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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR

FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMlCAS

CARRERA DE QUÍMICA

EVALUACION DE LA BIOMASA PRODUCIDA POR EL TRATAMIENTO DE

AGUAS RESIDUALES DOMÉSTICAS USANDO CELDAS DE COMBUSTIBLE

BACTERIANO (MFCs) COMO POSIBLE ABONO AGRICOLA

Trabajo de Investigación presentado como requisito previo para la obtención del título

de: Químico

Autor: Santiago Rea H.

([email protected])

Tutor: MSc. Raúl Bahamonde

([email protected])

Quito, Julio 2017

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DEDICATORIA

Principalmente quiero dedicar este trabajo a Dios, por ser la luz en mi camino, por

darme la bendición de la vida y el privilegio de culminar esta etapa de formación

académica.

A mi familia, quienes a largo de esta etapa me han apoyado en cada decisión y ayudan

diariamente a desarrollarme íntegramente. Los quiero mucho.

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AGRADECIMIENTOS

Gratitud a nuestro Dios todopoderoso, en Él he encontrado paz, refugio y sostén.

A mí querida familia, por el amor, consejo y paciencia en todos estos años de formación

académica.

A la querida Universidad Central del Ecuador, principalmente a la carrera de Química,

que me ha enseñado en todos estos años a desarrollarme íntegramente.

A mi tutor MsC. Raúl Bahamonde por haberme dado la oportunidad de formar parte de

su grupo de investigación en el Laboratorio de Energías Renovables y brindarme su

amistad, sus conocimientos y sus consejos.

A mis entrañables amigos que a lo largo de estos años he cosechado, por su tiempo

compartido, sus consejos y cariño que siento no merecerlo.

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vi

LUGAR DONDE SE REALIZÓ LA INVESTIGACIÓN

Esta investigación se realizó en el Laboratorio de Investigación en Energías Renovables

de la Universidad Central del Ecuador, Dirección de Investigación y Postgrado, Gaspar

de Carvajal S/N Clda. Universitaria, Quito, Ecuador.

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INDICE DE CONTENIDOS

1. El PROBLEMA .................................................................................................................... 2

1.1. Planteamiento del problema .......................................................................................... 2

1.2. Formulación del problema ............................................................................................ 3

1.2.1. Preguntas directrices ............................................................................................. 3

1.3. Objetivos ....................................................................................................................... 3

1.3.1. Objetivo General ................................................................................................... 3

1.3.2. Objetivos Específicos ............................................................................................ 4

1.4. Justificación e importancia de la investigación ............................................................. 4

2. FUNDAMENTACION TEORICA ........................................................................................... 6

2.1. Antecedentes ...................................................................................................................... 6

2.1.1 Origen de las MFCs ...................................................................................................... 6

2.1.2 MFCs aplicadas al tratamiento de Aguas Residuales Domésticas ............................... 7

2.1.3 Biomasa Generada en el Tratamiento de Aguas Residuales Domésticas. .................... 7

2.2. Fundamentación Teórica .................................................................................................... 8

2.2.1 El agua .......................................................................................................................... 8

2.2.1.1. Contaminación Acuática ...................................................................................... 9

2.2.1.2. Aguas Residuales ............................................................................................... 10

2.2.1.3. Aguas Residuales Domésticas (ARDs) .............................................................. 10

2.2.1.4. Tratamiento de Aguas Residuales Domésticas................................................... 10

2.2.2 Celdas de Combustible Bacteriano (MFCs) ............................................................... 11

2.2.2.1. Funcionamiento de las MFCs ............................................................................. 12

2.2.2.2 Evaluación de las MFCs ...................................................................................... 13

2.2.3 Biomasa Microbiana. ................................................................................................. 14

2.2.4 El Agro. ...................................................................................................................... 15

2.2.4.1. Fertilizantes ........................................................................................................ 16

2.2.4.2. Abonos. .............................................................................................................. 17

2.3. Fundamento legal ............................................................................................................. 18

2.3.1 Políticas básicas ambientales del Ecuador ................................................................. 18

2.4. Preguntas de hipótesis ...................................................................................................... 18

2.4.1 Hipótesis de trabajo Hi. .............................................................................................. 18

2.4.2 Hipótesis Nula Ho. ..................................................................................................... 18

CAPÍTULO III ............................................................................................................................ 19

3. METODOLOGÍA ................................................................................................................... 19

3.1. Diseño de la investigación (Enfoque, Nivel y Tipos).................................................. 19

3.2. Población y muestra .................................................................................................... 19

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3.3. Métodos, materiales y reactivos .................................................................................. 20

3.4. Diseño Experimental ................................................................................................... 21

3.5. Procedimientos ............................................................................................................ 22

3.5.1 Preparación de Electrodos. ......................................................................................... 22

3.5.2 Preparación de Inóculos y Crecimiento del Biofilm. ................................................. 23

3.5.3 Preparación de combustible de celda (Agua Residual Doméstica). ........................... 24

3.5.4 Ensamblaje de las MFCs ............................................................................................ 24

3.5.5 Evaluación de las MFCs. ............................................................................................ 25

3.5.6.1 Voltaje a circuito cerrado .................................................................................... 25

3.5.6.2 Curvas de polarización (eficiencia coulúmbica) ................................................. 25

3.5.6.3 Degradación de las ARDs ................................................................................... 25

3.5.7 Recolección y cuantificación de la biomasa microbiana. ........................................... 26

3.5.8 Evaluación del contenido de macronutrientes de la Biomasa Microbiana. ................ 27

3.5.8.1 Cuantificación de Nitrógeno ............................................................................... 27

3.5.8.2 Cuantificación de Fósforo ................................................................................... 27

3.5.8.3 Cuantificación de Potasio .................................................................................... 28

3.6. Técnica de Recolección de Datos. ............................................................................... 28

3.6.1 Validación del método DQO ...................................................................................... 28

3.6.1.1 Curva de calibración del método DQO ............................................................... 29

CAPITULO IV ............................................................................................................................ 30

4. ANALISIS Y DISCUSION DE RESULTADOS ............................................................... 30

4.1 PRIMERA ETAPA ........................................................................................................... 30

4.1.1 Evaluación de MFCs con Ni-Ti como tipo de conexión. ........................................... 30

4.1.1.1 Voltaje a Circuito Cerrado. ................................................................................. 30

4.1.1.2 Curvas de polarización ........................................................................................ 32

4.1.1.3 Degradación de las ARDs ................................................................................... 37

4.1.1.4 Eficiencia Coulúmbica Ni-Ti ............................................................................. 38

4.1.2 Evaluación de MFCs con COBRE como tipo de conexión. ....................................... 39

4.1.2.1 Voltaje a Circuito Cerrado. ................................................................................. 39

4.1.2.2 Curvas de polarización. ....................................................................................... 40

4.1.2.3 Degradación de las ARDs ................................................................................... 43

4.1.2.5 Eficiencia Coulúmbica Cobre ............................................................................ 44

4.1.3 Análisis y comparación de la degradación de ARDs usando MFCs .......................... 45

4.1.4 Análisis y comparación de la Eficiencia Coulúmbica de ARDs usando MFCs ......... 47

4.2 SEGUNDA ETAPA .......................................................................................................... 48

4.2.1 Cuantificación de la Biomasa Microbiana. ................................................................ 48

4.2.2 Cuantificación de macronutrientes (N, P y K). .......................................................... 50

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CAPITULO V ............................................................................................................................. 52

5. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES .................................................................. 52

5.1 Conclusiones ..................................................................................................................... 52

5.2 Recomendaciones .............................................................................................................. 53

Bibliografía ................................................................................................................................. 54

INDICE DE ANEXOS

Anexo A Esquema Causa-Efecto ............................................................................................... 56

Anexo B Diagrama de flujo (Parte Exeprimental). ..................................................................... 57

Anexo C Instrumento de Recolección de Datos .......................................................................... 59

Anexo D Validacion de DQO ..................................................................................................... 60

Anexo E Tablas de Polarización. ................................................................................................ 62

Anexo F Curvas de Polarización ................................................................................................. 74

Anexo G Analisis Medio Ambiental de las ARDs de Ubillus ................................................... 80

INDICE DE FIGURAS

Figura 2.1 Esquema original de la celda utilizada en los experimentos de Potter. ...................... 6 Figura 2.2 Esquema de una Celda de Combustible Microbiano. ............................................... 12

Figura 2.3 Regiones Características de una curva de polarización. ........................................... 14

Figura 3.1 División parroquial del Distrito Metropolitano de Quito ......................................... 20

Figura 3.2 Preparación de electrodos de grafito. ........................................................................ 23 Figura 3.3 (a) Formación del biofilm en el electrodo de grafito (b) Medio de cultivo BHI al

cabo del proceso de inoculación .......................................................................................... 23

Figura 3.4 MFCs clásicas armadas en el Laboratorio ................................................................ 24

Figura 3.5 Medición de voltaje a circuito cerrado de una MFC................................................. 25 Figura 3.6 Medición espectrofotométrica de DQO .................................................................... 26

Figura 3.7 Generación de biomasa microbiana en la superficie de las MFCs ........................... 27

Figura 4.1 Generación de bioelectricidad usando Ni-Ti a DQO Alto ........................................ 31

Figura 4.2 Generación de bioelectricidad usando Ni-Ti a DQO Bajo ....................................... 31 Figura 4.3 Curva de polarización, muestra 2, día 1, Ni-Ti a DQO Alto .................................... 33

Figura 4.4 Curva de (a) potencial vs densidad de corriente, (b) densidad de potencia vs

densidad de corriente); muestra 2, Ni-Ti a DQO Alto. ....................................................... 34

Figura 4.5 Curva de (a) potencial vs densidad de corriente, (b) densidad de potencia vs

densidad de corriente); muestra 1, Ni-Ti a DQO Bajo. ....................................................... 36

Figura 4.6 Remoción de contaminantes usando Ni-Ti (a) DQO Alto, (b) DQO Bajo .............. 38

Figura 4.7 Porcentaje de eficiencia coulúmbica usando Ni-Ti a DQO Alto y DQO Bajo. ........ 39

Figura 4.8 Generación de bioelectricidad usando conexión de Cobre ....................................... 40 Figura 4.9 Curva de polarización (potencial vs densidad de corriente), muestra 1, Cobre a

DQO Alto. ........................................................................................................................... 42

Figura 4.10 Remoción de contaminantes usando Cobre (a) DQO Alto, (b) DQO Bajo ........... 44

Figura 4.11 Porcentaje de eficiencia coulúmbica usando Ni-Ti a DQO Alto y DQO Bajo. ...... 45 Figura 4.12 Diagrama de Pareto para la degradación de ARDs usando MFCs. ........................ 46

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Figura 4.13 Diagrama de efectos principales para la degradación de ARDs usando MFCs. ..... 46

Figura 4.14 Diagrama de Pareto para el porcentaje de eficiencia coulúmbica de ARDs usando

MFCs ................................................................................................................................... 47

Figura 4.15 Diagrama de efectos principales para la eficiencia coulúmbica de ARDs usando

MFCs. .................................................................................................................................. 47

Figura 4.16 Gráfica de barras de la concentración (ppmˈs) de biomasa generada usando MFCs.

............................................................................................................................................. 49

INDICE DE TABLAS

Tabla 1-1 Composición típica de las Aguas Residuales Domésticas (ARDs). ............................ 3

Tabla 2-1 Densidades de biomasa en los electrodos de ánodo MFC en aguas residuales y

medios de crecimiento en variadas resistencias externas y las temperaturas. ....................... 8

Tabla 2-2 Usos del agua de acuerdo con la contaminación del agua. .......................................... 9

Tabla 2-3 Tecnologías Avanzadas de Oxidación ....................................................................... 11

Tabla 3-1 Matriz de Operacionalización de variables. ............................................................... 22

Tabla 4-1 Voltajes a circuito cerrado usando Ni-Ti ................................................................... 30

Tabla 4-2 Curva de polarización muestra 2, día 1 usando Ni-Ti a DQO Alto, área del ánodo. . 32

Tabla 4-3 Curva de polarización muestra 1, 2 y 3, usando Ni-Ti a DQO Alto. ......................... 33

Tabla 4-4 Promedio de producción de electricidad, usando Ni-Ti a DQO Alto. ....................... 35

Tabla 4-5 Curva de polarización muestra 1, 2 y 3, usando Ni-Ti a DQO Bajo. ......................... 35

Tabla 4-6 Promedio de producción de electricidad, usando Ni-Ti a DQO Bajo. ....................... 36

Tabla 4-7 Degradación de ARDs usando Ni-Ti ......................................................................... 37

Tabla 4-8 Porcentaje de degradación de ARDs usando Ni-Ti ................................................... 37

Tabla 4-9 Porcentaje de degradación promedio de ARDs usando Ni-Ti. .................................. 38

Tabla 4-10 Voltajes a circuito cerrado usando Cobre. ............................................................... 39

Tabla 4-11 Potencia máxima, intensidad de corriente y resistencias usando Cobre .................. 41

Tabla 4-12 Promedio de producción de electricidad, usando cobre a DQO Alto y Bajo. .......... 42

Tabla 4-12 Degradación de ARDs usando Cobre. ..................................................................... 43

Tabla 4-13 Porcentaje de degradación de ARDs usando Cobre ................................................. 43

Tabla 4-14 Porcentaje de eficiencia coulúmbica de ARDs usando Cobre ................................. 44

Tabla 4-15 Biomasa Generada expresada en (mg Biomasa/L ARDs) usando MFCs. ............... 48

Tabla 4-16 Prueba de múltiples rangos de la concentración de biomasa generada. ................... 49

Tabla 4-16 Promedio de la cuantificación de N, P y K expresado en unidades en mg

macronutrientes/kg biomasa usando MFCs. ....................................................................... 50

Tabla 4-17 Porcentaje promedio de la cuantificación de N, P y K expresado en unidades % N,

% P2O5, % K2O. ................................................................................................................. 51

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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR

FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMICAS

CARRERA DE QUIMICA

Título: “Evaluación de la Biomasa producida por el tratamiento de Aguas Residuales

Domésticas usando Celdas de Combustible Bacteriano (MFCs) como posible abono

agrícola”

Autor: Santiago Rea H.

([email protected])

Tutor: MSc. Raúl Bahamonde

([email protected])

RESUMEN

Los volúmenes de Agua Residual Doméstica (ARDs) a nivel mundial tienen datos

alarmantes, aunado a esto el tratamiento de estas es costoso y en su mayoría no genera

subproductos utilizables. Entre las nuevas tecnologías para el tratamiento de estas aguas

están las Celdas de Combustible Microbianas (MFCs) que tienen la capacidad de

producir electricidad como subproducto del proceso de tratamiento y a su vez dicho

proceso genera biomasa microbiana. En esta investigación se estudió el comportamiento

de degradación de las ARDs utilizando variaciones en la arquitectura de la celda (MFC)

como conexiones de Ni-Ti (níquel-titanio) y Cobre, obteniéndose un porcentaje

promedio de remoción de contaminantes (remoción de DQO) de 77% en DQO alto

(iniciando con una concentración inicial de descarga de DQO de 778 mg/L) y de

44,58% en DQO bajo (iniciando con una concentración inicial de descarga de DQO de

371,23 mg/L); una eficiencia coulúmbica de 34,25% usando DQO/Bajo y Cobre;

24,388 mW/m2 en densidad de potencia usando DQO/Alto y Ni-Ti. Se evaluó la

biomasa generada en el proceso de tratamiento de las ARDs obteniéndose una

concentración promedio de 317,33 mg/L de biomasa generada usando DQO/Alto y Ni-

Ti y de 284 mg/L usando DQO/Bajo y Ni-Ti. En la biomasa se evaluó el contenido de

macroelementos necesarios en el suelo para mejorar la calidad del cultivo. El contenido

de nitrógeno fue de 352,38 mg N/kg de biomasa, de fósforo 32982,68 mg P/kg de

biomasa y para potasio 8506,70 mg K/kg de biomasa; de acuerdo al contenido de N,P y

K de la biomasa se la podría usar como posible aditivo de abono agrícola.

Palabras Claves: POTENCIAL, CELDA, BIOMASA MICROBIANA,

MACRONUTRIENTES.

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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR

FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMICAS

CARRERA DE QUIMICA

Título: “Evaluación de la Biomasa producida por el tratamiento de Aguas Residuales

Domésticas usando Celdas de Combustible Bacteriano (MFCs) como posible abono

agrícola”

Autor: Santiago Rea H.

([email protected])

Tutor: MSc. Raúl Bahamonde

([email protected])

ABSTRACT

The volumes of Domestic Residual Water (ARDs) at world level have alarming data, in

addition the treatment of these is expensive and mostly does not generate usable

byproducts. Among the new technologies for the treatment of these waters are

Microbial Fuel Cells (MFCs) that have the capacity to produce electricity as a

byproduct of the treatment process and in turn this process generates microbial biomass.

In this research the degradation behavior of the ARDs was studied using variations in

the cell architecture (MFC) as Ni-Ti (nickel-titanium) and Copper connections,

obtaining an average percentage of pollutant removal (removal of COD) (Starting with

an initial COD discharge of 778 mg / L) and of 44.58% in low COD (starting with an

initial COD discharge concentration of 371.23 mg / L); A coulúmbic efficiency of

34.25% using COD / Low and Copper; 24.388 mW / m2 in power density using COD /

High and Ni-Ti. The biomass generated in the treatment process of the ARDs was

obtained obtaining an average concentration of 317.33 mg / L of biomass generated

using COD / High and Ni-Ti and of 284 mg / L using COD / Low and Ni-Ti. In the

biomass the content of macroelements necessary in the soil was evaluated to improve

the quality of the crop. Nitrogen content was 352.38 mg N / kg biomass, phosphorus

32982.68 mg P / kg biomass and potassium 8506.70 mg K / kg biomass; According to

the N, P and K contents of the biomass could be used as a possible agricultural fertilizer

additive.

Key Words: POTENTIAL, CELL, MICROBIAL BIOMASS, MACRONUTRIENTS.

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1

INTRODUCCIÓN

El agro siempre ha sido un tema de interés en el Ecuador, por esta razón se ha buscado

continuamente mejorar la calidad del agua de riego, tipo de suelo y por ende de los

cultivos, una de las formas más efectivas que se utilizan en la actualidad para desarrollar

el agro son el uso de los abonos (biofertilizante), estos aportan al suelo una cantidad

necesaria de nutrientes que son aprovechados en la siembra. Por otro lado uno de los

limitantes más importantes que evitan el desarrollo del agro son las (aguas residuales

domésticas) ARDs, estas aguas son descargadas directamente a los efluentes naturales

sin un tratamiento previo, contaminando así a cultivos enteros que son irrigados con

dichas aguas. En los últimos años se ha desarrollado una nueva tecnología de

tratamiento de aguas residuales llamada Celdas de Combustible Microbiano (MFCs)

(Logan, 2008), esta tecnología genera electricidad mediante la oxidación de la materia

orgánica de las ARDs usando bacterias electrogénicas (Geobacter spp, E. Coli, entre

otras) (P. Aelterman, 2006), además de generar energía eléctrica las MFCs también

generan biomasa microbiana como subproducto del tratamiento de ARDs; a esta

biomasa microbiana se evaluó y cuantificó nitrógeno, fósforo y potasio.

La presente investigación consta de los siguientes capítulos:

Capítulo I: Se aborda la problemática que tiene el agro en el Ecuador, los efectos que

generan el agua residual doméstica que no es tratada, la formulación del problema,

preguntas directrices, objetivos general y específicos, importancia y justificación de la

investigación.

Capitulo II: Se hace mención sobre los antecedentes del problema en el que se da a

conocer estudios análogos al problema planteado, ampliándose con la fundamentación

teórica, fundamentación legal, hipótesis de trabajo, hipótesis nula, conceptualización de

las variables, dependiente, independiente e interviniente.

Capitulo III: Trata sobre el diseño de la investigación, población y muestra, métodos y

materiales, matriz de operacionalización de variables, procedimientos, técnicas e

instrumentos de recolección y procesamiento de datos, técnicas de procesamiento de

datos.

Capítulo IV: Está comprendido por el análisis y discusión de resultados obtenidos en la

presente investigación

Capítulo V: Trata como parte final las conclusiones y recomendaciones del presente

trabajo de investigación

Se incluye la bibliografía y anexos.

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2

CAPITULO I

1. El PROBLEMA

1.1. Planteamiento del problema

La agricultura como actividad es una práctica que ha trascendido generaciones, además

de ser la actividad más antigua de economía primaria, se estima que alrededor de la

tercera parte de la superficie terrestre se dedica a la agricultura, ganadería o silvicultura

(Domingo, 2008). En el Ecuador se dedica aproximadamente 12,5 millones de hectáreas

a la agricultura de su territorio total de 28,3 millones de hectáreas de las cuales, las

provincias con mayor área de siembra son Manabí, Guayas, Loja, Los Ríos y

Esmeraldas principalmente; obteniéndose la mayor cantidad de productos de cultivo

principalmente en banano, cacao, maíz, papa, arroz; siendo la agricultura uno de los

mayores ingresos económicos que tiene el Ecuador en la actualidad (INEC, 2015).

Gracias a esto, en el Ecuador siempre se ha tenido la necesidad de potencializar la

calidad del suelo, del agua de riego y por ende de los cultivos, mejorando así la calidad

del producto al consumidor, por lo cual se ha tomado en cuenta dos aspectos

fundamentales, el agro y el agua de riego.

Con respecto al agro, se ha buscado la manera de optimizar y mejorar la calidad del

suelo utilizando abonos orgánicos, inorgánicos, fertilizantes y mejorando la calidad de

humus, esto ha dado como resultado un suelo rico en macronutrientes como lo son: el

nitrógeno, fosforo y potasio que benefician considerablemente al crecimiento de las

plantas. (Sposito, 2008).

Con respecto al agua, se estima que en el planeta el 97,5% de agua es salada, solo el

2,5% es dulce y solo el 1% de agua dulce está disponible para el desarrollo económico y

el bienestar social (Llanos, 2015), aunque la irrigación para fines agrícolas representa

apenas el 10% del agua dulce existente en el planeta, ésta es la actividad de mayor

consumo de agua dulce del planeta. (Fao y Fida, 2001); el agua de riego se obtiene

principalmente de ríos, lagos o corrientes continuas de agua naturales, de pozos, por

procesos de desalinización del agua del mar, entre otros. En general la agricultura usa el

65% de toda el agua captada de los ríos, lagos y acuíferos. (Llanos, 2015)

Por otra parte, otro porcentaje de agua dulce es destinado a ARDs que son “aquellas

generadas en viviendas, lugares comerciales o públicos caracterizadas por la presencia

de heces fecales y restos de moléculas producto de actividades de limpieza”.

(Zambrano, 2004). Tal es el impacto que causa este tipo de ARDs que se conoce que en

su mayor parte son desechadas directamente a efluentes naturales (ríos, lagos) sin pasar

por un tratamiento previo, la composición de este tipo de aguas residuales se presenta en

la Tabla 1.1. La concentración de DQO (Demanda Química de Oxígeno) de las ARDs

oscilan entre 250 mg/L hasta 1000 mg/L, esta concentración debe ser reducida

considerablemente para poder ser desechada en algún efluente natural. (Cajigas, 1985).

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Tabla 1-1 1Composición típica de las Aguas Residuales Domésticas (ARDs).

Contaminantes Concentración

(Debil) [mg/L]

Concentración

(Media) [mg/L]

Concentración

(Fuerte) [mg/L]

Sólidos Totales 350 720 1200

Sólidos en

Suspensión 100 220 350

Sólidos

sedimentables 5 10 20

DQO 250 500 1000

DBO 110 220 400

Adaptado de: Angel Cajigas. (1985). Ingeniería de Aguas Residuales; Tratamiento, Vertido y

Reutilización.

Esta agua se utiliza directamente para irrigar los cultivos sin un tratamiento previo que,

además de contaminar el agro, contamina las fuentes naturales. Existen nuevas

tecnologías en el tratamiento de aguas residuales llamadas Celdas de combustible

Microbiano (MFCs), estas celdas generan bioelectricidad a partir de oxidar la materia

orgánica presente en las aguas residuales. En el presente estudio se pretende tratar

ARDs, evaluar su comportamiento de degradación y al mismo tiempo evaluar el

contenido de nitrógeno, fósforo y potasio de la biomasa generada en el tratamiento de

ARDs utilizando MFCs.

1.2. Formulación del problema

¿Es posible utilizar como abono agrícola la biomasa generada como subproducto del

tratamiento de ARDs utilizando Celdas de Combustible Microbianas (MFCs)?

1.2.1. Preguntas directrices

¿La materia orgánica proveniente de las aguas residuales domesticas podría

generar biomasa aplicable para usarla como abono agrícola?

¿Cuánta biomasa se puede generar a partir del tratamiento de aguas residuales

domésticas?

¿Es posible cuantificar la biomasa producida por las MFCs, como posible abono

para los cultivos?

¿Cuánta cantidad de macronutrientes podría tener esta biomasa para ser utilizada

como abono agrícola?

1.3. Objetivos

1.3.1. Objetivo General

Evaluar el uso posible como abono agrícola de la biomasa generada en el

tratamiento de ARDs utilizando Celdas de Combustible Microbianas (MFCs).

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1.3.2. Objetivos Específicos

Evaluar el comportamiento de degradación de las Aguas Residuales

Domésticas usando MFCs.

Evaluar la eficiencia de las MFCs.

Extraer y caracterizar la biomasa generada por las MFCs.

Evaluar los macronutrientes de la biomasa producida por MFCs,

mediante técnicas analíticas y/o instrumentales como técnicas

gravimétricas y espectrofotometría de absorción atómica de llama, entre

otras

1.4. Justificación e importancia de la investigación

A nivel nacional la agricultura es una actividad fundamental para el desarrollo del país,

los productos con mayor demanda son: banano, flores y cacao, estos productos son

exportados hacia países europeos teniendo gran aceptación y acogida gracias a su

calidad. (INEC, 2015). La agricultura necesita principalmente de dos factores: uno de

estos son los nutrientes para que el suelo sea más eficaz y también el agua de riego que

aumenta su capacidad de aprovechar macroelementos, microelementos y minerales.

(Sposito, 2008). Se calcula que la agricultura usa el 65% de toda el agua captada de los

ríos, lagos y acuíferos; es decir las aguas de los ríos, lagos sirven como fuente primaria

para la calidad del cultivo, se debe tomar en cuenta que estas aguas de ríos, lagos,

acuíferos en la actualidad ya están contaminadas con ARDs, e industriales (Rio

Machángara, Rio Monjas, Rio Grande, entre otros) que son desechadas sin un previo

tratamiento, especialmente las ARDs que en su mayoria en el Ecuador tienen como fin

los ríos, lagos y acuíferos cercanos. (Puente, 2015).

Por varios años se ha buscado la manera de poder tratar ARDs a un bajo costo ya que la

construcción y mantenimiento de una planta de tratamiento de agua bordea los 700

millones de dólares al tratar aproximadamente 7000 L/segundo, siendo este uno de los

limitantes a la hora de tratar aguas residuales, es por esta razón que estas son eliminadas

sin un tratamiento previo, dando como resultado la contaminación del agua de lagos,

ríos y una mala calidad de agua no apta para reutilizarla en ninguna actividad. (Puente,

2015).

Además, en el agro ecuatoriano también se invierte una gran cantidad de dinero que está

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destinado a la compra de abono agrícola; la superficie dedicada al agro en el Ecuador

trasciende a 12,5 millones de hectáreas, haciendo un promedio aproximado de un costo

15 dólares/quintal de abono agrícola (Proveedores Locales) y que existe un rendimiento

de 1 quintal/hectárea (Proveedores Locales) se gasta aproximadamente 180 millones de

dólares anuales en abono agrícola en el Ecuador. Por lo tanto se percibe la necesidad de

buscar alternativas para optimizar la calidad del suelo brindando los macronutrientes

necesarios a un costo bajo y teniendo resultados óptimos para el desarrollo del agro

ecuatoriano.

No existen estudios previos en el que la evaluación de biomasa generada en el

tratamiento de ARDs usando MFCs pueda ser aplicable como posible abono agrícola,

por lo cual; el presente estudio pretende tratar ARDs, producir una corriente eléctrica

gracias a la oxidación de la materia orgánica, generar biomasa y evaluar los principales

macronutrientes (nitrógeno, fósforo y potasio) de esta biomasa para que pueda ser

aplicable como posible abono agrícola.

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CAPITULO II

2. FUNDAMENTACION TEORICA

2.1. Antecedentes

2.1.1 Origen de las MFCs

El primer trabajo que da origen al desarrollo de las MFCs se atribuye a Michael Cresse

Potter con su artículo titulado: “Efectos Eléctricos que acompañan a la descomposición

de compuestos orgánicos” presentado para la “Royal Society” en 1911. Potter realizó

experimentos utilizando diferentes concentraciones de azúcar y distintos

microorganismos como Bacillus coli (hoy conocido como E. coli) y Saccharomyces

cerevisiae en una celda (Fig 2.1) construida con una jarra de vidrio dentro de la cual se

colocaba un cilindro poroso, donde, después de su debida esterilización era cargada con

un fluido nutritivo y posterior inoculación con el microorganismo de estudio. Todos los

experimentos fueron evaluados con pequeños electrodos de platino que fueron soldados

con plata a un alambre de cobre, para así evitar utilizar grandes cantidades de alambre

de platino. Los cables de los electrodos fueron conectados a un condensador de 1μF y

este se descargaba a través de un galvanómetro por medio de un telégrafo. Este último

arreglo fue un sugerido por H. Morris Airey, para eliminar la resistencia del circuito. La

celda utilizada por Potter, lograba potenciales máximos cercanos a 0.32V en las mejores

condiciones obtenidas experimentalmente.

Figura 2.1 Esquema original de la celda utilizada en los experimentos de Potter.

(Potter, 1911)

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Los datos del experimento de Potter muestran la generación de un potencial en la celda

a temperaturas de incubación (25-37°C), mas no así a 0°C donde si bien las levaduras

no están muertas, estas se encuentra en un estado de mínima actividad metabólica sin

generar variaciones de potencial, así mismo, cuando la levadura es llevada a 50°C no se

registra ningún efecto eléctrico aunque esta sea nuevamente acondicionada a 25°C

indicando que las levaduras fueron destruidas. Por lo que se concluye que el potencial

generado en la celda creada por Plotter se debe a acción fermentativa de los

microorganismos.

2.1.2 MFCs aplicadas al tratamiento de Aguas Residuales Domésticas

Una de las primeras investigaciones fue realizada por (P. Aelterman, 2006) en donde

usando Celdas de combustible microbiano evalúa agua residual doméstica, como

resultados obtiene un porcentaje de eficiencia coulúmbica del 20%, una densidad de

potencia de (3,7 ± 0,02) W/m2, usando como cátodo Pt/C y manejando temperatura

ambiente en cada uno de sus experimentos; posteriormente (Youngho Ahn, 2009)

examina el comportamiento de aguas residuales domésticas a diferentes temperaturas,

siendo la temperatura uno de los parámetros fundamentales para la eficiencia del

tratamiento y la densidad de potencia generada por la celda, obteniendo 422 mW/m2 a

una temperatura de 23 °C (temperatura ambiental) y un porcentaje de remoción de

DQO de 25,8%, este modelo usado por (Youngho Ahn, 2009) utiliza una celda de

cámara única con el cátodo al aire y usando escobillas de fibra de grafito previamente

tratado con amoniaco, además de usar hilos de titanio con fibras de grafito en el ánodo.

2.1.3 Biomasa Generada en el Tratamiento de Aguas Residuales Domésticas.

Uno de los estudios realizados recientemente por (Na Li R. K., 2016) muestra el

crecimiento bacteriano en el ánodo usando MFCs a diferentes resistencias y diferentes

temperaturas, este estudio lo realiza usando aguas residuales domésticas, en la tabla 2.1

se muestran los resultados obtenidos, en donde cuantifica proteínas de la biomasa

microbiana producida en el tratamiento de aguas residuales domésticas mediante un

método de ensayo de proteínas para el cálculo exacto de la biomasa activa, este método

es descrito por (Na Li R. K., 2015) en donde usa ácido bicinconínico (BCA) y en donde

la degradación del agua residual domestica durante el crecimiento microbiano se obtuvo

mediante demanda química de oxigeno soluble (SCOD) y el rendimiento de biomasa

generada fue calculado sobre la base de la proteína y SCOD.

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Tabla 2-12 Densidades de biomasa en los electrodos de ánodo MFC en aguas residuales y

medios de crecimiento en variadas resistencias externas y las temperaturas.

Fuente: (Na Li R. K., 2016) “Efecto de factores influyentes sobre el crecimiento microbiano y la

correlación entre la generación actual y la biomasa en una célula de combustible microbiana de cátodo

de aire” (pag. 20609). International Journal of hidrogen energy.

El mayor crecimiento de la biomasa en relación al tiempo y la eliminación del sustrato

(aguas residuales domésticas) usando MFCs se dá al aplicar una resistencia de 300 Ω,

claramente indicando que la resistencia interna del sistema y la resistencia aplicada

estaban en el mismo plano.

2.2. Fundamentación Teórica

2.2.1 El agua

“El agua es esencial para la vida, pero para muchos millones de personas en todo el

mundo es un recurso escaso; por eso luchan diariamente para conseguir agua apta

para el consumo y para atender a sus necesidades básicas. Millones de niños siguen

muriendo todos los años a causa de enfermedades transmitidas por el agua que se

pueden prevenir.” (Secretaría de ONU-Agua, Departamento de Asuntos Económicos y

Sociales de las Naciones Unidas, Division de Desarrollo Sostenible, 2005).

El agua además de ser esencial para la vida es quizá la mejor herramienta que utiliza el

ser humano para generar fuentes de riqueza, por lo que el incremento de la oferta de

agua ha conducido a que además de generar un impulso económico importante se

Variables Crecimiento de la

biomasa/Sustrato removido

(mg proteína/(g -DQO.cm2))

Crecimiento de la

biomasa/tiempo

(mg proteína/(hr.cm2))

Temperatura

(°C)

Resistencia

aplicada (Ω)

Aguas

Residuales

Crecimiento

Medio

Aguas

Residuales

Crecimiento

Medio

30 Circuito

Abierto

0.129 0.005 (0.205)x 10-4

(0.006±0.009) x

10-4

30 100 0.318±0.007 0.402±0.051 (0.598±0.014)

x 10-4

(1.074±0.138) x

10-4

30 300 0.298±0.016 0.443±0.034 (0.600±0.034)

x 10-4

(1.307±0.101) x

10-4

30 1000 0.296±0.007 0.612±0.031 (0.501±0.013)

x 10-4

(0.739±0.038) x

10-4

20 1000 0.254±0.010 0.308±0.016 (0.697±0.030)

x 10-4

(1.275±0.065) x

10-4

30 1000 0.457 0.538±0.006 (0.761) x 10-4

(0.847±0.011) x

10-4

35 1000 0.275 0.507±0.013 (0.931) x 10-4

(0.839±0.022) x

10-4

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genere mayor contaminación de las fuentes hídricas; se estima que en el planeta el

97,5% de agua es salada, solo el 2,5% es dulce y solo el 1% de agua dulce está

disponible para el desarrollo económico y el bienestar social (Llanos, 2015). El agua

contaminada es la principal causa de enfermedades en todo el mundo, se estima que

alrededor de 2 millones de personas, en donde la mayoria son niños mueren al año por

enfermedades transmitidas por el agua, como la diarrea, paludismo; estas enfermedades

se dan principalmente en países en vías de desarrollo. (Secretaría de ONU-Agua,

Departamento de Asuntos Económicos y Sociales de las Naciones Unidas, Division de

Desarrollo Sostenible, 2005).

2.2.1.1. Contaminación Acuática

Las fuentes de agua (ríos, lagos, entre otros) aunque disponibles en mayor o menor

proporción han sido gradualmente contaminadas, en la antigüedad este problema causó

la muerte de ciudades enteras; a finales del siglo XVIII y principios del siglo XIX se

empezó a implementar mecanismos para desinfectar el agua que se consumía. (Sierra,

2004).

Otro de los problemas que se estudia respecto al agua es su toxicología acuática, debido

a su ciclo natural es de esperarse que el agua pueda llegar a tener algún contacto con

numerosas sustancias químicas, se denominan “tóxicas” cuando en una determinada

concentracion y tiempo de exposición llegan a producir algún efecto adverso a la

especie humana o al ecosistema (biota acuática); en general existen dos vías en las que

este problema puede llegar a afectar a los humanos:

A) Por vía oral, ingestión directa del sistema de abastecimiento de agua.

B) A través del consumo de alimentos acuáticos contaminados, estos pueden ser

peces, mariscos, etc) o de alimentos que usan en su elaboración a organismos

acuáticos. (Sierra, 2004)

Gracias al incremento de la población, se han aumentado las exigencias con respecto a

la calidad de agua; es de esperar que con el pasar del tiempo las necesidades del agua

pasen de simplemente consumo e higiene personal a tener hasta incidencia para la

generación nuclear. Afortunadamente la mayor proporción de agua utilizada en el

planeta es usada en agricultura y enfriamiento industrial siendo estos menos exigentes

en cuanto a su calidad. (Sierra, 2004). En la tabla 2-2 se hace referencia a la cantidad de

contaminantes que existe en las diferentes áreas en donde el agua es utilizada.

Tabla 2-2 3Usos del agua de acuerdo con la contaminación del agua.

Contaminantes Agua

Potable

Vida

Acuática

Recreación Riego Uso

Industrial

Energía y

Enfriamiento

Transporte

Patógenos Xx 0 Xx x xx1 Na Na

SST Xx Xx Xx x x x2 xx

2

Materia

Orgánica

Xx X Xx + xx4 X X

Algas X X Xx + xx4 X X

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Nitratos Xx X Na + xx1 Na Na

Sales Xx Xx Na xx xx6 Na Na

Micro-

contaminantes

xx Xx X x ¿ Na Na

Acidificación X Xx X ¿ x X Na

xx Uso Altamente Afectado 1 Industrias Alimenticias

x Uso levemente Afectado 2 Abrasión

0 Sin Afectación 3 Sedimentación de canales

na No Aplica 4 Industrias electrónicas

+ Beneficio para el uso del agua 5 Incluye Boro, Fluoruros

¿ Efectos no entendidos 6 Ca, Fe, Mn en la industria Textil

Fuente: (Sierra, 2004) “Calidad del Agua, Evaluación y Diagnóstico”. (p. 116).

2.2.1.2. Aguas Residuales

Se define como aguas residuales a aquellas que proceden de haber utilizado un agua

natural, o de la red, en un uso determinado; cuando estas se desaguan se denominan

“vertidos” y se los puede clasificar en función:

A) Del uso prioritario u origen.

B) De su contenido en determinados contaminantes.

2.2.1.3. Aguas Residuales Domésticas (ARDs)

Son “aquellas generadas en viviendas, lugares comerciales o públicos caracterizadas

por la presencia de heces fecales y restos de moléculas producto de actividades de

limpieza”. (Zambrano, 2004).

Este tipo de aguas en pueblos y algunas ciudades no poseen una normativa establecida

con respecto a su desecho, por lo que son botadas directamente sin ningún tipo de

tratamiento a algún efluente natural, aumentando así la contaminación y calidad de vida

de las personas que viven y trabajan cerca de ríos y lagos. (Cajigas, 1985)

Los valores de DQO (Demanda Química de Oxigeno) oscilan entre 250 a 1000 mg/L

dándonos una idea de la excesiva cantidad de materia orgánica que poseen estas aguas y

el nivel de peligrosidad que causan también para el medio ambiente, siendo no aptas

para ningún tipo de uso hasta no ser limpiadas mediante algún tipo de tratamiento.

(Cajigas, 1985)

2.2.1.4. Tratamiento de Aguas Residuales Domésticas

De manera general, existen tratamientos convencionales y no convencionales de Aguas

Residuales Domésticas, entre los tratamientos convencionales los procesos más

importantes son:

Pretratamiento

Cribado: Se emplea para la reducción de sólidos en suspensión de tamaños distintos.

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Sedimentación: Se usa para separar los sólidos en suspensión en las mismas.

Tratamiento Físico-Químico

Coagulación: Se emplea para desestabilizar los coloides por neutralización de sus

cargas, dando lugar a la formación de un floculo. Principalmente se usa Sulfato de

Aluminio.

Floculación: Se trata la unión entre los flóculos ya formados con el fin aumentar su

volumen y peso de forma que se puedan decantar. (Cajigas, 1985)

Entre los tratamientos no convencionales tenemos los TAO´s (Tecnologias o Procesos

avanzados de oxidación), estos se basan en procesos fisicoquímicos capaces de

producir cambios profundos en la estructura química de los contaminantes que se

encuentran en las aguas residuales domésticas. Se los usa a pequeña y mediana escala,

en la siguiente tabla 2-3 se encuentran los más importantes. (Xavier Domènech, 2004)

Tabla 2-3 4Tecnologías Avanzadas de Oxidación

Tecnologías Avanzadas de Oxidación

Procesos no fotoquímicos Procesos Fotoquímicos

Ozonización en medio alcalino (O3/OH+) Oxidación en agua sub/y supercrítica.

Ozonización con peróxido de hidrógeno

(H2O2/OH+)

Procesos fotoquímicos

Procesos Fenton (Fe2+

/H2O2) Fotólisis del agua en el ultravioleta de vacío

(UVV)

Oxidación Electroquímica UV/Peróxido de hidrógeno

Radiólosis y tratamiento con haces de

electrones UV/O3

Plasma no término Foto-Fenton y relacionadas

Descarga electrohidráulica-Ultrasonido. Fotocatálisis heterogénea

Fuente: (Xavier Domènech, 2004) “Procesos Avanzados de Oxidación para la eliminación de

Contaminantes”. (p. 8) Colección Documentos Ciemat

2.2.2 Celdas de Combustible Bacteriano (MFCs)

Las celdas de combustible bacteriano surgen como una alternativa al tratamiento de

aguas residuales (domésticas, industriales, entre otras) ya que tienen la capacidad de

transformar la materia orgánica en otros productos como la energía eléctrica, además de

ser una tecnología nueva, su costo de implementación está muy por debajo de los típicos

tratamientos convencionales.

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2.2.2.1. Funcionamiento de las MFCs

El principio de funcionamiento de las MFCs es muy similar a la de una celda galvánica,

en donde se genera energía eléctrica a partir de reacciones redox; la gran mayoria de las

MFCs (Fig 2.2) consisten en una cámara anaerobia conformada por el ánodo y una

cámara aerobia conformada por el cátodo, estas cámaras se separan por una membrana

de intercambio de protones (PEM); un biocatalizador activo (microorganismos) en el

ánodo oxida los sustratos orgánicos y produce electrones que se conducen al cátodo a

través de la PEM y los electrones son transportados a través de un circuito externo.

(Mostafa Rahimnejad, 2015).

Figura 2.2 Esquema de una Celda de Combustible Microbiano. Fuente”Celdas de Combustible

Microbianas (CCMs): Un Reto para la Remoción de Materia Orgánica y la Generación de Energía

Eléctrica” (Dolly M. Revelo, 2013)

Estos microorganismos son capaces de colonizar la superficie del Ánodo formando un

Biofilm o Biopelícula, entre los microorganismos más importantes que se usan en este

proyecto están: Geobacter Spp, un consorcio de bacterias (Mix de Bacterias) formadas

por la E. Coli y Pseudomona principalmente, este tipo de bacterias han sido usadas en

las aplicaciones de producción de Energía Eléctrica. (Mostafa Rahimnejad, 2015).

También se usan puentes salinos como membranas de intercambios de protones siendo

los más comunes los de KCl 1M y Agar-Agar 2 % (p/v); cabe recalcar que existen

muchas propuestas con respecto a la arquitectura de las MFCs, algunos modelos no

usan puente salino, y por ende cada modelo de celda en particular tendrá características

especiales en términos de: potencia de salida, eficiencia coulúmbica, estabilidad y vida

útil. El presente estudio usará Celdas de Combustible Microbiano (MFCs) clásicas, es

decir, se trabajará con material de laboratorio y se usará un puente salino de KCl 1M y

Agar-Agar 2%(p/v).

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2.2.2.2 Evaluación de las MFCs

Uno de los objetivos principales al evaluar la MFC es la producción de potencia

eléctrica a partir de un sustrato dado (en nuestro caso Aguas Residuales Domésticas).

Para medir la cantidad de electrones almacenados en el sustrato como corriente eléctrica

se usa como parámetro la eficiencia coulúmbica (coulombic effienciency) que es

definida como la fracción (o porcentaje) de electrones recuperados como corriente

frente al total contenido en el sustrato de partida, así:

Esta relación puede ser relacionada con la corriente del sistema. Dado que, un amperio

está definido como la transferencia de un Coulomb de carga en un segundo, o 1A=1C/s.

Por lo tanto si integramos la corriente obtenida a través del tiempo obtenemos el total de

Coulombs obtenidos en nuestro sistema (Cheng, 2006). La eficiencia coulúmbica puede

ser calculada como:

Dónde: c es el cambio de concentración del sustrato en el tiempo de funcionamiento o

ciclo del sistema (que por lo general va desde co, la concentración inicial de sustrato,

hasta su finalización o consumo total para sustrato definidos durante el tiempo tb, Ms es

el peso molecular del sustrato, F es la constante de Faraday, y van es el volumen del

líquido en la cámara anódica. Para sustratos complejos como el Agua Residual

Doméstica es más conveniente hacer uso de DQO para medir la concentración del

sustrato, entonces tenemos que:

Donde 8 es una constante utilizada para DQO, basado en que para el peso

molecular del oxígeno y bes = 4 que son el número de electrones transferidos al sustrato

por mol de oxígeno. (Logan, 2008)

2.2.2.2.1 Curvas de Polarización.

Las curvas de polarización son usadas para caracterizar la corriente como una función

del voltaje, al cambiar la resistencia externa del circuito cambia el voltaje y por lo tanto

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una nueva corriente a esa resistencia (Logan, 2008). Se usa una serie de resistencias en

el circuito, de cada resistencia se mide el voltaje.

Figura 2.3 Regiones Características de una curva de polarización. Fuente: “Producción de

Bioelectricidad a partir de suero lácteo en Celdas de Combustible Microbianas” (García, 2016)

Los primeros puntos de la curva de polarización (Fig 2.3) se pueden describir como la

pérdida de energías de activación (en forma de calor) para iniciar reacciones de óxido-

reducción. (Logan, 2008). La segunda porción de la curva de polarización debe sus

pérdidas de voltaje al metabolismo microbiano, estas pérdidas son interacción de las

bacterias con el sustrato. Y la tercera sección de la curva es donde se analizan las

pérdidas importantes de concentración y transferencia de masa, estas pérdidas surgen

cuando la disponibilidad o el flujo de reactivos son insuficientes y por lo tanto limitan la

velocidad de reacción. (Logan, 2008).

2.2.3 Biomasa Microbiana.

Se define a la biomasa microbiana como “El componente funcional de la Microbiota

del Suelo, responsable de la descomposición y reconversión de la materia orgánica y la

transformación de nutrientes”. (Witter, 1996). Aunque en términos generales se la

puede definir como la cantidad de células que se generan al oxidar un sustrato. (Parés,

1997).

La composición de la biomasa microbiana depende mucho del tipo de microrganismo,

aunque de manera general se compone de: 50% de carbono, 20% de oxígeno, 14% de

nitrógeno, 8% de hidrógeno, 3% de fósforo, 2% de potasio, 1% de azufre,

principalmente; es decir a partir de estos datos se puede decir que la Biomasa

Microbiana está formada de materia orgánica. (Parés, 1997)

La biomasa húmeda obtenida se pierde por secado a 105ºC de un 70 a un 90% de agua,

según el microorganismo y las condiciones de crecimiento; la biomasa microbiana tiene

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en su composición principalmente proteínas (representan alrededor del 50% del peso

seco de las células), ácidos nucleicos, lípidos, hidratos de carbono. (Parés, 1997)

2.2.4 El Agro.

La agricultura como actividad comprende todo un conjunto de acciones humanas que

transforma el ambiente con el fin de hacerlo más apto para el crecimiento de las

siembras y además como actividad estratégica es fundamental para el desarrollo y

riqueza de las naciones. (Domingo, 2008)

Se la puede dividir según sus criterios de aplicación:

Según su dependencia de agua:

o Agricultura de Secado: Producida sin aporte de agua por parte del

agricultor, nutriéndose el suelo de la lluvia y/o aguas subterráneas.

(Domingo, 2008)

o Agricultura de Regadío: Se produce con aporte de agua por parte del

agricultor, esta agua suministrada es captada de superficies naturales o

artificiales, entre las más principales. (Domingo, 2008)

Según la magnitud de la producción y su relación con el mercado

o Agricultura de Subsistencia: Consiste en la producción de la cantidad

mínima de comida necesaria para cubrir las necesidades del agricultor y

su familia. (Domingo, 2008)

o Agricultura Industrial: Consiste en la producción de grandes

cantidades, utilizando costos medios de producción, para obtener

excedentes y comercializarlos (Domingo, 2008)

Según el Método y Objetivos

o Agricultura Tradicional: Utiliza los sistemas típicos de un lugar, en

periodos más o menos largos y prolongados. (Domingo, 2008)

o Agricultura Convencional o Moderna: Está enfocada en producir la

mayor cantidad de alimentos en menos tiempo y espacio. (Domingo,

2008)

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o Agricultura Ecológica: Está enfocada en crear diversos sistemas de

producción que respetan las características ecológicas de los lugares

procurando respetar las estaciones. (Domingo, 2008)

2.2.4.1. Fertilizantes

El término fertilizante proviene del latín <<fertil>> que quiere decir “volver fértil”, en

general los fertilizantes proveen nutrientes que los cultivos necesitan, con los

fertilizantes mejorar la producción de alimentos y cultivos de mejor calidad. Y entre sus

propiedades principales, los fertilizantes mejoran la baja fertilidad del suelo. (Roma,

2002)

Los nutrientes que necesitan las plantas se toman del aire y del suelo; al absorber los

nutrientes necesarios los cultivos crecerán mejor y por ende producirán mayores

ingresos, en cambio si uno de los nutrientes es escaso se limita el crecimiento de la

planta y por consecuencia afecta su calidad. (Roma, 2002).

Los fertilizantes aportan en su composición con macronutrientes (nutrientes primarios)

y micronutrientes (nutrientes secundarios), estos se distinguen por la cantidad en la que

son utilizados en el Suelo, siendo los más importantes los macronutrientes nitrógeno,

fósforo y potasio. (Través, 1962).

A continuación se distinguen algunas de las propiedades más importantes de estos

elementos:

Nitrógeno: Es vital para la planta, es un energético estimulante de la actividad

vegetal, tiene un efecto bastante rápido. Retrasa la maduración de los tejidos,

alarga el ciclo vegetativo. Disminuye la resistencia mecánica de las plantas. La

forma más común de absorber nitrógeno es en forma de Nitrato. (Sposito, 2008)

Fosforo: Su deficiencia produce enanismo, como propiedad da a las plantas

mayor resistencia mecánica y a las enfermedades, regula la maduración de los

frutos, y mejora las características cualitativas de los productos agrícolas, la

forma de absorción por las plantas es como ion Fosfórico. (Través, 1962)

Potasio: Tiene influencia cuantitativa sobre la vida de los vegetales. Favorece a

la acumulación de los hidratos de carbono, influye también sobre la resistencia a

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las enfermedades, la forma de absorción de las plantas es como catión de sus

sales solubles.

2.2.4.2. Abonos.

Se ha definido como abono a “toda sustancia que aporta al terreno elementos nutritivos

necesarios para los cultivos a través de procesos naturales” (Través, 1962) como por

ejemplo: la biodegradación del estiércol de vaca en el suelo, los abonos además de

enriquecer el terreno de elementos nutritivos determinan las modificaciones químicas o

físicas del suelo. (Través, 1962).

Se los puede clasificar en Abonos Orgánicos y Abonos Minerales.

Entre los principales Abonos Orgánicos tenemos: El estiércol de establo, las barreduras,

los escombros, materias vegetales diversas, entre otras.

Con respecto a los Abonos Minerales tenemos: Abonos Minerales Nitrogenados

(Sulfato Amónico, los nitratos), Abonos Minerales Fosfáticos (Perfosfato Mineral),

Abonos Minerales Potásicos (Sulfato Potásico, Cloruro Potásico, Cenizas de Madera).

2.2.4.2.1. Evaluación de Abonos (Métodos Analíticos)

La cuantificación de la biomasa microbiana es una de las variables más importantes y su

determinación nos lleva a la comprensión de la eficiencia del mismo, los métodos

clásicos son métodos directos que se basan en el número de células o en el peso celular,

existen, métodos alternativos en donde se estima algún componente o alguna actividad

metabólica especifica. (Arnáiz, 2002).

Para nitrógeno, se propone comúnmente utilizar el Método de Kjeldahl, este consiste en

la descomposición de la muestra con ácido sulfúrico caliente a ión amonio que

posteriormente se convierte a amoniaco y es neutralizado por una base. (Skoog, 2015).

Para fósforo, se propone usar el método espectrofotométrico molibdato-vanadato, esta

técnica incluye dos pasos principales, el primero es una conversión de todas las formas

asimilables de fósforo a ortofosfato y el segundo paso consiste en la detección del

ortofosfato en solución, este ortofosfato reaccionará con molibdato de amonio en medio

ácido y en presencia de vanadio para generar el ácido vanadomolibdofosfórico de color

amarillo, el cual se medirá entre una longitud de onda de 400 nm y 700 nm. (George W.

Latimer, 2009)

Para potasio, se propone comúnmente utilizar el método de Absorción Atómica.

(Arnáiz, 2002).

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2.3. Fundamento legal

2.3.1 Políticas básicas ambientales del Ecuador, punto 13 (TULA)

El Estado Ecuatoriano establece como instrumento obligatorio previamente a la

realización de actividades susceptibles de degradar o contaminar el ambiente, la

preparación, por parte de los interesados a efectuar estas actividades, de un Estudio de

Impacto Ambiental (EIA) y del respectivo Programa de Mitigación Ambiental (PMA) y

la presentación de éstos junto a solicitudes de autorización ante las autoridades

competentes, las cuales tienen la obligación de decidir al respecto y de controlar el

cumplimiento de lo estipulado en dichos estudios y programas a fin de prevenir la

degradación y la contaminación, asegurando, además, la gestión ambiental adecuada y

sostenible. El Estudio de Impacto Ambiental y el Programa de Mitigación Ambiental

deberán basarse en el principio de lograr el nivel de actuación más adecuado al

respectivo espacio o recurso a proteger, a través de la acción más eficaz.

2.4. Preguntas de hipótesis

2.4.1 Hipótesis de trabajo Hi.

Es posible evaluar como abono agrícola la biomasa microbiana producida en el

tratamiento de ARDs usando MFCs.

2.4.2 Hipótesis Nula Ho.

No es posible evaluar como abono agrícola la biomasa microbiana producida en el

tratamiento de ARDs usando MFCs.

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19

CAPÍTULO III

3. METODOLOGÍA

3.1. Diseño de la investigación (Enfoque, Nivel y Tipos)

Para este trabajo de investigación el método utilizado fue experimental y descriptivo, ya

que busca cuantificar la variable biomasa microbiana generada a través del tratamiento

de ARDs usando MFCs, además de determinar el voltaje producido en dicho

tratamiento y por último encontrar el porcentaje de degradación de la materia orgánica

presente en las ARDs usando MFCs a través de la manipulación de las variables

independientes tiempo, concentracion inicial de DQO y tipo de conexión.

El presente proyecto corresponde a una investigación experimental del tipo cuantitativo

porque se cuantificó la variable (% de biomasa microbiana) generada por las MFCs, las

variables independientes fueron: concentración inicial de DQO y tipo de alambre

conector y las variables dependientes fueron: eficiencia coulúmbica de las MFCs

(Relación entre la Intensidad de corriente y DQO removido, el indicador fue el % de

eficiencia de la celda en función del tiempo y DQO inicial), % de biomasa microbiana

generada (contenido de nitrógeno, fósforo y potasio que se encuentran en función del

tiempo) y por último la concentración de macronutrientes en la biomasa producida

expresada en (mg/Kg biomasa generada).

3.2. Población y muestra

En el presente proyecto de investigación la población fue las ARDs provenientes de la

planta de tratamiento de la parroquia de Pintag, específicamente el barrio de Ubillus

ubicado en el sector sur-oriente de la provincia de Pichincha dentro del Distrito

Metropolitano de Quito y la toma de muestra fue precisamente en el lugar de desfogue

de las ARDs de todo el barrio. A continuación se muestra el mapa de la parroquia de

Pintag

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Figura 3.14 División parroquial del Distrito Metropolitano de Quito

Barrio: Ubillús Latitud: -0.416667 Longitud: -78.3833

Como muestra se usaron MFCs (clásicas con puente salino) con un volumen de carga de

ARDs de 50 ml, se evaluó su comportamiento de degradación y además se evaluó la

biomasa microbiana generada en cada MFCs como posible abono agrícola.

3.3.Métodos, materiales y reactivos

En el presente estudio se realizaron los análisis de resultados utilizando el método

deductivo y los resultados que se generaron en cada MFCs se analizaron para evaluar

todas las variables dependientes propuestas.

Materiales laboratorio Microbiológico.

Equipo de Protección Biológica Primaria (guantes, mascarilla, cofia)

Estufa

Mechero de Bunsen

Cabina de Bioseguridad Tipo II Modelo 19C2-459-N5, Marca ESCO

Cajas de Petri de vidrio.

Matraces Erlenmeyer 25,100,250 y 500 mL

Medios Microbiológicos

Agar Müller-Hilton (Merck)

Caldo BHI (Difco™ & BBL™)

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Equipos

Espectrofotómetro (Spectrum 2100 UV-PC)

Balanza Analítica Marca Pioner, Modelo PA214C

Refrigeradora Marca Innova, Modelo IRAZZU 1000 NF

Autoclave Modelo TM-XD350

Ultrasonido

Vortex marca BOECO GERMANY Vortex V-1plus

Digestor de muestras DRB200 (Hach Company, Loveland, CO)

Espectrofotómetro DR1900 (Hach Company, Loveland, CO)

Multímetro (Digital Multimeter DT832)

Filtración al vacío marca VEB MLW LABORTECHNIK ILMENAU Nº

83098

Reactivos

Ácido Nítrico

Ácido Sulfúrico

Cloruro de Potasio

Agua tipo II

Dicromato de Potasio

Agar-Agar

Gas Nitrógeno

Etanol

Materiales para la construcción de la celda tipo MFC convencional

Matraces Erlenmeyer 50ml

Tubo de vidrio en U

Electrodos en barra de grafito 1.8cm x 0.7 cm

Cable de Ni-Ti #15 recubiertos de aislante plástico

Pegamento epóxido

Tapones de Goma #5

Pega Conductora

Cable de Cobre

3.4. Diseño Experimental

Se evaluó el contenido de nitrógeno, fósforo y potasio de la biomasa generada en el

tratamiento de ARDs para ser usado como posible abono agrícola, se propuso una

comparación entre estas variables:

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Matriz de Operacionalización de las Variables.

Tabla 3-1 5Matriz de Operacionalización de variables.

VARIABLE DIMENSIÓN INDICADOR

Independiente Tipo de Conexión Cualitativo

níquel titanio

(Ni-Ti) y cobre

Concentración de DQO inicial (dos

concentraciones )

Ppm

Dependiente Degradación de las ARDs %

Eficiencia Coulúmbica de la Celda mV,

% Eficiencia

Coulúmbica (E.C)

Biomasa Generada % Biomasa

generada

Concentración de Macronutrientes

en la biomasa producida

(mg de

macronutriente /kg

biomasa)

3.5.Procedimientos

Para la experimentación se ha procedido a dividir en 2 etapas:

Montaje y evaluación de las MFCs.

Cuantificación y evaluación de la biomasa generada por el tratamiento ARDs

usando MFCs.

MONTAJE Y EVALUACION DE LAS MFCs

3.5.1 Preparación de Electrodos.

Se utilizó cilindros de grafito procedentes de pilas secas recicladas tamaño DD, los de

0,7 cm de diámetro y 1,8 cm de altura, posteriormente fueron sometidos a un

tratamiento térmico en un mechero al rojo vivo (Figura 3.2). A continuación, se

sumergieron en una solución de ácido nítrico (HNO3, 5%) durante 20 min, a

continuación, se los lavó con agua tipo II y un posterior tratamiento en ultrasonido

durante 15 min. Los electrodos fueron perforados en uno de los extremos con una broca

“Hss #130” haciendo un agujero de 2mm de diámetro en el que se engarzó un alambre

fino de Ni-Ti y cobre respectivamente con una cubierta plástica. Se completó el

aislamiento aplicando resina epóxica (inerte para las bacterias), cuidando de que el

alambre no quede expuesto. La conexión entre el alambre y el electrodo fue evaluada

mediante un multímetro.

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Figura 3.2 5Preparación de electrodos de grafito.

3.5.2 Preparación de Inóculos y Crecimiento del Biofilm.

Para la preparación de inóculos se utilizaron bacterias electrogénicas Geobacter Spp y

un consorcio de bacterias (Mix de Bacterias) formadas por la E. Coli y Pseudomona

principalmente; estas fueron aisladas y administradas por el personal encargado en

Microbiología del Laboratorio de Energías Renovables de la Universidad Central del

Ecuador, la inoculación se realizó durante 5 días sumergiendo los electrodos en su

totalidad en un matraz de 250 ml con caldo BHI en agua destilada. Para el crecimiento

del biofilm se utilizaron electrodos previamente tratados (ver 3.5.2), que fueron

suspendidos en alcohol 70 % durante 30 min y posteriormente fueron lavados con agua

destilada estéril previo a su inoculación, estos electrodos fueron usados en la

inoculación, al cabo de 5 días se apreció la capa de biofilm en cada electrodo.

Figura 3.3 6(a) Formación del biofilm en el electrodo de grafito (b) Medio de cultivo BHI

al cabo del proceso de inoculación

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3.5.3 Preparación de combustible de celda (Agua Residual Doméstica).

Las ARDs obtenidas en el muestreo fueron acidificadas con 0,5 ml de H2SO4

concentrado, después se procedió a retirar los sólidos con un filtro de gasa, quedando en

la muestra solo el filtrado y para preservar la muestra se lo sometió a una temperatura de

4 ºC para sus posteriores análisis y tratamientos.

3.5.4 Ensamblaje de las MFCs

Las celdas MFCs clásicas, fueron armadas con dos matraces de 50ml unidos mediante

un puente salino de 5 mm de diámetro que contuvo 2% agar-agar y 1M en KCl. Ambas

cámaras fueron selladas con tapones de goma los que fueron perforados y acoplados a

dos mangueras plásticas, que sirvieron de entrada y salida para la toma de muestras,

entrada de aire e inyección del inóculo. La cámara anódica fue adaptada con una

manguera donde se extrajo el gas producido en el proceso y la cámara catódica fue

bombeada con oxígeno para que se produzca el intercambio de electrones en las MFCs.

Se usó como sustrato agua residual doméstica en la cámara anódica con su respectivo

inóculo y se usó agua destilada tipo II en la cámara catódica (Figura 3.3); también se

armó blancos, a los blancos se usó agua destilada como sustrato e inóculo y en la

cámara catódica agua destilada respectivamente.

Figura 3.4 7MFCs clásicas armadas en el Laboratorio

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3.5.5 Evaluación de las MFCs.

Para la evaluación de las MFCs se realizaron las siguientes mediciones:

3.5.6.1 Voltaje a circuito cerrado

Se procedió a medir cada día el voltaje generado por cada MFC a circuito cerrado (es

decir con una resistencia que provea la máxima potencia a la celda MFC) durante 5 días

con un multímetro (Digital Multimeter DT832).

3.5.6.2 Curvas de polarización (eficiencia coulúmbica)

Tanto en curvas de polarización como en medidas de eficiencia coulúmbica se

procedieron a medir el voltaje generado por cada MFC usando un multímetro (Digital

Multimeter DT832) al usar una serie de resistencias (Figura 3.5), siendo estas de (100,

300, 510, 820, 1500, 2200, 3000, 5100, 10000, 15000, 20000, 51000 y 100000) Ω; esta

curva de polarización es usada en el Laboratorio de Energías Renovables la cual ha sido

referenciada y usada en anteriores investigaciones. Con respecto a las curvas de

polarización estas muestran tres segmentos definidos, el primero es una pérdida rápida

de potencial al iniciar la curva, el segundo procede a una caída de menor pendiente y el

tercero es una caída rápida de potencial.

Figura 3.5 8Medición de voltaje a circuito cerrado de una MFC

3.5.6.3 Degradación de las ARDs

Se realizó la medición de la cantidad de materia orgánica por medio de la técnica de

DQO validada respectivamente, este análisis de DQO se midió cada día por un tiempo

de 5 días en cada MFC.

Con respecto al análisis de DQO, se procedió a tomar una muestra de 2 ml de cada

MFC, y se agregó a la solución de DQO previamente mezclada y estabilizada (1,5 ml de

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solución digestora + 3,5 ml de solución ácida), después se procedió a digestar la

muestra durante dos horas en un digestor marca HACH DRB 200, posteriormente se

analizó en el espectrofotómetro marca HACH DR1900 a una longitud de onda de 620

nm (Figura 3.6).

Figura 3.69Medición espectrofotométrica de DQO

Terminada la primera parte, se procedió a realizar la recolección, cuantificación de la

biomasa microbiana y de sus macronutrientes (N, K, y P).

CUANTIFICACIÓN Y EVALUACIÓN DE LA BIOMASA GENERADA POR EL

TRATAMIENTO DE ARDs USANDO MFCs.

3.5.7 Recolección y cuantificación de la biomasa microbiana.

La biomasa microbiana fue recolectada después de un transcurso de 5 días, durante los

cuales se procedió a hacer el análisis electroquímico correspondiste en cada MFC

(Figura 3.7), la biomasa generada se recogió en un papel filtro de poro 2 um, y un

equipo de filtración al vacío marca VEB MLW LABORTECHNIK ILMENAU Nº

83098, el extracto se lo guardó en una caja petri y se lo sometió a calentamiento en una

estufa marca MEMERT (EDELSTAHL Rostfrei) por 30 min a 100 ºC para eliminar su

humedad. Por diferencia de peso se procedió a realizar la cuantificación de la biomasa

microbiana en unidades mg Biomasa/L ARDs.

Después de esto se lo guardó en una refrigeradora para su respectivo análisis

cuantitativo.

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Figura 3.710Generación de biomasa microbiana en la superficie de las MFCs

3.5.8 Evaluación del contenido de macronutrientes de la Biomasa Microbiana.

Después de la recolección y cuantificación de la biomasa microbiana se procedió a

analizar sus respectivos elementos (N, P, K).

3.5.8.1 Cuantificación de Nitrógeno

Para determinar el contenido de nitrógeno se siguió la metodología de Nitrógeno Total,

método de digestión con persulfato, con un rango de 0 – 25 mg/L N provista por

HACH, el procedimiento se ha detallado a continuación: El método consistió en

disolver una pequeña cantidad de muestra de biomasa en 10 ml de agua destilada tipo II.

Usando el Kit Test`n Tube Total Nitrogen Hidroxide Reagent Set 2671745, a cada tubo

de ensayo se agregó con un embudo una cantidad constante de reactivo persulfato, para

cada muestra se agregó 2 ml de reactivo y para el blanco se usó 2 ml de agua destilada

tipo II, se tapó los tubos de ensayo y se agitó por 30 segundos en un equipo Vortex

marca BOECO GERMANY Vortex V-1plus, se calentó por 30 minutos a una

temperatura de 105 ºC en un digestor marca HACH DRB 200, posterior los 30 minutos

dejó enfriar los tubos de ensayo, se usó un espectrofotómetro marca HACH DR1900 a

420 nm, el mismo que dispuso de la curva de calibración para el análisis Test`n Tube

Total Nitrogen Hidroxide Reagent Set 2671745 con un rango de 0-25 mg/L N.

3.5.8.2 Cuantificación de Fósforo

Para determinar el contenido de fósforo total se siguió la metodología APHA 4500-P

Molibdato-Vanadato Método Colorimétrico del “Standard Methods for the

Examination of Wáter and Wastewater” con un rango de 0-15 mg/L, el procedimiento

se ha detallado a continuación: Se diluyó la muestra a 50 ml, después se digestó hasta

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10 ml con 5 ml de ácido clorhídrico concentrado y 2 ml de ácido sulfúrico concentrado

en una plancha de calentamiento; después se agregó 3 gotas de fenolftaleína,

posteriormente se reguló el pH con ácido sulfúrico concentrado e hidróxido de sodio

hasta pH de 6-7. A esto se le agregó carbón activado, se lo filtro y se lo aforó a 50 ml.

Se tomó 35 ml de muestra, se añadió 10 ml del reactivo molibdato-vanadato (provisto

por el laboratorio OSP de la Universidad Central del Ecuador) y se aforó a 50 ml, se

esperó 10 min y leyó la absorbancia en el espectrofotómetro marca JASCO V-630, se

usó la curva de calibración del laboratorio OSP, la cual fue debidamente validada, en el

análisis se usó un patrón de 5 mg/l P para corroborar la exactitud de los resultados.

3.5.8.3 Cuantificación de Potasio

Para determinar el contenido de potasio se siguió la metodología “3111 Metals by

Flame Atomic Absorption Spectrometry” del “Standard Methods for the Examination

of Wáter and Wastewater” con un rango de 0-10 mg/L, el procedimiento se ha detallado

a continuación: Se agregó una cantidad de muestra de biomasa microbiana a una

cápsula de porcelana previamente limpia, pesada y tarada y se la calcinó en una mufla a

550 ºC por 4 horas, posteriormente se procedió a un lavado acido mediante agua

caliente y ácido nítrico concentrado y se recogió la muestra de la cápsula de porcelana

en un balón de aforo de 50 ml. Después se agregó unas gotas de cloruro de lantano para

evitar interferencias y se midió en el equipo marca PERKIN ELMER HGA-800 usado

en el laboratorio OSP de la Facultad de Ciencias Químicas, se usó la curva de

calibración de potasio usada en los análisis del laboratorio OSP, respectivamente

validada.

3.6.Técnica de Recolección de Datos.

Los instrumentos que se utilizaron en la investigación fueron la formulación de tablas

donde se anotaron todos los resultados que se obtuvieron de cada medición de MFCs en

cada día, el voltaje producido, la resistencia del circuito externo utilizada, la

concentración de DQO, etc.

3.6.1 Validación del método DQO

Este método está descrito en la norma publicada por American Public Health

Association llamado “Standard Methods for the Examination of Water and

Wastewater” (1999) literal 5220 D Método Colorimétrico.

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3.6.1.1 Curva de calibración del método DQO

Cada curva de calibración fue realizada 4 veces con KHF (ftalato acido de potasio)

como patrón, se realizó concentraciones de KHF entre 100 y 1000 mg/l colocando

anteriormente en cada tubo de ensayo 1,5 ml de una solución de dicromato de potasio y

3,5 ml de ácido sulfúrico concentrado y finalmente añadiendo 2 ml de soluciones 0,

100, 200, 300, 400, 500, 600, 700, 800, 900, 1000 mg/l de KHF. Los tubos fueron

agitados por un equipo vortex marca BOECO GERMANY Vortex V-1plus, sometidos a

digestión por 120 minutos marca HACH DRB 200, dejados enfriar y posteriormente

medidos en un espectrofotómetro marca HACH DR1900 a una longitud de onda de 620

nm. (VER ANEXOS)

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CAPITULO IV

4. ANALISIS Y DISCUSION DE RESULTADOS

La primera etapa de la investigación consistió en evaluar las MFCs tanto en su

comportamiento de degradación y su eficiencia coulúmbica, en la segunda etapa de la

investigación se recolectó la biomasa generada en el proceso y se cuantificó los

macroelementos (N, P y K).

4.1 PRIMERA ETAPA

4.1.1 Evaluación de MFCs con Ni-Ti como tipo de conexión.

4.1.1.1 Voltaje a Circuito Cerrado.

Los resultados experimentales muestran que las MFCs pueden generar electricidad

empleando como sustrato agua residual doméstica, estas alcanzan comúnmente un

intervalo de voltaje de 0,2-0,6 V; el voltaje generado es una función de la resistencia

externa, por lo tanto a medida que las resistencias van disminuyendo el potencial de

celda también disminuye, cada MFCs fue medida previa incorporación de una

resistencia externa que a su vez generaba la máxima corriente en el sistema. (Logan,

2008). Para cada MFC se realizó un triplicado, el área del ánodo fue de 0,94 cm2 y se

mantuvo constante en toda la evaluación, además cada MFC fue medida en un lapso de

5 días, una medición por día y su comportamiento. La Tabla 4.1 muestra los voltajes

registrados durante los 5 días.

Tabla 4-1 6Voltajes a circuito cerrado usando Ni-Ti

DQO Alto DQO Bajo

Tiempo

(h)

M1 M2 M3 Blanco

(B)

M1 M2 M3 Blanco

(B)

1 548 468 427 538 488 463 512 513

24 369 228 275 248 260 268 261 306

48 288 226 233 198 239 251 244 198

72 268 213 209 196 201 208 211 179

96 245 204 176 155 164 166 174 161

Como se puede observar en la tabla 4.1 se obtiene similitud en los resultados; al cabo de

las primeras 24 horas existe la caída más pronunciada de potencial que se la denominará

como fase de declive, esto se puede deber al metabolismo bacteriano, las bacterias

interactúan directamente con el sustrato en su máxima capacidad oxidante, por ende

después de este tiempo se mantiene una caída de potencial menos pronunciada ya que la

capacidad oxidante de las bacterias es menor, en la figura 4.1 (voltaje vs tiempo) se

puede apreciar más claramente la caída de potencial pronunciada.

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Figura 4.111Generación de bioelectricidad usando Ni-Ti a DQO Alto

En la Figura 4.1 se puede observar una caída de potencial en la fase de declive de 179

mV, 240 mV y de 152mV para las muestra 1, muestra 2 y muestra 3 respectivamente,

el blanco posee una caída máxima de 290 mV, con respecto al blanco se demuestra que

estas bacterias son buenas para producir voltaje inclusive si no tienen sustrato para

oxidar, estas caídas de potencial posiblemente se deban también al desanclaje de los

microorganismos en la superficie del ánodo.

En la Figura 4.2 se realizó el mismo análisis para las MFCs a DQO bajo para ver su

comportamiento de producción de electricidad.

Figura 4.212Generación de bioelectricidad usando Ni-Ti a DQO Bajo

Tanto en la figura 4.1 como en la figura 4.2 con respecto al blanco se puede apreciar un

voltaje considerable en todo el proceso electroquímico, estas bacterias generan potencial

a pesar de que el sustrato no posee una cantidad de materia orgánica que oxidar

considerable, esto se puede deber a que el medio incorporado fue un inóculo rico en

0

100

200

300

400

500

600

0 20 40 60 80 100 120

Vo

ltaj

e (

mV

)

Tiempo (h)

Producción Electricidad, Ni-Ti, DQO Alto

Muestra (M1)

Muestra (M2)

Muestra (M3)

Blanco (B)

0

100

200

300

400

500

600

0 20 40 60 80 100 120

Vo

ltaj

e (

mV

)

Tiempo (h)

Producción Electricidad, Ni-Ti, DQO Bajo

Muestras (M1)

Muestras (M2)

Muestras (M3)

Blanco (B)

Fase de

declive

Fase de

declive

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32

nutrientes Caldo BHI (Infusion Brain Heart) (García, 2016). Se observa un potencial

casi constante que oscila entre (176 y 245 mV) en las MFCs al cabo del día 5.

4.1.1.2 Curvas de polarización

Se procedió a medir el voltaje generado con una serie de resistencias siendo estas de

100, 300, 510, 820, 1500, 2200, 3000, 5100, 10000, 15000, 20000, 51000 y 100000 Ω,

el voltaje generado al aplicar una resistencia externa sigue un comportamiento

directamente proporcional, mientras más aumenta la resistencia el voltaje producido por

la celda aumenta, además se ha calculado intensidad de corriente, densidad de corriente

y potencia generada por cada MFC.

MFCs, DQO alto, Ni-Ti.

A manera de ejemplo se muestra a continuación la curva de polarización de la muestra

2, todas las tablas y curvas de polarización de las muestras 1, 2, 3 se encuentran en

ANEXOS

Muestra 2

En la siguiente tabla se muestra la relación entre resistencia y potencial de cada MFC en

el día 1. El área del ánodo corresponde al área geométrica del electrodo usado en esta

investigación

Tabla 4-2 7Curva de polarización muestra 2, día 1 usando Ni-Ti a DQO Alto, área del ánodo.

Resistencia

(Ohm)

Potencial

(mV)

Intensidad de

corriente I (mA)

Densidad

(mA/cm2)

Potencia

(mW/m2)

100 2 0,0200 0,021 0,426

300 8 0,0267 0,028 2,270

510 14 0,0275 0,029 4,088

820 21 0,0256 0,027 5,721

1500 41 0,0273 0,029 11,922

2200 58 0,0264 0,028 16,267

3000 71 0,0237 0,025 17,876

5100 112 0,0220 0,023 26,166

10000 180 0,0180 0,019 34,468

15000 237 0,0158 0,017 39,836

20000 274 0,0137 0,015 39,934

51000 367 0,0072 0,008 28,095

1000000 425 0,0004 0,000 1,922

Como se puede observar en la Tabla 4.2 (resaltado en amarillo) se obtuvo una máxima

potencia de 39,934 mW/m2 que se genera al aplicar una resistencia de 20000 Ω, esta

potencia de celda depende de la superficie del electrodo, la arquitectura de la celda y de

la relación tamaño del electrodo-volumen de carga de MFC. (Logan, 2008). En los

siguientes gráficos se pueden observar la relación entre el potencial generado, densidad

de corriente y potencia respectivamente.

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33

A continuación la gráfica 4.3 observa la curva de polarización de la muestra 2 en el día

1

Figura 4.313Curva de polarización, muestra 2, día 1, Ni-Ti a DQO Alto

Como se puede observar en la Figura 4.3 (círculo rojo) al imponer una resistencia

externa de 20000Ω, estas MFCs llegan a tener un potencial máximo de 274 mV,

generando a su vez una intensidad de corriente de 0.0028 mA y además una potencia de

39,93 mW/m2, todos estos datos corresponden al análisis de la muestra 2 usando una

concentración de DQO alto en el día 1.

La Tabla 4.3 muestra un resumen de las máximas potencias generadas por día, sus

respectivos voltajes e intensidad de corriente para cada repetición. Las curvas de

polarización respectivas de cada día se encuentran en el ANEXOS

Tabla 4-3 8Curva de polarización muestra 1, 2 y 3, usando Ni-Ti a DQO Alto.

Ni-Ti DQO ALTO

Muestra

Tiempo

(h)

Resistencia

(Ohm)

Potencial

(mV)

Intensidad

de corriente

I (mA)

Densidad

(mA/cm2)

Potencia

(mW/m2)

Muestra

1

1 51000 143 0,0028 0,003 4,266

24 15000 139 0,0093 0,01 13,703

48 15000 118 0,0079 0,008 9,875

72 15000 122 0,0081 0,009 10,556

96 15000 119 0,0079 0,008 10,043

Muestra

2

1 20000 274 0,0137 0,015 39,934

24 10000 131 0,0131 0,014 18,256

48 5100 50 0,0098 0,010 5,215

72 10000 84 0,0084 0,009 7,506

96 15000 114 0,0076 0,008 9,217

Muestra

3

1 10000 165 0,0165 0,018 28,963

24 10000 107 0,0107 0,011 12,18

48 10000 103 0,0103 0,011 11,286

0,000

5,000

10,000

15,000

20,000

25,000

30,000

35,000

40,000

45,000

0,0000

0,0500

0,1000

0,1500

0,2000

0,2500

0,3000

0,3500

0,4000

0,4500

0,000 0,010 0,020 0,030 0,040

De

nsi

dad

de

po

ten

cia

( m

W/m

2)

Dif

ere

nci

a d

e p

ote

nci

al (

V)

Densidad de corriente (mA/cm2)

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34

72 5100 60 0,0118 0,013 7,509

96 5100 59 0,0116 0,012 7,261

Como se puede observar en la Tabla 4.3 las tres muestras alcanzan entre el día 1 y el día

2 su máxima potencia de celda, siendo en promedio la máxima potencia de 27,53

mW/m2, esto posiblemente se deba a que existe una caída pronunciada de potencial

después de este tiempo, según (Logan, 2008) al usar este tipo de bacterias (bacterias

electrogénicas) después de llegar a su fase exponencial de crecimiento (duplicación

celular) y máxima capacidad de oxidación de sustrato comienzan a disminuir tanto su

densidad de potencia como su capacidad de oxidación ya que el sustrato va

disminuyendo.

En las figura 4.4 se muestra la relación potencial vs densidad de corriente de la MFC de

la muestra 2 al cabo de 5 días de experimentación.

En la figura potencial vs densidad de corriente se observa una potencia inicial de 425

mV al aplicar una resistencia externa de 20000 Ω y una potencia máxima de 39,93

mW/m2 en el día 1.

Los valores de potencia alcanzados en el Figura 4.4 tienden a ser similares en los días

3, 4, 5 comenzando en 5,215; 7,506 y 9,217 mW/m2 respectivamente y usando una

resistencia externa de 5100, 10000 y 51000 Ω respectivamente, posiblemente también

se deba a que a partir del día 3 los sustratos tienen una remoción de DQO similar según

lo que se observará a continuación en la sección 4.1.1.3 y en este tiempo la caída de

potencial es menos pronunciada.

A continuación en la Tabla 4.4 se muestra el promedio de producción de electricidad

respecto a las variables DQO alto con conexión de Ni-Ti

0,0000

0,0500

0,1000

0,1500

0,2000

0,2500

0,3000

0,3500

0,4000

0,4500

0 0,01 0,02 0,03 0,04

Po

ten

cial

(V

)

Densidad de corriente mA/cm2

Potencial vs Densidad de corriente, Muestra 2

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 50,000

5,000

10,000

15,000

20,000

25,000

30,000

35,000

40,000

45,000

0 0,02 0,04

Den

sid

ad d

e p

ote

nci

a m

W/m

2

Densidad de Corriente mA/cm2

Densidad de potencia vs Densidad de corriente, Muestra 2

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

Figura 4.414Curva de (a) potencial vs densidad de corriente, (b) densidad de potencia vs densidad de

corriente); muestra 2, Ni-Ti a DQO Alto.

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35

Tabla 4-4 9Promedio de producción de electricidad, usando Ni-Ti a DQO Alto.

Muestra Tiempo

(h)

Resistencia

(Ohm)

Potencial

(mV)

Intensidad de

corriente I

(mA)

Densidad

(mA/cm2)

Potencia

(mW/m2)

Muestra Promedio

1 30000 194 0,011 0,012 24,388

24 10000 126 0,011 0,012 14,713

48 10000 90 0,009 0,01 8,792

72 10000 89 0,009 0,01 8,524

96 10000 97 0,009 0,009 8,84

Como se puede observar la máxima producción de electricidad se dá en el día 1, siendo

la máxima potencia de 24,388 mW/m2, al cabo del día 2 existe un porcentaje de

disminución de potencia del 39,67%, este porcentaje de disminución de potencia puede

deberse a que la interacción sustrato-bacterias a partir del día 2 es menor ya que

comienza a existir muerte celular (formación de biomasa microbiana) por la oxidación

de los contaminantes de las ARDs.

MFCs, DQO Bajo, Ni-Ti

En la siguiente tabla se muestran los resultados al usar una concentración de DQO bajo

para cada MFC

Tabla 4-5 10Curva de polarización muestra 1, 2 y 3, usando Ni-Ti a DQO Bajo.

Ni-Ti DQO bajo

Muestra Tiempo

(h)

Resistencia

(Ohm)

Potencial

(mV)

Intensidad

de corriente

I (mA)

Densidad

(mA/cm2)

Potencia

(mW/m2)

Muestra

1

1 10000 194 0,0194 0,021 40,038

24 10000 131 0,0131 0,014 18,256

48 5100 91 0,0178 0,019 17,274

72 10000 84 0,0084 0,009 7,506

96 5100 44 0,0086 0,009 4,038

Muestra

2

1 51000 228 0,0045 0,005 10,844

24 10000 103 0,0103 0,011 11,286

48 20000 114 0,0057 0,006 6,913

72 10000 85 0,0085 0,009 7,686

96 10000 81 0,0081 0,009 6,98

Muestra

3

1 51000 143 0,0028 0,003 4,266

24 51000 150 0,0029 0,003 4,693

48 51000 130 0,0025 0,003 3,525

72 51000 139 0,0027 0,003 4,03

96 51000 128 0,0025 0,003 3,418

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36

Se puede observar en la Tabla 4.5 la tendencia en el día 1 y 2 de máxima potencia de

cada MFC, esto siendo las resistencias de 10000 Ω y 51000Ω las predominantes en la

generación de voltaje a circuito cerrado.

A continuación se observan las curvas de polarización de la muestras 1

Muestra 1

Como se observa en la figura 4.5 se genera en el día 1 una máxima potencia de 40

mW/m2 al aplicar una resistencia externa de 10000Ω, el potencial generado por esta

resistencia es 194 mV.

A continuación en la Tabla 4.6 se muestra el promedio de producción de electricidad

respecto a las variables DQO alto con conexión de Ni-Ti

Tabla 4-6 11Promedio de producción de electricidad, usando Ni-Ti a DQO Bajo.

Muestra Tiempo

(h)

Resistencia

(Ohm)

Potencial

(mV)

Intensidad de

corriente I

(mA)

Densidad

(mA/cm2)

Potencia

(mW/m2)

Muestra Promedio

1 51000 188 0,009 0,01 18,383

24 20000 128 0,009 0,009 11,412

48 20000 112 0,009 0,009 9,237

72 20000 103 0,007 0,007 6,407

96 20000 84 0,006 0,007 4,812

Como se puede observar la máxima producción de electricidad se dá en el día 1, siendo

la máxima potencia de 18,383 mW/m2, al cabo del día 2 existe un porcentaje de

disminución de potencia del 37,92%, este porcentaje de disminución de potencia es

similar al descrito anteriormente (Tabla 4.4) y que además de lo expuesto puede ser

responsable la cantidad de sustrato que existe en las ARDs.

0,0000

0,0500

0,1000

0,1500

0,2000

0,2500

0,3000

0,3500

0,4000

0,000 0,020 0,040 0,060

Po

ten

cial

(V

)

Densidad de Corriente mA/cm2

Potencial vs Densidad de corriente, Muestra 1

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

0,000

5,000

10,000

15,000

20,000

25,000

30,000

35,000

40,000

45,000

0 0,02 0,04 0,06

De

nsi

dad

de

Po

ten

cia

mW

/m2

Densidad de corriente mA/cm2

Densidad de Potencia vs Densidad de corriente, Muestra 1

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

Figura 4.515Curva de (a) potencial vs densidad de corriente, (b) densidad de potencia vs densidad de

corriente); muestra 1, Ni-Ti a DQO Bajo.

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37

4.1.1.3 Degradación de las ARDs

Para cada MFC se procedió a realizar la medición de un blanco, cada blanco está

formado de inoculo y agua destilada, estos valores se restaron de cada MFC ya que en sí

este valor se deba al comportamiento bacteriano y no al comportamiento real de la

remoción de DQO (García, 2016).

La Tabla 4.7 muestra los valores de DQO usando como conexión Ni-Ti en el transcurso

de cada día durante 5 días.

Tabla 4-712Degradación de ARDs usando Ni-Ti

Ni-Ti DQO Alto DQO Bajo

Tiempo

(horas)

Muestra 1

(mg/L)

Muestra 2

(mg/L)

Muestra 3

(mg/L)

Muestra 1

(mg/L)

Muestra 2

(mg/L)

Muestra 3

(mg/L)

0 778 778 778 377,23 377,23 377,23

1 545,30 665,84 596,96 309,96 312,83 324,31

24k 459,20 433,37 462,07 278,39 298,48 307,09

48 364,49 355,88 375,97 275,52 292,74 289,87

72 249,69 249,69 264,04 249,69 235,34 229,60

96 189,42 175,07 172,20 212,38 186,55 200,90

Con respecto a la concentración de DQO alto se puede observar una tendencia de

degradación más amplia, esta inicia en 778 mg/L y termina en promedio en 179 mg/L

(aproximadamente 498 mg/L de DQO degradados) no así con la concentración de DQO

bajo la cual inicia en 377,23 mg/L y termina en promedio en 200 mg/L, es decir solo

degrada alrededor de 190 mg/L de DQO en los 5 días de tratamiento, esto se puede

deber a la cinética de este tipo de bacterias usadas en la investigación y por lo que se

llega a un DQO final de ARDs de 200 mg/L de DQO (investigaciones previas). (García,

2016).

Para comprender mejor los resultados anteriormente expuestos se muestra en la Tabla

4.8 los porcentajes de degradación usando como conexión Ni-Ti.

Tabla 4-813Porcentaje de degradación de ARDs usando Ni-Ti

NI-TI % DEGRADACIÓN

CONCENTRACIÓN DQO Muestra 1 (%) Muestra 2 (%) Muestra 3 (%)

DQO ALTO 75,652 77,497 77,866

DQO BAJO 43,699 50,547 46,743

Se puede observar una clara diferencia con respecto a la variable concentración inicial

de DQO, mientras mayor es la concentración de DQO existe más porcentaje de

degradación (en promedio un 77%), mientras que usando una concentración inicial de

DQO bajo las MFCs degradan en promedio un 47%.

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38

A continuación en la siguiente gráfica se puede observar claramente el comportamiento

de degradación de cada MFC a una concentración de DQO específica

En la gráfica 4.6 (a) existe una fase de declive mucho más pronunciada que la gráfica

(b) en el transcurso de las primeras 24 horas, esto se puede deber a que en este tiempo

existe el máximo potencial de celda generado en la MFC y la potencia máxima de la

celda se encuentra en este intervalo de tiempo por lo que las bacterias están en su

máxima capacidad de degradación al oxidar el sustrato de las ARDs.

4.1.1.4 Eficiencia Coulúmbica Ni-Ti

A continuación se muestra en la Tabla 4.9 el porcentaje de eficiencia coulúmbica

promedio usando como conexión Ni-Ti.

Tabla 4-914Porcentaje de degradación promedio de ARDs usando Ni-Ti.

% Eficiencia Coulúmbica

Tiempo

(horas)

DQO Alto

Ni-Ti

DQO Bajo

Ni-Ti

1 0,22 3,60

24 14,67 31,87

48 11,28 51,96

72 9,41 29,02

96 17,30 19,69

Como se puede observar en la Tabla 4.9 (resaltado en amarillo) existe un pico máximo

en el cual existe mayor recuperación de electrones, en el caso de las MFCs con DQO

alto, se encuentran en el día 2 siendo de 14,67%, mientras que las MFCs con DQO bajo

alcanzan en el día 3 su máxima eficiencia coulúmbica de 51,96%.

100

200

300

400

500

600

700

800

900

0 50 100 150

DQ

O (

mg/

l)

Tiempo (horas)

Remoción de Contaminantes (DQO alto, Niti)

Muestra 1

Muestra 2

Muestra 3

150

200

250

300

350

0 50 100 150

DQ

O (

mg/

L)

Tiempo (horas)

Remoción de Contaminantes (DQO bajo, Niti)

Muestra 1

Muestra 2

Muestra 3

Figura 4.616Remoción de contaminantes usando Ni-Ti (a) DQO Alto, (b) DQO Bajo

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39

Figura 4.717Porcentaje de eficiencia coulúmbica usando Ni-Ti a DQO Alto y DQO Bajo.

En la figura 4.7 se puede observar la diferencia entre la variable concentración inicial,

las MFCs con DQO bajo (línea naranja) son las más eficientes en todos los días de

análisis con respecto a las MFCs a concentración inicial de DQO alto (línea azul), en el

día 3 con DQO bajo se llega a un 51,96% de eficiencia coulúmbica, mientras en el día

5 usando una concentración inicial con DQO alto se llega a un máximo de 17,30%; esto

se puede deber a que al tener una concentración inicial de DQO bajo de 377,23 mg/L en

el día 3 existe más recuperación de electrones como corriente por la poca remoción de

DQO (2,87 mg/L) mientras que la variación con respecto al DQO alto en el día 3 es de

94,71 mg/L.

4.1.2 Evaluación de MFCs con COBRE como tipo de conexión.

Debido a la homogeneidad de resultados se presentan los resultados en promedio a

continuación.

4.1.2.1 Voltaje a Circuito Cerrado.

Las MFCs con conexión de cobre tienden un comportamiento similar a las MFCs con

conexión de Ni-Ti descritas anteriormente.

Tabla 4-10 15Voltajes a circuito cerrado usando Cobre.

mV Producción de voltaje a circuito

cerrado

Tiempo (h) DQO Alto/Cobre DQO Bajo/Cobre

1 547,6 495

24 296,6 256

48 252,6 214,6

72 263 162

96 220,3 147,3

Como se puede observar en la Tabla 4.10 las MFCs con conexión de cobre poseen un

potencial máximo que bordea los 547,6 mV para concentración de DQO alto y de 495

0

10

20

30

40

50

60

0 20 40 60 80 100 120

% E

fici

en

cia

Co

ulú

mb

ica

Tiempo (horas)

% Eficiencia Coulúmbica (Ni-Ti)

DQO Alto Ni-Ti

DQO bajo, Ni-Ti

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40

para concentración de DQO bajo, y llegan al cabo del día 5 a un voltaje de 220,3 en

concentración de DQO alto y de 147,3 mV con concentración de DQO bajo. A

continuación en la siguiente figura 4.8 se observa claramente la tendencia de caída de

potencial de las MFCs al transcurrir el tiempo.

Figura 4.818Generación de bioelectricidad usando conexión de Cobre

Las MFCs con conexión de cobre tienden a generar bioelectricidad en menor cantidad

con respecto a las MFCs con conexión de Ni-Ti; aunque la variación es muy limitada,

es más eficiente usar MFCs con concentración de DQO alto, ya que estas poseen más

sustrato que oxidar, por lo tanto hay más transferencia de electrones y mayor generación

de potencial.

4.1.2.2 Curvas de polarización.

Se observa en la Tabla 4.11 la potencia máxima generado por las MFCs usando

conexión de cobre al cabo de 5 días.

0

100

200

300

400

500

600

0 20 40 60 80 100 120

Vo

ltaj

e (

mV

)

Tiempo (horas)

Voltaje a circuito cerrado, Cobre

DQO Alto/Cobre

DQO Bajo/Cobre

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41

Tabla 4-1116Potencia máxima, intensidad de corriente y resistencias usando Cobre

Cobre DQO Alto DQO Bajo

Muestra Tiempo

(h)

Resistencia

(Ohm)

Potencial

(mV)

Intensidad

de corriente

I (mA)

Densidad

(mA/cm2)

Potencia

(mW/m2)

Resistencia

(Ohm)

Potencial

(mV)

Intensidad

de corriente

I (mA)

Densidad

(mA/cm2)

Potencia

(mW/m2)

Muestra

1

1 51000 128 0,0025 0,003 3,418 10000 103 0,0103 0,011 11,286

24 51000 111 0,0022 0,002 2,57 20000 132 0,0066 0,007 9,268

48 10000 30 0,003 0,003 3 15000 71 0,0047 0,005 3,575

72 51000 101 0,002 0,002 2,128 20000 80 0,004 0,004 3,404

96 10000 16 0,0016 0,002 3 10000 55 0,0055 0,006 3

Muestra

2

1 51000 170 0,0033 0,004 6,028 20000 68 0,0029 0,003 1,789

24 51000 167 0,0033 0,003 5,817 51000 111 0,0022 0,002 2,57

48 51000 149 0,0029 0,003 4,631 51000 104 0,002 0,002 2,256

72 51000 134 0,0026 0,003 3,746 51000 76 0,0015 0,002 1,205

96 51000 130 0,0025 0,003 3,525 10000 59 0,0059 0,006 3,703

Muestra

3

1 51000 178 0,0035 0,004 6,609 20000 146 0,0073 0,008 11,338

24 51000 174 0,0034 0,004 6,315 15000 108 0,0072 0,008 8,272

48 20000 92 0,0046 0,005 4,502 10000 84 0,0084 0,009 7,506

72 51000 139 0,0027 0,003 4,03 20000 81 0,0041 0,004 3,49

96 51000 125 0,0025 0,003 3,259 20000 82 0,0041 0,004 3,577

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42

Se puede observar en la Tabla 4.11 la tendencia en el día 1 de máxima potencia de cada

MFC, siendo las resistencias de 10000 Ω y 51000Ω las predominantes en la generación

de voltaje a circuito cerrado.

A continuación se observan las curvas de polarización de la muestras 1 usando DQO

Alto y como conexión cobre

Muestra 1

A pesar de la similitud de potencial en las MFCs con conexión de Ni-Ti con respecto a

las MFCs de cobre se puede ver una diferencia en las curvas de polarización siendo

estas más semejantes con respecto a la variación en cada día, se obtiene una máxima

potencia de celda de 3,41 mW/m2 en el día 1 y una caída de potencial desde 128 mV

hasta 16 mV usando una resistencia de 51000 Ω.

A continuación en la Tabla 4.12 se muestra el promedio de producción de electricidad

respecto a las variables DQO alto y bajo con conexión de Cobre

Tabla 4-1217Promedio de producción de electricidad, usando cobre a DQO Alto y Bajo.

Muestra Tiempo

(h)

Resistencia

(Ohm)

Potencial

(mV)

Intensidad de

corriente I

(mA)

Densidad

(mA/cm2)

Potencia

(mW/m2)

Muestra Promedio DQO Alto

1 51000 159 0,003 0,004 5,352

24 51000 151 0,003 0,003 4,901

48 3000 90 0,004 0,004 4,044

72 51000 125 0,002 0,003 3,301

96 30000 90 0,002 0,003 3,261

1 15000 106 0,007 0,007 8,138

24 30000 117 0,005 0,006 6,703

Muestra 48 30000 86 0,005 0,005 4,446

0,0000

0,0500

0,1000

0,1500

0,2000

0,2500

0 0,002 0,004 0,006 0,008

Po

ten

cial

(V

)

Densaidad de corriente mA/cm2

Potencial vs Densidad de corriente

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

-0,500

0,000

0,500

1,000

1,500

2,000

2,500

3,000

3,500

4,000

0 0,002 0,004 0,006 0,008

De

nsi

dad

de

po

ten

cia

(mW

/m2

)

Densidad de corriente mA/cm2

Potencia vs Densidad de corriente

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

Figura 4.919Curva de polarización (potencial vs densidad de corriente), muestra 1, Cobre a DQO Alto.

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Promedio DQO Bajo

72 30000 79 0,003 0,003 2,7

96 30000 65 0,005 0,005 3,427

Como se puede observar la máxima producción de electricidad en promedio se dá en el

día 1 para la concentración inicial de DQO alto y DQO bajo, siendo la máxima potencia

de 5,352 mW/m2 y 8,138 mW/m2 respectivamente a una resistencia externa de 51000 y

15000 Ω , al cabo del día 2 existe un porcentaje de disminución de potencia del 8,42% y

17,63% respectivamente, estos porcentajes de disminución de potencia son menores con

respecto a la conexión Ni-Ti descrita anteriormente, posiblemente se deba a su

intensidad de corriente, ya que con cobre oscilan los valores de 0,004 mA/cm2 y 0,007

mA/cm2 respectivamente mientras que con Ni-Ti los valores fueron de 0,012 mA/cm2

y 0,010 mA/cm2 y según (Logan, 2008) mientras la celda electroquímica aumente en

su densidad de corriente se aumentará la densidad de potencia, es decir las MFCs con

Ni-Ti son mejores productoras de electricidad.

4.1.2.3 Degradación de las ARDs

Al igual que con la conexión de Ni-Ti en la Tabla 4.12 se aprecia la degradación de

ARDs usando MFCs con conexión de cobre.

Tabla 4-1218Degradación de ARDs usando Cobre.

Cobre DQO Alto DQO Bajo

Tiempo

(horas)

Muestra 1

(mg/L)

Muestra 2

(mg/L)

Muestra 3

(mg/L)

Muestra 1

(mg/L)

Muestra 2

(mg/L)

Muestra 3

(mg/L)

0 778 778 778 377,23 377,23 377,23

1 726,11 703,15 688,80 309,96 312,83 324,31

24 462,07 528,08 519,47 278,39 298,48 307,09

48 318,57 321,44 307,09 275,52 292,74 289,87

72 238,21 189,42 198,03 249,69 235,34 229,60

96 200,90 175,07 172,20 215,25 229,60 209,51

Se observa un comportamiento de degradación similar al descrito anteriormente con

conexión de Ni-Ti, se comienza con una concentración de DQO de 778 mg/L y

aproximadamente se llega a una concentración promedio de 182 mg/L de DQO al cabo

de 5 días; mientras que al iniciar con una concentración de DQO de 377,23 mg/L se

llega al cabo de 5 días a una concentración promedio de 218 mg/L, siendo más eficiente

usar una concentración de DQO alta ya que se obtendrá más porcentaje de degradación.

A continuación en la Tabla 4.13 se observan los porcentajes de degradación de ARDs

usando MFCs con conexión de cobre.

Tabla 4-13 19Porcentaje de degradación de ARDs usando Cobre

COBRE % DEGRADACIÓN

CONCENTRACIÓN DQO Muestra 1 (%) Muestra 2 (%) Muestra 3 (%)

DQO ALTO 74,177 77,497 77,866

DQO BAJO 42,939 39,135 44,460

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Al cabo de 5 días se observa una diferencia significativa al variar la concentración de

DQO, al usar concentración de DQO alto se llega a un máximo de 77,86% de

degradación de ARDs, mientras que al usar concentración de DQO bajo solo se llega a

un máximo de 44,46 % de degradación de ARDs. En la siguiente gráfica se observan las

tendencias que sigue la remoción de contaminantes en ARDs usando MFCs.

Se muestra homogeneidad de resultados usando conexión de cobre en el tratamiento de

ARDs usando MFCs, En la gráfica 4.10 (a) sigue existiendo una fase de declive mucho

más pronunciada que la gráfica (b) en el transcurso de las primeras 24 horas, esto

posiblemente se deba a que en este tiempo las bacterias están en su máxima capacidad

de degradación y necesitan de sustrato para poder generar bioelectricidad, por ende la

concentración de DQO alta es más aprovechada por las bacterias en las MFCs.

4.1.2.5 Eficiencia Coulúmbica Cobre

A continuación se muestra en la Tabla 4.14 el porcentaje de eficiencia coulúmbica

promedio usando como conexión Cobre.

Tabla 4-14 20Porcentaje de eficiencia coulúmbica de ARDs usando Cobre

Tiempo

(horas)

DQO Alto,

Cobre

DQO Bajo,

Cobre

1 0,286 0,428

24 1,282 8,427

48 2,801 16,933

72 3,486 25,162

96 6,758 34,25

Como se puede observar en la tabla 4.14 (resaltado en amarillo) en el día 5 se alcanza su

máxima eficiencia coulúmbica siendo de 6,758% y 34,25% para DQO Alto y DQO

Bajo respectivamente. Según estudios previos, usando como sustrato fenol y un

consorcio de bacterias como la Geobacter Sp se ha llegado a una eficiencia coulúmbica

de 22,7% y una densidad de corriente de 0,012 mA/cm2 (Zhang Dongdong, 2016),

100

300

500

700

900

0 50 100 150

DQ

O (

mg/

L)

Tíiempo (horas)

Remoción de contaminantes, DQO Alto, Cobre

Muestra 1 (mg/L)

Muestra 2 (mg/L)

Muestra 3 (mg/L)

175

225

275

325

375

425

0 50 100 150D

QO

(m

g/L)

Tiempo (Horas)

Remoción de contaminantes, DQO Bajo, Cobre

Muestra 1(mg/L)

Muestra 2(mg/L)

Muestra 3(mg/L)

Figura 4.1020Remoción de contaminantes usando Cobre (a) DQO Alto, (b) DQO Bajo

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valores a los cuales en esta presente investigación se han alcanzado usando MFCs de

bajo costo y ARDs de la comunidad de Ubillus. En la figura 4.10 se muestra la

tendencia que se sigue cada día en la recuperación de electrones.

Figura 4.1121Porcentaje de eficiencia coulúmbica usando Ni-Ti a DQO Alto y DQO Bajo.

En la figura 4.11 se puede observar un comportamiento lineal (mientras más aumenta el

tiempo más aumenta la eficiencia coulúmbica), siendo la concentración inicial de DQO

bajo la que posee mayor pendiente, es decir en este hay mayor recuperación de

electrones con respecto al sustrato inicial; esto posiblemente se deba a que mientras la

intensidad de corriente disminuye mientras el tiempo aumenta y la variación de DQO

también comienza a disminuir, por ende es más eficiente la recuperación de electrones

como corriente eléctrica (densidad de corriente). Hay que tener en cuenta también que la

eficiencia coulúmbica depende de la interacción entre el área del electrodo con el

volumen de la muestra ya que al ser solo muestras de MFCs de 50 ml se aumenta la

interacción, los resultados de eficiencia coulúmbica son menores al aumentar la

concentración inicial de DQO, ya que la elevada concentración de materia orgánica

también puede afectar la transferencia de masa en los electrodos por acumulación de

biomasa en los ánodos.

4.1.3 Análisis y comparación de la degradación de ARDs usando MFCs

Para poder comprender cual arquitectura de las MFCs es más eficiente al momento de

degradar aguas residuales domésticas se realizó un análisis estadístico con un diseño de

2k

y para esto se muestra a continuación un diagrama de Pareto de la remoción de

contaminantes en las ARDs.

0

5

10

15

20

25

30

35

40

0 20 40 60 80 100 120

Efi

cie

nci

a C

ou

lúm

bic

a (%

)

Tiempo (Horas)

% Eficiencia Coulúmbica, Cobre

DQO Alto, Cobre

DQO bajo, Cobre

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46

Figura 4.1222Diagrama de Pareto para la degradación de ARDs usando MFCs.

Como se puede observar en la figura 4.12 existe un efecto positivo con respecto a la

variable tiempo, es decir mientras aumenta el tiempo aumenta el porcentaje de

degradación de las ARDs, mientras que la variable conexiones posee un efecto negativo

que no es significativo en la investigación, además la variable concentración inicial de

DQO también posee un efecto negativo en la remoción de contaminantes, es decir que

mientras disminuye la concentración de DQO inicial se disminuye el % de degradación

de las ARDs usando MFCs.

A continuación en la figura 4.13 se observa los efectos principales en la degradación de

ARDs usando MFCs y conexiones de alambre de Ni-Ti y Cobre.

Como se muestra en la figura 4.13 se observa en la variable tiempo un efecto positivo,

ya que mientras más se aumenta el tiempo el porcentaje de remoción alcanza valores de

hasta 60%, mientras que la variable conexiones no tiene efectos importantes la variable

concentración inicial de DQO alcanza hasta un 52% de remoción al usar concentración

inicial de DQO bajo.

Diagrama de Pareto Estandarizada para REMOCION DQO

0 4 8 12 16 20 24

Efecto estandarizado

BC

B:CONEXIONES

AB

AA

AC

C:DQO INICIAL

A:TIEMPO +-

TIEMPO

-1,0 1,0

CONEXIONES

-1,0 1,0

DQO INICIAL

-1,0 1,0

Gráfica de Efectos Principales para REMOCION DQO

16

26

36

46

56

66

RE

MO

CIO

N D

QO

Figura 4.1323Diagrama de efectos principales para la degradación de ARDs usando MFCs.

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47

Por último se ha realizado una función de predicción para teóricamente calcular en qué

momento se alcanza la máxima capacidad de remoción de contaminantes usando este

tipo de MFCs.

4.1.4 Análisis y comparación de la Eficiencia Coulúmbica de ARDs usando MFCs

Para poder comprender cual arquitectura de las MFCs es más eficiente al momento de

degradar aguas residuales domésticas se realizó un análisis estadístico con un diseño de

2k

y para esto se muestra a continuación un diagrama de Pareto de la Eficiencia

Coulúmbica en las ARDs usando MFCs.

Como se puede observar en la figura 4.14 existe un efecto positivo con respecto a las

variables concentración de DQO inicial y Tiempo, es decir mientras aumenta el tiempo

y la concentración de DQO aumenta el porcentaje de eficiencia coulúmbica de las

ARDs.

A continuación en la Figura 4.15 se observa los efectos principales en la degradación de

ARDs usando MFCs y conexiones de alambre de Ni-Ti y Cobre.

Figura 4.1525Diagrama de efectos principales para la eficiencia coulúmbica de ARDs

usando MFCs.

TIEMPO

-1,0 1,0

CONEXIONES

-1,0 1,0

DQO INICIAL

-1,0 1,0

Gráfica de Efectos Principales para EFICIENCIA C

0

5

10

15

20

25

EF

ICIE

NC

IA C

Diagrama de Pareto Estandarizada para EFICIENCIA C

0 2 4 6 8

Efecto estandarizado

AB

BC

AC

B:CONEXIONES

AA

A:TIEMPO

C:DQO INICIAL +-

Figura 4.1424Diagrama de Pareto para el porcentaje de eficiencia coulúmbica de ARDs usando MFCs

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Como se muestra en la figura 4.15 existe una mayor eficiencia coulúmbica al usar

conexión Ni-Ti (esta llega hasta una eficiencia de 20%), además al usar la concentración

inicial de DQO bajo se llega a una eficiencia de 25%, con respecto al tiempo se puede

ver una tendencia curva, es decir se llega al 17% de eficiencia al intervalo de tiempo

entre los días 3, 4 y 5.

Por último se ha realizado una función de predicción para teóricamente calcular en qué

momento se alcanza la máxima eficiencia coulúmbica usando este tipo de MFCs.

4.2 SEGUNDA ETAPA

En esta segunda etapa se procedió a evaluar la cantidad de biomasa obtenida en cada

MFCs, y a cuantificar el contenido de N, P y K (macroelementos).

CUANTIFICACIÓN Y EVALUACIÓN DE LA BIOMASA GENERADA POR EL

TRATAMIENTO DE ARDs USANDO MFCs.

4.2.1 Cuantificación de la Biomasa Microbiana.

Se obtuvo una cantidad de biomasa en unidades mg Biomasa/L ARDs usando MFCs

para cada variable, a continuación en la Tabla 4.15 se describen los resultados.

Tabla 4-1521Biomasa Generada expresada en (mg Biomasa/L ARDs) usando MFCs.

Ni-Ti Cobre

DQO Alto

(ppm)

DQO Bajo

(ppm)

DQO Alto

(ppm)

DQO Bajo

(ppm)

Muestra 1 328 292 308 272

Muestra 2 308 284 302 288

Muestra 3 316 276 312 250

Promedio 317,3 284 307,3 270

Como se puede observar en la Tabla 4.15 con una concentración de DQO alta existe

más cantidad de biomasa generada, esto se debe posiblemente a que a esta

concentración de DQO inicial existe más cantidad de sustrato para oxidar, por ende

además que las bacterias generan un mayor potencial, tienden a llegar a la muerte

celular después del proceso electroquímico recolectándose en la superficie de las MFCs

como biomasa.

A continuación en la figura 4.16 se muestra un diagrama de barras de la concentración

de biomasa generada en el tratamiento de ARDs usando MFCs.

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49

Figura 4.1626Gráfica de barras de la concentración (ppmˈs) de biomasa generada usando

MFCs.

Como se puede observar en la gráfica 4.16 se observa una similitud en los resultados

respecto a cada muestra analizada, siendo oportuno realizar un procedimiento de

comparación múltiple para determinar cuáles medias son significativamente diferentes

de otras.

Tabla 4-16 22Prueba de múltiples rangos de la concentración de biomasa generada.

Casos Media Grupos Homogéneos

DQO Bajo/Cobre 3 270,0 X

DQO Bajo/Ni-Ti 3 284,0 X

DQO Alto/Cobre 3 307,333 X

DQO Alto/Ni-Ti 3 317,333 X

Como se muestra en la Tabla 4.16 existen dos grupos homogéneos, constado este primer

grupo de las variables (DQO Bajo/Cobre y DQO Bajo/Ni-Ti), mientras que el segundo

grupo consta de las variables (DQO alto/Cobre y DQO Bajo/Ni-Ti); No existen

diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una

misma columna de X.

El método empleado actualmente para discriminar entre las medias es el procedimiento

de diferencia mínima significativa (LSD) de Fisher, con este método hay un riesgo del

5,0% al decir que cada par de medias es significativamente diferente, a continuación en

la figura 4.17 se muestra una gráfica de medias y LSD para la concentración de biomasa

generada usando MFCs.

0

50

100

150

200

250

300

350

DQO Alto/Ni-Ti DQO Bajo/Ni-Ti DQO Alto/Cobre DQO Bajo/Cobre

mg

Bio

mas

a/L

AR

Ds Concentración de Biomasa Generada

Muestra 1 Muestra 2 Muestra 3

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50

Figura 4.17 Gráfica de medias y de diferencia mínima significativa (LSD) para la

concentración de biomasa generada usando MFCs.

Como se puede observar en la figura 4.17 mediante la prueba de LSD no existe

diferencia significativa entre las muestras y variables, por lo que se procede a realizar

un promedio en la cuantificación de macronutrientes de la biomasa generada usando

MFCs.

4.2.2 Cuantificación de macronutrientes (N, P y K).

A continuación se observa la cantidad en promedio de macronutrientes obtenidos en la

biomasa microbiana.

Tabla 4-1623Promedio de la cuantificación de N, P y K expresado en unidades en mg

macronutrientes/kg biomasa usando MFCs.

Cuantificación

Macroelementos

mg N/ kg

biomasa

mg P/kg

biomasa

mg K/kg

biomasa

Ni-Ti/DQO Alto 231,936 13172,283 7680,117

Ni-Ti/DQO Bajo 229,382 10595,138 1627,228

Cobre/DQO Alto 352,383 32982,688 8506,704

Cobre/DQO Bajo 178,530 29939,33 2039,560

Como se puede observar en la Tabla 4.16 existe más cantidad de elementos a

concentración de DQO Alto y conexión de cobre.

Con respecto a la cuantificación de elementos, se puede ver una considerable cantidad

de fósforo en el tratamiento con MFCs, esto puede deberse posiblemente a su contenido

en las bacterias (materia celular) ya que estas tienen fosfolípidos; además se puede

observar una cantidad muy escaza de N en la biomasa, esto puede deberse a muchas

razones, el metabolismo microbiano, procesos de óxido-reducción en el tratamiento de

ARDs; y por último una cantidad apreciable de K propia de las ARDs y nutriente de las

bacterias.

mg

Bio

ma

sa

/L A

RD

s

DQO alto Ni-Ti DQO bajo Ni-Ti DQO alto Cobre DQO bajo Cobre

Medias y 95,0% de Fisher LSD

250

270

290

310

330

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51

Según (Roma, 2002) se entiende como Biofertilizante a “cualquier material natural que

contenga al menos cinco por ciento de uno o más de los tres nutrientes primarios (N,

P2O5, K2O)”, a continuación se muestran los siguientes factores de conversión:

Para Nitrógeno

Para Fósforo

Para Potasio

En la siguiente Tabla 4.17 se muestran los porcentajes de N, P2O5, K2O calculados de la

cuantificación de macronutrientes usando MFCs.

Tabla 4-17 24Porcentaje promedio de la cuantificación de N, P y K expresado en unidades %

N, % P2O5, % K2O.

% N % P2O5 % K2O

Ni-Ti/DQO Alto 0,023 1,317 0,768

Ni-Ti/DQO Bajo 0,023 1,06 0,163

Cobre/DQO Alto 0,035 3,298 0,851

Cobre/DQO Bajo 0,018 2,994 0,204

Como se puede observar en la tabla 4.17 (resaltado en amarillo) al evaluar celdas

armadas con concentración inicial de DQO alta y conexión de cobre se obtiene el mayor

porcentaje de N- P2O5-K2O siendo este de 0,035%, 3.298% y 0.851% respectivamente,

valores que a pesar de ser bajos con respecto a los necesarios para ser considerados

como “biofertilizantes” son rica fuente de fósforo, y que además se han obtenido al usar

esta tecnología nueva y de bajo costo.

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52

CAPITULO V

5. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES

5.1 Conclusiones

Con respecto a la evaluación de la biomasa generada el contenido de N, P y K más

alto es a partir de DQO alto usando como conexión alambre de cobre, siendo esta

biomasa con un contenido de nitrógeno de 352,38 mg N/kg biomasa, con respecto

al fósforo de 32982,66 mg P/kg biomasa y potasio de 8506.7 mg K/kg biomasa

demostrándose así que este tipo de tratamiento es una buena fuente de fósforo.

De acuerdo al contenido de N, P y K de la biomasa generada esta se podría usar

como aditivo de abono agrícola, tomando en cuenta que los requerimientos de N, P

y K en las plantas tiene que ser al menos del 5% en N- P2O5-K2O, en esta

investigación fue de 0,035%, 3.298% y 0.851% respectivamente.

Es factible utilizar MFCs para degradar agua residual doméstica de la planta de

tratamiento del barrio Ubillus ubicado en la Parroquia de Pintag en el Distrito

Metropolitano de Quito obteniéndose un porcentaje de remoción de contaminantes

(remoción de DQO) de 77% en DQO alto (iniciando con una concentración inicial

de descarga de DQO de 778 mg/L) y de 44,58% en DQO bajo (iniciando con una

concentración inicial de descarga de DQO de 371,23 mg/L); además se obtiene en

promedio una concentración final de DQO en el tratamiento de ARDs de 178,89

mg/L los cuales con respecto a la “Norma de Calidad Ambiental y de descarga de

efluentes: recurso agua” entran dentro del límite permisible para poder descargar

este tipo de aguas a los efluentes naturales.

Se ha demostrado que las mejores condiciones para la extracción de energía

eléctrica de las MFCs son de 34,25% en eficiencia coulúmbica usando DQO/Bajo y

Cobre; 24,388 mW/m2 en densidad de potencia usando DQO/Alto y Ni-Ti y 548

mV en producción de potencial usando DQO/Alto y Ni-Ti, siendo estos los mejores

valores.

Los mejores resultados con respecto a la cuantificación de biomasa fueron a DQO

alto y alambre de Ni-Ti con una concentración en promedio de 317,33 mg/L ARDs

y de 284 mg/L ARDs usando DQO/Bajo y Ni-Ti. Demostrándose que la mejor

concentración de biomasa se obtiene al usar DQO/Alto.

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53

5.2 Recomendaciones

Con respecto a la arquitectura de las MFCs probar nuevos materiales, como

material de plástico (PVC), distintos tipos de membranas intercambiadoras de

protones, entre otras.

Utilizar catalizadores reductores de oxígeno en el cátodo para posteriores

investigaciones usando MFCs en el tratamiento de ARDs.

Con respecto al ensamblaje de las MFCs se recomienda cerrar el circuito de la

MFC de la manera más efectiva con la resistencia externa adecuada ya que la

pérdida de electrones en un intervalo de tiempo prolongado afectará a la

generación de electricidad en cada MFC, con respecto a la degradación de DQO

se recomienda al medir el DQO usar una misma solución ácida y digestora en

toda la experimentación, ya que la mínima variación en esta preparación afecta

notablemente los valores de DQO.

Estudiar multímetros con tarjetas electrónicas para poder ver el comportamiento

en tiempo real de cada MFC.

Realizar un análisis de carbono total (TOC) en la biomasa generada en el

tratamiento de ARDs usando MFCs.

En el proceso de experimentación, el montaje de MFCs tiende a ser crucial, ya

que se pretende trabajar en un ambiente anaerobio, por lo tanto se recomienda

usar gas CO2 en flujo constante por alrededor de 3 minutos en la cámara anódica

antes del ensamblaje de las MFCs clásicas.

Además, con respecto a la cuantificación de la biomasa generada, se recomienda

secar en la estufa a 90°C para eliminar la humedad, y realizar los análisis en un

tiempo de espera máximo de 3 días, ya que después de este tiempo la

composición inicial de biomasa varia por la presencia de aire en el ambiente.

Realizar un estudio de bioabsorcion in vitro de la biomasa cuantificada para

estudiar su comportamiento en un suelo específico.

Realizar un estudio microbiológico de las ARDs previa experimentación con

MFCs.

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56

ANEXOS

Anexo A Esquema Causa-Efecto

Descarga de ARDs sin

tratamiento.

Elevado costo de

abonos agrícolas

Cultivos con

poca calidad

Menos ingreso

económico con

respecto a la

agricultura

Cultivos de

pobre calidad Poco uso de abonos,

deficiencia de

nutrientes para la

planta

Contaminación de

efluentes Naturales

Contaminación

del Suelo

Pobre calidad del

suelo

Contaminación

del Agro

Elevado costo para

tratamiento de ARDs

Descarga sin

tratamiento

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57

Anexo B Diagrama de Flujo (Parte Experimental)

RECOLECTARE1, I1

FILTRARD1, D2

PREPARAR ELECTRODOS

E2, I2

PREPARAR CELDASD3,D4,D5 D6,I3,E3

ANALIZAR CELDAS

RECOLECTAR BIOMASA

A

I4,E4

I5

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58

A

TRATAMIENTOI5, E6

CUANTIFICACION I6, E7

ESPECIFICACIONES INDICACIONES MATERIALES

E1 Agua Residual

Doméstica Parroquia de

Pintac

E2 Electrodos de Grafito

E3 Agua residual en

ambiente anaerobio

E4 Producción de

Bioelectricidad

E5 De Cada MFC

E6 Pretratamiento Biomasa

obtenida por MFCs

E7 Métodos físicos y/o

químicos

I1 Muestreo, Recolección.

I2 tratamiento, Alambres

de Ni-Ti.

I3 Armar celdas

I4 Análisis de DQO en

cada MFC

I5 Biomasa Obtenida en el

Tratamiento usando MFCs

I6 Cuantificación N, K, P.

D1 Embudo

D2 Gasa

D3 Matraz (50 ml)

D4 Puente Salino

D5 Tapones

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59

Anexo C Instrumento de Recolección de Datos.

Comportamiento de Degradación del Agua Residual Doméstica.

Día Lunes Martes Miércoles Jueves Viernes

Ppm DQO

DQO ALTO

DQO BAJO

Voltaje Producido por MFCs

Días

MFCs Lunes

(mV)

Martes

(mV)

Miércoles

(mV)

Jueves

(mV)

Viernes

(mV)

DQO

ALTO

DQO

BAJO

Biomasa Generada por MFCs

MFCs Peso (mg)

DQO ALTO

DQO BAJO

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60

Cuantificación de N, K, P de la biomasa Producida por MFCs

N (mg/Kg muestra) K (mg/Kg muestra) P (mg/Kg muestra)

DQO

BAJO

DQO

ALTO

Anexo D Validación DQO

Se procedió a realizar una calibración lineal con residuos

Tabla 5-1 Valores curva de calibración

KHF

(mg/L)

Abs KHF

(mg/L)

Abs KHF

(mg/L)

Abs

100 0,019 400 0,182 700 0,198

100 0,057 400 0,154 800 0,254

100 0,024 400 0,074 800 0,337

100 -0,051 500 0,167 800 0,279

200 0,058 500 0,178 800 0,228

200 0,12 500 0,103 900 0,329

200 0,047 600 0,2 900 0,359

300 0,097 600 0,194 900 0,294

300 0,125 600 0,184 900 0,261

300 0,065 600 0,143 1000 0,341

300 0,022 700 0,316 1000 0,337

400 0,153 700 0,244 1000 0,311

Análisis de la regresión lineal

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61

Curva de calibración

Prueba no paramétrica de rachas

mediana= 0,003610866

n= 37 datos

n1= 19

por debajo de la

mediana

n2= 18

por encima de la

mediana

Rachas: Observadas

mínimo

aceptable

máximo

aceptable

18 13 126

Resultado:

LOS RESIDUOS SON ALEATORIOS, LOS DATOS SI SE

AJUSTAN A LA RECTA

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ANEXO E Tablas de Polarización

Tabla 5-2

Celda: MFC Ni-Ti

DQO: Alto

Muestra: 1

Área ánodo: 0,94 cm2

Potencial (mV) Intensidad de corriente (mA) Densidad de corriente (mA/cm2) Densidad de Potencia (mW/m2)

Resistencia

(Ω) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h)

100 0 1 1 1 1 0 0,01 0,01 0,01 0,01 0 0,011 0,011 0,011 0,011 0 0,106 0,106 0,106 0,106

300 1 4 3 4 2 0,0033 0,0133 0,01 0,0133 0,0067 0,004 0,014 0,011 0,014 0,007 0,035 0,567 0,319 0,567 0,142

510 2 8 6 6 7 0,0039 0,0157 0,0118 0,0118 0,0137 0,004 0,017 0,013 0,013 0,015 0,083 1,335 0,751 0,751 1,022

820 3 12 10 10 11 0,0037 0,0146 0,0122 0,0122 0,0134 0,004 0,016 0,013 0,013 0,014 0,117 1,868 1,297 1,297 1,57

1500 5 21 17 18 18 0,0033 0,014 0,0113 0,012 0,012 0,004 0,015 0,012 0,013 0,013 0,177 3,128 2,05 2,298 2,298

2200 8 30 24 27 28 0,0036 0,0136 0,0109 0,0123 0,0127 0,004 0,015 0,012 0,013 0,014 0,309 4,352 2,785 3,525 3,791

3000 9 40 33 36 37 0,003 0,0133 0,011 0,012 0,0123 0,003 0,014 0,012 0,013 0,013 0,287 5,674 3,862 4,596 4,855

5100 18 64 51 56 56 0,0035 0,0125 0,01 0,011 0,011 0,004 0,013 0,011 0,012 0,012 0,676 8,544 5,426 6,542 6,542

10000 39 109 87 92 91 0,0039 0,0109 0,0087 0,0092 0,0091 0,004 0,012 0,009 0,01 0,01 1,618 12,639 8,052 9,004 8,81

15000 63 139 118 122 119 0,0042 0,0093 0,0079 0,0081 0,0079 0,004 0,01 0,008 0,009 0,008 2,815 13,703 9,875 10,556 10,043

20000 77 150 135 138 134 0,0039 0,0075 0,0068 0,0069 0,0067 0,004 0,008 0,007 0,007 0,007 3,154 11,968 9,694 10,13 9,551

51000 143 253 202 197 190 0,0028 0,005 0,004 0,0039 0,0037 0,003 0,005 0,004 0,004 0,004 4,266 13,352 8,511 8,095 7,53

1000000 220 274 237 228 216 0,0002 0,0003 0,0002 0,0002 0,0002 0 0 0 0 0 0,515 0,799 0,598 0,553 0,496

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63

Tabla 5-3

Celda: MFC Ni-Ti

DQO: Alto

Muestra: 2

Área ánodo: 0,94 cm2

Potencial (mV) Intensidad de corriente (mA) Densidad de corriente (mA/cm2) Densidad de Potencia (mW/m2)

Resistencia

(Ω) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h)

100 2 3 2 1 1 0,0200 0,0300 0,0200 0,0100 0,0100 0,021 0,032 0,021 0,011 0,011 0,426 0,957 0,426 0,106 0,106

300 8 8 4 5 4 0,0267 0,0267 0,0133 0,0167 0,0133 0,028 0,028 0,014 0,018 0,014 2,270 2,270 0,567 0,887 0,567

510 14 14 9 9 7 0,0275 0,0275 0,0176 0,0176 0,0137 0,029 0,029 0,019 0,019 0,015 4,088 4,088 1,690 1,690 1,022

820 21 22 14 14 11 0,0256 0,0268 0,0171 0,0171 0,0134 0,027 0,029 0,018 0,018 0,014 5,721 6,279 2,543 2,543 1,570

1500 41 37 15 24 20 0,0273 0,0247 0,0100 0,0160 0,0133 0,029 0,026 0,011 0,017 0,014 11,922 9,709 1,596 4,085 2,837

2200 58 52 22 33 28 0,0264 0,0236 0,0100 0,0150 0,0127 0,028 0,025 0,011 0,016 0,014 16,267 13,075 2,340 5,266 3,791

3000 71 65 30 40 38 0,0237 0,0217 0,0100 0,0133 0,0127 0,025 0,023 0,011 0,014 0,013 17,876 14,982 3,191 5,674 5,121

5100 112 92 50 55 57 0,0220 0,0180 0,0098 0,0108 0,0112 0,023 0,019 0,010 0,011 0,012 26,166 17,655 5,215 6,310 6,777

10000 180 131 66 84 92 0,0180 0,0131 0,0066 0,0084 0,0092 0,019 0,014 0,007 0,009 0,010 34,468 18,256 4,634 7,506 9,004

15000 237 157 73 98 114 0,0158 0,0105 0,0049 0,0065 0,0076 0,017 0,011 0,005 0,007 0,008 39,836 17,482 3,779 6,811 9,217

20000 274 151 88 108 131 0,0137 0,0076 0,0044 0,0054 0,0066 0,015 0,008 0,005 0,006 0,007 39,934 12,128 4,119 6,204 9,128

51000 367 207 122 126 177 0,0072 0,0041 0,0024 0,0025 0,0035 0,008 0,004 0,003 0,003 0,004 28,095 8,938 3,105 3,312 6,535

1000000 425 223 143 137 197 0,0004 0,0002 0,0001 0,0001 0,0002 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 1,922 0,529 0,218 0,200 0,413

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64

Tabla 5-4

Celda: MFC Ni-Ti

DQO: Alto

Muestra: 3

Área ánodo: 0,94 cm2

Potencial (mV) Intensidad de corriente (mA) Densidad de corriente (mA/cm2) Densidad de Potencia (mW/m2)

Resistencia

(Ω) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h)

100 3 2 2 1 1 0,0300 0,0200 0,0200 0,0100 0,0100 0,032 0,021 0,021 0,011 0,011 0,957 0,426 0,426 0,106 0,106

300 8 5 6 5 3 0,0267 0,0167 0,0200 0,0167 0,0100 0,028 0,018 0,021 0,018 0,011 2,270 0,887 1,277 0,887 0,319

510 14 9 10 9 9 0,0275 0,0176 0,0196 0,0176 0,0176 0,029 0,019 0,021 0,019 0,019 4,088 1,690 2,086 1,690 1,690

820 22 15 16 14 10 0,0268 0,0183 0,0195 0,0171 0,0122 0,029 0,019 0,021 0,018 0,013 6,279 2,919 3,321 2,543 1,297

1500 39 25 26 25 15 0,0260 0,0167 0,0173 0,0167 0,0100 0,028 0,018 0,018 0,018 0,011 10,787 4,433 4,794 4,433 1,596

2200 55 36 38 34 32 0,0250 0,0164 0,0173 0,0155 0,0145 0,027 0,017 0,018 0,016 0,015 14,628 6,267 6,983 5,590 4,952

3000 74 48 48 40 35 0,0247 0,0160 0,0160 0,0133 0,0117 0,026 0,017 0,017 0,014 0,012 19,418 8,170 8,170 5,674 4,344

5100 104 71 70 60 59 0,0204 0,0139 0,0137 0,0118 0,0116 0,022 0,015 0,015 0,013 0,012 22,562 10,515 10,221 7,509 7,261

10000 165 107 103 77 75 0,0165 0,0107 0,0103 0,0077 0,0075 0,018 0,011 0,011 0,008 0,008 28,963 12,180 11,286 6,307 5,984

15000 196 129 121 93 94 0,0131 0,0086 0,0081 0,0062 0,0063 0,014 0,009 0,009 0,007 0,007 27,245 11,802 10,384 6,134 6,267

20000 232 146 135 115 111 0,0116 0,0073 0,0068 0,0058 0,0056 0,012 0,008 0,007 0,006 0,006 28,630 11,338 9,694 7,035 6,554

51000 312 189 165 143 137 0,0061 0,0037 0,0032 0,0028 0,0027 0,007 0,004 0,003 0,003 0,003 20,305 7,451 5,679 4,266 3,915

1000000 327 209 178 155 148 0,0003 0,0002 0,0002 0,0002 0,0001 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 1,138 0,465 0,337 0,256 0,233

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65

Tabla 5-5

Celda: MFC Ni-Ti

DQO: Bajo

Muestra: 1

Área ánodo: 0,94 cm2

Potencial (mV) Intensidad de corriente (mA) Densidad de corriente (mA/cm2) Densidad de Potencia (mW/m2)

Resistencia

(Ω) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h)

100 3 3 2 1 1 0,0300 0,0300 0,0200 0,0100 0,0100 0,032 0,032 0,021 0,011 0,011 0,957 0,957 0,426 0,106 0,106

300 8 8 6 5 3 0,0267 0,0267 0,0200 0,0167 0,0100 0,028 0,028 0,021 0,018 0,011 2,270 2,270 1,277 0,887 0,319

510 18 14 11 9 6 0,0353 0,0275 0,0216 0,0176 0,0118 0,038 0,029 0,023 0,019 0,013 6,758 4,088 2,524 1,690 0,751

820 29 22 21 14 9 0,0354 0,0268 0,0256 0,0171 0,0110 0,038 0,029 0,027 0,018 0,012 10,911 6,279 5,721 2,543 1,051

1500 49 37 34 24 15 0,0327 0,0247 0,0227 0,0160 0,0100 0,035 0,026 0,024 0,017 0,011 17,028 9,709 8,199 4,085 1,596

2200 68 52 51 33 21 0,0309 0,0236 0,0232 0,0150 0,0095 0,033 0,025 0,025 0,016 0,010 22,360 13,075 12,577 5,266 2,132

3000 88 65 60 40 29 0,0293 0,0217 0,0200 0,0133 0,0097 0,031 0,023 0,021 0,014 0,010 27,461 14,982 12,766 5,674 2,982

5100 130 92 91 55 44 0,0255 0,0180 0,0178 0,0108 0,0086 0,027 0,019 0,019 0,011 0,009 35,252 17,655 17,274 6,310 4,038

10000 194 131 128 84 61 0,0194 0,0131 0,0128 0,0084 0,0061 0,021 0,014 0,014 0,009 0,006 40,038 18,256 3,000 7,506 3,000

15000 237 157 143 98 72 0,0158 0,0105 0,0095 0,0065 0,0048 0,017 0,011 0,010 0,007 0,005 39,836 17,482 14,503 6,811 3,677

20000 265 151 160 108 79 0,0133 0,0076 0,0080 0,0054 0,0040 0,014 0,008 0,009 0,006 0,004 37,354 12,128 13,617 6,204 3,320

51000 337 207 188 126 97 0,0066 0,0041 0,0037 0,0025 0,0019 0,007 0,004 0,004 0,003 0,002 23,690 8,938 7,373 3,312 1,963

1000000 368 223 214 137 105 0,0004 0,0002 0,0002 0,0001 0,0001 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 1,441 0,529 0,487 0,200 0,117

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66

Tabla 5-6

Celda: MFC Ni-Ti

DQO: Bajo

Muestra: 2

Área ánodo: 0,94 cm2

Potencial (mV) Intensidad de corriente (mA) Densidad de corriente (mA/cm2) Densidad de Potencia (mW/m2)

Resistencia

(Ω) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h)

100 1 2 1 1 1 0,0100 0,0200 0,0100 0,0100 0,0100 0,011 0,021 0,011 0,011 0,011 0,106 0,426 0,106 0,106 0,106

300 3 6 3 3 2 0,0100 0,0200 0,0100 0,0100 0,0067 0,011 0,021 0,011 0,011 0,007 0,319 1,277 0,319 0,319 0,142

510 5 10 6 9 6 0,0098 0,0196 0,0118 0,0176 0,0118 0,010 0,021 0,013 0,019 0,013 0,521 2,086 0,751 1,690 0,751

820 9 16 10 10 8 0,0110 0,0195 0,0122 0,0122 0,0098 0,012 0,021 0,013 0,013 0,010 1,051 3,321 1,297 1,297 0,830

1500 16 26 13 15 14 0,0107 0,0173 0,0087 0,0100 0,0093 0,011 0,018 0,009 0,011 0,010 1,816 4,794 1,199 1,596 1,390

2200 23 38 24 32 28 0,0105 0,0173 0,0109 0,0145 0,0127 0,011 0,018 0,012 0,015 0,014 2,558 6,983 2,785 4,952 3,791

3000 31 48 31 35 31 0,0103 0,0160 0,0103 0,0117 0,0103 0,011 0,017 0,011 0,012 0,011 3,408 8,170 3,408 4,344 3,408

5100 50 70 49 59 54 0,0098 0,0137 0,0096 0,0116 0,0106 0,010 0,015 0,010 0,012 0,011 5,215 10,221 5,008 7,261 6,083

10000 86 103 78 85 81 0,0086 0,0103 0,0078 0,0085 0,0081 0,009 0,011 0,008 0,009 0,009 7,868 11,286 6,472 7,686 6,980

15000 118 121 98 94 90 0,0079 0,0081 0,0065 0,0063 0,0060 0,008 0,009 0,007 0,007 0,006 9,875 10,384 6,811 6,267 5,745

20000 141 135 114 111 104 0,0071 0,0068 0,0057 0,0056 0,0052 0,008 0,007 0,006 0,006 0,006 10,575 9,694 6,913 6,554 5,753

51000 228 165 155 137 131 0,0045 0,0032 0,0030 0,0027 0,0026 0,005 0,003 0,003 0,003 0,003 10,844 5,679 5,011 3,915 3,580

1000000 283 178 172 148 139 0,0003 0,0002 0,0002 0,0001 0,0001 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,852 0,337 0,315 0,233 0,206

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67

Tabla 5-7

Celda: MFC Ni-Ti

DQO: Bajo

Muestra: 3

Área ánodo: 0,94 cm2

Potencial (mV) Intensidad de corriente (mA) Densidad de corriente (mA/cm2) Densidad de Potencia (mW/m2)

Resistencia

(Ω) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h)

100 1 0 0 1 0 0,0100 0,0000 0,0000 0,0100 0,0000 0,011 0,000 0,000 0,011 0,000 0,106 0,000 0,000 0,106 0,000

300 2 1 1 2 1 0,0067 0,0033 0,0033 0,0067 0,0033 0,007 0,004 0,004 0,007 0,004 0,142 0,035 0,035 0,142 0,035

510 3 3 2 4 3 0,0059 0,0059 0,0039 0,0078 0,0059 0,006 0,006 0,004 0,008 0,006 0,188 0,188 0,083 0,334 0,188

820 5 6 3 5 4 0,0061 0,0073 0,0037 0,0061 0,0049 0,006 0,008 0,004 0,006 0,005 0,324 0,467 0,117 0,324 0,208

1500 9 10 6 9 8 0,0060 0,0067 0,0040 0,0060 0,0053 0,006 0,007 0,004 0,006 0,006 0,574 0,709 0,255 0,574 0,454

2200 12 15 10 14 13 0,0055 0,0068 0,0045 0,0064 0,0059 0,006 0,007 0,005 0,007 0,006 0,696 1,088 0,484 0,948 0,817

3000 19 21 14 19 17 0,0063 0,0070 0,0047 0,0063 0,0057 0,007 0,007 0,005 0,007 0,006 1,280 1,564 0,695 1,280 1,025

5100 30 32 20 30 28 0,0059 0,0063 0,0039 0,0059 0,0055 0,006 0,007 0,004 0,006 0,006 1,877 2,136 0,834 1,877 1,635

10000 52 56 42 52 51 0,0052 0,0056 0,0042 0,0052 0,0051 0,006 0,006 0,004 0,006 0,005 2,877 3,336 1,877 2,877 2,767

15000 71 76 57 71 68 0,0047 0,0051 0,0038 0,0047 0,0045 0,005 0,005 0,004 0,005 0,005 3,575 4,096 2,304 3,575 3,279

20000 88 92 63 86 79 0,0044 0,0046 0,0032 0,0043 0,0040 0,005 0,005 0,003 0,005 0,004 4,119 4,502 2,111 3,934 3,320

51000 143 150 130 139 128 0,0028 0,0029 0,0025 0,0027 0,0025 0,003 0,003 0,003 0,003 0,003 4,266 4,693 3,525 4,030 3,418

1000000 199 184 166 142 137 0,0002 0,0002 0,0002 0,0001 0,0001 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,421 0,360 0,293 0,215 0,200

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68

Tabla 5-8

Celda: MFC Cobre

DQO: Alto

Muestra: 1

Área ánodo: 0,94 cm2

Potencial (mV) Intensidad de corriente (mA) Densidad de corriente (mA/cm2) Densidad de Potencia (mW/m2)

Resistencia

(Ω) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h)

100 0 0 0 0 0 0,0000 0,0000 0,0000 0,0000 0,0000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000

300 1 1 1 1 1 0,0033 0,0033 0,0033 0,0033 0,0033 0,004 0,004 0,004 0,004 0,004 0,035 0,035 0,035 0,035 0,035

510 3 2 2 2 2 0,0059 0,0039 0,0039 0,0039 0,0039 0,006 0,006 0,004 0,004 0,004 0,188 0,083 0,083 0,083 0,083

820 4 3 3 3 3 0,0049 0,0037 0,0037 0,0037 0,0037 0,005 0,008 0,004 0,004 0,004 0,208 0,117 0,117 0,117 0,117

1500 5 6 4 4 4 0,0033 0,0040 0,0027 0,0027 0,0027 0,004 0,007 0,003 0,003 0,003 0,177 0,255 0,113 0,113 0,113

2200 7 8 5 6 6 0,0032 0,0036 0,0023 0,0027 0,0027 0,003 0,007 0,002 0,003 0,003 0,237 0,309 0,121 0,174 0,174

3000 9 11 7 7 8 0,0030 0,0037 0,0023 0,0023 0,0027 0,003 0,007 0,002 0,002 0,003 0,287 0,429 0,174 0,174 0,227

5100 15 19 15 12 11 0,0029 0,0037 0,0029 0,0024 0,0022 0,003 0,007 0,003 0,003 0,002 0,469 0,753 0,469 0,300 0,252

10000 19 35 30 27 16 0,0019 0,0035 0,0030 0,0027 0,0016 0,002 0,006 0,003 0,003 0,002 0,384 1,303 3,000 0,776 3,000

15000 44 49 38 34 18 0,0029 0,0033 0,0025 0,0023 0,0012 0,003 0,005 0,003 0,002 0,001 1,373 1,703 1,024 0,820 0,230

20000 59 63 49 45 24 0,0030 0,0032 0,0025 0,0023 0,0012 0,003 0,005 0,003 0,002 0,001 1,852 2,111 1,277 1,077 0,306

51000 128 111 110 101 98 0,0025 0,0022 0,0022 0,0020 0,0019 0,003 0,003 0,002 0,002 0,002 3,418 2,570 2,524 2,128 2,003

1000000 195 173 146 135 134 0,0002 0,0002 0,0001 0,0001 0,0001 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,405 0,318 0,227 0,194 0,191

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69

Tabla 5-9

Celda: MFC Cobre

DQO: Alto

Muestra: 2

Área ánodo: 0,94 cm2

Potencial (mV) Intensidad de corriente (mA) Densidad de corriente (mA/cm2) Densidad de Potencia (mW/m2)

Resistencia

(Ω) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h)

100 0 1 1 0 0 0,0000 0,0100 0,0100 0,0000 0,0000 0,000 0,011 0,011 0,000 0,000 0,000 0,106 0,106 0,000 0,000

300 1 2 2 1 1 0,0033 0,0067 0,0067 0,0033 0,0033 0,004 0,007 0,007 0,004 0,004 0,035 0,142 0,142 0,035 0,035

510 2 3 3 2 2 0,0039 0,0059 0,0059 0,0039 0,0039 0,004 0,006 0,006 0,004 0,004 0,083 0,188 0,188 0,083 0,083

820 4 5 5 4 3 0,0049 0,0061 0,0061 0,0049 0,0037 0,005 0,006 0,006 0,005 0,004 0,208 0,324 0,324 0,208 0,117

1500 7 10 9 7 5 0,0047 0,0067 0,0060 0,0047 0,0033 0,005 0,007 0,006 0,005 0,004 0,348 0,709 0,574 0,348 0,177

2200 11 11 13 11 10 0,0050 0,0050 0,0059 0,0050 0,0045 0,005 0,005 0,006 0,005 0,005 0,585 0,585 0,817 0,585 0,484

3000 14 15 18 15 14 0,0047 0,0050 0,0060 0,0050 0,0047 0,005 0,005 0,006 0,005 0,005 0,695 0,798 1,149 0,798 0,695

5100 24 24 30 24 21 0,0047 0,0047 0,0059 0,0047 0,0041 0,005 0,005 0,006 0,005 0,004 1,202 1,202 1,877 1,202 0,920

10000 47 52 52 47 42 0,0047 0,0052 0,0052 0,0047 0,0042 0,005 0,006 0,006 0,005 0,004 2,350 2,877 2,877 2,350 1,877

15000 66 66 71 65 60 0,0044 0,0044 0,0047 0,0043 0,0040 0,005 0,005 0,005 0,005 0,004 3,089 3,089 3,575 2,996 2,553

20000 81 81 89 80 72 0,0041 0,0041 0,0045 0,0040 0,0036 0,004 0,004 0,005 0,004 0,004 3,490 3,490 4,213 3,404 2,757

51000 170 167 149 134 130 0,0033 0,0033 0,0029 0,0026 0,0025 0,004 0,003 0,003 0,003 0,003 6,028 5,817 4,631 3,746 3,525

1000000 241 214 174 157 148 0,0002 0,0002 0,0002 0,0002 0,0001 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,618 0,487 0,322 0,262 0,233

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70

Tabla 5-10

Celda: MFC Cobre

DQO: Alto

Muestra: 3

Área ánodo: 0,94 cm2

Potencial (mV) Intensidad de corriente (mA) Densidad de corriente (mA/cm2) Densidad de Potencia (mW/m2)

Resistencia

(Ω) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h)

100 0 1 1 1 1 0,0000 0,0100 0,0100 0,0100 0,0100 0,000 0,011 0,011 0,011 0,011 0,000 0,106 0,106 0,106 0,106

300 1 2 2 2 2 0,0033 0,0067 0,0067 0,0067 0,0067 0,004 0,007 0,007 0,007 0,007 0,035 0,142 0,142 0,142 0,142

510 2 3 3 4 3 0,0039 0,0059 0,0059 0,0078 0,0059 0,004 0,006 0,006 0,008 0,006 0,083 0,188 0,188 0,334 0,188

820 4 6 5 5 4 0,0049 0,0073 0,0061 0,0061 0,0049 0,005 0,008 0,006 0,006 0,005 0,208 0,467 0,324 0,324 0,208

1500 7 10 9 9 8 0,0047 0,0067 0,0060 0,0060 0,0053 0,005 0,007 0,006 0,006 0,006 0,348 0,709 0,574 0,574 0,454

2200 10 12 11 14 11 0,0045 0,0055 0,0050 0,0064 0,0050 0,005 0,006 0,005 0,007 0,005 0,484 0,696 0,585 0,948 0,585

3000 14 16 13 19 14 0,0047 0,0053 0,0043 0,0063 0,0047 0,005 0,006 0,005 0,007 0,005 0,695 0,908 0,599 1,280 0,695

5100 23 25 18 30 28 0,0045 0,0049 0,0035 0,0059 0,0055 0,005 0,005 0,004 0,006 0,006 1,103 1,304 0,676 1,877 1,635

10000 44 54 36 52 48 0,0044 0,0054 0,0036 0,0052 0,0048 0,005 0,006 0,004 0,006 0,005 2,060 3,102 1,379 2,877 2,451

15000 65 68 79 71 70 0,0043 0,0045 0,0053 0,0047 0,0047 0,005 0,005 0,006 0,005 0,005 2,996 3,279 4,426 3,575 3,475

20000 84 92 92 86 74 0,0042 0,0046 0,0046 0,0043 0,0037 0,004 0,005 0,005 0,005 0,004 3,753 4,502 4,502 3,934 2,913

51000 178 174 121 139 125 0,0035 0,0034 0,0024 0,0027 0,0025 0,004 0,004 0,003 0,003 0,003 6,609 6,315 3,054 4,030 3,259

1000000 266 199 143 142 132 0,0003 0,0002 0,0001 0,0001 0,0001 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,753 0,421 0,218 0,215 0,185

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71

Tabla 5-11

Celda: MFC Cobre

DQO: Bajo

Muestra: 1

Área ánodo: 0,94 cm2

Potencial (mV) Intensidad de corriente (mA) Densidad de corriente (mA/cm2) Densidad de Potencia (mW/m2)

Resistencia

(Ω) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h)

100 3 1 1 1 1 0,0300 0,0100 0,0100 0,0100 0,0100 0,032 0,011 0,011 0,011 0,011 0,957 0,106 0,106 0,106 0,106

300 4 2 2 2 2 0,0133 0,0067 0,0067 0,0067 0,0067 0,014 0,007 0,007 0,007 0,007 0,567 0,142 0,142 0,142 0,142

510 8 4 5 3 4 0,0157 0,0078 0,0098 0,0059 0,0078 0,017 0,008 0,010 0,006 0,008 1,335 0,334 0,521 0,188 0,334

820 12 9 7 5 7 0,0146 0,0110 0,0085 0,0061 0,0085 0,016 0,012 0,009 0,006 0,009 1,868 1,051 0,636 0,324 0,636

1500 25 21 10 9 9 0,0167 0,0140 0,0067 0,0060 0,0060 0,018 0,015 0,007 0,006 0,006 4,433 3,128 0,709 0,574 0,574

2200 37 32 18 15 13 0,0168 0,0145 0,0082 0,0068 0,0059 0,018 0,015 0,009 0,007 0,006 6,620 4,952 1,567 1,088 0,817

3000 47 40 25 21 25 0,0157 0,0133 0,0083 0,0070 0,0083 0,017 0,014 0,009 0,007 0,009 7,833 5,674 2,216 1,564 2,216

5100 71 63 41 37 37 0,0139 0,0124 0,0080 0,0073 0,0073 0,015 0,013 0,009 0,008 0,008 10,515 8,279 3,506 2,856 2,856

10000 103 91 55 50 55 0,0103 0,0091 0,0055 0,0050 0,0055 0,011 0,010 0,006 0,005 0,006 11,286 8,810 3,000 2,660 3,000

15000 124 114 71 66 56 0,0083 0,0076 0,0047 0,0044 0,0037 0,009 0,008 0,005 0,005 0,004 10,905 9,217 3,575 3,089 2,224

20000 139 132 83 80 72 0,0070 0,0066 0,0042 0,0040 0,0036 0,007 0,007 0,004 0,004 0,004 10,277 9,268 3,664 3,404 2,757

51000 162 152 94 91 93 0,0032 0,0030 0,0018 0,0018 0,0018 0,003 0,003 0,002 0,002 0,002 5,474 4,819 1,843 1,727 1,804

1000000 209 201 113 110 105 0,0002 0,0002 0,0001 0,0001 0,0001 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,465 0,430 0,136 0,129 0,117

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72

Tabla 5-12

Celda: MFC Cobre

DQO: Bajo

Muestra: 2

Área ánodo: 0,94 cm2

Potencial (mV) Intensidad de corriente (mA) Densidad de corriente (mA/cm2) Densidad de Potencia (mW/m2)

Resistencia

(Ω) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h)

100 0 1 0 0 0 0,0000 0,0100 0,0000 0,0000 0,011 0,000 0,011 0,000 0,000 0,000 0,000 0,106 0,000 0,000 0,000

300 1 2 1 0 1 0,0033 0,0067 0,0033 0,0000 0,007 0,004 0,007 0,004 0,000 0,004 0,035 0,142 0,035 0,000 0,035

510 2 4 3 1 5 0,0039 0,0078 0,0059 0,0020 0,008 0,004 0,008 0,006 0,002 0,010 0,083 0,334 0,188 0,021 0,521

820 4 5 4 2 8 0,0049 0,0061 0,0049 0,0024 0,009 0,005 0,006 0,005 0,003 0,010 0,208 0,324 0,208 0,052 0,830

1500 5 8 7 3 11 0,0033 0,0053 0,0047 0,0020 0,006 0,004 0,006 0,005 0,002 0,008 0,177 0,454 0,348 0,064 0,858

2200 8 10 9 4 15 0,0036 0,0045 0,0041 0,0018 0,006 0,004 0,005 0,004 0,002 0,007 0,309 0,484 0,392 0,077 1,088

3000 10 12 11 7 29 0,0033 0,0040 0,0037 0,0023 0,009 0,004 0,004 0,004 0,002 0,010 0,355 0,511 0,429 0,174 2,982

5100 18 18 17 11 40 0,0035 0,0035 0,0033 0,0022 0,008 0,004 0,004 0,004 0,002 0,008 0,676 0,676 0,603 0,252 3,338

10000 32 33 31 21 59 0,0032 0,0033 0,0031 0,0021 0,006 0,003 0,004 0,003 0,002 0,006 1,089 1,159 1,022 0,469 3,703

15000 46 41 38 30 61 0,0031 0,0027 0,0025 0,0020 0,004 0,003 0,003 0,003 0,002 0,004 1,501 1,192 1,024 0,638 2,639

20000 58 51 48 40 71 0,0029 0,0026 0,0024 0,0020 0,004 0,003 0,003 0,003 0,002 0,004 1,789 1,384 1,226 0,851 2,681

51000 90 111 104 76 96 0,0018 0,0022 0,0020 0,0015 0,002 0,002 0,002 0,002 0,002 0,002 1,690 2,570 2,256 1,205 1,922

1000000 153 147 137 130 112 0,0002 0,0001 0,0001 0,0001 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,249 0,230 0,200 0,180 0,133

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73

Tabla 5-13

Celda: MFC Cobre

DQO: Bajo

Muestra: 3

Área ánodo: 0,94 cm2

Potencial (mV) Intensidad de corriente (mA) Densidad de corriente (mA/cm2) Densidad de Potencia (mW/m2)

Resistencia

(Ω) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h) 1 (h) 24 (h) 48 (h) 72 (h) 96 (h)

100 3 2 2 1 1 0,0300 0,0200 0,0200 0,0100 0,0100 0,032 0,021 0,021 0,011 0,011 0,957 0,426 0,426 0,106 0,106

300 4 5 4 2 3 0,0133 0,0167 0,0133 0,0067 0,0100 0,014 0,018 0,014 0,007 0,011 0,567 0,887 0,567 0,142 0,319

510 7 7 6 4 4 0,0137 0,0137 0,0118 0,0078 0,0078 0,015 0,015 0,013 0,008 0,008 1,022 1,022 0,751 0,334 0,334

820 14 8 8 6 7 0,0171 0,0098 0,0098 0,0073 0,0085 0,018 0,010 0,010 0,008 0,009 2,543 0,830 0,830 0,467 0,636

1500 19 22 10 8 12 0,0127 0,0147 0,0067 0,0053 0,0080 0,013 0,016 0,007 0,006 0,009 2,560 3,433 0,709 0,454 1,021

2200 28 30 27 13 16 0,0127 0,0136 0,0123 0,0059 0,0073 0,014 0,015 0,013 0,006 0,008 3,791 4,352 3,525 0,817 1,238

3000 38 40 32 18 22 0,0127 0,0133 0,0107 0,0060 0,0073 0,013 0,014 0,011 0,006 0,008 5,121 5,674 3,631 1,149 1,716

5100 57 58 52 28 36 0,0112 0,0114 0,0102 0,0055 0,0071 0,012 0,012 0,011 0,006 0,008 6,777 7,017 5,640 1,635 2,703

10000 96 87 84 50 56 0,0096 0,0087 0,0084 0,0050 0,0056 0,010 0,009 0,009 0,005 0,006 9,804 8,052 7,506 2,660 3,336

15000 124 108 95 68 68 0,0083 0,0072 0,0063 0,0045 0,0045 0,009 0,008 0,007 0,005 0,005 10,905 8,272 6,401 3,279 3,279

20000 146 124 106 81 82 0,0073 0,0062 0,0053 0,0041 0,0041 0,008 0,007 0,006 0,004 0,004 11,338 8,179 5,977 3,490 3,577

51000 207 164 136 122 110 0,0041 0,0032 0,0027 0,0024 0,0022 0,004 0,003 0,003 0,003 0,002 8,938 5,610 3,858 3,105 2,524

1000000 239 169 166 131 126 0,0002 0,0002 0,0002 0,0001 0,0001 0,000 0,000 0,000 0,000 0,000 0,608 0,304 0,293 0,183 0,169

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74

Anexos F Curvas de polarización

MUESTRAS DQO ALTO / NITI

Muestra 1

Figura 4.4 Curva de polarización (densidad de potencia vs densidad de corriente),

muestra 1, Ni-Ti a DQO Alto.

Muestra 2

Figura 4.5 Curva de (a) potencial vs densidad de corriente, (b) densidad de potencia vs

densidad de corriente); muestra 2, Ni-Ti a DQO Alto.

0,000

5,000

10,000

15,000

0 0,005 0,01 0,015 0,02

De

nsi

dad

de

po

ten

cia

( m

W/m

2)

Densidad de corriente (mA/cm2)

Densidad de potencia vs Densidad de corriente, Muestra 1

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

0,0000

0,0500

0,1000

0,1500

0,2000

0,2500

0,3000

0,3500

0,4000

0,4500

0 0,01 0,02 0,03 0,04

Po

ten

cial

(V

)

Densidad de corriente mA/cm2

Potencial vs Densidad de corriente, Muestra 2

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 50,000

5,000

10,000

15,000

20,000

25,000

30,000

35,000

40,000

45,000

0 0,02 0,04

Den

sid

ad d

e p

ote

nci

a m

W/m

2

Densidad de Corriente mA/cm2

Densidad de potencia vs Densidad de corriente, Muestra 2

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

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75

Muestra 3

Figura 4.6 Curva de (a) potencial vs densidad de corriente, (b) densidad de potencia vs

densidad de corriente); muestra 3, Ni-Ti a DQO Alto.

MUESTRAS DQO BAJO NITI

Muestra 1

Figura 4.7 Curva de (a) potencial vs densidad de corriente, (b) densidad de potencia vs

densidad de corriente); muestra 1, Ni-Ti a DQO Bajo.

0,000

5,000

10,000

15,000

20,000

25,000

30,000

35,000

0 0,01 0,02 0,03 0,04

De

nsi

dad

de

po

ten

cia

mW

/m2

Densidad de corriente mA/cm2

Densidad de potencia vs Densidad de corriente, Muestra 3

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 50,0000

0,0500

0,1000

0,1500

0,2000

0,2500

0,3000

0,3500

0 0,01 0,02 0,03 0,04

Po

ten

cial

(V

)

Densidad de corriente mA/cm2

Potencial vs Densidad de corriente, Muestra 3

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

0,0000

0,0500

0,1000

0,1500

0,2000

0,2500

0,3000

0,3500

0,4000

0,000 0,020 0,040 0,060

Po

ten

cial

(V

)

Densidad de Corriente mA/cm2

Potencial vs Densidad de corriente, Muestra 1

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

0,000

5,000

10,000

15,000

20,000

25,000

30,000

35,000

40,000

45,000

0 0,02 0,04 0,06

De

nsi

dad

de

Po

ten

cia

mW

/m2

Densidad de corriente mA/cm2

Densidad de Potencia vs Densidad de corriente, Muestra 1

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

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76

Muestra 2

Figura 4.8 Curva de (a) potencial vs densidad de corriente, (b) densidad de potencia vs

densidad de corriente); muestra 2, Ni-Ti a DQO Bajo.

Muestra 3

Figura 4.9 Curva de (a) potencial vs densidad de corriente, (b) densidad de potencia vs

densidad de corriente); muestra 3, Ni-Ti a DQO Bajo.

0,0000

0,0500

0,1000

0,1500

0,2000

0,2500

0,3000

0 0,01 0,02 0,03

Po

ten

cial

(V

)

Densidad de corriente mA/cm2

Potencial vs Densidad de corriente, Muestra 2

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

0,000

2,000

4,000

6,000

8,000

10,000

12,000

14,000

0,000 0,010 0,020 0,030

De

nsi

dad

de

Po

ten

cia

mW

/m2

Densidad de corriente mA/cm2

Densidad de Potencia vs Densidad de corriente, Muestra 2

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

0,0000

0,0500

0,1000

0,1500

0,2000

0,2500

0 0,005 0,01 0,015

Po

ten

cial

(V

)

Densidad de corriente mA/cm2

Potencial vs Densidad de corriente, Muestra 3

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

0,000

1,000

2,000

3,000

4,000

5,000

6,000

0 0,005 0,01 0,015

De

nsi

dad

de

po

ten

cia

mW

/m2

Densidad de corriente mA/cm2

Densidad de Potencia vs Densidad de corriente,Muestra 3

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

Page 91: UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMlCAS CARRERA DE … · 2018-09-04 · FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMlCAS CARRERA DE QUÍMICA EVALUACION DE LA BIOMASA PRODUCIDA

77

MUESTRAS DQO ALTO / COBRE

Muestra 1

Figura 4.13 Curva de polarización (potencial vs densidad de corriente), muestra 1,

Cobre a DQO Alto.

Muestra 2

Figura 4.14 Curva de polarización (potencial vs densidad de corriente), muestra 2,

Cobre a DQO Alto.

0,0000

0,0500

0,1000

0,1500

0,2000

0,2500

0,3000

0 0,005 0,01 0,015

Po

ten

cial

(V

)

Densidad de corriente (mA/cm2)

Potencial vs Densidad de corriente, Muestra 2

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

0,000

1,000

2,000

3,000

4,000

5,000

6,000

7,000

0 0,005 0,01 0,015

De

nsi

dad

de

po

ten

cia

(mW

/m2

)

Densidad de corriente (mA/cm2)

Densidad de potencia vs Densidad de corriente, Muestra 2

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

0,0000

0,0500

0,1000

0,1500

0,2000

0,2500

0 0,002 0,004 0,006 0,008

Po

ten

cial

(V

)

Densidad de corriente (mA/cm2)

Potencial vs Densidad de corriente, Muestra 1

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

-0,500

0,000

0,500

1,000

1,500

2,000

2,500

3,000

3,500

4,000

0 0,002 0,004 0,006 0,008

De

nsi

dad

de

Po

ten

cia

(mW

/m2

) Densidad de corriente (mA/cm2)

Densidad de potencia vs Densidad de corriente, Muestra 1

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

Page 92: UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMlCAS CARRERA DE … · 2018-09-04 · FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMlCAS CARRERA DE QUÍMICA EVALUACION DE LA BIOMASA PRODUCIDA

78

Muestra 3

Figura 4.15 Curva de polarización (potencial vs densidad de corriente), muestra 3,

Cobre a DQO Alto.

MUESTRAS DQO BAJO COBRE

Muestra 1

Figura 4.16 Curva de polarización (potencial vs densidad de corriente), muestra 1,

Cobre a DQO Bajo.

0,0000

0,0500

0,1000

0,1500

0,2000

0,2500

0,3000

0 0,005 0,01 0,015

Po

ten

cial

(V

)

Densidad de corriente (mA/cm2)

Potencial vs Densidad de corriente, Muestra 3

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 50,000

1,000

2,000

3,000

4,000

5,000

6,000

7,000

0 0,005 0,01 0,015

De

nsi

dad

de

po

ten

cia

(mW

/m2

)

Densidad de corriente (mA/cm2)

Densidad de potencia vs Densidad de corriente, Muestra 3

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

0,0000

0,0500

0,1000

0,1500

0,2000

0,2500

0 0,01 0,02 0,03 0,04

Po

ten

cial

(V

)

Densidad de corriente (mA/cm2)

Potencial vs Densidad de corriente, Muestra 1

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

0,000

2,000

4,000

6,000

8,000

10,000

12,000

0 0,01 0,02 0,03 0,04

De

nsi

dad

de

po

ten

cia

(mW

/m2

)

Densidad de corriente (mA/cm2)

Densidad de potencia vs Densidad de corriente, Muestra 1

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

Page 93: UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMlCAS CARRERA DE … · 2018-09-04 · FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMlCAS CARRERA DE QUÍMICA EVALUACION DE LA BIOMASA PRODUCIDA

79

Muestra 2

Figura 4.17 Curva de polarización (potencial vs densidad de corriente), muestra 2,

Cobre a DQO Bajo.

Muestra 3

Figura 4.18 Curva de polarización (potencial vs densidad de corriente), muestra 3,

Cobre a DQO Bajo.

-0,0200

0,0000

0,0200

0,0400

0,0600

0,0800

0,1000

0,1200

0,1400

0,1600

0,1800

-0,005 0 0,005 0,01 0,015

Po

ten

cial

(V

)

Densidad de corriente (mA/cm2)

Potencial vs Densidad de corriente, Muestra 2

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

-0,500

0,000

0,500

1,000

1,500

2,000

2,500

3,000

3,500

4,000

-0,005 0 0,005 0,01 0,015

De

nsi

dad

de

Po

ten

cia

(mW

/m2

)

Densidad de corriente (mA/cm2)

Densidad de potencia vs Densidad de corriente, Muestra 2

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

0,0000

0,0500

0,1000

0,1500

0,2000

0,2500

0,3000

0 0,01 0,02 0,03 0,04

Po

ten

cial

(V

)

Densidad de corriente (mA/cm2)

Potencial vs Densidad de corriente, Muestra 3

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

0,000

2,000

4,000

6,000

8,000

10,000

12,000

0 0,01 0,02 0,03 0,04

De

nsi

dad

de

po

ten

cia

(mW

/m2

)

Densidad de corriente (mA/cm2)

Densidad de potencia vs Densidad de corriente, Muestra 3

DIA 1

DIA 2

DIA 3

DIA 4

DIA 5

Page 94: UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMlCAS CARRERA DE … · 2018-09-04 · FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMlCAS CARRERA DE QUÍMICA EVALUACION DE LA BIOMASA PRODUCIDA

80

Anexo G Análisis Medio Ambiental de las ARDs de Ubillus