu kamar. Setelah dilakukan
penyaringan dan residu diekstraksi dengan pelarut baru. Lama maserasi dapat
dilakukan selama 15-30 menit atau 24 jam. Waktu tersebut diperlukan untuk
mengendapkan zat-zat yang tidak dibutuhkan yang ikut terlarut (Kristanti, 2008).
Maserasi memiliki banyak keuntungan diantaranya adalah peralatan yang
dibutuhkan sederhana sehingga mudah diusahakan. Adapun kekurangannya
adalah pengerjaannya memerlukan waktu yang lama dan penyaringannya kurang
sempurna. Proses perendaman pada maserasi dapat meningkatkan permeabilitas
30
dinding sel dengan masuknya pelarut ke dinding sel. Sehingga dinding sel
membengkak dan membuat senyawa yang terdapat di dinding sel keluar ke dalam
pelarut (List and Schmid, 1989).
2.6 Spektrofotometer UV-Vis
Salah satu teknik untuk menganalisis kadar senyawa flavonoid dalam ekstrak
tumbuhan adalah menggunakan alat spektrofotometer. Spektrofotometer adalah
teknik analisis kimia melalui pengukuran seberapa jauh energi radiasi yang
diserap oleh absorbansi terisolasi suatu panjang gelombang. Kegunaan
spektrofotometer adalah untuk menghitung energi relatif pada energi yang
mengalami transmisi, refleksi dan emisi serta diinterpretasi sebagai fungsi dari
panjang gelombang (Khopkar,2010). Komponen pada instrumen spektrofotometer
adalah terdiri atas sumber sinar, monokromator dan sistem optik (Guanjar dan
Rohman, 2008).
Penerapan konsentrasi flavonoid dengan spektrofotometer memiliki prinsip
terjadi pembentukan kompleks antara AlCl3 dengan flavonoid sehingga
membentuk warna kuning stabil. Lebih jelasnya aluminium klorida membentuk
komplek dengan gugus keto pada atom C-4 dan gugus hidroksi pada atom C-5
atau C-3 yang bertetangga dari golongan flavon serta flavonol (Azizah et al.,
2014).
Adapun spektrofotometer UV-Visible yaitu salah satu jenis analisis
spektroskopi yang menggunakan elektromagnetik ultraviolet dekat (190-380 nm)
serta sinar tampak (380-780 nm) sebagai sumber radiasi dengan instrument
spektrofotometer (Cazes, 2005). Umumnya spektrofotometer Uv-Vis
31
dipergunakan sebagai teknik analisis kuantitatif, karena mampu melibatkan
sejumlah besar energi elektronik pada molekul yang dianalisis (Skoog 2004).
Prinsip kerja spektrofotometer Uv-Vis adalah dengan mengukur radiasi dari
ultraviolet dekat dan sinar tampak yang diserap oleh atom yang mengandung
elektron-n, molekul organik aromatik atau molekul yang memiliki elektron-π
terkonjugasi, sehingga terjadi transisi elektron pada orbital terluar dari tingkat
energi elektron dasar hingga ke tingkat elektron tereksitasi yang lebih tinggi
(Sutiadarma, 2004). Sumber cahaya lalu diurai oleh monokromator dan
dilewatkan pada sampel. Cahaya ini sebagian ditangkap oleh sampel dan sisanya
diserap oleh detektor yang kemudian mengubahnya menjadi sinyal-sinyal listrik
untuk diterjemahkan oleh alat pengukur. Nilai serapan sebanding dengan molekul
analit yang mengabsorbsi (Day dan Underwood, 2002).
32
BAB III
METODE PENELITIAN
3.1 Rancangan Penelitian
Penelitian ini merupakan penelitian dengan jenis eksperimental yang
menggunakan rancangan penelitian dengan pendekatan static group comparasion,
dimana terdapat dua perlakuan pada penelitian yaitu kelompok perlakuan dan
kelompok kontrol. Adapun kelompok perlakuan yaitu kelompok kultivasi dengan
sistem DFT dan kelompok kontrol adalah kultivasi dengan media tanah.
Pengukuran pada kedua kelompok tersebut dilakukan setelah dilakukan
perlakuan. Untuk jumlah sampel minimal yang digunakan dihitung menggunakan
rumus federer sebagai berikut.
(t-1) (n-1) ` ≤ 15
(2-1) (n-1) ≤ 15
n = 16
Sehingga jumlah ulangan (n) untuk setiap perlakuan (t) pada penelitian ini terdiri
dari 25 ulangan seperti yang tertera pada tabel 3.1.
Tabel 3.1 Rancangan Penelitian
Perlakuan Ulangan
1 2 3 4 5 n 25
V1 V11 V12 V13 V14 V15 V1n V15
V2 V21 V22 V23 V24 V25 V1n V25
Keterangan
V1 : Sistem hidroponik DFT
V2 : Media kontrol tanah
33
3.2 Tempat dan Waktu Penelitian
Penelitian dilakukan pada bulan Desember 2019 hingga bulan Februari 2020,
bertempat di lab integrasi UIN Sunan Ampel Surabaya. Adapun jadwal
pelaksanaan penelitian dapat dilihat pada tabel berikut.
Tabel 3.2 Jadwal Pelaksanaan Penelitian
No Kegiatan
Desember Januari Februari Maret
1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4
1 Pembuatan sidang proposal
dan seminar proposal
2 Penanaman kelompok perlakuan dan kelompok
kontrol
3 Pemanenan
4 Pengukuran variabel
pertpertumbuhan
5 Ekstraksi
6 Uji flavonoid dengan spektro
UV UV-Vis
7 Analisis hasil spektro Uv-Vis
8 Analisis hasil data variabel secara keseluruhan
9 Pembuatan skripsi dan sidang
skripsi
3.3 Alat Dan Bahan
A. Alat
Alat yang digunakan adalah gunting, pipa sitem rakit hidroponik DFT,
penggaris, kertas, gelas ukur 1000 ml, 100 ml, dan 10 ml, pipet tetes, botol
vial, mikropipet, tip, kamera, metanol, baki, botol asi 100 ml, botol vial 20
ml, kertas, tali raffia, oven, kuvet, alat spektrofotometer Uv-Vis.
B. Bahan
Bahan yang digunakan adalah tanaman sambung nyawa (Gynura
procumbens [Lour.] Merr.), nutrisi AB mix merek hidroponik Surabaya, air,
34
kuersetin, metanol, n-heksan etil asetat, aquades, sodium nitrit 5%,
aluminium klorida 10% dan NaOH 1 N.
3.4 Variabel Penelitian
a. Variabel bebas : Sistem kultivasi (sistem hidroponik DFT dan media
tanah)
b. Variabel terikat : Pertumbuhan tanaman (jumlah daun, jumlah akar, berat
segar, berat kering) dan kadar flavonoid jenis kuersetin
c. Variabel kontrol : jenis tanaman (Gynura procumbens) dan konsentrasi
nutrisi AB mix (nutrisi AB mix umum).
3.5 Prosedur Penelitian
3.5.1 Pembuatan larutan AB Mix
Nutrisi AB mix merupakan nutrisi yang umum digunakan pada sistem
hidroponik. Nutrisi AB mix terdiri atas dua komponen yakni nutrisi B dan
nutrisi A. Pengenceran nutrisi A dan B dilakukan secara terpisah karena
perbedaan ion dan pH. Masing-masing nutrisi diencerkan ke dalam 500 ml air
secara terpisah sebagai larutan stok. Untuk membuat nutrisi hidroponik maka,
diencerkan sebanyak 6 ml nutrisi A dan 6 ml nutrisi B kemudian dilarutkan
ke dalam 100 ml air. Lalu dituang diember nutrisi kemudian dialirkan ke
sistem hidroponik. Untuk stok awal dibuat larutan sebanyak 35 liter
kemudian ditambah lagi jika larutan nutrisi berkurang.
3.5.2 Perakitan Pipa Hidroponik
Pipa hidroponik dirancang dengan menggunakan sistem DFT dimana
terdapat 4 pipa pada satu sistem. Satu pipa memiliki panjang 2,1 m dengan
diameter 8 cm. Keempat pipa memiliki jumlah lubang 36 dengan diameter
35
lubang 5 cm. Jarak antar lubang 15 cm. Sebelum digunakan terlebih dahulu
dicek apakah terdapat kebocoran atau tidak pada sistem sirkulasi. Skema
sistem hidroponik DFT seperti gambar 3.1.
Gambar 3.1 Sistem Hidroponik DFT
( Sumber : Dokumentasi Pribadi, 2019)
3.5.3 Penanaman
a. Kultivasi sistem hidroponik DFT
Tanaman sambung nyawa dipotong sepanjang 5 cm dari ujung pucuk
tanaman. Bagian paling bawah dipotong secara vertikal dengan
kemiringan 45° sebagai penanda ujung batang. Semua daun dipangkas dan
hanya disisakan daun kedua dan ketiga dari atas. Tanaman kemudian
ditanam ke dalam substrat rockwool. Lalu diletakkan ke dalam sistem
hidroponik yang telah berisi larutan nutrisi. Selanjutnya dilakukan
pengukuran beberapa parameter pada akhir masa panen.
b. Kultivasi pada media tanah
Tanaman sambung nyawa dipotong sepanjang 5 cm dari ujung pucuk
tanaman. Bagian paling bawah dipotong secara vertikal dengan
kemiringan 45° sebagai penanda ujung batang. Semua daun dipangkas
36
dan hanya disisakan daun kedua dan ketiga dari atas. Tanaman kemudian
ditanam ke dalam polybag yang telah berisi media tanah tanpa kandungan
pupuk. Selanjutnya dilakukan pengukuran beberapa parameter pada akhir
masa panen.
3.5.4 Pemanenan
Tanaman dipanen setelah 4 minggu dari penanaman awal, kemudian
dilakukan pengukuran variabel pertumbuhan tanaman meliputi jumlah daun,
jumlah akar dan biomassa segar. Kemudian sampel dioven pada suhu 50° C
selama 24 jam hingga kering. Selanjutnya dilakukan pengukuran biomassa
kering dan dilanjut dengan analisis flavonoid.
3.5.5 Analisis Flavonoid
Analisis senyawa flavonoid dilakukan menggunakan spektrofotometer
Uv-Vis dengan panjang gelombang 514.
A. Ekstraksi Sampel
Sampel daun dari kedua perlakuan (sistem DFT dan media tanah)
dan akar dari sistem DFT yang telah kering kemudian ditimbang masing-
masing seberat 0,1 gr. Sedangkan pada sampel akar dari perlakuan media
tanah hanya ditimbang seberat 0,05 gr dikarenakan keterbatasan sampel.
Kemudian sampel daun dari kedua perlakuan dan akar dari sistem DFT
direndam dengan 10 ml metanol selama 24 jam. Proses ini diulang
sebanyak 2 kali agar senyawa dapat larut secara sempurna. Ekstrak
metanol selanjutnya disaring dan dipartisi menggunakan n-heksan
dengan perbandingan 1:1 jika ekstrak yang diperoleh sebanyak 20 ml
maka ditambahkan 20 ml n-heksan. Penambahan n-heksan bertujuan
37
untuk menghilangkan senyawa-senyawa non polar. Setelah dilakukan
penambahan, maka akan terbentuk dua lapisan, lapisan atas diambil dan
disimpan pada tempat yang bersih. Sedangkan lapisan bawah dipartisi
dengan etil asetat dengan perbandingan 1:1 dengan tujuan untuk
mengekstrak senyawa flavonoid. Ekstrak etil asetat lalu diambil sebanyak
10 ml untuk berikutnya dilakukan analisis kadar flavonoid (Faizah,
2019). Adapun sampel akar dari media tanah juga diberikan perlakuan
yang sama dengan sampel sebelumnya, tetapi untuk jumlah setiap larutan
yang ditambahkan hanya setengah dari jumlah yang sebenarnya sehingga
ekstrak etil asetat yang diambil senilai 5 ml.
B. Penentuan Kadar Flavonoiud Total Menggunakan Spektrofotometer
UV-Vis
1. Pembuatan Larutan Standar Kuersetin
Pembuatan larutan induk dilakukan dengan ditimbang kuersetin 10
mg kemudian dilarutkan dengan metanol p.a dalam labu ukur 100 ml.
Sehingga diperoleh larutan kuersetin 1000 ppm. Kemudian dilakukan
pengenceran seri larutan baku dengan konsentrasi 20, 30, 40 dan 50
ppm dengan cara mengambil sebanyak 0,2 ; 0,3; 0,4; dan 0,5 ml pada
larutan induk. Selanjutnya masing-masing konsentrasi dilarutkan
kedalam 10 ml metanol p.a. Larutan kemudian dipekatkan pada suhu
50°C. Selanjutnya ditambahkan 0,25 ml metanol, 1,25 ml akuades, dan
75 µL larutan sodium nitrit 5% pada setiap perlakuan dan ditunggu
selama 6 menit. Kemudian dilakukan penambahan 150 µL aluminium
klorida 10% secara perlahan dan ditunggu selama 5 menit. Kemudian
38
ditambahkan NaOH 1 N sebanyak 0,5 ml dan akuades sampai volume
mencapai 2,5 ml. Larutan dianalisis menggunakan spektro UV-VIS
dengan panjang gelombang 514 nm. Larutan blanko yang digunakan
adalah methanol (Novianti et al,, 2017).
2. Pembuatan Kurva Baku Kuersetin
Kurva standar kuersetin dibuat dengan menghubungkan
konsentrasi larutan standar dengan nilai abosorbansi yang didapatkan
dari pengukuran spektro UV-VIS. Nilai tersebut kemudian diplotkan
dan diperoleh persamaan y = bx + a, dimana x adalah konsentrasi, y
adalah luas area, a merupakan intersept (perpotongan dengan garis
sumbu y) dan b adalah slope (kemiringan garis regresi). Kelinier kurva
dihitung dengan koefisien korelasi (r) (Rahakbauw dan Wataguly,
2016).
3. Penetapan Kadar Flavonoid Ekstrak
Ekstrak etil asetat dari sampel daun dari kedua perlakuan dan akar
dari sistem DFT kemudian dipekatkan sampai larutan habis
menggunakan oven dengan suhu 50°C, sehingga senyawa flavonoid
menempel pada dinding botol. Selanjutnya ditambahkan 0,25 ml
metanol, 1,25 ml akuades, dan 75 µL larutan sodium nitrit 5% pada
perlakua ekstrak etil asetat dari daun dan ditunggu selama 6 menit.
Kemudian dilakukan penambahan 150 µL aluminium klorida 10%
secara perlahan dan ditunggu selama 5 menit. Kemudian ditambahkan
NaOH 1 N sebanyak 0,5 ml dan akuades sampai volume mencapai 2,5
ml. Larutan dianalisis menggunakan spektro UV-VIS dengan panjang
39
gelombang 514 nm. Larutan blanko yang digunakan adalah metanol
setelah didapatkan hasil kemudian dimasukan ke dalam kurva standar
kuersetin (Novianti et al., 2017). Adapun ekstrak etil asetat dari akar
perlakuan media tanah juga diberikan perlakuan yang sama seperti
ekstrak etil asetat pada sampel sebelumnya, namun setiap penambahan
berbagai larutan hanya berjumlah setengah dari yang diberikan.
Konsentrasi flavonoid dalam sampel uji dihitung melalui plot kalibrasi,
sedangkan kadar flavonoid (mgQE/gr) diperoleh melalui rumus berikut.
Kadar flavonoid= (
) ( )
( )
3.6 Analisis Data
Data yang disajikan terdiri atas jumlah daun, jumlah akar, berat segar dan
berat kering. Data tersebut dianalisis menggunakan analisis uji T independent
karena membandingkan dua sampel yang berbeda perlakuan. Adapun aplikasi
yang digunakan adalah spss 16,0 untuk mengetahui adanya perbedaan dan
pengaruh pada dua perlakuan, apabila data tidak homogen maka dilanjutkan
dengan uji Mann Whitney. Sedangkan untuk hasil analisis senyawa kuersetin
dianalisis secara deskriptif dengan dikaitkan kajian islam.
40
BAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Perbedaan Perlakuan Kultivasi Hidroponik Sistem DFT (Deep Flow
Technique) dan Media Tanah terhadap Pertumbuhan Tanaman G.
procumbens
Pada penelitian ini diketahui terdapat perbedaan penggunaan antara
kultivasi hidroponik sistem DFT dengan media tanah terhadap pertumbuhan
tanaman sambung nyawa. Hal tersebut terlihat dari morfologi tanaman pada
gambar 4.1, dimana tanaman yang telah dipanen dari kultivasi hidroponik DFT
memiliki penampilan yang lebih segar dan subur jika dibandingkan dengan hasil
panen pada media tanah. Selain itu dari segi pertumbuhan tanaman, diketahui jika
pertumbuhan tanaman pada sistem DFT lebih baik jika dibandingkan dengan
media tanah.
Gambar 4.1 Tanaman Sambung Nyawa (G.procumbens) yang Telah Berumur 30 hari
pada Sistem Hidroponik DFT (a) dan Media Kontrol Tanah (b)
(Sumber : Dokumentasi Pribadi, 2019)
Adapun untuk mengetahui pertumbuhan tanaman pada sistem DFT dan media
tanah adalah melalui pengukuran beberapa variabel pertumbuhan, seperti jumlah
daun, jumlah akar, berat segar dan berat kering tanaman pada akhir masa panen
setelah 30 hari penanaman.
a
a
b
a
a
a
41
Data yang telah diperoleh kemudian diolah dan diuji menggunakan uji T
independent untuk membandingkan dua perlakuan yang tidak saling berpasangan,
dalam hal ini kultivasi hidroponik sistem DFT sebagai kelompok perlakuan dan
media tanah sebagai kelompok kontrol. Khusus untuk data jumlah daun tidak
dilakukan uji T, melainkan diuji menggunakan uji Mann-Whitney U karena data
tidak berdistribusi normal (lampiran 2).
Berdasarkan hasil analisis statistik uji T independent dengan taraf
kepercayaan 95%, diketahui bahwa terdapat perbedaan yang signifikan pada
variabel berat segar dan berat kering antara perlakuan sistem hidroponik DFT
dengan perlakuan kontrol media tanah. Sedangkan pada hasil analisa jumlah akar
menunjukkan jika tidak terdapat perbedaan yang signifikan antara kedua
perlakuan. Namun dari hasil rerata, jumlah akar pada sistem hidroponik DFT
diketahui memiliki nilai 20,24. Nilai tersebut lebih tinggi jika dibandingkan
dengan perlakuan kontrol meskipun selisih keduanya hanya terpaut tipis yakni
1,00. Sementara untuk hasil uji Mann-Whitney U pada variabel jumlah daun, juga
memperlihatkan jika terdapat perbedaan jumlah daun antara perlakuan kultivasi
sistem DFT dengan media tanah.
Dari hasil uji statistik secara umum pertumbuhan akar maupun daun
tanaman sambung nyawa pada kultur hidroponik cenderung mengalami
peningkatan yang signifikan apabila dibandingan dengan kultur media tanah.
Berikut penjelasan mengenai keempat variabel yang meliputi jumlah akar, jumlah
daun, berat segar dan berat kering tanaman.
42
4.1.1 Jumlah Akar
Perbandingan pertumbuhan akar tanaman sambung nyawa antara
kultivasi hidroponik DFT dengan media tanah dapat dilihat pada gambar 4.2.
Akar pada kultivasi hidroponik DFT diketahui mengalami peningkatan
selama 30 hari masa tanam dengan rerata jumlah akar sebanyak 20,24 helai
akar. Jumlah ini lebih tinggi jika dibandingkan dengan kultur tanah yang
hanya memiliki rerata 19,24 helai akar. Hal tersebut selaras dengan penelitian
Kao (2005) yang menyatakan bahwa penggunaan sistem DFT dapat
menghasilkan rata-rata jumlah akar yang banyak pada tanaman pakcoy
(Brassica rapa) yakni 46,5 helai akar.
Gambar 4.2 Diagram Perbandingan Nilai Rata-Rata Perlakuan Kultivasi Hidroponik
Sistem DFT dan Media Tanah terhadap Jumlah Akar Tanaman G.procumbens
(Sumber : Dokumentasi Pribadi, 2019)
Akar menjadi salah satu organ indikator yang umum digunakan untuk
mengamati pertumbuhan tanaman. Melalui akar, unsur hara dapat diserap dan
ditranslokasikan pada bagian atas tanaman. Selain itu, akar juga
menghasilkan beberapa hormon yang berperan pada proses fisiologi dan
biokimia tanaman. Salah satunya adalah hormon sitokinin, hormon tersebut
dihasilkan pada bagian akar tanaman untuk selanjutnya ditranslokasikan pada
tunas serta turut andil dalam pengaturan biosintesis protein daun. Oleh
43
karenanya, akar dapat mengendalikan sekaligus sebagai indikator
pertumbuhan tanaman (Sathiyavani et al., 2017). Semakin banyak jumlah
akar menandakan bahwa kondisi lingkungan tersebut ideal bagi pertumbuhan
tanaman (Roberto, 2003). Keadaan ini diketahui terjadi pada perbanyakan
tanaman sambung nyawa dalam sistem hidroponik DFT pada penelitian ini
dimana jumlah akar dalam sistem lebih banyak jika dibandingkan dengan
jumlah akar pada media tanah. Terdapat banyak faktor yang menyebabkan
keadaan tersebut salah satunya adalah nutrisi.
Nutrisi menjadi kunci utama pada pertumbuhan tanaman. Umumnya
nutrisi pada hidroponik diserap tanaman dalam bentuk ion yang diikuti
dengan hidrolisis garam yang terlarut pada larutan nutrisi. Kemudian terjadi
penyerapan anion dan kation yang berasal dari larutan nutrisi yang berada
dalam tubuh tumbuhan. Peristiwa tersebut diiringi dengan lepasnya atom H+
dan OH- yang berfungsi untuk menjaga keseimbangan elektrik (Haynes,
1990). Selama proses tersebut, untuk mempertahankan keseimbangan ionik
maka terjadi perubahan pH yang menyebabkan perubahan pada kualitas dan
kuantitas nutrisi yang diserap tanaman (Haynes, 1990). Pada mekanisme ini,
nutrisi ditransfer kepada akar melalui kondisi mikrograviti. Dalam kondisi
ini, larutan nutrisi yang diedarkan ke akar tanaman dikontrol melalui gaya
kapilaritas (Barry et al., 1992).
Pada teknik hidroponik jenis DFT (Deep Flow Technique) nutrisi
diberikan dalam bentuk genangan, yang artinya tanaman dibudidayakan di
dalam larutan nutrisi yang mengalir secara terus menerus setinggi 4 sampai 6
cm selama 24 jam. Ciri pembeda antara sistem DFT dengan sistem
44
hidroponik lainnya adalah pada instalasinya, dimana pipa tidak dirakit dengan
sudut kemiringan (Chadirin, 2007). Melalui kultur hidroponik DFT, akar
tanaman sambung nyawa dapat memperoleh nutrisi secara efisien jika
dibandingkan tanaman yang tumbuh pada tanah. Hal ini karena kebutuhan
nutrisi dan air yang selalu terjaga secara terus menerus. Sedangkan pada
media tanah, akar tanaman sambung nyawa baru memperoleh cukup air
setelah dilakukan penyiraman, inilah yang mengakibatkan berkurangnya
jumlah kadar oksigen yang diperlukan oleh akar dan mikroba (Assaduzzaman
et al., 2010). Selain itu kebutuhan air yang digunakan pada kultivasi
konvensional lebih besar jika dibandingkan dengan kultivasi hidroponik
seperti pada kultivasi tomat dan selada (Hassall and Associates, 2001). Oleh
karena itu pertumbuhan akar pada media tanah terhambat.
Umumnya pada teknik hidroponik DFT nutrisi yang digunakan adalah
nutrisi jenis AB-Mix. Begitupun dengan penelitian ini yang menggunakan
nutrisi yang sama namun dengan tipe untuk tanaman umum. AB-Mix
merupakan nutrisi hidroponik yang mengandung dua komponen unsur yakni
unsur makro dan unsur mikro (Sunaryo et al., 2018). Penelitian Hidayanti dan
Trimin (2019) menyebutkan nutrisi AB mix adalah nutrisi terbaik bagi faktor
pertumbuhan pada tanaman bayam merah (Amaranthus tricolor L.) yang
meliputi tinggi tanaman, jumlah daun dan berat segar dengan nilai rata-rata
masing-masing adalah 24,2 cm, 13,25 helai daun dan 18,825 gram berat
basah. Umumnya, pH larutan AB-Mix adalah 5,5-6,0. Nilai pH ini dijaga
tetap stabil agar tanaman tidak mengalami stress. Selaras dengan hal tersebut
menurut Kamauddin et al., (2019), pH optimum untuk media nutrisi adalah
45
6,0. Jika suatu tanaman tumbuh diluar pH optimum maka dapat
mengakibatkan toksisitas atau difisiensi nutrisi seperti pertumbuhan tanaman
menjadi kerdil. Selain itu pH yang tinggi juga menyebabkan beberapa ion
nutrien mengalami pengendapan dan penurunan jumlah ketersediannya
(Barry and Knight, 1997).
Nilai pH pada larutan nutrisi hidroponik akan mengalami perubahan
seiring dengan pertumbuhan tanaman, yakni sebanyak 0,1 (Barry and Knight,
1997). Perubahan ini dapat terjadi karena proses metabolisme yang dilakukan
oleh tanaman. Umumnya perubahan nilai pH tersebut diatasi dengan
penambahan larutan buffer, namun pada penelitian ini tidak dilakukan karena
dapat menjadi faktor yang mempengaruhi variabel pertumbuhan tanaman.
Menurut Sastroamidjojo (1992) tanaman sambung nyawa merupakan
tanaman yang memiliki sensitivitas dan fleksibilitas tinggi terhadap
perubahan lingkungan.
Selain nutrisi, pemilihan substrat yang tepat dapat berpengaruh
terhadap keberlangsungan hidup tanaman selama dalam sistem hidroponik
DFT. Ciri-ciri substrat yang baik adalah dapat menunjang tanaman,
menyediakan udara, air dan nutrisi bagi akar, tidak mengandung patogen serta
tidak bersifat fitotoksik (Lorenzo et al., 2013). Untuk itu dilakukan pemilihan
rockwool sebagai substrat dalam penelitian ini. Fukuda dan Anami (2001)
melaporkan jika tanaman melon (Cucumis melo) yang ditanam secara
hidroponik menggunakan substrat rockwool mampu memberikan rata-rata
hasil produksi yang tinggi yakni sebesar 1,86 kg per buah dengan tebal
pericarp 4,32 cm.
46
Rockwool memiliki kemampuan untuk menyimpan banyak air,
sehingga memungkinkan kelembapan bagi tanaman tercukupi yakni sekitar
50-70%. Selain itu rockwool juga merupakan substrat dengan sirkulasi
oksigen yang terjaga. Hal ini karena rockwool memiliki struktur serabut-
serabut benang berpori sehingga memungkinkan untuk dapat dilalui banyak
air yang mengikat cukup oksigen. Media tanam yang mengandung cukup
oksigen dapat mempermudah akar berespirasi. Energi yang diperoleh dari
hasil respirasi digunakan untuk asimilasi penyerapan nutrisi dan penyerapan
air (Kang and Jung, 1995). Selain itu molekul oksigen juga sangat esisensial
bagi keberlangsungan hidup tanaman untuk melakukan berbagai proses
seperti absorpsi air dan mineral serta aktivitas metabolik lainnya (Resh,
2013).
Pada kultivasi sistem DFT dalam penelitian ini, oksigen diperoleh
tanaman melalui oksigen yang terlarut dalam genangan larutan nutrisi yang
dialirkan secara terus menerus selama 24 jam melalui pompa irigasi. Menurut
Resh (2013), frekuensi dan lamanya siklus irigasi pada sistem hidroponik
harus memadai untuk mencegah defisit air pada tanaman. Selain itu siklus
irigasi yang berlangsung dalam kurun waktu yang lama dapat mengakibatkan
kebutuhan oksigen pada akar terpenuhi secara optimal. Chidiac (2019)
menambahkan, pada sistem DFT suhu larutan nutrisi harus dipertahankan
berkisar 18-24°C. Hal ini bertujuan meningkatkan kadar oksigen terlarut
dalam larutan nutrisi dan laju enzimatik pada proses metabolisme tanaman.
47
4.1.2 Jumlah Daun
Pada penelitian ini diketahui bahwa jumlah daun pada kultivasi sistem
DFT lebih baik jika dibandingkan dengan media tanah. Daun merupakan
organ penghasil karbohidrat yang diperoleh melalui proses fotosintesis.
Selain penghasil karbohidrat, daun dapat mensintesis auksin, yang
selanjutnya dibawah dan tertimbun di bagian bawah stek. Timbunan auksin
tersebut berfungsi untuk menstimulasi pertumbuhan akar (Harjadi, 1993).
Sehingga dilakukan penyisihan daun pada bahan tanaman dalam penelitian
ini agar proses fotosintesis dapat terus berlangsung. Dengan demikian,
tanaman sambung nyawa tetap memperoleh energi untuk pembentukan akar
dan tunas.
Hasil uji Mann-Whitney U menunjukan nilai rata-rata jumlah daun
tanaman (gambar 4.3) pada hidroponik DFT lebih tinggi yakni 10,72 helai
jika dibandingkan dengan media kontrol tanah yang hanya bernilai 6,28 helai
daun.
Gambar 4.3 Diagram Perbandingan Nilai Rata-Rata Perlakuan Kultivasi Hidroponik
Sistem DFT dan Media Tanah terhadap Jumlah Daun Tanaman G.procumbens
(Sumber : Dokumentasi Pribadi, 2019)
Hal ini sesuai dengan penelitian Ningrum et al., (2019), yang menyatakan
bahwa kultur hidroponik DFT dengan sirkulasi tiap 15 menit mampu
menghasilkan rata-rata jumlah daun yang tinggi pada tanaman selada
48
(Lactuca sativa) yakni sebanyak 12,69 helai daun setelah 35 hari pasca
penanaman. Hal tersebut karena ketersedian oksigen yang terlarut pada
larutan nutrisi tercukupi dengan optimal. Menurut Chidiac (2019),
konsentrasi minimum oksigen terlarut (DO) bagi pertumbuhan mayoritas
tanaman non akuatik dalam sistem DFT adalah berkisar 4 ppm. Apabila
konsentrasi oksigen terlarut kurang dari 4 ppm maka akan terjadi hipoksia
pada jaringan tanaman yakni suatu kondisi dimana sel dan jaringan tanaman
mengalami kekurangan suplai oksigen sehingga mengakibatkan kematian
tanaman (Becker, 2016).
Adapun jumlah daun tanaman sambung nyawa yang rendah dalam
kultivasi media tanah dapat dikarenakan minimnya ketersediaan nutrien
dalam tanah (Assaduzzaman et al., 2010). Menurut Marschner (1995), dalam
tanah hanya tersedia N-NO-2 1-2 µg, N-NH
+4 0,02-0,05µg, P(H2PO4
-) 0,005-
0,05 µg, K+ 0,2-2 µg, Ca
2+0,5-4 µg, Mg
2+ 0,2-2 µg, dan S (SO4
2-) 0,1-2 µg.
Sedangkan dalam larutan nutrisi hidroponik kandungan senyawa-senyawa
tersebut jauh lebih tinggi, dimana N-NO-2 memiliki kadar 5-2-µg, N-NH
+4
0,05-2 µg, P(H2PO4-) 0,5-2 µg, K
+ 5-10 µg, Ca
2+3-6 µg, Mg
2+ 1-2 µg, dan S
(SO42-
) 1,5-4 µg.
Seperti yang telah diketahui, jika pertumbuhan vegetatif pada tanaman
seperti daun, akar, dan batang erat kaitannya dengan keberadaan unsur
nitrogen. Nitrogen merupakan makronutrien esensial bagi pertumbuhan
tanaman. Tidak hanya berperan dalam pembentukan DNA, tetapi nitrogen
juga berfungsi pada penyusunan gugus fungsi amina yang membentuk asam
amino. Asam amino kemudian dipergunakan untuk membentuk protein.
49
Protein sendiri keberadaannya sangat krusial karena dibutuhkan untuk
berbagai proses dalam tanaman seperti regulasi enzim, sinyal sel, dan
membangun struktur sel (Somerville et al., 2014).
Namun demikian, keberadaan unsur nitrogen di dalam tanah tidak dapat
langsung diperoleh dan digunakan tanaman, melainkan harus melalui proses
dekomposisi dan fiksasi terlebih dahulu. Unsur yang telah didapatkan
selanjutnya menempel pada partikel tanah dan terlarut dalam larutan tanah
sehingga pada akhirnya baru dapat diserap oleh tanaman. Karenanya
kemampuan tanah dalam menyediakan nutrisi dipengaruhi oleh 4 faktor yakni
jumlah senyawa esensial yang ada dalam tanah, bentuk kombinasi dari
senyawa tersebut, tahapan proses yang harus dilalui sebelum elemen diserap
oleh tanaman, serta pH dalam larutan tanah. Berbeda dengan tanah, pada
teknik hidroponik akar tanaman langsung memperoleh nutrien tersebut
melalui genangan larutan nutrisi (Resh, 2013).
Selain itu menurut sejumlah kajian, media tanah diketahui memiliki
beberapa kelemahan diantaranya dapat mengalami kontaminasi berbagai
senyawa toksik dari lingkungan atau polutan yang berasal dari aktivitas
pabrik serta minim unsur hara (Omran et al., 1988; Yaday et al., 2002 ; Banin
et al., 1981). Hal tersebut mengakibatkan penurunan pH pada tanah serta
berkurangnya kemampuan tanah untuk mengabsorbsi toksikan. Sehingga
mengakibatkaan gangguan pada metabolisme dan pertumbuhan tanaman
(Mclaughlin et al., 1999 ; Chojnacki et al., 2005; Mapanda et al., 2005).
50
4.1.3 Berat Segar Tanaman
Hasil uji T independent yang diperoleh menyebutkan terdapat
perbedaan yang signifikan (p < 0,05) antara berat segar pada kultivasi
hidroponik DFT dengan kontrol media tanah, dengan rerata senilai 1,572 gr,
sedangkan pada media kontrol berat segar tanaman relatif kecil yakni 1,235
gr (grafik 4.4).
Gambar 4.4 Diagram Perbandingan Nilai Rata-Rata Perlakuan Kultivasi Hidroponik
Sistem DFT dan Media Tanah terhadap Berat Segar Tanaman G.procumbens
(Sumber : Dokumentasi Pribadi, 2019)
Selaras dengan penelitian Maneeply et al., (2018) yang menyatakan bahwa
berat segar tanaman brahmi (Bacopa monnieri) pada minggu ke-4 dalam
sistem DFT diketahui lebih unggul dengan berat rata-rata 40,77 gr jika
dibandingkan dengan tanaman pada media kontrol tanah yang hanya
memiliki rerata 3,60 gr. Keadaan tersebut menandakan bahwa tanaman
sambung nyawa pada perlakuan hidroponik DFT dapat melakukan
metabolisme secara optimal jika dibandingkan dengan perlakuan media
kontrol.
Berat segar tanaman adalah hasil akumulasi dari produk fotosintesis.
Hasil akumulasi tersebut selain dipengaruhi faktor genetik, juga dikarenakan
faktor kondisi lingkungan (Sainju et al., 2005). Nilai berat segar tanaman
51
berbanding lurus dengan seberapa banyak nutrisi yang diserap oleh akar
tanaman. Semakin banyak jumlah fotosintat maka semakin tinggi nilai berat
segar tanaman (Salisbury and Ross, 1995). Nilai berat segar yang tinggi pada
hidroponik DFT dapat dikarenakan pada sistem ini, akar memiliki lebih
banyak ruang secara vertikal dan lateral yang digunakan untuk
pertumbuhannya. Dengan hal ini maka dapat menjamin ketersediaan pasokan
nutrisi dan oksigen bagi akar tanaman sambung nyawa (Chun and Takakura,
1993). Walters and Christopher (2015) menyatakan, nilai rerata berat segar
pada tanaman basil jenis mrs. burns lemon (Ocimum basilicum var citriodara)
saat ditanam pada sistem DFT memberikan hasil akhir yang tinggi pada akhir
masa panen yakni 58,1 gram. Selain itu menurut mereka, dari sisi ekonomi
kultivasi DFT dapat mengurangi biaya produksi karena tidak membutuhkan
banyak tenaga kerja.
Nilai berat segar yang rendah pada perlakuan kontrol tanah dapat
dikarenakan hasil fotosintat yang rendah. Ketika hasil fotosintesis bernilai
kecil, maka hasil tersebut banyak terdistribusi pada tunas sehingga hanya
sebagian kecil yang diterima oleh akar (Fageria, 1992). Sebaliknya saat
nutrisi yang diterima tanaman banyak, khususnya unsur N yang diedarkan
dari akar ke daun maka produk fotosintesis yang dihasilkan juga akan
meningkat. Hal ini menjamin ketersediaan karbohidrat yang dibutuhkan akar.
Oleh karena itu, aktivitas perakaran dan pertunasan saling berkaitan (Osaki et
al., 1997).
Menurut Makendi (2014), sistem hidroponik DFT dapat mengontrol
tingkat nutrisi yang diberikan sehingga memungkinkan kebutuhan nutrisi
52
yang lebih rendah. Lebih lanjut pada sistem tersebut, kebutuhan air dapat
dihemat sebab air tetap berada dalam sistem dan dapat digunakan ulang
secara terus menerus. Selain itu tidak ada polutan nutrisi yang dilepaskan
pada lingkungan karena semua nutrisi tertampung pada bak penampung
dengan sistem yang terkontrol. Sehingga tidak mengakibatkan peristiwa
eutropifikasi. Berbeda halnya dengan kultivasi pada media tanah, nutrisi yang
ada dapat lari keluar lingkungan kemudian dapat mengakibatkan
eutropifikasi. Makendi (2014) juga menjelaskan kondisi sistem hidroponik
DFT yang cenderung stabil serta mobile memungkinkan untuk
meminimalisir terjadinya serangan hama dan patogen.
4.1.5 Berat Kering
Pada penelitian juga diketahui bahwa hasil berat kering pada kultivasi
sistem DFT lebih baik jika dibandingkan dengan media tanah. Analisa
statistik menggunakan uji T independent menunjukkan terdapat perbedaan
yang signifikan (p < 0,05) pada perlakuan hidroponik DFT dengan perlakuan
media kontrol tanah terhadap berat kering tanaman sambung nyawa. Dimana
pada kelompok hidroponik mempunyai rerata berat kering sebesar 0,083 gr.
Sedangkan pada perlakuan media tanah hanya bernilai 0,056 gr (gambar 4.4).
53
Gambar 4.5 Diagram Perbandingan Nilai Rata-Rata Perlakuan Kultivasi Hidroponik
Sistem DFT dan Media Tanah terhadap Berat Kering Tanaman G.procumbens
(Sumber : Dokumentasi Pribadi, 2019)
Nilai berat kering adalah hasil bersih asimilasi antara oksigen dengan
pertumbuhan tanaman. Berat kering tanaman terdiri atas tiga unsur yakni
karbon (C), oksigen (O), dan hidrogen (H) (Resh, 2013). Melalui berat kering
dapat diketahui efektivitas proses fotosintesis suatu tanaman. Hal tersebut
karena dari proses fotosintesis dapat menunjukan seberapa banyak bahan
organik yang dihasilkan tanaman (Rianto et al., 2016).
Nilai rata-rata berat kering yang tinggi pada perlakuan hidroponik DFT
menunjukkan lingkungan hidroponik mampu mengoptimalkan proses
metabolisme pada tanaman sambung nyawa, karena nutrisi yang selalu
terpenuhi dengan tepat. Sesuai dengan hal tersebut pada penelitian Gill
(2015), menyatakan tanaman dandelion (Taraxacum officinale) yang ditanam
pada sistem hidroponik DFT memiliki nilai berat kering yang besar yakni
2,90 gram. Semakin tinggi berat kering suatu tanaman maka semakin tinggi
pula energi cahaya yang digunakan dalam proses fotosintesis sehingga
menghasilkan banyak fotosintat (Sitompul dan Guritno, 1995).
Lebih lanjut diketahui bahwa terdapat korelasi pada pertumbuhan
tanaman sambung nyawa dengan teknik pengambilan bahan asal yang
54
digunakan pada penelitian ini. Secara keseluruhan penelitian ini
menggunakan teknik stek. Stek adalah teknik pemisahan organ vegetatif
(akar,daun dan batang) dari pohon induknya. Melalui stek, dapat diperoleh
tanaman dengan sifat yang sama dengan tanaman induk. Indikator
keberhasilan stek dipengaruhi oleh beberapa faktor diantaranya adalah umur
bahan stek, jenis tanaman, adanya daun muda dan tunas pada tanaman serta
persediaan bahan makanan (Agung, 2007). Hal ini diketahui juga terjadi pada
penelitian ini dimana stek yang ditanam pada sistem DFT mempunyai jumlah
daun, akar, berat segar dan berat kering yang tinggi jika dibandingkan dengan
media tanah.
Selain pemilihan bahan stek yang tepat diketahui juga berpengaruh
terhadap hasil akhir tanaman. Adapun bahan stek yang digunakan pada
penelitian ini adalah stek batang yang berasal dari tanaman sambung nyawa.
Menurut Agung (2007), ciri-ciri bahan stek batang yang baik adalah warna
kulit bagian dalam masih kehijauan yang menandakan jumlah nitrogen,
auksin dan karbohidrat yang tinggi. Ketiga komponen tersebut digunakan
untuk membantu percepatan pertumbuhan akar dan daun. Ketika akar dan
daun berjumlah banyak maka ketersediaan bahan untuk fotosintesis akan
tercukupi dengan optimal. Sehingga dapat berkontribusi dalam meningkatkan
berat kering dan berat segar tanaman (Rianto et al., 2016). Sakamoto dan
Takahiro (2018), memaparkan penggunaan stek batang sebagai bahan
kultivasi hidroponik tanaman umbi jalar (Ipomoea batatas) diketahui dapat
menghasilkan rerata berat segar dan berat kering masing-masing sebesar
294,5 gr/tanaman dan 74,8 gr/tanaman setelah 159 hari penanaman.
55
4.2 Perbedaan Perlakuan Kultivasi Hidroponik Sistem DFT dengan Media
Tanah terhadap Kadar Flavonoid Akar dan Daun G. procumbens
Flavonoid adalah salah satu jenis metabolit sekunder yang banyak ditemukan
pada tanaman sambung nyawa. Secara umum flavonoid mempunyai fungsi utama
sebagai antioksidan dimana dapat mengirim sebuah elektron kepada senyawa
radikal bebas sehingga membentuk komplek dengan logam (Nijveldt et al, 2001).
Flavonoid mempunyai banyak kelas salah satunya yakni kuersetin (Herman,
1976). Kuersetin adalah senyawa polifenol dengan gugus keto pada atom C-4 dan
gugus hidroksi pada C-3 atau C-4 serta bersifat polar. Kuersetin memiliki daya
larut yang rendah pada air sehingga cenderung dapat larut pada pelarut organik
dan senyawa alkohol (Sofyan et al., 2008). Umumnya kuersetin dapat ditemukan
pada beberapa jenis tanaman seperti pada tanaman sambung nyawa. Berdasarkan
hasil penilitian Kaewseejan et al. (2015) diketahui jika tanaman sambung nyawa
mempunyai kadar kuersetin yang tinggi yakni 135,87 µg/g.
Pengukuran kadar kuersetin pada bagian tanaman sambung nyawa (akar dan
daun) hasil kultivasi sistem DFT dan media tanah dalam penelitian ini dilakukan
menggunakan spektro UV-Vis. Dari hasil spektrofotometer UV-Vis diperoleh
nilai absorbansi larutan standar kuersetin pada masing masing konsentrasi.
Selanjutnya dilakukan pembuatan kurva kalibrasi (standar) (gambar 4.4) melalui
nilai tersebut. Kurva kalibrasi merupakan kurva yang dibuat berdasarkan
hubungan fungsional antara sinyal (nilai absorbansi) dengan konsentrasi standar
(analit) (Rahakbauw dan Wataguly, 2016).
56
Gambar 4.6 Kurva Standar Kuersetin Pada Panjang Gelombang 514
(Sumber : Dokumentasi Pribadi, 2019)
Berdasarkan gambar 4.6 dapat diketahui bahwa kurva kalibrasi dengan
panjang gelombang 514 nm memiliki persamaan regresi untuk absorbansi
kuersetin pada konsentrasi 20, 30, 40, dan 50 ppm yakni Y= 0,0127x + 0,0275.
Melalui persamaan tersebut dapat diketahui konsentrasi senyawa kuersetin pada
sampel dengan memasukkan nilai abosorbansi sampel sebagai variabel y sehingga
diperoleh nilai x. Nilai x ini adalah jumlah konsentrasi kuersetin dalam ekstrak
akar dan daun tanaman sambung nyawa.
Pada penelitian ini menunjukkan kadar kuersetin pada daun dan akar
G.procumbens yang ditanam pada hidroponik sistem DFT adalah masing-masing
sebesar 2,322mgQE/gram dan 0,747 mgQE/gram. Sedangkan pada perlakuan
kontrol konsentrasi kuersetin pada daun dan akar yaitu sebesar 0,922 mgQE/gram
dan 0,042 mgQE/gram. Nilai ini menandakan jika perlakuan kultivasi hidroponik
DFT dapat meningkatkan kandungan flavonoid tanaman sambung nyawa jika
dibandingkan dengan kultivasi secara konvensional. Hal itu selaras dengan
penelitian Maneepely et al. (2018), diketahui jika kultivasi hidroponik DFT dapat
menginduksi pembentukan senyawa metabolit sekunder berupa saponin jenis
bakosida pada tanaman Bramani (Bacopa monnieri (L.) Wettst.) dengan total
194,93 mg/tanaman. Adapun total senyawa bakosida pada media kontrol tanah
57
hanya berjumlah 26,90 mg/tanaman. Penelitian lainnya yang dilakukan oleh
Chrysarigrysa et al., (2019) juga menyebutkan bahwa sistem hidroponik DFT
yang digunakan pada kultivasi tanaman mint (Mentha spicata) mampu
meningkatkan produksi minyak atsiri pada tanaman senilai 6,75 mg/g.
Menurut Susanti et al. (2008), kandungan hara dalam suatu media diketahui
dapat mempengaruhi pembentukan flavonoid pada tanaman. Hal ini berlaku juga
dalam lingkungan hidroponik DFT yang diperuntukan sebagai sistem
perbanyakan tanaman sambung nyawa pada penelitian ini. Zheng et al. (2006),
menyebutkan kultivasi Echinacea purpurea pada sistem hidroponik DFT dapat
meningkatkan produksi senyawa fenolik asam sikorat senilai 8 mg/g pada
tanaman. Menurut Zheng et al. (2006), larutan nutrisi hidroponik menyediakan
nutrisi makro dan mikro yang dibutuhkan tanaman, terutama unsur nitrogen,
kalium serta fosfor. Kandungan nutrisi tersebut tidak hanya mempengaruhi
pertumbuhan dan perkembangan tanaman, melainkan juga dapat mengubah kadar
metabolit sekunder pada tanaman. Selaras dengan hal ini berdasarkan penelitian
Mualim et al. (2009), media tanam yang menyediakan kebutuhan unsur N, P, dan
K secara tercukupi diketahui mampu meningkatkan produksi senyawa antosianin
sebesar 34,01 mg/tanaman pada tanaman daun kolesom (Talinum tringulare).
Nitrogen (N), fosfor (P), dan kalium (K) adalah unsur esensisal bagi proses
metabolisme tanaman. Unsur N berperan dalam pembentukan banyak jenis
molekul seperti klorofil, asam amino dan protein. Sedangkan unsur fosfor (P)
penting dalam pembentukan nukleotida, ADP, ATP serta gula terfosfolirasi.
Adapun unsur kalium (K) berfungsi sebagai aktivator enzim pada proses
fotosintesis dan respirasi (Taiz dan Zeiger, 2006). Ketiga unsur tersebut saling
58
berkaitan dimana penyerapan unsur P dan N bergantung dengan keberadaan unsur
kalium. Ketika kalium tidak tersedia dengan jumlah yang cukup maka akan terjadi
efisiensi pada unsur P dan N (Sutejo, 1999). Interaksi yang optimal pada ketiga
unsur tersebut dapat meningkatkan produk metabolit primer. Peningkatan tersebut
dapat dilihat dari berat segar dan berat kering tanaman (Salisbury and Ross,1995 ;
Sitompul dan Guritno, 1995).
Pada penelitian ini, sistem DFT dapat meningkatkan rata-rata berat segar dan
kering tanaman masing-masing sebesar 1,572 dan 0,083 gr. Hasil metabolit
primer linier dengan pembentukan metabolit sekunder (Suryawati dan Muniyanto,
2014). Proklamasihningsih et al., (2018) melaporkan total senyawa polifenol
tanaman katuk (Sauropus androgynus L.) dengan rerata berat segar 40,31 gr dan
berat kering 8,15 gr lebih besar yakni 63,73 mg/g jika dibandingkan pada tanaman
dengan berat segar 17,02 gr dan berat kering 5,19 yang hanya mengandung 8,87
mg/g polifenol.
Menurut Harbert (1995), bahan awal untuk memulai metabolisme sekunder
berasal dari produk metabolisme primer yakni glukosa. Sintesis senyawa
flavonoid dihasilkan melalui tahapan yang kompleks dari asam sikimat, asam
korismat dan asama prekanat. Flavonoid diturunkan dari asam piruvat dan asam
sikimat yang berasal dari turunan karbohidrat hasil fotosintesis. Karbohidrat dari
fotosintesis masuk ke dalam jalur pentosa fosfat kemudian berasosiasi dengan
hasil asam fosfoenol piruvat. Proses penggabungan tersebut menghasilkan asam
sikimat serta asam khorismat yang selanjutnya membentuk asam prekarat lalu
membentuk flavonoid dan fenol (Gustina, 2017). Oleh karena itu, tinggi
59
rendahnya kadar flavonoid dipengaruhi interaksi dari berbagai faktor yang
mempengaruhi pertumbuhan dan metabolism tanaman.
Islam juga telah menjelaskan mengenai bagaimana Allah telah menciptakan
segala sesuatu sesuai dengan ukuran dan kegunaannya. Seperti firman Allah pada
surat Al-Qamar ayat 49 sebagai berikut.
ه بقدر ٩٤إنا كل شيء خلقن
Artinya :’’ Sesungguhnya Kami menciptakan segala sesuatu menurut ukuran’’
(QS.Al Qomar/54:49)
Ayat ini menjelaskan bahwa Allah telah menyiapkan qadha dan qadhar setiap
makhluk ciptaannya. Hal ini menerangkan jika semua kejadian pada alam raya
telah ditakdirkan oleh-Nya (Al-Qarni, 2008). Seperti halnya pada penelitian ini,
Allah juga menakdirkan seberapa jauh kemampuan tanaman sambung nyawa
untuk bertahan hidup dan tumbuh pada lingkungan buatan yakni pada hidroponik
sistem DFT.
Pada penelitian ini terdapat dua perlakuan yakni perlakuan kultivasi sambung
nyawa dengan metode hidroponik sistem DFT dan perlakuan kontrol
menggunakan media tanah. Dari perlakuan tersebut, tanaman sambung nyawa
dapat tumbuh dan berkembang lebih optimal pada sistem hidroponik DFT. Pada
sistem hidroponik DFT pula kadar flavonoid pada daun dan akar sambung nyawa
mengalami peningkatan masing-masing 2,322 mgQE/gr dan 0,747 mgQE/gr.
Hal ini membuktikan kekuasaan Allah yang mampu menumbuhkan tanaman
sambung nyawa meskipun berada pada lingkungan yang tidak sama dengan
habitat aslinya. Allah memberikan kemampuan tanaman sambung nyawa untuk
bertahan hidup dalam sistem hidroponik sistem DFT. Dengan kondisi lingkungan
60
yang sedemikian rupa, dimana nutrisi dan sirkulasi air dialirkan terus menerus
maka tanaman sambung nyawa dapat beradaptasi dengan optimal.
Selama proses adaptasi, tanaman sambung nyawa memproduksi metabolit
sekunder berupa senyawa flavonoid. Senyawa ini diproduksi sebagai respon
pertahanan terhadap lingkungan. Kadar yang disintesis disesuaikan dengan jumlah
yang dibutuhkan tanaman. Hal ini sesuai dengan ayat di atas yang menerangkan
bahwa Allah menciptakan segala sesuatu sesuai dengan ukuran dan porsinya
masing-masing. Dari hal ini manusia dapat mengambil pelajaran, untuk selalu
bersyukur dan senantiasa mempelajari fenomena yang ada di muka bumi dengan
dikaitkan pada al-qur’an dan hadist.
61
BAB V
PENUTUP
5.1 Kesimpulan
Berdasarkan penelitian yang telah dilakukan dapat diambil kesimpulan
bahwa:
1. Terdapat perbedaan yang signifikan pada variabel pertumbuhan (jumlah
daun, berat segar dan berat kering) pada kultivasi sistem DFT dan media
tanah sedangkan pada variabel jumlah akar tidak terdapat perbedaan yang
signifikan. Selain itu diketahui jika semua variabel pertumbuhan pada
kultivasi DFT memiliki nilai rata-rata yang lebih tinggi jika dibandingkan
dengan kultivasi pada media tanah.
2. Terdapat perbedaan kadar kuersetin ekstrak daun dan akar tanaman
sambung nyawa (Gynura procumbens [Lour.] Merr.) pada kultivasi
hidroponik sistem DFT dan kultivasi media tanah, dimana kadar kuersetin
ekstrak daun dan akar pada kultivasi DFT lebih tinggi yakni 2,322
mgQE/gr dan 0,747 mgQE/gr jika dibandingkan dengan perlakuan media
tanah senilai 0,922 mgQE/gr dan 0,042 mgQE/gr.
5.2 Saran
1. Perlu dilakukan penelitian lebih lanjut mengenai optimalisasi pertumbuhan
dan kadar flavonoid tanaman sambung nyawa menggunakan sistem DFT.
2. Perlu untuk dilakukan analisa lanjutan tentang pengaruh kultivasi
hidroponik sistem DFT dalam meningkatkan senyawa aktif dengan jenis
yang berbeda pada tanaman sambung nyawa.
62
DAFTAR PUSTAKA
Afandi, A. 2014. Antioxidant Properties Of Gynura Procumbens Extracts And
Their Inhibitory Effects On Two Major Human Recombinant
Cytochrome P450s Using A High Throughput Luminescence Assay.
Asian J Pharm Clin Res . 7 : 36–41.
Akowuah, G.A., Sadikun, A., and Mariam, A. 2002. Flavonoid Identification and
Hypoglycaemic Studies of the Butanol Fraction from Gynura
procumbens. Pharmaceutical Biology . 40 : 405–410.
Al-Qurthubi, S.I. 2009. Tafsir al-Qurthubi Juz „Amma,. Pustaka Azzam, Jakarta.
Al-Qarni. 2008. Tafsir Muyassar Jilid 3. Qisthi Press, Jakarta.
Assaduzzaman, M., Saifullah, M., Mollick, A.S.R., Hossain, M.M., Halim, G.
M.A and Asao, T. 2015. Influence Of Soilless Culture Substrate on
Improvement of Yield and Produce Quality of Horticultural Crops.
Soilless Culture-Use of Substrates for the Production of Quality
Horticultural Crops. 10 : 400-413.
Atmajaya, F.D. 2009. Analisisi Keseimbangan Panas pada Bak Penanaman
dalam Sistem Hidroponik Deep Flow Technique (DFT). Fakultas
Teknologi Pertanian, Institut Pertanian Bogor, Bogor.
Azizah, D., N., Kumolowati, E., dan Faramayuda, F. 2014. Penetapan Kadar
Flavonoid Metode AlCl3 pada Ekstark Metanol Kulit Buah Kakao
(Theobroma cacao L. ). Kartika Jurnal Ilmiah Farmasi. 2.
Backer, A, and Van de B. 1965. Flora of Java (Spermatophytes Only). Noordhoff-
Groningen, Nederlands.
Balazs, L.,and Leon, M. 1994. Evidence of an oxidative challenge in the
Alzheimer’s brain. Neurochemical Research.19:1131–1137.
Bar Yosep, B. 2008. Fertigation Management and Crops Response to Solution
Recycling in Semi-Closed Greenhouses. Academic Press., San Diego.
63
Banin, AJ., Naverot YN., and Yoles D. 1981. Accumulation of Heavy Metal in
Arid Zone Soils Irrigated with Treated Sewage Effluent and Their
Uptake by Rhodes grass. Journal Environmental Quality. 10 (04) :
536-540.
Becker, K. 2016. Understanding Dissolved Oxygen. Diakses pada 6 Juli 2020.
<http:/www.growtalk.com>
Beibel, J. 1964. Hydroponics-The Science Of Growing Crops Without Soil.
Florida Department Of Agricultural, Florida.
Berry W.L., Goldstein G., Dreschel T.W., Wheeler, R.M., Sager J.C., and Knott
W.,M. 1992. Water Relations, Gas Exchange, and Nutrien Response to
Long-Term Constant Water Defocit. Soil Sci. 153 : 442-451.
Berry, W. and Knight, Sharon. 1997. Plant Culture in Hydroponics. Plant Growth
Chamber Handbook. Eds RW Langhans, TW Tibbitts.
Boller, T. 1995. Chemoperception of microbial signals in plant cells. Annual
Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology. 46:189–214.
Brailford, R. W., Voesenek L.A.,Blom J., Smith P., Hall R., and Jackson M. 1993.
Enchanced Ethylene Production by Primary Roots of Zea mays L. in
Response to Sub-Ambient Partial Pressures of Oxygen. Plant Cell
Environ. 16 : 1070-1080.
Bugbee, B. 2003. Manajemen Media dan Nutrisi pada Produksi Bibit atau
Tanaman dalam Pot. Penebar Swadaya, Jakarta.
Calvo, A.M., Richard, A., Jin Woo, B.,and Nancy, P. 2002. Relationship between
Secondary Metabolism and Fungal Development. Microbiology And
Molecular Biology Reviews. 66: 447-459.
Cazes J Eds. 2005. Encyclopedia of Chromatography.Marcel Dekker Inc, New
York.
Chadirin. 2007. Pelatihan Aplikasi Teknologi Hidroponik Untuk Pengembangan
Agribisnis Perkotaan. Lembaga Penelitian Institut Pertanian Bogor,
Bogor.
Chidiac, J. 2019. Critical System Analysis : Deep Flow Technique (DFT) for
Hydroponic. Diakses pada 6 Juli 2020. <http:/www.linkedin.com>.
Chojnacki K., Chijnacki, A., Gorecka H.,and Gorecki H. 2005. Bioavibility of
Heavy Metals from Polluted Soils to Plants. Science of The Total
Environment. 337 : 175-182.
64
Chrysargyrisa, A., Spyridon, A., Petropoulosb, Ângela, F., Lillian, B., Nikolaos,
T., Isabel, C.F.R., and Ferreirac. 2019. Effect of phosphorus application
rate on Mentha spicata L. grown in deep flow technique (DFT). Food
Chemistry. 276: 84–92.
Chun, C and Takakura. 1993. Control of Root Environment for Hydroponic
Lettuce Production : Rate of Root Respiration Under Various Dissolved
Oxygen Concetrations. American Society of Agricultural Engineers
Meeting, USA.
Ciriaková, A. 2009. Heavy metals in the vascular plants of Tatra mountains.
Oecologia Montana. 18: 23–26.
Cody, V. 1988. Plant Flavonoids in Biology and Medicine,. Alan R. Less, New
York.
Cortella G, Saro O., De Angelis A., Ceccoti L., Tomasi N., Dalla Costa L.,
Manzocco L., Pinton R., Mimmo T., and Cesco S. 2014. Temperature
Control of Nutrien Solutionin Floating System Cultivation. Appl Them
Eng. 73 : 1055-1065.
Day, R. A dan Underwood A.L. 2002. Analisis Kimia Kuantitatif Edisi 6.
Erlangga, Jakarta.
Dong, S., Scagel C., Cheng L., Fuchigami L H., and Rygiewicz P. 2001. Soil
Temparature and Plant Growth Stage Influence Nitrogen Uptake and
Amino Acid Concentration of Apple during Early SPring Growth. Tree
Physiol. 21 : 541-547.
Doronicheva, N., Yasui, H., Sakurai, H. 2007. Chemical Structure Dependent
Differential Effects of Flavonoids on the Catalase Activity as Evaluated
by a Chemiluminescent Method. Biol. Pharm. 30 : 212–1217.
Early, M.P. 2004. Principles of Horticulture 4thEdition. Butterwort Heinemann,
Oxford.
Ebel, J., and Mithöfer, A. 1998. Cite as Early Events in The Elicitation of Plant
Defence. Planta 206, 335–338.
Fageria, N.K. 1992. Maximizing Crop Yields. Marcel Dekker, New York.
Faizah, H. 2019. Modul Praktikum Kultur Jaringan. UIN Sunan Ampel,
Surabaya.
65
Fanesa, A. 2011. Pengaruh Pemberian Beberapa Zat Pengatur Tumbuh terhadap
Pertumbuhan Stek Pucuk Kacang (Citrus nobilis L.). Fakultas
Pertanian, Universitas Andalas.
Ferrer, J., Austin, M., Stewart, C.J.,and Noel, J. 2008. Structure And Function Of
Enzymes Involved In The Biosynthesis Of Phenylpropanoids. Plant
Physiol. Biochem. 46: 356–370.
Ferry, D.R., Smith, A., and Malkhandi, J. 1996. Phase I Clinical Trial Of The
Flavonoid Quercetin: Pharmacokinetics And Evidence For In Vivo
Tyrosine Kinase Inhibition. Clin Cancer Res. 2 : 659–668.
Flora, S.J.S., Mittal, M., and Mehta, A. 2008. Heavy metal induced oxidative
stress & its possible reversal by chelation therapy. Indian Journal of
Medical Research. 128 : 501.
Fukuda, N., and Anami, Y. 2001. Substrate and nutrien level: Effects on the
growth and yield of melon’Cucumis melo’in soilless culture. II
International Symposium on Cucurbits 588. pp. 111–117.
Gill Reetinder. 2015. Nutrien Management for Growing Dandelion (Taraxacum
officinale L,) in Nutrien Film and Deep Flow Hydroponics. Thesis.
Universitas of Arkansas, Fayetteville Scholar Works.
Giurgiu, R., Morar, G., Adelina, D., Păuniţa, B., Duda, B., and Cristina, M. 2014.
Study Regarding The Suitability Of Cultivating Medicinal Plants In
Hydroponic Systems In Controlled Environment. Research Journal Of
Agricultural Science. 46: 84–92.
Gritter, R.J., Bobbit, J.M.,dan Schwarting, A.E. 1991. Pengantar Kromatografi.
Ed. Ke-2. Terjemahan Kosasih Padmawinata. Institut Teknologi
Bandung, Bandung.
Goddek, S., Joyce A., Kotzen B., and Gavin, M. 2019. Aquaponics Food
Production System. Springer Open, Switzerland.
Grotewold, E. 2006. The Science of Flavonoid,. Springer, United States of
America.
Guandjar, I G. dan Rohman A. 2010. Kimia Farmasi Analisis. Pustaka Belajar,
Yogyakarta.
Gustina, Y. A. 2017. Analisis Kandungan Flavonoid pada Berbagai Usia Panen
Tanaman Gandarusa (Justicia gandarrusa Burm. F. ) secara
Spetrofotometri. Skripsi. Universitas Sanata Dharma, Yogyakarta.
66
Handoko. 2003. Hidroponik Skala Rumah Tangga. PT Dunia Pustaka Jaya,
Jakarta.
Harborne, J. 1996. Metode Fitokimia. Ed. Institut Teknologi Bandung., Bandung.
Harjadi, S. 1993. Pengantar agronomi. PT. Gramedia Pustaka Umum, Jakarta.
Hassini, I., Rios, J., Baenaf, N., and Moreno, DA. 2019. Comparative Effect Of
Elicitors On The Physiology And Secondary Metabolites In Broccoli
Plants. J Plant Physiol. 239 : 1–9.
Hassall and Associates. 2001. Hydroponics as Agricultural Production Syistem :
A Raport fo The Rural Industries Research and Development
Corporation. RIRDC Publication, IRDC Project.
Haynes. R. J. 1990. Active Ion Uptake and Maintenance of Cation-Anion Balnce :
A Critical examination of Their Role in Regulating Rhizosphere pH.
Plant Soil. 126 : 247-264.
Herbert, R.B. 1995. Biosynthesis of Secondary Metabolites, 2nd edition,.
Chapman and Hall, New York.
Hernandez, X.E., Orden, A.A., Giordano, O.S., Kurina, M. 2005. Effect of
Elicitor and Copper Sulfate on Grindelic Acid Production in Submerged
Cultures of Grindelia pulchella. Elect.J.Biotechnol. 8 : 276–283.
Herrman, K. 1976. Flavonols and Flavones In Food Plants: A review. J. Food
Techno. 11: 433–438.
Herti, M.,dan Suharmiati. 2006. Khasiat & Manfaat Daun Dewa & Sambung
Nyawa. AgroMedia, Jakarta.
Hesse, M. 2002. Alkaloids Nature’s Curse or Blessing. Zurich (CH, J Wiley.
Hidyanti, L dan Trimin, K. 2019. Pengaruh Nutrisi AB-Mix terhadap
Pertumbuhan Tanaman Bayam Merah (Amaranthus tricolor L.) secara
Hidroponik. Jurnal Ilmiah Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam. 16
: 166-175.
Hudoyono, S. 2004. Pengaruh Berbagai Kondisi Oksidasi terhadap Kandungan
Kolestrol dan Sterol Lain dalam Lemak Coklat . Jurnal Sains. 8 : 74–
75.
67
Islami, T dan Utomo. W.H. 1995. Hubungan Tanah, Air dan Tanaman. IKIP
Semarang Press, Semarang.
Jedinák, A., Farago, J., Pšenáková, I., and Maliar, T. 2004. Approaches To
Flavonoid Production In Plant Tissue Cultures. Biologia, Bratislava.
59: 697—710.
Jozefczak, M., Remans, T., Vangronsveld, J., and Cuypers, A. 2012. Glutathione
is a key player in metal-induced oxidative stress defenses. International
journal of molecular sciences. 13 : 3145–3175.
Kaewseejan, N., Sutthikhum, V.,and Siriamornpun, S. 2015. Potential of Gynura
procumbens leaves as source of flavonoid-enriched fractions with
enhanced antioxidant capacity. Journal of Functional Foods.12: 120–
128.
Kamauddin, M.J., Othman N.S.I.A., M.H. Abu Bakar, A. Johari, and M. H.
Hassim. 2019. Performance of water treatment techniques on cocopeat
media filed grow bed aquaponics system. E3S Web of Conferences. 90:
1-10.
Kang, T.M.,and Jung, H.B. 1995. Effect of Rockwool Classification On The
Growth And Yield In Long Term Culture Of Tomatoes. J. Kor. Soc.
Hort. Sci. 13 : 352–353.
Kafle, G., Gautam, R., and Midmore, D. 2017. Effect Of Nutrien Omission And
Ph On The Biomass And Concentration And Content Of Steviol
Glycosides In Stevia ( Stevia rebaudiana (Bertoni) Bertoni) Under
Hydroponic Conditions. Journal of Applied Research on Medicinal and
Aromatic Plants. 20 : 10–16.
Kao, T. 2005. The Dynamic Root Floating Hydroponic Technique Year-Round
Production of Vegetables in Roc on Taiwan. ASPAC Food and
Fertilizer Technologu Center, Taiwan.
Kementerian Agama RI Direktorat Jenderal Bimbingan Masyarakat Islam
Direktorat, Urusan Agama Islam dan Pembinaan Syariah. 2011. Al-
Qur’an dan Terjemahnya. PT Adhi Aksara Abadi Indonesia, Jakarta.
Khopkar, S. M. 2010. Konsep Dasar Kimia Anlitik. Universitas Indonesia, Jakarta.
Kristanti, A.N. 2008. Buku Ajar Fitokimia. Universitas Airlangga Press.,
Surabaya.
68
Kubicki, M., Lamshöft, M., Lagojda, A., and Spiteller, M. 2019. Metabolism And
Spatial Distribution Of Metalaxyl In Tomato Plants Grown Under
Hydroponic Conditions. Chemosphere. 218 : 36–41.
Kumalasari, N., Permana A., Silvia, R and Anggie M. 2017. Interaction of
Fertilizer, Light Intensity and Media on Maize Growth in Semi-
Hydroponic System for Feed Production. In : International Seminar on
Tropoical Animal Production (ISTAP).
Kumar, C., Aeid, I., Benoıˆt, D., Anne-Gae¨ lle, Christophe, J., Emmanuel, G.,
Anand, K., Agne` s Delaunay-,and Michel, B. 2011. Glutathione
Revisited: A Vital Function In Iron Metabolism And Ancillary Role In
Thiol-Redox Control. The EMBO Journal. 30: 2044–2056.
Kumar, S and Pandey, A. Chemistry and Biological Activities of Flavonoids: An
Overview. The ScientificWorld Journal. 13 :1-16
Lestyo, W. 2011. Kromatografi Lapis Tipis. Jember, Taman Kampus Presindo
Peduli dan Pelayan Pendidikan.
Li, H., Hyeon, S., Hyun, K., Dong Ha, S., Yong Park, H., Choi, S., Lee, C., Yun
Sik, B., and Sook Jeong, T. 2015. Soy Leaf Extract Containing
Kaempferol Glycosides and Pheophorbides Improves Glucose
Homeostasis by Enhancing Pancreatic β-Cell Function and Suppressing
Hepatic Lipid Accumulation in db/db Mice. J. Agric. Food. Chem 63,
7198–7210.
Lingga, P. 1999. Hidroponik: Bercocok Tanam Tanpa Tanah. Penebar Swadaya,
Jakarta.
List, P.H., and Schmid, P.C. 1989. Phytopharmaceutical Technology, 1-2. CRC
Press, Boston.
Lorenzo, R. Antonio R.,Pietro P., and Scariot V. 2013. From Soil to Soil-Less in
Horticulture : Quality and Typicity. Italian Jpurnal of Agronomy. 8 :
255-260.
M. Al Khayri, J., M. and Naik, P. 2016. Impact of Abiotic Elicitors on In vitro
Production of Plant Secondary Metabolites: A Review. JARB. 1: 1–7.
Makendi, Maeva. 2014. A Comparative Analysis of Two Plant Growth Mediums :
Hydroponic vs Soil. The Academy of Science, Research and Medicine,
The Paulding Country High School.
69
Mandal, V.and Yogesh, M.H. 2007. Microwave assisted Extraction – An
Innovative and Promising Extraction Tool for Medicinal Plant
Research. Pharmacognosy Rev. 1: 7–18.
Maneeply, C., Sujipali, K., Narisa, K. 2018. Growth of Brahmi (Bacopa monnieri
(L.)Wettst.) by NFT and DFT Hydroponics System and Their
Accumulation of Saponin Bacosides. NU.International Journal of
Science. 15 (02) : 114-124.
Manero, F.J., Alqar, E., Gomez, M.and Solano, B. 2012. Elicitation Of Secondary
Metabolism In Hypericum perforatum By Rhizosphere Bacteria And
Derived Elicitors In Seedlings And Shoot Cultures. Pharm Biol. 50 :
1201–1209.
Mapanda, F., Mangwayana E.N., Nymangara J., and Giller KE. 2005. The Effect
of Long Term Irrigation using Wastewater on Heavy Metal
Contents of Soils Under Vegatables in Harare Zimbabwe. Agricultural
Ecosystem and Environment. 107 :151-158.
Mariani, C., Braca, A., Vitalani, Sara., Tommasi, N., Francesco, V., and
Galsomina, F. 2008. Flavonoid Characterization And In Vitro
Antioxidant Activity of Aconitum anthora L. (Ranunculaceae).
Phytochemistry. 69 : 1220-1226.
Marschner, H. 1995. Mineral Nutrition of Higher Plants. Academic Press, New
York.
Marschner, H. 1995. Functions of Mineral Nutriens: Micronutriens. In: Mineral
Nutrition of Higher Plants, 2nd Edition. Academic Press, London.
Mclaughlin, WI., Parker RR., and Clarke JM. 1999. Metals and Micronutriens-
Food Safety Issues. Field Crop Research. 60 : 143-163.
Mengel, D., and Rehm, G. 2000. Fundamental of Fertilizer Application. In
Hanbook of Soil Science. CRC Press, Boston.
Middleton, E.J. 1998. Effect of plant flavonoids on immune and inflammatory cell
function 439, 175–182.
Mohle, B., Heller, W.,and Wellman, E. 1985. UV-induced biosynthesis of
quercetin 3-0-β-D-glucuronide in dill cell cultures. Phytochemistry.
3:465–467.
70
Montaño, C., Morón, B., Guerrero, P., and Lázaro, L. 2011. A Review on the
Dietary Flavonoid Kaempferol. Mini-Reviews in Medicinal Chemistry.
11 : 298–344.
Mou, K.M and Dash, P.R. 2016. A Comprehensive Review On Gynura
procumbens Leaves. International Journal of Pharmacognosy. 3 : 168–
174.
Mualim,L.,Arifin S., dan Maya, M. 2009. Kajian Pemupukan NPK dan Jarak
Tanam pada Produksi Antosianin Daun Kolesom (Talinum tringulare
[Jacq] Willd.).J.Agron.Indonesia. 37: 55-61.
Mulyadi, M.N., Widodo, S dan Elida, N. 2015. Kajian Irigasi Hidroponik dengan
Berbagai Media Substrat dan Pengaruhnya Terhadap Pertumbuhan
Vegetatif Tanaman Tomat. Berkala Ilmiah. Teknologi Pertanian.1 :1–7.
Nafisah, Y., Laili, S., Tintrum, R. 2019. Pengaruh Electrical Conductivity pada
Sistem Hidroponik yang Berbeda terhadap Pertumbuhan Akar dan
Tunas Stek Krisan (Chrysanthemum sp.). Biosaintropis. 4:55-52.
Nasaruddin. 2010. Dasar-Dasar Fisiologi Tumbuhan. Yayasan Forest Indonesia,
Makassar.
Namdeo, A.G. 2007. Plant Cell Elicitation for Production of Secondary
Metabolites : A Review. Pharmacognosy Reviews. 1: 69–79.
Newman, J., Chappel, J. 1999. Isoprenoid Biosynthesis in Plant : Carbon
Partitioning Within the Cytoplasmic Pathway. Crit Rev Biochem Mol
Biol. 34 : 95–106.
Nijveldt, R., Van, N., Van HDE, Boelens, P.G., Van NK, Leeuwen, P. 2001.
Flavonoids: a review of probable mechanisms of action and potential
applications. The American Journal of Clinical Nutrition 74, 418–425.
Ningrum, S., Saleh, I., and Dodi B. 2019. Effect of Nutrien Solution Flow
Intervalon Growth and Yield of Lettuce (Lactuca sativa) Grown in
Hydroponically Deep Flow Technique. Agroscript. 1: 36-40.
Novianti,M., Tiwow,V., dan Kasmudin, M. 2017. Analisis Kadar Glukosa pada
Nasi Putih dan Nasi Jagung dengan Menggunakan Metode Speltronik
20. Jurnal Akademika Kimia.6 : 107-112.
Nürnberger, T and Brunner, F. 2002. Innate immunity in plants and animals:
emerging parallels between the recognition of general elicitors and
71
pathogen-associated molecular patterns. Current Opinion in Plant
Biology 5, 318–324.
Ohloff, G., 1994. Scent and fragrances: the fascination of odors and their
chemical perspectives. Springer-Verlag, USA.
Omran, MS., Waly, T., Abd Elnaim E., and El Nashar B. 1988. Effect of Sewage
Irrigation on Yield Tree Components and Heavy Metal Accumulation
in Navel Orange Trees. Biological Wastes. 23 : 17-24.
Osaki, M., Shinano T., Zheng M., and Tadano T. 1997. A Root-Shoot Interaction
Hypothesis for High Productivity of Field Crops. Kluwer Academic
Publisgher, The Netherlands.
Ozyurek, M., Bektasoglu, B., Guclu, K., Apak, R. 2009. Measurement of
Xanthine Oxidase Inhibition Activity of Phenolics and Flavonoids with
a Modified Cupric Reducing Antioxidant Capacity (CUPRAC) Method.
Anal. Chim. Acta, 636 : 42-45.
Peterson, J., Dwyer, J. 1998. Tea and flavonoids: Where We Are, Where To Go
Next. Nutrition Res 16 : 1995–2018.
Poulev, A., O’Neal, J., Logendra, S., Pouleva, R., Timeva, V., Garvey, A., Gleba,
D., Jenkins, I., Halpern, B., Kneer, R., Cragg, G and Raskin, I. 2003.
Elicitation, A New Window Into Plant Chemodiversity And
Phytochemical Drug Discovery. Journal of Medicinal Chemistry. 46:
2542–2547.
Prasad, A., Pragadheesh, V.S., Mathur, A., Srivastava, N.K., Singh, M., and
Mathur, A.K. 2012. Growth and centelloside production in
hydroponically established medicinal plant Centella asiatica (L.).
Industrial crops and products. 35 : 309–312.
Pratiwi, P., Subandi M., dan Mustari, E. 2015. Pengaruh Tingkat EC (Electrical
Conductivity) terhadap Pertumbuhan Tanaman Sawi (Brassica juncae
L.) pada Sistem Instalasi Aeroponik Vertikal. Jurnal Agro. 2 (1) : 50-
55.
Proklamasihningsih. E., Budisantoso, I., dan Inayatul M. 2019. Pertumbuhan dan
Kandungan Polifenol Tanaman Katuk (Sauropus androgynous [L.]
Merr) pada Media Tanam dengan Pemberian Asam Humat. Jurnal
Biologi. 12:96-102.
Pujiasmanto, B, J. 2010. Kajian Agreokolohi dan Morfologi Tanaman Sambung
Nyawa Gynura procumbens (Lour) Merr. Penebar Swadaya, Jakarta.
72
Radman, R., Saez, T., Bucke, C and Keshavarz, T. 2003. Elicitation of plant and
microbial systems. Biotechnology and Applied Biochemistry. 37 : 91–
102.
Raffauf, R.F. 1996. Plant alkaloids: A guide to their discovery and distribution.
Food Products Press, New York.
Rahman, A. and Asad, M. 2013. Chemical and biological investigations of the
leaves of Gynura procumbens. Int.J.Biosci. 3 : 36–43.
Ramirez, K., Limon, H., Hidalgo, D., Moyano, E., Golenioswki, M., Cusido, R.,
and Palazon, J. 2016. Elicitation, an Effective Strategy for the
Biotechnological Production of Bioactive High-Added Value
Compounds in Plant Cell Factories. Molecules. 21: 1–24.
Rao, V., Kiran, S., Rohini, P., and Bhagyasree, P. 2017. Flavonoid: A review on
Naringenin. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry. 6: 2778–
2783.
Rahakbauw, I. dan Watuguly, T. 2016. Analisis Senyawa Flavonoid Daun Lamun
( Enhalus acoroides) di Perairan Pantai Desa Waai Kabupaten Maluku
Tengah. Biopendix. 3 : 53-62.
Rascio, N., and Navari-Izzo, F. 2011. Heavy metal hyperaccumulating plants:
how and why do they do it? And what makes them so interesting? .
Plant science. 180: 169–181.
Resh, H. 2001. Hydroponic farming at the Cuisinart Resort & Spa. KC
Publishing, Inc, New York.
Resh, Howard M. 2013. Hydroponic for Food Production. CRC Press, New York.
Roberto, K. 2003. How to Hydroponic 4th
Edition. The Futuregarden Press, New
York.
Sainju, U M., Singh B P., and Whitehead W F. 2005. Tillage, Cover Crops, and
Nitrogen Fertilization Effect on Cotton and Sorghum Root Biomass,
Carbon, and Nitrogen. Agron.J. 97 :1279-1290.
Sakamoto, M and Takahiro, S. 2018. Effect of Pot Volume on the Growth of
Sweetpotato Cultivated in the New Hydroponic System. Sustainable
Agriculture Research. 1 : 137-145.
Salisbury, F.B dan Ross. C. W. 1995. Fisiologi Tumbuhan Jilid 1. ITB, Bandung
73
Samreen, T., Humaira, A., Shah, H., Ullah, S., and Javid, M. 2017. Zinc effect on
growth rate, chlorophyll, protein and mineral contents of
hydroponically grown mungbeans plant (Vigna radiata). Arabian
Journal of Chemistry. 10 : 1802–1807.
Sathiyavani, N.K.,Prabaharani and K. Krishna S. 2017. Role of Mineral Nutrition
on Root Growth of CropPlants-AReview. Int.J.Curr.Microbial.App.Sci.
6 (4) : 2810-2837.
Satyendra, S., Baghel, Nikhil, S., Rajendra, S.B., Preeti, A., and Sarlesh, R. 2016.
A Review Of Quercetin: Antioxidant And Anticancer Properties. World
Journal Of Pharmacy And Pharmaceutical Sciences.1: 146–160.
Schenke, D., Böttcher, C.,and Scheel, D. 2011. Cross Talk Between Abiotic
Ultraviolet-Bs Tress And Biotic(Flg22) Stress Signalling In
Arabidopsis Prevents Flavonol Accumulation In Favor Of Pathogen
Defence Compound Production. Plant Cell Environ. 34 : 1849–1864.
Schutzendubel, A., and Polle, A. 2002. Plant responses to abiotic stresses: heavy
metal-induced oxidative stress and protection by mycorrhization.
Journal of experimental botany. 53 : 1351–1365.
Seikh, B.A. 2006. Hydroponics: Key to sustain agriculture in water stressed and
urban environment. Pak.J.Agri. 22: 234–240.
Sharifi, R., Fokou, P., Sharopov, F., Martorell, M., Ademiluyi, A., Rajkovic, J.,
Salehi, B., Martins, N., Iriti, M., and Sharifi, R. 2018. Antiulcer Agents:
From Plant Extracts to Phytochemicals in Healing Promotion.
Molecules. 23: 1–37.
Shihab, M.Q. 2002. Tafsir al-Misbah; Pesan, Kesan, dan Keserasian Alquran
Vol. 5. Lentera Hati, Jakarta.
Siomas,As., Beig G., Papodopulou P.P., and Barbayiannis N. 2001. Quality and
composition of lettuce (cv. ‘’Plenty’’) grown in soil and soilless culture.
Acta horticulture. 548:445-449.
Sitompul. S. M dan Guritno, B. 1995. Analisis Pertumbuhan Tanaman. UGM
Press, Yogyakarta.
Skoog, Douglas. 2004. Fundamentals of Analitical Chemistry Eight Edition.
Brooks/Cole, Kanada.
Sofyan, Lucida, H.,dan Bakhtiar, A. 2008. Peningkatan Kelarutan Kuersetin
Melalui Pembentukan Kompeks Inklusi dengan β-Siklodekstrin. Jurnal
Saiins dan Teknologi. 13 :43–48.
74
Somerville, C., Cohen M., Pantanella E., Stankus A., and Lovatelli A. 2014. Small
Scale Aquaponic Food Production : Integrated Fish and Plant Farming
in FAO Fishers and Aquaculture Technical Paper Food and
Agriculture Organization of The United Nations. Rome, Italy.
Sri, Arini. Dani N., Fin A., dan Triana H. 2003. Daya Antioksidan dan Kadar
Flavonoid Hasil Ektraksi Etanol AIr DAging Buah Mahkota Dewa (
Phaleriamacrocarpa (Schef) Boerl.). Fakultas Farmasi Universitas
Gadjah Mada, Yogyakarta.
Sudjadi. 2009. Metode Pemisahan Edisi 1. Kanisius, Yogyakarta.
Sunaryo, Y., Prunomo D., M. T. Darini, and V. R. Cahyani. 2018. Effect of goat
manure liquid fertilizer combined with AB-Mix on foliage
vegetables gowth in hydroponic. IOP Conf. Series: Earth and
Environmental Science. 129: 1-6.
Surtinah. 2016. Penambahan Oksigen Pada Media Tanam Hidroponik Terhadap
Pertumbuhan Pakcoy (Brassica Rapa). Jurnal Bibiet.1 No 1: 37-35.
Suryani, R. 2015. Hidroponik Budidaya Tanaman Tanpa Tanah. Arcitra,
Yogyakarta.
Suryawati, s dan Murniyanto E. 2011. Hubungan Sifat Tanah Madura dengan
Kandungan Minyak Atsiri dan Tingkat Kelarutannya pada Jahe
(Zingiber officinale L.). Agrovigor. 4 : 99-104.
Susanti,H., Aziz S., and Melati M. 2008. Produksi Biomassa dan Bahan Bioaktif
Kolesom (Talinum triangulare (Jacq) Willd) dari Berbagai Asal Bibit
dan Dosis Pupuk Kandang Ayam. Bul. Agron. 36 : 48-55.
Sutejo, M. 1999. Pupuk dan Cara Pemupukan. PT. Rineka Cipta, Jakarta.
Sutiardarma. 2004. Analisis Struktur Organik secara Spektroskopi. UGM Press,
Yogyakarta.
Sutiyoso, Y. 2004. Hidroponik Ala Yos : Mengungkap Tuntas Cara Berhidroponik
Yang Menguntungkan. Penebar Swadaya, Jakarta.
Taiz, L.,and Zeiger, E. 2002. Plant Physiology. 3rd Edition. Sinauer Associates.,
Sunderland.
75
Tan, H.L., Chan, K.G., Pusparajah, P., Lee, L.H.,and Goh, B.H. 2016. Gynura
procumbens: An Overview of the Biological Activities. Front.
Pharmacol. 7.1-16
Tapas, A., Sakarkar, D., and Kakde, R.2008. Flavonoids as Nutraceuticals: A
Review. Trop J Pharm Res. 7. 1089–1099.
Tindall, J. A., Mills H., Radcliffe D. 1990. The Effect of Root Zone Temparature
on Nutrien Uptake of Tomato. J Plant Nutr. 13 : 939-959.
Tongaram, D. 2007. Soilles Culture. Dee Publisher, Bangkok.
Valko, M., Morris, H., and Cronin, M.T.D. 2005. Metals, toxicity and oxidative
stress. Current medicinal chemistry. 12:1161–1208.
Vimolmangkang, S., Sitthithaworn, W., Vannavanich, D., Keattikunpairoj, S., and
Chittasupho, C. 2010. Extracted from Mentha spicata and M. arvensis
var. piperascens Grown by a Hydroponic System using the Deep Flow
Technique. Journal of Natural Medicines 64:, 31–35.
Walters, K. and Christopher, J. 2015. Hydroponic Greenhouse Basil Production :
Comparing Systems and Cultivars. Hortechnology. 25 : 645-650.
Wiart, C. 2006. Medicinal Plants of Asia and the Pacific. CRC Press., Boston.
Wiendi, M.A., Wattimena, G.A., dan Gunawan. 1992. Produksi senyawa
metabolit sekunder dengan kultur jaringan. Depdikbud Direktorat
Pendidikan Tinggi Pusat Antar Universitas., Bogor.
Wientarsih, I.dan Prasetyo, B. 2006. Diktat Farmasi dan Ilmu Reseptir. Fakultas
Kedokteran Hewan IPB, Bogor.
Winarto, W.P. dan Tim Karyasari. 2003. Sambung Nyawa: Budidaya dan
Pemanfaatan Untuk Obat. Penebar Swadaya, Jakarta.
Windholz, M. 1983. The Merck Index. 10th ed Merck and Company. Rahway,
New Jersey.
Yaday, R.K., Goyal B., Sharma R., Dubey SK., and Minhas, PS. 2002. Post
Irrigation Impact of Domestic Sewage Effluent on Composition of
Soils, Crops and Ground Water- A case Study. Environment
International. 28 : 481-486.
76
Yoshikawa, M., Yamaoka, N., Takeuchi, Y. 1993. Elicitors: their significance and
primary modes of action in the induction of plant defense reactions.
Plant Cell Physiol. 34 : 63–173.
Yudi, S., Novi, A. 2016. Hidroponik Sayuran Di Perkotaan. Balai Pengkajian
Teknologi Pertanian, ja.
Zahra, A.A., Kadir, F.A., Mahmood, A.A., and Ketuly, K.A. 2011 Acute Toxicity
Study And Wound Healing Potential of Gynura procumbens Leaf
Extract In Rats 8. Journal of Medicinal Plant Research. 5 (12). 2551-
2558.
Zaker, A., Syikora, C., Abrisamchi, P.,and Gosnitzer, F. 2015. Effects Of Some
Elicitors On Tanshinone Production In Adventitious Root Cultures Of
Perovskia abrotanoides Karel. Industrial Crops and Products. 67: 97–
102.
Zheng, Youbin., Dizon M., and Saxena Praven. 2006. Growing Environment and
Nutrien Availability Affect the Content of Some Phenolic Compounds
in Echinacea purpurea and Echinacea angustifolia. Planta Med. 72 :
1407-1414.
