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Universidad Nacional de Tucumán
Cátedra de Zoología Agrícola - Facultad de Agronomía y Zootecnia
Desarrollo y producción Animal y/o Vegetal
IDENTIFICACIÓN Y CARACTERIZACIÓN DE MICROHIMENÓPTEROS PARASITOIDES
DE MOSCA BLANCA Bemisia tabaci (Gennadius) EN CULTIVO DE PIMIENTO
(Capsicum annuum L.) BAJO CUBIERTA PLÁSTICA.
Maza Noelia
Palabras claves: Bemisia tabaci, microhimenópteros parasitoides, Capsicum annuum;
Bemisia tabaci, microhimenópteros parasitóides, Capsicum annuum.
Director: Ing. Agr. Miriam Rosana Paz
Cuartas Jornadas de Jóvenes Investigadores UNT - CONICET Tucumán, 22, 23 y 24 de Junio de 2010
INTRODUCCION
La mosca blanca Bemisia tabaci (Gennadius) fue descripta hace más de 100 años como una
plaga de la patata en Grecia y desde entonces se ha convertido en una de las plagas más
importantes que afectan a la agricultura mundial (Naranjo et al., 2004). Constituye un serio
problema fitosanitario en numerosos cultivos de importancia socioeconómica, siendo los
más atacados en invernadero, tomate, pimiento, zapallito, berenjena, melón y otras
solanáceas (Cáceres, 2004), por otro lado afecta a numerosas malezas que sirven de
reservorio cuando no se encuentra presente el cultivo comercial.
Bemisia tabaci es una plaga que ocasiona daños de tipo directo como inyección de saliva
tóxica y succión de savia en las plantas, éstas se debilitan y en casos extremos provoca
desecamiento y caída de las hojas afectadas; daños de tipo indirecto como secreción de
melado que favorece el desarrollo de hongos conocidos comúnmente con el nombre de
“fumagina” provocando asfixia del vegetal, disminución de la función fotosintética,
interferencia en la deposición de los productos químicos utilizados en el control y pérdida de
valor comercial del fruto (Vet et al., 1980; Llorens Climent & Garrido Vivas, 1992). Por otro
lado actúan como transmisoras de enfermedades virósicas, destacándose, entre ellas, el de
la “cuchara en tomate” (TYLCV) o el de las “venas amarillas en cucurbitáceas” (CVYV) (Vet
et al., 1980; Llorens Climent & Garrido Vivas, 1992; Garcia Marí et al., 1994; Naranjo et al.,
2004). Además, los adultos interfieren en el trabajo de los operarios en las labores culturales
y cosecha, debido a que forman pequeñas nubes de insectos que son fácilmente inhaladas.
Estas características, sumadas a la capacidad de formar biotipos, hace que B. tabaci
constituya una amenaza seria para los cultivos afectados (Cáceres, 2004).
En la actualidad la principal herramienta de manejo de la plaga es el control químico, sin
embargo, la aparición de un mercado cada vez más exigente obliga a un manejo sustentable
a largo plazo y adecuado desde el punto de vista de la preservación del medio ambiente y
de la salud del hombre. Para ello resulta imprescindible conocer el agroecosistema y las
interacciones que se producen entre la planta, la plaga y los enemigos naturales. Dentro de
estos últimos se encuentran los parasitoides, que constituyen uno de los factores
importantes de mortalidad de la plaga. Es por ello un requisito básico, para implementar
cualquier estrategia de manejo de las mismas, disponer de un inventario de aquellas
especies con capacidad entomófaga.
Entre los parasitoides citados para B. tabaci en América Latina se encuentran las siguientes
especies: dentro del género Encarsia: E. aleurothrixi Evans & Polaszek en Brasil (Oliveira &
Laumann, 1999; Oliveira et al., 2003); E. formosa Gahan en Brasil y Chile (Oliveira &
Laumann, 1999; Mondaca Rivas, 2000; Oliveira et al., 2003); E. hispida De Santis en
Panamá y Brasil (Oliveira & Laumann, 1999; Bernal Vega & Basedow, 2000; Oliveira et al.,
2003); E. inaron (Walker), E. lutea Masi, E. luteola Howard y E. nigricephala Dozier en
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Brasil (Oliveira & Laumann, 1999; Oliveira et al., 2003); E. pergandiella Howard en Panamá
(Bernal Vega & Basedow, 2000) y E. porteri (Mercet) en Panamá, Brasil y Chile (Oliveira &
Laumann, 1999; Bernal Vega & Basedow, 2000; Mondaca Rivas, 2000; Oliveira et al., 2003).
Dentro del género Eretmocerus: E. corni Haldeman en Perú y Chile (Nuñez Sacarias, 1995;
Mondaca Rivas, 2000).
En nuestro país cabe destacar que se encontraron los parasitoides Encarsia formosa y
Eretmocerus sp. (Botto, 1995; López et al., 1998). López & Evans (2008) citan a
Eretmocerus paulistus Hempel, E. corni y E. mundus Mercet parasitoidizando a Trialeurodes
vaporariorum (Westwood) y B. tabaci en las provincias de Buenos Aires, San Juan y Santa
Fé. A pesar de los estudios realizados la información sobre microhimenópteros parasitoides
de B. tabaci aún es escasa.
Por este motivo el objetivo del presente trabajo es identificar y caracterizar a los
microhimenópteros parasitoides de la mosca blanca B.tabaci en cultivo de pimiento bajo
cubierta plástica en Lules, Tucumán.
MATERIALES Y MÉTODOS
Se recolectó material vegetal en una finca localizada en el departamento de San Isidro de
Lules, Tucumán ubicada geográficamente a 26° 56’ de latitud sur y 65° 20’ de longitud oeste.
Esta zona, pertenece a la región agroecológica: Pedemonte húmedo y perhúmedo (Zuccardi
& Fadda, 1992).
Se realizaron muestreos semanales durante el desarrollo fenológico del cultivo en los meses
de mayo a noviembre de 2009, lo cual permitió registrar las variaciones numéricas en la
población de los parasitoides encontrados. Se muestrearon cuatro módulos, extrayéndose
72 hojas de cada uno, siendo un total de 288 hojas por muestreo.
Las muestras consistían en hojas del tercio medio inferior de las plantas de pimiento que
presentaban ejemplares de B. tabaci al estado de “pupa”. Se tomaron estas hojas por ser las
que contienen mayor densidad de larvas maduras y “pupas” de mosca blanca (Botto, 1999).
Las mismas fueron colocadas en bolsas de polietileno con su correspondiente etiqueta de
identificación y trasladadas al laboratorio de la Cátedra de Zoología Agrícola. Con ayuda de
un microscopio estereoscópico binocular (lupa) se procedió a la separación del material, de
la siguiente manera: 1- Recolección de “pupas” de mosca blanca con síntomas de
parasitoidismo; 2- Obtención de parasitoides adultos: para ello se colocaron las “pupas”
parasitoidizadas en tubos de vidrio cerrados con tapón de algodón en un ambiente
climatizado; 3- Realización de preparaciones microscópicas semipermanentes siguiendo la
técnica de Cave (1995), utilizándose Hoyer como líquido de montaje. 4- Identificación de los
parasitoides adultos obtenidos mediante el uso de claves y descripciones morfológicas de
los siguientes autores: De Santis (1946; 1948; 1969), Davis et al. (1990), Yasnosh (1987),
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Polaszek et al. (1992); Schauff & Evans (1995) y Evans (2007). Todo el material
entomológico se encuentra depositado en la Cátedra de Zoología Agrícola de la Facultad de
Agronomía y Zootecnia de la Universidad Nacional de Tucumán.
RESULTADOS
Los parasitoides encontrados e identificados sobre B. tabací en el cultivo de pimiento
pertenecen a la siguiente posición sistemática:
• Orden: Hymenoptera
• Suborden: Apócrita
• Serie: Parasítica
• Superfamilia: Chalcidoidea
• Familia: Aphelinidae
• Subfamilia: Aphelininae
� Género: Eretmocerus
• Subfamilia: Coccophaginae
� Género: Encarsia
Eretmocerus Haldeman, 1850
Existen 57 especies descriptas de Eretmocerus en todo el mundo (Rose & Zolnerowich,
2003 citado por López & Evans, 2008), sin embargo, se cree que quedan aún muchas
especies sin describir. Algunas especies son utilizadas en programas de control biológico en
invernadero. (Katia de Siqueira et al, 2001) como E. mundus y E. eremicus Rose y
Zolnerowich
Evans (2007) ha dividido este género en 8 grupos de especies, sobre la base del número de
pares de setas del mesoescudo y la relación largo/ancho de la clava de la hembra.
Morfologicamente Eretmocerus (figuras 1 y 2) se caracteriza por presentar una coloración
que varía desde amarillo pálido a amarillo anaranjado. La maza antenal es siempre alargada
(de 10 a 16 veces más larga que ancha). En el primer par de alas se encuentra una franja
glabra, oblicua irregular y poco definida. La nervadura marginal es corta, sólo un poco más
larga que la vena estigmal (figura 3). Los tarsos son tetrámeros, muy raramente pentámeros
(De Santis, 1948; Yasnosh, 1987) (figura 4).
Hay dismorfismo sexual que se evidencia en las antenas, así la de los machos poseen tres
artejos (escapo, pedicelo y maza muy alargada con numerosos sensorios) (figura 5);
mientras que las de las hembras poseen cinco (escapo, pedicelo, dos artejos anillos y maza
relativamente corta y con escasos sensorios) (figura 6) (De Santis, 1948; Yasnosh, 1987).
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Son parasitoides primarios de moscas blancas (De Santis, 1948; Viggiani, 1984; Yasnosh,
1987; López & Evans, 2008). La hembra deposita los huevos haploides o diploides sobre el
huésped, el primer estadio larval es ectoparasitoide y los otros estadios son
endoparasitoides (Viggiani, 1984). El ciclo de vida completo dura entre 17 a 20 días,
dependiendo de la temperatura y el estadio larval de la mosca blanca. La “pupa” de la
mosca blanca se torna amarillo-dorada, una vez que Eretmocerus ha completado su
desarrollo, realiza un orificio circular por el cual emerge el adulto.
Las hembras, además de su labor como parasitoides, llegan a depredar un gran número de
larvas de moscas blancas mediante succión del huésped (host feeding), lográndose hasta
un 40% de mortalidad, lo cual es una ventaja adicional (Bioplanet, 2010).
Figura 3: Ala de Eretmocerus sp.
Figura 2: Hembra de Eretmocerus sp.
Figura 4: Tarso de Eretmocerus sp.
Figura 1: Macho de Eretmocerus sp.
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Encarsia Förster, 1878
Se conocen aproximadamente, entre 200 y 500 especies de Encarsia en todo el mundo,
pero probablemente faltan por descubrir el doble de este número (Polaszek et al., 1994).
Muchas de estas especies resultaron ser muy exitosas en programas de control biológico
particularmente en la lucha contra moscas blancas (De Santis, 1948; Polaszek & Hayat,
1992; Polaszek et al., 1994; Polaszek et al., 1999).
Morfologicamente, Encarsia se caracteriza por presentar una coloración variable desde
amarillo pálido a completamente castaño oscuro, siendo los machos más oscuros que las
hembras (figura 7). Poseen la cabeza igual o un poco más ancha que el cuerpo, las antenas
tienen siete a ocho segmentos con maza de uno a tres antenitos (figura 8). El escutelo es
mucho más ancho que largo con las axilas bien marcadas penetrando la escapula, posee
dos pares de setas y un par de placas con sencilias (sencilias escutelares). El primer par de
alas tiene la vena marginal no más corta que la submarginal; estigmal corta y flecos
marginales más cortos que el ancho máximo del ala (figura 9). Las patas con tarsos
pentámeros o a veces los tarsos de la pata media con cuatro segmentos (figura 10). El
gáster posee siete tergitos y ovipositor expuesto. La genitalia del macho es larga y angosta
(De Santis, 1948; Yasnosh, 1987; Polaszek et al., 1999).
Figura 6: Antena de la hembra de Eretmocerus sp.
Figura 7:Hembra de Encarsia sp.
Figura 5: Antena del macho de Eretmocerus sp.
Figura 8: Antena de Encarsia sp.
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De las 685 “pupas parasitoidizadas”, nacieron 519 adultos y se realizaron 470 preparaciones
microscópicas, encontrándose cuatro morfoespecies del género Eretmocerus y dos
morfoespecies del género Encarsia. Estas pueden ser apreciadas en el gráfico 1.
0
20
40
60
80
100
120
Fecha
Nº
de in
divi
duos
Encarsia sp. Eretmocerus sp.
Gráfico 1: Fechas de muestreo y número de individuos encontrados de Encarsia sp. y
Eretmocerus sp.
Figura 9: Ala de Encarsia sp.
Figura 10: Tarsos de Encarsia sp.
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Del total de parasitoides recolectados 659 (96%) individuos pertenecen al género
Eretmocerus y 25 (4%) a Encarsia (gráfico 2).
4%
96%
Encarsia sp. Eretmocerus sp.
Gráfico 2: Porcentajes de individuos de los géneros Eretmocerus sp. y Encarsia sp.
CONCLUSIONES
Se identificaron y caracterizaron dos géneros de microhimenópteros parasitoides sobre
Bemisia tabaci, Eretmocerus sp. y Encarsia sp
El género predominante es Eretmocerus.
Dentro de ellos se encontraron seis morfoespecies perteneciendo cuatro de ellas al género
Eretmocerus y las dos restantes al género Encarsia.
El conocimiento de los enemigos naturales de B. tabaci en el cultivo de pimiento bajo
cubierta es de fundamental importancia para orientar la producción hacia un manejo
integrado de plagas que sea compatible con las buenas prácticas agrícolas. Se deben
continuar los trabajos de identificación y caracterización de las especies encontradas como
así también evaluar su efectividad como agentes de control biológico.
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