UJI VIABILITAS FORMULA BIOFILM A8 DAN PENGUJIAN PADA PENYAKIT BLAS PADI

OLIVIA JOANIKA PUTRI

DEPARTEMEN BIOLOGI FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM

INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR

2014

PERNYATAAN MENGENAI SKRIPSI DAN SUMBER INFORMASI SERTA PELIMPAHAN HAK CIPTA

Dengan ini saya menyatakan bahwa skripsi berjudul Uji Viabilitas Formula Biofilm A8 dan Pengujian pada Penyakit Blas Padi adalah benar karya saya dengan arahan dari komisi pembimbing dan belum diajukan dalam bentuk apa pun kepada perguruan tinggi mana pun. Sumber informasi yang berasal atau dikutip dari karya yang diterbitkan maupun tidak diterbitkan dari penulis lain telah disebutkan dalam teks dan dicantumkan dalam Daftar Pustaka di bagian akhir skripsi ini.

Dengan ini saya melimpahkan hak cipta dari karya tulis saya kepada Institut Pertanian Bogor.

Bogor, Agustus 2014

Olivia Joanika Putri NIM G34100061

ABSTRAK

OLIVIA JOANIKA PUTRI. Uji Viabilitas Formula Biofilm A8 dan Pengujian pada Penyakit Blas Padi. Dibimbing oleh NISA RACHMANIA MUBARIK dan YADI SURYADI.

Penyakit blas yang disebabkan oleh cedawan Pyricularia oryzae merupakan

penyakit tanaman padi yang mampu menurunkan produktivitas padi. Penelitian ini bertujuan menguji viabilitas konsorsium bakteri dalam media pembawa biofilm secara in vitro maupun in vivo. Metode yang dilakukan, yaitu uji antagonis, viabilitas, dan in vivo pada konsorsium A8 dan formula biofilm A8 pada kondisi suhu kulkas plastik (SKP), suhu kulkas alumunium foil (SKA), suhu ruang plastik (SRP), dan suhu ruang alumunium foil (SRA) terhadap Pyricularia oryzae. Hasil uji antagonis terbaik terlihat pada perlakuan SKP dengan persentase penghambatan sebesar 63%. Uji viabilitas formula biofilm A8 dilakukan selama tiga bulan penyimpanan. Hasil menunjukkan bahwa terjadi penurunan log sel pada bulan ke-3, kecuali pada perlakuan SRP. Hasil uji in vivo terbaik pada 10 dan 14 hari setelah inokulasi (hsi) diperoleh pada perlakuan SRA dengan persentasi penghambatan sebesar 58,89% dan 44,89%.

Kata kunci: Biofilm, konsorsium bakteri A8, biokontrol, Pyricularia oryzae, penyakit blas

ABSTRACT

OLIVIA JOANIKA PUTRI. Viability test of A8 Biofilm Formulation on Rice Blas Disease. Supervised by NISA RACHMANIA MUBARIK and YADI SURYADI.

Blast disease caused by Pyricularia oryzae is a serious rice disease causing yield lost. This study aims to study the viability test of the bacterial consortium biofilm carrier by in vitro and in vivo. The method was performed, by antagonist test, viability, in vivo test on consortium of the A8 and A8 formula treatment using Plastic Refigerator’s Temperature (SKP), Alumunium foil’s Refigeratore’s Temperature (SKA), Plastic Room Termperature (SRP), and Alumunium foil’s Room Temperature (SRA) against Pyricularia oryzae. The results of SKP treatment showed the best inhibition percentage of 63%. Viability test of A8 formula biofilm was carried out during three months of storage. The results showed a decline in log cells at third month, except the SRP treatment. The best in vivo test results was obtained by SRA treatment as a percentage inhibition of 58.89% and 44.89% after 10 and 14 day after inoculation (dai).

Keywords: Biofilms, bacterial consortium A8, biocontrol, Pyricularia oryzae, blast disease

Skripsi sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar

Sarjana Sains pada Departemen Biologi

UJI VIABILITAS FORMULA BIOFILM A8 DAN PENGUJIAN PADA PENYAKIT BLAS PADI

OLIVIA JOANIKA PUTRI

DEPARTEMEN BIOLOGI FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM

INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR

2014

Judul Skripsi : Uji Viabilitas Formula Biofilm A8 dan Pengujian pada Penyakit Blas Padi Nama : Olivia Joanika Putri NIM : G34100061

Disetujui oleh

Dr Nisa Rachmania Mubarik, MSi Pembimbing I

Ir Yadi Suryadi, MSc Pembimbing II

Diketahui oleh

Dr Ir Iman Rusmana, MSi Ketua Departemen

Tanggal Lulus:

PRAKATA

Puji dan syukur penulis panjatkan kepada Allah SWT atas segala karunia dan rahmat-Nya, sehingga penulis dapat menyelesaikan penelitian dan penyusunan karya ilmiah yang berjudul “Uji Viabilitas Formula Biofilm A8 dan Pengujian pada Penyakit Blas Padi”. Penelitian ini dilaksanakan dari bulan Januari sampai dengan Juni 2014 di Laboratorium Konservasi Mikroba dan Rumah Kaca Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Bioteknologi dan Sumber Daya Genetika Pertanian (BB-Biogen), Bogor. Penelitian ini didanai dari KKP3N Litbang Deptan tahun 2014 kepada NRM.

Penulis mengucapkan terima kasih kepada Dr Nisa Mubarik, MSi dan Ir Yadi Suryadi, MSc atas bimbingan dan arahannya selama penelitian dan penyusunan skripsi berlangsung. Penulis juga ingin mengucapkan terima kasih kepada Dr Sulistijorini selaku penguji ujian skripsi atas diskusi dan sarannya. Tak lupa penulis sampaikan terima kasih kepada kedua orang tua dan kakak atas doa, kasih sayang, dan dukungannya. Selain itu, rasa terima kasih penulis ucapkan kepada seluruh pegawai di Laboratorium Mikrobiologi, BB Biogen, Bogor dan rekan seperjuangan Biologi 47 atas bantuan dan dukungannya selama ini.

Semoga karya ilmiah ini bermanfaat untuk perkembangan ilmu pengetahuan.

Bogor, Agustus 2014

Olivia Joanika Putri

DAFTAR ISI

DAFTAR TABEL vi DAFTAR GAMBAR vi DAFTAR LAMPIRAN vi PENDAHULUAN  

Latar Belakang 1 

Tujuan Penelitian 2 

METODE  

Bahan 2 

Peremajaan Bakteri dan Cendawan 2 

Formulasi A8 dengan Media Pembawa Biofilm 2 

Uji Antagonisme Bakteri terhadap P. oryzae 3 

Uji Viabilitas Formulasi Biofilm A8 3 

Uji in Vivo Formula Biofilm A8 terhadap P. oryzae di Rumah Kaca 4 

HASIL DAN PEMBAHASAN  

Hasil 4 

Pembahasan 11 

SIMPULAN DAN SARAN  

Simpulan 14 

Saran 14 

DAFTAR PUSTAKA 14

LAMPIRAN 16

RIWAYAT HIDUP 20

DAFTAR TABEL

1 Persentase penghambatan setiap mikrob uji terhadap P.oryzae dan populasi 6 sel mikrob uji 2 Persentase penghambatan formula biofilm A8 terhadap pertumbuhan miselia 6 P. oryzae 3 Viabilitas perlakuan formula biofilm A8 7 4 Skoring jumlah koloni bakteri pada formula biofilm A8 selama tiga bulan 7 5 Persentase penghambatan oleh formula biofilm A8 terhadap P. oryzae 11 minggu pertama dan kedua

DAFTAR GAMBAR

1 Spora Pyricularia oryzae pada perbesaran 400x 5 2 Formula biofilm A8 5 3 Koloni bakteri formula biofilm A8 pada penyimpanan bulan ketiga 8 4 Gejala bercak daun pada 10 hsi pada perlakuan formula 9 5 Gejala bercak daun pada 14 hsi pada perlakuan formula 10

DAFTAR LAMPIRAN

1 Sifat varietas unggul Inpari 13 16 2 Komposisi media pertumbuhan 16 3 Sistem evaluasi standar IRRI (1998) 17 4 Uji antagonisme mikrob uji dan perlakuan formula 17 5 Analysis of Variance (ANOVA) intensitas serangan blas 10 hsi 18 6 Analysis of Variance (ANOVA) intensitas serangan blas 14 hsi 18 

PENDAHULUAN

Latar Belakang

Perubahan paradigma masyarakat Indonesia yang menjadikan beras sebagai makanan pokok membuat para petani berusaha lebih keras untuk meningkatkan produktivitas beras. Penyakit tanaman padi menjadi salah satu kendala untuk meningkatkan produktivitasnya. Penyakit blas ialah salah satu penyakit serius yang menginfeksi tanaman padi dan mampu membuat kerugian mencapai 90% (Mukhlis dan Prayudi 2001). Serangan penyakit blas di Indonesia mencapai luas 1.285 juta ha atau sekitar 12% dari total luas areal pertanaman padi (BPS 2008). Penyakit blas mampu menginfeksi tanaman padi pada fase vegetatif yang menyerang bagian daun dan fase generatif yang menyerang bagian malai padi. Penelitian ini memfokuskan satu macam peyakit blas padi, yaitu blas daun. Gejala blas pada daun dicirikan dengan terbentuknya bercak berbentuk elips dengan runcing dikedua ujungnya dan tepian bercak berwana coklat hingga putih keabuan di bagian tengahnya (Ou 1979; Vanaraj et al. 2013).

Faktor pemicu serangan P. oryzae ialah curah hujan yang cukup tinggi dan stabil, kandungan unsur hara, kelembaban relatif di atas 92%, penggunaan varietas padi, dan teknik budidaya. Upaya yang saat ini masih dilakukan untuk menanggulangi penyakit tersebut, yaitu penggunaan dan pergiliran varietas tahan, fungisida sintetik, pemupukan berimbang, dan penentuan waktu tanam (Mukhlis dan Prayudi 2001, Munoz 2008). Namun, upaya tersebut dirasa masih belum efektif dan dapat menimbulkan dampak negatif bagi lingkungan dan manusia, yaitu penggunaan fungisida yang terlalu sering mampu membuat P. oryzae menjadi resisten, mengalami mutasi, dan mengganggu kesehatan manusia (Riana 2011).

Penggunaan biokontrol menjadi solusi terbaik untuk menggantikan peran fungisida sintetik. Agens pengendali hayati (APH) merupakan biokontrol atau pengendali alami untuk menghambat pertumbuhan organisme penyakit tanaman (OPT). Bakteri sebagai APH mempunyai keunggulan, yaitu massa sel dapat diproduksi lebih mudah dan lebih cepat. Genus bakteri yang berpotensi untuk dijadikan sebagai APH, yaitu Bacillus dan Pseudomonas serta spesies Serratia marcescens (Syachroni 2011; Sutarya et al. 2004). Menurut Nopiyanti (2013) dalam penelitiannya bahwa, formula kosorsium A8 (Bacillus firmus, Bacillus cereus, Pseudomonas aeruginosa, dan Serratia marcescens) dalam media pembawa talk mampu menghambat pertumbuhan P. oryzae sebesar 95%.

Media pembawa terbaru yang digunakan dalam penelitian ini ialah media pembawa biofilm. Karakteristik dari biofilm tersebut, yaitu struktur berupa gel dan sifatnya yang lengket. Media pembawa diformulasikan dengan konsorsium bakteri A8 membentuk suatu formula biofilm A8 yang dikemas ke dalam kemasan plastik dan alumunium foil serta disimpan pada suhu ruang dan suhu kulkas.

2

Tujuan Penelitian Penelitian ini bertujuan mengukur dan membandingkan viabilitas bakteri

dari formula biofilm A8 dalam bentuk kemasan plastik dan alumunium foil yang disimpan pada suhu kulkas dan suhu ruang selama tiga bulan penyimpanan serta mengukur keefektifannya sebagai agens pengendali hayati penyakit blas daun pada tanaman padi di rumah kaca.

METODE

Bahan

Ada tiga isolat bakteri dan satu isolat cendawan koleksi dari Laboratorium

Konservasi Mikroba, BB-Biogen, yaitu B. firmus E65, P. aeruginosa C32b, S. marcescens E31, dan isolat cendawan Pyricularia oryzae hasil isolasi dari padi Inpari 13 (Inbrida Padi Irigasi) yang terserang blas di Kuningan, Jawa Barat. Terdapat satu isolat bakteri koleksi Laboratorium Mikrobiologi, Departemen Biologi, FMIPA, IPB, yaitu B. cereus II.14. Bibit padi yang digunakan ialah varietas Inpari 13 (Lampiran 1). Isolat-isolat bakteri tergabung menjadi sebuah konsorsium A8.

Peremajaan Bakteri dan Cendawan

Setiap isolat bakteri dimurnikan dengan metode kuadran untuk mendapatkan koloni tunggal pada media cawan nutrient agar (NA). Koloni murni diremajakan pada media tumbuh NA miring dan diinkubasi pada suhu ruang selama 24-48 jam lalu disimpan pada suhu 4°C.

Cendawan P. oryzae diremajakan dalam media potato dextrose agar (PDA) dan diinkubasi selama 15 hari pada suhu ruang. Spora cendawan tersebut ditumbuhkan di dalam media oat meal agar (OMA) (Lampiran 2).

Formulasi A8 dengan Media Pembawa Biofilm Isolat konsorsium A8 (B. firmus E65, B. cereus II.14, P. aeruginosa C32b,

dan S. marcescens E31) ditumbuhkan selama 24 jam dalam media nutrient broth (NB) hingga jumlah sel mencapai 10-7-108 cfu/ml. Sebanyak 10 ml konsorsium A8 dicampurkan dalam komposit media pembawa biofilm. Komposisi media pembawa biofilm, yaitu kitosan, asam polilaktat (APL), pati, gliserol, dan CMC.

3

Media pembawa biofilm disterilisasi selama 1 jam pada suhu 121°C, 1 atm. Pengemasan formula biofilm A8 dilapisi dengan plastik tahan panas lalu dikemas ke dalam dua jenis kemasan, yaitu kemasan plastik tipe OPP/PP Multilayer dan alumunium foil tipe Seal U/T Alu foil/ Metalis. Terdapat empat perlakuan formula biofilm A8 dan satu kontrol, yaitu suhu kulkas plastik (SKP), suhu kulkas alumunium foil (SKA), suhu ruang plastik (SRP), dan suhu ruang alumunium foil (SRA). Perlakuan kontrol tanpa diinjeksikan dengan konsorsium A8. Formula biofilm A8 kemudian disimpan selama tiga bulan, yaitu pada bulan ke 0, 1, 2, dan 3 yang digunakan untuk uji antagonis, uji viabilitas, dan uji in vivo di rumah kaca.

Uji Antagonisme Bakteri terhadap P. oryzae

Uji antagonis secara in vitro diujikan terhadap setiap isolat bakteri E65, II.14, E31, C32b, konsorsium A8, kontrol negatif, dan empat perlakuan formula biofilm A8 (SRA, SRP, SKA, dan SKP). Perlakuan kontrol negatif menggunakan isolat P. oryzae dengan akuades steril. Setiap kultur isolat bakteri dalam NB yang digunakan berumur 24 jam dengan populasi sel mencapai 107-108 cfu/ml. Metode yang digunakan yaitu metode dual culture test. Media yang digunakan ialah PDA dalam cawan yang berukuran 9 cm. Sebanyak 80 µl formula perlakuan dan P. oryzae diletakkan secara berhadapan dengan jarak 3 cm. Semua perlakuan diinkubasi selama 15 hari pada suhu ruang. Perlakuan formula biofilm A8 terlebih dulu diencerkan ke dalam 9 ml garam fisiologis (NaCl 0,85%) pada pengenceran 10-1.

Perhitungan persentase penghambatan pertumbuhan miselia cendawan patogen dilakukan menggunakan metode Fokkema (1983):

Persentase penghambatan = M M   %

M

M0 = diameter miselium cendawan patogen tanpa perlakuan formula (cm) M1 = diameter miselium cendawan patogen dengan perlakuan formula (cm)

Uji Viabilitas Formulasi Biofilm A8

Uji viabilitas dilakukan menggunakan metode Total Plate Count (TPC) dengan pengenceran serial. Terdapat empat perlakuan formula biofilm A8 (SRP, SRA, SKP, dan SKA) dan satu kontrol. Perlakuan kontrol tanpa diinjeksikan konsorsium A8. Sebanyak 1 g setiap perlakuan formula biofilm A8 diencerkan ke dalam 9 ml garam fisiologis steril (NaCl 0,85%) kemudian dilakukan pengenceran serial pada 10-1 hingga 10-7. Sebanyak 50 µl dari pengenceran 10-5, 10-6, dan 10-7 disebarkan ke dalam cawan petri sebanyak dua kali ulangan untuk menghitung jumlah koloni bakteri. Uji viabilitas dilakukan selama tiga bulan pengamatan, yaitu bulan ke-0, 1, 2, dan 3.

4

Uji in Vivo Formula Biofilm A8 terhadap P. oryzae di Rumah Kaca Penanaman benih padi yang telah berkecambah dilakukan kurang lebih

selama 7 hari. Penyemprotan dilakukan secara preventif, yaitu sebelum diinokulasikan dengan P. oryzae (Suryadi 2009). Penyemprotan formula biofilm A8 dilakukan sebanyak tiga kali pada umur 2, 9, dan 16 hari setelah tanam (hst). Konsenterasi formula biofilm A8 yang dibutuhkan yaitu 0,3 g/100ml atau 3% yang dilarutkan dalam akuades steril. Inokulasi spora P. oryzae dalam akuades steril dilakukan dengan cara penyemprotan langsung ke tanaman yang berumur 19 dan 21 hst. Terdapat enam perlakuan, yaitu SRP, SRA, SKP, SKA, kontrol positif, dan kontrol negatif. Kontrol positif diberikan inokulasi P. oryzae tanpa penyemprotan formula. Kontrol negatif tanpa inokulasi P. oryzae dan penyemprotan formula. Kelembaban relatif rumah kaca saat inokulasi spora harus di atas 90%. Pengamatan dilakukan pada 7 dan 14 hari setelah inokulasi (hsi). Data hasil uji in vivo di rumah kaca dianalisis dengan Analysis of Variance (ANOVA) menggunakan metode Rancangan Acak Lengkap (RAL) (Lampiran 5 dan 6). Adapun skoring intensitas serangan dari P. oryzae mengacu pada sistem evaluasi standar IRRI (1988) (Lampiran 3), kemudian intensitas blas dihitung menggunakan rumus sebagai berikut:

IS= ∑    

N  V × 100%

IS = Intensitas serangan n = Jumlah daun yang terkena blas v = Nilai skor serangan N = Jumlah semua daun yang diamati V = Nilai skor serangan tertinggi

HASIL DAN PEMBAHASAN

Hasil

Pemurnian dan Peremajaan Isolat Bakteri dan Cendawan Patogen Isolat bakteri tumbuh dengan baik pada umur 48 jam dan menunjukkan ciri-

ciri koloni yang khas. Koloni E65 berbentuk bulat kecil sempurna, tepian sedikit bergelombang, koloni kering, penataan menyebar, dan elevasi rata. Koloni E31 berbentuk bulat oval, tepian rata dan tipis, elevasi timbul dan basah. Koloni C32b berbentuk bulat dengan tepian rata, tipis, dan transparan, serta elevasi timbul dan licin. Koloni II.14 berbentuk bulat oval, tepian berombak, elevasi timbul, dan sedikit basah. Isolat cendawan P. oryzae diremajakan selama 15 hari. Hifa tumbuh dengan baik awal petumbuhan berwarna putih dan berubah menjadi warna hitam.

5

Penampakan spora berbentuk seperti buah alpukat, hifa biseptat, dan berwarna hialin kecoklatan (Gambar 1). Spora mempunyai kerapatan sebesar 5x105 sel.ml.suspensi-1 dengan panjang sebesar 105,85 x 32,45 µm.

Gambar 1 Spora Pyricularia oryzae pada perbesaran 400x

Formulasi A8 dengan Media Pembawa Biofilm Tekstur biofilm sebelum diinjeksi dengan konsorsium A8, yaitu kenyal

seperti gel, lengket dan berwarna kuning hingga cokelat (Gambar 2). Wujud formula biofilm berubah setelah diinjeksikan konsorsium A8 menjadi sedikit cair namun masih tetap terjaga kestabilan tekstur gelnya. Wujud biofilm A8 pada perlakuan SRA dan SRP mulai berubah pada penyimpanan bulan ke-1. Wujud berubah menjadi cair namun tetap lengket dan berwarna kuning hingga kecokelatan, sedangkan perlakuan SKA dan SKP wujud biofilm stabil hingga bulan ke-3.

(a) (b)

(c) (d) Gambar 2 Formula biofilm A8. (a) suhu ruang plastik, (b) suhu kulkas plastik, (c) suhu ruang alumunium foil, (d) suhu kulkas alumunium foil.

6

Uji Antagonisme Bakteri terhadap P. oryzae Hasil uji antagonisme secara in vitro umumnya menunjukkan adanya

aktivitas penghambatan oleh setiap perlakuan. Perlakuan isolat uji terbaik terdapat pada isolat B. firmus E65 sebesar 87,76%. Bakteri antagonis mampu tumbuh lebih cepat dibandingkan dengan cendawan patogen, sehingga pertumbuhan cendawan terhambat. Isolat B.cereus II.14 tidak menunjukkan daya hambat terhadap P. oryzae (Tabel 1, Lampiran4). Perlakuan kontrol (air steril) tidak menunjukkan daya hambat dengan pertumbuhan miselia cendawan sebesar 9 cm.

Tabel 1 Persentase penghambatan setiap mikrob uji terhadap P. oryzae dan

populasi sel mikrob uji

Perlakuan Rata-rata diameter

miselia (cm) Rata-rata persentase penghambatan (%)

Log sel

E65 1,10 ± 0,5 87,76 8,728 II.14 9,00 ± 0,00 00,00 8,835 C32b 2,45 ± 0,07 72,76 9,043 E31 4,80 ± 0,0 46,67 8,744

Konsorsium A8 4,20 ± 0,70 53,33 9,431 Kontrol negatif 9,00 ± 0,00 00,00 -

Keterangan: Kosorsium A8 (B. firmus E65, B. cereus II.14, P. aeruginosa C32b, dan S. marcescens E3), Kontrol negatif (P. oryzae dan akuades steril)

Tabel 2 Persentase penghambatan formula biofilm A8 terhadap pertumbuhan miselia P. oryzae

Formula biofilm

A8* Rata-rata deameter

miselia (cm) Rata-rata persentase penghambatan (%)**

SRA 3,63 ± 0,18 59,72a SRP 3,48 ± 0,32 61,38a SKA 3,57 ± 0,24 60,28a SKP 3,30 ± 0,28 63,00a

Kontrol negatif 9,00 ± 0,00 00,00b Keterangan: *)SRA = suhu ruang alumunium foil, SRP = suhu ruang plastik, SKA = suhu kulkas alumunium foil, SKP = suhu kulkas plastik, kontrol negatif = P. oryzae dengan akuades steril **)Angka pada setiap kolom yang diikuti dengan huruf yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji jarak berganda Duncan (DMRT) pada taraf 5%.

Perlakuan konsorsium A8 (tanpa media pembawa) ternyata menghambat tidak lebih baik dibandingkan dengan perlakuan formula biofilm A8 dengan media pembawa. Perlakuan formula biofilm A8 memiliki persentase penghambatan lebih tinggi dibandingan konsorsium A8 sebesar 53,33% (tanpa media pembawa) (Tabel 1 dan 2, Lampiran 4). Perlakuan formula biofilm A8 tertinggi ialah perlakuan SKP, yaitu sebesar 63%. Rata-rata persentase

7

penghambatan terhadap P. oryzae pada semua perlakuan biofilm A8 memperoleh hasil berbeda nyata terhadap kontrol negatif (Tabel 2).

Uji Viabilitas Formula Biofilm A8 Hasil viabilitas formula biofilm A8 pada empat perlakuan, yaitu SKA, SKP,

SRA, dan SRP diamati pada bulan ke-0, 1, 2, dan 3 (Tabel 3). Tabel 3 Viabilitas perlakuan formula biofilm A8

Formula biofilm A8

Jumlah log sel per bulan Selisih log sel bulan ke-3 dari bulan

ke-0

Persentase log sel 0 1 2 3

SRA 9,041 9,035 10,495 8,900 (-) 0,0155 (-) 1,55%SRP 8,431 10,522 8,628 9,309 (+) 0,1041 (+)10,41%SKA 8,212 8,648 9,190 7,556 (-) 0,0789 (-) 7,20%SKP 7,838 10,760 9,283 7,490 (-) 0,0444 (-) 4,44%

Keterangan: SRA = suhu ruang alumunium foil, SRP = suhu ruang plastik, SKA = suhu kulkas alumunium foil, SKP = suhu kulkas plastik

Hasil uji viabilitas perlakuan formula selama tiga bulan penyimpanan

mengalami penurunan log sel, kecuali pada perlakuan SRP. Persentase kenaikan log sel tersebut melebihi jumlah log sel konsorsium A8 tanpa media pembawa biofilm sebesar 10,41% (Tabel 1). Pada umumnya penurunan log sel terjadi pada bulan ke-2. Penurunan log sel ini diiringi dengan perubahan dominasi spesies pada formula biofilm A8. Spesies B. firmus E65 mendominasi formula biofilm A8 pada bulan ke-0 dan 1, sedangkan spesies yang mendominasi pada bulan ke-2 dan ke-3 ialah P. aeruginosa (Tabel 4, Gambar 3).

Tabel 4 Skoring jumlah koloni bakteri pada formula biofilm A8 selama tiga bulan

Isolat Jumlah koloni pada bulan ke-

0 1 2 3 B. firmus E65 +++ +++ ++ + B. cereus II.14 ++ + + ++

P. aeruginosa C32b ++ ++ +++ +++ S. marcescens E31 + + ++ ++

Keterangan: + : Sedikit ++ : Banyak +++ : Sangat banyak

8

Gambar 3 Koloni bakteri formula biofilm A8 pada penyimpanan bulan ketiga. ( ) P. aeruginosa, ( ) B. cereus, ( ) B. firmus, dan ( ) S. marcescens.

Uji in Vivo Formula Biofilm A8 terhadap P. oryzae Penyemprotan formula pada tamanan berumur 2 hst. Bercak muncul dengan jelas pada 10 hsi. Gejala bercak daun berbentuk oval dengan ujung runcing, berwarna kecoklatan. Bercak tumbuh dari pinggir daun lalu menyebar ke bagian tengah daun. Bercak berkembang disertai dengan perubahan warna menjadi putih keabuan dibagian tengahnya (Gambar 3 dan 4). Intensitas serangan blas daun diamati pada 10 hsi dan 14 hsi (Tabel 5). Formula yang digunakan ialah formula biofilm A8 berumur tiga bulan penyimpanan.

SRA SRP

SKA SKP

9

(a) (b)

(c) (d)

(e) (f) Gambar 4 Gejala bercak daun pada 10 hsi pada perlakuan formula. (a) suhu ruang alumunium foil (SRA), (b) suhu ruang plastik (SRP), (c) suhu kulkas plastik (SKP), (d) suhu kulkas alumunium foil (SKA), (e) kontrol positif, (f) kontrol negatif

10

(a) (b)

(c) (d)

(e) (f) Gambar 5 Gejala bercak daun 14 hsi pada perlakuan formula. (a) suhu ruang alumunium foil (SRA), (b) suhu ruang plastik (SRP), (c) suhu kulkas plastik (SKP), (d) suhu kulkas alumunium foil (SKA), (e) kontrol positif, (f) kontrol negatif

11

Tabel 5 Persentase penghambatan oleh formula biofilm A8 terhadap P. oryzae minggu pertama dan kedua

Keterangan: *)Angka pada setiap kolom yang diikuti dengan huruf yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji jarak berganda Duncan (DMRT) pada taraf 5%.

**)   100%, C = tanaman tanpa perlakuan formula, T = tanaman

dengan perlakuan formula Pengamatan intensitas serangan setiap perlakuan pada minggu pertama memperoleh hasil tidak berbeda nyata dengan perlakuan lainnya dan berbeda nyata dengan perlakuan kontrol. Persentase penghambatan tertinggi pada minggu pertama diperoleh pada perlakuan SKA, yaitu 67,65%. Namun, pada pengamatan minggu kedua perlakuan SRP dan SKP memperoleh hasil intensitas serangan tidak berbeda nyata terhadap perlakuan kontrol dan berbeda nyata terhadap perlakuan SRA dan SKA. Perlakuan SKA mampu menghambat pertumbuhan P. oryzae dengan baik hanya sampai pada minggu pertama pengamatan, yaitu 10 hsi saja. Persentase penghambatan tertinggi diperoleh pada perlakuan SRA, yaitu sebesar 44,89%.

Pembahasan Pengamatan spora dengan menggunakan mikroskop cahaya pada perbesaran

400x terdapat 1-2 sel spora berbentuk seperti buah alpukat dan berwarna hialin kecoklatan. Spora P. oryzae yang diamati mempunyai ukuran sebesar 105,85x 32,45 µm. Hal ini sejalan dengan pernyataan Ou (1972) bahwa memiliki hifa epipilus, biseptat, hialin, mempunyai apendik, berbentuk bulat meruncing, dan terdapat penebalan dibagian dasar. Ukuran spora P. oryzae berkisar antara dengan panjang 60-120µm (Mukhlis dan Prayudi 2001, Listiyowati et al. 2009).

Pengukuran serangan blas padi secara in vitro diuji pada setiap isolat bakteri, konsorsium A8, dan dengan perlakuan formula biofilm A8 dilakukan untuk mengetahui keefektifannya. Hasil pengamatan uji in vitro pada semua perlakuan formula biofilm A8 tidak berbeda nyata. Perlakuan SRP, SRA, SKP, dan SKA terjadi perubahan warna pada media menjadi kuning bening di antara pertumbuhan bakteri dengan cendawan atau terbentuknya zona bening. Hal ini sejalan dengan Octriana (2011), bahwa mekanisme kompetisi ditandai dengan

Perlakuan IS pada 10 hsi

(%)*

Persentase penghambatan

(%)**

IS pada 14 hsi (%)*

Persentase penghambatan

(%)** SRA 16,26b 58,59 25,92c 44,89 SRP 15,80b 59,73 40,93ab 12,99 SKA 12,70b 67,65 31,11bc 33,86 SKP 15,00b 61,79 38,33ab 18,50

Kontrol positif

39,26a - 47,04a -

12

terjadinya perebutan ruang, makanan dan oksigen antara APH dengan mikroorganisme lawannya. Selain itu, terjadi kompetisi ruang dan nutrisi media. Menurut Octriana (2011), ada tiga mekanisme agen pengendali hayati di antaranya kompetisi, antibiosis, serta lisis dan parasitisme. Mekanisme antagonis pada percobaan meliputi kombinasi antara kompetisi dengan antibiosis.. Mekanisme antibiosis ditandai dengan terbentuknya zona hambat dan perubahan warna media akibat metabolit sekunder bakteri berupa antibiotik. Semua perlakuan menunjukkan ciri tersebut, kecuali pada isolat E31 hanya menunjukkan ciri dari mekanisme kompetisi saja dan tidak terjadi perubahan warna (Lampiran 4). Pertumbuhan P. oryzae lebih mendominasi daripada pertumbuhan bakteri, artinya isolat bakteri E31dihambat oleh cendawan patogen.

Menurut Emmert dan Handelsman (1999), bakteri Gram positif mempunyai keuntungan sebagai biokontrol alami melalui pembentukan endospora. Penelitianya melaporkan bahwa B.cereus memproduksi dua macam antibiotik, yaitu Zwittermisin A dan kanosamin. Spesies B. cereus juga mampu memodifikasi komposisi ion dalam media tumbuhnya, seperti kenaikan pH, mengikat Ca, dan mengeksresi amonia. Kombinasi tersebut sangat beracun untuk zoospora cendawan, sehingga menyebabkan pembengkakan dan lisis.

Genus Pseudomonas mampu menghasilkan siderofor (pyoverdin dan pseudobacin), antibiotik, metabolit sekunder lainnya (Sutarya et al. 2004), dan enzim kitinase (Yurnaliza 2002). Siderofor yang diproduksi oleh genus ini tumbuh pada kondisi lingkungan yang miskin ion Fe. Senyawa ini mengelat ion Fe, sehingga spora cendawan terhambat pertumbuhannya. Selain itu, antibiotik yang dihasilkan oleh genus ini juga dapat memacu ketahanan tanaman terhadap penyakit dan menghambat perkembangan populasi organisme penyebab penyakit tanaman (Sutarya et al. 2004).

Penggunaan APH sebagai biokontrol harus mempunyai beberapa karakteristik. Menurut Djatmiko et al. (2007), APH yang baik mampu memanfaatkan senyawa karbon dan nitrogen, mendegradasi makromolekul, tumbuh dalam berbagai suhu dan kadar garam, serta mampu tumbuh dalam media yang mengandung senyawa kitin dan pektin. Dalam penelitiannya dilaporkan bahwa genus Bacillus dan Pseudomonas memenuhi syarat tersebut dan mempunyai spektrum yang luas. Kedua genus tersebut menghasilkan metabolit sekunder berupa antibiotik berspektrum luas.

Konsorsium bakteri A8 diuji daya tahannya selama tiga bulan penyimpanan dalam media pembawa biofilm. Struktur gel dan tekstur yang lengket berasal dari perpaduan antara gliserol, kitosan, dan CMC. Kitosan mempunyai beragam bentuk dan kegunaannya, kitosan yang digunakan dalam media pembawa ini berupa serbuk karena mudah dilarutkan dan mempunyai kemurnian yang tinggi (Hirano et al. 1987). Menurut Sugita (2009), dalam bidang pertanian dan pangan kitosan bermanfaat dalam pembentukan gel, penstabil, pembentuk tekstur, dan bahan pengental. Gliserol dalam komposisinya berperan untuk meningkatkan dan memperbaiki sifat plastis struktur biofilm. Selain itu, gliserol merupakan plasticizer yang bersifat hidrofilik, sehingga cocok untuk bahan pembentuk film yang bersifat hidrofobik seperti pati. Paduan komposisi media pembawa tersebut sangat cocok untuk diaplikasikan di lapang.

Hasil viabilitas selama tiga bulan terbaik didapati pada perlakuan SRP karena mengalami kenaikan log sel sebesar 10,41. Viabilitas bakteri yang baik dan

13

stabil ditentukan oleh kemampuan bahan pembawa yang dapat mempertahankan kandungan air dan pH yang netral serta kemampuan bakteri dalam pemanfaatan dan efisiensi sumber karbon selama aktivitas hidupnya (Meylinda 2013).

Populasi bakteri dalam bentuk konsorsium pasti mengalami fluktuatif pertumbuhan (Nugroho et al. 2007). Isolat B. firmus mendominasi pertumbuhan konsorsium A8 pada bulan ke-0 dan ke-1, sedangkan isolat P. aeruginosa mendominasi pada bulan ke-2 dan ke-3. Menurut Sutarya et al. (2004), zat anti bakteri yang dihasilkan oleh genus Pseudomonas diduga penyebab menurunnya viabilitas B. firmus. Selain itu, kemampuan genus Bacillus dalam pembentukan endospora dalam cekaman nutrisi yang sudah tidak diduga sebagai penyebab penurunan viabilitasnya. isolat S. marcescens yang memiliki tingkat adaptasi terbaik meskipun tidak mendominasi spesies ini meningkat jumlah selnya pada setiap bulannya (Gambar 3).

Kenaikan dan penurunan jumlah populasi sel bakteri berhubungan dengan dinamika populasi bakteri. Nugroho (2007) dalam penelitiannya melaporkan bahwa, jumlah log sel yang meningkat pada perlakuan SRP dan SKP pada bulan kedua diduga berkaitan erat dengan keanekaragaman jenis dan kelimpahannya masing-masing. Perubahan dominansi bakteri juga mempengaruhi terhadap jumlah sel yang naik dan turun hingga bulan ketiga. Spesies yang mendominansi ialah spesies yang mampu memanfaatkan nutrisi dengan baik dan mulai mengalami penurunan populasi sel saat nutrisi menipis, sehinga dapat digantikan oleh spesies lain yang cocok terhadap substrat hasil degradasi sebelumnya.

Kenaikan log sel pada perlakuan SRP diduga akibat sifat kemasan plastik jenis polipropilen (PP) yang stabil terhadap suhu tinggi, tidak bereaksi dengan bahan, dan memiliki permeabilitas uap air dan oksigen yang rendah. Kestabilan sifat kemasan tersebut dapat mengendalikan suhu dan mencegah migrasi komponen volatil (Sunoto 2006; Budiyanto 2012). Berhubung terjadinya perubahan fisik yang terjadi pada media pembawa biofilm.

Dinding sel cendawan tersusun atas polisakarida (kitin dan selulosa), sedikit protein, lemak, dan ion-ion organik. Jenis kitin penyusun cendawan ialah β-1,4 N-asetilglukosamin (Yurnaliza 2002). Mekanisme penghambatan pertumbuhan cendawan diduga disebabkan interaksi senyawa-senyawa metabolit sekunder yang dihasilkan oleh bakteri. Shobha dan Kamudini (2012) melaporkan bahwa secara umum genus Bacillus mampu menghasilkan senyawa antifungi berupa enzim kitinase dan glukanase yang berperan penting dalam pendegradasian dinding sel cendawan. Akibat terdegradasinya dinding sel tersebut, pertumbuhan cendawan patogen akan terhambat.

Varietas inpari 13 merupakan salah satu varietas tahan blas. Varietas tahan ini merupakan salah satu pertahanan struktural tanaman untuk melawan serangan blas. Varietas tahan pada umumnya mempunyai kadar silikat yang cukup mampu menahan perkembangan cendawan setelah terjadinya penetrasi dan ketahanan fisik jaringan epidermis daun (Mukhlis dan Prayudi 2001). Dewi et al. (2013) dalam penelitiannya melaporkan bahwa dari 21 genotip padi yang diteliti, varietas Inpari 13 mempunyai ketebalan epidermis paling tinggi sebesar 30,02 mm x10-3, sehingga varietas ini dapat menahan penetrasi apresoria P. oryzae lebih baik dari yang lain.

14

SIMPULAN DAN SARAN

Simpulan

Formula biofilm A8 yang terdiri atas Bacillus firmus E65, Bacillus cereus

II.4, Pseudomonas aeruginosa C32b, dan Serratia marcescens E31 mampu mempertahankan wujudnya pada penyimpanan suhu kulkas dan wujud menjadi cair pada penyimpanan suhu ruang. Pengujian viabilitas formula biofilm A8 selama tiga bulan dan uji in vitro terbaik terdapat pada perlakuan suhu ruang plastik (SRP) yang mengalami kenaikan sebesar 10,41% dengan persentase penghambatan sebesar 61,38%. Perlakuan suhu kulkas plastik (SKP) mempunyai persentase penghambatan tertinggi terhadap P. oryzae sebesar 63%, namun viabilitas perlakuan SKP mengalami penurunan sebesar 4,44%. Uji in vivo pada perlakuan biofilm A8, yaitu SRA memperoleh hasil persentase pengahambatan terhadap Pyricularia oryzae terbaik untuk diaplikasikan ke lapang pada pengamatan 10 dan 14 hsi, yaitu sebesar 58,89% dan 44,89% karena hasilnya berbeda nyata terhadap kontrol.

Saran Pengemasan formula biofilm A8 akan lebih efektif jika dikemas dalam

kemasan botol plastik untuk menghindari kebocoran dan kontaminasi. Pada penelitian selanjutnya perlu dilakukan pengukuran kadar atau konsentrasi formula biofilm A8 terbaik dalam aplikasi ke lapang.

DAFTAR PUSTAKA

[BBPTP] Balai Besar Penelitian Tanaman Padi. 2010. Inpari-13 varietas unggul baru padi sawah tahan wereng batang coklat. Bogor (ID): Balai Besar Penelitian Tanaman Padi. [BPS] Badan Pusat Statistika. 2008. Statistika Indonesia 2008. Jakarta (ID): Badan Pusat Statistika. Budiyanto MP. 2012. Pengaruh jenis kemasan dan kondisi penyimpanan terhadap mutu dan umur simpanan produk keju lunak rendah lemak [skripsi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor. Dewi IM, Cholil A, Muhibuddin A. 2013. Hubungan karakteristik jaringan daun dengan tingkat serangan penyakit blas daun (Pyricularia oryzae cav.) padabeberapa genotipe padi (Oryza sativa L.). JHP. 1(2):10-18.

15

Djatmiko HA, Arwiyanto T, Hadisutrisno B, Sunarminto BH. 2007. Potensi tiga genus bakteri dari tiga rhizosfer tanaman sebagai agensia pengendali hayati penyakit lincat. J Ilmu-Ilmu Pertan Indones. 9(1):40-47. Emmert EAB, Handelsman J. 1999. Biocontrol of plant ddesease: a (Gram-) positive perspective. FEMS Microbiol Lett. 171:1-9. Fokkema NJ. 1983. Naturally-occurring biological control in the phyllosphere. INRA. 18(1):71-79. Hirano S, Sato N, Yoshida S, Kitagawa S. 1987. Chemical Modification of Chitin and Chitosan, and Their Application in Industrial Polysaccharides. Amsterdam (NL): Elsevier. [IRRI] International Rice Research Institute. 1988. Standard Evaluation System for Rice. Los Banos (PH): International Rise Research Institute. Kurniati R. 2011. Inpari 13 padi sangat genjah dan tahan wereng cokelat. Bul Sinartani. 5-11(3387):15-16. Listiyowati S, Widyastuti U, Rahayu G, Hartana A, Jusuf M. 2009. Hubungan kemampuan pergantian inang dengan plastisitas genetika pada cendawan blas padi. J Ilmu Pertan Indones. 14(2):133-140. Meylinda R. 2013. Uji viabilitas formulasi bakteri A6 sebagai agens hayati dan aplikasinya pada tanaman padi [skripsi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor. Mukhlis H, Prayudi B. 2001. Pengendalian penyakit blas pada padi di lahan rawa pasang surut. Di dalam: Prayudi B, Mukhlis H, Thamrin M, editor. Monograf; 2001 November. Bogor (ID): Departemen Pertanian, Balai Penelitian dan Pengembangan Pertanian, Balai Penelitian Tanaman Pangan Lahan Rawa. Hlm73-86. Munoz MC. 2008. The effect of temperature and relative humadity on the airbone

concentration of Pyricularia oryzae spores and the development of rice blast in southern Spain. J Agri Res. 6(1):61-69

Nopiyanti U. 2013. Uji viabilitas formulasi A8 sebagai agen hayati dan aplikasinya pada tanaman padi [skripsi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.

Nugroho A. 2007. Dinamika populasi konsorsium bakteri hidrokarbonoklastik: Studi kasus biodrgradasi hidrokarbon minyak bumi skala laboratorium. J Ilmu Dasar. 8(1):13-23

Nugroho A, Effendi E, Annisa F. 2007. Pertumbuhan konsorsium isolat bakteri asal Benakat pada media minyak bumi bersalinitas tinggi: Studi kasus biodegradasi minyak bumi skala laboratorium. J Ilmu Dasar. 8(2):186-192.

Octriana L. 2011. Potensi agen hayati dalam menghambat pertumbuhan Phytium sp. secara in vitro. Bul Plasma Nutfah. 17(2):138-142.

Ou SH. 1972. Rise Disease. Ed Ke-1. Kew Surrey (GB): Commonwealth Mycological Institut.

Riana E. 2011. Seleksi dan formulasi konsorsium bakteri untuk mengendalikan penyakit blas (Pyricularia oryzae) pada tanaman padi [skripsi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor. Shobha G, Kumunidi BS. 2012. Antagonistic effect of the newly isolated PGPR Bacillus spp. on Fusarium oxysporum. J Appl Sci Eng Res. 1(3):464- 474.

16

Sugita P. 2009. Kitosan: Sumber Biomaterial Masa Depan. Bogor (ID): IPB Press. Sunoto R. 2006. Pengaruh jenis kemasan terhadap kualitas dan umur simpanan kripik nangka [skripsi]. Semarang (ID): Universitas Katolik Soegijapranata. Suryadi Y. 2009. Efektivitas Pseudomonas flourescens terhadap penyakit layu bakteri (Ralstonia solanacearum) pada tanaman kacang tanah. J HPT Trop. 9:174-180. Sutarya H, Mihardja S, Sanusi I. 2004. Mikroba antagonis sebagai agen hayati pengendali penyakit tanaman. Warta Penel Pengemb Pertan Indones. 26(2):6-7. Syachroni FA. 2011. Efektivitas formulasi konsorsium bakteri sebagai pengendali penyakit hawar pelepah daun tanaman padi [skripsi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor. Vanaraj P, Kandasamy S, Ambalavanan S, Ramalingam R, Sabariyappan R. 2013. Variability in Pyricularia oryzae from different rice growing regions on Tamil Nadu, India. J Microbiol Res. 7(26):3379-3388. Yurnaliza. 2002. Senyawa kitin dan kajian aktivitas enzim mikrobial pendegradasinya. USU Digital Library. Medan (ID): Universitas Sumatera Utara.

LAMPIRAN Lampiran 1 Sifat varietas unggul Inpari 13 Nama varietas : Inbrida Padi Irigasi (Inpari13) Nomor galur : OM 1490 Asal persilangan : OM 606/IR 18348-36-3-3 Bentuk beras : Panjang dan ramping Bentuk tanaman : Tegak Tekstur nasi : Pulen Kadar amilosa : 22,40% Umur tanaman : 103 hari Tinggi tanaman : 101 cm Warna gabah : Kuning bersih Anakan produktif : 17 malai Ketahanan hama : Wereng biotipe 1, 2, dan 3 Ketahanan penyakit : Agak rentan terhadap Hawar Daun Bakteri (HDB) III, VI Tahan blas ras 033, agak tahan blas ras 133, 073, dan 173 Tahun dilepas : 2009 Anjuran : Cocok ditanaman di sawah tadah hujan dataran rendah sampai ketinggian 600 mdpl (BBPTP 2010; Kurniati 2011)

17

Lampiran 2 Komposisi media pertumbuhan Media potato dextrose agar (PDA)

Komposisi Jumlah Kentang 300 g Dekstrosa 20 g Agar-agar 30 g Akuades 1000ml

Media oatmeal agar (OMA)

Komposisi Jumlah Oatmeal 50 g Sukrosa 5 g Agar-agar 30 g Akuades 1000 ml

Media nutrient agar (NA)

Komposisi Jumlah Nutrient agar 13 g Agar-agar 30 g Akuades 1000 ml

Lampiran 3 Sistem evaluasi standar IRRI (1998)

Skala penilaian Penilaian 0 Sangat tahan (tidak terdapat gejala serangan) 1 Tahan (terdapat bercak sebesar ujung jarum) 3 Agak tahan (terdapat bercak blas, luas daun terserang 1-5%) 5 Sedang (terdapat bercak blas, luas daun terserang 6-25%) 7 Agak peka (terdapat bercak blas, luas daun terserang 26-50%) 9 Peka (terdapat bercak blas, luas daun terserang 51-100%)

18

Lampiran 4 Uji antagonisme in vitro mikrob uji dan perlakuan formula

SKA SKP SRA

SRP kosorsium A8 E65

Kontrol C32b E31 Keterangan: a : diameter pertumbuhan mikrob b : diameter pertumbuhan cendawan P. oryzae

a b

19

Lampiran 5 Analysis of Variance (ANOVA) intensitas serangan blas 10 hsi

Sumber Keragaman

Derajat bebas (db)

Jumlah Kuadrat

(JK)

Kuadrat Tengah (KT)

F hitung

F.05 F.01 F-

Prob

Perlakuan 4 2883,57 720,89 15,19

2,67 4,17 0,00

Galat 25 1186,22 47,45 - - -

Total 29 4069,78 140,34 - - - -

Rata-Rata 19,80CV 34,78%

LSD .05 8,19LSD .01 11,08

Rata-rata intensitas serangan blas daun pada 10 hsi

Perlakuan Ulangan Rata-

Rata 1 2 3 4 5 6 Kontrol 31,11 50,00 35,56 36,67 34,44 47,78 39,26

SRA 14,44 10,00 22,00 16,67 23,33 11,11 16,26 SRP 13,38 5,55 19,75 16,67 22,22 17,28 15,81 SKP 17,78 6,67 7,78 11,11 22,22 24,44 15,00 SKA 26,67 10,00 7,77 14,00 12,22 5,55 12,70

Lampiran 6 Analysis of Variance (ANOVA) intensitas serangan blas 10 hsi

Sumber Keragaman

Derajat bebas (db)

Jumlah Kuadrat

(JK)

Kuadrat Tengah (KT)

F hitung

F.05 F.01 F-

Prob

Perlakuan 4 1648,55 412,14 5,49

2,67 4,17 0,0029

Galat 25 1875,28 75,01 - - -

Total 29 3523,83 121,51 - - - -

Rata-Rata 36.66CV 23,62 %

LSD .05 10.30LSD .01 13.94

Rata-rata intensitas serangan blas daun pada 14 hsi

Perlakuan Ulangan Rata-

Rata 1 2 3 4 5 6 Kontrol 68,89 48,89 44,44 48,89 31,11 40,00 47,04

SRA 26,67 24,44 24,44 30,00 31,11 18,88 40,93 SRP 40,00 35,56 41,11 40,00 41,11 47,78 40,93 SKP 42,22 42,22 37,78 40,00 40,00 27,78 38,33 SKA 42,22 42,22 23,33 17,78 18,89 42,22 31,11

20

RIWAYAT HIDUP

Penulis dilahirkan di Jakarta pada tanggal 27 Juli 1992 dari seorang bapak

bernama Irjon Chaniago dan seorang ibu bernama Ani Jatnika. Penulis merupakan anak kedua dari dua bersaudara. Penulis lulusan dari SMAN 98 Jakarta tahun 2007 dan memasuki jenjang universitas pada tahun 2010 di Institut Pertanian Bogor (IPB) dengan program studi mayor Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam (FMIPA) melalui jalur Ujian Saringan Masuk IPB (USMI).

Selama masa studi berlangsung, penulis pernah bergabung dalam organisasi Forum Scientific for Studiest (FORCES) pada tahun 2010-2012 dan Himpunan Mahasiswa Biologi (HIMABIO) pada tahun 2013. Penulis juga pernah meraih pendanaan Program Kreativitas Mahasiswa-Kewirausahaan (PKMK) pada tahun 2012 yang didanai oleh DIKTI. Penulis juga berpartisipasi menjadi asisten praktikum Biologi Dasar pada tahun 2013-2014.

Penulis melaksanakan kegiatan studi lapangan tahun 2012 di Tanaman Nasional Gunung Gede Pangrango (TNGGP), Cibodas dengan judul Reduksi Nitrat Ekosistem Akuatik di TNGGP di bawah bimbingan Dr Ir Iman Rusmana, MSi. Penulis juga telah melakukan praktik lapangan di Pusat Studi Satwa Primata (PSSP)- LPPM IPB, Bogor pada tahun 2013 dengan judul Pengklonaan Gen Penyandi Protein virB9 Bakteri Ehrlichia canis di Pusat Studi Satwa Primata LPPM IPB di bawah bimbingan Dr Nunik Sri Ariyanti, MSi dan Dr Uus Saepuloh , MSi.