Spektrofotometri Organik

LAPORAN RESMI

PRAKTIKUM DASAR TEKNIK KIMIA I

Materi :

SPEKTROFOTOMETRI ORGANIK

Oleh :

Abdul Wasi NIM : 21030113120096

Febrina Faradhiba NIM : 21030113120190

Ridwan Risky Ardiansyah NIM : 21030113120088


TEKNIK KIMIA FAKULTAS TEKNIK

UNIVERSITAS DIPONEGORO

SEMARANG

2013

spektrofotometri Organik

LAPORAN RESMI


Materi :


Oleh :

Abdul Wasi NIM : 21030113120096


Ridwan Risky Ardiansyah NIM : 21030113120088




SEMARANG

2013

HALAMAN PENGESAHAN

Laboratorium Dasar Teknik Kimia 1 ii


1. Materi Praktikum : Spektrofotometri Organik

2. Kelompok : IX/Kamis Siang

3. Anggota :

1. Nama : Febrina Faradhiba

NIM : 21030113140190

Jurusan : Teknik kimia

Universitas/Institut : Universitas Diponegoro

2. Nama : Abdul Wasi

NIM : 21030113120096



3. Nama : Ridwan Risky A

NIM : 21030113120088



Telah disahkan pada :

Hari :

Tanggal :

Semarang, Desember 2013

Disahkan oleh

Asisten Pembimbing

Bagus Muliajaya Lutfi

NIM.21030112120001

PRAKATA



Puji syukur kami panjatkan kepada Allah SWT berkat rahmat dan hidayah-

Nya kami dapat menyelesaikan laporan resmi Praktikum Dasar Teknik Kimia 1

materi spektrofotometri dengan lancar dan sesuai dengan harapan kami.

Tujuan penyusunan laporam resmi Praktikum Dasar Teknik Kimia I ini di

tujukan sebagai syarat untuk penentuan kelulusan praktikum dasar yang sedang kami

lakukan pada semester ini.

Tak lupa ucapan terima kasih juga kami sampaikan kepada : Bapak Dr.

Widayat ST, MT selaku dosen penanggung jawab Laboratorium

Dasar Teknik Kimia I, Ibu Ir. C. Sribudiati M.T selaku dosen

pembimbing, Bapak Muhammad Rustam dan Ibu Dini Iswandari

selaku Laboran Laboratorium Dasar Teknik Kimia I, Puji Lestari

selaku coordinator asisten Laboratorium Dasar Teknik Kimia I,

Bagus Muliajaya Lutfi selaku asisten pembimbing dan semua

asisten Laboratorium Dasar Teknik Kimia I, serta semua pihak yang

telah membantu dalam pembuatan laporan

Laporan resmi praktikum dasar teknik kimia I ini berisi materi

tentang spektrofotometri organik. Spektrofotometri organik adalah

metode yang digunakan untuk menganalisa konsentrasi suatu zat dalam suatu larutan

berdasarkan absorbansi terhadap warna dari larutan pada panjang gelombang

tertentu. Tujuan praktikum spektrofotometri organic yaitu untuk

menentukan panjang gelombang optimum antosianin, menetukan kurva

hubungan konsentrasi antosianin vs absorbansi pada panjang gelombang optimum

dan menentukan konsentrasi antosianin pada sampel.

Laporan resmi ini merupakan laporan resmi terbaik yang saat

ini bisa kami ajukan, namun kami menyadari pasti ada kekurangan

yang perlu kami perbaiki. Maka, kami memohon maaf bila dalam

menyajikan makalah ini masih ada kekurangannya. Saran dan

kritik, kami harapkan untuk kedepannya, Semoga makalah ini

memberikan manfaat bagi orang lain.

Semarang, Desember 2013



Penyusun

DAFTAR ISI

HALAMAN PENGESAHAN...............................................................................ii

PRAKATA.............................................................................................................iii

DAFTAR ISI .........................................................................................................iv

DAFTAR TABEL.................................................................................................vi

DAFTAR GAMBAR.............................................................................................vii

INTISARI .............................................................................................................viii

SUMMARY ..........................................................................................................

BAB I PENDAHULUAN...................................................................................... 1

I.1 LATAR BELAKANG .......................................................................... 1

I.2 TUJUAN PERCOBAAN ..................................................................... 1

I.3 MANFAAT PERCOBAAN.................................................................. 1

BAB II TINJAUAN PUSTAKA.......................................................................... 2

BAB III METODOLOGI PERCOBAAN .......................................................... 4

III.1 BAHAN DAN ALAT YANG DIGUNAKAN .................................. 4

III.2 GAMBAR ALAT .............................................................................. 4

III.3 KETERANGAN GAMBAR .............................................................. 4

III.4 CARA KERJA ................................................................................... 5

BAB IV HASIL PERCOBAAN DAN PEMBAHASAN ................................... 8

IV.1 HASIL PERCOBAAN ...................................................................... 8

IV.2 PEMBAHASAN ................................................................................ 9

BAB V PENUTUP ................................................................................................ 14

V.1 KESIMPULAN.................................................................................... 14

V.2 SARAN ............................................................................................... 14

DAFTAR PUSTAKA ........................................................................................... 15

LAMPIRAN

A. LEMBAR PERHITUNGAN.........................................................A-1

B. LAPORAN SEMENTARA..........................................................B-1

C. REFERENSI.................................................................................C-1



LEMBAR ASISTENSI

DAFTAR TABEL

Tabel 2.1 Hubungan antara energi terabsorbsi dengan gerakan molekul….….....….2

Tabel 2.2 Spektrum sinar tampak dan warna komplementer.....................................2

Tabel 4.1.1 Menentukan panjang gelombang optimum antosianin………….............

Tabel 4.1.2 Menentukan absorbansi antosianin dalam beberapa konsentrasi.............9

Tabel 4. 1.3 Menentukan nilai faktor pengenceran pada pH 1 dan pH 4,5 .…...…...10

Tabel 4.1.4 PenentuanKonsentrasi antosianin pada larutan semangka……………. 10

Tabel 4.1.4 Konsentrasi antosianin.............................................................................



DAFTAR GAMBAR

Gambar 3.2.1 . Spektrofotometri Optima SP-300…………………………………….5

Gambar 3.2.2 . Tabung Reaksi ……………………………………………………… 5

Gambar 3.2.3. Kuvet…………………….……………………………………………5

Gambar 3.2.4. Beaker Glass…………….……………………………………………5

Gambar 3.2.5. Pipet tetes……………………..………………………………………5

Gambar 3.2.6. Gelas Ukur……………………………………………………………5

Gambar 3.2.7. Indikator Universal……………...……………………………………6

Gambar4.2.1 Grafik konsentrasi panjang gelombang vs absorbansi...……………...11



INTISARI

Spektrofotometri dapat digunakan untuk menganalisa konsentrasi suatu zat di dalam larutan berdasar absorbansi terhadap warna dari larutan pada panjang gelombang tertentu. Metode spektrofotometri memerlukan larutan standar yang telah diketahui konsentrasinya. Larutan standar terdiri dari beberapa tingkat rendah sampai konsentrasi tinggi. Keuntungan utama dalam pemilihan metode ini adalah metode ini merupakan metode yang sangat sederhana untuk menetapkan kunatitas yang sangat kecil.Spektrofotometri merupakan metode analisa untuk menentukan identitas suatu komponen/konsentrasi dalam larutan yang didasarkan pada pengukuran serapan sinar monokromatis di suatu larutan berwarna. Persen transmitan adalah pembanding Antara intensitas cahaya yang keluar dari sampel terhadap intensitas cahaya yang masuk : %T=I/Io . 100% sedangkan absorbansi dinyatakan sebagai A = log 1/T = -log I/Io = 2-log %T. Banyaknya cahaya/sinar yang diabsorpsi tergantung pada jenis larutannya, panjang kuvet, konsentrasi larutan. Parameter tersebut dinyatakan secara matematis, hukum Beer : A = log I/Io = a.b.c. dari hukum Beer dapat dinyatakan bahwa hubungan Antara absorbansi vs konsentrasi memberikan garis lurus.

Pada percobaan ini, langkah kerja yang kami lakukan adalah kalibrasi alat, menentukan panjang gelombang optimum, membuat kurva kalibrasi antara absorbansi vs konsentrasi, dan menentukan kadar antosianin dalam larutan. Kalibrasi alat dilakukan dengan meamasukkan kuvet berisi air demin, kemudian atur T=100. Setelah itu masukkan kuvet sampel yang akan diamati. Untuk menentukan panjang gelombang optimum, lakukan kalibrasi alat kemudian ukur pada panjang gelombang yang berbeda, cari yang menghasilkan absorbansi maksimum. Kemudian mengukur transmitansi sampel pada panjang gelombang optimum dengan komposisi yang berbeda-beda. Kemudain sampel dibuat pH=1 dan pH=4.5 dan diukur pada 520nm dan 700nm guuna mengetahui kadar antosianin.

Hasil percobaan yang kami dapat dari percobaan yaitu panjang gelombang optimum yang kami temukan 560nm. pH dibuat 1 dan pH dibuat 4.5 supaya dapat menghitung antosianin yang ada, pH=1 mewakilkan antosianin dan pengotor, pH 4.5 mewakilkan pengotor.Salah satu cara mengambil ekstrak antosianin dengan menggunakan larutan HCl pada etanol. Hasil percobaan juga tidak sesuai dengan hukum Beer karena keberadaan enzim,pengaruh cahaya,dan pengaruh gula terhadap stabilitas antosianin. Konsentrasi yang didapat pada semangka 2 ml,4ml, 6ml,8ml,dan 10 ml yaitu 0.99ppm, 1.16ppm, 0.52ppm,0.42ppm,dan 5.02ppm.

Sebagai saran kami pada percobaan ini yaitu, atur pH = 1 dan pH= 4.5 dengan tepat supaya hasil konsentrasi yang didapat tepat, larutan sampel yang digunkaan harus jernih, perlu adanya variasi sampel supaya konsentrasi yang didapat akurat. Jangan lupa kalibrasi alat, tambahkan variasi panjang gelombang supaya panjang gelombang optimum dapat ditentukan dengan akurat.



SUMMARY

Spectrophotometry can be used to analyze the concentration of a substance in a solution based on the color of the solution absorbance at a particular wavelength. Spectrophotometric method requires a standard solution of known concentration. Standard solution consists of several levels of low to high concentration. The main advantage of this method is in the selection of this method is a very simple method to establish quantity very small.Spectrophotometry is an analytical method to determine the identity of a component / concentration in a solution based on the measurement of monochromatic light absorption in a colored solution. Percent transmittance is the comparison between the intensity of light emitted from the sample to the intensity of light entering : % T = I / Io . 100 % while the absorbance is expressed as A = log 1 / T = - log I / Io = 2 - log % T. The number of light / light absorbed depends on the type of the solution, the length cuvette , the concentration of the solution . These parameters expressed mathematically, Beer's law: A = log I / Io = abc from Beer's law can be stated that the relationship between the absorbance vs concentration gave a straight line.

In this experiment , we do the work step is calibration tool , determine the optimum wavelength , making the calibration curve between absorbance vs concentration and determine the levels of anthocyanin in solution . Calibration is done with inserting cuvette containing aquadest, and set T = 100 . After that insert the sample cuvette to be observed. To determine the optimum wavelength, then calibrate the measuring instrument at different wavelengths , which results in searching the maximum absorbance . Then measure the transmittance of the sample at the optimum wavelength with different compositions. Then samples were made of pH = 1 and pH = 4.5 and measured at 520nm and 700nm for determine levels of anthocyanin .

Our experimental results of experiments that can be the optimum wavelength 560nm we found. made pH 1 and pH 4.5 was made in order to calculate the existing anthocyanin , pH = 1 represents anthocyanin and impurities , pH 4.5 represents an impurity. One way to take the anthocyanin extracts using a solution of HCl in ethanol. The experimental results are also not in accordance with Beer's law due to enzyme,light’s influence,and glucose to stability of antosianin.Concentration obtained in watermelon 2 ml,4ml, 6ml,8ml,dan 10 ml yaitu 0.99ppm, 1.16ppm, 0.52ppm,0.42ppm,dan 5.02ppm.Our advice on this experiment , adjust pH = 1 and pH = 4.5 with the appropriate concentration results obtained so precise , sample solution should be clear , there needs to be variation concentration of the sample to obtain accurate . Do not forget the calibration tool, add the wavelength variation so that the optimum wavelength can be determined accurately .



BAB I

PENDAHULUAN

I.1. Latar Belakang

Spektrofotometri dapat digunakan untuk mengalisa konsetnrasi usatu zat

didalam larutan berdasarkan abosrbansi terhadap warna dari larutan pada panjang

gelombang tertentu. Metode spektrofotometri memerlukan larutan standar yang telah

diketahui konsentrasinya. Larutan standar terdiri dari beberapa tingkat rendah sampai

konsentrasi tinggi.

Keuntungan utama dalam pemilihan metode ini adalah metode ini merupakan

metode yang sangat sederhana untuk menetapkan kuantitas yang sangat kecil.

Spektrofotometri diaplikasikan dalam menentukan beberapa parameter ekologi laut.

Tingkat kesuburan suatu perairan ditunjukkan oleh besarnya produksi zat organik

yang dihasilkan atau jua disebut produktivitas primer. Salah satu cara yang sudah

umum dan luas dipakai adalah mengetahui banyaknya biomassa plankton di laut

dengan menentukan kadar klorofil fitoplankton dengan metode spektrofotometri.

I.2. Tujuan Percobaan

a. Menentukan nilai panjang gelombang pada sampel dengan spektrofotometer

metode spetrofometri.

b. Menentukan kurva hubungan konsentrasi antosianin vs absorbansi pada

panjang gelombang optimumnya dengan spektrofotometer metode

spetrofometri.

c. Menetukan konsentrasi antosianin pada sampel dengan spektrofotometer


I.3. Manfaat percobaan

a. Menentukan kurva hubungan konsentrasi antosianin vs absorbansi pada

panjang gelombang optimumnya dengan spektrofotometer metode

spektrofotometri.

b. Menentukan konsentrasi antosianin pada sampel dengan spektrofotometer

metode spektrofotometri.



BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

Spektrofotometri adalah kata yuang digunakan untuk ilmu yang mengacu

pada absorbs, emisi, scattering, dan cahaya dari molekul, ion, atom.

Spektrofotometri (teknik spectroscopy) merupakan metode analisa untuk

menentukan identitas suatu komponen /konsentrasi dalam larutan yang didasarkan

pada pengukuran serapan sinar monokromatis di suatu larutan berwarna.

Tabel 2.1 Hubungan Antara Energy Terabsorbsi Dengan Gerakan Molekul

Gerakan Molekul Cahaya yang Diabsorbsi Energi

Rotasi Microwave, infrared Rendah

Vibrasi Infrared Sedang

Transit electron Tampak,Ultraviolet Tinggi

Persen transmitan adalah pembanding antara intensitas cahaya yang keluar

dari sampel terhadap intensitas yang masuk : %T=I/Io x 100% sedang absorbansi

dinyatakan sebagai : A=log1/T = - log (I/Io) = 2 – log (%T)

Tabel 2.2 Spektrum sinar tampak dan warna komplementer (vogel 1989)

Panjang Gelombang

(nm)

Warna (terabsorbsi) Warna komplementer

(terlihat)

400-435 Violet Kuning-hijau

435-480 Biru Kuning

480-490 HIjau-Biru Orange

490-500 Biru-Hijau Merah

500-560 Hijau Ungu

560-580 Kuning hijau Violet

580-595 Kuning Biru

595-610 Orange Hijau-biru

610-750 Merah Biru-hijau

Banyaknya cahaya /sinar yang diabsorbsi tergantung pada jenis larutannya,

panjang sel / kuvet, konsentrasi larutan. Parameter 2 tersebut dinyatakaan secara

matematis sesuai dengan hukum Beer sebagai berikut:

A= log (Io/It) = abc



Dimana : Io = Intensitas sinar datang

It = Intensitas sinar yang diteruskan

A = Absorbansi

a = Absorbtivitas

b = Panjang cuvet

c = Konsentrasi (mg/L)

Pada praktikum ini nilai a dan b tidak berubah, sehingga ab dianggap sebagai

konstanta baru yaitu K sehingga persamaan A = kc atau bisa dinyatakan dengan

persamaan garis lurus. Dari hukum Beer dapat dinyatakan bahwa hubungan antara

absorbansi vs konsentrasi akan memberikan garis lurus.

BAB III



METODOLOGI PERCOBAAN

I.1. Alat dan Bahan

I.1.1. Bahan

1. Air demin secukupnya

2. KCl 20ml

3. Natrium Asetat 20ml

4. Ekstrak strawberry 100ml

I.1.2. Alat

1. Spektrofotometri Optima Sp-300

2. Buah Beaker glass 250ml

3. 6 tabung reaksi beserta 1 rak tabung reaksi

4. 1 pipet ukur 10 cc

5. pH meter

6. 4 buah beaker glass 50 cc

I.2. Gambar Alat



1. Spektrofotometri Optima SP-300

Gambar 3.2.1 . Spektrofotometri Optima

SP-300

2. Tabung Reaksi

Gambar 3.2.2 . Tabung Reaksi

3. Beaker Glass

Gambar 3.2.3. Beaker Glass

4. Kuvet

Gambar 3.2.4. Kuvet

5. Gelas Ukur

Gambar 3.2.5. Gelas Ukur

6. Pipet tetes

Gambar 3.2.6. Pipet tetes



7. Indikator Universal

Gambar 3.2.7. Indikator Universal

I.3. Keterangan Alat:

1. Spektrofotometri Optima SP-300 : Pengukur % transmitran dengan

panjang gelombang tertentu.

2. Beaker Glass : Tempat melarutkan larutan.

3. Gelas Ukur : Untuk mengukur larutan

4. Indikator Universal : Mengukur pH larutan.

5. Tabung Reaksi : Tempat mereaksikan zat

6. Kuvet : Wadah sampel yang akan dimasukkan

ke spektrofotometri optima SP-300

untuk dihitung % transimtrannya.

7. Pipet Tetes : Mengambil larutan dalam skala kecil.

I.4. Cara Kerja

I.4.1. Cara Kalibrasi Alat Spektrofotometri

1. Menghidupkan Optima SP-300 dengan memutar tombol power

sampai bunyi klik dan indicator lampu menyala. Biarkan dalam

kondisi ini selama 20 menit untuk pemanasan sebelum digunakan.

2. Mengatur panjang gelombang sesuai dengan percobaan yang akan

dilakukan.

3. Pilih mode pembacaan transmitan.

4. Mengosongkan tempat sampel pada spektrofotometer, kemudian

tutup. Skala pembacaan transmitan diatur 0%

5. Mengambil cuvet dan membersihkan kemudian mengisi cuvet

dengan air demin sampai ¾ nya. Bagian luar cuvet dibersihkan

dengan hati-hati



6. Membuka tutup sampel pada spektrofotometer, masukkan cuvet dan

tutup kembali

7. Mengatur pembacaan transmitan 100%

8. Spektrofotometer siap digunakan

I.1.1. Menentukan Panjang Gelombang Optimum untuk Antosianin

1. Siapkan larutan sampel, masukkan dalam cuvet hingga ¾ nya. Atur

panjang gelombang (490nm), lakukan kalibrasi alat dahulu sebelum

menggunakannya.

2. Bila menunjukkan T=0, larutan sampel terlalu pekat, maka harus

diencerkan terlebih dahulu, hingga T tidak menunjukkan angka 0.

3. Lakukan kalibrasi alat setiap setelah menggunakan spektrofotometer.

4. Bila larutan sampel yang diuji sudah tidak menunjukkan angka 0,

catat % transmitannya, dan hitung absorbansinya. A = 2-log%T

5. Menaikkan panjang gelombang setiap 10nm, hingga panjang

gelombang 560nm. Lakukan kalibrasi alat saat akan mengganti

panjang gelombang. Ulangi langkah 1.

6. Membuat kurva hubungan antara absorbansi versus panjang

gelombang, kemudian tentukan nilai panjang gelombang optimum

untuk jenis larutan sampel.

I.1.2. Membuat Kurva Kalibrasi Antara Absorbansi Versus

Konsentrasi Antosianin

1. Membuat larutan sampel pada berbagai variasi sampel.

2. Mengatur panjang gelombang sesuai dengan panjang gelombang

optimum yang ditemukan

3. Melakukan kalibrasi alat spektrofotometri

4. Mengisi cuvet lainnya dengan sampel, masukkan ke dalam tempat

sampel, tutup kembali, baca skala % transmitan dan hitung

absorbansinya. A = 2-log%T. Ulangi untuk sampel lainnya.



I.1.3. Menentukan Kadar Antosianin Total Dalam Larutan

1. Larutan sampel tadi, dibagi menjadi 2 bagian dan dimasukkan dalam

beaker glass 50cc sehingga volumenya menjadi 5ml dan 5ml.

2. Ambil beaker glass, atur pH nya menjadi 1 dengan menggunakan

larutan buffer KCl. Hitung berapa jumlah volume yang ditambahkan

sehingga pH = 1. Lakukan hal yang sama untuk sampel lainnya

3. Mengatur panjang gelombang 520nm, lakukan kalibrasi alat. Setelah

itu masukkan sampel yang sudah diatur pH nya = 1 ke dalam cuvet

hingga ¾ bagian. Catat % transmitannya dan hitung absorbansinya.

Lakukan hal yang sama untuk sampel lainnya.

4. Mengatur panjang gelombang 700nm, lakukan kalibrasi alat. Setelah

itu masukkan sampel yang sudah diatur pH nya = 4,5 ke dalam cuvet

hingga ¾ bagian. Catat % transmitannya dan hitung absorbansinya.

Lakukan hal yang sama untuk sampel lainnya.

5. Ulangi langkah 2-4 dengan beaker glass lainnya, atur pH menjadi 4,5

dengan larutan NaAsetat

6. Menghitung konsentrasi antosianin total seuai dengan rumus

C = A . MW . DF .1000

E .b

C = Konsentrasi antosianin (mg/L)

A = (A520-A700)pH1 - (A520-A700)pH 4.5

MW = Bobot molekul = 449,2 gram/mol

DF = Faktor pengenceran

E = 26900 L/mol cm

1000 = Konversi dari gram ke mgr

B = Panjang sel atau cuvet

7. Buatlah persamaan Beer untuk konsentrasi antosianin dengan

persamaan : A=kc

BAB IV

HASIL PERCOBAAN DAN PEMBAHASAN

IV.1 Hasil Percobaan



IV.1.1 Menentukan Panjang Gelombang Optimum Antosianin

Tabel 4.1.1 Panjang Gelombang optimum

λ (nm) %T Absorbansi

490 5 1.3

500 4.6 1.34

510 4.3 1.37

520 4.1 1.38

530 4 1.39

540 3.9 1.4

550 3.8 1.42

560 3.3 1.5

IV.1.2 Menentukan Absorbansi Larutan

Tabel 4.1.2 Data absorbansi antosianin pada beberapa konsentrasi

Air Demin

(ml)

Semangka(ml) %T Absorbansi Konsentrasi(mgr/L)

0 10 3.3 1.48 5.02

2 8 4.3 1.37 0.42

4 6 7.3 1.14 0.52

6 4 13.6 0.87 1.16

8 2 40.3 0.39 0.99

10 0 100 0 -

IV.1.3 Menentukan Nilai Faktor Pengenceran Pada Ph 1 dan Ph 4,5

Tabel 4.1.3 Data pengenceran volume sampel

Volume 1Volume 2

pH=1

Volume 2

pH=4.5dF pH1

dF pH

4.5

dF rata-

rata

5 6.1 2.4 1.22 4.8 3.01



5 6.5 14.7 1.3 2.94 2.12

5 7.7 10.3 1.54 2.06 1.8

5 8 12.4 1.6 2.48 2.04

5 8.7 42 1.74 8.4 5.07

IV.1.4. Penentuan Konsentrasi Antosianin Pada Larutan Semangka

Tabel 4.1.4 Konsentrasi antosianin pada larutan semangka

%T 520nm A 520nm %T 700nm A 700nm

pH=1 pH=4.5 pH=1 pH=4.5 pH=1 pH=4.5 pH=1 pH=4.5

45.5 78.2 0.34 0.11 62.2 86.6 0.21 0.06

21.8 44.1 0.66 0.36 38.3 61.7 0.41 0.20

14.1 24.2 0.85 0.62 29.2 42.6 0.53 0.37

11.2 17.3 0.95 0.76 24.6 34.5 0.60 0.46

9.1 49.6 1.04 0.30 21.3 67.7 0.67 0.17

IV.2 Pembahasan

IV.2.1 Kurva kalibrasi absorbansi versus konsentrasi

00.20.40.60.8

11.21.41.6

f(x) = 0.335090909090909 xR² = 0.984038218350429

Grafik Konsersentrasi vs Absorbansi

Konsentrasi (mg/liter)

abso

rban

si (

gr/L

)

Gambar 4.2.1 Hubungan konsentrasi vs absorbansi antosianin ekstrak semangka

Grafik diatas menunjukan bahwa semakin besar % sampel dalam larutan

semakin besar konsentrasinya,dan hasil yang diperoleh sudah menunjukkan

gejala yang benar.Hukum Lambert-Beer menyatakan bahwa apabila seberkas

monokromatis dengan intensitas I0 melalui suatu material/zat maka banyak

sinar yang di absorbs pada suatu senyawa tergantung dari konsentrasi senyawa



tersebut dan media yang dilaluinya.Hubungan antara penerapan konsentrasi

(C)dan panjang media dinyatakan dengan :

A = a.b.c (gr/L) atau A=ε.b.c (mol/L)

Karena menggunakan larutan dan cuvet yang sama,maka variable a dan b

dapat konstan sehingga persamaan menjadi :

A= k.c ; A sumbu y,c sumbu x,maka y=k.x

Persamaan diatas merupakan persamaan linier yang seharusnya

menunjukkan bahwa kian pekat sampel,kian tinggi konsentrasinya.Hal ini

berlaku pada grafik kami karena molar (ε) yang didapat dari persamaan A=

ε.b.c bukanlah suatu penetapan yang bergantung pada konsentrasi.Untuk

system ini harus menggunakan nilai absorbantivitas molar yang tergantung

pada sifat dasar,spesies pengorbansi dalam larutan dan juga pada panjang

gelombang radiasi.

I.1.1. Kadar Antosianin Praktis Lebih Kecil dari Kadar Teori

Pada Percobaan yang kami lakukan kadar antosianin yang ditemukan adalah

sebesar 5.02 ppm sedangkan kadar antosianin yang kami temukan pada

journal adalah 70.10 ppm.Hal ini disebabkan oleh factor-faktor sebagai

berikut:

a) Keberadaan enzim

Keberadaan enzim seperti glukosidase dan polifenol oksidase (PPO)

merupakan salah satu factor pendukung degradasi antosianin.Enzim

glukosidase secara langsung menyerang antosianin dengan cara

menghidrolisis ikatan antara gugus aglikon dengan gugus glikon.Hal ini

menyebabkan cincin aromatic antosianin terbuka menjadi senyawa

kalkon yang tidak berwarna.Berbeda dengan enzim glukosidase,enzim

PPO tidak secra langsung menyerang antosianin.Enzim ini mengoksidasi

senyawa fenolik menjadi o-benzoquinon.

Senyawa o-benzoquinon yang kemudian dapat mengalami kondensasi

dengan antosianin sehingga antosianin terdegradasi menjadi senyawa

tidak berwarna.

(Anonim,2013)



b) Pengaruh Cahaya

Kondisi Lab.Dasar Teknik Kimia ! yang memiliki banyak jendela

besar membuat sampel yang kami gunakan banyak terpapar sinar

matahari.Padahal cahaya berpengaruh terhadap konsentrasi

antosianin,yaitu mampu mendegradasi pigmen antosianin dan

membentuk kalkon yang tidak berwarna.Energi yang dikeluarkan cahaya

memicu terjadinya reaksi fitokimia atau fitooksidasi yang dapat

membuka cincin antosianin.Seperti reaksi berikut:

Paparan yang lebih lama menyebabkan terjadinya degradasi lanjutan

dan terbentuk senyawa turunan lain seperti 2,4,6-trihidroksi benzaldehid

dan asam benzoate tersubstitusi.Hal tersebut meneyebabkan kadar

antosianin yang ditemukan lebih kecil dari kadar asli.

(Anonim,2013)

c) Pengaruh Gula terhadap Stabilitas Antosianin

Gula yang terdapat pada semangka dapat menginduksi peningkatan

intensitas warna antosianin terutama pada kondisi sedikit asam.Namun

ada beberapa pendapat bahwa keberadaan asam askorbat,glukosa,dan

fruktosa secara bersama – sama dapat mempercepat degradasi

antosianin.Selain gula dan asam askorbat,asam amino dan fenol juga



dapat diketahui dapat mempercepat degradasi antosianin.Hal ini

menyebabkan kadar antosianin yang ditemukan lebih kecil dari kadar

asli.

(Anonim,2013)

IV.2.3 Cara Ekstraki Antosianin

Ekstraksi adalah suatu cara untuk mendapatkan zat dari bahan yang

diduga mengandung zat tersebut. Pada buah atau sayuran, pigmen antosianin

umumnya terletak pada sel-sel dekat permukaan. Ekstraksi antosianin dari

bahan nabati umumnya menggunakan larutan pengekstrak HCl dalam etanol.

Hcl dalam etanol akan mendenaturasi membrane sel tanaman kemudian

melarutkan pgimen antosianin keluar dari sel. Pigmen antosianin dapat larut

dalam etanol karena sama-sama polar. Misalnya pada ekstraksi antosianin dari

bunga pacar air, pelarut yang paling baik digunakan adalah etanol 95%. Ini

disebabkan tingkat kepolaran antosianin hamper sama dengan etanol 95%

sehingga dapat larut dengan baik pada 95%. Selain pelarut, factor yang

mempengaruhi yaitu waktu ekstraksi, pH, dan temperatur. Asam sitrat juga

digunakan pada saat ekstraksi dimana asam sitrat akan berfungsi sebagai

pengontrol keasaman.

(Simon,2013)

IV.2.4 Pengaruh pH 1 dan pH 4.5 pada Antosianin

Salah satu karakteristik utama antosianin adalah perubahan warna yang

merespon adanya perubahan pH lingkungan warna dan stabilitas antosianin

sangat bergantung dari pH.Antosianin paling stabil pada pH rendah dan

perlahan kehilangan warnanya seiring dengan peningkatan pH dan menjadi

tidak berwarna pada pH 4,0 sampai 5,0.Menurut Rein (2005) antosianin lebih

stabil pada larutan asam daripada larutan netral atau alkali.Gerak warn

antosianin akan kembali dengan adanya peningkatan derajat keasaman.

Untuk membuat pH larutan menjadi rendah/pH = 1,digunakan larutan

buffer asam berupa KCl yang diturunkan pHnya dengan HCl pekat menjadi

sama dengan 1.Pada larutan sampel (semangka)tidak hanya tekandung

antosianin saja,namun juga ada zat –zat lain yang dalam prakyikum ini

mengganggu pengamatan (zat pengotor).Pada suasana asam,antosianin

menjadi lebih stabil sehingga warna merah menjadi lebih terlihat sedangkan



zat pengotor akan menjadi tidak stabil dan pudar.Lalu untuk membuat larutan

pH 4.5 digunakan larutan Natrium Aseta yang telah diturunkan pHnya dengan

HCl pekat menjadi sama dengan 4.5.Pada pH 4.5,antosianin menjadi tidak

stabil sehingga warna merahmenjadi pudar.Dengan begitu,zat pengotor dapat

transmitannya.Maka dari itu dengan menghitung selisih antara abrorbansi pada

pH=1 daimana antosianin lebih stabil dengan pH=4.5 dimana zat pengotor

yang terukur,dapat diketahui absorbansi dari antosianin.

(Arya,2012)

IV.2.5 Penggunaan Panjang Gelombang 520 nm dan Panjang Gelombang

700 nm

Semangka mengandung antosianin yang merupakan zat warna

merah.Semangka memiliki kandungan antosianin yang dominan,hal inilah

yang menyebabkan semangka berwarna merah.Semangka mempunyai panjang

gelombang optimum 520 nm.Pada panjang gelombang 520nm,warna yang

terabsorbsi adalah hijau biru dan warna yang terlihat (komplementer) adalah

merah.Maka dari itu,pada panjang gelombang 520nm semangka memiliki nilai

absorbansi maksimum.

Namun pada panjang gelombang 700 nm,warna yang terabsorbsi adalah

warna merah dan warna yang terlihat ( komplementernya ) adalah hijau –

biru.Maka dari itu ,pada panjang gelombang 700 nm,semangka memilki nilai

absorbansi minimum.Jika dihitung selisih absorbansi pada panjang gelombang

520 nm dengan panjang gelombang 700 nm,akan di dapat absorbansi untuk

mengukur antosianin.

(Dykirana,2012)

BAB V

PENUTUP

I.2. Kesimpulan

1. Nilai panjang gelombang optimum pada sampel dengan spektrofotometri

terdapat pada panjang gelombang 560 nm.

2. Kadar semangka yang ditemukan pada journal adalah 79.10 ppm.Data yang

kami temukan lebih kecil yaitu 5.02 ppm.Hal ini dikarenakan kebeeradaan



enzim,pengaruh cahata,dan pengaruh gula terhadap antosianin.

3. Hubungan kurva konsentrasi antosianin dan absorbansi memiliki y =

0.335x ,dimana y adalah absorbansi dan x adalah konsentrasi antosianin.

I.3. Saran

1. Atur pH=1 dan pH=4.5 dengan tepat dengan menambah buffer Kcl dan

buffer NaAsetat supaya konsentrasi yang dihasilkan tepat.

2. Sebaiknya larutan yang digunakan harus jernih supaya sesuai dengan

hukum Lambert-Beer

3. Perlu adanya variasi sampel supaya konsentrasi yang dihasilkan akurat.

4. Kalibrasi alat supaya hasil yang ditunjukkan tepat.

5. Tambahkan variasi panjang gelombang supaya panjang gelombang

optimumnya lebih akurat.

DAFTAR PUSTAKA

Anonim.2013.Merah Ungu Antosianin. http://seafast.ipb.ac.id/tpc-project/wp-

content/uploads/2013/03/06-merah-ungu-antosianin.pdf.3 November

2013

Barners,kw,dkk. 2005. Determination of otal morometric antosianin pigmen content

of fruit juice, beverage, natural colorants, and louise by the ph

differential Groggins, pH. 1950. “unit porses in organic synthesis”. 5

ed.PP.700-783 McGraw Hill Book Company. Inc. New York.



Dwidjanarko,Simon.2013.EkstraksiAntosianin.http://simonbwidjanarko.wordpress.

com/2008/06/ekstrak_antosianin_2.doc.5 November 2013

Dykirana.2012.Spektrofotometer.http://dykirana.blogspot.com/2012/08/

spektrofotometer.html.5 November 2013

J.pharm.2006. Solubilization and quantification o lycopene in aqueous media I the

form of cyclodextrin Binari System. Diakses tanggal 4 Mei 2013.

Keer.R.W. 1950. Chemistry and industry of starch. 2&d. PP375-403. Academic

press. Inc. New York.

Method Collaboration study. Journal of AOAC international. Vol 85.rb.5.PP 1269-

1278

Penelope,perkins veanic. 2002. Composition of orange, yellow, and red fleshes

watermelon.

Ulilalbab,Arya.2012.Stabilitas Antosianin.http://aryaulilalbab.webunair.ac.id.5

November 2013

Vogel.1989. Texbook of quantitative Chemical analysis.longman scientific and

technical. PP 645-676 great Britain.

Woodman, A. 1941. “Food analysis”. 4 ed.PP 264-261. Mc Graw Hill Book

Company Inc. New York.

LEMBAR PERHITUNGAN

1. Menentukan Absorbansi dan Konsentrasi

1. A = (A520-A700)pH1 - (A520-A700)pH 4.5

= (0,34-0,21) – (0.11-0.06)

= 0.08

C = A . MW . DF .1000

E .b

= 0,08.449,2.3 .01 .1000

26900.4,5



= 0.99 mg/L

2. A = (A520-A700)pH1 - (A520-A700)pH 4.5

= (0.66-0.41) – (0,36-0.20)

= 0.09

C = A . MW . DF .1000

E .b

= 0,09.449,2.2 .12 .1000

26900.4,5

= 1.16 mg/L

3. A = (A520-A700)pH1 - (A520-A700)pH 4.5

= (0,85-0.53) – (0,62-0,37)

= 0.07

C = A . MW . DF .1000

E .b

= 0.07 .449,2.1 .8 .1000

26900.4,5

= 0.52 mg/L

4. A = (A520-A700)pH1 - (A520-A700)pH 4.5

= (0,95-0.60) – (0,76-0,46)

= 0.05

C = A . MW . DF .1000

E .b

= 0.05 .449,2.2 .04 .1000

26900.4,5



= 0.42 mg/L

5. A = (A520-A700)pH1 - (A520-A700)pH 4.5

= (1.04-0,67) – (0,30-0.17)

= 0.24

C = A . MW . DF .1000

E .b

= 0.24 .449,2 .1.3 .01.1000

26900.4,5

= 5.02 mg/L

= 1,591ppm



LAPORAN SEMENTARA


Materi :


Oleh :

Kelompok : IV / Kamis Siang

Anggota : Abdul Wasi NIM : 21030113120096


Ridwan Risky A NIM : 21030113120088

LABORATORIUM DASAR TEKNIK KIMIA I



SEMARANG

2013

Laboratorium Dasar Teknik Kimia I B-1


I.TUJUAN PERCOBAAN

a. Menentukan nilai panjang gelombang pada sampel dengan spektrofotometer


b. Menentukan kurva hubungan konsentrasi antosianin vs absorbansi pada panjang

gelombang optimumnya dengan spektrofotometer metode spetrofometri.

c. Menetukan konsentrasi antosianin pada sampel dengan spektrofotometer metode

spetrofometri.

II. PERCOBAAN

2.1 Bahan Yang Digunakan

1. Air demin secukupnya

2. KCl 20ml

3. Natrium Asetat 20ml

4. Ekstrak strawberry 100ml

2.1 Alat Yang Dipakai

8. Spektrofotometri Optima Sp-300

9. Buah Beaker glass 250ml

10. 6 tabung reaksi beserta 1 rak tabung reaksi

11. 1 pipet ukur 10 cc

12. pH meter

13. 4 buah beaker glass 50 cc

2.3 Cara Kerja

I.4.2. Cara kalibrasi alat spektrofotometri

1. Menghidupkan Optima SP-300 dengan memutar tombol power sampai

bunyi klik dan indicator lampu menyala. Biarkan dalam kondisi ini selama

20 menit untuk pemanasan sebelum digunakan.

2. Mengatur panjang gelombang sesuai dengan percobaan yang akan

dilakukan.



3. Pilih mode pembacaan transmitan.

4. Mengosongkan tempat sampel pada spektrofotometer, kemudian tutup.

Skala pembacaan transmitan diatur 0%

5. Mengambil cuvet dan membersihkan kemudian mengisi cuvet dengan air

demin sampai ¾ nya. Bagian luar cuvet dibersihkan dengan hati-hati

6. Membuka tutup sampel pada spektrofotometer, masukkan cuvet dan tutup

kembali

7. Mengatur pembacaan transmitan 100%

8. Spektrofotometer siap digunakan

I.1.4. Menentukan panjang gelombang optimum untuk antosianin

1. Siapkan larutan sampel, masukkan dalam cuvet hingga ¾ nya. Atur

panjang gelombang (490nm), lakukan kalibrasi alat dahulu sebelum

menggunakannya.

2. Bila menunjukkan T=0, larutan sampel terlalu pekat, maka harus

diencerkan terlebih dahulu, hingga T tidak menunjukkan angka 0.

3. Lakukan kalibrasi alat setiap setelah menggunakan spektrofotometer.

4. Bila larutan sampel yang diuji sudah tidak menunjukkan angka 0, catat %

transmitannya, dan hitung absorbansinya. A = 2-log%T

5. Menaikkan panjang gelombang setiap 10nm, hingga panjang gelombang

560nm. Lakukan kalibrasi alat saat akan mengganti panjang gelombang.

Ulangi langkah 1.

6. Membuat kurva hubungan antara absorbansi versus panjang gelombang,

kemudian tentukan nilai panjang gelombang optimum untuk jenis larutan

sampel.

I.1.5. Membuat kurva kalibrasi antara absorbansi versus konsentrasi

antosianin

1. Membuat larutan sampel pada berbagai variasi sampel.

2. Mengatur panjang gelombang sesuai dengan panjang gelombang

optimum yang ditemukan

3. Melakukan kalibrasi alat spektrofotometer.



4. mengisi cuvet lainnya dengan sampel, masukkan ke dalam tempat

sampel, tutup kembali, baca skala % transmitan dan hitung absorbansinya.

A = 2-log%T. Ulangi untuk sampel lainnya.

I.1.6. Menentukan kadar antosianin total dalam larutan

1. Larutan sampel tadi, dibagi menjadi 2 bagian dan dimasukkan dalam

beaker glass 50cc sehingga volumenya menjadi 5ml dan 5ml.

2. Ambil beaker glass, atur pH nya menjadi 1 dengan menggunakan larutan

buffer KCl. Hitung berapa jumlah volume yang ditambahkan sehingga pH

= 1. Lakukan hal yang sama untuk sampel lainnya

3. Mengatur panjang gelombang 520nm, lakukan kalibrasi alat. Setelah itu

masukkan sampel yang sudah diatur pH nya = 1 ke dalam cuvet hingga ¾

bagian. Catat % transmitannya dan hitung absorbansinya. Lakukan hal

yang sama untuk sampel lainnya.

4. Mengatur panjang gelombang 700nm, lakukan kalibrasi alat. Setelah itu

masukkan sampel yang sudah diatur pH nya = 4,5 ke dalam cuvet hingga

¾ bagian. Catat % transmitannya dan hitung absorbansinya. Lakukan hal

yang sama untuk sampel lainnya.

5. Ulangi langkah 2-4 dengan beaker glass lainnya, atur pH menjadi 4,5

dengan larutan NaAsetat

6. Menghitung konsentrasi antosianin total seuai dengan rumus

C = A . MW . DF .1000

E .b

C = Konsentrasi antosianin (mg/L)

A = (A520-A700)pH1 - (A520-A700)pH 4.5

MW = Bobot molekul = 449,2 gram/mol

DF = Faktor pengenceran

E = 26900 L/mol cm

1000 = Konversi dari gram ke mgr

B = Panjang sel atau cuvet



6. Buatlah persamaan Beer untuk konsentrasi antosianin dengan

persamaan : A=kc

II. Hasil Percobaan

No λ (nm) %T Absorbansi

1 490 5 1.3

2 500 4.6 1.34

3 510 4.3 1.37

4 520 4.1 1.38

5 530 4 1.39

6 540 3.9 1.4

7 550 3.8 1.42

8 560 3.3 1.5

Tabel 4.1.1 Panjang Gelombang optimum

No Air Demin

(ml)

Antosianin

(ml)

%T Absorbans

i

Konsentrasi(mgr/L)

1 0 10 3.3 1.48 5.02

2 2 8 4.3 1.37 0.42

3 4 6 7.3 1.14 0.52

4 6 4 13.6 0.87 1.16

5 8 2 40.3 0.39 0.99

6 10 0 100 0 -

Tabel 4.1.2 Kurva kalibrasi absorbansi versus konsentrasi



No Volume 1Volume 2

pH=1

Volume 2

pH=4.5dF pH1

dF pH

4.5

dF rata-

rata

2 5 6.1 2.4 1.22 4.8 3.01

3 5 6.5 14.7 1.3 2.94 2.12

4 5 7.7 10.3 1.54 2.06 1.8

5 5 8 12.4 1.6 2.48 2.04

6 5 8.7 42 1.74 8.4 5.07

Tabel 4.1.3 Pengenceran volume sampel

%T 520nm A 520nm %T 700nm A 700nm

pH=1 pH=4.5 pH=1 pH=4.5 pH=1 pH=4.5 pH=1 pH=4.5

45.5 78.2 0.34 0.11 62.2 86.8 0.21 0.06

21.8 44.1 0.66 0.36 38.3 61.7 0.41 0.20

14.1 24.2 0.85 0.62 29.2 42.6 0.53 0.37

11.2 17.3 0.95 0.76 24.6 34.5 0.60 0.46

9.1 49.6 1.04 0.30 21.3 67.7 0.67 0.17

Tabel 4.1.4 Konsentrasi antosianin

MENGETAHUI

PRAKTIKAN ASISTEN

Febrina Faradhiba Hilman Haidar

Laboratorium Dasar Teknik Kimia 1 C-2


REFFERENSI

Cahaya seperti halnya panas, mampu mendegradasi pigmen antosianin dan membentuk kalkon yang tidak berwarna. Energi yang dikeluarkan oleh cahaya mampu memicu terjadinya reaksi fitokimia atau fotooksidasi yang dapat membuka cincin antosianin. Paparan yang lebih lama menyebabkan terjadinya degradasi lanjutan dan terbentuk senyawa turunan lain seperti 2,4,6-trihidroksibenzaldehid dan asam benzoat tersubstitusi.

Jenis pelarut antosianin secara nyata mempengaruhi warna yang diekspresikannya. Sifat antosianin yang hidrofilik menyebabkannya sering diekstrak dengan menggunakan pelarut alkohol atau air. Pelarut alkohol menghasilkan warna antosianin yang lebih biru dibandingkan dengan pelarut air.

Pengaruh gula terhadap stabilitas antosianin masih menjadi perdebatan. Bebrapa sumber menyebutkan bahwa gula dapat menginduksi peningkatan intensitaswarna antosianin, terutama pada kondisi asam. Namun sumber lain menyebutkan bahwa keberadaan asam askorbat, glukosa, dan fruktosa secara bersama-sama dapat mempercepat degradasi antosianin karena keempat senyawa tersebut dapat berkondensasi dengan antosianin menghasilkan phlobafen yang berwarna coklat.

Keberadaan enzim seperti glukosidase dan polifenol oksidase (PPO) diketahui merupakan salah satu faktor pendukung degradasi antosianin. Enzim glukosidase secara langsung menyerang antosianin dengan cara menghidrolisis ikatan antara gugus aglikon dengan gugus glikon. Hal ini menyebabkan cincin aromatik antosianin terbuka menjadi senyawa kalkon yang tidak berwarna. Berbeda dengan enzim glukosidase, enzim PPO tidak secara langsung menyerang antosianin. Enzim ini mengoksidasi senyawa fenolik menjadi o-benzoquinon. Senyawa o-benzoquinon yang kemudian dapat mengalami kondensasi dengan antosianin. Sehingga antosianin terdegradasi menjadi senyawa tidak berwarna (kalkon).

http://seafast.ipb.ac.id/tpc-project/wp-content/uploads/2013/03/06-merah-ungu-antosianin.pdf

Laboratorium Dasar Teknik Kimia I C-1


Pada buah atau sayuran, pigmen antosianin umumnya terletak pada sel-sel dekat

permukaan (Markakis, 1982). Ekstraksi pigmen antosianin dari bahan nabati umumnya

menggunakan larutan pengekstrak HCl dalam etanol (Gao and Mazza, 1996). HCl dalam

etanol akan mendenaturasi membran sel tanaman kemudian melarutkan pigmen

antosianin keluar dari sel. Pigmen antosianin dapat larut dalam etanol karena sama-sama

polar (Broillard, 1982).

Pada penelitian Saati (2002) untuk ekstraksi antosianin dari bunga pacar air, pelarut

yang paling baik digunakan adalah etanol 95 %. Begitu juga dengan penelitian Wijaya

(2001) tentang ekstraksi pigmen dari kulit buah rambutan. Hal ini disebabkan tingkat

kepolaran antosianin hampir sama dengan etanol 95 % sehingga dapat larut dengan baik

pada etanol 95 %. Selain pelarut, menurut Pifferi and Vaccari (1998), faktor-faktor yang

dapat mempengaruhi hasil ekstraksi antosianin adalah waktu ekstraksi, pH dan

temperatur ekstraksi.

Asam Sitrat

Asam sitrat adalah asam organik yang banyak ditemukan pada buah-buahan dan

sayuran. Konsentrasi tertinggi terdapat pada buah lemon dan jeruk nipis yaitu sekitar 8

% dari berat kering buah. Keasaman asam sitrat disebabkan karena tiga gugus karboksil

COOH yang dapat melepaskan proton ke dalam larutan. Jika hal ini terjadi, ion yang

dihasilkan disebut ion sitrat (Wikipedia, 2004).

Pada suhu ruangan, asam sitrat berbentuk bubuk kristal putih. Asam sitrat bisa

terdapat dalam bentuk “anhydrous” (bebas air) atau monohidrat yang mengandung satu

molekul air tiap molekul asam sitrat. Asam sitrat aman digunakan dalam bahan pangan

walaupun dalam jumlah besar. Ini didasarkan pada peraturan pangan nasional dan

internasional. Asam sitrat bisa dimetabolisme dan dikeluarkan dari tubuh (Wikipedia,

2004).

Industri makanan dan minuman banyak menggunakan asam sitrat. Pemilihan jenis

asam ini dikarenakan mampu memberikan penggabungan khas dari sifat-sifat yang



diinginkan dan dipasaran tersedia dalam jumlah besar. Asam sitrat merupakan bahan

tambahan pangan yang mempunyai fungsi bervariasi. Industri makanan dan minuman

kebanyakan mengkonsumsinya untuk mempertegas flavor dan warna. Fungsi lainnya

adalah mengontrol keasaman. Pengontrolan pH yang tepat akan mencegah pertumbuhan

mikroorganisme dan bertindak sebagai pengawet serta membantu mencegah terjadinya

reaksi pencoklatan (Hui, 1992).

Tabel 4 Sifat-Sifat Asam Sitrat.Karakteristik Asam sitrat

Nama lainRumus kimiaBerat molekulDensitasPka

Asam 2-hidroksi-1,2,3-propan trikarboksilatC6H8O7

1921,665 x 103 kg/m3

8,2 x 10-4

Sumber : Wikipedia (2004)

http://simonbwidjanarko.wordpress.com/2008/06/ekstrak_antosianin_2.doc

Table 2. Spektrum tampak dan warna-warna komplementer



Tabel 3. Spektrum cahaya tampak

http://dykirana.blogspot.com/2012/08/spektrofotometer.html


Panjang gelombang

(nm)

Warna Warna

Komplementer

400 – 435 Lembayung (violet) Kuning-hijau

435 – 480 Biru Kuning

480 – 490 Hijau-biru Jingga

490 – 500 Biru-hijau Merah

500 – 560 Hijau Ungu (purple)

560 – 580 Kuning-hijau Lembayung (violet)

580 – 595 Kuning Biru

595 – 610 Jingga Hijau-biru

610 – 750 Merah Biru-hijau

Warna Intervalλ Intervalν

Red 625 to 740 nm 480 to 405 THz

Orange 590 to 625 nm 510 to 480 THz

Yellow 565 to 590 nm 530 to 510 THz

Green 520 to 565 nm 580 to 530 THz

Cyan 500 to 520 nm 600 to 580 THz

Blue 430 to 500 nm 700 to 600 THz

Violet 380 to 430 nm 790 to 700 THz


LEMBAR ASISTENSI

DIPERIKSA KETERANGAN

TANDA TANGANNO TANGGAL


Documents

Spektrofotometri Organik