Upload
hoangcong
View
218
Download
0
Embed Size (px)
Citation preview
UNIVERSITE KASDI MERBAH OUAREGLA
Faculté des Sciences et Sciences de l’Ingénieur
Département de Génie des Procédés
Mémoire
MASTER ACADEMIQUE
Domaine : Sciences et Techniques
Filière : Génie des Procédés
Spécialité : Analyse et contrôle de qualité
Présenté Par : Boussehel fouzia
Thème
Devant le jury :
Le 08/06/2015
Ghiaba zineb UKMO Encadreur
Ben abdslam soulaf UKMO Présidente
Akchiche zineb UKMO Examinatrice
Année Universitaire 2014-2015
Etude phytochimique des gousses de
l’acacia arabica aux propriétés
antioxydants et antiradicalaires
Remerciement
Je tiens à remercie toute la derection de gene de proucide et mon encadreur * Gaiaba zaineb * et sertout *M . Moulay yamina* En fin je remercie chaleureument mon responsable de département *Mr. Tabchouche ahmed* Merci a tout ceux qui ont contribuéde pres au de lion ala rélisation de ce travail .
Liste des figures
Figure I-1 : L’arbre de l’Acacia arabica 6
Figure I-2 : Gousses de l’Acacia arabica 7
Figure II.1 : Schéma général de l’oxydation des acides gras et niveaux d’action des
antioxydants. 11
Figure IV-1 : Gousses et graines de l’Acacia arabica. 16
Figure IV-2 : extraction de compose phénolique 20
Figure V-1 : spectrophotomètre 23 23
Figure V-2. Courbe d’étalonnage de l’Acide gallique 24
Figure V.3 : Courbes représentants le pouvoir réductrice des extraits phénolique 24
Figure V.4 : Courbe étalonnage de la Rutine 26
Figure V.5: Comparaison entre la quantité des phénols totaux et les flavonoïdes dans les extraits
étudier 26
Figure V.6 : Courbe étalonnage de l’acide ascorbique dans extraits (V.C) 28
Figure V.7. : Courbe teste d’AEAC G et méthanol 29
Schéma IV-1 : Représentation schématique des étapes de l’étude réalisée. 19
Schéma IV-2. Extraction des composés phénoliques. 21
Liste des tableaux
Tableaux I 1: Présent système de plant 6
Tableau III-1. Principales classes de composés phénoliques 13
Tableaux IV 1 : De produite chimie utilise 15
Tableau VI-1. Teneurs en phénols totaux dans les extraits. 25
Tableau VI-2. Teneurs en flavonoïdes dans les extraits. 27
Tableau VI-3. Teneurs en pm dans les extraits 29
Tables des matières
PARTIE THEORIQUE
Liste des figures
Liste des tableaux
Remerciement
Introduction 1
Chapitre I : Etude général de l’acacia arabica
I-Généralités sur les plantes médicinales 2
I-1Définition 2
I-1-2 Définition d’une plante médicinale 2
I-1-3 L’importance de l’utilisation les plantes médicinales 3
I-1-4 Domaines d’application des plantes médicinales 4
I-2 Etude Botanique de l’Acacia arabica 3
I-2-1 Origine et répartition géographique 3
I-2-2 Fruit de plante médicinale 4
I-3 Croissance et développement 4
I -4 La phytothérapie 5
I -4-1-Définition de la Phytothérapie 5
Chapitre II : Notion de stress oxydative et l’activité antioxydant
II - l’activité antioxydant 8
II.1. Définition d’antioxydant 8
II -2 Radicaux libres 8
II -2-1 Définition d’un radical libre 8
II-4Définition du stress oxydatif 9
II L’activité antioxydant 9
II -4- 1 Définition l’activité antioxydant 9
II -4-2Mécanisme d’action d’un antioxydant 9
Chapitre III : Les composes phénolique
III Les composes phénolique 10
III-1 Définition de les composes phénolique 10
III - 2Classification des composes phénoliques 10
III - 3Les flavonoïdes 12
III -3-1 Définition des flavonoïdes 12
III – 3-2 Structure de flavonoïdes 12
Chapitre IV : partie expérimental
IV-1-1-Matériel et équipement 14
IV-1-2-Matériel végétal 14
IV-1-2-1 Identification de la matière première 14
IV-1-2-2 Caractères morphologiques 14
IV -1-2-3Caractères organoleptiques 15
IV-2-Méthodes 15
IV.2.1 Méthodes utilises 15.16
IV-2-2Extraction et analyse quantitative 17
1-Méthode d’extraction 17
Extraction des composés phénoliques 17.18
2- Analyse quantitative des composés phénoliques 19
a) Dosage des phénols totaux 20
b) Dosage des flavonoïdes 20
Procédure expérimentale 21
c -Test d’AEAC 22
Procédure expérimentale 22
IV-3Résultats de l’analyse quantitative 23
IV-3-1 Taux des phénols totaux 23
IV-3-2 Dosage des flavonoïdes 24
IV.3.2.2. Résultats et discussion 25
IV.4.2.1. Courbe d’étalonnage 27
Conclusion général 31
Référence bibliographie 32.33
résumé
Introduction
1
Introduction
L’Algérie dispose d’une grande diversité floristique à laquelle s’ajoute une tradition séculaire
d’utilisation traditionnelle des plantes. La sélection de la plante Acacia arabica s’est fondée sur
son intérêt pharmaceutique dans la région de Tamanrasset, où elle est connue pour ses remèdes
contre plusieurs maladies telles que : les saignements de la gencive, les irritations de la gorge,
l’eczéma, la conjonctivite,…etc. elle est aussi utilisée pour ses propriétés antiseptiques et
antifongiques.
Le but de cette étude consiste à renforcer la connaissance phytochimique des extraits de la plante
d’Acacia arabica à savoir : les phénols totaux et les flavonoïdes, et à mettre en évidence leurs
activités antioxydants et inhibitrices de la corrosion, en vue de leur utilisation ultérieure dans le
domaine pharmaceutique ou industriel.
Le mémoire contient deux parties, la premier partie consiste à une étude bibliographique, elle
comporte trois chapitres, dans le premier chapitre on a s’intéresse à donner quelques
connaissances bibliographique sur la phytothérapie , le deuxième chapitre on a donné quelques
informations sur les composés phénoliques, le troisième chapitre est consacré pour donner
quelques connaissances sur les radicaux libres et l’activité antioxydant, ainsi les méthodes
utilisées pour l’évaluation du potentiel antioxydant dans des différents systèmes modèles .
Nous présenterons dans la partie expérimentale, une description botanique générale de l’arbre
comme un premier chapitre. La quantification des composés phénoliques totaux et l’évaluation
de l’activité antioxydant des différents extraits, seront le sujet de deuxième chapitre.
A l’issue de cette étude, nous attendons aux travers les résultats découlant de nos travaux, une
valorisation de cette partie de la plante par les tests réalisés.
Extraction et quantification des composés phénoliques des cosses et graines de l’Acacia arabica
par macération douce dans deux systèmes de solvants.
En fin le sixième chapitre discutera les résultats obtenus dans cette étude. Nous rapportons aussi
une étude comparative sur la propriété antioxydant des différents extraits obtenus afin de choisir
les composés les plus efficaces.
Chapitre Généralités sur la plante
2
I-Généralités sur les plantes médicinales
Pendant longtemps, les remèdes naturels et surtout les plantes médicinales furent le
principal, voire l’unique recours de la médecine de nos grands parents, cependant, malgré le
développement de l’industrie pharmaceutique qui a permis à la médecine moderne de traiter un
grand nombre de maladies qui étaient souvent mortelles, les plantes médicinales et les remèdes
qu’on pouvait en tirer ne furent jamais totalement abandonnés et les gens ne cessèrent jamais de
faire appel à la médecine traditionnelle, ce qui a conduit à maintenir vivante une tradition
thérapeutique connue depuis nos ancêtres. [1]
I-1Définition :
On appelle plante médicinale toute plante renfermant un ou plusieurs principes actifs
capables de prévenir, soulager ou guérir des maladies. Certaines plantes contenant toute une
gamme de matières efficaces, peuvent avoir des actions très différentes suivent leur mode de
préparation. [2]
Depuis toujours les plantes ont constitué la source majeure de médicaments grâce à la richesse de
ce qu’on appelle le métabolisme secondaire. Cependant, l’homme n’à découvert les vertus
bénéfiques des plantes que par une approche progressive, facilitée par l’organisation des rapports
sociaux, en particulier à partir du néolithique. [3]
Certaines plantes sont inoffensives, mais d'autres, dite nombreuses (digitale, belladone,
colchique, etc.), sont toxiques et ne sont utilisées que sous des formes bie contrôlées,
exclusivement commercialisées en pharmacie. L'emploi inconsidéré de plantes cueilles dans la
nature peut aboutir a des intoxications graves, voir mortelles. [4]
I-1-2 Définition d’une plante médicinale :
Une plante médicinale est une plante utilisée pour ses propriétés thérapeutiques. Cela
signifie qu'au moins une de ses parties (feuille, tige, racine etc.) peut être employée dans le but
de se soigner. Son efficacité relève de ses composés, très nombreux et très variés en fonction [5]
Des espèces, qui sont autant de principes actifs différents. [6]
Chapitre Généralités sur la plante
3
I-1-3 L’importance de l’utilisation les plantes médicinales :
Les plantes médicinales sont soigner des maladies simples comme le rhume, ou d'en
prévenir de plus importantes comme l'ulcère, la migraine, l'infarctus en plus de certaines
allergies ou affections. Si l'on y ajoute leurs vertus réparatrices, tonifiantes, sédatives,
revitalisantes ou immunologiques, on mesure mieux l'aide précieuse qu'elles sont susceptibles de
nous apporter au quotidien. [7]
I-1-4 Domaines d’application des plantes médicinales :
Il y un intérêt progressif dans l'utilisation des plantes médicinales dans les pays
développés comme dans les pays en voie de développement, parce que les herbes fines
guérissent sans effet secondaire défavorable. Ainsi, une recherche de nouvelles drogues est un
choix normal. [8]
Utilisation en médecines en tant que médicament pour l’homme ; exemple : Réduisaient le
risque de nombreuses maladies chroniques comme le cancer, les accidents vasculaires
cérébraux et les coronaropathies.
Une action sur le système nerveux, la circulation sanguine, une action antibiotique,…etc. [9]
En alimentation : Assaisonnements, des boissons, des colorants et des composés
aromatiques. Les épices et les herbes aromatiques.
En cosmétique :
Des produits de beauté, parfums et articles de toilette, produits d’hygiène.
Des suppléments diététiques. [10]
I-2 Etude Botanique de l’Acacia arabica
Les légumineuses sont des plantes herbacées ou teigneuses, à feuilles isolées, stipulées et
généralement composées. Le fruit est une gousse ou légume, s’ouvrant par deux valves. Cette
famille est l’une des plus importantes du règne végétal avec 13000 espèces, est divisée du point
de vue systématique en trois sous-familles : Papilionacées, Césalpiniées et mimosée. [11]
Chapitre Généralités sur la plante
4
Figure I-1. L’arbre de l’Acacia arabica [1].
Systématique de la plante
Se tableau repesent le système d’acacia arabica
Tableaux I-1: Présent système de plant
Règne Végétal Ordre Rosales
Sous règne Eucaryotes Sous-ordre Rosinées
Embranchement Spermaphytes Famille Fabaceae
S/Embranchement Angiospermes Sous famille Mimosoideae
Classe Dicotylédones Genre Acacia-Mil.
Sous classe Dialypétales Sous-genre Acacia arabica Wil
I-2-1 Origine et répartition géographique :
Acacia Arabica est indigène dans les zones sèches d’Afrique tropicale. En Afrique, on le
trouve du Sénégal. À l’Egypte et vers le sud, de l’Afrique orientale jusqu’au Mozambique on
Algérie il y a une petite quotité ver e sud. [12]
I-2-2 Fruit de plantes médicinales:
Gousse oblongue à linéaire, aplatie, de 4–22 cm × 1–2 cm, droite ou courbe, bords
entiers ou profondément comprimés entre les graines, l’emplacement de chaque graine
clairement marqué par une nette protubérance sur les valves des gousses, marron foncé à grise,
Chapitre Généralités sur la plante
5
glabre ou duveteuse, indéhiscente, contenant 6–17 graines. Graines à contour elliptique à
circulaire, aplaties, de 6,5–9 mm × 5–8 mm, brun foncé à noir brunâtre. Plantule à germination
épigée ; cotylédons circulaires ovales, pétiolés. Figure I-2 [13]
Figure I-2. Gousses de l’Acacia arabica [1].
I-3 Croissance et développement :
Acacia Arabica est une espèce pionnière. Un système racinaire profond et étendu se
forme dans les endroits secs, la racine pivotante se développant d’abord suivie par les racines
latérales, qui deviennent compactes et massives avec l’âge. Dans les endroits inondés en
revanche, le système racinaire est largement latéral. Acacia arabica forme des nodosités et fixe
l’azote partout dans son aire de répartition naturelle. Il ne drageonne que très rarement. Acacia
arabica fleurit relativement tôt, vers l’âge de 3–4 ans environ dans des conditions idéales. La
floraison est prolifique et intervient sur les pousses de la saison en cours, principalement durant.
[14]
I -4 La phytothérapie :
La phytothérapie est un mot composé de deux mots grec ; phyto : plantes et trepia le mot
phytothérapie provient de deux mots grecs qui signifient essentiellement soigner avec les plantes.
Il s'agit d'une pratique millénaire basée sur un savoir empirique qui s'est transmis et enrichi au fil
d'innombrables générations15.
Dans le domaine de soin par les plantes, on remarque deux tendances majeures. Certain
intervenant met surtout l'accent sur les connaissances empirique des plantes et sur leurs effets
Chapitre Généralités sur la plante
6
reconnus depuis la nuit des temps. Préconisant une approche holistique, ils s'intéressent aux
effets d’al dans sa globalité, sur tout individu. D'autres se basent davantage sur les connaissances
biochimiques et se préoccupant plutôt des symptômes des maladies et de l'action des principes
actifs des plantes. 16]
I -4-1-Définition de la Phytothérapie :
D'un point de vue étymologique, le terme « pytos » de phytothérapie provient du grec
ancien avec le terme plus précis de « phyton » et signifie « végétal ». La phytothérapie est donc
la « thérapie par le végétal ou par le monde végétal», c’est la connaissance et l'utilisation des
propriétés thérapeutiques des plantes. [17]
Chapitre II Notion de stress oxydative et l’activité antioxydant
7
II - L’activité antioxydant :
II.1. Définition d’antioxydant :
Le terme « antioxydant » désigne une substance qui, ajoutée à faible dose à des matières
spontanément à l’air, est capable d’empêcher l’action de l’oxygène. Elle interfère sur le
processus normal d’oxydation en augmentant le temps au bout duquel cette oxydation aura
produit des odeurs indésirables et une détérioration décelable.
Toutefois, pour être efficace, les antioxydants doivent être additionnés le plus tôt possible dans le
processus de fabrication. Ils ne peuvent en effet inverser la réaction d’oxydation, mais seulement
la ralentir ou stopper [16].
II -2 Radicaux libres :
Les radicaux libres ont un rôle majeur dans a formation de stress antioxydant. Ces
radicaux sont des produits des irradiation (par la lumière UV, rayons X et les rayons ϒ),des
réaction métalcataysées ; comme its sont produits par les neutrophiles et les macrophages
pendant l’inflammation et par les réaction de transport d’électron catalysées au niveau des
mitochondries .L’ingestion d’alcool, des antibiotique ,des anticancéreux, l’infection au VIH ont
pour effet d’accroitre la production des radicaux libres dans l’organisme
(FAVIER ;MOHAMMEDI ).Ces radicaux sont présent également comme dépolluants dans
l’atmosphère (VALKO) . [17]
II -2-1 Définition d’un radical libre
La majeure partie de la toxicité de l’oxygène provient de la formation de radicaux libres.
Selon la définition proposée par Halliwell et Gutteridge, les radicaux libres sont des espèces
capables d’existes indépendante, contenant un ou plusieurs électrons non appariées dits électrons
célibataires, ces radicaux peuvent se former par transferts mono-électroniques ou par scission
homolytique de liaison covalente l’équation suivant [20]
Chapitre II Notion de stress oxydative et l’activité antioxydant
8
Après une rupture homolytique, chacun des deux électrons intervenant dans la liaison entre les
atomes A et B gagne l’orbitale externe de ces atomes, qui deviennent alors des radicaux libres
[21]
II-3-Définition du stress oxydatif :
Le stress oxydatif réfère à une perturbation dans la balance métabolique cellulaire durant
laquelle, la génération d’oxydants accable le système de défenses antioxydants, que ce soit par
une augmentation de la production d’oxydants et/ou par une diminution des défenses
antioxydants [22].
II -4 L’activité antioxydant :
Pour échapper aux conséquences du stress oxydant, il est nécessaire de rétablir l’équilibre
oxydant / antioxydant afin de préserver les performances physiologiques de l’organisme.
Les antioxydants font actuellement l’objet de nombreuses études car, en plus d’un intérêt certain
dans la conservation des denrées comestibles, ils pourraient s’avérer utiles dans la prophylaxie et
le traitement des maladies dans lesquels le stress oxydant est incriminé. [23]
II –4- 1 Définition l’activité antioxydant :
Un antioxydant est défini comme étant toute substance qui peut retarder ou empêcher
l’oxydation des substrats biologiques, se sont des composés qui réagissent avec les radiaux libres
et les rendent ainsi inoffensifs. La raison pour laquelle les antioxydants sont importants vient du
fait que l’oxygène est un élément potentiellement toxique puisqu’il peut être transformé en
formes plus réactives telles que le su peroxyde , le peroxyde d’hydrogène , l’oxygène single et
les radicaux hydroxyle ,collectivement connu sous le nom d’oxygène actif (BOYD) [24]
II -4-2Mécanisme d’action d’un antioxydant:
D’une manière générale, un antioxydant peut empêcher l’oxydation d’un autre substrat en
s’oxydant lui-même plus rapidement que celui-ci. Un tel effet résulte d’une structure de donneur
d’atome d’hydrogène ou d’électrons souvent aromatiques cas de dérives du phénol. En plus leurs
radicaux intermédiaires sont relativement stables du fait de la délocalisation par résonance et par
manque de positions appropriées pour être attaqué par l’oxygène moléculaire. [25]
Chapitre II Notion de stress oxydative et l’activité antioxydant
9
Figure II.1 : Schéma général de l’oxydation des acides gras et niveaux d’action des
antioxydants.
Chapitre III les composés phénoliques
10
III Les composes phénolique
III-1 Définition de les composes phénolique :
Les composes phénolique ou poly phénols sont des métabolites secondaires caractérisés
par la présence d’un cycle aromatique portant des groupement hydroxyles libres ou engagés avec
un glucide .ils sont présents dans toutes parties des végétaux supérieurs ( racines ,tiges ,feuilles ,
fleurs , pollens ,fruits ,graines et bois ) et dans le miel (naturellement ,puis qu’est tire son origine
des plantes que butinent les abeilles ) , ils sont aussi impliqués dans de nombreux processus
physiologiques comme la croissance cellulaire ,la rhizogenése , la germination des graines ou la
maturation des fruits . [26]
III - 2Classification des composes phénoliques :
Les composes phénolique regroupent un vaste ensemble de substances chimiques
comprenant au mois un noyau aromatique, et un ou plusieurs groupes hydroxyle, en plus d’autres
constituants. [28]
Les principales classes qui sont largement répandues :
Les acides phénoliques (acides hydroxybenzoïques, acides hydroxycinnamiques),
Les flavonoïdes.
Les tanins et lignines
Chapitre III les composés phénoliques
11
Squelette
carboné
Classe Exemple Origine structure
C6 Phénols simples Catéchol Nombreuses
espèces
C6-C1 Acides
hydroxybenzoïque
p-
hydroxybenzoïque
Epices,
fraise
C6-C3 Acides
hydroxycinnamiques
Acide caféique,
Acide férulique
Pomme de
terre,
pomme,
citrus
Phénylpropène Myristicin, Eugénol
Coumarines Scopolitine
Isocoumarines Myristicine,
Eugénol
Chromones Eugénine Noix
C6-C4 Juglone,
plumbagine
C6-C1-C6 Xanthones Mangiferine
C6-C2-C6 Stilbènes Resvératrol Vigne
Anthraquinones
C6-C3-C6 Flavonoïdes,
isoflavonoïdes
Quercétine,
cyanidine,
daidzéine
Fruits,
légumes,
fleurs,soja,
pois
(C6-C3)2 Néolignanes Eusidérine Pin
Lignanes Pinorésinol
(C6-C3-C6 Biflavonoïdes Amentoflavone
(C6-C3)n Lignines Bois, fruits à
noyaux,
raisins, kaki
(C6-C3-
C6)n
Tanins condensés
Tableau III-1. Principales classes de composés phénoliques [28]
OH
OHHO
Chapitre III les composés phénoliques
12
III – 3 Les flavonoïdes :
Ces composé ne comportent pas des groupements OH en position 3, et présentent de
fortes similitudes de structures avec les flavonoïdes. Dans cette catégorie, il faut ranger les
flavonoïdes responsables de la saveur amère de certaines pamplemousses, citrons, orange : la
naringine (naringénol lié à du glucose et du rhamnus),l’hespéridine. (Alais et linden, ) [29]
III -3-1 Définition des flavonoïdes :
Le terme "flavonoïdes", utilisé pour la première fois par Geissman et tlinrenier, Le terme
flavonoïdes rassemble une très large gamme de composes naturels appartenant à la famille des
polyphenoles sont présents dans toutes les parties des végétaux supérieurs (racines, tiges,
feuilles, fleurs, pollens, fruits, graines, bois). Leur fonction principale semble être la coloration
des plantes (au-delà de la chlorophylle, des caroténoïdes et des béta laines), si leur présence est
parfois masquée par leur présence sous forme «leuco », ce qui explique leur intérêt commercial
dans l’industrie alimentaire
Les flavonoïdes (du latin favus, jaune) sont des substances généralement colorées répondues
chez les végétaux ; on les trouve dissoutes dans la vacuole à l’état d’hétérosides ou comme
constituants de plastes particuliers, le chromo plastes. [30]
III-3-2 Structure de flavonoïdes :
Les flavonoïdes ont une origine biosynthétique commune et ils possèdent tous un
squelette de base à quinze atomes de carbone constitué de deux unités aromatiques, de cycle en
C6, reliés par une chaine en C3 [31]
Chapitre IV Partie expérimentale
13
Mode opératoire
L’opération est dans l’laboratoire génie de procédés
Le matériel utilisé dans la partie expérimentale, est décrit ci-après :
Solvants et produits chimiques :
Tableaux IV 1 : Les produits chimiques utilisés
Produits Propriétés
Méthanol Pureté de 99% Biochem Chemopharma
Acétone Pureté de 99% Merk
Eau distillée
Ether de pétrole d=0,65
Acétate d’éthyle d=88,1, 99,8%, C4H8O2
Ethanol 95%, d=46,7
Sulfate d’ammonium SO4 (NH4)2, d=132,14
Acide ortho- phosphorique H3PO4 (85%) Riedel
Acide chlorhydrique P=36% d=1.178 M=36.5 g/mol
Réactif de Folin d=1,22
DMF
Na2CO3 d=105,99, 99,8%
Verrerie et petit matériel:
Pipette de 1ml, 10ml, 25ml.
Fioles de 10ml, 20ml, 50ml et 100ml.
Tubes à essai.
Ellen Meyer
Entonnoirs.
spectrophotomètre.
Béchers de 50ml, 100ml.
Spatule
Ampoules à décanter.
Ballons
Chapitre IV Partie expérimentale
14
IV-1-1-Matériel et équipement
Les équipements et conditions expérimentales de nos expériences sont indiqués dans
l’annexe.
IV-1-2-Matériel végétal
Les cosses (gousses égrenées) et les graines de l’Acacia arabica ont été collectées en
2014, l’arbre est de la région d’Amsel, à 30 Km du centre de la wilaya de Tamanrasset par MME
Moulay.
Le séchage des gousses a été effectué dans un endroit aéré sous l’ombre à une
température ambiante, puis le stockage dans des sacs en tissu jusqu'à utilisation. Pour le broyage,
il a été fait par le broyeur électrique, on a obtenu des poudres fines de couleurs marron et
jaunâtre des cosses et graines respectivement. Ces poudres ont été utilisées pour les
investigations photochimiques mentionnées ci-après. [29]
IV -1-2-1 Identification de la matière première
IV-1-2-2 Caractères morphologiques :
Les gousses de l’acacia arabica sont droites, rugueuses et de couleur brun grisâtre.
Figure IV-1 : Gousses et graines de l’Acacia arabica.
Chapitre IV Partie expérimentale
15
IV-1-2-3Caractères organoleptiques :
La poudre des gousses égrenées (gousses) de l’Acacia arabica est de couleur marron,
d’odeur faible et de saveur astringente.
La poudre des graines de l’Acacia arabica est de couleur jaunâtre, d’odeur faible et de
saveur astringente. [30]
IV-2-Méthodes :
IV.2.1. Méthodes utilises :
Ces méthodes sont consacrées à la mise en point d’une méthode permettant d’extraire et
de doser les parties étudies de la plante en polyphénols totaux, à fin d’une part de pouvoir les
classer suivant leur activité antioxydant, et d’autre part de découvrir des propriétés biologiques
des extraits ou des molécules isolés.
Tous utilisent des extraits préparés à partir de la poudre végétale, c’est pourquoi dans un
premier temps deux types d’extraits bruts ont été préparés, à savoir un extrait au méthanol et un
extrait à l’acétone. La raison de choix de ces deux solvants est de couvrir une large gamme de
polarité dans le cadre d’un calibrage préliminaire. Par la suite les extraits obtenus ont été étudiés
dans divers domaines. [31]
Nos études ont été surtout guidées par deux idées majeures suivantes :
La quantification d’extraits en composés phénoliques totaux et en flavonoïdes par des
simples méthodes basées sue la spectrophotométrie UV.
Dans l’optique de découvrir de nouvelles molécules possédant une activité antioxydant
pour lutter contre les radicaux libres responsables de la dégradation des cellules vivantes, nos
extraits ont été testés pour leur effet antioxydant dans deux systèmes modèles. [32]
Compte tenu de nos objectifs que nous sommes fixes, la démarche expérimentale que nous avons
adapté est de mettre au point une technique d’extraction des composés phénoliques dans les
différentes parties étudiées permettant de procéder ensuite à la fois à un dosage quantitatif de
Chapitre IV Partie expérimentale
16
l’activité antioxydant des extraits et à un isolement des composés responsables de cette activités.
[33]
Dans un premier temps nous testons deux méthodes d’extraction pour la quantification des
phénols totaux. Dans un second temps, nous décrivons les différents moyens d’évaluation de
l’activité antioxydant.
La complexité des mélanges d’extraits, nous amène à mettre au point une méthode d’extraction
simple pour l’extraction des polyphenoles.
Enfin, nous isolons purifions les composés phénoliques responsables à cette activité antioxydant.
Le schéma pesant les étapes réalise. [34]
Remarque : pour évalué l’efficacité de chacune des parties étudiées de la plante, nous avons
appliqué un protocole identique d’extraction par deux solvants différents déjà cités avant, et de
dosage des phénols totaux ainsi que le dosage de l’activité antioxydant pour chacun des extraits
parties étudiées.
Matière végétale
Séchage
Broyage mécanique
Pesée
Extraction des composés
Phénoliques
- Dosage des polyphénols
totaux.
- Dosage des flavonoïdes.
- Evaluation de l’activité
antioxydante.
- Evaluation de l’activité
inhibitrice.
Chapitre IV Partie expérimentale
17
Schéma IV-1. Représentation schématique des étapes de l’étude réalisée.
IV-2-1-Extraction et analyse quantitative
1-Méthode d’extraction :
La méthode d’extraction des composés phénoliques utilisée est celle d’Amiot (hertog )
modifiée (Djeridane ). L’objectif de l’étape de l’extraction est de séparer les substances
phénoliques de la poudre solide et de les faire passer en solution. [35]
Elle est réalisée en trois étapes :
Extraction des composés phénoliques :
Les échantillons déjà séchés à l’abri de la lumière et à température ambiante, sont
finement broyés. La poudre ainsi obtenue est ensuite macérée dans deux mélanges méthanol/eau
(8 :2 V/V) et acétone/eau (7 :3 V/V) séparément, pendant 48 heures à température ambiante.
Les extraits hydrométhanoliques et hydroacétoniques ont été récupérés dans un premier temps
après filtration des mélanges, la phase aqueuse a été éliminée des filtrats par évaporation sous
pression réduite dans un rota vapeur. Permettant ainsi d’obtenir des extraits caractérisés par une
couleur brune foncée pour ceux des cosses, et une couleur verte foncée pour ceux des graines qui
sont considérés comme étant les extraits bruts des cosses et graines de l’Acacia arabica.
Dépigmentation
Cette étape appelée aussi élimination des lipides, consiste à faire passer les extraits bruts
par une extraction liquide-liquide en utilisant l’éther de pétrole comme solvant d’extraction :
Pour les extraits obtenus par macération dans le système méthanol/eau, les lipides
ont été extraits en trois fois 120ml/120ml/60ml d’éther de pétrole.
Pour les extraits obtenus par macération dans le système acétone/eau, les lipides
ont été extraits en trois fois 180ml/180ml/90ml d’éther de pétrole.
Chapitre IV Partie expérimentale
18
Purification des composés phénoliques
Ensuite, les composés phénoliques ont été extraits par extraction liquide-liquide en
utilisant l’acétate d’éthyle, en ajoutant des solutions de l’acide orthophosphorique et de sulfate
d’ammonium au cours de l’extraction pour améliorer le rendement en composés phénoliques
Figure IV-2 : extraction de compose phénolique
Chapitre IV Partie expérimentale
19
Schéma IV-2. Extraction des composés phénoliques.
2- Analyse quantitative des composés phénoliques
a) Dosage des phénols totaux :
Le dosage des polyphenoles totaux a été effectué par une méthode adaptée par Singleton
et Ross (en1965) avec le réactif de Folin-Ciocalteu [36]. Le réactif est formé d’acide
phosphotungstique H3PW12O40 et d’acide phosphomolybdique H3PMo12O4, qui sont réduits lors
de l’oxydation des phénols en oxydes bleus de tungstène (W8O23) et de molybdène (Mo8O3), ce
qui nous aide à doser les phénols dans le visible à une longueur d’onde de l’ordre de 760nm.
Chapitre IV Partie expérimentale
20
Procédure expérimentale :
Une courbe d’étalonnage standard a été obtenue à partir des solutions d’acide gallique de
différentes concentrations. 100μl de chaque solution ont été introduits à l’aide d’une
micropipette dans des tubes à essai, suivis de l’addition de 500μl du réactif de Folin-Ciocalteu.
Après incubation pendant 2 minutes, 2ml de carbonate de sodium à 20% ont été ajoutés, puis
les solutions ont été secouées immédiatement et sont maintenues à l’obscurité pendant 30
minutes à température ambiante. L’absorbance de chaque solution a été déterminée à 760nm
contre un blanc (même solution précédente à l’exception de l’extrait phénolique : l’acide
gallique). Sur un spectrophotomètre.
Les lectures de la densité optique à 760nm, des solutions ainsi préparées ont permis de tracer la
courbe d’étalonnage de l’acide gallique. L’analyse quantitative des phénols totaux des extraits
phénoliques a été réalisée par la même procédure.
b) Dosage des flavonoïdes
La quantification des flavonoïdes a été effectuée par une méthode adaptée par Zishen et
al [37] basée sur la complication des flavonoïdes par l’aluminium en utilisant une solution de
trichlorure d’aluminium comme réactif dans cette méthode.
Procédure expérimentale :
La rutine a été utilisée comme étalon. Pour tracer la courbe d’étalonnage, Une solution de
0.2 g/l de rutine a été préparée dans le méthanol. Avec ce solution mère, on prépare une série des
solutions diluées d’une concentration 0.01 jusqu'à 0.12 g/l. 1 ml de chaque solution ainsi préparé
a été mélangé avec 1 ml d’une solution méthanoïque de chlorure de sodium (AlCl3 10%), en
suite phosphatée. Les solutions ont été secouées immédiatement et bien mélangées, puis ils se
sont maintenus dans un bain marie pendant 30min à une température de 50°C, ensuite on ajoute
de l’acide trichloracétique (TCA 10%). On prend de chaque tube 2.5ml et on ajoute 2.5ml d’eau
distillée, 0.5 de solution de FeCl3 (0.1%) [38].
L’absorbance de chaque solution a été mesurée à 700nm contre un blanc, ces lectures ont permis
de tracer la courbe d’étalonnage de l’acide ascorbique. Les différents extraits ont été traités de la
même façon pour tracer les courbes représentantes de la variation du pouvoir réducteur exprimée
en absorbance en fonction de l’inverse du nombre de dilution.
Chapitre IV Partie expérimentale
21
c) Evaluation du pouvoir antioxydant:
Des nombreuses méthodes sont utilisées pour l'évaluation de l'activité antioxydant des composés
phénoliques purs ou des extraits. La plupart de ces méthodes sont basées sur la col0ration ou la
décol0ration d’un réactif dans le milieu réactionnel. Dans notre étude on utilisé un test chimique
à savoir : le test Antioxydant Power Assay qui mesure le pouvoir de réduction des ions de fer
[39]
Le pouvoir réducteur des composés phénoliques (Reducing Power Assay) :
Ce test a est découvert par oyaizu 1896 [40] .Ce test est considéré comme un test direct et rapide
que est utilisé pour mesurer le pouvoir des antioxydants non enzymatiques, et utilisé pour
déterminer I ‘activité antioxydant d’ extraits étudies dans un milieu neutre
Ce test est basé sur la réduction des ions [Fe (CN) 6]3 à des ions de [Fe (CN) 6]2 qui donne
(avec la présence des ions Fe3⁺) une coloration bleu claire, dont on peut mesurée 1' absorbance à
longueur d'onde λ= 700 nm, et ce par le mécanisme réactionnel suivant :
Fe(CN)6 + é(produit par les phénols) + Fe3+
[Fe(CN)6 ]4-
+Fe3+
Coloration jaune Complexe bleu
L’activité antioxydant est mesurée avec un nouveau terme appelé AEAC : qui présente
L’activité antioxydant en équivalant de l’acide ascorbique d’extraits étudie (Ascorbic
Acide Equivalent Antioxydant Capacité)
L’évolution de l'activité antioxydant de nos extraits est comparée par rapport à l'acide ascorbique
(vitamine C) et cela en traçant une courbe d'étalonnage de ce déminé .
Courbe d'étalonnage :
On prépare des solutions d'acide ascorbique (vitamine C) de concentration de 0.01 jusqu'à
0.1 g/1. 1 ml de chaque solution ont été introduits à l'aide d'une pipette dans des tubes à essai,
suivis de l'addition de 2.5 ml d'une solution K3Fe(CN)6 1%), 2.5 ml de solution tampon
phosphaté. Les solutions ont été secouées immédiatement et bien mélangées, puis ils sont
maintenus dans un bain marie pendant 30 minutes à une température de 50 °C. En suite, on
ajoute 2.5 ml de |acide trichroracétique (TCA 10%). on prend de chaque tube 2.5ml introduit
dans un autre tube à essai et on ajoute 2.5 ml de l’eau distillé, 0.5 ml de solution
FeCl3 (0.1 %).[40]
.
L'absorbance de chaque solution a été déterminée à 700 nm contre un blanc. Le lecteur de la
densité optique à700 nm, des solutions ainsi préparées ont permis de tracer la courbe détalonnage
de l'acide ascorbique (Vitamine C).
Remarque : on prend l’acide gallique comme un standard comparatif.
Chapitre V Résultats et descut
23
V-1-Résultats de l’analyse quantitative
V-1- Des phénols totaux :
La teneur en composés phénoliques d’extrait a été calculée à partir de la courbe
d’étalonnage de l’acide gallique (figure V-1), et exprimée en milligrammes par gramme de la
matière sèche équivalent en acide gallique.
Les résultats obtenus sont présentés dans le tableau V-1
Remarque : on prend l’acide gallique comme un standard comparatif.
Figure V-1. Courbe d’étalonnage de l’Acide gallique.
Résultats et discussion :
L’analyse quantitative des phénols totaux des extraits phénoliques a été réalisée en adaptant la
même procédure utilisée pour l’établissement de la courbe d’étalonnage. La quantité des phénols
totaux dans les extraits est exprimée en équivalant d’acide gallique en milligramme par 1g de la
matière végétale (mg/g). Les résultats obtenus sont présentés dans le tableau
La concentration de chaque variété est déterminée par la relation suivante
𝑪 𝒎𝒈/𝒈 = 𝑨
𝑲 × 𝑭 ×
𝑽
𝑷
y = 3,354xR² = 0,996
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
0 0,1 0,2 0,3 0,4
abco
ban
ce (
76
0 n
m)
C g/ml
Chapitre V Résultats et descut
24
Tableau V-1. Teneurs en phénols totaux dans les extraits.
Solvant d’extraction
Echantillon
Acétone / Eau Méthanol / Eau
Gousse 187.75 mg/g 103.2mg/g
A partir des ces résultats de tableau V-1 on remarque que la quantité de polyphenoles
dans les gousses méthanol puis petite que la quantité de polyphenoles dans les gousses actons
V-1-2 Dosage des flavonoïdes :
Le trichlorure d'aluminium forme un complexe très hydroxydes OH des phénols. Ce
complexe jaune absorbe la d'onde 410 nm, stable avec les groupements lumière visible à une
longueur.
V-1-2-1Courbe d’étalonnage
Les flavonoïdes sont estimés par une spectroscopie l’UV, dont la Rutine est utilisé confirme un
standard à une longueur d’onde 410 nm. Courbe d'étalonnage :
Une solution de 0.2 g/l de rutine a été préparée dans le méthanol. Avec ce solution mère, on
prépare une série des solutions diluées d'une concentration 0.01 jusqu'à O.l2 g l .Avec 0.5 ml de
chaque solution ainsi préparée mélangée avec I ml d'une solution méthanoïque de chlorure de
sodium (AlCl3 10yo), on y ajoute I ml d'une solution aqueuse d’acétate de sodium (CH3COONa
0.1 N) Ces solutions ont été bien mélangées, puis maintenues à 1'obscurité pendant 30 minutes à
la température ambiante.
L'absorbance du mélange a été mesurée par spectroscopie UV à longueur d’onde 410 nm contre
un blanc. En utilisant les valeurs des absorbances obtenues pour les différentes solutions de
Rutine ainsi préparées, nous avons tracé la courbe d'étalonnage (Figure V.2).
Chapitre V Résultats et descut
25
Figure V.2: Courbe étalonnage de la Rutine.
Résultats et discussion :
Les différents extraits sont traités de la même façon que ceux des solutions standards Rutine. La
quantité des flavonoïdes dans chaque extrait est exprimée en milligramme par gramme en
équivalent en Rutine. L'ensemble des résultats obtenus par ce test est regroupé dans le tableau
(V.2) ci-après :
Tableau V-2. Teneurs en flavonoïdes dans les extraits
solvant
échantillon
Acétone /eau Méthanol /eau
gousse 0.166 mg/g 0.786 mg/g
Dans les extraits des gousse méthanol la quantité de flavonoïdes est plus petite par pour a la
quantité de flavonoïdes dans gousse acétone.
A partir de ce résultats on pus comparaison :
Comparaison entre phénol totaux et flavonoïdes présenté dans cet histogramme :
y = 7,693xR² = 0,993
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
0,8
0,9
1
0 0,02 0,04 0,06 0,08 0,1 0,12 0,14
abso
rbo
nc
A(
41
0 N
M)
C g/ml
A
Chapitre V Résultats et descut
26
Figure V.7: Comparaison entre la quantité des phénols totaux et les flavonoïdes dans les extraits
étudient
Résultats et discussion :
Apre le histogramme on consulte que la quantité de phénol totaux dans G méthanol et plus
gronde para pour ou G action par contre la quantité de flavonoïde dans G action petite que G
méthanol.
G(Acétone) : Extrait a cétonique des gousses.
G(Méthanol) : Extrait méthodique des gousses. .
V-2 Evaluation du pouvoir antioxydant :
Des nombreuses méthodes sont utilisées pour l’évaluation de l’activité antioxydante des
composés phénoliques purs ou des extraits. La plupart de ces méthodes sont basées sur la
coloration ou la décoloration d’un réactif dans le milieu réactionnel. Dans notre étude nous avons
utilisé trois différents tests chimiques à savoir : le test ferric Reducing / Antioxydant Power
Assay qui mesure le pouvoir de réduction des ions de fer et le test phosphomolybdate qui mesure
le pouvoir réducteur des composés phénoliques.
0
20
40
60
80
100
120
140
160
180
200
Phénol totauxPhénol totauxPhénol totaux
Flavonoides
G : Gousse
Chapitre V Résultats et descut
27
V.4.1. Le pouvoir réducteur des composés phénoliques (Reducing Power
Assay) :
Ce test est découvré par Oyaizu 1896 .Ce test est considéré comme un test direct et rapide
dont est utilisé pour mesurer le pouvoir des antioxydants non enzymatiques, et utiliser pour
déterminer l’activité antioxydant des extraits étudies dans un milieu neutre .
Ce test est basé sur la réduction des ions [Fe (CN)6]3-
à des ions de [Fe (CN)6]4-
qui donne
dans la présence des ions Fe3+
un coloration bleu clair, qui peut être mesurer leur absorbance à
longueur d’onde λ= 700 nm , cela par le mécanisme réactionnel suivant :
𝑭𝒆 𝑪𝑵 𝟔 𝟑− + é 𝒑𝒓𝒐𝒅𝒖𝒊𝒕 𝒑𝒂𝒓 𝒍𝒆𝒔 𝒑𝒉é𝒏𝒐𝒍𝒔 ⟶ 𝑭𝒆 𝑪𝑵 𝟔
𝟒− + 𝑭𝒆 𝟑+
𝒄𝒐𝒍𝒐𝒓𝒂𝒕𝒊𝒐𝒏 𝒋𝒂𝒖𝒏𝒆 𝑪𝒐𝒎𝒑𝒍𝒆𝒙𝒆 𝒃𝒍𝒆𝒖
L’activité antioxydant est mesuré avec un nouveau terme appelé AEAC : qui présente
l’activité antioxydant en équivalant de l’acide ascorbique des extraits étudies (Ascorbic Acide
Equivalent Antioxydant Capacity).
L’évolution de l’activité antioxydant de nos extraits est comparée par rapport à l’acide
ascorbique (vitamine C) et cela en traçant une courbe d’étalonnage de ce dernier.
V.4.1.1. Courbe d’étalonnage :
On prépare des solutions d’acide ascorbique (vitamine C) de concentration de 0.01 jusqu'à 0.1
g/l. 1 ml de chaque solution ont été introduits à l’aide d’une pipette dans des tubes à essai, suivis
de l’addition de 2.5 ml d’une solution K3Fe(CN)6 (1%), 2.5 ml de solution tampon phosphaté.
Les solutions ont été secouées immédiatement et bien mélangées, puis ils sont maintenus dans un
bain marie pendant 30 minutes à une température de 50 °C. En suite, on ajoute 2.5 ml de l’acide
trichloracétique (TCA 10%). On prend de chaque tube 2.5 ml et on introduit dans un autre tube à
essai et on ajoute 2.5 ml de l’eau distillé, 0.5 ml de solution de FeCl3 (0.1 %).
Chapitre V Résultats et descut
28
V-4-1-2 Courbe d’étalonnage
Il est nécessaire de mettre en évidence l’efficacité de cet antioxydant de référence à ce
test et cela en traçant une courbe d’étalonnage de la l’acide ascorbique (Vitamine C)
(Figure V.3). L’absorbance de chaque solution a été déterminée à 700 nm contre un
blanc. Les lectures de la densité optique à700 nm, des solutions ainsi préparées ont
permis de tracer la courbe détalonnage de l’acide ascorbique (Vitamine C) (Figure
V.3).
Figure V.3 : Courbe étalonnage de l’acide ascorbique (V. C)
Les différents extraits sont traités de la même façon que ceux des solutions standards de
l’acide ascorbique (Vitamine C). Nous avons tracé les courbes représentants la variation du
pouvoir réducteur exprimée en absorbance en fonction de l’inverse du nombre de dilution
(Figure V.1).
y = 5,002xR² = 0,996
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
0 0,05 0,1 0,15 0,2 0,25
abcr
bo
nce
(7
00
)
concentration M
Chapitre V Résultats et descut
29
Figure V.2 : Courbe teste d’AEAC G action et méthanol
y = 85,3xR² = 0,998
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
-2,08 E-1 0,002 0,004 0,006 0,008 0,01
Ab
sorb
ance
(6
95
nm
)
1/nomber dilition
G (Acetone)
y = 147,3xR² = 0,987
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
1,4
1,6
0 0,002 0,004 0,006 0,008 0,01 0,012
abco
rbo
nce
69
5n
m
1/Nomber diltion
G méthanol
R² = 0,996
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
0 0,05 0,1 0,15 0,2 0,25 0,3 0,35
abco
rbo
nce
69
5
1/nomber dilition
acide gallique
Chapitre V Résultats et descut
30
Tableau V-3. Les valeur d’AEAC d’ extraits étudient
Activité antioxydant d’AEAC(M)
solvant
Echantillon
Gousse méthanol Gousse action
extraie 226.4785mg/g 166.7115mg/g
Acide 4.1925mg/g
Le résultat d’AEAC et avec la différance de duitions et extraie on obtenue une quantité
plus grand dans les gousses action que la gousse méthanol
Les résultats de tableau (V.4) d’activité réductrice exprimée en AEAC, montrent clairement
que tous les extraits ont un pouvoir réducteur important.
On remarque que le pouvoir réducteur est varié dans extraits mais suit le même sens que celui
remarqué dans le cas de Reducing Power Assay.
On remarque que l’extraits de gousse ont le pouvoir réducteur le plus important, dont l’extrait
méthanoïque de ces derniers a le pouvoir réducteur le plus grand par pour a extrait dans acétone.
Ces résultats peut être expliqués que les extraits des gousse présentent un pouvoir réducteur
important renferment des molécules ayant un potentiel réducteur donneur d’électron plus fort.
Chapitre V Résultats et descut
31
Notre contribution à l'étude des extraits phénoliques des gousses de l'arbre «Acacia
arabica» si que leur activité antioxydant, se socle par un certain nombre d’acquis.
Après une première partie consacrée aux données de la littérature concernant les
structures chimiques des composés phénoliques et leurs activité antioxydant, nous intéressés
dans la partie expérimentale à la mise au point de l’extraction des composés phénoliques, la
quantification de ces composés dans leurs extraits, et enfin la mesure de l'activité antioxydant des
extraits parun tests chimiques .
Dans le cadre de ce travail, nous sommes intéresses de contribuer à la valorisation des espèces
locales. Compte tenu son intérêt scientifique.
Dans un premier temps de cette étude nous avons fait un extraction par deux systèmes
différentes : Méthanol/Eau 8/2 v/v et Acétone/Eau 7/3 V/V, solvants polaires.
Puis, nous avons évalué les quantités des phénols totaux de nos extraits en adaptant la méthode
de Singleton et Ross, dont la quantité de 103.2 mg/g pour les extraits méthanoïques et de 187.75
mg/g pour les extraits a cétonique.
En parallèle, l’analyse quantitative de contenu en flavonoïdes réalisée en utilisant la méthode
colorimétrique du chlorure d’aluminium. On a trouvé que la quantité est de 0,786 mg/g pour les
extraits méthanoïque et de 0.166 mg/g pour extraits cétonique.
De ces résultats, on a conclue que ces extraits sont riches en composés phénoliques quantités des
flavonoïdes des extraits sont très faibles par rapport aux quantités des phénols totaux.
Le test d’évaluation clue pouvoir antioxydant montrent que les extraits étudiés ont activité
antioxydant importante dont tous le test confirment que les extraits étudiés ont L ne activité
antioxydant supérieure à celles de l'acide ascorbique et à laide gallique qui sont utilisé dans
l'industrie alimentaire comme produits de conservation.
Références bibliographiques
32
[1] Investigation Phytochimique de l’Acacia arabica Aux propriétés antioxydants et inhibitrices
2011-2012.
[2] Sorg, O.(2004) Oxidative stress: a theoretical model or a biological reality. Comptes
Rendus Biologies. 327: 649-662.
[3, 6,7] Favier, A. (2003) Intérêt conceptuel et expérimental dans la compréhension des
mécanismes des maladies et potentiel thérapeutique. L’actualité Chimique. 108-115.
[4] Kohen, R., Nyska, A. (2002) Oxidation of biological systems : oxidative stress
phenomena, antioxidants, redox reactions and methods for their quantification. Toxicologic
Pathology. 30: 620-650.
[5,6,7] Lehucher-Michel, M.P., Lesgards, J.F., Delubac, O., Stocker, P., Durand, P., Prost, M.
(2001) Stress oxydant et pathologies humaines. La Presse médicale. 30: 1076-1081.
[8,9] Halliwell, B., Whiteman, M. (2004) Measuring reactive species and oxidative damage
in vivo and in cell culture : how should you do it and what do the results mean?. British
journal of pharmacology. 142: 31-2.
[10,11] Investigation Phytochimique de l’Acacia arabica Aux propriétés antioxydantes et
inhibitrices 2011-2012.
[12,13] Investigation Phytochimique de l’Acacia arabica Aux propriétés antioxydantes et
inhibitrices 2011-2012.
[14, 15] Koechlin-Ramonatxo, C. (2006) Oxygen, oxidative stress and antioxidant
supplementation,or an other way for nutrition in respiratory diseases. Nutrition clinique
et métabolique. 20:165-177
[16, 17] contribution a l’étude de l’activité antioxydant de Zingiber officinalis et curcuma longa
Références bibliographiques
33
[18]BONNEFONT-ROUSSELOTet al..2003
[19 ,20] Sorg, O.(2004) Oxidative stress: a theoretical model or a biological reality. Comptes
Rendus Biologies. 327: 649-662.
[21,22] contribution a l’étude de l’activité antioxydant de Zingiber officinalis et curcuma longa
BOYDet…2003
[23)] Quantification des principes actifs et l’évaluation du pouvoir antioxydant de i . L'Acacia
arabica 2009-2010
[24]BOIZOTetCHARPENTIER ,2006
[25]Alais et Linden,1997
[26]Dosage biochimique de trois échentillons de miel naturalet extraction des composé de
polyphénols
[27,28] Investigation Phytochimique de l’Acacia arabica Aux propriétés antioxydantes et
inhibitrices 2011-2012
[29] CORBO M.R., LANCIOTTI R., GARDINI F. & SINIGLAGLIA GUERZONI M. E.
(2000). Effects of Hexanal, trans-2-Hexanal and storage Temprature on Shelf Life of Fresh
Sliced Apples. Journal of agricultural and food chemistry, 48, 2401-2408.
[30] ANTOLOVICH M, PRENZLER P.D, PATSALIDES E., McDONALD S & ROBARDS
K. (2002). Methods for testing antioxydant activity. The royal Society of Chemistry Analyst,
127, 183-192
[31, 33] Investigation Phytochimique de l’Acacia arabica Aux propriétés antioxydantes et
inhibitrices 2011-2012
[33,34] Quantification des principes actifs et l’évaluation du pouvoir antioxydant de L'Acacia
arabica 2009-2010
Références bibliographiques
34
[35, 36] Harbone et Grayer 1988
[37, 38] Effects of Hexanal, trans-2-Hexanal and storage Temprature on Shelf Life of Fresh
Sliced Apples. Journal of agricultural and food chemistry, 48, 2401-2408.
[39] Miller.N.J, Jrice'Evans.J, Jdavies .M, Gopinathan .v and Milner .A, A novel
method for measuring antioxidant capaciÿ and its application to monitoring the
antioxidant status in premature neoates, clin sci, 1993, p S4 pp 407_412
[40] Megala .J, Geetha .4, Free radical-scavenging and H*, K+-ATpase inhibition
activities of Pithecellobium dulce, Food chemistry l2l, 2010, p l l20-l l2g
Résumé
Nous avons dans ce travail d'étudier l'arbre, puis l'extraction des composés phénoliques,
puis nous avons étudié l'efficacité de la direction de la production de réactions aux racines,
puis en testant l'oxydation du fer
Mots clés: Acacia arabica, phénols totaux, activité antioxydant des flavonoïdes d’AEAC .
ملخص
و رلك باستخالص الُمشكباث االلفينىليت ثم قمنا بذساست فعاليتها اتجاه العمىسة قمنا في هزا العمل بذساست شجشة
التفاعالث المنتجت للُجزوس و رلك عن طشيق اختباس اكسذة الحذيذ
.d’AEAC، والنشاط المضادة لألكسذة الفالفىنىيذ ، الفينىالث،Acacia arabica: المفتاحيةكلمات ال
Abstract
We have in this work studying the tree and then extraction of phenolic compounds and then
we studied the effectiveness of the direction of producing reactions to the roots and then by
testing the iron oxidation
Keywords: Acacia arabica, total phenols, flavonoids and antioxidant activity AEAC