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UNIVERSIDAD DE CARABOBO.
FACULTAD EXPERIMENTAL DE CIENCIAS Y TECNOLOGÍA.
DEPARTAMENTO DE QUÍMICA.
INFORME DE PASANTÍAS
POR:
Leonardo M, Yuliana J.
C.I. V-17495105.
TUTOR ACADÉMICO: Lic. María Sánchez.
TUTOR EMPRESARIAL: Ing. Gerardo Colmenarez.
Bárbula, Diciembre de 2008.
INDICE
Pág.
OBJETIVOS……………………………………………………………………..3
RESUMEN DE ACTIVIDADES REALIZADAS………………………………4-15
CONCLUSIONES………………………………………………………..…….16
RECOMENDACIONES………………………………………………………..17
GLOSARIO……………………………………………………………………..18-20
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS…………………………………………..21
2
I. OBJETIVOS
OBJETIVO GENERAL: Adquirir los conocimientos prácticos
necesarios para realizar análisis de aguas naturales y tratadas,
requeridos por la empresa HIDROLÓGICA DEL CENTRO C.A, con
el fin de evaluar la calidad de las mismas, de acuerdo con la
normativa y el marco legal vigente.
OBJETIVOS ESPECÍFICOS:
a) Realizar una inducción de dos (2) semanas en cada una
de las áreas de laboratorio de la empresa.
b) Aprender las técnicas, métodos y procedimientos
ejecutados para analizar muestras de agua en cada
área de laboratorio.
c) Procesar muestras de agua de diversos orígenes
utilizando métodos de análisis químicos establecidos por
la empresa.
d) Aplicar la validación del método estándar para la
determinación de oxígeno disuelto en agua [1,2].
3
II. RESUMEN DE ACTIVIDADES REALIZADAS
El período de pasantías tuvo una duración de doce (12) semanas y
estuvo bajo la supervisión de la Gerencia de Captación y Mantenimiento de
Hidrológica del Centro C.A, dicho período se distribuyó en dos (2) etapas de
seis (6) semanas cada una, en las cuales se hizo un recorrido por las tres (3)
áreas de laboratorios: bacteriología, fisicoquímica y químico-sanitario,
asignando dos (2) semanas para cada área, con el fin de conocer los
equipos y procesos de la misma; y en una posterior etapa se llevó a cabo la
validación del método analítico para la determinación de oxígeno disuelto en
agua, con el propósito de verificar la calidad y aplicabilidad del mismo en el
análisis de aguas naturales y tratadas.
Es importante notar que en todas las áreas se manejan herramientas
diferentes con el mismo propósito, evaluar y controlar parámetros químicos,
físicos y biológicos en las aguas de la región central del país para garantizar
su calidad para el consumo, evitar la proliferación de epidemias y
enfermedades, así como prevenir daños ambientales.
LABORATORIO DE BACTERIOLOGÍA (18 al 29 de Agosto de 2008)
En el área de bacteriología se trabaja con aguas de orígenes diferentes,
es decir, pueden provenir de plantas de potabilización o de redes residuales,
tanto públicas como privadas.
La idea de efectuar análisis en el ramo bacteriológico se basa en la
detección de microorganismos en las aguas, específicamente del tipo
coliformes totales (que comprenden el grupo en su totalidad) y fecales (solo
4
de origen intestinal). El grupo coliforme total está formado por todas las
bacterias aerobias y anaerobias facultativas, gramnegativas, no formadoras
de esporas y con forma de bastón que fermentan la lactosa, produciendo gas
y ácido láctico en 48 horas a 35°C, y que se encuentran ampliamente
distribuidas en la naturaleza, especialmente en suelos, semillas y
vegetales[1,2]; mientras que los organismos coliformes fecales se hallan
principalmente en el intestino de los humanos y de los animales de sangre
caliente y fermentan la lactosa en 48 horas a 44,5°C[1,2]. Los géneros que
conforman el grupo coliforme total son escherichia, klebsiella, enterobacter y
citrobacter; para el grupo coliforme fecal se excluyen los organismos del tipo
enterobacter porque no crecen a 44,5°C, y en teoría se dice que
aproximadamente el 90% de las bacterias aisladas son del género
escherichia (específicamente escherichia coli) y el otro 10% distribuido entre
organismos klebsiella y citrobacter[1,2].
El objetivo principal del estudio es el de descartar o afirmar la presencia
de estos microorganismos en las aguas, dado que tradicionalmente se les ha
considerado como indicadores de contaminación en el control de calidad del
agua destinada al consumo humano, en razón de que, en los medios
acuáticos, los coliformes son más resistentes que otras bacterias patógenas.
Por tanto, su ausencia indica que el agua es bacteriológicamente segura.
La técnica que se utiliza para realizar este estudio se denomina
“Fermentación en tubos múltiples para miembros del grupo de los
coliformes”, descrita en el “Método normalizado para el análisis de aguas
potables y residuales” [1,2]; dicha técnica se trabaja en dos (2) fases: una fase
presuntiva, donde se determina la existencia de la bacteria; y otra
confirmativa para definir el tipo de bacteria presente. En la primera se lleva a
cabo la preparación de medios estériles de lauril sulfato de sodio para
5
cultivos de bacterias y posterior a ello se efectúa el sembrado de los cultivos
utilizando las muestras a analizar. Existen diferencias fundamentales
descritas en el método estándar [1,2] entre los medios empleados para
sembrar aguas tratadas y aguas naturales, estas se basan esencialmente en
las cantidades de reactivo utilizado. Posterior a la siembra, se someten los
cultivos a un período de incubación no mayor a 48 horas para verificar la
presencia o ausencia de agentes microbiológicos coliformes a través de la
observación de crecimiento bacteriano o producción de gas (burbujas).
Por otro lado, para desarrollar la fase confirmativa es requisito esencial
que se haya obtenido un resultado positivo en la fase presuntiva, debido a
que debe asegurarse la existencia de la bacteria para poder confirmar y
clasificar la misma.
Los coliformes totales se confirman preparando medios estériles de verde
brillante que es un reactivo de fórmula molecular C27H34N2O4S ampliamente
usado como medio de cultivo para bacterias de este tipo, y se procede a
ejecutar la técnica denominada “repique” que consiste en introducir un asa
estéril en el cultivo contaminado y pasarla al medio de verde brillante, luego
se incuba por un lapso no mayor a 48 horas y cualquier formación de gas en
los tubos implica existencia de microorganismos coliformes totales [1,2].
Para realizar la detección de bacterias coliformes fecales, se opera de la
misma forma que en coliformes totales pero empleando un medio estéril de
reactivo EC Broth (Escherichia coli broth), cuya composición es: triptosa,
lactosa, cloruro de sodio, fosfato ácido y diácido de potasio, mezcla de sales
biliares N° 3, y es el reactivo recomendado por el método normalizado para
el análisis de aguas potables y residuales en la determinación de organismos
coliformes fecales [1,2].
6
Por último para que la prueba esté completa, se hace la siembra de
muestra en placas de petri que contienen un soporte de agar nutritivo, la
composición del agar nutritivo es peptona, extracto de buey, agar y agua
destilada; y se incuba entre dieciocho 18 y 24 horas, luego de la incubación
se hace un conteo de las colonias (grupos) de bacterias presentes con ayuda
de una lupa [1,2].
LABORATORIO DE FISICOQUÍMICA (01 al 12 de Septiembre de
2008)
En el laboratorio de fisicoquímica se trabaja con aguas tratadas y crudas.
Los análisis que se efectúan son variados, en primera instancia es necesario
determinar los parámetros físicos de la muestra, color y turbidez; luego los
parámetros químicos como pH, conductividad, dureza total, dureza cálcica,
alcalinidad y además concentraciones de iones como cloruros, sulfuros,
fluoruros, nitritos y nitratos, fosfatos, sulfatos, sílice y de algunos metales
como hierro y aluminio. Según los requerimientos de la empresa o del cliente
se trabaja con estudios fisicoquímicos totales, donde se evalúan todos los
parámetros anteriormente mencionados, o parciales donde se prescinde de
algunos de ellos. La afluencia de muestras es grande, lo cual supone una
destreza mayor para procesar muchas muestras en corto tiempo.
Los conocimientos obtenidos durante la carrera son de gran aplicabilidad
en esta área, ya que para todos los análisis mencionados se utilizan técnicas
ampliamente conocidas, como titulaciones para la determinación de dureza
cálcica y total, donde se valoran las muestras con una solución patrón de
EDTA, que actúa como agente complejante de los iones calcio (Ca2+) en el
caso de la dureza cálcica y de los iones calcio y magnesio (Ca2+ y Mg2+) para
7
la dureza total. Empleando el mismo método se determina la alcalinidad total
de las muestras, donde estas se titulan con una disolución patrón de ácido
sulfúrico (H2SO4) de concentración 0,02 N, este ejemplo es una típica
valoración ácido-base, donde al neutralizar la muestra se alcanza el punto de
equivalencia. También se cuantifican cantidades de iones cloruro, valorando
la muestra, previamente amortiguada por un buffer, con un patrón de nitrato
de plata.
Otros métodos que se utilizan en este laboratorio son los instrumentales,
para la medición de conductividad y pH empleando conductímetros, que
arrojan los datos directamente de pH y de conductividad (Ω). Y para la
cuantificación de los otros iones y metales, que se hace por colorimetría a
través de la preparación de muestras que tras desarrollar coloración son
sometidas a un equipo de UV-Visible, el cual ofrece la data en términos de
absorbancia y/o concentración; las muestras para cuantificar iones nitrito,
nitrato, fosfato, sulfuro, fluoruro y sulfato se preparan directamente con
patrones adecuados al equipo; mientras que otras muestras como las de
sílice y aluminio, requieren de la elaboración de patrones de diferentes
concentraciones para obtener una curva de calibración y a partir de esta
determinar las cantidades presentes en cada muestra; el procedimiento para
cuantificar hierro se hace por UV-Visible, pero lleva implícito un proceso de
digestión de la muestra en medio ácido, para luego realizar el desarrollo
colorimétrico.
Como conocimientos adquiridos durante la experiencia en el área se
mencionan los relacionados con el análisis del color y la turbidez de las
muestras; que se realizan con métodos comparativos partiendo de una
solución de referencia (por lo general agua destilada). Para el color la
comparación es visual y se hace con discos para color, que miden en una
escala de números enteros (de cinco en cinco) del cero (0) al cien (100); y el
8
turbidímetro arroja valores, que pueden ser enteros o decimales,
provenientes de la intensidad de la luz dispersada por la muestra bajo
condiciones definidas en el equipo.
LABORATORIO QUÍMICO-SANITARIO (15 al 26 de Septiembre de
2008)
Químico-sanitario básicamente trabaja con aguas residuales o servidas,
aunque se hacen algunos análisis para aguas tratadas; es un área muy rica
en cuanto al aprendizaje que se obtiene, puesto que se ponen en práctica
conocimientos que se manejaron a lo largo de la formación académica a
nivel teórico, más no experimental.
Por excelencia las aguas residuales son fuente de materia orgánica, por
lo cual los análisis que se realizan en el área se enfocan hacia el estudio de
las variaciones que causa la materia orgánica sobre las aguas servidas,
estableciéndose como referencia un agua potable.
Se realizan cuantificaciones de:
a) Nitrógeno Amoniacal: se cuantifica el nitrógeno que proviene
exclusivamente de grupos amino (-NH2, NH3, NH4+). Para ello se
utilizan el método de Kjeldhal [5] y un método conductimétrico donde
se alcaliniza la muestra con una base fuerte y se mide una diferencia
de voltaje.
b) Demanda química de oxígeno (DQO): se conoce como la cantidad de
oxígeno requerido para oxidar la materia orgánica presente en la
muestra a dióxido de carbono y agua en medio ácido. Se determina
por UV-Visible, después de incubar las muestras en un reactor por
dos horas a temperatura constante (120°C).
9
c) Demanda bioquímica de oxígeno (DBO): se utiliza para determinar en
condiciones aeróbicas la cantidad de oxígeno requerido por las
bacterias para estabilizar la materia orgánica biodegradable que les
sirve de nutriente. Se determina mediante un proceso de incubación
de la muestra (5 días), con presencia de nutrientes que optimicen la
actividad bacteriológica, y haciendo diferentes diluciones de la
muestra para obtener mayor precisión en el análisis.
d) Oxígeno disuelto (OD): es un indicador de la capacidad auto-
depuradora de las aguas, según sea la solubilidad del oxígeno en la
muestra. Se mide titulando la muestra con tiosulfato de sodio,
previamente tratada con varios reactivos.
e) Sólidos totales y en suspensión: indican esencialmente la cantidad de
sólidos de cualquier origen en la muestra, los suspendidos se refieren
a los que están en forma de suspensión y los totales son la sumatoria
de los sólidos disueltos más los suspendidos. Su determinación se
hace por filtración al vacío, en el caso de los sólidos en suspensión y
por medio de un proceso de evaporación y secado se determinan los
sólidos totales.
f) Fósforo: denota la cantidad de fósforo de procedencia orgánica
presente en la muestra. Se determina por UV-Visible, luego de la
digestión de las muestras en medio ácido.
g) Aceites y grasas: determinan la presencia de aceites lubricantes y
grasas saturadas o insaturadas en las aguas.
h) Detergentes: se evalúa la existencia de componentes existentes en
agentes limpiadores o detergentes, como son los surfactantes.
Los dos últimos estudios se realizan eventualmente, solo si existe la
sospecha de que las aguas pudieran registrar valores significativos de
10
los puntos g y h; y la técnica que se utiliza es la extracción con
disolventes orgánicos [4] .
VALIDACIÓN DEL MÉTODO PARA LA DETERMINACIÓN DE
OXÍGENO DISUELTO EN AGUA (29 de Septiembre al 07 de
Noviembre de 2008)
El oxígeno es necesario para el metabolismo de los seres vivos; para
producir energía para su movilidad, crecimiento y reproducción. La baja
solubilidad del oxígeno en agua, es el principal factor que limita su
capacidad auto-depuradora, con la medición del oxígeno disuelto en una
muestra de agua (de cualquier origen) se logra estimar la solubilidad del
oxígeno en la misma y este valor es indicativo de la capacidad auto-
limpiante que tiene el agua estudiada. Este análisis también se conoce
como determinación de oxígeno inicial en la muestra, y a menudo se
emplea como valor de referencia en análisis de DBO. Los estudios de
oxígeno disuelto se utilizan en el control de las actividades fotosintéticas
de las aguas poluidas y en el de los procesos de tratamiento de aguas.
Aunque existen varios métodos para determinar el oxígeno disuelto,
los más comunes son el método de Winkler [1,2] y el método modificado de
Winkler [1,2]. El empleado por Hidrológica del Centro C.A, es el método de
Winkler, que se describe a continuación:
PRINCIPIO DEL MÉTODO DE WINKLER [1,2]: Se basa en agregar a la
muestra una solución de manganeso divalente en medio alcalino y con
adición de yoduro. El oxígeno oxida al hidróxido manganoso (Mn(OH)2) a
dióxido de manganeso (MnO2), el cual a su vez oxida al ión yoduro (I-) en
11
medio ácido, liberando yodo en concentraciones equivalentes al
contenido original de oxígeno disuelto. Finalmente el yodo se titula con
una solución de tiosulfato usando almidón como indicador del punto final
de la titulación.
Las reacciones en el proceso se verifican en cuatro (4) etapas:
1. Al agregar el yoduro alcalino se forma hidróxido manganoso:
Mn2+ + 2OH- Mn(OH)2
2. Si hay oxígeno, este se fija oxidando una parte equivalente de
manganeso y formando un precipitado de óxido mangánico hidratado
MnO2 en medio alcalino:
Mn2+ + 2OH- + ½ O2 MnO2 + H2O
3. Cambio del medio de alcalino a ácido al adicionar H2SO4 con
formación de yodo libre (I2) a expensas del yoduro alcalino, desalojado
por el óxido mangánico MnO2 que se ha formado en una cantidad
equivalente al oxígeno de la muestra:
MnO2 + 2I- + 4H+ Mn2+ + I2 + 2H2O
4. Titulación del yodo libre con la solución patrón de Na2S2O3:
I2 + 2S2O32- 2I- + S4O6
2-
I2 + Almidón Complejo de absorción azul.
El procedimiento experimental que se utilizó para la validación se extrajo
del método normalizado [1,2], y se divide en los siguientes pasos:
12
1. Se trabajó con cuatro (4) tipos de agua: agua destilada, agua
desionizada, agua natural o cruda y agua tratada; esto a elección del
tutor empresarial.
2. Se tomaron cinco (5) réplicas por cada tipo de agua.
3. Se realizó el mismo procedimiento en cinco (5) días distintos, a fin
de tener diferentes condiciones de trabajo.
4. Utilizando el método de Winkler, se depositaron las muestras en
envases de vidrio (winklers) de 300 mL.
5. Se añadió 1 mL de Sulfato manganoso, seguido de 1 mL de álcali
yoduro a cada muestra, se tapó y se agitó suavemente.
6. Se observó la formación de un precipitado de color ocre y una
tonalidad naranja en toda la solución; esto si la cantidad de oxígeno
presente es significativa, de lo contrario el precipitado será
blanquecino al igual que la solución y la muestra preferiblemente
deberá ser descartada.
7. Posteriormente se agregó 1 mL de ácido sulfúrico concentrado en
cada recipiente y se agitó vigorosamente hasta desaparecer el
precipitado anteriormente formado.
8. Se retiran aproximadamente 97 mL de cada muestra, esto por
especificaciones del método, que establece que la cantidad de
oxígeno en la muestra será equivalente a la cantidad de tiosulfato de
sodio consumido en la valoración, siempre que el volumen de analito
sea 200 mL.
9. Se titula la muestra con una solución patrón (previamente
estandarizada) de tiosulfato de sodio, y la cantidad consumida,
según el estándar método será equivalente a los mg/L de oxígeno en
cada muestra.
13
Basados en esta teoría, se realizó la validación del método para
confirmar su eficacia, además de parámetros estadísticos como la precisión,
exactitud, repetibilidad, reproducibilidad, selectividad, entre otros. Los
resultados obtenidos fueron entregados a la empresa bajo el formato
establecido por la misma, tal como se muestra:
VALIDACIÓN DE OXÍGENO DISUELTO EN
AGUA
HOJA DE VALIDACIÓN
N° validación: 1
Método analítico: Método estándar HCLE-4500-O, Determinación de
oxígeno disuelto en agua.
Cualitativo ___ Cuantitativo X De Identificación __
Analito: Oxígeno
disuelto.
Unidades: mg/L Matriz: Aguas
Naturales y potables.
Tipo de agua Precisión
Repetibilidad Repetibilidad Reproducibilidad Reproducibilidad
Destilada Sr: 0,114 %CVr: 1,377 SR: 0,510 %CVR: 6,155
Desionizada Sr: 0,148 %CVr: 2,138 SR: 1,261 %CVR: 18,229
Natural Sr: 0,209 %CVr: 2,618 SR: 0,691 %CVR: 8,653
Tratada Sr: 0,677 %CVr:16,098 SR: 1,303 %CVR: 30,998
Límite de Detección: -------- Límite de Cuantificación: -----------
14
Recuperación
Agua Destilada Agua
Desionizada
Agua Natural Agua Tratada
%Rec =
107,47
%Rec = 85,23 %Rec = 51,79 %Rec= 105,38
Selectividad
Interferencias: Sólidos orgánicos en suspensión, alto grado de
contaminación, Sales ferrosas y nitratos.
CRITERIO DE ACEPTACIÓN: Se analizaron muestras por quintuplicado
de cada tipo de agua, en un proceso de validación de cinco (5) días y se
obtuvieron valores dentro de lo establecido por el método estándar en
su tabla 4500-O: I de Solubilidades del oxígeno en agua [1,2]; además se
estableció una comparación mediante la ecuación de HORWITZ [1,2],
cuyos valores de repetibilidad y reproducibilidad se muestran a
continuación: 0,26 y 0,99 mg/L respectivamente para agua destilada,
frente a valores establecidos por Horwitz de un máximo de 12,3 y 6,5
mg/L respectivamente. Para agua desionizada se obtuvieron valores de
0,44 y 6,25 mg/L, comparados con valores máximos de Horwitz de 12,0
y 6,4 mg/L respectivamente. Asimismo para el agua natural 9,16 mg/L
de repetibilidad y 4,96 mg/L de reproducibilidad, frente a la tabla de
Horwitz que establece valores máximos de 12,0 y 6,4 mg/L
respectivamente. Y por último, para agua tratada se hallaron valores de
0,87 y 1,73 mg/L de OD, igualmente comparados con los de Horwitz
que apuntan a un máximo de 12,3 y 6,5 mg/L respectivamente; lo cual
permite concluir que el método es preciso.
15
III. CONCLUSIONES
La experiencia laboral obtenida resultó satisfactoria.
Los métodos utilizados en el análisis de aguas por parte de
Hidrológica del Centro C.A, cumplen con los requerimientos legales[3]
y están normados internacionalmente[1,2] para su empleo.
En el período de pasantías se lograron los objetivos planteados y se
obtuvo conocimiento necesario en cuanto al análisis de aguas,
métodos y equipos empleados para ello.
La validación del método de Determinación de oxígeno disuelto en
agua, arrojó resultados que demostraron la confiabilidad de la técnica
analítica para todo el rango de concentraciones manejadas en el
laboratorio.
16
IV. RECOMENDACIONES
Se recomienda hacer revisiones complementarias respecto a la norma
o método estándar para asegurar una aplicación consistente.
La empresa no regula eficazmente la disposición de los residuos, por
lo cual sería de gran ayuda la ejecución de un proyecto ambiental
cuyo objetivo principal sea el manejo adecuado de los desechos que
se generan.
17
V. GLOSARIO
AEROBIO: organismo que necesita del oxígeno diatómico para vivir o
procesos que lo necesitan para poder desarrollarse.
AGAR NUTRITIVO: Medio de cultivo utilizado para propósitos de aislamiento
de microorganismos poco exigentes en lo que se refiere a requerimientos
nutritivos. Su uso está descrito en muchos procedimientos para el análisis de
alimentos, aguas y otros materiales de importancia sanitaria.
AGUAS POLUIDAS: aguas negras, residuales, servidas, contaminadas.
AGUAS POTABLES: agua "bebible" en el sentido que puede ser consumida
por personas y animales sin riesgo de contraer enfermedades. El término se
aplica al agua que ha sido tratada para su consumo humano según unas
normas de calidad promulgadas por las autoridades locales e
internacionales.
ALCALINIDAD: o basicidad es la capacidad ácido-neutralizante de una
sustancia química en solución acuosa. Esta alcalinidad de las sustancias se
expresa en equivalentes de base por litro de solución.
ANAEROBIO: organismo que no necesita oxígeno (O2) para desarrollarse.
BACTERIAS FACULTATIVAS: bacterias que pueden adaptarse para crecer y
metabolizar tanto en presencia como en ausencia de oxígeno.
BACTERIAS GRAMNEGATIVAS: aquellas bacterias que no se tiñen de azul
oscuro o violeta por la tinción de Gram. Esta característica está íntimamente
18
ligada a la estructura de la envoltura celular, por lo que refleja un tipo natural
de organización bacteriana.
COLIFORMES: La denominación genérica coliformes designa a un grupo de
especies bacterianas que tienen ciertas características bioquímicas en
común e importancia relevante como indicadores de contaminación del agua
y los alimentos.
COLONIAS DE BACTERIAS: Se entiende por colonia bacteriana a la
agrupación de bacterias originadas a partir de una bacteria madre que se
establecen y extienden por determinado medio.
CONDUCTIVIDAD: La conductividad de una sustancia se define como la
habilidad o poder de conducir o transmitir calor, electricidad o sonido. Las
unidades son Siemens por metro [S/m] en el sistema internacional (SI).
DBO: parámetro que mide la cantidad de materia susceptible de ser
consumida u oxidada por medios biológicos que contiene una muestra
líquida, y se utiliza para determinar su grado de contaminación. Normalmente
se mide transcurridos 5 días (DBO5) y se expresa en mg O2/litro.
DQO: parámetro que mide la cantidad de materia orgánica susceptible de ser
oxidada por medios químicos que hay en una muestra líquida. Se utiliza para
medir el grado de contaminación y se expresa en mg O2/litro.
DUREZA CÁLCICA: sumatoria de las concentraciones de calcio, expresadas
como CaCO3 en mg/L.
19
DUREZA TOTAL: se define como la suma de las concentraciones de calcio y
magnesio, expresadas como CaCO3 en mg/L. El rango de dureza varia entre
0 y cientos de mg/L, dependiendo de la fuente de agua y el tratamiento a que
haya sido sometida.
ESPORAS: célula reproductiva producida por las plantas (hongos, musgos,
helechos) y por algunos protozoarios y bacterias. Ciertas bacterias producen
esporas como mecanismo de defensa, dichas esporas bacterianas poseen
paredes gruesas y son muy resistentes a las altas temperaturas, a
la humedad y a otras condiciones desfavorables.
TURBIDEZ: falta de transparencia de un líquido, debido a la presencia de
partículas en suspensión. Cuantos más sólidos en suspensión haya en el
líquido, generalmente se hace referencia al agua, más sucia parecerá ésta y
más alta será la turbidez. La turbidez es considerada una buena medida de
la calidad del agua, cuanto más turbia, menor será su calidad.
VALIDACIÓN: comprobación de que un método está bien formado y se
ajusta a una estructura definida teóricamente.
20
VI. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
[1] American Public Health Association (APHA), American Water Works Association (AWWA), Water Pollution Control Federation (WEF) (1992). Métodos normalizados para el análisis de aguas potables y
residuales. 17° edición. Ediciones Díaz de Santos. España.
[2] American Public Health Association (APHA), American Water Works Association (AWWA), Water Pollution Control Federation (WEF) (2005). Standard Methods for the Examination of water and wastewater. 21°
edición. Editorial Centenmial. EEUU.
[3] Ley Orgánica para la Prestación del Servicio de Agua Potable y Saneamiento. Gaceta Oficial de la República Bolivariana de Venezuela No.
5.568 Extraordinario del 31 de diciembre de 2001. http://www.aveagua.org/leyes.htm
[4] Shriner R, Fuson R, Curtin D. (2007). Identificación sistemática de
compuestos orgánicos. Editorial Limusa. México.
[5] Skoog D, Holler F, Nieman T. (2001). Principios de análisis
instrumental. 5° edición. Editorial Mc Graw Hill. España.
21
22