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MARTÍN ESPARIZ - [email protected] BIOTECNOLOGÍA DE LOS ALIMENTOS 2018 SÍNTESIS QUÍMICA, AMPLIFICACIÓN Y SECUENCIACIÓN DEL ADN

Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

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Page 1: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

M A R T Í N E S P A R I Z - E S P A R I Z @ I B R - C O N I C E T . G O V . A R

B I O T E C N O L O G Í A D E L O S A L I M E N T O S 2 0 1 8

SÍNTESIS QUÍMICA, AMPLIFICACIÓN Y

SECUENCIACIÓN DEL ADN

Page 2: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

EL MÉTODO DE LA FOSFORAMIDITA

Diagrama de flujo para la síntesis química

de oligonucleótidos de ADN. Después de

n ciclos de reacciones de acoplamiento,

se produce una molécula de ADN simple

hebra con n + 1 nucleótidos.

Molecular biotechnology : principles

and applications of recombinant DNA

/

Bernard R. Glick, Jack J. Pasternak,

and Cheryl L. Patten. — 4th ed.

Capítulo 4 (p98-143)

Page 3: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

EL MÉTODO DE LA FOSFORAMIDITA

El nucleósido inicial tiene un grupo protector de

DMT unido al grupo 5’ hidroxilo del resto

desoxirribosa y una molécula espaciadora unida

al grupo hidroxilo del carbono 3' de la

desoxirribosa. La unidad espaciadora está unida

a un soporte sólido, que generalmente es un

cordón CPG.

Complejo de inicio para la síntesis

química de una cadena de ADN.

Page 4: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

EL MÉTODO DE LA FOSFORAMIDITA

Estructura de una fosforamidita. Existen derivados fosforamiditas para cada

una de las cuatro bases (A, C, G y T).

Un grupo diisopropilamina se une al grupo fosfito 3 'del nucleósido. Un grupo

β-cianoetilo protege el grupo fosfito 3 'y un grupo DMT se une al grupo

hidroxilo 5' del azúcar desoxirribosa.

Page 5: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

EL MÉTODO DE LA FOSFORAMIDITA

Destritilación. El grupo 5 'DMT se elimina por tratamiento con TCA. En

este ejemplo, se representa la destritilación del primer nucleósido.

Page 6: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

EL MÉTODO DE LA FOSFORAMIDITA

Activación y acoplamiento. La

activación de una fosforamidita

permite que su grupo 3 'fosfito se

una al grupo hidroxilo 5' del

nucleósido destritilado unido.

Page 7: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

EL MÉTODO DE LA FOSFORAMIDITA

Capsulando Los grupos hidroxilo 5 'disponibles de nucleósidos

destritilados sin reaccionar se acetilan para evitar que

participen en la reacción de acoplamiento del ciclo siguiente.

Page 8: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

EL MÉTODO DE LA FOSFORAMIDITA

Oxidación. El enlace internucleotídico del triéster de fosfito

se oxida al triéster de fosfato pentavalente. Esta reacción

estabiliza el enlace fosfodiéster y lo hace menos susceptible a

la escisión en condiciones ácidas o básicas.

Page 9: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

EL MÉTODO DE LA FOSFORAMIDITA

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EL MÉTODO DE LA FOSFORAMIDITA

Cold Spring Harb Perspect Biol 2017;9:a02381

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EL MÉTODO DE LA FOSFORAMIDITA

Cold Spring Harb Perspect Biol 2017;9:a02381

Page 12: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

SÍNTESIS DE OLIGOS: APLICACIONES

Un oligonucleótido palindrómico

(rojo) con un sitio de

reconocimiento BamHI se hibrida

formando homoduplex.

Durante la reacción de ligación, los

linkers se unen al ADN de interes y

entre sí.

Clonación con un linker.

Page 13: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

SINTESIS DE OLIGOS: APLICACIONES

Crear un sitio de endonucleasa de

restricción en un vector con un

adaptador.

Page 14: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

SINTESIS DE OLIGOS: APLICACIONES

Los oligonucleótidos

individuales (de 20 a 60

mers) se sintetizan

químicamente. Sus

secuencias están diseñadas

para que formen una matriz

bicatenaria después del

recocido. La T4 ADN ligasa

se usa para unir los niks y

producir una versión intacta

del gen.

Ensamblaje de un gen sintético a partir

de oligonucleótidos cortos.

Page 15: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

SINTESIS DE OLIGOS: APLICACIONES

Los oligonucleótidos individuales se

sintetizan químicamente. Sus

secuencias están diseñadas para

permitirles formar una molécula

estable, con regiones emparejadas

por bases separadas por regiones

abiertas (gaps). Estas regiones se

completan mediante síntesis

enzimática de ADN in vitro. Los niks se

eliminan con T4 ADN ligasa.

Ensamblaje y síntesis de ADN

enzimático in vitro de un gen.

Page 16: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

POLYMERASE CHAIN REACTION

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POLYMERASE CHAIN REACTION

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POLYMERASE CHAIN REACTION

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POLYMERASE CHAIN REACTION

Page 20: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

PCR DE RNA MENSAJEROS EUCARIOTAS

Amplificación por PCR de ADNc de longitud completa. La transcriptasa inversa usa un oligonucleótido con oligo (dT) y una secuencia añadida [oligo (dT) -primer] para iniciar la síntesis de cDNA de primera cadena a partir de plantillas

de ARNm de poli (A) (1). La actividad transferasaterminal de la transcriptasa inversa agrega mayormente desoxicitidinas (dCs) al extremo de cada molécula de ADNc de la primera cadena de longitud completa (1). Un oligonucleótido cebador-desoxiguanosina (dG) que se empareja con la cola dC (2) actúa como un molde para la transcriptasa inversa para extender el ADNc de la primera cadena en los extremos 3 '(3).Los cebadores directo e inverso que tienen las mismas secuencias que los oligonucleótidos cebador-dG y oligo (dT) -primer, respectivamente, se añaden a la mezcla de ADNc de la primera cadena (4), y los ADNc de doble hebra de longitud completa se generan por PCR (5).

Page 21: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

PCR PARA LA SÍNTESIS DE GENES (GENES SINTÉTICOS)

Los oligonucleótidos solapantes que

codifican un dúplex de ADN se

ensamblan juntos a través del

ensamblaje de extensión de

solapamiento progresivo en una

reacción en pocillo. Después del

ensamblaje, el sintón ensamblado de

longitud completa se amplifica fuera

de la mezcla de ensamblaje mediante

reacción en cadena de la polimerasa

(PCR) con los cebadores más externos.

Cold Spring Harb Perspect Biol 2017;9:a02381

Page 22: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

SÍNTESIS QUÍMICA DE OLIGOS EN MICROARREGLOS DE ADN

Síntesis de oligonucleótidos basada en

microarreglos (microarrays). En este

método, los chips de microarrays que

contienen decenas de miles de

oligonucleótidos de diferente

secuencias. El producto final es un

conjunto de secuencias que contiene

cada oligonucleótido sintetizado en la

matriz.

Se requieren etapas de procesamiento

posteriores para "pescar" las

secuencias de oligonucleótidos

deseadas fuera del conjunto de síntesis

para la posterior síntesis génica

Cold Spring Harb Perspect Biol 2017;9:a02381

Page 23: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

SÍNTESIS DE GENES BASADO EN MICROARREGLOS

Amplificación de subpools con código de barras por

PCR (eliminando así la complejidad de fondo),

eliminan las secuencias de código de barras y luego

ensamblan los genes.

Nature Methods 11, p499–507 (2014)

doi:10.1038/nmeth.2918

Page 24: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

SÍNTESIS DE GENES BASADO EN MICROARREGLOS

Se usa un sintetizador personalizado para imprimir los oligos necesarios

para cualquier ensamblaje en pocillos separados micropateados.

Aprovechando la separación espacial que permite la síntesis de

microarrays, amplifican y ensamblan estos genes dentro de los

micropocillos.

Nature Methods 11, p499–507 (2014)

doi:10.1038/nmeth.2918

Page 25: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

SÍNTESIS DE GENES BASADO EN MICROARREGLOS

Longitudes y costos de diferentes

tecnologías de síntesis de oligos y

genes. La síntesis comercial de

oligos de proveedores tradicionales

(rosa) y las tecnologías basadas en

arreglos (café) se trazan de

acuerdo con las escalas de tallas y

los puntos de precio comúnmente

disponibles. Se muestran los costos

de la síntesis de genes de

proveedores comerciales para

genes clonados, verificados por

secuencia (verde oscuro) y

ensamblajes de ADN no purificado

(verde claro), así como los costos

de síntesis de genes derivados de

informes académicos (azul) .Nature Methods 11, p499–507 (2014)

doi:10.1038/nmeth.2918

Page 26: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

REAL-TIME PCR

Molecular biotechnology Capítulo 9

El colorante fluorescente

“SYBR green” no se une al

ADN monocatenario

(A), se une al ADN

bicatenario mientras se

sintetiza (B). Solo el ADN

unido fluoresce (C).

Page 27: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

REAL-TIME PCR

Molecular biotechnology Capítulo 9

Un gráfico de ΔRn (fluorescencia normalizada) versus número de ciclo

en un experimento de PCR en tiempo real. Se muestran cuatro fases de PCR. (1) Una fase lineal, donde la emisión de fluorescencia aún no está por encima del nivel de fondo. (2) Una fase exponencial temprana, donde la intensidad de fluorescencia se vuelve significativamente más alta que la linea de base. El ciclo en el que esto ocurre generalmente se conoce como CT. (3) Una fase exponencial, donde la cantidad de producto se duplica en cada ciclo. (4) Una fase de meseta, donde los componentes de la reacción son limitados y la amplificación se ralentiza.

Page 28: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

REAL-TIME PCR

Gráfica de CT frente a la

cantidad inicial de una

secuencia de nucleótidos

diana.

La detección de

fluorescencia es lineal en

varios órdenes de

magnitud.

Page 29: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

REAL-TIME PCR IN FOOD SCIENCE: PCR DIAGNOSTICS

Curr. Issues Mol. Biol. 15: 39-44.

• Principales problemas y desafíos:

• Tratamiento previo a la PCR de las muestras de alimentos.

• Controles analíticos

• Desarrollo de estrategias para el uso cuantitativo de qPCR.

• Automatización y escala.

• Detección de organismos viables.

La validación internacional a gran escala de los métodos

basados en PCR en comparación con los métodos

convencionales estándar existentes no se ha cumplido, pero

es esencial si se debe alentar a la industria a adoptar estos

nuevos enfoques.

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REAL-TIME PCR IN FOOD SCIENCE: PCR DIAGNOSTICS

Curr. Issues Mol. Biol. 15: 39-44.

Page 31: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

REAL-TIME PCR IN FOOD SCIENCE: PCR DIAGNOSTICS

Curr. Issues Mol. Biol. 15: 39-44.

• Control del proceso de muestra (SPC): muestra negativa con una cantidad suficiente de sustancia blanco (por ejemplo, patógeno, especie, etc.) y procesada a lo largo de todo el protocolo. Se debe obtener una señal positiva que indique que todo el proceso (desde la extracción de ácidos nucleicos hasta la reacción de amplificación) se realizó correctamente.

• Control de proceso de muestra negativo (NSPC): una muestra negativa con una cantidad suficiente de agua no objetivo o agua, y procesada a lo largo de todo el protocolo. Se debe obtener una señal negativa que indique la falta de contaminación a lo largo de todo el proceso (desde la extracción de ácidos nucleicos hasta la reacción de amplificación).

Page 32: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

REAL-TIME PCR IN FOOD SCIENCE: PCR DIAGNOSTICS

Curr. Issues Mol. Biol. 15: 39-44.

• Control positivo de PCR: una muestra de ADN que se sabe que contiene la secuencia diana. Una amplificación positiva indica que la amplificación se realizó correctamente.

• Control de amplificación interno (IAC): ácido nucleico quimérico no diana añadido a la mezcla maestra para ser co-amplificado por el mismo conjunto de cebadores que el ácido nucleico diana pero con un tamaño de amplicón distinguible visualmente o una región de secuencia interna diferente del objetivo amplicón La amplificación de IAC tanto en presencia como en ausencia de blanco indica que las condiciones de amplificación son adecuadas.

Page 33: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

REAL-TIME PCR IN FOOD SCIENCE: PCR DIAGNOSTICS

Curr. Issues Mol. Biol. 15: 39-44.

• Control de PCR negativo: incluye todos los reactivos utilizados en la amplificación excepto los ácidos nucleicos modelo. Por lo general, se agrega agua en lugar de la plantilla. Una señal negativa indica la ausencia de contaminación en el ensayo de amplificación.

• Control ambiental: Un tubo que contiene la mezcla maestra o agua se dejó abierto en la sala de configuración de PCR para detectar posibles ácidos nucleicos contaminantes en el medio ambiente.

Page 34: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

REAL-TIME PCR IN FOOD SCIENCE: PCR DIAGNOSTICS

• El mercado mundial de pruebas de inocuidad de

los alimentos se puede desglosar por tipo de

contaminante e incluye:

• Patógenos

• Organismos genéticamente modificados (OGM)

• Toxinas

• Residuos

• Otros contaminantes / verificación de ingredientes

Page 35: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

REAL-TIME PCR IN FOOD SCIENCE: PCR DIAGNOSTICS

• Las pruebas de patógenos tienen la mayor parte del mercado seguidas por las pruebas de OGM.

• Los motivos para las pruebas de alimentos incluyen:• Problemas recurrentes de salud pública relacionados con los alimentos• Las expectativas del consumidor• Montaje de requisitos reglamentarios de seguridad alimentaria• Ventaja competitiva de la industria• Costo de retiro del producto• Protección del valor de marca• Evitar litigios

• Muchas empresas no se recuperan financieramente de un brote de enfermedad transmitida por los alimentos asociado con su producto.

Page 36: Síntesis química, amplificación y secuenciación del adn

REAL-TIME PCR IN FOOD SCIENCE: PCR DIAGNOSTICS

• Los motivos para la adopción de PCR en tiempo real en pruebas de alimentos:

• Ahorro de tiempo, tanto en el tiempo total desde el muestreo hasta el resultado y en el tiempo del técnico necesario para configurar y ejecutar el ensayo.

• El alto grado de automatización.

• Alta especificidad generalmente significa que se requieren menos pruebas repetidas.

• Puede ser Multiplex.

• Puede ser cuantitativos

• Beneficios de costos en resultados de pruebas rápidas.

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REAL-TIME PCR IN FOOD SCIENCE: PCR DIAGNOSTICS

• Los motivos para pruebas de OGM: • Controversias en torno a la seguridad humana y ambiental• Etiquetado y trazabilidad• Elección del consumidor• Derechos de propiedad intelectual• Seguridad alimentaria

• La detección eficiente de OGM es cada vez más importante para cumplir con más restricciones y una mayor conciencia en la seguridad alimentaria.

• La presencia de cultivos transgénicos en el mercado de alimentos y piensos ha dado lugar a diferentes regulaciones en diferentes países:

• EE. UU .: comida etiquetada como "GM libre" si <5% GM• UE: alimentos etiquetados "GM" si> 1% GM• Japón: alimento etiquetado como "GM" si> 5% GM