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Infraestructura y medios de propagación
Las instalaciones necesarias para la propagación de plantas son:
Invernaderos construcción con control de temperatura , humedad, luz.
Cama calientes, para colocar a enraizar estacas y germinar semillas.
Sombreaderos, lugar al que se trasladan las plantas para que se
endurezcan. Se les proporciona paulatinamente luz, hasta alcanzar el
100% que se consigue a pleno sol, quedando en condiciones de ser
trasplantadas al aire libre.
INVERNADEROS Es una estructura cerrada, cubierta por materiales transparentes,
que permite crear condiciones climáticas favorables para la
producción y propagación de las plantas , de dimensiones
suficientemente grandes como para permitir acceder a su interior
maquinarias.
En ellos es posible obtener condiciones artificiales de microclima
que permitan alcanzar alta productividad, en el menor tiempo, y
todo el año.
Según sus características de construcción pueden ser fijos o móviles:
Madera y plástico Metal y cristal
Para decidir las características de construcción del
invernadero se debe tener en cuenta:
Las características climáticas de cada planta que
vamos a cultivar en un invernadero para obtener un
óptimo desarrollo de cada una de estas.
Relación entre el clima exterior y el clima que se logra
dentro del invernadero ,debemos conocer:
Datos climáticos de la región donde se va a instalar el
invernadero.
Temperaturas diurnas y estacionales, humedad relativa,
frecuencia e intensidad de vientos, etc…
Características mecánicas , térmicas y ópticas de los
materiales de cubierta que van a determinar el clima en el
interior del invernadero
PARÁMETROS A CONSIDERAR EN EL CONTROL CLIMÁTICO:
1-Temperatura.
2-Humedad relativa (HR).
3-Luz.
4-CO2.
Mezcla de estos factores dentro de unos limites mínimos y
máximos, para determinar un buen desarrollo y
crecimiento de las plantas en el interior del invernadero.
1.-TEMPERATURA:
Es el parámetro más importante, influye en el crecimiento y
desarrollo de las plantas.
Temperatura óptima en términos generales :18-26ºC.
Para cada especie a cultivar, debemos conocer:
-Temperatura mínima letal.
-Temperatura máximas y mínimas biológicas.
-Temperatura nocturna y diurna óptima.
Exigencias de Temperaturas (C°) en Cultivos
Especie T° min. Letal
T° min. Biológica
T° óptima noche
T° óptima
día
T° max. Biológica
Tomate 0 - 2 8 – 10 13 - 16 22 - 26 26 - 30
Pepino 0 - 4 10 – 13 18 - 20 24 - 28 28 - 32
Pimiento 0- 4 10 - 12 16 – 18 22 - 28 28 – 32
Lechuga -2 - 2 4 – 6 10 - 15 15 - 20 25 – 30
Clavel -4 - 0 4 – 6 10 - 12 18 - 21 26 - 32
Rosa -6 - 0 8 - 12 14 - 16 20 - 25 30 - 32
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Misión principal del invernadero es acumular calor
durante épocas invernales.
Efecto Invernadero
1. La radiación solar, radiación
electromagnética de onda corta,
puede atravesar las cubiertas
transparentes.
2. Esta radiación entrante calienta
principalmente el suelo, del interior
del invernadero, y luego el aire
3. Estos elementos calientes
emiten a su vez también
radiación electromagnética pero
de onda larga, también
llamada radiación térmica.
4. Esta radiación de onda larga no puede atravesar la cubierta
transparente, por lo que se
refleja y se queda en el interior
del invernadero calentando las
plantas , el suelo y el aire en el
interior del invernadero
Gracias a este efecto es posible acumular calor
durante el día y lograr que en la noche, cuando se
produce el descenso de temperatura en el exterior,
dentro del invernadero se mantenga una mayor
temperatura.
2.-HUMEDAD RELATIVA (HR):
Es la cantidad de agua contenida en el aire, en
relación con la cantidad máxima de agua que sería
capaz de contener el aire a la misma temperatura.
Relación inversa con la temperatura:
A mayor temperatura, menor HR porque aumenta la
capacidad del aire de contener vapor de agua HR
baja, las plantas transpiran en exceso, llegando a
deshidratarse.
Se corrige con riegos, ventilando y sombreando.
A menor temperatura, mayor HR , con una HR
excesiva, las plantas reducen la transpiración y el
crecimiento (abortos florales y desarrollo de
enfermedades).
Se reduce con ventilación , aumentando la
temperatura y evitando el exceso de humedad.
Especie Humedad Relativa
Tomate Mayor a 50 -60%
Pimentón Mayor a 50 -60%
Berenjena Mayor a 50 -60%
Melón 60 -70 %
Zapallo italiano 65 -80%
Pepino 70 -80 %
Cada especie tiene una humedad relativa óptima para crecer
en perfectas condiciones
3.-ILUMINACION:
Debe ser al menos igual a la necesaria para saturar
la fotosíntesis.
Para mejorar la iluminación:
Materiales de cubierta con buena transparencia.
Orientación adecuada del invernadero.
Materiales que reduzcan las sombras interiores.
Acolchados del suelo con plástico blanco.
En algunos casos es necesario aplicar luz artificial.
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Para reducir la luminosidad:
Blanqueo de cubiertas.
Mallas de sombreo.
Acolchados de plástico negro.
4.-NIVELES DE CO2:
La concentración de CO2 normal en la atmósfera es de 0,036%.
Puede aumentarse hasta 0,1% cuando los demás factores sean óptimos.
Hay que recordar que:
En invernaderos sin aplicaciones de CO2 , la concentración es variable a lo largo del día. Al final de la noche la concentración de CO2 es máxima y al mediodía la concentración es mínima.
CLIMATIZACIÓN DE INVERNADEROS DURANTE
PERIODOS FRÍOS
Sistemas de calefacción
Distribución del calor:
Convección: Calienta el aire del invernadero (tuberías aéreas de agua caliente, aerotermos…)
Conducción: Distribución del calor a nivel del cultivo (tuberías enterradas, banquetas…)
Calefacción por agua caliente
Sistema tradicional.
Circulación de agua caliente o
vapor por una red de tuberías.
Características:
Temperatura uniforme.
Mayores costos de bombeo de
agua.
Ahorro de energía.
Calefacción por aire caliente
Se emplea aire a altas temperaturas.
Ventajas:
Más económico.
Mayor versatilidad al poder usarse
como sistema de ventilación.
Inconvenientes:
Deficiente distribución del calor.
Si se rompe disminuye la temperatura
rápidamente.
Instalaciones de calefacción con movimiento natural de aire (convección natural)
d) Calefacción de suelo.
a) Ductos de calefacción aéreo; b) Calefacción de bancos
c) Ductos de calefacción bajos para calefacción de aire
e) Posición lateral f) Ventilador aéreo
g) Ductos altos h) Ductos bajos
Instalaciones de movimiento de aire forzado (convección forzada)
Empleo de pantallas térmicas Elemento extendido a modo de
cubierta sobre los cultivos, su principal función es variar el balance radiactivo tanto lumínico como calórico.
Diferentes fines: A. Protección exterior contra: Exceso de radiación sobre las plantas. Exceso de temperatura. Viento, granizo, pájaros.
B. Protección interior: Protección térmica. Contra el enfriamiento del aire a
través de la cubierta. Humedad ambiental y condensación.
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CLIMATIZACIÓN DE INVERNADEROS DURANTE
PERIODOS CÁLIDOS
Factores que permiten reducir la temperatura:
Reducción de la radiación solar que llega al cultivo.
Evapotranspiración del cultivo.
Ventilación del invernadero.
Refrigeración por evaporación de agua.
Sistemas de sombreado
Es la técnica de refrigeración más usada.
Reduce la temperatura al filtrar una proporción
más o menos elevada de radiación.
Diferentes tipos:
Sistemas estáticos: Sombrean el invernadero
constantemente (encalado y mallas de sombreo).
Sistemas dinámicos: Permiten el control de la
radiación solar (cortinas móviles y riego de la
cubierta del invernadero).
Encalado
Es el blanqueo de las paredes y de la cubierta del invernadero
con carbonato cálcico o cal apagada.
Inconvenientes:
Permanencia de cal durante periodos nublados
La capa de Cal es no homogénea por lo que hay diferencias en la
luz que llega a las plantas.
Ventajas:
Relativa efectividad.
Poco costo de su uso.
Malla interior absorbe radiación solar y la convierte
en calor dentro del invernadero.
Malla exterior se calienta con la radiación, pero se
refrigera con el aire exterior del invernadero.
El color es importante, se recomienda que no sean de
color para que no absorba un porcentaje mayor del
espectro visible.
Mallas de sombreo Uso de mallas de sombra
VENTILACIÓN Renovación del aire en el invernadero que actúa sobre
temperatura, humedad, contenido de CO2 y O2:
• Natural: ventanas que permiten la
corriente y contribuyen a disminuir la temperatura y la humedad, siempre que la Tº del exterior sea menor que la del invernadero:
Ventanas cenitales (techo)
Laterales
• Mecánica: se establece una corriente de aire mediante ventiladores extractores que extraen el aire caliente y es sustituido por aire del exterior.
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REFRIGERACIÓN POR EVAPORACIÓN DE AGUA
• Nebulización fina (fog system): se distribuyen en el aire muchas partículas de agua líquida muy pequeñas las cuales se encuentran en suspensión pasando de estado líquido a vapor antes de que llegue al cultivo.
• Pantalla evaporadora (cooling system): en un frontal o lateral se coloca una pantalla porosa saturada de agua y en el extremo opuesto ventiladores que obligan al aire a pasar través de ella absorbiendo humedad y bajando la temperatura.
Nebulización fina (fog system) Pantalla evaporadora (cooling system)
ILUMINACIÓN ARTIFICIAL EN INVERNADEROS
• Modificar intensidad de luz:
En invierno aumentar la asimilación neta.
En verano disminuir intensidad luminosa
• Regular el número de horas de luz para:
Inducir floración en plantas de día largo
Favorecer el crecimiento en lugar de la floración de plantas de día corto interrumpiendo el periodo oscuro (plantas ornamentales)
• Se utilizan diferentes tipos de lámparas: incandescente, vapor de mercurio, mixta, f luorescente.
Características Vapor de mercurio Fluorescentes
Luz producida Visible y
ultravioleta
Mixta con preponderancia de
azul y rojo
Potencia 150-200 W/m2 -
Rendimiento luminoso
90 % 90% (emana poco
calor)
Duración 3500 horas 3500 horas
Aplicación Crecimiento de
plantas Crecimiento de
plantas
Tipos y características de lámparas empleadas en iluminación de invernaderos (Serrano, 1990)
SISTEMAS DE APORTACIÓN DE CO2
• Sistema por combustión CO2
calor Aumenta la Tº
Liberación de sust. tóxicas
• Aportación directa de CO2
Mediante bombonas de gas puro
A través de nieve carbónica
En la actualidad todos estos parámetros se
pueden controlar de manera automatizada
mediante un computador central, el cual está
conectado a varios sensores que informan
sobre las variaciones que sufren los parámetros.
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Sustratos
Definición de Sustrato
Un sustrato es un material sólido o mezcla de materiales, de
origen natural, o sintético, mineral u orgánico, que se usa para
producir plantas en contenedores, donde cumple funciones de
soporte, de aireación y de retención y aporte de agua,
pudiendo o no intervenir en el proceso de nutrición mineral de
las plantas.
CLASIFICACIÓN
(Materiales constitutivos de los sustratos)
NATURALEZA (orgánicos e inorgánicos)
PROPIEDADES QUÍMICAS (inertes y activos)
ORIGEN (naturales y síntesis)
RESISTENCIA A LA DEGRADACIÓN
PROPIEDADES FÍSICAS (agua, granulometría, porosidad).
CLASIFICACIÓN POR SU NATURALEZA
ORGÁNICOS
Naturales(turbas)
Subproductos agroindustria ( fibra de coco, cascarillas, pajas, virutas,
otros)
Compost
INORGÁNICOS
Naturales (arena, grava, roca volcánica)
Transformados (perlita, vermiculita ,lana de roca)
PROPIEDADES QUÍMICAS
INERTES (no aportan nutrientes)
Arena
Grava
Roca volcánica
Lana de roca
Perlita
ACTIVOS (aportan o almacenan nutrimentos)
Turba
Compost
Orgánicos
CARACTERISTICAS DESEABLES EN UN SUSTRATO
Proveer nutrientes en cantidades y formas necesarias.
Proporcionar un buen soporte para las raíces de las plantas
Estar libre de fitopatógenos
Porosidad total 70 –85 % v/v
Retención de agua 55 –70 %
Agua fácilmente disponible > 30 %
Capacidad de aireación 10 –20 %
USOS Y FUNCIONES DE LOS SUSTRATOS
USOS
Germinación y generación de plántulas de especies forestales,
hortalizas y ornamentales
FUNCIONES
Soporte
Retención y aporte de agua
Suministro de oxigeno
Aporte de nutrientes
¿Qué se busca en un sustrato?
Que permita una buena germinación de semillas
Que permita un desarrollo óptimo de las raíces y follaje
Que asegure una planta firme y sana y con buen
transplante
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Comparación de tres sustratos
Medio Soporte
Intercambio
de
gases
Retención
de
humedad
Disponibilidad
de
nutrientes
AGUA malo malo bueno bueno
ARCILLA bueno malo bueno bueno
ARENA bueno bueno malo malo
Un buen sustrato debe tener las siguientes
condiciones:
Estable en el tiempo, para no perder fácilmente las cualidades
físicas, lo que puede provocar "apelmazamiento”.
Buena densidad aparente para asegurar una correcta
aireación de las raíces. Lo que se busca es que el volumen
total del sustrato tenga al menos un 20% de poros con aire,
distribuidos homogéneamente.
Buena capacidad de retención de nutrientes, de modo que
estén disponibles; y para ello es fundamental la existencia de
materia orgánica que permita una buena capacidad de
intercambio iónico.
Buena capacidad de retención de agua. Este volumen
debería ser del orden del 25 % del volumen total del agua
suministrada por el riego.
pH alrededor de 6 a 7 (ideal para casi todas las plantas).
Debe estar estéril, para prevenir el ataque de agentes
patógenos para las plantas.
Buena mojabilidad, o sea, si se seca, debe volver a mojarse
con facilidad.
Características físicas de los sustratos
Son de gran importancia para el normal desarrollo de la
planta, pues determinan la disponibilidad de oxígeno, la
movilidad del agua y la facilidad para la penetración de la
raíz.
No pueden modificarse una vez establecido el cultivo.
Estas son:
Porosidad
Densidad
Granulometría
POROSIDAD:
Es el volumen no ocupado por las partículas sólidas, y por
tanto, esta ocupado por aire o agua en una cierta proporción.
Su valor óptimo debería ser superior al 80%.
Diferencia entre el % de material sólido y porosidad total de
un suelo natural y un sustrato ideal Valores de porosidad para diferentes materiales
Materiales % Porosidad
Turba 97
Aserrín de pino 94
Paja de avena 84
Fibra de coco 87
Perlita 71
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DENSIDAD:
Densidad real: densidad del material sólido que compone el
sustrato. Varía entre 2,5-3 para la mayoría de los sustratos de
origen mineral
Densidad aparente: indica indirectamente la porosidad del
sustrato. Los valores de densidad aparente se prefieren menores a
0,7 -1,0 g/cm3, considera el espacio total ocupado por los
componentes sólidos más el espacio poroso.
Valores de Densidad aparente para diferentes
materiales
Materiales Da (g.cm-3)
Turba 0,14
Aserrín de pino 0,13
Paja de avena 0,13
Fibra de coco 0,07
Perlita 0,10
GRANULOMETRÍA:
Distribución del tamaño de las partículas de un sustrato.
El tamaño de las partículas condiciona el comportamiento del
sustrato, a medida que aumenta el tamaño de las partículas
aumenta la porosidad y disminuye la retención de agua.
En síntesis, un sustrato desde un punto de vista físico
debe ser liviano, esponjoso y con buena capacidad de
retener agua.
% del volumen total ocupado por sólidos, agua y aire a Cap. de Campo y
Pto. de Marchitez permanente para varios sustratos en un pote de 17 cm
(Nelson, 1991).
Material (g/l)
Sólido Agua % Aire % Densidad
% CC PMP Disponible CC PMP CC PMP
Suelo (arcillo arenoso) 53,3 39,8 6,4 33,4 6,9 40,3 1,698 1,364
Arena (grado concreto) 59,3 35,4 4,4 31,0 5,3 36,3 1,714 1,404
Turba (Sphagnum) 15,4 76,5 25,8 50,7 8,1 58,8 0,859 0,352
Perlita (grado hortícola) 36,9 38,3 20,2 18,1 24,8 42,9 0,514 0,333
Mezcla Suelo: turba: arena
(1:1:1) 45,4 48,7 8,5 40,2 5,9 46,1 1,595 1,193
Ejemplos de mezclas de sustratos y su relación de porosidad
total y sólidos.
En relación a las propiedades químicas es importante
conocer:
pH
Conductividad Eléctrica (CE)
Capacidad de Intercambio Catiónico (CIC)
Características Químicas de los Sustratos Características Químicas de los Sustratos
Que tenga pH neutro: ya que
influye en la capacidad de las plantas
de absorber nutrientes.
La mayoría de las plantas absorben
un alto porcentaje de los nutrientes a
valores de pH entre 6.0 y 6.5.
Influencia del pH sobre la disponibilidad de Nutrientes
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Conductividad eléctrica (CE) : mide la concentración total de
sales en una solución.
Debe ser menor a 2ds/m para que no haya problemas de
sales que dificultan la absorción de nutrientes.
Tolerancia de los Cultivos a la Salinidad del Extracto de
Saturación del Suelo Síntomas de CE alta en frutilla
Capacidad de Intercambio Catiónico (CIC): Es una propiedad
química que regula los procesos de adsorción y liberación de
cationes del complejo de cambio (arcillo – húmico) y está
influenciada por : cantidad y tipo de arcilla, cantidad de humus y
el pH (o reacción del suelo).
Mejora la disponibilidad de nutrientes y disminuye la pérdida de
ellos.
Relación entre la Textura y la Capacidad de Intercambio
Catiónico de los Suelos.
Valores de Capacidad de Intercambio
Catiónico de algunos sustratos
Características Biológicas
Que tenga materia orgánica: mejora la nutrición, retención
de agua, estructura, temperatura y pH.
Que sea estable: Que no se siga descomponiendo, que
mantenga su estructura y características generales como pH
(compost maduro).
Que sea estéril: Que esté libre de plagas, enfermedades y
semillas de malezas.
Desinfección térmica de sustratos:
Solarización – Calentamiento húmedo
Semillas y Microrganismos
a eliminar
30 min, a…. ºC de
Temperatura
Nematodos 48
Hongos causantes damping off 54
Bacterias y hongos patógenos 65
Insectos del suelo y virus 71
Semillas malezas 79
Malezas resistentes virus resist. 100
Cuando estas propiedades no se pueden obtener en un solo
sustrato, se requiere hacer mezclas:
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Mezcla suelo: turba: arena (1:1:1) ofrece un contenido alto de
agua disponible (40,2%) a expensas de aireación (5,9% a CC).
Se necesita una mayor proporción de arena en esta mezcla.
Mezcla de turba: vermiculita (1:1) es excelente, con una
densidad volumétrica de 853 g/l, un contenido de aire de 16,6 %
a CC, y agua disponible del 46,2 % del volumen del pote.
Propiedades generales de algunos sustratos TIPOS DE SUSTRATOS
Sustratos químicamente inertes
Actúan como soporte de la planta, no intervienen en
el proceso de adsorción y fijación de nutrientes, por lo
que estos deben ser suministrados mediante una
solución fertilizante.
Ejemplo: Arena, Perlita, Fibra de Coco.
Arena (Químicamente inerte)
Origen mineral.
Granulometría más adecuada es entre
0,5 y 2 mm de diámetro.
Buena porosidad.
Densidad aparente de 1.500-1.800
kg/m3
Capacidad de retención de agua media
(20 % del peso y más del 35 % del
volumen)
Es muy baja en nutrientes y sin
capacidad de intercambio catiónico
Perlita (Químicamente inerte)
Roca silícea de origen volcánico tratada a
altas temperaturas. Al hidratarse se
expande.
Partículas blancas de 1,5 a 6 mm. Es
liviana y de pH neutro.
Buena capacidad de retención de agua,
elevada porosidad.
Es estéril y químicamente inerte. Es un
buen sustituto de la arena.
Propiedades de la perlita (Fernández et al. 1998)
Propiedades físicas
Tamaño de las partículas (mm de
diámetro)
0-15
(Tipo B-6)
0-5
(Tipo B-12)
3-5
(Tipo A-13)
Densidad aparente (Kg/m3) 50-60 105-125 100-120
Espacio poroso (%) 97,8 94 94,7
Material sólido (% volumen) 2,2 6 5,3
Aire (% volumen) 24,4 37,2 65,7
Agua fácilmente disponible (%
volumen)
37,6 24,6 6,9
Agua de reserva (% volumen) 8,5 6,7 2,7
Agua difícilmente disponible (%
volumen)
27,3 25,5 19,4
Fibra de Coco (Químicamente inerte)
Origen Orgánico
Tiene una capacidad de retención de
agua de hasta 3 o 4 veces su peso, un
pH ligeramente ácido (6,3-6,5) y una
densidad aparente de 200 kg/m3.
Se vende en forma de ladrillos de fibra
prensada que hay que remojar para que
aumente su volumen.
Sustratos químicamente activos
Sirven de soporte a la planta pero a su vez actúan como
depósito de reserva de nutrientes aportados en la
fertilización, almacenándolos o cediéndolos según las
exigencias del vegetal.
Ejemplos: Turbas rubia y negra, corteza de pino, etc.
Turbas (Químicamente activo)
Origen Orgánico vegetal.
Turbas rubias presentan mayor
fibrosidad, volumen de aire y materia
orgánica además de pH más ácidos,
buen nivel de retención de agua y
capacidad de aireación.
Están menos descompuestas
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Turbas (Químicamente activo)
Origen Orgánico vegetal.
Turbas negras, están más mineralizadas
tienen menor contenido en materia
orgánica, por estar más descompuestas
han perdido las propiedades de las fibras.
No tienen fibras. Presentan menor
volumen de aire, pero tiene mejor
capacidad de retención de agua, son las
más usadas.
Propiedades de las turbas (Fernández et al. 1998)
Propiedades Turbas
rubias
Turbas
negras
Densidad aparente (gr/cm3) 0,06 - 0,1 0,3 - 0,5
Densidad real (gr/cm3) 1,35 1,65 - 1,85
Espacio poroso (%) 94 o más 80 - 84
Capacidad de absorción de agua (gr/100 gr m.s.) 1.049 287
Aire (% volumen) 29 7,6
Agua fácilmente disponible (% volumen) 33,5 24
Agua de reserva (% volumen) 6,5 4,7
Agua difícilmente disponible (% volumen) 25,3 47,7
C.I.C. (meq/100 gr) 110 - 130 250 o más
Corteza de Pino (Químicamente activo)
Origen Orgánico
Debe estar bien descompuesta y
sus trozos no ser mayores de 2 cm.
Cuando está fresca produce déficit
de nitrógeno.
Tiene una baja densidad y una alta
capacidad de aireación.
Compost (Químicamente activo)
Origen orgánico
Descomposición principalmente
bacteriana de residuos orgánicos (restos
de plantas, residuos alimentarios...).
Mejora la estructura del suelo,
incrementa la cantidad de materia
orgánica y aporta nutrientes.
Humus de Lombriz o Vermicompost
(Químicamente activo)
Origen orgánico
Es el resultado del compostaje de materia
orgánica que realizan las lombrices.
Mejora la estructura del suelo, la
porosidad, el crecimiento de las raíces y
favorece la asimilación de potasio y
nitrógeno. Buena CIC.
Resumen de propiedades de algunos materiales
utilizables como sustrato
Sustrato Densidad
Aparente Porosidad Aireación
Retención
Agua pH CIC Estabilidad
Turba Rubia 0,09 alta buena buena 3.5 - 5 >20 limitada
Turba Negra 0,2 – 0,5 alta buena a
baja buena 4 - 7 >20 limitada
Corteza de
Pino 0,2 – 0,4 alta alta baja 4 - 5 >20 limitada
Fibra de
Coco 0,03 – 0,09 alta alta baja 4,5 - 5 >20 alta
Arena
gruesa 1,5 – 1,8 alta alta baja 6,1 <20 alta
Perlita 0,08 – 0,12 alta alta buena 6 - 8 <20 baja
Vermiculita 0,09 – 0,14 alta buena buena 5 - 7 >20 baja
Diversas fórmulas de mezclas de sustratos y sus
usos comunes, (Hartman; 1991).
Mezcla Partes de componentes de la mezcla Uso
1 1 tierra 1 turba 1 arena ------------- para potes y bancos
2 1 vermiculita 1 turba ------------- ------------- para germinador
3 2 vermiculita 2 turba 1 perlita para plantas
4 1 vermiculita 1 corteza pino ------------- ------------- para plantas
5 2 vermiculita 2 corteza pino ------------- 1 perlita para plantas
6 2 vermiculita 1 turba 1 corteza pino 1 perlita para plantas
7 ------------- 1 turba 3 corteza pino 1 arena para plantas
8 ------------- 1 turba 3 corteza dura 1 arena para plantas
9 1 lana de roca 1 turba ------------- ------------- para plantas
10 3 lana de roca 7 turba ------------- ------------- para plantas
Las características de un sustrato cambian según la finalidad de
su uso:
Almácigos: textura fina, alta capacidad de retención de agua, escasa
capacidad de nutrición y bajo nivel de salinidad.
Enraizamiento de Estacas: buena porosidad, alta capacidad de retención
de agua, buen drenaje para permitir una aireación adecuada.
Crecimiento y Desarrollo: Textura media a gruesa, con mayor capacidad
de aireación, nivel óptimo de fertilizantes, buen drenaje.
CONTENEDORES
CAMAS CALIENTES
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El contenedor es el recipiente donde se coloca el sustrato, el
que debe tener suficiente espacio para el desarrollo radicular de
las plantas y buen drenaje.
Además debe ser económico para reducir en lo más posible los
costos de producción. Los contenedores más comunes que se
pueden emplear son las bolsas de polietileno.
Existen muchos tipos de contenedores para hacer germinar
semillas, enraizar estacas y para el trasplante de plantas.
Deben tener una o más perforaciones de drenaje en el fondo,
para que el excedente de agua de riego sea drenado. Estas
perforaciones deben ser tan grandes como sea posible, pero sin
que se produzca la perdida de sustrato en la operación de
llenado.
Cajas de madera o plástico: son el recipiente más común,
pueden ser de distintos tamaños. Generalmente se hacen de
madera, pero también hay de poliestireno expandido.
Las cajoneras de madera tienen una vida útil muy corta al
podrirse con facilidad, las de material plástico son más durables
y se limpian fácilmente.
Es importante usar cajoneras firmes y profundas (pueden
variar desde 10 cm hasta 30 cm de profundidad) para que no
se deformen al levantarlas.
Cajas de madera o plástico Bolsas de polietileno
Bolsas de polietileno:
Son relativamente baratas, pero el trasplante a veces se hace
difícil por su falta de rigidez.
Son útiles para realizar siembras directas de semillas grandes,
carozos (sembrando una semilla por bolsa). Así se evita el
trasplante posterior y se minimiza el daño a las raíces.
La bolsa plástica presenta una serie de inconvenientes:
Sistema radicular defectuoso debido a que por lo general se produce
un enrollamiento de raíces en la base de la bolsa, el cual persiste en
la plantación,
No se puede mecanizar, ni reutilizar,
Alto costo de producción y transporte.
Por estas razones se han desarrollado una serie de
contenedores de diferentes materiales, tamaños, colores y
formas, los que permiten la mecanización del vivero, la
obtención de plantas más homogéneas con un buen sistema
radicular, su reutilización y, por ende, la reducción de costos de
mantención y transporte.
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Características Unidad de
Medida
Dimensiones de los envases vacios
10x20 cm 13x20 cm 18x25 cm 20x30 cm
Calibre (grosor) Micras 400 500 400 500 400 500 400 500
N° bolsas/Kg N° 250 227 200 154 111 91 67 50
Dimensiones de
las bolsas llenas cm
Diámetro Altura Diámetro Altura Diámetro Altura Diámetro Altura
6,37 17 8,28 18 11,46 19 12,74 23
Volumen
Litros 0,54 0,97 1,96 2,93
m3 0,00054 0,00097 0,00196 0,00293
N° de bolsas
llenas/m2 N°bolsas/m2 225 140 85 60
Especies
recomendables a
producir
Coníferas y sspp
forestales de
crecimiento vertical
(Atriplex)
Sspp forestales
tropicales y
latifoliadas
(Leguminosas,
encina,
liquidámbar)
Especies frutales y
ornamentales
Especies frutales y
ornamentales de
tamaño grande
Características Bolsas de Polietileno
Bandejas de Plástico: en este tipo de envases cada plántula
tiene su propio cepellón.
Estas bandejas consisten en un conjunto de celdillas o alvéolos,
ideales para cultivar plantas de distintas especies, durante sus
primeras etapas de desarrollo.
EL n° de celdas de las bandejas varía, de 18 a 800 o más y
pueden ser de varias formas: redondas, cuadradas,
hexagonales, octogonales y en estrella, con una profundidad
variable de 1,25 hasta 30 cm o más.
Diseños y tamaños de contenedores disponibles
La elección del tamaño y la profundidad de la celda va a
depender de:
La especie que se va cultivar
Tiempo de crecimiento
Sistema radical y sistema vegetativo
En general hay una relación directa entre el tamaño del envase
y el tamaño del plantín a obtener, pero por razones de costo, la
tendencia es a usar envases con mayor N° de celdas de
menor volumen.
Hay que considerar que los envases de menor volumen, en
general tienen mayores fluctuaciones de humedad, nutrientes,
O2 , pH y salinidad.
Valores de Biomasa (g) para la parte aérea y radicular de plantas de
Quillay producidas en contenedores de distintos volúmenes
La mayoría de las bandejas son de poliestireno expandido,
resinas plásticas o de polipropileno de alta densidad.
Los envases son generalmente de color blanco, negro o gris.
Blancos: reflejan la luz y dan buen aislamiento, se usan especialmente para
producción de verano.
Negros y grises: absorben calor y se usan para producción de invierno o
primavera.
Bandejas de poliestireno expandido (Aislapol)
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84/100 cc 84/130 cc
104 / 56 cc 104 / 80 cc
432 / 10 cc 240 / 24cc
N° celdas / volumen celda (cc) Almácigo de variedades de lechuga-sistema “speedlings” Almácigo de Berro en capotillo de arroz
Bandejas de plástico (cell-pack)
Nº DE CELDAS CONFIG.
CELDA
PROFUNDIDAD
mm
DIAMETRO
SUPERIOR
mm
VOLUMEN DE
CELDA cc
VOLUMEN DE
BANDEJA cc
60 6x10 140 56 280 16.800
84 7x12 100 46 135 11.340
84 7x12 160 46 130 10.920
84 7x12 100 46 100 8.400
104 8x13 100 42 80 8.320
104 8x13 70 42 56 5.824
112 8x14 140 39 95 10.640
135 9x15 115 38 75 10.125
135 9x15 70 37 43 5.805
240 12x20 60 26 24 5.760
286 132x22 60 23 18 5.148
286 13x22 42 23 10 2.860
432 16x27 46 18 10 4.320
814 22x37 46 18 6 4.884
Tipos de bandejas BASF
Nº CELDAS CONFIG.
CELDA
PROFUNDIDAD
mm
DIAMETRO
SUPERIOR
mm
DIAMETRO
INFERIOR
mm
VOLUMEN DE
CELDA cc
VOLUMEN
DE BANDEJA
cc
32 4x8 62 59 38 125 4.000
40 4x10 51 50 32 85 3.400
50 5x10 51 46 30 72 3.600
72 6x12 46 38 22 43 3.096
105 7x15 48 32 18 32 3.360
128 8x16 49 28 17 25 3.200
162 9x18 45 25 12 16 2.592
200 10x20 43 24 11 12 2.400
288 12x24 42 20 9 9 2.592
406 14x29 26 16 11 4 1.624
Tipos de bandejas PROTEKTA
Nº Celdas CULTIVO
50 pepino sandia zapallo maiz
72 melon sandia pepino zapallo
105 pimentón pepino tomate melon
128 pimentón tomate ajo
162 pimentón tomate repollo coliflor
200 lechuga apio
288 cebolla flores lechuga cebollin
406 cebolla flores
N° de Celdas recomendadas según especie (PROTEKTA)
Hay que tener cuidado de no mantener por mucho tiempo
las plantas en estos contenedores, ya que las raíces
comienzan a enrollarse y se comprimen dentro del
contenedor, lo que provoca estrés en las plantas.
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Cubos o pastillas de turba (jiffy pots): Contenedores
fabricados en diferentes tamaños y formas, compuestos de
turba deshidratada con el exterior cubierto de una fina malla
de plástico.
Al ser humedecidos se expanden ampliando varias veces
su tamaño.
jiffy pots jiffy pots
Paper-Pot: Son macetas de papel de tamaño pequeño,
mediano o grande, muchas veces de material reciclado que
se usan para la germinación o siembra.
Paper-Pot Vasos plásticos
Usados principalmente para producción a pequeña escala
Material reciclado
Para uso a pequeña
escala
En la elección de un contenedor hay que considerar
los siguientes factores:
Costo
Vida útil
Eficiencia en el uso del espacio
Facilidad de manipulación
Tamaño y altura del contenedor (relación aire/ agua)
Efecto de la altura y tamaño del contenedor (sustrato turba: vermiculita, 1:1)
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Influencia de la altura del sustrato en la
cantidad de agua retenida (zona rayada)
Envase profundo
drena con facilidad.
Requiere un sustrato
con porosidad fina,
para retener más
humedad Envase poco profundo
mantiene un estado de
inundación. Requiere un
sustrato con porosidad
gruesa para aumentar la
aireación.
Camas Calientes
El principal objetivo es mantener una temperatura adecuada en
el suelo para la germinación de semillas, enraizamiento de
estacas y el crecimiento de plantas jóvenes.
Esto es muy importante en primavera cuando la temperatura del
suelo es baja para la germinación de cultivos.
Además de favorecer la germinación se aumenta la uniformidad
de las plantas.
Son armazones de madera o fierro semejantes a una mesa que se
usan para los mismos fines que un invernadero.
Se aporta calor artificialmente debajo del medio de propagación usando
cables eléctricos, tuberías con agua caliente, tubos con vapor o
conductos de aire caliente.
En estas instalaciones se puede hacer germinar semillas y enraizar
estacas
Cama Caliente
En las camas calientes el riego nebulizado intermitente, permite
mantener una película de agua sobre las hojas. Cuando se
colocan a enraizar estacas con hojas, se produce una alta
humedad relativa y esto hace bajar la temperatura del aire y de
las hojas, disminuyendo el grado de transpiración.
Además en la germinación de semillas permite mantener una
humedad adecuada del sustrato.
La temperatura de fondo, bajo el sustrato se usa para
acelerar la germinación o el enraizamiento de estacas, de
acuerdo a los requerimientos de la especie.
La siembra o plantación se debe realizar en la misma
dirección de los cable eléctricos o tuberías de agua caliente
que aportan calor para que sea homogénea la temperatura
en todas las plantas.
Temperaturas de germinación de algunos cultivos
Especie Temperatura ideal Temperatura mínima Temperatura máxima
Acelga 18-22 6 34
Apio 18-25 5 30
Berenjena 20-25 15 35
Zapallo 20-30 11 40
Cebolla 20-25 5 30
Cilantro 25-30 13 35
Coliflor 24-30 5 35
Espárrago 20-25 6 40
Espinaca 15-25 5 30
Poroto 15-25 12 30
Lechuga 15-20 4 30
Maíz 25 11 35
Melón 28-30 12 40
Pepino 30-35 12 35
Perejil 20-25 13 35
Pimiento 20-30 8 35
Puerro 16-25 6 30
Rábano 20-25 10 34
Repollo 20-30 5 35
Sandía 30-35 13 40
Tomate 25-30 13 40
Zanahoria 20-30 5 35
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Humus de Lombriz o Vermicompost
(Químicamente activo)
Origen orgánico
Es el resultado del compostaje de materia
orgánica que realizan las lombrices.
Mejora la estructura del suelo, la
porosidad, el crecimiento de las raíces y
favorece la asimilación de potasio y
nitrógeno. Buena CIC.
Resumen de propiedades de algunos materiales
utilizables como sustrato
Sustrato Densidad
Aparente Porosidad Aireación
Retención
Agua pH CIC Estabilidad
Turba Rubia 0,09 alta buena buena 3.5 - 5 >20 limitada
Turba Negra 0,2 – 0,5 alta buena a
baja buena 4 - 7 >20 limitada
Corteza de
Pino 0,2 – 0,4 alta alta baja 4 - 5 >20 limitada
Fibra de
Coco 0,03 – 0,09 alta alta baja 4,5 - 5 >20 alta
Arena
gruesa 1,5 – 1,8 alta alta baja 6,1 <20 alta
Perlita 0,08 – 0,12 alta alta buena 6 - 8 <20 baja
Vermiculita 0,09 – 0,14 alta buena buena 5 - 7 >20 baja
Diversas fórmulas de mezclas de sustratos y sus
usos comunes, (Hartman; 1991).
Mezcla Partes de componentes de la mezcla Uso
1 1 tierra 1 turba 1 arena ------------- para potes y bancos
2 1 vermiculita 1 turba ------------- ------------- para germinador
3 2 vermiculita 2 turba 1 perlita para plantas
4 1 vermiculita 1 corteza pino ------------- ------------- para plantas
5 2 vermiculita 2 corteza pino ------------- 1 perlita para plantas
6 2 vermiculita 1 turba 1 corteza pino 1 perlita para plantas
7 ------------- 1 turba 3 corteza pino 1 arena para plantas
8 ------------- 1 turba 3 corteza dura 1 arena para plantas
9 1 lana de roca 1 turba ------------- ------------- para plantas
10 3 lana de roca 7 turba ------------- ------------- para plantas
Las características de un sustrato cambian según la finalidad de
su uso:
Almácigos: textura fina, alta capacidad de retención de agua, escasa
capacidad de nutrición y bajo nivel de salinidad.
Enraizamiento de Estacas: buena porosidad, alta capacidad de retención
de agua, buen drenaje para permitir una aireación adecuada.
Crecimiento y Desarrollo: Textura media a gruesa, con mayor capacidad
de aireación, nivel óptimo de fertilizantes, buen drenaje.
CONTENEDORES
CAMAS CALIENTES
El contenedor es el recipiente donde se coloca el sustrato, el
que debe tener suficiente espacio para el desarrollo radicular de
las plantas y buen drenaje.
Además debe ser económico para reducir en lo más posible los
costos de producción. Los contenedores más comunes que se
pueden emplear son las bolsas de polietileno.
Existen muchos tipos de contenedores para hacer germinar
semillas, enraizar estacas y para el trasplante de plantas.
Deben tener una o más perforaciones de drenaje en el fondo,
para que el excedente de agua de riego sea drenado. Estas
perforaciones deben ser tan grandes como sea posible, pero sin
que se produzca la perdida de sustrato en la operación de
llenado.
Cajas de madera o plástico: son el recipiente más común,
pueden ser de distintos tamaños. Generalmente se hacen de
madera, pero también hay de poliestireno expandido.
Las cajoneras de madera tienen una vida útil muy corta al
podrirse con facilidad, las de material plástico son más durables
y se limpian fácilmente.
Es importante usar cajoneras firmes y profundas (pueden
variar desde 10 cm hasta 30 cm de profundidad) para que no
se deformen al levantarlas.
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Cajas de madera o plástico Bolsas de polietileno
Bolsas de polietileno:
Son relativamente baratas, pero el trasplante a veces se hace
difícil por su falta de rigidez.
Son útiles para realizar siembras directas de semillas grandes,
carozos (sembrando una semilla por bolsa). Así se evita el
trasplante posterior y se minimiza el daño a las raíces.
La bolsa plástica presenta una serie de inconvenientes:
Sistema radicular defectuoso debido a que por lo general se produce
un enrollamiento de raíces en la base de la bolsa, el cual persiste en
la plantación,
No se puede mecanizar, ni reutilizar,
Alto costo de producción y transporte.
Por estas razones se han desarrollado una serie de
contenedores de diferentes materiales, tamaños, colores y
formas, los que permiten la mecanización del vivero, la
obtención de plantas más homogéneas con un buen sistema
radicular, su reutilización y, por ende, la reducción de costos de
mantención y transporte.
Características Unidad de
Medida
Dimensiones de los envases vacios
10x20 cm 13x20 cm 18x25 cm 20x30 cm
Calibre (grosor) Micras 400 500 400 500 400 500 400 500
N° bolsas/Kg N° 250 227 200 154 111 91 67 50
Dimensiones de
las bolsas llenas cm
Diámetro Altura Diámetro Altura Diámetro Altura Diámetro Altura
6,37 17 8,28 18 11,46 19 12,74 23
Volumen
Litros 0,54 0,97 1,96 2,93
m3 0,00054 0,00097 0,00196 0,00293
N° de bolsas
llenas/m2 N°bolsas/m2 225 140 85 60
Especies
recomendables a
producir
Coníferas y sspp
forestales de
crecimiento vertical
(Atriplex)
Sspp forestales
tropicales y
latifoliadas
(Leguminosas,
encina,
liquidámbar)
Especies frutales y
ornamentales
Especies frutales y
ornamentales de
tamaño grande
Características Bolsas de Polietileno
Bandejas de Plástico: en este tipo de envases cada plántula
tiene su propio cepellón.
Estas bandejas consisten en un conjunto de celdillas o alvéolos,
ideales para cultivar plantas de distintas especies, durante sus
primeras etapas de desarrollo.
EL n° de celdas de las bandejas varía, de 18 a 800 o más y
pueden ser de varias formas: redondas, cuadradas,
hexagonales, octogonales y en estrella, con una profundidad
variable de 1,25 hasta 30 cm o más.
Diseños y tamaños de contenedores disponibles
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La elección del tamaño y la profundidad de la celda va a
depender de:
La especie que se va cultivar
Tiempo de crecimiento
Sistema radical y sistema vegetativo
En general hay una relación directa entre el tamaño del envase
y el tamaño del plantín a obtener, pero por razones de costo, la
tendencia es a usar envases con mayor N° de celdas de
menor volumen.
Hay que considerar que los envases de menor volumen, en
general tienen mayores fluctuaciones de humedad, nutrientes,
O2 , pH y salinidad.
Valores de Biomasa (g) para la parte aérea y radicular de plantas de
Quillay producidas en contenedores de distintos volúmenes
La mayoría de las bandejas son de poliestireno expandido,
resinas plásticas o de polipropileno de alta densidad.
Los envases son generalmente de color blanco, negro o gris.
Blancos: reflejan la luz y dan buen aislamiento, se usan especialmente para
producción de verano.
Negros y grises: absorben calor y se usan para producción de invierno o
primavera.
Bandejas de poliestireno expandido (Aislapol)
84/100 cc 84/130 cc
104 / 56 cc 104 / 80 cc
432 / 10 cc 240 / 24cc
N° celdas / volumen celda (cc)
Almácigo de variedades de lechuga-sistema “speedlings” Almácigo de Berro en capotillo de arroz Bandejas de plástico (cell-pack)
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Nº DE CELDAS CONFIG.
CELDA
PROFUNDIDAD
mm
DIAMETRO
SUPERIOR
mm
VOLUMEN DE
CELDA cc
VOLUMEN DE
BANDEJA cc
60 6x10 140 56 280 16.800
84 7x12 100 46 135 11.340
84 7x12 160 46 130 10.920
84 7x12 100 46 100 8.400
104 8x13 100 42 80 8.320
104 8x13 70 42 56 5.824
112 8x14 140 39 95 10.640
135 9x15 115 38 75 10.125
135 9x15 70 37 43 5.805
240 12x20 60 26 24 5.760
286 132x22 60 23 18 5.148
286 13x22 42 23 10 2.860
432 16x27 46 18 10 4.320
814 22x37 46 18 6 4.884
Tipos de bandejas BASF
Nº CELDAS CONFIG.
CELDA
PROFUNDIDAD
mm
DIAMETRO
SUPERIOR
mm
DIAMETRO
INFERIOR
mm
VOLUMEN DE
CELDA cc
VOLUMEN
DE BANDEJA
cc
32 4x8 62 59 38 125 4.000
40 4x10 51 50 32 85 3.400
50 5x10 51 46 30 72 3.600
72 6x12 46 38 22 43 3.096
105 7x15 48 32 18 32 3.360
128 8x16 49 28 17 25 3.200
162 9x18 45 25 12 16 2.592
200 10x20 43 24 11 12 2.400
288 12x24 42 20 9 9 2.592
406 14x29 26 16 11 4 1.624
Tipos de bandejas PROTEKTA
Nº Celdas CULTIVO
50 pepino sandia zapallo maiz
72 melon sandia pepino zapallo
105 pimentón pepino tomate melon
128 pimentón tomate ajo
162 pimentón tomate repollo coliflor
200 lechuga apio
288 cebolla flores lechuga cebollin
406 cebolla flores
N° de Celdas recomendadas según especie (PROTEKTA)
Hay que tener cuidado de no mantener por mucho tiempo
las plantas en estos contenedores, ya que las raíces
comienzan a enrollarse y se comprimen dentro del
contenedor, lo que provoca estrés en las plantas.
Cubos o pastillas de turba (jiffy pots): Contenedores
fabricados en diferentes tamaños y formas, compuestos de
turba deshidratada con el exterior cubierto de una fina malla
de plástico.
Al ser humedecidos se expanden ampliando varias veces
su tamaño.
jiffy pots jiffy pots
Paper-Pot: Son macetas de papel de tamaño pequeño,
mediano o grande, muchas veces de material reciclado que
se usan para la germinación o siembra.
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Paper-Pot Vasos plásticos
Usados principalmente para producción a pequeña escala Material reciclado
Para uso a pequeña
escala
En la elección de un contenedor hay que considerar
los siguientes factores:
Costo
Vida útil
Eficiencia en el uso del espacio
Facilidad de manipulación
Tamaño y altura del contenedor (relación aire/ agua)
Efecto de la altura y tamaño del contenedor (sustrato turba: vermiculita, 1:1)
Influencia de la altura del sustrato en la
cantidad de agua retenida (zona rayada)
Envase profundo
drena con facilidad.
Requiere un sustrato
con porosidad fina,
para retener más
humedad Envase poco profundo
mantiene un estado de
inundación. Requiere un
sustrato con porosidad
gruesa para aumentar la
aireación.
Camas Calientes
El principal objetivo es mantener una temperatura adecuada en
el suelo para la germinación de semillas, enraizamiento de
estacas y el crecimiento de plantas jóvenes.
Esto es muy importante en primavera cuando la temperatura del
suelo es baja para la germinación de cultivos.
Además de favorecer la germinación se aumenta la uniformidad
de las plantas.
Son armazones de madera o fierro semejantes a una mesa que se
usan para los mismos fines que un invernadero.
Se aporta calor artificialmente debajo del medio de propagación usando
cables eléctricos, tuberías con agua caliente, tubos con vapor o
conductos de aire caliente.
En estas instalaciones se puede hacer germinar semillas y enraizar
estacas
Cama Caliente
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En las camas calientes el riego nebulizado intermitente, permite
mantener una película de agua sobre las hojas. Cuando se
colocan a enraizar estacas con hojas, se produce una alta
humedad relativa y esto hace bajar la temperatura del aire y de
las hojas, disminuyendo el grado de transpiración.
Además en la germinación de semillas permite mantener una
humedad adecuada del sustrato.
La temperatura de fondo, bajo el sustrato se usa para
acelerar la germinación o el enraizamiento de estacas, de
acuerdo a los requerimientos de la especie.
La siembra o plantación se debe realizar en la misma
dirección de los cable eléctricos o tuberías de agua caliente
que aportan calor para que sea homogénea la temperatura
en todas las plantas.
Temperaturas de germinación de algunos cultivos
Especie Temperatura ideal Temperatura mínima Temperatura máxima
Acelga 18-22 6 34
Apio 18-25 5 30
Berenjena 20-25 15 35
Zapallo 20-30 11 40
Cebolla 20-25 5 30
Cilantro 25-30 13 35
Coliflor 24-30 5 35
Espárrago 20-25 6 40
Espinaca 15-25 5 30
Poroto 15-25 12 30
Lechuga 15-20 4 30
Maíz 25 11 35
Melón 28-30 12 40
Pepino 30-35 12 35
Perejil 20-25 13 35
Pimiento 20-30 8 35
Puerro 16-25 6 30
Rábano 20-25 10 34
Repollo 20-30 5 35
Sandía 30-35 13 40
Tomate 25-30 13 40
Zanahoria 20-30 5 35
COMPOSTAJE
El compostaje es una importante
alternativa para la recuperación de
materia orgánica aprovechando
restos orgánicos
DEFINICIÓN
Proceso basado en el reciclado de la materia
orgánica mediante una fermentación controlada
en condiciones aeróbicas, en el que se
desprende calor y se genera CO2, agua,
minerales y materia orgánica estabilizada (sin
actividad biológica).
10/09/2013
23
CARACTERÍSTICAS DEL COMPOST
Color oscuro, casi negro.
Tiene gran capacidad de retención de agua.
Olor agradable parecido a la tierra húmeda
Mejorador del crecimiento de las plantas.
Sustrato de propagación de plantines
Fertilizante orgánico.
ETAPAS DEL PROCESO DE COMPOSTAJE
Las etapas están muy relacionadas con la
temperatura
El proceso de compostaje puede dividirse en tres
periodos:
Fase Mesófila
Fase Termófila
Fase Maduración
Evolución de la temperatura ( – ) y el pH ( - - ) durante el proceso de compostaje.
Etapa Mesófila
Se produce a aproximadamente desde los 15 a los 45 ºC
Se produce Acidificación de materia
Degradación de fracciones de carbono débiles como
azúcares y aminoácidos
Mueren Hongos y se genera calor y CO2
Se eleva la Tº debido a la actividad metabólica,
Baja el pH
Etapa Termófila
Se produce desde los 45 a los -70 ºC
Se degradan productos de carbono resistentes como ceras
polímeros y hemicelulosa
Se destruyen los microorganismos patógenos y disminuye la
actividad respiratoria.
Hacia los 70º C se detiene prácticamente la actividad
microbiana.
La aireación hace que se reinicie el proceso hasta que se
acaban los nutritientes
Etapa Maduración
Proliferan los hongos
Se degradan los polímeros complejos
Baja actividad ( Requiere meses a Tº ambiente )
Al no haber casi nutrientes, desciende la
actividad bacteriana
FACTORES QUE INFLUYEN EN EL PROCESO DE COMPOSTAJE
Humedad
Debe de ser entre 40 a 60% el
óptimo
> 60% el proceso se hace
anaeróbico, ausencia de aire:
putrefacción
< 40% reducción de actividad
microbiana
< 12% = cesa la actividad
microbiana
Exceso de Humedad
Humedad Óptima
pH
Valor óptimo de 6 – 9
1ª Fase: Baja el pH
Acidificación materia
2ª Fase: Aumenta el pH
Facilita la pérdida de N, en forma de amoníaco (NH3)
Hongos toleran 5 – 8 Bacterias 6 – 7.5
10/09/2013
24
Relación Carbono/Nitrógeno ( C / H)
El carbono y nitrógeno son los elementos más
importantes requeridos para la descomposición
microbiana ya forman parte fundamental de las
proteínas, carbohidratos y lípidos que constituyen
los microrganismos.
Las células microbianas tienen una relación C/N en
promedio de 8:1.
Esta relación permite conocer la velocidad de
descomposición y determinar el tiempo de
compostaje, siempre y cuando las condiciones
de humedad, aireación y temperatura sean las
óptimas.
La facilidad de descomposición depende la relación C/N
de los materiales usados. La proporción óptima es de 25-
30 partes de carbono por una de nitrógeno
Carbono Energía Nitrógeno Proteína
Es importante realizar una mezcla adecuada de
los distintos residuos con diferentes relaciones
carbono/ nitrógeno para obtener un sustrato
equilibrado.
Carbono: es el principal constituyente de la celulosa,
lignina y carbohidratos de las plantas. Son fuentes de
carbono: la paja, hojas secas, ramas leñosas, aserrín, y
algunos tipos de papel y cartón sin tintas.
Nitrógeno: es el principal constituyente de proteínas y
aminoácidos. Son fuentes de nitrógeno: la materia
vegetal verde, estiércol, restos de frutas y verduras, etc.
Se considera que la mezcla ideal para elaborar
compost debe tener entre 25 y 30 veces más
material rico en carbono que en nitrógeno, es
decir una relación Carbono/Nitrógeno de 25-
30:1.
De manera práctica la relación anterior se
lograría con:
3 partes de materiales secos( ricos en celulosa y
carbono)
1 parte de material fresco o estiércol ( rico en
nitrógeno)
Si la relación Carbono/Nitrógeno es muy baja
(<25/1) el nitrógeno se encuentra en exceso
por lo que puede perderse como amoniaco
(NH3), lo que produce olor desagradable.
Por otro lado, si la relación C/N es muy alta
(>35/1) no existe suficiente nitrógeno para el
crecimiento microbiano por lo que disminuye la
actividad biológica se retrasa el proceso de
compostaje.
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Relación C/N
> 30/1= proceso lento
25 – 30/1= óptimo
< 25/1= Pérdidas de Nitrógeno
Se deben mezclar materiales con baja y alta
relación C/N:
Relación C/N Baja: Restos de leguminosas, pasto,
tejido tierno.
Relación C/N Alta: Pastos toscos, restos de poda,
hojas secas
Relación C/N de algunos materiales
Evolución de la relación C/N durante el proceso de compostaje Tamaño del material
El troceado y fragmentación previa del material
facilita el ataque de los microrganismos y
aumenta la velocidad del proceso, ya que
presenta una mayor superficie para ser atacada
por los microorganismos.
Un tamaño del material de entre 2 a 5 cm es lo
ideal.
Aireación
Se debe asegurar suministro de oxígeno
Para asegurar una buena fermentación y un rápido
compostaje
Con falta de oxígeno proliferan microrganismos
anaeróbicos, produciendo malos olores (H2S)
Contenido de oxigeno debe ser de aprox. 50 %
Nunca bajo 8 - 10 %, para asegurar condiciones
aerobias
Es necesario el volteo de las pilas para
homogenizar en toda la pila temperatura y
Oxigeno
Población Microbiana
Según la etapa del proceso de compostaje habrá
diferentes microorganismos
1ª etapa: Aparecen bacterias y hongos mesófilos que
liberan ácidos
2ª etapa: Cuando T ≈ 40 ºC, aparecen bacterias,
hongos termófilos y actinomicetes
3ª etapa: Por encima de 70 ºC, desaparece actividad
microbiana.
Microflora del Compostaje
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Las bacterias descomponen carbohidratos y
proteínas.
Los actinomicetes y hongos descomponen
celulosa y hemicelulosa.
¿Cuándo está listo un compost?
Indicadores de calidad
Color: negro, marrón oscuro
No se reconocen los materiales originales
La temperatura de la pila es estable
El volumen de la pila se redujo en más de un 50%.
MÉTODOS COMPOSTAJE
ABIERTOS
Pilas Estáticas Pilas con
Volteo
CERRADOS
Contenedores Túneles
Aireación Natural
Aireación Forzada
Aireación Natural
Aireación Forzada
Residuos No Apropiados para el compostaje y sus Efectos Negativos
El mejor momento para armar una pila para
compostar es en primavera o en otoño.
El exceso de frío o calor afecta la vida microbiana
en la pila.
COMO HACER LA PILA DE COMPOSTAJE
Con una horquilla, se hace un montón en capas
horizontales sucesivas.
Para permitir el intercambio de aire , al centro
de la pila se debe colocar un poste grueso,
alrededor del cual se va acomodando el material.
Pila de Compostaje
Una vez terminada la pila se saca el poste,
quedando un a chimenea que permite el tiraje.
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Boca de aireación
Después de colocar cada capa hay que regar
ligeramente para que el montón tenga una
humedad homogénea.
Una vez terminada la pila, la parte superior se
cubre con polietileno o con una capa fina de
tierra o paja para evitar que se moje con la lluvia
o que se seque.
Luego de un tiempo de fermentación se voltea la
pila para ajustar el contenido de humedad,
mezclar los materiales, incorporar más oxígeno y
así lograr una descomposición completa.
Esto se hace en el momento que la pila alcanza
su máxima temperatura (entre 50 y 60 º C) y
comienza a disminuir.
La pila comenzará a calentarse producto de la
fermentación. Cada 3 días debe controlarse la
temperatura y humedad.
Cuando alcance los 65ºC debe removerse y
mojarse.
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UNIDAD 2 Propagación Sexual
La reproducción sexual se efectúa mediante la
formación de gametos.
Donde los gametos masculinos y femeninos
antes de formarse, reducen sus cromosomas
(meiosis), y cada miembro del par de
cromosomas se va hacia una de las células que se
forman.
El número original de cromosoma es restaurado
durante la fecundación, resultando nuevos
individuos que contienen cromosomas del
progenitor masculino y del progenitor femenino.
En consecuencias, puede parecerse a alguno de los
dos o a ninguno de sus progenitores, dependiendo
de sus similitudes genéticas
Reproducción Sexual
Autógamas Flores hermafroditas
Alógamas
Flores unisexuales
monoicas
dioicas
Flores hermafroditas con barreras en la reproducción (autoincompatibilidad, androesterilidad, etc.)
Tipos de Fecundación
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ESPECIES AUTÓGAMAS Se reproducen por autofecundación, es decir, los
gametos que se unen para formar el cigoto
proceden de la misma planta.
Las poblaciones de estas especies son
generalmente, una mezcla de líneas homocigóticas.
La proporción de polinización cruzada natural
puede variar de 0 a 5%.
Ejemplo de Especies Autógamas
Arroz (Oriza sativa)
Avena (Avena sativa)
Cebada (Hordeun vulgare)
Arveja (Pisun sativum)
Cítricos (varias especies)
Durazno (Prunus persica)
Fríjol (Phasealus vulgaris)
Garbanzo (Cicer arietinum)
Pepino Dulce (Solanum
muricatum)
Pimiento (Capsicum annuum)
Soya (Glycine max)
Tabaco (Nicotiana tabacum)
Tomate (Lycopersicum esculentum)
ESPECIES ALÓGAMAS
Se reproducen por medio de polinización cruzada, es
decir, que los gametos (masculino y femenino) que
se unen para formar el cigoto son de plantas
diferentes.
En este sistema aumenta la variabilidad genética en
las poblaciones.
En estas especies hay un constante intercambio
genético debido a que los granos de polen, quedan
libres para ser transportados por el viento,
insectos o cualquier otro medio hasta los estigmas
de otra planta de la misma especie.
Ejemplo Especies Alógamas
Alfalfa (Medicago sativa)
Zapallo (Cucurbita spp)
Cebolla (Allium cepa)
Girasol (Heliantus spp)
Maíz (Zea mays)
Manzano (Malus spp)
Melón (Cucumis melo)
Peral (Pyrus spp)
Sandía (Citrullus vulgaris)
Zanahoria (Daucus carota)
Principios de la Propagación Sexual
Las semillas proceden de los rudimentos seminales de la
flor, una vez fecundados y maduros.
Constan esencialmente de:
Un embrión (formado por el eje embrionario y los
cotiledones)
Una provisión de reservas nutritivas que pueden
almacenarse en un tejido especializado (albumen o
endospermo) o en el propio embrión
Una cubierta seminal que recubre y protege a ambos
Durante la embriogénesis se producen importantes alteraciones fitohormonales
Una semilla está madura cuando alcanza su completo
desarrollo desde el punto de vista morfológico y
fisiológico.
La madurez morfológica se logra cuando las distintas
estructuras de la semilla han completado su desarrollo,
dándose por finalizada cuando el embrión ha alcanzado
su máximo desarrollo.
Madurez morfológica
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Esta madurez ocurre, generalmente sobre la planta
antes de la dispersión de la semilla
No implica capacidad de germinación
Son los cambios metabólicos imprescindibles para
que se produzca la germinación.
Se alcanza al mismo tiempo que la morfológica, o
más tarde (semanas, meses y hasta años)
Generalmente implica la pérdida de sustancias
inhibidoras de la germinación o la acumulación de
sustancias promotoras
Madurez fisiológica Están adaptadas para resistir las condiciones adversas
del medio.
Cuando las condiciones son las adecuadas, la semilla
germina y origina una nueva plántula.
Pueden presentar dormancia o latencia.
Germinación de semillas
La semilla, después de separada de la planta
madre, permanece por cierto periodo de tiempo
en un estado aparente de inactividad.
La germinación es el proceso en el cual se reanuda
la actividad de la semilla, transformándose el
embrión en una nueva planta
En la germinación intervienen tres aspectos
importantes:
La semilla debe ser viable, esto es, el embrión debe estar
vivo y capaz de germinar.
La semilla debe ser puesta en condiciones ambientales
favorables de: temperatura, humedad, luz y oxigeno.
Cuando las condiciones ambientales externas son
favorables, deben superarse las condiciones internas
que impidan la germinación (latencia).
Los procesos fisiológicos de crecimiento exigen
actividades metabólicas aceleradas y la fase inicial de
la germinación consiste primero en la activación de los
procesos por aumento en la humedad y actividad
respiratoria de la semilla.
FASES DEL PROCESO DE GERMINACIÓN
I. Fase de Imbibición.
Es un fenómeno físico, por el cual, los coloides
contenidos en la semilla adsorben gran cantidad de
agua, por la diferencia de concentración entre el
interior y el exterior de la semilla, por lo que se
hidratan el citoplasma y las membranas de las
células y se reacomoda toda la estructura celular.
Hay un aumento brusco del consumo de oxígeno
debido a la activación y síntesis de enzimas de la
respiración.
Esta fase se produce en semillas vivas y muertas y,
por tanto, es independiente de la actividad
metabólica de la semilla. Sin embargo, en las
semillas viables, su metabolismo se activa por la
hidratación.
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II. Fase de Activación Metabólica.
Constituye un período de metabolismo activo
previo a la germinación en las semillas viables.
Ocurren profundos cambios metabólicos.
Se produce una estabilización en el intercambio
gaseoso
Se reduce considerablemente la absorción de agua,
se activan las enzimas para el desdoblamiento y
movilización de las reservas hacia el eje
embrionario donde el tejido quiescente se vuelve
metabólicamente activo.
III. Fase de crecimiento.
Esta fase se produce sólo en las semillas que
germinan y se asocia a una fuerte actividad
metabólica que comprende el inicio del
crecimiento de la plántula y la movilización de las
reservas.
Se inicia al producirse la elongación y división
celular, ocurren cambios morfológicos
evidentes, y se caracteriza por el constante
aumento en la absorción de agua.
Hay un nuevo incremento de la intensidad
respiratoria, que coincide con la emergencia de
la radícula.
Fases del proceso de germinación
CONDICIONES AMBIENTALES QUE AFECTAN LA GERMINACIÓN
HUMEDAD
El grado hidratación de los tejidos permite un
aumento en la actividad respiratoria de la semilla
a un nivel capaz de sustentar el crecimiento del
embrión.
La absorción de agua es el primer paso que
ocurre durante la germinación para que la semilla
recupere su metabolismo.
El agua llega al embrión a través de las paredes
celulares de la cubierta seminal; siempre a favor
de un gradiente de potencial hídrico.
Un exceso de agua actuaría desfavorablemente
para la germinación, pues dificultaría la llegada
de oxígeno al embrión.
Cada especie necesita absorber un cierto mínimo de
humedad para que ocurra germinación.
Las semillas con alto contenido de proteína
necesitan un contenido de humedad mayor que
semillas con niveles bajos de proteína y alto
contenido de almidón o de aceite.
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Contenido de humedad necesario para que ocurra la germinación de algunas semillas de especies cultivadas.
Humedad TEMPERATURA
Es un factor muy importante , ya que actúa sobre
las enzimas y por tanto sobre el metabolismo de la
semilla.
Para cada clase de semillas existe una
temperatura mínima y una máxima en la que
ocurre la germinación.
Además, dentro del rango temperatura mínima-
máxima, existe un punto en el que se obtiene la
máxima germinación y ésta ocurre más
rápidamente; este punto corresponde a la
temperatura óptima.
Estas temperaturas se conocen como las
temperaturas cardinales de germinación.
Temperatura mínima, Por debajo de esta
temperatura los procesos de germinación no se
pueden detectar visualmente, dentro de un período
razonable de tiempo. Bajas temperaturas pero por
encima del punto de congelación no son letales a
las semillas.
Temperatura máxima, Es la temperatura por encima de
la cual los mecanismos de germinación no operan ya
que se desnaturalizan las proteínas y por lo tanto no se
da crecimiento del embrión. En contraste con la
temperatura mínima, la máxima es fácil de determinar
ya que temperaturas superiores a la máxima causan
daños irreversibles a las semillas.
Temperatura óptima, Es la temperatura a la cual se da
el porcentaje máximo de germinación en un mínimo de
tiempo.
En el rango temperatura mínima-óptima los
porcentajes de germinación no son
sustancialmente diferentes, pero la
germinación ocurre más rápidamente
conforme nos desplazamos hacía la
temperatura óptima.
En el rango temperatura óptima-máxima, los
porcentajes de germinación tienden a
disminuir al desplazarnos hacía la
temperatura máxima y la velocidad de
germinación también disminuye en las
cercanías de la máxima.
La temperatura de germinación de las
semillas varía mucho de unas especies a otras.
Especies tropicales germinan bien con T° > 25ºC.
Especies de zonas mediterráneas templadas
germinan con Tº > 15 < 20ºC
Especies de zona frías germinan con Tº > 5 < 15ºC.
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Temperatura de Germinación CONDICIONES DE Tº DEL SUELO PARA GERMINACIÓN DE SEMILLAS
OXÍGENO
En las semillas que no están germinando, la
respiración es baja y necesita poco oxigeno.
Durante la germinación, la respiración aumenta y
se utiliza considerablemente más oxigeno.
El efecto de una proporción reducida de oxigeno
sobre la germinación puede retardarla y hasta
inhibirla completamente.
Oxígeno
Efecto del % de O2 en la germinación de avena
La mayoría de las semillas germina en una atmósfera con 21% de oxígeno y un bajo porcentaje de dióxido de carbono (0.03%)
%
CO2
%
O2
%
Germinación
0,03 21 100
16,9 17,4 93
30,0 14,7 50
25,0 13,6 31
26,8 13,2 10
38,7 12,8 1
LUZ
La exposición a la luz estimula la germinación
de semillas de muchas especies silvestres y
agrícolas.
En la gran mayoría de los casos se estimula la
germinación mediante exposición a luz roja (660
nm = 6600 A°) y se inhibe con luz de 730 nm de
longitud de onda.
Algunas semillas que normalmente no requieren
de luz para germinar, ejemplo, tomate y pepino,
pueden tornarse fotosensibles si se exponen a luz
de 730 nm.
Una vez que la germinación ha sido inhibida por
exposición a esa calidad de luz, el efecto
inhibitorio puede revertirse mediante exposición
a luz de 660 nm.
Las semillas se clasifican en tres grupos según sus
necesidades de luz para germinar:
Semillas con fotosensibilidad positiva: semillas que
germinan preferentemente bajo condiciones de
iluminación.
Semillas con fotosensibilidad negativa: semillas que
germinan preferentemente en oscuridad, siendo la luz
desfavorable para la germinación.
Semillas no fotosensibles: semillas indiferentes a las
condiciones de iluminación.
Viabilidad de las semillas
Es el período de tiempo durante el cual las semillas
conservan su capacidad para germinar.
Las semillas pueden mantenerse viables un número muy
variable de años, en general, la vida media de una semilla se
sitúa entre 5 y 25 años.
Pero en un lote de semillas la proporción de semillas
capaces de germinar disminuye progresivamente a lo largo
de los años.
Esta disminución de la viabilidad depende mucho
de las condiciones de conservación y, por lo tanto,
es difícil decir el número de años que se puede
conservar la semilla de una especie determinada.
Condiciones adecuadas de conservación:
Ambiente seco
Temperaturas bajas
Presencia de oxígeno reducida
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Tiempo medio de conservación de diferentes especies
Especie Años
Cebolla 1 Maíz 2 Lechuga 3 Pimiento 3 Zanahoria 3 Tomate 3 Acelga 4 Espinaca 4 Haba 4 Nabo 4 Rábano 4 Apio 5 Berenjena 5 Calabaza 5 Melón 5 Pepino 5
Según su viabilidad se reconocen dos
grandes grupos de semillas:
Semillas ortodoxas y
Semillas recalcitrantes.
Semillas Ortodoxas: Son semillas que al madurar tienen
un bajo contenido de humedad, lo que les da mayores
posibilidades de almacenaje prolongado (granos básicos,
flores, hortalizas, muchos forestales, malezas, etc.), por
que su metabolismo es reducido por la escasez de
humedad.
Es posible bajar su contenido de humedad hasta un 5 a
10 % y guardarlas a temperaturas bajo cero sin dañarlas.
Por lo tanto es posible su conservación por períodos
largos sin perder su capacidad germinativa.
Semillas Recalcitrantes: Son semillas que al madurar tienen
un alto contenido de grasa o agua y que al oxidarse las
grasas o perder su humedad mas allá de un limite, se
mueren.
Este grupo incluye las semillas de nueces, castaño, avellano
y de muchas plantas tropicales, especialmente frutales
como palto y cítricos, que tiene semillas carnosas o con un
alto contenido de humedad cuando se cosechan y no hay
que permitir que se sequen en exceso, pues eso les reduce o
elimina la capacidad de germinar, según el grado de
deshidratación que hayan tenido.
DESARROLLO DE LA PLÁNTULA
La germinación se considera que ha terminado
cuando la radícula emerge a través de las cubiertas
seminales. A partir de este momento su posterior
desarrollo llevará a la aparición de la plántula sobre
el suelo
Las semillas, de acuerdo a la posición de los
cotiledones respecto a la superficie del sustrato,
pueden diferenciarse en la forma de germinar.
Germinación Epigea
El alargamiento del hipocotilo lleva los cotiledones y la
yema apical por encima del nivel del suelo.
Una vez en el exterior, en los cotiledones se diferencian
cloroplastos (primeros órganos fotosintetizadores de la
planta).
A continuación comienza a desarrollarse el epicotilo.
(porción del eje comprendida entre el punto de
inserción de los cotiledones y las primeras hojas).
Presentan este tipo de germinación las semillas de
cebolla, porotos, lechuga, tomate, zapallo, etc.
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Germinación hipogea
Los cotiledones permanecen enterrados; solo la plúmula
atraviesa el suelo. El alargamiento del hipocótilo es
prácticamente nulo.
El alargamiento del epicótilo lleva a la yema apical por
encima del nivel del suelo, apareciendo las primeras hojas
verdaderas, que son, en este caso, los primeros órganos
fotosintetizadores de la plántula.
Este tipo de germinación lo presentan las semillas de
trigo, maíz, cebada, arveja, haba, etc.
Regulación de la Germinación
Una parte importante de las especies poseen algún
impedimento para que germinen sus semillas.
Esto puede deberse a dos causas:
El medio no es favorable para el crecimiento
vegetativo por falta de humedad, aireación o por
una temperatura inadecuada. A este tipo de
inhibición se le llama quiescencia,
Las condiciones del medio son adecuadas, pero la
semilla tiene una combinación fisiológica tal que
impide su crecimiento. Este tipo de inhibición se
denomina dormancia o latencia.
Dormancia de semillas
Las semillas esperan las condiciones favorables para la
germinación y el crecimiento en un estado de
metabolismo paralizado (quiescencia)
La dormancia se define como el estado en el cual una
semilla viable y madura no germina aunque los
factores externos sean favorables para hacerlo, es decir,
aunque las condiciones de temperatura, humedad y
concentración de oxígeno sean las adecuadas.
Hay dos tipos básicos de dormancia de semillas.
Dormancia externa: causada por la presencia de una
cubierta seminal dura que protege a la semilla y no
permite la entrada del agua o el oxígeno hasta el embrión,
por eso éste no puede ser activado.
Dormancia interna: causada por la condición del embrión
que no permite la germinación.
Tipos de Dormancia externa: Los principales
mecanismos por los cuales las cubiertas seminales
imponen la dormancia son los siguientes:
Interferencia con la captación de agua: las semillas pueden
poseer un tegumento que impide la absorción de agua y la
ruptura de la testa, e iniciar la germinación.
Interferencia con el intercambio gaseoso: se da cuando las
estructuras como el pericarpio o tegumento impiden el
intercambio de oxígeno. Esta forma de dormancia es común
en gramíneas.
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Presencia de inhibidores en las cubiertas seminales: presencia de
sustancias como compuestos fenólicos que inhiben la
germinación de algunas semillas.
Restricciones mecánicas: el tegumento o cubierta protectora
puede presentar resistencia mecánica capaz de impedir la
expansión de la radícula para emerger al exterior.
Tipos de Dormancia Interna:
Embrión dormante: la causa de la dormancia está en el
embrión. Estas semillas presentan exigencias especiales en
cuanto a luz o temperatura, para superar la dormancia
causada por inhibidores químicos.
Embrión inmaduro o rudimentario: el embrión no está
completamente desarrollado cuando la semilla se desprende
de la planta.
Combinación de causas: la dormancia afecta al
mismo tiempo a la cubierta y al embrión.
La presencia de una causa de dormancia no elimina
la posibilidad de que otras causas estén presentes.
Estas semillas necesitan de una combinación de
tratamientos para superar la condición de
dormancia.
Técnicas para promover
la germinación
Una parte importante de las especies poseen algún
impedimento para que germinen sus semillas.
Algunas semillas necesitan un tratamiento
pregerminativo para poder germinar: escarificado,
estratificado, inmersión en agua caliente o a Tº
ambiente, lixiviación con agua corriente,
estimulantes químicos.
Esto puede deberse a dos causas:
El medio no es favorable para el crecimiento
vegetativo a causa de una escasa disponibilidad de
humedad, oxígeno o una temperatura inadecuada.
Las condiciones del medio son adecuadas, pero la
semilla tiene una combinación fisiológica tal que
impide su crecimiento.
En la naturaleza, el efecto de esos controles sirve
para preservar las semillas y regular la germinación
de manera que coincida con períodos del año en
que las condiciones naturales son favorables para
la supervivencia de las plántulas.
Por ejemplo, semillas que se diseminan al inicio del
verano como cerezos, damascos, etc. necesitan
obligatoriamente pasar por periodos de calor
(Verano) seguidos de periodos de frío (Otoño-
Invierno) para que germinen.
Esto significa que hasta la primavera del año
siguiente a la diseminación no estarán en
condiciones de germinar.
Estos mecanismos son importantes para plantas
que crecen en donde ocurren condiciones
ambientales extremas, como en las regiones muy
cálidas y secas o frías, en donde las condiciones
ambientales, después de la diseminación de las
semillas, pueden no ser favorables para la
germinación inmediata.
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Otras necesitan que se deterioren las cubiertas que
las rodean, y en la naturaleza esto se produce en
muchos casos tras pasar por el tracto digestivo de
los animales o aves que se alimentan de sus frutos.
Según sea la causa que produce la latencia o
dormancia de las semillas será el tratamiento que
se le debe aplicar.
La latencia de las semillas en la naturaleza termina
cuando existe algún estímulo que anuncie que las
condiciones son favorables para el desarrollo de la
planta.
Los tratamientos pregerminativos son todos
aquellos procedimientos necesarios para romper la
latencia de las semillas de algunas especies,
estimulando la germinación y haciéndola más
rápida y homogénea.
Los tratamientos pregerminativos más comunes
que se usan para para eliminar la latencia son:
Tratamientos Pregerminativos
a. Estratificación
b. Escarificación
c. Lixiviación
d. Combinación de tratamientos
e. Hormonas y otros estimulantes químicos
a) Estratificación
Esta es una técnica simple, barata y eficaz para
superar la latencia proveniente del embrión
(dormancia interna).
Consiste en colocar las semillas en un medio
húmedo como arena, aserrín, vermiculita, turba o
una mezcla de dos medios en un envase cubierto.
El período de estratificación varía según la especie.
Estratificación Cálida. Se basa en la necesidad
de las semillas de estar sometidas a altas
temperaturas para poder germinar. Se realiza a
una temperatura de 20 a 25oC, con un período
de estratificación entre los 30 y 60 días.
Se conservan las semillas en arena húmeda, sin
esterilizar, por varios meses, para ablandar las
cubiertas de las semillas por la actividad de los
microorganismos.
Se aplica la estratificación cálida a semillas que
tienen embriones inmaduros.
Estratificación Fría. Se realiza a una temperatura
de 4 a 10ºC.
A tº mayores, las semillas brotan prematuramente,
y con t° más bajas se retrasa la brotación.
El tiempo de estratificación depende de la sp,
pero en general oscila entre 20 y 60 días, llegando
inclusive hasta 120 días a bajas temperaturas,
asemejando a las condiciones de invierno.
Se usa para romper latencia fisiológica
En el vivero también se puede estratificar
empleando el mismo suelo o algún otro sustrato
húmedo.
Efecto de la Estratificación a 4ºC por 30, 60 y 90 días
en Cedro Blanco del Atlántico
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b) Escarificación
Es cualquier proceso de romper,
rayar, alterar mecánicamente o
ablandar las cubiertas de las semillas
para hacerlas permeables al agua y
a los gases.
1. Escarificación Mecánica:
Consiste en raspar la cubierta de las semillas con lijas,
limas o quebrarlas con un martillo. También se puede
hacer un corte pequeño en la semilla para permitir la
germinación.
Si es a gran escala se utilizan maquinas especiales como
tambores giratorios recubiertos en su interior con papel
lija, o combinados con arena gruesa o grava.
2. Escarificación Húmeda con agua caliente:
Se colocan las semillas en un recipiente en una
proporción de 4 a 5 veces su volumen de agua caliente
a temperatura entre 77 y 100 ºC. De inmediato se retira
la fuente de calor y las semillas se dejan remojar durante
12 a 24 horas en el agua que se va enfriando
gradualmente.
Las semillas se deben sembrar inmediatamente después
del tratamiento.
3. Escarificación con ácido sulfúrico:
Las semillas secas se colocan en recipientes no
metálicos y se cubren con ácido sulfúrico concentrado
en proporción de una parte de semilla por dos de
ácido.
Durante el período de tratamiento las semillas deben
agitarse regularmente con el fin de obtener resultados
uniformes.
Efecto del tiempo de remojo en ácido sulfúrico y
edad de la semilla, de Lupinus campestris en el % de
germinación
• El tiempo de tratamiento varía según la especie,
pudiendo ir de unos minutos a 12 horas o más.
• Al final del período de tratamiento se sacan las semillas
del ácido y se lavan con abundante agua para
quitarles el restante.
c) Lixiviación
El propósito es remover los inhibidores que
presentan algunas semillas, remojándolas
en agua corriente o cambiándoles el agua
con frecuencia.
El tiempo de lixiviación en general es de 12
a 24 horas.
d) Combinación de tratamientos: Hay semillas que presentan más de un tipo de
letargo, como puede ser una cubierta dura y
latencia del embrión.
En este caso primero se escarifica para
ablandar la cubierta de la semilla y permitir la
absorción de agua y después se estratifica
para superar la latencia embrionaria.
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e) Hormonas y otros estimulantes
químicos:
Existen compuestos que sirven para estimular la
germinación, entre los más usados están:
a. nitrato de potasio,
b. ácido geberélico (GA3),
c. hipoclorito de sodio, entre otros.
a. Nitrato de potasio (KNO3): Se usa en semillas de
gramíneas y en algunas hortalizas, en solución al
0,2% de KNO3 para superar la latencia. Las semillas
son colocadas para germinar en un sustrato
embebido de KNO3.
Entre las especies que se aplica este método, se
encuentran las pertenecientes al género Poa,
Agrostis, Lolium, Festuca, etc.
b. Acido giberélico: se sabe que el ácido
giberélico aumenta la velocidad de
germinación y estimula el crecimiento de las
plantas en ciertas clases de semillas latentes.
La respuesta a este tratamiento puede ser
variable dependiendo de las interacciones
con otros factores.
Las semillas se tratan con ácido giberélico,
remojándolas en una solución acuosa, a una
concentración que varía entre 100 a 1.500
ppm.
En algunos casos es necesario remover la
cubierta de la semilla para que pueda
penetrar la solución.
c. Hipoclorito de Sodio: Esta solución se usa para
estimular la germinación de la semilla de arroz.
Aparentemente supera al efecto de un
inhibidor soluble en agua que se encuentra en
la cascarilla.
Se usa en proporción de 1 parte de
concentrado comercial por 100 de agua.
Iniciadores de la Germinación
Se usan antes de la siembra para iniciar la
germinación y mejorar la velocidad y
uniformidad del establecimiento de las
plántulas, y también para contrarrestar
problemas de letargo en semillas recién
cosechadas.
Dentro de estos métodos tenemos:
Osmoacondicionamiento: Las semillas se
colocan en capas delgadas en un
recipiente con una solución de
Polietilenglicol al 20 a 30%, que puede incluir
otras sustancias como hormonas o
fungicidas.
Las semillas se incuban a 15 a 20°C por 7 a
21 días. Después se lavan con agua
destilada, se secan y se almacenan.
Infusión: Se usa para incorporar a las
semillas reguladores de crecimiento,
fungicidas, insecticidas, antibióticos y
antídotos de herbicidas por medio de
solventes orgánicos.
Se sumergen las semillas de 1 a 4 horas en
una solución de acetona y diclorometano
que contiene las sustancias a difundir.
Pasado este tiempo se elimina el solvente
por evaporación y se secan las semillas.
La sustancia química incorporada es
absorbida por el embrión al remojarlas
posteriormente en agua
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Siembra Fluida: Es un sistema integrado en que
se hace la pregerminación de las semillas en
condiciones óptimas de aireación, luz y
temperatura, y luego se siembran suspendidas
en un gel (alginato de sodio, almidón-
poliacronitrilo hidrolizado, goma guar, arcilla
sintética).
Para este tipo de siembra se necesitan
máquinas especiales.
Factores que determinan la forma de sembrar :
Resistencia al trasplante
Tamaño de las semillas
Tasa inicial de crecimiento
Época de siembra y condiciones de clima requeridas por el
cultivo.
Época en que se quiere cosechar.
Costo de la semilla
Aprovechamiento del terreno
PRINCIPALES MEDIDAS DE MANEJO PARA MANEJAR FACTORES DEL AMBIENTE EN LA SIEMBRA
FACTOR DEL AMBIENTE
MEDIDA DE MANEJO
HUMEDAD
Siembras profundas Riegos suaves y continuos Uso de mulch Ligera compactación o apisonado del terreno
TEMPERATURA
Época de siembra Pregerminado de semilla Profundidad de siembra Cama caliente Sombreado Uso de mulch
AIREACIÓN Suelo o medio de cultivo de buen drenaje Manejos de riego que eviten el exceso de agua
LUZ Densidad de plantación Transparencia de los materiales de cubierta para sombra o abrigo
Los métodos de siembra se pueden
dividir en:
a) Siembra directa
b) Siembra de Almácigo y trasplante
Las semillas se colocan directamente en el
terreno definitivo en el que crecerán las plantas
hasta el momento de la cosecha.
Se usa mayor cantidad de semilla, ya que se
pierden algunas por competencia con malezas o
por raleo posterior.
a) SIEMBRA DIRECTA
El éxito de la siembra directa depende de:
Suelos bien preparados.
Excelente nivelación (en riego por gravedad y aspersión).
Buen control de malezas, insectos, enfermedades, pájaros
y roedores.
Usar el equipo de siembra adecuado.
Costo de la semilla (debe ser económica).
Condiciones adecuadas para la siembra (temperatura y
humedad del suelo)
Requiere raleo de plantas.
VENTAJAS DESVENTAJAS
•Ahorra mano de obra del trasplante.
•Es preferida cuando el costo de la semilla es bajo.
•Hay crecimiento continuo y rápido de la planta. No sufre el estrés del trasplante.
•Imprescindible en especies de difícil trasplante como cucurbitáceas, maíz y leguminosas.
•Exige un buen control de malezas en las etapas tempranas de los cultivos.
•Difícil de obtener óptima densidad y distribución, de plantas, especialmente con semillas pequeñas.
•Exige el uso de: •Sembradoras de precisión •semilla de calidad • buen suelo y •cama de siembra bien preparada
Siembra Directa
Esta preparación implica:
1. Arar para incorporar residuos de la cosecha
anterior y romper el suelo hasta una profundidad
aproximada de 20cm.
2. Rastrear para mullir las capas superficiales del
suelo
3. Pasar Rodillo o tablón para compactar superficie.
Preparación cama de siembra
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Métodos de siembra directa
En surcos o sobre
camellones
Chorro continuo Maíz dulce, Porotos, Habas,
arvejas En línea con sembradora
de precisión
A Golpes Zapallo, Melón, Sandía,
Zapallito, Pepino
En mesas
Al voleo
Lechuga, espinaca,
zanahoria, remolacha,
Acelga, rabanito
Chorro continuo
Lechuga, espinaca,
zanahoria, remolacha,
Acelga, rabanito
En línea con sembradora
de precisión
Repollo, Coliflor, tomate,
Cebolla
CAMELLONES
MESAS
Para la siembra directa se han establecido diversos
sistemas de distribución de la semilla,
dependiendo del tamaño y de las condiciones que
éstas exigen.
Los principales sistemas son:
Siembra al Voleo
Siembra en Línea
Siembra al voleo: Se
desparrama una
cantidad determinada de
semillas por unidad de
superficie de manera que
su distribución sea lo
más uniforme posible.
SIEMBRA AL VOLEO
A MANO A MAQUINA
La siembra al voleo manual es lo más corriente
pero tiene varios inconvenientes, ya que nunca
la mano distribuye la semilla de manera
uniforme por lo que no resulta siempre pareja.
Además este tipo de siembra exige una mayor
cantidad de semilla.
Este tipo de siembra se perfecciona más cuando
se realiza con maquinas sembradoras al voleo.
SIEMBRA DIRECTA AL VOLEO
VENTAJAS DESVENTAJAS
•Bajo Costo
•Siembras en terrenos donde no se puede sembrar a máquina
•No permite hacer escardas
•Distribución desuniforme de semillas
•Desuniformidad en la población de plantas
•Profundidad Irregular
•Alta dosis de semilla
•Pérdida de semilla
Siembra en Línea: Es colocar la semilla, en forma
manual o mecánica, en líneas equidistantes.
Su distribución puede ser :
A surco lleno (chorro continuo) Cereales, forrajeras,
Por golpe: Maíz, leguminosas de grano, maravilla,
papa.
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SIEMBRA EN LINEA
A MANO A MAQUINA
CHORRO
CONTINUO GOLPE
CHORRO
CONTINUO GOLPE
SIEMBRA EN LINEA
VENTAJAS DESVENTAJAS
•Permite realizar escardas
•Uniformidad en la población de
plantas
• Uniformidad en la profundidad
de siembra
•Baja dosis semilla
•Madurez uniformecalidad
•Mayor superficie
•Mayor mano de obra
La siembra a máquina se realiza con máquinas
especialmente diseñadas para sembrar semillas de
hortaliza.
La máquina, una vez que se ha calibrado la distancia y
la profundidad de siembra, introduce las semillas en el
terreno, pueden ser máquinas de precisión manuales o
de arrastre.
Este tipo de siembra permite realizar en menor tiempo
el trabajo, y de manera mas eficiente.
Los almácigos consisten en la iniciación de
plantas en áreas pequeñas, con condiciones muy
favorables para un rápido crecimiento y posterior
trasplante al campo para su cultivo definitivo.
Se usan con semillas muy pequeñas o de alto
costo, principalmente en hortalizas y flores.
b) SIEMBRA DE ALMÁCIGO Y TRANSPLANTE
Objetivos del almácigo y trasplante
Mayor protección y control de plántulas.
Establecer gran cantidad de plántulas en lugares
pequeños.
Permite limpias continuas; control directo, buena
selección de plántulas para el trasplante.
Los almácigos se clasifican según su sistema de producción de la
siguiente forma:
A raíz desnuda: es un almácigo realizado directamente en el
suelo o en algún sustrato pero, al momento del transplante, se
extraen los plantines sin proteger sus raíces. Al romper raíces se
produce un estrés que se denomina “shock de transplante” y trae
como consecuencia reducción del crecimiento y desarrollo de las
plantas transplantadas, por rotura de raíces.
Con pan de tierra: Son aquellos plantines que pasan el período
de almacigo dentro de un contenedor con algún sustrato y, al
momento del transplante, poseen un pan de tierra recubriendo
sus raíces.
Almácigo y Trasplante VENTAJAS DESVENTAJAS
•Facilita la siembra y los cuidados en las etapas iniciales de crecimiento.
•Selección de las mejores plantas para llevar al campo.
•Mejor aprovechamiento de las semillas. Importante cuando su costo es alto.
•Reduce tiempo de uso del campo por el cultivo.
•Permite hacer siembras anticipadas, adelantando la cosecha.
•Aumento de la mano de obra del cultivo por los trabajos de trasplante.
•Produce estrés de trasplante que interrumpe el crecimiento.
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En almácigos se siembra:
Semillas pequeñas, para cultivos que exigen una buena
distribución a fin de obtener un producto uniforme
(coliflor, bróccoli, tomate, apio).
Semillas pequeñas de plantas con crecimiento inicial
lento y exigentes en ambiente (cebolla).
Semillas muy caras (híbridos de tomate, pimiento,
berenjena, melón, flores).
Cuando se quiere adelantar siembras y el clima es
adverso (siembra de especies sensibles a heladas
durante el período en se realizan).
Cuando se quiere acortar el período de cultivo y
disminuir riesgos (lechuga).
Para iniciar un cultivo cuando el terreno aún está
ocupado.
Siembra de almacigo en
contenedor
trasplante con raíz
cubierta (cepellón)
Siembra de almacigo en terreno
trasplante a raíz
desnuda
ALMACIGOS
Recipientes
Multiceldas
(bandejas)
Directamente
sobre el
suelo.
Cajoneras Recipientes
Individuales
(macetas)
En todos los casos es seguido de trasplante
al lugar definitivo en el campo.
La siembra se realiza sobre una superficie restringida y a una alta densidad
.
Trasplante a raíz desnuda Trasplante con cepellón
Trasplante a raíz desnuda
Trasplante con cepellón
Elección del suelo para almácigos
Cercano a una fuente de agua y en lugar fácil de cuidar.
Suelto, friable, profundo y bien drenado.
Capaz de retener humedad y aportar nutrientes.
Que se pueda calentar rápido en invierno y permanecer fresco en verano.
Libre de enfermedades y malezas de difícil control.
Preparación de almácigos en el suelo
Preparar las mesas con tiempo para permitir la emergencia de
malezas y realizar su control previo a la instalación del
almácigo.
Agregar materia orgánica, abonos verdes, estiércoles bien
fermentados, arena y nutrientes como fertilizantes químicos
muy solubles.
Mesas
En invierno: altas y de forma acamellonada para facilitar el
drenaje.
En verano: bajos y planas, para conservar la humedad.
Pregerminado de la semilla
Embeber las semillas en agua fría o tibia facilita
la germinación.
La duración es variable: 12 a 48 horas.
En algunas semillas no debe ir más allá del inicio de
aparición de radículas.
La humedad debe será constante.
Se debe secar las semillas antes de la siembra para facilitar
la operación.
Profundidad de siembra
Depende de la especie, de la época, del clima, del suelo,
etc., lo que hace difícil establecer reglas.
Siembras muy superficiales protegen mal a la semilla de
la sequedad y hace que el arraigamiento sea más lento.
Siembras muy profundas, por otra parte, impiden el
acceso del aire y el brote llega con dificultad a la
superficie del suelo.
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a) Siembras superficiales: para semillas de diámetro
pequeño, con pocas reservas, como forrajeras, raps,
remolacha, hortalizas en general. La profundidad es
entre la superficie del suelo y 3 centímetros.
b) Siembras de profundidad media: para semillas de tamaño
medio como cereales en general (trigo, avena, centeno,
maíz, cebada) porotos , habas, etc.). Profundidad de 3 a 10
cm.
c) Siembras profundas: para semillas de gran tamaño como
duraznero, palto. Profundidades sobre los 10 cm.
Profundidad de siembra
Trasplante
Objetivo:
Llevar al campo plantas iniciadas en almácigos.
Efectos:
Se produce una reducción de la absorción de agua y nutrientes y cese transitorio del crecimiento.
Estrés de trasplante
Trasplante manual
Trasplantadora autopropulsada
Trasplante a Raíz desnuda
Las condiciones ideales de trasplante es con viento en calma,
temperatura fresca, alta humedad relativa, suelo con alta
humedad y preferentemente los surcos con agua.
El factor más limitante es el viento. Cuando las temperaturas
son elevadas (> 280C) se recomienda hacerlo por las tardes y
todo el día cuando las temperaturas son muy bajas (10 a
160C) e intermedias (20 a 280C).
El trasplante se puede hacer solo manualmente en el caso de
utilizar plantines a raíz desnuda.
Trasplante con Cepellón
Las condiciones son las mismas, solo que con cepellón, el
porcentaje de fallas se reduce considerablemente. Es
importante que todo el cepellón (sustrato) quede tapado
totalmente.
El trasplante se puede hacer manual o mecánicamente,
en el caso de utilizar plantines con cepellón.
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Factores de la Planta: Proporción del sistema radicular retenido en el
trasplante (cantidad de raíces).
Efectividad de las raíces retenidas, de absorber agua durante los primeros días luego del trasplante.
Tasa de formación de nuevas raíces: tipo de planta y edad.
Factores que inciden en la magnitud del estrés de trasplante
Dificultad al trasplante Aumento longitud de
raíz en cm.
Fácil de trasplantar: repollo, tomate, lechuga +6.5
Moderadamente fácil: cebolla, pimiento, apio. -0.3
Difícil para trasplantar: pepino, melón, maíz, -0.5
Incremento de la longitud de raíz entre cuatro y ocho días luego del trasplante
Respuesta al trasplante a raíz desnuda en plantas de repollo
Sistema radicular de 8 semanas
de edad mostrando el efecto del
trasplante sobre el desarrollo de
raíces.
Las plantas de la derecha
corresponden a plantas no
trasplantadas.
Las plantas de la izquierda
corresponden a plantas
trasplantadas 8 días después del
trasplante
Factores del ambiente:
Contenido de agua del suelo
Condición atmosférica (radiación, viento,
humedad relativa)
Manejo del trasplante
Preparación de la planta para el trasplante (endurecimiento)
Extracción de las plantas del almácigo
Acondicionamiento de los plantines al momento del trasplante
Método de trasplante
Riego pos-trasplante
Endurecimiento de la planta en la semana previa al trasplante
Se logra reduciendo los riegos, bajando la temperatura, y
limitando los fertilizantes 7 a 10 días antes de la fecha de
trasplante.
Se hace para detener el crecimiento y aumentar la cantidad de
carbohidratos de reserva para el reemplazo de raíces perdidas
en la extracción desde el almácigo.
Además provocar cambios en la célula por un engrosamiento de
la pared que impide la desecación Al aumentar la resistencia a la
pérdida de agua.
Métodos de instalación de cultivos hortícolas
1. Almácigo y Trasplante
• Ají
• Albahaca
• Apio
• Berenjena
• Bróccoli
• Cebolla
• Coliflor
• Espárrago
• Pimiento
• Puerro
• Repollos
• Tomate
• Lechuga*
• Acelga*
2. Siembra Directa en el Terreno
• Espinaca
• Zanahoria
• Betarraga
• Arveja
• Haba
• Poroto
• Chícharo
• Garbanzo
• Lenteja
• Porotos
• Zapallito italiano**
• Maíz dulce**
• Melón**
• Pepino**
• Zapallos**
*Indistintamente y según las condiciones del ambiente, momento de cosecha y disponibilidad de
suelo.
**Trasplantes a raíz cubierta para obtener cosechas tempranas
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BULBOS
Tallos subterráneos, formados por un tallo achatado,
llamado platillo basal, provisto de una o más yemas
centrales, de catáfilos carnosos de origen diverso. En la
base de los catáfilos, se diferencian yemas, que pueden
desarrollarse o permanecer latentes.
Bulbos emiten hijuelos que pueden ser separados para la
multiplicación de la planta.
TULIPAN
CEBOLLA
AJO TULIPAN JACINTO
CORONA
Es aquella parte del tallo, localizada en el suelo , de la
que se originan nuevos brotes.
A lo largo de la base de estos nuevos tallos se forman
raíces adventicias, como resultado de la producción
anual de nuevos brotes y de la muerte de brote viejos.
En unos cuantos años la corona puede alcanzar bastante
extensión.
TUBERCULOS
Tallo modificado subterráneo que se desarrolla como
consecuencia de un hinchamiento de la porción subapical
de un estolón. Consta de yemas, por tal motivo está
adaptado para almacenamiento y reproducción.
Papa
CORMO
Consta de un disco basal (parte inferior desde donde nacen las
raíces), una túnica delgada y un punto de crecimiento
Presentan una base hinchada con nudos y abultamientos en el
interior, en ocasiones mostrando yemas.
Gladiolo
Muy parecidos a los
bulbos en su aspecto
externo.
RAICES TUBEROSAS
Se trata de raíces abultadas adaptadas a la función de
reserva; estas raíces no presentan yemas en la parte
superior, sino en la zona del cuello.
Difieren de los tubérculos verdaderos (tallos) en que
carecen de nudos y entrenudos .
Las yemas se producen en un extremo y las raíces fibrosas en el otro extremo.
DALIA
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Sanseviera
RIZOMAS
Tallo subterráneo, especializado, se
desarrolla bajo tierra, normalmente
en sentido horizontal. en el cual el eje
de la planta principal crece justo
debajo o sobre la superficie del
suelo.
En las cercanías del nudo aparecen
raíces adventicias y puntos de
crecimiento laterales
ESTACAS
La estaca es una porción separada del resto de la planta
que se coloca en condiciones adecuadas para que
genere la planta completa.
Tipos de Estacas :
De tallo: sólo es necesario formar un nuevo sistema radicular.
De raíz : se debe iniciar un nuevo sistema aéreo ( a partir de una
yema adventicia), y una extensión de la raíz existente.
De hojas : se debe regenerar un nuevo sistema tanto de tallo
como de raíz.
De tallo herbácea De hojas De raiz
ACODO
Acodar es hacer desarrollar raíces en un tallo que está todavía unido a la planta madre.
El tallo, una vez enraizado, se separa para convertirse en una nueva planta que crece sobre sus propias raíces.
Puede ser : natural: frambuesa negra y en la zarzamora rastrera.
artificial: inducido
Además puede ser: Subterráneo
Aéreo
TIPOS DE ACODOS
El injerto es un método de propagación en el
que una porción de tejido procedente de una
planta (la variedad o injerto propiamente dicho)
se une sobre otra planta (el patrón, porta injerto
o pie), de tal modo que el conjunto de ambos
crezca como un sólo organismo.
El injerto se emplea sobre todo para propagar
especies leñosa s de uso comercial, como
frutales y ornamentales.
INJERTO Injerto de Pua
Injerto de Pua en Manzano
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Injerto de Yema MICROPROPAGACIÓN
Es el proceso de multiplicar plantas in vitro.
A través de la micropropagación, a partir de un
fragmento (explanto) de una planta madre, se
obtiene una descendencia uniforme en condiciones
de asepsia.
Fase 1 Fase 2 Fase 3
Fase 4
Establecimiento
del cultivo en
condiciones de
asepsia
Multiplicación
de brotes
Enraizamiento
Aclimatación
Cultivo de embriones en Cítricos
PROPAGACÍON
POR
ESTACAS
• Una estaca es una parte de un tallo, hoja
o raíz que se separa de la planta madre,
y se coloca bajo condiciones ambientales
favorables, para inducirla a formar raíces y
tallos, produciendo así una nueva planta
independiente.
ESTACAS COMO MÉTODO DE PP
ASEXUAL
• Se obtienen individuos iguales genotípicamente al
progenitor
• La porción vegetativa, separada de la planta madre, es
capaz de formar una nueva planta.
• Método rápido (esquejes de hierbas aromáticas), simple
(estacas leñosas) y barato (material abundante, sobre
todo en plantas de follaje permanente).
• Muy usado para propagar plantas ornamentales y
frutales
¿ Como se obtienen nuevas plantas
a partir de estacas?
• Es posible por dos características de las células
vegetales
– Totipotencia: Toda célula vegetal individual es capaz
de regenerar una planta sin importar el grado de
diferenciación alcanzado. Para ello se requieren
condiciones específicas referidas al medio del cultivo,
relaciones hormonales, temperatura, fotoperíodo, etc.
– Desdiferenciación: consiste en la
transformación y pérdida de las
características de especialización de un tipo
celular para dar lugar a células de tipo
meristemático y luego la regeneración de
una planta por redifereciación de las células
previamente desdiferenciadas.
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• Todo proceso de diferenciación está
regulado por el balance entre diferentes
tipos de reguladores del crecimiento,
fundamentalmente de auxinas y
citocininas
• Las estacas pueden ser hechas a partir de
diferentes partes de la planta: raíces,
tallos, hojas.
• Las más importantes en agricultura son
las estacas de tallo
Rizogénesis en estacas de tallo
• La formación de raíces se debe a que las
auxinas se transportan polarmente, desde el
ápice, provenientes de las yemas, hacia las
bases donde estimulan el fenómeno.
• La formación de raíces es un proceso endógeno,
que ocurre generalmente a partir de la
multiplicación radial de células del meristema
secundario.
• Se forma una placa necrótica (suberina)
en la zona de corte como un sello (impide
la desecación del material)
• Posteriormente células de atrás de la zona
de corte se dividen y forman parénquima
(callo)
Estaca con presencia de callo
• Alrededor del cambium se forman primordios
radiculares
• Desarrollo y emergencia de raíces nuevas
(ruptura de otros tejidos del tallo)
• Formación de conexiones vasculares (xilema
y floema) en el nuevo tejido formado
Primordio de raíz a los 4
días del tratamiento(AIB
0.1 mg/l) atravesando el
cortex.
Emergencia de las raíces
adventicias, se puede
observar la diferenciación
de elementos vasculares
que las conectan con el
sistema vascular del brote.
• La polaridad influye en la formación de
raíces
– En estacas de tallo los brotes se forman en
el extremo distal (ápice) y las raíces en el
extremo proximal
– En estacas de raíz las raíces se forman en
el extremo distal y los brotes en el extremo
proximal
– Las estacas de hojas no presentan
polaridad. Las raíces y tallos se originan de
la misma posición.
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Reguladores de Crecimiento
• Auxinas: Se sintetizan en las yemas,
hojas jóvenes, frutos y en el embrión.
• La concentración endógena en la planta
varía entre 0,001 y 0,1 mg/Kg.
• Promueven enraizamiento. estimulan
formación de raíces adventicias
– Ácido Indol Acético (AIA), producido por la
planta.
– Acido Indol Butìrico (AIB), Acido Naftalen
Acètico (ANA): compuestos sintéticos
• Citoquininas: Se sintetizan en el embrión y las
raíces; se encuentran en todos los tejidos.
• La concentración endógena en plantas varía
entre 0,1 y 500 μg/Kg.
– Zeatina, kinetina y bencil adenina
• Promueven el crecimiento de yemas y brotación
y estimulan la división celular.
– En altas concentraciones hay difícil
enraizamiento
– En estacas de raíz determinan la formación
de yemas
BASES FISIOLOGICAS DE LA INICIACION DE
RAÍCES EN LAS ESTACAS
a) Hormonas
b) Presencia de Hojas
c) Presencia de Yema
d) Inhidores de Enraizamiento
a) Hormonas:
• Alta concentración de auxina y baja
concentración de citoquinina estimula
formación de raíces
• Alta concentración de citoquinina y baja
concentración de auxina estimula formación
de brote
Relación auxina/citocinina
en trozos de tejidos de médula de tabaco cultivados
asépticamente en un medio nutritivo
Organogénesis en kiwi, In vitro, las citocininas promueven la
formación de brotes. En estos tres tubos, la proporción de
auxinas decrece y la de citocininas aumenta en el medio de
cultivo, de derecha a izquierda
Efecto de la presencia de auxina en el enraizamiento de plantas
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• Esquejes de Ilex opaca. Desarrollan fácilmente raíces en el extremo de los
esquejes cuando sus bases son tratadas con auxinas.
• El extremo de los tallos se sumergió durante 5 segundos en soluciones
conteniendo 50% de etanol y 0.01% (A) y 0.5% (B) de ácido naftalénacético.
Luego fueron cultivados en vermiculita húmeda durante 2 semanas
Testigo sin ANA 0,01%ANA 0,5%ANA
TRATAMIENTO CON AIB
0 50 100 1.000 2.000 4.000 6.000 8.000 10.000 ppm
b) Presencia de hojas:
• Fuerte influencia estimuladora en la
formación de raíces, por la producción
de carbohidratos (fotosíntesis) y de
auxinas.
Efectos de las hojas sobre el % de
enraizamiento c) Presencia de Yema:
• Hay una estrecha relación entre la
actividad de las yemas y la formación de
raíces.
Efecto de las yemas en el % de
enraizamiento
d) Inhidores del Enraizamiento:
• Las estacas de ciertas plantas pueden no llegar
a enraizar, debido a la presencia de ciertos
inhibidores naturales del enraizamiento.
• En plantas difíciles de enraizar como por
ejemplo Vitis berlandieri, Eucalyptus grandis
hay presencia de inhibidores hidrosolubles.
Factores que afectan el enraizamiento
1. Condición Fisiológica de la planta madre
2. Factor de Juvenilidad (edad de la planta madre)
3. Tipo de Madera seleccionada
4. Epoca del año en que se toman las estacas
• El factor individual más importante que afecta la
iniciación de raíces es la edad del árbol del que se
toman las estacas.
1. Condición Fisiológica de la planta madre:
a) Estado hídrico de la planta madre:
− La estaca debe estar turgente, ya que se
reduce el enraizamiento en estacas que sufren
déficit hídrico.
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b) Provisión de carbohidratos y
nutrientes:
− La nutrición de la planta madre puede
ejercer una fuerte influencia en el
desarrollo de raíces. Se favorece el
enraizamiento con un bajo contenido de
nitrógeno y alto contenido de
carbohidratos
c) Etiolación (oscuridad):
– Es una técnica para mejorar la formación de raíces
adventicias en especies difíciles de enraizar . Los
tejidos etiolados presentan cantidades ligeramente
mayores de auxinas en comparación con tejidos no
etiolados.
d) Anillado :
– Se bloquea la traslocación de carbohidratos, y
hormonas , los que se acumulan en la zona del
anillado, logrando un material de propagación con
mejor enraizamiento. (Ej: cítricos, hibiscos)
2. Factor de Juvenilidad (edad de la
planta madre):
• El potencial de enraizamiento está
fuertemente asociado a la edad de la planta
madre. Se ha visto que las partes altas y
periféricas de las plantas, son las primeras
en demostrar una disminución en el
potencial de enraizamiento.
• Las estacas obtenidas de la porción baja
de la copa de los árboles, tienen una
mayor capacidad para enraizar que
aquellas que se encuentran en la porción
alta.
• Importante en plantas difíciles de enraizar.
• La relación de la juvenilidad con el
crecimiento de las raíces se podría
explicar por el aumento en la formación de
inhibidores del enraizamiento a medida
que la planta envejece.
3. Tipo de Madera Seleccionada
a) Ramas laterales
– Mejores para enraizar: Hay marcadas diferencias
de la base a la punta en la composición química
de este tipo de ramas.
– El mayor % de enraizamiento se obtiene en
estacas procedentes de la porción basal de la
rama.
b) Madera floral o vegetativa:
• Se pueden hacer estacas de ramas en estado
vegetativo o en estado de floración:
• Plantas de fácil enraizamiento no hay gran
diferencia en el tipo de madera que se usa.
• Las estacas de madera dura tomadas de ramas con
yemas solo vegetativas enraízan mejor que las que
tienen yemas florales.
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c) Estacas con o sin talón:
– Se recomienda que en la base se deje un
talón (un trozo pequeño de madera vieja)
para obtener el máximo enraíce.
4. Epoca del año en que se toman las estacas
• Es posible hacer estacas en cualquier época del año
pero en algunos casos ejerce una influencia
extraordinaria en el enraizamiento.
• Las estacas de madera dura pueden tomarse en
época de receso, otoño.
• Las de madera blanda con hojas(caducifolias)
generalmente deben extraerse en primavera o
verano.
– Sspp Caducas
• Carozo: estacas herbáceas, mejor que leñosas
– Sspp Perennes
• Hoja ancha, después del ciclo de crecimiento, hoja
madura.
• Hoja angosta: (coniferas) fin otoño- fin invierno
• Olivo: estacas semileñosa, mejor que leñosa
Tratamiento de las estacas
Tratamiento Auxinas:
• Se usan en estacas de plantas que enraízan
con dificultad, pero este tratamiento puede,
como máximo, aumentar una latente
potencialidad de formar raices, pero no
crearla.
• Se hace para:
– aumentar el porcentaje de estacas que
forman raíces,
– acelerar la iniciación de ellas,
– aumentar el número y la calidad de las raíces
producidas por estacas y
– aumentar la uniformidad del enraizamiento.
Lesionado:
− Hacer heridas basales es benéfico para el
enraizado en especial en estacas que tienen
madera vieja en la base.
− Los tejidos heridos entran en división celular y
producen primordios radicales, debido a una
acumulación natural de auxina y de
carbohidratos en el área lesionada y a un
incremento en la tasa de respiración.
CONDICIONES AMBIENTALES DURANTE
EL ENRAIZAMIENTO
• HUMEDAD RELATIVA DEL AMBIENTE:
• La presencia de hojas estimula la iniciación de
raíces, pero la pérdida de agua a través de ellas
puede producir stress hídrico que es capaz de
reducir la capacidad y velocidad del transporte
auxínico.
• En las cámaras de propagación se debe
mantener un alto grado de humedad,
manteniendo una película de agua sobre la
hoja, con lo que se reduce la temperatura del
aire, lo que permite disminuir la tasa de
evapotranspiración de la planta, para prevenir
daños por deshidratación.
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• Uso de “misting” – Menor T° de hoja y ambiental
– Menor pérdida de humedad
– Encerrado mantiene más la humedad, y más
uniforme
– Especialmente útil en especies difíciles de
enraizar
• Láminas de polietileno – Estacas húmedas y lámina de polietileno encima
– Condensación protege pérdida de agua
– barato
Uso de Misting Uso de Láminas de polietileno
• TEMPERATURA:
• Una T° diurna (21 a 27oC), con T° nocturnas (15oC)
son satisfactorias para enraizar la mayoría de las
especies, algunas enraízan mejor a T° más bajas.
• Evitar T° muy alta, ya que estimula el desarrollo de
yemas antes que se desarrollen raíces y se aumenta
la pérdida de agua por las hojas.
• El desarrollo de las raíces es favorecido por
altas temperaturas, y las bajas
temperaturas favorecen el desarrollo de
callo, por lo que a nivel comercial se
practica almacenar esquejes en frío hasta
que desarrollen un callo y luego se colocan
en camas calientes para favorecer el
crecimiento de las raíces.
• LUZ
En el enraizamiento de estacas, los productos
fotosintetizados por las hojas, son importantes
tanto para la iniciación como para el crecimiento de
las raíces.
La luz aplicada en la base de los esquejes, durante
el período de enraizamiento, inhibe al esqueje,
debido, al parecer, a una disminución de auxinas
exógenas.
• En términos generales se sabe que, plantas
madres sometidas a bajas intensidades de
luz producen esquejes que enraízan con
mayor facilidad.
• Por lo que en plantas de difícil
enraizamiento se recomienda someter a las
plantas madres a bajas intensidades de luz.
MEDIOS DE ENRAIZAMIENTO
El medio para enraizamiento tiene cuatro funciones:
1. Sostener a la estaca en el lugar durante el período
de enraizamiento.
2. Proveer humedad a la estaca.
3. Permitir penetración y el intercambio de aire en la
base de la estaca.
4. Crear un ambiente de oscuridad en la base de la
estaca.
• Medio ideal :
– buena porosidad,
– buena aireación
– buena retención de agua
– buen drenaje
– libre de patógenos.
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• Condiciones del Medio
PH: 4,5 –6,5; óptimo 5,5 – 6,5
Contenido de sales: 400-1000 ppm
Capacidad Intercambio: 25-100 meq /L
Densidad
0,3- 0,8 g/cm3 en seco
0,6 – 1,15 g/cm3 húmedo
Aire 20-25%
Retención de agua: 20-60%
TIPOS DE ESTACAS DE MADERA:
– leñosas,
– semileñosas,
– madera suave y
– herbáceas
DE HOJA:
– hojas maduras
DE RAÍZ:
– raíces de plantas jóvenes
Madera
– Leñosas – Caduca: Sauce, álamo, higo, manzano, Peral,
durazno, ciruelo
– Perennes de hoja angosta: Juniperus, pinos
– Semi-leñosa: cítricos, Pittosporum, Rhododendron, olivo, jazmín
– Madera Suave: lila, pera, magnolia, ciruelo
– Herbácea: Geranio, Poinsettia, Camote
Hoja:
Hoja sola: Begonia, Sanseviera, violeta africana
Hoja con yema: Gomero, Rhododendron, zarzamora
Raíces: Aralia, Geranio, frambueso
Tipo de
Estaca Leñosa Leñosa Semileñosa
Madera
Suave Herbácea
Tipo de
Especie
Leñosas
Caducas
Leñosas
siempreverde
de hoja
ancha
Leñosas
siempreverde
de hoja ancha
o Caducas
Leñosas
siempreverde
o Caducas
Herbáceas
Descripción
del Tejido
Tejido
leñoso
maduro en
receso
Tejido
maduro
leñoso
Madera
parcialmente
madura en
tejido de un
año
Tejido
herbáceo
nuevo
Tallos
suculentos
Época de
Recolección
Fines de
Otoño a
principios
de
primavera
Fines de
otoño a fines
de invierno
Fines de
primavera a
fines de
verano
Primavera a
principios de
verano
Todo el año
TIPOS DE ESTACA DE MADERA • Estacas de Madera leñosa
– Se toman a fines de otoño / comienzo de invierno
de ramas desarrolladas durante la temporada y que
se han tornado duras y leñosas
– Tienen el mayor potencial para la regeneración.
– Más fáciles de trabajar, trasladar etc.
– Se usan generalmente en sspp caducas,
– Especies: Higo, membrillo, morera, uva, grosella,
granado, rosa, álamo, sauce, manzano, peral,
durazno, ciruelo
• Técnicas
– Madera de vigor medio
– Sacarlas en receso, fines otoño, invierno o
inicio primavera.
– Descartar madera frutal
– Largo 10-80 cm hasta brote entero (permite
injertar en madera vieja)
– Al menos 2 nudos
– Diámetro variable, dependiendo de la especie
– A veces con talón
– Corte superior a 1,5 a 2,5 cm sobre un nudo;
en bisel
– Corte inferior recto, inmediatamente bajo un
nudo.
• Formación de Callo
– Condiciones frías y húmedas (4,5 °C)
– En suelo, arena o aserrín
– En posición horizontal o vertical invertida
• Plantación en primavera
– Bueno, en SSPP fáciles de enraizar
– Requiere almacenamiento previo en bolsas de
polietileno a 0-4,5°C
• Plantación de otoño
– Zonas de invierno suave
– Ciruelo – Membrillo
• Encallado caliente- Invernal
– Estacas en receso
– Tratar con IBA y almacenar 18-21°C, por 3-5 semanas
– Plantar inmediatamente o en primavera
– Buen resultado en peras
• Encallado con temperatura basal
– Se usa en sspp difíciles de enraizar (manzana, pera, ciruela)
– 2.500 – 5.000 ppm IBA (4 semanas a 18°C)
– T° exterior baja
– Trasplante cuando se inician raíces
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Estacas de Madera leñosa • Estacas de Madera semi-leñosa
– Enraízan más fácilmente que las anteriores, pero demoran
más que las herbáceas. Se toman a mediados/ fines de
verano, escogiendo brotes maduros empezando a tornarse
café, lo que indica un cierto nivel de lignificación
– Es más frecuente que se usen las puntas de las ramas para
hacer estacas pero las partes basales del tallo también
enraízan.
– Sin hojas en la base, sólo en el ápice, si las hojas son
grandes se cortan a la mitad para disminuir la perdida de
agua.
– En plantas de hoja ancha y de hoja caduca, cortar en otoño
– Hoja perenne, justo después del ciclo de crecimiento
– Camelia, Pitosporum, rododendro, azaleas, cítrico.
– Estacas de 7,5 –15 cm
– Generalmente se usan puntas de ramas.
– El manejo para no perder humedad es muy importante
Estacas de Madera semi-leñosa
• Estacas de madera blanda
– Brote primaveral de sspp leñosas perennes o caducas
– Manzano, magnolia, peral, duraznero, damasco, cerezo
– Son más fáciles de enraizar que otras, pero requieren
más cuidado
– T° 23-27 °C en la base de la estaca y 21°C en las
hojas.
– El mejor brote es el tierno, no suculento ni
endurecido
– brotes laterales de Vigor medio,
– Longitud de 7,5 – 12,5 cm, con 1 a 2 nudos
– Las hojas grandes se cortan para evitar
deshidratación.
Corte de Hojas Estacas de Madera Blanda • Estacas herbáceas
– Bajo nivel de lignificación,
– Alta actividad de los tejidos meristemáticos (punta
de las ramas)
– Es preferible tomarlas cuando las plantas estén en
activo crecimiento, en primavera y verano.
– Cardenales, crisantemos, coleus, claveles, menta
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• 7 –12 cm , con hojas en el ápice
• Tratamiento igual al anterior
• Con AIB mejora el resultado, aunque no es
estrictamente necesario
• Cuando las estacas son suculentas, como el
caso de las begonias, geranios y cactus; no
conviene plantarlas inmediatamente después de
cortadas, se debe esperar de dos a tres días
para que se seque la herida.
Estacas Herbáceas • Estacas de hoja
• La emisión de raíces tiene lugar en la cara inferior
del limbo, base del limbo y en la base del pecíolo.
• Se originan nuevos tallos y raíces a partir de los
meristemas primarios o secundarios
– Meristemas primarios: grupo de células embrionarias en
activa división
– Meristemas secundarios: grupo de células que se han
diferenciado y que han vuelto a su condición
meristemática.
– Se usa Hoja u hoja con pecíolo
– Los brote y raíces son adventicias
– Planta se forma en la base, y la hoja no forma parte
de ella
– En Sansevieria, se cortan secciones de 8 a 10 cm
– Begonia: se hacen cortes en las venas, en el envés
de la hoja madura
– Aplicar hormonas de enraizamiento.
Estacas de Hoja
• Estaca de hoja con yema
– Hojas con pecíolo y trozo de tallo con yema axilar
– se obtienen mejor de material que tengan yemas bien desarrolladas y hojas sanas que están creciendo activamente
– Se usa cuando no se forma brote adventicio
– Mora, boysenberry, limón, camelia,, rododendro, gomero
– Muchas herbáceas que se hacen de estacas de tallo herbáceo se propagan también por este método.
– Se corta; se trata con IBA y se entierra 2 cm bajo la superficie
Estaca de Hojas con Yema Estaca de Hojas con Yema
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• Estacas de raíz
• Las estacas se sacan a fines de invierno o inicios de
primavera.
• La formación de yemas es a partir del periciclo, cerca
del cambium vascular
• En raíces viejas la formación de raíces es a partir del
felógeno
• Funciona mejor a partir de raíces jóvenes
– Tomar plantas jóvenes, en receso
– Debe respetarse polaridad. El ápice se coloca
hacia arriba. Lo mejor es colocarlas en forma
horizontal
– Plantas con raíz pequeña, colocar en cama
caliente, trozos de 2,5- 5 cm, en forma horizontal,
cubrir con una capa de 1,5 cm de arena húmeda
y tapar con plástico hasta brotación.
– Plantas con raíces grandes, estacas de 5 –
15 cm (almacenar 3 semanas a 4,5 °C), luego
plantar en suelo bien preparado a 5 a 7,5 cm
de distancia, dejando la parte superior a nivel
del suelo o apenas bajo el.
– Se puede usar en kiwi, aralia, higuera,
manzano, álamo, acacio, rosa, frambueso,
mora etc.
Estacas de raíz
PROPAGACION POR
INJERTACION
INJERTO
Método de multiplicación vegetativa artificial.
Consiste en unir una parte de una planta con
una parte de otra, de manera que queden
soldadas y se desarrollen juntas formando
una planta única.
El injerto se emplea principalmente para
propagar especies frutales y ornamentales
de uso comercial.
Una de las partes generalmente forma el
sistema radical llamado patrón, pie o
portainjerto.
La otra parte forma la parte aérea llamada
injerto, vástago o variedad, la que puede
obtenerse de una yema o de una púa.
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Portainjerto o Patrón: es la planta que
aporta las raíces y la responsable de la
nutrición del injerto, por lo cual la nutrición
mineral de ésta es de importancia para la
obtención de buenos injertos.
Injerto, variedad: es la planta que aporta la
parte aérea. El tallo puede pertenecer a una
u otra planta.
Para que el injerto permanezca unido al
patrón es necesario que:
Exista afinidad entre las partes
El cambium de ambos tejidos esté en contacto
El injerto, tenga por lo menos una yema capaz
de desarrollarse.
La nueva planta que se formará de esta
unión sólo se considerará lista si es capaz
de funcionar permanentemente.
Portainjertos o Patrones
Los patrones que se usan para injertar se
dividen en dos grupos:
Patrones Francos o de Semilla
Patrones de Estaca o Clonales
Patrones francos o de semilla:
Propagación relativamente fácil y económica.
Se elimina la transmisión de enfermedades
causadas por virus.
En algunas especies hay mejor enraizamiento
que con los patrones obtenidos a partir de
estacas.
La desventaja es la variación genética, que se
expresa en una variación en el crecimiento y
comportamiento de la púa que se injerta.
Patrones de Estaca o Clonales:
Obtenidos por estacas enraizadas y por acodos.
La ventaja es que son genéticamente iguales y se
puede esperar que en un ambiente dado tengan
idénticas características de desarrollo el patrón y el
injerto con el que va a ser unido.
Para obtener buenos resultados en la
injertación es necesario considerar
condiciones fisiológicas de las plantas que
intervienen en esta unión, entre las que se
encuentran:
Factores necesarios para que se
produzca la unión del injerto: Injerto y patrón compatibles: es decir que
tengan la capacidad de unirse.
En la práctica se pueden usar plantas que
estén estrechamente emparentadas
taxonómicamente y no plantas distantes,
debido la diferencia en caracteres
morfológicos y fisiológicos de cada especie
vegetal.
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TABLA DE COMPATIBILIDAD DE INJERTOS EN FRUTALES
Ubicación del injerto: debe haber un
intimo contacto entre el cambium del l
injerto y el patrón, además se debe
asegurar una rápida cicatrización para
que la púa pueda ser provista de agua y
nutrientes por el patrón para cuando
empiecen a abrirse las yemas.
Época en que se realiza la enjertación: El
patrón y la variedad se deben encontrar en
estado fisiológico adecuado de actividad
vegetativa para que la producción de callo
pueda producirse.
Cuando la corteza se separa con dificultad
(está muy pegada) por lo general, no es la
época oportuna.
Protección de efectos externos
adversos para la unión:
Inmediatamente después del injertado
todas las superficies cortadas deben
protegerse, con cinta plástica y pasta
protectora, para evitar la deshidratación y
la infección de los tejidos.
Cuidados para evitar la brotación del
patrón cerca de la púa : ya que esto
puede ahogar al injerto, o en ciertos
casos crecen del injerto ramas tan rápido
que pueden llegar a romper la unión.
Finalidad del injerto
a) Obtención de beneficios con algunos patrones
b) Perpetuación de Clones únicamente producidos a partir de injertos
c) Acelerar la madurez reproductiva
d) Cambiar los cultivares de algunas plantas
e) Obtener plantas de menor crecimiento
f) Reparar partes dañadas de los árboles
a) Obtención de Beneficios con algunos
patrones:
Hay especies que son rusticas frente a
condiciones adversas de suelo, clima, o
alguna plaga o enfermedad.
Con la injertación se logra que especies
susceptibles puedan usar los beneficios de las
especies resistentes creando así una planta
útil y a la vez resistente
b) Perpetuación de Clones únicamente
producidos a partir de injertos:
Hay algunas especies o variedades que
no se pueden reproducir fácilmente por
métodos asexuales como estacas o
acodos, por lo que necesitan ser
injertadas para lograr reproducirlas de
manera efectiva.
c) Acelerar la madurez reproductiva:
Los frutales tienen un periodo de
juvenilidad muy largo para empezar a
fructifica, el injerto permite disminuir este
período; esto se logra injertando sobre
plantas o patrones ya establecidos, es
decir, sobre plantas ya adultas.
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d) Cambiar los cultivares de algunas
plantas:
Un árbol puede producir una variedad
que por diversas razones ya no sea
rentable por lo que se necesita cambiar
por otro tipo de cultivar, el injerto hace
posible este cambio.
Además puede resultar de interés el tener
un solo árbol con más de un cultivar
siempre y cuando sea cada una de estas
variedades compatibles con el patrón.
e) Obtener plantas de menor crecimiento:
El uso de ciertos patrones permite
obtener plantas de menor tamaño, que
facilitan la cosecha.
Los patrones enanizantes permiten tener
mayor densidad de plantación.
f) Reparar partes dañadas de los
árboles:
Una planta puede ser dañada por algún
agente extraño y el injerto puede
asegurar la rápida recuperación de la
planta.
Procesos que ocurren en la
unión de la púa con el patrón:
1. Establecimiento de un íntimo contacto de
una extensión considerable de la región
cambial del patrón y del injerto en
condiciones ambientales favorables:
La temperatura óptima para permitir la
actividad celular es entre 13 a 32° C
dependiendo de la especie.
Estas condiciones se presentan mayormente en
primavera, en el caso de invernaderos las
temperaturas se pueden controlar.
A partir de la actividad celular se forma un
nuevo tejido de callo originado en la región
cambial formado por células de paredes
delgadas y turgentes que necesitan condiciones
de humedad necesaria para seguir viviendo.
Zona de formación de callo Esquema de la unión
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2. Producción y entrelazamiento de células de
parénquima del patrón y del injerto:
Las células vivas producen una unión debido a su
rápida proliferación de dictiosomas (aparato de
Golgi) que segregan principalmente proteínas,
entre los espacios de las paredes celulares que
sirven de guía de migración de vesículas a la
membrana plasmática, produciendo una rápida
adhesión entre las células parenquimáticas.
3. Producción de nuevo cambium en el puente del
callo:
En un tiempo de 2 a 3 semanas en los bordes del callo
las células parenquimáticas que tocan las células
cambiales del patrón y de la púa se diferencian en unas
nuevas células de cambium.
Este cambium avanza por el cambium original del patrón
y del injerto a través del puente de callo, hasta que se
forma una conexión cambial continúa entre el patrón y
el injerto.
4. Formación de nuevo xilema y floema:
Se produce a partir del nuevo cambium vascular en el
puente del callo, el cual comienza su actividad cambial
normal de acumular xilema hacia el interior y floema
hacia el exterior. EFECTOS DEL PATRON SOBRE EL INJERTO
A. VIGOR Y TAMAÑO DE LA PLANTA
Las exigencias del patrón respecto a
determinados elementos nutritivos puede ser
distinta a las exigencias del injerto. Estos
cambios en la intensidad de la nutrición se
manifiestan por la diferencia de vigor y en
consecuencia, por el desarrollo que
provocan.
El patrón, de acuerdo a su sistema radical y sus
características genéticas puede inducir árboles
de diferente capacidad de desarrollo de la parte
aérea, disminuyendo o aumentando su tamaño
en comparación con el que hubiera tenido si se
encontrara sobre sus propias raíces.
En manzanos son bastante conocidos los
portainjertos de la serie ‘East Malling’ (EM o M), de
los cuales se han seleccionado desde los muy
vigorizantes hasta los fuertemente enanizantes
(EM7 y EM26 son para plantaciones de alta
densidad).
Otra serie de portainjertos de manzano muy usados
son ‘Malling Merton’ (MM), como MM 109, MM111 y
MM104.
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MODERADAMENTE VIGOROSOS
(75-80%)
MODERADAMENTE ENANOS
(55-70%)
ENANOS
(25-45%)
PATRONES PARA MANZANOS Escala de tamaños de árboles según el patrón utilizado:
Patrones
Tamaño a la edad adulta
Anclaje Adaptación a suelos
FRANCO 100% Muy bueno Amplia
M-25 90% Muy bueno Amplia
MM-109 80% Muy bueno Amplia, evitar los muy arenosos, secos o húmedos
MM- 111 70% Muy bueno Amplia, tolera los arenosos y Secos
M-2 70% Bueno Amplia, evitar los muy arenosos, secos o húmedos
MM-106 50% Bueno Amplia, evitar los húmedos
M-7 50% Bueno Amplia, evitar los muy ligeros
M-26 30% Regular Exige buenos suelos, evitar los ligeros
MARK 25% Regular-Bueno Amplia, evitar los ligeros
M-9 20% Pobre Exige buenos suelos, evitar los ligeros
M-27 10% Pobre-Regular Exige muy buenos suelos.
B. PRECOCIDAD EN LA FRUCTIFICACION
Con la injertación se pierden las características
juveniles y se produce antes la
diferenciación floral; es decir, el árbol será más
precoz.
Las plantas injertadas pueden entrar en
fructificación en el mismo año o uno a dos años
después; mientras las no injertadas después de
varios años. Esto es importante para la
rentabilidad del cultivo.
C. TAMAÑO, CALIDAD Y MADUREZ DEL FRUTO
La exportación de frutas frescas se rige por "Normas
de Calidad", que hacen referencia, tanto al aspecto
exterior como interno que debe tener la fruta.
El "tipo" constituye las características que identifican
a un cultivar, en lo relativo a su forma, color, peso y
dimensiones; así como características inherentes a
sus atributos internos.
El patrón induce cambios en relación con la
duración del período de maduración y sobre el
"tipo", los cuales pueden afectar o beneficiar el
proceso productivo como su comercialización.
En cítricos el patrón limón rugoso (Citrus jambhiri
Lush) determina la producción de frutos de menor
calidad, debido a la presencia de cáscara más
gruesa, con menor cantidad de jugo y pobres en
azúcar y en acidez.
Modificaciones en la forma del fruto por efecto del
patrón
Mango cv. Haden Palto cv. Nelan
Efectos del injerto sobre el patrón
El injerto también puede tener influencia enanizante
sobre el patrón.
Además para el caso de vigor, se tiene que especies
de cultivares resistentes a ciertas condiciones
adversas, al servir como injerto también producen
cierta resistencia y vigor al patrón que las está
soportando.
En cítricos los injertos de especies más vigorosas
actúan sobre patrones menos vigorosos, y es el
injerto el que empieza a controlar o a influir sobre la
rapidez de crecimiento y tamaño final del árbol.
Esto también se observa en manzano.
Efecto del Injerto Puente
Uno de los efectos más importantes del Injerto
Puente es el producido en los manzanos donde
la disminución del tamaño del árbol, usando un
patrón intermedio enanizante, tiene la ventaja
de permitir el uso como patrón de una plántula
bien anclada, vigorosa, como es el patrón de
semilla, en lugar de un clon enanizante
quebradizo y mal anclado.
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INJERTACIÓN DE YEMA
El injerto es un trozo de corteza
que lleva una yema
Según época en que se realiza:
Injerto de ojo dormido o yema dormida
Se realiza de febrero marzo.
El portainjerto se encuentra con actividad
vegetativa permitiendo el fácil levantamiento
de la corteza y la posterior formación de
tejido de cicatrización.
Para este injerto se usan yemas sacadas de la
planta madre de madera diferenciada y madura.
Se sacan yemas de la porción media de la
rama, debido a que las basales brotan con
dificultad y las apicales pueden no estar
maduras.
Luego de 2-3 semanas se controla el contacto
de la yema, de no prosperar se repite el injerto.
Injerto de ojo vivo o yema despierta
En primavera, octubre a diciembre, se
elimina la parte superior del portainjerto a la
altura donde se hará el injerto para favorecer
el desarrollo del brote de la yema injertada.
El injerto puede ser realizado mediante la
técnica tradicional de injerto en “T” o mediante
la técnica del injerto de astilla o“chip budding”.
El injerto se realiza a una altura de 15 a 20 cm
según el vigor del portainjerto.
Según forma en que se realiza
Injerto en “T” ó escudete
Diámetro del patrón 6 a 25 mm
Ubicar el injerto al lado del viento
Cortes
En el patrón se hace un corte en “T “
Extracción de yema
Con o sin madera (nogal)
Noviembre a diciembre s/madera
Amarra
Con cinta rafia
Corte en "T" del patrón Inserción de la yema Atado de la yema
Injerto de Parche
Lento, en Chile se usa solo en nogal.
Normalmente se hace a fines de verano (ojo
dormido), con corteza suelta.
Diámetros del parche y del patrón deben ser
iguales, aprox. 13 a 26 mm
Se corta con cuchillas de doble hoja y se hacen
cortes transversales.
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La eliminación de la hoja del parche es de 1 – 3
semanas antes, se deja solo el pecíolo que se
cae después.
Patrón Inserción de la yema
Injerto de Parche
Extracción de la yema
a injertar
Parche en primavera
No existe material para extraer la yema
Solución
Colectar en invierno ramillas con yemas y mantenerlas
con humedad y a 2°C;
2 – 3 semanas antes de hacer el injerto se llevan las
ramillas a tº ambiente, con lo que la corteza se suelta
Buscar yemas que estén sueltas y no activas de la base
de las ramillas.
Luego proceder a la injertación.
Modificación del parche
“I”
Se corta igual con corte al medio
Se abre como ventana,
Es bueno cuando la corteza es más gruesa
Anillo
Se cambia todo el cilindro
Injerto yema con madera “Chip budding”
Diámetro patrón 13- 25 mm
Lento
Se usa en climas fríos, con veranos cortos
No hay separación de la corteza
Se realiza a Inicio de primavera ( ojo vivo) (rebaje 10
días después)
En Verano con problemas de agua ( ojo dormido) (rebaje
inicio de primavera siguiente)
Estudios indican que es mejor que “T”
Se puede colocar doble yema
Rebaje del patrón Inserción del "chip" Atado del injerto Yema brotada
Tipos de Injertos de Yema
Yema en T Parche
Yema Anillo Yema con madera
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INJERTACIÓN DE PÚAS
El injerto es una ramilla o estaca
lignificada con varias yemas.
Condiciones
Estado fisiológico
Púa: debe estar en receso
Patrón: puede o no estar en receso
Prevenir deshidratación
Cobertura con cera
Cobertura con plástico
Cuidado del brote
Eliminación de los brotes del patrón
Injerto de Empalme inglés o Lengüeta
Grosor del patrón: 0,5 a 1,5 cm de diámetro.
Se prefiere igual diámetro de púa y patrón,
de no ser así, al menos juntar ambos
cambium en un lado del empalme.
Se hace a mediados o finales de invierno, es
decir, cuando la púa está en reposo (sin
hojas).
La púa se prepara a partir de una ramilla de 1
año de edad, cortando un trozo de 7 a 12 cm. de
longitud y de un diámetro máximo de 2
centímetros. Debe llevar 2 o 3 yemas de
madera.
Se hace un corte en bisel, en el patrón y en la
púa, y sobre ese mismo corte, se le da otro
corte a ambas partes, obteniéndose las
lengüetas.
Patrón y variedad se ensamblan por las
lengüetas, debiendo quedar en contacto el
cambium de ambos.
Se amarra bien con rafia o con cinta adhesiva
especial para injertos y se encera todo para
protegerlo de la desecación.
Se desata cuando las yemas hayan brotado y
midan unos 5-10 cm
Injerto de Empalme Inglés
Injerto de Púa lateral
Para este tipo de injerto los mejores patrones
son ramas de alrededor de 3-5 cm. de
diámetro.
La mejor época es a finales de invierno o
principios de primavera.
La púa debe ser de 1 año de edad, contener
2 o 3 yemas y tener unos 7,5 cm. de longitud.
La púa sólo se afila por un lado, para que
exista el máximo de cambium posible en
contacto.
Se hace sobre el patrón un corte inclinado
profundizando hasta un tercio o la mitad del
grosor de la rama.
Se inserta la púa inclinada y que queden en
contacto ambos cambium.
Se ata firmemente con rafia o con una cinta
especial para injertos y se encera sellando
todas las aberturas para proteger de la
desecación. También el extremo de las de la
púa debe encerarse.
Se desata cuando las yemas hayan brotado y
midan unos 5-10 cm.
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Injerto de Púa lateral
Injerto de Hendidura
Se utiliza para cambiar de variedad (olivo, vid,
peral, manzano, etc.) o para rejuvenecer
árboles.
Se practica sobre troncos de árboles
pequeños de hasta 10 centímetros de
diámetro, o ramas de árboles grandes de
hasta 10 cm. de diámetro.
La época va desde mediados hasta finales de
invierno o, incluso, en primavera.
Se preparan dos púas haciéndoles un bisel por
ambos lados.
A la rama o tronco se le practica un corte recto
y limpio y un corte longitudinal por el centro.
Se insertan las dos púas en el tocón, una a
cada lado de la hendidura.
Las púas hay que ajustarlas bien de manera
que las cortezas externas de ambas estacas
contacten y se alineen con la corteza del
patrón, a fin de que los cambiums se fusionen.
Se ata y encera todo con pasta selladora,
incluyendo los extremos de ambas estacas.
Se desata el injerto cuando las yemas hayan
brotado y midan unos 5-10 cm.
Hendidura Simple Hendidura Doble
Injerto de corteza o Corona
Es un tipo de injerto fácil y que tiene buen
porcentaje de prendimiento.
Se usa, entre otros fines, para cambiar la variedad
en olivo, cítricos, almendro, etc.
Sirve para cualquier árbol o arbusto de hoja
perenne o caduca.
El patrón puede tener de 3 a 30 cm. de diámetro o
incluso más
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Se hace en primavera, cuando ya está activa la
savia, puesto que es necesario poder separar la
corteza en el patrón.
La púa se colecta en invierno y se mantienen en
frigorífico. Antes de guardarlas, se mojan un poco,
envolver en papel y meter en una bolsa de plástico
para evitar que se sequen.
Si es un árbol de hoja perenne, se recoge y se
injerta directamente, sin guardar.
La púa debe tener 2 o 3 yemas y 10-12 cm. de
longitud.
El patrón se corta con un serrucho y con un
cuchillo se le hace un corte vertical de unos 5 cm
en la corteza.
En la púa se hace un corte en bisel por un lado.
Si es de hoja perene, se le cortan las hojas,
excepto la superior, dejando el pecíolo.
Se insertan 2 púas por el lado biselado entre la
corteza y la madera del patrón.
Se ata y encera todo el injerto, incluyendo la parte
superior de la púa.
Se espera a que los brotes de las yemas del
injerto tengan unos 10 o 15 cm y luego se desata
la rafia
Si es un árbol de hoja perenne, se moja con agua
limpia la púa y se cubre con una bolsa de plástico
transparente para evitar deshidratación de la púa.
Pasados unos 15 o 20 días, ya se puede retirar la
bolsa porque ya se habrá unido.
Injerto de corteza o de corona
Injerto puente
Este tipo de injerto es útil para renovar la corteza
lesionada del tronco de cualquier frutal. Su
finalidad es de reparación.
A una planta que ha sufrido un daño grave en su
corteza y vasos se le injerta una porción de rama
de sí misma de manera que la circulación de la
savia pueda reanudarse en esa zona.
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Las púas se recolectan en invierno y se mantienen
en el frio. Antes de guardarlas, se humedecen, se
envuelven en papel y se meten en bolsa de plástica
para evitar que se sequen.
Las púas se toman de plantas de 1 año, de 6 a 12
cm. de diámetro y de la misma especie del árbol en
que se injertarán.
El injerto se lleva a cabo a principios de primavera.
Se recorta la herida hasta llegar a tejido sano y
arriba y abajo de la herida se hacen muescas en la
corteza del mismo ancho que las púas.
Las púas se preparan realizándoles cuñas en los 2
extremos.
Se insertan las púas debajo de cada muesca,
quedando la cuña bajo la lengüeta de corteza. Los
bordes y por tanto ambos cambiums quedan en
contacto.
Injerto Puente
Se clavan con puntillas y se encera todo para que
no se seque.
Injerto Puente
Injerto Puente en
Vivero
Soluciona problemas
de compatibilidad,
utilizando un injerto
intermedio compatible
con la variedad y con
el patrón. Patrón
Puente
Variedad
Injerto nodriza
Se usa para reparar problemas de raíz, o
incompatibilidad entre patrón e injerto.
Se usan patrones de semilla o sierpes
Patrón con actividad
Púa de 6 – 12 mm de diámetro, se pega en 10
– 15 cm
Encerar
Injerto nodriza
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Injerto nodriza
UTENSILIOS Y HERRAMIENTAS PARA EL
INJERTO Para realizar injertos se necesitan:
Navajas de injertar
Piedras de afilar
Sierras
Materiales para amarrar (rafia)
Materiales para el sellado de las heridas
Pasta protectora para injertos
Tres partes iguales de:
Cera virgen,
Parafina sólida y
Manteca de cerdo;
Se pone a calentar a baño maría hasta que se
disuelva y se mezcle todo, de ahí se guarda,
cada vez que se injerta se calienta hasta que
tenga la textura de poder untarse con una
brocha.
PROPAGACION
POR
ACODO
El acodado es un método de multiplicación
vegetativa, donde se induce la formación de
raíces adventicias en tallos o ramas que se
encuentran adheridos a la planta madre.
Una vez formadas las raíces, se corta bajo el acodo y se
obtiene una nueva planta.
El principio básico del acodado es:
La interrupción de la translocación de fotosintatos, hormonas y
otros metabolitos, por eliminación de la corteza o por heridas,
y
La ausencia de luz que provoca etiolamiento de la ramilla, con
lo que se acumulan auxinas y se reduce el contenido de
lignina y compuestos fenólicos.
No se debe afectar la translocación ascendente
del agua, permitiendo así que la parte superior
de la ramilla pueda continuar el funcionamiento
normal (fotosíntesis, metabolismo) durante el
proceso de formación de raíces adventicias.
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Propagación de especies que se reproducen en
forma natural por éste método, como frambuesa
y mora.
Propagación de clones que no enraízan
fácilmente por estaca, como Vitis rotundifolia,
avellano, patrones de manzano y peral
Producir plantas de tamaño grande en corto
tiempo.
Producir un N° relativamente grande de plantas
de buen tamaño, con un mínimo de instalaciones
de propagación.
Remplazar plantas que se han perdido en una
viña.
Nutrición:
Ya que el tallo permanece adherido a la planta
durante el enraizamiento y es abastecido
continuamente de agua y nutrientes minerales a
través del xilema, que esta intacto.
Tratamientos al Tallo:
Se induce la formación de raíces adventicias
mediante manipulaciones al tallo que causan
una interrupción de la traslocación hacia abajo
de carbohidratos, auxinas y otros factores de
crecimiento que provienen de las hojas y ápices
de las ramas.
Ramilla cortada en
la parte inferior
Rama con detención de
flujo por anillado
Rama con corte y torcida Rama con detención de
flujo con alambre
Exclusión de Luz:
Los tallos intactos de algunas plantas solo pueden
producir raíces después del blanqueamiento.
◦ Blanqueamiento: cubrir con una cinta opaca por un
tiempo un trozo de corteza de la rama a acodar para que
pueda emitir raíces con facilidad.
Acondicionamiento Fisiológico:
La inducción del enraizamiento puede estar asociada
con alguna condición fisiológica específica del tallo,
asociada a la época del año.
La época apropiada esta asociada con el movimiento
de carbohidratos y otras sustancias hacia las raíces al
final de un ciclo estacional de crecimiento
Uso de Auxinas:
Estimula la formación de raíces igual que en
estacas.
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Acodo de punta
Acodo simple
Acodo compuesto o múltiple
Acodo aéreo
Acodo de montículo
Acodo en trinchera
Característico de Grosellero, Frambueso
La formación de raíces ocurre en la punta de las
ramas de la estación en curso.
Las ramas se doblan con la punta hacia el suelo y
se entierran a unos 8 a 10 cm de profundidad
sujetándose con alambres.
La punta de la ramilla empieza a crecer en el
suelo hacia abajo y luego se curva para producir
en el tallo una vuelta pronunciada en donde se
desarrollan las raíces.
Los tallos de esas plantas son bianuales,
durante el primer año son vegetativos, y en el
segundo fructifican, eliminándose después de la
fructificación.
En el vivero se dejan plantas madres sólo
para propagación, para lo cual se plantan
plantas jóvenes a una distancia de 3.6 m
para dejar espacio para hacer
posteriormente el acodado.
Tan pronto se plantan se rebajan a 20 a 25
cm sobre el suelo, para tener brotes nuevos
para acodar
El acodo simple sirve para enredaderas y para
muchos arbustos, siempre que sea posible
doblar un tallo joven hasta que alcance el suelo.
Se hace en primavera, usando ramas de un año
de edad, y se saca la rama enraizada en otoño o
a fines del invierno siguiente, antes de que se
inicie el nuevo crecimiento.
En clima cálido mediterráneo también se puede
acodar en otoño y sacar en la primavera del año
siguiente.
El acodado puede también retardarse hasta que la
estación de crecimiento se encuentre más
avanzada, y hacerse una vez que las ramas de ese
año han alcanzado la longitud suficiente.
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Procedimiento
1. Elegir una rama larga y flexible. Se usan ramas
bajas jóvenes y vigorosas, de 1 o 2 años, que se
pueden doblar fácilmente hasta el suelo.
2. Hacer un corte en la zona a curvar, por la cara
de abajo, de 2,5 cm de largo y en sentido
diagonal. Esta zona del corte irá enterrada. El
corte se mantendrá abierto mediante una
pequeña cuña de madera o rama.
3. En lugar de un corte, también se puede extraer un
anillo de corteza alrededor de la rama, de unos 2 ó
3 cm. de longitud.
4. Impregnar el corte con hormonas de enraizamiento y
mantenerlo abierto introduciéndole un palito (por
ejemplo, con una fósforo).
5. Sacar las hojas que están en la parte de la rama que
va a ser enterrada, y dejar algo de follaje en la
punta.
6. Arquear la rama al suelo fijándola con una
horquilla, dejando un extremo de unos 30 ó 40
cm que se amarra a un tutor vertical. La zona
enterrada se cubre con tierra y se riega.
7. A finales del invierno siguiente se puede separar
la rama de la planta madre cortando por debajo
de las raíces emitidas. La Magnolia necesita un
año más sin separar de la planta ya que el
enraizamiento es más lento.
1 2
3 4
Se usa más para plantas trepadoras, como Vides,
Madreselva, Jazmines, etc. porque tienen tallos
más largos y flexibles.
Se hace como el acodo simple, con los mismos
principios, pero enterrando la rama en varios
puntos, en vez de en uno sólo.
Se pueden tener varias plantas nuevas a partir de
una sola rama.
Si la planta está en una maceta, se emplean otras
macetas para enterrar las distintos puntos, uno por
maceta.
Una vez enraizados se corta cada porción y se
obtienen varias plantas.
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El acodo aéreo se hace más sobre árboles,
cuando no se puede doblar ramas hacia el suelo, y
también se hace en muchos arbustos y
trepadoras.
La mejor época es la primavera. La rama
enraizada se saca en otoño o en la primavera
siguiente, antes de que se inicie el nuevo
crecimiento.
En climas cálidos, también se pueden hacer acodos a
inicios de otoño y cortarlos en la primavera siguiente.
Lo más importante para tener éxito con los acodos es
hacerlos con la planta en plena actividad, cuando
circula savia.
Las Plantas de Interior en un ambiente templado o en
invernaderos pueden acodarse casi en cualquier época
del año.
Hacer un anillado en la corteza de 1,5 a 2,5 cm
de ancho, a unos 30 cm. del ápice de la rama.
En la zona anillada se aplica hormonas de
enraizamiento. Esto no es imprescindible, pero
ayuda bastante a la emisión de raíces.
Se rodea la rama con un trozo de plástico, y se
ata con una cuerda en su parte inferior,
quedando como un cucurucho que se rellena con
sustrato húmedo.
Se amarra fuertemente la parte de arriba del
plástico, para que el sustrato quede
perfectamente en contacto con el anillo de la
corteza.
El sustrato deberá mantenerse húmedo durante
todo el proceso, pero no demasiado mojado.
Para ello, cada 15 ó 20 días se introduce agua
con una jeringuilla.
En un acodado resulta fundamental que no
entre luz en las partes en que se quiere que se
formen raíces.
En cuanto las raíces rodeen al plástico por
dentro, cortar el acodo de la planta madre con
un corte limpio justo por debajo de las raíces.
En algunas plantas el enraizado se efectúa en
2 ó 3 meses, o menos, como los Ficus. Las
Camelias se demoren de 4 a 6 meses en
climas templados.
Se retira con cuidado el plástico sin que se
desmorone el cepellón de sustrato y raíces y se
planta en una maceta.
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ACODO AEREO
Esta técnica se usa en viveros para propagar
patrones clonales de manzano, peral, membrillero
y arándano.
Las plantas madres se dejan crecer todo un año y
a finales del invierno se cortan a ras del suelo.
En primavera, la planta madre empezará a emitir
brotes.
Cuando éstos poseen unos 18 cm se aporca la
base, formando un montículo, en el que los
nuevos tallos comenzaran a emitir raíces.
Cuando miden unos 25 cm, se repite el aporcado,
y después cuando miden unos 40 cm.
A fines de otoño los acodos enraizados se
cortan cerca de su base para mantener baja
la altura de la planta original.
La planta madre se debe dejar descubierta en
invierno y se repite el proceso a inicios de
primavera.
ACODO DE MONTICULO
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Consiste en cultivar una planta en posición
horizontal en la base de una trinchera o surco, y
cubrir con tierra los brotes nuevos a medida que
crecen, de tal manera que se etiolen sus bases
al estar sin de luz y emitan raíces.
El primer paso consiste en establecer las plantas
madres en las trincheras, que puede usarse por
varios años.
Se plantan árboles de un año, a una distancia de
50 a 75 cm, colocándolos en la trinchera con un
ángulo de inclinación de 30º a 45º con respecto
la suelo.
Las trincheras deben ser de 1.20 a 1.50 m, de
ancho para permitir labores de cultivo y apilar tierra
alrededor de la planta hasta unos 15 cm de altura.
Luego las plantas se cortan a una altura uniforme
(50 a 65 cm) y se les deja crecer durante una
estación.
Antes que se inicie el crecimiento la planta se
coloca en posición horizontal en el fondo de la
trinchera de unos 5 cm de profundidad.
Las ramas se cortan un poco y el árbol se afirma
al suelo con ganchos.
A medida que comienzan a crecer los brotes se
van cubriendo con suelo para producir etiolación,
siguiendo el mismo procedimiento que para el
acodo de montículo
A fines de verano se saca el suelo que cubre los
brotes ya enraizados y se cortan cerca de la
planta madre.
Se usa para propagar ciertos frutales cuya
multiplicación es difícil de lograr por otros
métodos como avellano, ciruelo y cerezo
ESPECIE TIPO DE ACODO ÉPOCA
Manzano Montículo y Trinchera Primavera
Peral Montículo y Trinchera Primavera
Azalea Montículo y Simple Primavera, Verano
Higuera Aéreo Primavera, Verano
Camelia Simple Primavera
Vid Simple y Compuesto Primavera
Frambuesa De punta Verano
Rosa Simple y de Punta Primavera, Verano
PROPAGACIÓN POR
ORGANOS ESPECIALIZADOS
Y OTROS
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Este tipo de propagación incluye:
Estolones
Bulbos
Cormos
Tubérculos
Rizomas
Raíces tuberosas
Pseudobulbos
División de plantas
ESTOLONES
Tallos modificados, delgados, largos y
horizontales que nacen de la base de la
planta y se desarrollan arrastrándose sobre
la superficie del suelo produciendo raíces
adventicias que, en cada nudo, dan origen a
una nueva planta.
Se presentan en Frutilla, Trébol blanco y en
Cinta o Mala madre (Chlorophytum
comusum).
En frutillas la producción de estolones ocurre
con temperaturas superiores a 28oC y días
largos.
Cuando los días son más largos (diciembre a
febrero) las plantas comienzan a emitir
estolones.
Cada planta forma 10-15 estolones con 5-
10 plantas hijas cada uno.
Se obtiene rendimientos de 500.000 a
1.000.000 plantas/ha. Cinta
Frutilla
Cinta o Mala madre
PLANTAS BULBOSAS
Se les llama plantas bulbosas a plantas herbáceas
perennes que poseen alguno de los siguientes
órganos subterráneos de reserva de nutrientes, del
que cada año se desarrollan hojas y flores:
Bulbos
Cormos
Tubérculos
Raíces tuberosas
Rizomas
Es por esto, que es importante destacar que
las plantas bulbosas NO sólo son las que
tienen bulbos sino cualquiera de estos tipos
de órganos subterráneos.
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En estas plantas el tallo muere al final de la
estación de crecimiento y la planta sobrevive
en el suelo a expensas de órganos
subterráneos, DE la reserva de y que se usan
en la multiplicación de la planta.
Los ciclos climatológicos para los cuales está
adaptado este comportamiento son:
Cálido-Frío, de las zonas templadas
Húmedo-Seco de las regiones tropicales y
subtropicales. Tubérculos
Raíces tuberosas
Rizomas
Bulbos
Cormos
La reproducción por tallos especiales y raíces Incluye:
Se propagan
por separación
Se propagan
por división
BULBOS Es un tallo axial corto, carnoso, que tiene en
el ápice un primordio floral encerrado por
escamas gruesas y carnosas.
En las axilas de las escamas se desarrollan
meristemas que producen bulbillos.
Los bulbos son de dos tipos:
a) Tunicados (Laminados)
b) No tunicados (Escamosos)
a) Bulbos Tunicados (laminados)
Escamas externas: secas y membranosas
(túnica) dan protección mecánica y contra la
deshidratación.
Escamas internas carnosas, continúas y la
estructura es más o menos sólida.
Ejemplos: Cebolla, Amarilis, Tulipán, Narciso,
Jacinto.
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Amarilis
Narciso
Tulipán
b) Bulbos No tunicados (escamosos)
No poseen membranas secas.
Escamas están separadas y sujetas en la
base, no están tan protegidas como en los
otros bulbos por lo que se dañan más.
Deben mantenerse húmedas.
Ejemplos: Lilium
Lilium
Tallo floral
Raices
Calidad del bulbo
Depende del tamaño (condición del follaje después
de la floración, riego, fertilización , sanidad)
En clima cálido hay menor crecimiento vegetativo y
se anticipa el crecimiento reproductivo; por lo que el
bulbo es más chico
Zonas óptimas para producción de bulbos
son zonas frías como:
Sur de Chile
Holanda
Costa noreste EUA
Ciclos de crecimiento
El crecimiento es en dos fases
Vegetativo: los bulbos crecen hasta obtener su peso
máximo para florecer.
Reproductivo: comprende:
Inducción de la floración
Diferenciación de las partes florales
Alargamiento del tallo floral
Floración
En esta fase hay requerimientos ambientales
específicos por especie.
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Clasificación por fecha de floración
1. Bulbos que florecen en primavera: Tulipanes,
narcisos, jacintos.
2. Bulbos que florecen en verano: Lilium
3. Bulbos que florecen en Invierno: Amarilis
1. Bulbos que florecen en primavera
Fase vegetativa
Se inicia el bulbo hijo sobre el platillo basal en la axila de una
escama.
El tiempo que requiere para florecer el bulbo hijo depende de
la especie.
Tulipán: se desintegra el bulbo al florecer y se reemplaza por bulbos
hijos iniciados el año anterior.
Jacinto y Narciso: el bulbo que florece, continúa creciendo desde el
centro año tras año y produciendo bulbos hijos, que pueden quedar
adheridos por varios años.
Fase reproductiva
Se inicia con el secado de follaje, el bulbo madura no hay
más incremento en peso y tamaño.
Las raíces se desintegran y entra en reposo. En la
naturaleza permanece en el suelo. En cultivo se saca y se
almacena.
La Floración es controlada por la temperatura:
La diferenciación floral se produce con T° moderadas en otoño.
La estimulación del crecimiento del tallo floral se produce con T°
bajas, pero sup. a 0°C.
El crecimiento del tallo floral se produce al aumentar las T° en
primavera.
Narcisos Tulipanes Jacintos
2. Bulbos que florecen en verano
Son bulbos no tunicados (Lilium)
Adaptados a ciclos de T° de verano- invierno de zona templada.
Estos bulbos no se hacen dormantes a fines de verano a otoño.
Bulbos hijos se forman antes de la floración del bulbo madre en la axila de una escama en la base del tallo.
El bulbo hijo permanece dormante por efecto de
inhibidores presentes en sus escamas.
Después de la floración del bulbo madre, el bulbo
hijo aumenta en tamaño y peso.
Los bulbos se sacan para su trasplante a medida
que maduran en otoño, cuidando que no se
deshidraten.
Lilium 3. Bulbos que florecen en invierno
Típicos de los trópicos, adaptados a ciclos de
humedad-sequía; Amarilis
El bulbo es perenne, crece constantemente
desde el centro, desintegrándose las escamas
exteriores.
El período vegetativo se extiende desde fines de
invierno hasta el siguiente verano.
En otoño las escamas maduran y el bulbo entra
en reposo. Durante este período el bulbo debe
estar en condiciones secas.
Después de 2-3 meses de almacenamiento
puede regarse, lo que hace que los tallos
florales se alarguen rápidamente y florezcan a
mediados de invierno.
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Amarilis
a) Por Bulbos hijos
Es rápido para tulipán, iris y narciso, pero lento para
lirio, jacinto y amarilis.
Separar los bulbos cuando se desentierran y plantar
en surcos en vivero para aumentar su tamaño.
Dar buenas condiciones hasta que produce el follaje
y las flores para ver color
Propagación de plantas que poseen
Bulbos Se sacan en verano cuando se forma la túnica y
madura el follaje, en climas fríos pueden estar
más tiempo, y se cosechan con hojas.
Se almacenan a 18-20°C
b) Por bulbillos de tallos
Algunas sspp de Lirios forman bulbillos en el
tallo aéreo.
Se aumenta la prod. de bulbillos con la
eliminación de la yema floral.
c) Estaca de tallo (lirio)
Se usan hojas con un trozo de tallo.
En la axila de la hoja se forma un bulbillo
Se maneja igual que el anterior.
d) Formación de bulbillo en las escamas (Lirio)
Se separan escamas del bulbo madre, se
colocan en condiciones adecuadas, formándose
bulbillos adventicios(3 a 5) en la base de cada
escama.
e) Corte basal (Jacinto)
Después de la madurez del follaje y con un
diámetro de bulbo de 17 a 18 cm.
Se elimina el planto basal, dejando un hueco,
con lo que se pierde la dominancia apical
(eliminación del brote principal).
Los bulbillos se forman en la base de las
escamas expuestas
Se hace tres cortes en el bulbo.
Se deja que forme callo a 21°C en arena seca
por 1 a 2 semanas
Plantación a 10 cm de profundidad, en otoño.
Primavera forma follaje; origina 24 – 60 bulbos
f) Estacas de hoja (jacinto)
Hoja madura
Cortar en 2 – 3 trozos
Tratamiento igual que estaca de hojas.
g) Estacas de bulbo
Bulbo se parte en 8 – 10 secciones verticales
Tratamiento como estaca de hoja
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Estacas de bulbo brotadas y con raíces CORMOS
El cormo es la base hinchada de un vástago de tallo,
envuelto por hojas secas con aspecto de escamas.
En el ápice del cormo hay una yema vegetativa terminal
que se desarrolla para formar las hojas y el ramo floral.
En los cormos se producen 2 tipos de raíces:
Fibrosas nacen del cormo madre
Engrosadas y contráctiles en la base del cormo nuevo.
Ciclo de crecimiento (Gladiolo, Azafrán)
Plantación del cormo en primavera, floración en verano.
Formación raíces en el cormo.
Una o más yemas comienzan a formar hojas.
Formación del cormo hijo sobre el cormo madre.
De la base del nuevo cormo se desarrolla un crecimiento tipo estolón con cormos en miniatura en el ápice.
El cormo viejo se desintegra, usado para la producción
de la flor y el cormo nuevo sigue agrandándose.
Pasada la floración, los fotosintatos que produce el
follaje se almacenan en el cormo nuevo.
A fines del verano ya hay formado uno o más cormos y
también cormillos. Los cormos se sacan y se guardan
en invierno hasta su plantación en la primavera.
Gladiolo
AZAFRAN a) Por Cormo nuevo
Gladiolo, noche fría, día largo, origina cormo grande
Fertilización, en floración produce cormos grandes
Cormos una vez sacados del suelo se curan a 30-
35°C ; 80-85% HR.
Se calibran los cormos, se desinfectan, y se colocan a
35°C x 1 semana más, para suberizar heridas.
Almacenar a 5°C, 70–80% HR, bien ventilados
Propagación de plantas que poseen
Cormos b) Por Cormillos (cormo miniatura)
Deben crecer 1 ó 2 años
Almacenar a 5°C, húmedos y plantar en primavera.
Remojar 1-2 días, y mantener húmedo hasta ver
signos de raíz
Tratamiento desinfectante (2-4 meses después de
sacados del suelo)
Remojar en agua x 2 días
Colocar 4 horas en una solución 1:200 formaldehido
comercial (37%)
Sumergir en agua a 57°C x 30 min y enfriar
Luego sacar y almacenar ventilados a 5°C.
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Se hace plantación como semillas , en surcos
Solo producen follaje y un cormo nuevo en la base
del eje del tallo.
Al final de la temporada, se sacan y separan por
tamaño.
Algunos alcanzan tamaño florífero, pero la mayoría
necesita un año más de crecimiento.
c) División del cormo
El cormo grande se parte, con una yema en
cada sección y se planta
Se hace tratamiento fungicida para hongos.
TUBÉRCULOS
Son tallos subterráneos engrosados por
acumulación de sustancias alimenticias, y sirven
también como medio de reproducción.
“Ojos” corresponden a nudos (yema)
Los tallos aéreos usan el tubérculo para crecer, el
que se desintegra
Propagación de plantas que poseen
Tubérculos
Se usa tubérculos completos o partes de él con
unas 2 yemas.
Cada uno de 30 a 60 g (semilla)
Los cortes se dejan cicatrizar a 20°C, por 1 a 2
días.
Posteriormente se plantan.
RIZOMAS Es un tallo especializado en el cual el eje principal
crece horizontalmente bajo la superficie del suelo:
Bambú,
Calas,
jengibre,
menta,
orégano,
Estragón
Lirio.
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Hay 2 tipos generales de rizomas
Determinados o Paquimorfo (lirio, jengibre)
Rizoma grueso, carnoso, compacto, con crecimiento
determinado, esto es que cada macollo termina en un tallo
floral y el crecimiento solo sigue en ramas laterales.
Florecen en primavera y crecen vegetativamente en verano
y otoño
Florecen y forman ramas laterales.
Crec. Vegetativo permanece en post-floración.
Rizoma Lirio
Rizoma Jengibre
Indeterminados o Leptomorfo
Rizoma delgado, con entrenudos largos.
Crecimiento indeterminado, crece continuamente en
longitud en el ápice terminal y por ramificación lateral.
No macolla.
Crecen en forma vegetativa a inicios de primavera y
luego florecen
a) División
Se dividen los rizomas a inicios de primavera o a
fines de verano y otoño
Paquimorfos: Se separan en el punto de inserción
Leptomorfo: Cada brote se puede separar, se cortan en
trozos c/yema,
Propagación de plantas que poseen
Rizomas b) Estacas de tallo
Bambú, el tallo aéreo puede usarse como
estaca. Se coloca horizontal el tallo entero
enterrado en el suelo y de cada nudo aparecen
brotes nuevos.
DIVISION ESTACAS
RAÍCES TUBEROSAS
Son órganos de reserva; botánicamente son
diferentes a tubérculos, pero son tratados igual.
Tienen el cuerpo grueso y carnoso. No hay nudos y
entrenudos.
Las yemas se producen en el extremo de la corona o
tallo
Ejemplo Dalia, Camote, Ranúnculo
Raíces Tuberosas
Dalia
Camote
Ranúnculo
Raíz tuberosas
camote
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a) División
Dalias
Se almacenan en aserrín 4 – 10°C
A fines de invierno se divide la corona en secciones
que tengan una yema. Se aplica fungicida al corte, se
deja secar varios días y se planta.
Propagación de plantas que poseen
Raíces tuberosas b) Brotes adventicios
Camote produce brotes a partir de raíces carnosas
Se ponen en arena húmeda, sin que se topen a 5 cm de prof
con una t°de 27°C
A medida que salen los nuevos brotes se aporca hasta que
tengan cubierto unos 10 a 12 cm.
En la base de estos tallos adventicios se forman raíces.
c) Estacas herbáceas
Pueden ser de tallo y de hoja
Se usa en Dalias
PSEUDOBULBOS Consisten en una sección engrosada, carnosa de tallo,
formada por uno o varios nudos.
Se producen en muchas especies de orquídeas,
corresponden a brotes que se desarrollan lateral o
terminalmente del rizoma horizontal.
Propagación
Hijuelos
Secciones de rizomas con /pseudobulbos
Pseudobulbos de Orquídeas
DIVISION DE MATAS Este método de reproducción funciona muy bien en
la mayoría de las plantas aromáticas como, salvia,
romero, tomillo y orégano.
Para que se pueda hacer con éxito tiene que ser una
planta que ya haya desarrollado mucha raíz.
El objetivo es dividir la planta en partes más
pequeñas y éstas luego se plantan individualmente
CULTIVO DE
TEJIDOS
VEGETALES
• El término “cultivo de tejidos
vegetales” involucra diferentes
técnicas de cultivo, de material
vegetal
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Esquema de las modalidades del cultivo de tejidos
vegetales de las plantas superiores
Cultivo de
protoplastos
Cultivo de semillas
Cultivo de embriones Cultivo de
meristemas
Cultivo de células,
callos, explantos y
ápices
Cultivo de
microesporas
y anteras
Cultivo de tejidos vegetales de plantas superiores
• Mediante el cultivo de tejidos, es posible
obtener plantas libres de patógenos en un
medio nutritivo aséptico y en condiciones
ambientales controladas.
• Esta técnica tiene numerosas aplicaciones,
entre otras:
Mejoramiento genético de plantas
Obtención de plantas libres de virus y otros
patógenos
Conservación de germoplasma
Producción de semillas sintéticas
Micropropagación o propagación masiva de
plantas, especialmente en especies de difícil
propagación.
Algunas aplicaciones del cultivo de tejidos en plantas
Semillas sintéticas
Embriones somáticos cultivo de
células encapsulados en una matriz inerte (alginato de
calcio).
Micropropagación
Violeta africana trozos de hojas
desinfectados
introducidos en condiciones de esterilidad.
• Existen tres conceptos básicos que
fundamentan el cultivo in vitro de células y
tejidos vegetales:
Totipotencialidad celular: toda célula vegetal individual
es capaz de regenerar una planta entera a partir de un
cultivo in vitro, sin importar el grado de diferenciación
alcanzado. Para esto se requieren condiciones
específicas referidas al medio del cultivo, relaciones
hormonales, temperatura, fotoperíodo, etc.
Desdiferenciación / Rediferenciación: consiste en la
transformación y pérdida de las características de
especialización de un tipo celular para dar lugar a
células de tipo meristemático y posteriormente la
redifereciación de estas células previamente
desdiferenciadas.
Balance hormonal: Todo proceso de diferenciación
está regulado por el balance entre diferentes tipos de
reguladores del crecimiento, fundamentalmente de
auxinas y citocininas.
BALANCE HORMONAL
AUXINA: CYTOKININA = ~1
Formación de Callo
AUXINA: CYTOKININA > 1
Formación de Raíces
AUXINA: CYTOKININA < 1
Formación de Tallo
• Las células vegetales crecidas en
condiciones asépticas, sobre medios de
cultivo adicionados con hormonas
vegetales, pueden dividirse dando dos
tipos de Morfogénesis:
Morfogénesis
Organogénesis
Directa Indirecta
Embriogénesis
Directa Indirecta
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Morfogénesis
La morfogénesis se define como la formación de
órganos y comprende el crecimiento y la
diferenciación celular.
La respuesta morfogenética puede manifestarse
siguiendo dos rutas alternativas: la organogénesis
y la embriogénesis.
En la organogénesis se produce la formación de
tallos, raíces u otras estructuras y
En la embriogénesis se forman embriones que al
germinar dan lugar a una planta.
• En ambos casos, el procedo se generan a
partir de células somáticas.
• Si la respuesta primaria al estímulo
morfogenético es la formación de callo antes
de diferenciarse meristemas o embriones se
habla de organogénesis o embriogénesis
indirecta.
• La organogénesis es una de las vías en la
cual se diferencian meristemas a partir de las
células o tejidos cultivados.
• Cuando se produce un meristema apical su
desarrollo da lugar a una planta.
• En este proceso la producción de tallos y
raíces es independiente.
• La embriogénesis es un proceso por el cual se
generan embriones a partir de células somáticas en
cultivo.
• Los embriones somáticos siguen las mismas etapas
de desarrollo que los embriones cigóticos pero no son
el resultado de la fecundación de los gametos.
• Estos embriones germinan dando lugar a un tallo y
una radícula simultáneamente al igual que ocurre con
una semilla.
Morfogénesis Directa
Organogénesis directa
Embriogénesis directa
– Organogénesis directa: Consiste en la
generación de plantas sin raíces
directamente del explanto.
– Esta ruta generalmente se sigue cuando se
utilizan meristemas vegetativos terminales o
laterales.
D. plantas obtenidas por
micropropagación, listas para
aclimatar
Organogénesis directa Violeta Africana
A B
C D
A. zona del explanto donde se
está produciendo la brotación
de yemas adventicias
B. Detalle de los nuevos brotes
que se están formando en el
borde del explanto
C. Aspecto del explanto una vez
sacado del tubo de cultivo
– Embriogénesis directa: Previo a la
generación de la plántula se requiere la
formación de un embrión de origen somatico
que llegará a ser una planta completa.
Cultivo de anteras y regeneración
de plantas haploides
a) Antera al inicio del cultivo
b) Antera con 6 días de cultivo.
c) Embrión emergiendo de la
antera con 30 días en cultivo
mostrando raíces
d) Embrión mostrando raíces y
brotes.
e) Plántula con cotiledones
f) Plántula con hojas
g) Subcultivo en un medio de
crecimiento.
h) planta haploide regenerada a
80 días de cultivo .
PLANTA DE AJÍ
Embriogénesis directa
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Morfogénesis Indirecta
permite regenerar plantas a partir de callos formados por células
desdiferenciadas
Organogénesis indirecta
Embriogénesis indirecta
– Organogénesis indirecta: El explanto genera la
formación de un callo, a partir de éste se forman
partes vegetativas diferenciadas como brotes o
raíces, de las cuales se obtiene la plántula según
sea la especie y las hormonas usadas.
– Este es el caso principalmente del cultivo de
protoplastos.
Organogénesis indirecta
Sección
Entrenudo Inducción callo
organogénico Inducción brote
Inducción raíz
– Embriogénesis indirecta: El explanto
genera la formación de un callo, a partir de
éste se forman embriones somáticos, del
cual se obtiene la plántula según sea la
especie y las hormonas usadas.
– Este es el caso de secciones de tallo, hoja o
raíz y protoplastos.
Embriogénesis indirecta
Sección
entrenudo
Establecimiento e
inducción de callo
embriogénico Mantención y
multiplicación 1. Desarro
2. Maduración y
3. Germinación
embriones
MICROPROPAGACION
Micropropagación
Es una multiplicación masiva in vitro
aplicada a la propagación vegetativa de
plantas.
Se usa en la producción de especies
hortícolas, aromáticas, medicinales,
frutícolas, ornamentales y forestales.
• Ventajas micropropagación /métodos convencionales
Multiplicación acelerada del número de plantas,
Menor tiempo de multiplicación,
Producción permanente de material (no hay
estacionalidad),
Mayor cantidad de plantas en una superficie reducida
(en tiempos y costos económicamente viables),
Mayor control sobre la sanidad del material propagado,
Mas Facilidad para el transporte del material in vitro,
• El cultivo in vitro exige un control absoluto
del ambiente, tanto químico como físico,
en el que se sitúa al explanto.
– AMBIENTE QUÍMICO
Medio de Cultivo
pH
– AMBIENTE FÍSICO
Temperatura
Luz
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AMBIENTE QUIMICO
• Medio de cultivo
• Se agrupan en medios sólidos, semisólidos y
líquidos.
• Conjunto de elementos que integran la
sustancia nutritiva que da anclaje, nutrición y
estimulación al desarrollo del explanto, ya que
las porciones del vegetal (explantos) no son
autotróficos
• MEDIOS DE CULTIVOS
• El medio de cultivo es el sustrato en el cual se
desarrollan los órganos , células y tejidos después
de ser aislados de la planta madre
Líqu idos:Se puede usar como
soporte papel filtro o
perlas de cristal
Sol idos o Semisó l idos:Según la concentración del soporte
llevaran diferentes componentes que
tienden a solidificar y mantener el
medio solidificado en la superficie,
como el agar
Medio Sólido (Agar)
Medio Líquido
Composición
Medios de Cultivos
• Murashige y Skoog (MS)
(1962),
• Linsmaier y Skoog (LS)
(1965),
• Borgin y Nitsch (BN)
(1967),
• Gamborg (B5) (1970),
• Sachs (1860),
• Knop (1865),
• Arnon y hoglan (1940),
• Gautheret (1942),
• Riquer y Duggar (1946),
• Heller (1953-58)
• Nitsch y Nitsch (1956),
• Torrey y Shigemura
(1957-64),
• White (1963),
• Blaydes (1966),
• Miller y Oyima (1968).
Se han desarrollado muchas formulaciones para
los medios de cultivo (Medio Basal), que se
diferencian en las cantidades y tipos de sales
usadas. Los más conocidos son:
• Los ingredientes del medio de cultivo varían
según el tipo de planta y la etapa de propagación
en que se esté trabajando.
• Estos ingredientes se pueden agrupar en:
a) Sales Inorgánicas
b) Compuestos Orgánicos
c) Ingredientes naturales complejos
d) Soportes Inertes
a) Sales Inorgánicas:
Aportan:
macronutrientes (N, K, P, Ca, Mg y S) y
micronutrientes (Fe, Cu, Zn, Mn, Mo, Co, I,)
• Requeridos para el desarrollo normal de
cualquier planta
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b)Compuestos Orgánicos:
• Carbohidratos: Debido a que el explanto no
puede fotosintetizar, usan como fuente de energía,
principalmente sacarosa. Se pueden emplear otras
como, glucosa, fructosa, lactosa.
• Vitaminas: Son compuestos que normalmente la
planta necesita para completar su desarrollo, las
que más se incluyen en la preparación de medios
son: Tiamina, Ácido Nicotínico, Piroxidina.
• Hormonas y Reguladores de crecimiento: las
dos clases de hormonas más importantes que se
usan son auxinas y citoquininas, que controlan la
formación de raíz, tallo y formación de callo.
– Auxinas: Relacionadas con la formación de callo y
la división celular.
• Acido indol acético (AIA) (natural);
• Acido dicloro fenoxiacético (2,4-D) (sintética),
• Acido indol butírico (AIB) (sintética),
• Acido Naftalen acético (ANA) (sintética).
– Citoquininas: Relacionadas con la formación
primaria de los órganos y embriones y la división
celular.
– Zeatina (natural),
– Kinetina (sintética),
– isopentil adenina (IPA) (sintética),
– Bencil adenina (BA) (sintéticas).
• Ácidos orgánicos: se usan para evitar
pardeamiento:
– ácido cítrico,
– ácido ascórbico.
• Carbón Activado: se usa para contrarrestar
la acción de ciertas sustancias inhibidoras
liberadas por algunos tejidos.
Auxinas Citoquininas Auxinas Citoquininas
Parte aérea Enraizamiento
c) Ingredientes naturales complejos:
• Se usan varios materiales de composición desconocida
para establecer cultivos cuando no se ha logrado hacerlo
con sustancias conocidas.
• Se usan suplementos orgánicos como extracto de malta,
jugos de tomate, de naranja, de zanahoria, agua de coco.
• La Caseína Hidrolizada, Glutamina, Asparagidina,
Adenina, se usan para aportar nitrógeno orgánico y
aminoácidos.
d)Soportes Inertes:
• Son el medio de soporte de los tejidos u
órganos que se siembran, reemplazan el suelo
que es el sustrato natural, los más empleados
son el agar (5 a 6 g/L) y también se ha usado
pectinas comerciales (8 a 10 g/L).
• pH • Cuando se prepara un medio de cultivo, se debe
ajustar el pH final al valor deseado, y una vez
ajustado el pH se esteriliza.
• En general se trabaja a pH entre 5.0 y 6.0, pero
para plantas acidófilas es mejor un pH 4.5
• Un pH < a 3.5 impiden la solidificación de los
agentes gelificantes.
• El valor del pH puede afectar:
– La solubilidad de algunos componentes del
medio de cultivo
– La absorción de determinados nutrientes por
parte del explante (p.e. la absorción de iones
NO3- aumenta con la acidez del medio)
– El pH del citoplasma y como consecuencia la
actividad de muchas enzimas
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• TEMPERATURA
• El control de la temperatura es importante porque
afecta el crecimiento del cultivo y también porque
es un factor que induce determinados procesos
fisiológicos.
• En general temperaturas de 21 a 30°C son
adecuadas, aunque algunas plantas pueden
necesitar temperaturas más bajas.
AMBIENTE FÍSICO • LUZ
• Los aspectos relacionados con la luz que
son importantes en los cultivos in vitro son:
a. LA IRRADIACIÓN: La cantidad de luz
b. EL ESPECTRO: La calidad de la luz
c. EL FOTOPERÍODO: La alternancia de los
ciclos de luz y oscuridad
a. LA IRRADIACIÓN:
• Cantidad de luz que incide sobre las superficies
fotosintéticas de las plantas y determina en gran medida
la capacidad fotosintética de ellas.
• Los cultivos in vitro necesitan menos luz porque el medio
de cultivo contiene cantidades importantes de sacarosa.
• Además, una irradiación excesiva produciría un aumento
notable de la temperatura dentro del recipiente de cultivo
debido al efecto invernadero.
• La irradiación habitual en el campo (a plena
insolación puede llegar a 450 W/m2) es nociva en
condiciones in vitro.
• Es habitual usar irradiaciones mucho menores (un
10% o incluso menos del valor de plena insolación)
b. EL ESPECTRO: (calidad de la luz)
• En la fotosíntesis se capta la energía contenida en
diferentes radiaciones para incorporarla a las diversas
reacciones químicas que constituyen el proceso.
• Algunas radiaciones concretas tienen un efecto notable
mientras que otras tiene poco o ningún efecto. •
• La cámara de cultivo debe reproducir lo mejor posible ese
espectro de luz activo, por lo tanto conviene conocer cual
es el espectro que emiten las fuentes de luz y en que
medida se adapta éste a las necesidades del cultivo.
c. EL FOTOPERIODO:
• Fenómenos propios del desarrollo de las plantas
como germinación, floración, tuberización,... entre
otros, pueden ser activados por el nº de horas
diarias de luz que reciben. De igual forma, el
número de horas de luz que recibe el explanto
cultivado in vitro puede afectar a su desarrollo.
• En general, se usa un fotoperiodo de 16 horas.
Etapas dentro del proceso de
micropropagación
− 0: Selección y Preparación de la planta madre.
− 1: Desinfección del material vegetal.
− 2: Introducción del material seleccionado in vitro.
− 3: Multiplicación de brotes.
− 4: Enraizamiento.
− 5: Aclimatación
Etapa 0:
PREPARACIÓN DE LA PLANTA MADRE
• Se deben obtener explantos con un nivel nutricional y un
grado de desarrollo adecuado.
• Para esto es recomendable mantener a las plantas madre un
período de tiempo que puede ser entre unas semanas o
varios meses, en un invernadero, en condiciones sanitarias
óptimas, bajo condiciones controladas.
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• Recomendable que crezca en invernadero o cámara de crecimiento
• Usar material homogéneo
• Elegir plantas vigorosas
• Promover nuevas brotaciones con podas severas
• En maceta con sustrato estéril
• Programa sanitario
• Controles y manipulación de intensidad de luz, fotoperíodo y
temperatura
• Aplicación de fitoreguladores
Influencia del material de partida:
Planta madre
• Capacidad regenerativa
Genotipo: Dicotiledóneas mejor que monocotiledóneas, y
entre ellas las Solanáceas y crucíferas muy fácil
regeneración.
Edad: Partes juveniles mejor que las adultas
Estado del órgano o tejido: Mejor no leñosos
Estado fisiológico: Partes vegetativas mejor que partes
generativas
Estado sanitario: Las más saludables y vigorosas
Condiciones de crecimiento: diferente respuesta si crece
en campo que en invernadero
Tamaño del explanto: En general a mayor tamaño
mayor capacidad regenerativa
Etapa 1:
DESINFECCIÓN DEL MATERIAL VEGETAL
Se extraen los fragmentos de la planta madre a partir de los
cuales se obtendrán los explantos (yemas, trozos de hojas,
porciones de raíces, semillas, etc).
Se hace una desinfección de los fragmentos, con soluciones
desinfectantes (etanol-hipoclorito de sodio), para eliminar los
contaminantes externos y poder extraer los explantos.
• Se trabaja en cámaras de flujo laminar en condiciones
de asepsia para extraer los explantos a partir del
material vegetal.
• Estos explantos se introducen en un tubo de cultivo que
contenga un medio de iniciación para poder controlar la
sanidad y la viabilidad.
Esquema de la etapa 1 del proceso de micropropagación
Fragmento
Planta
Madre
Explantos
Segmentos uninodales
Etapa 2:
INTRODUCCIÓN DEL MATERIAL IN VITRO
• Los explantos, se ponen en un medio de cultivo estéril.
• En 7 a 15 días, comienza el proceso de germinación o
regeneración de nuevos tejidos vegetales, iniciando el ciclo
de cultivo in vitro.
Etapa 3:
MULTIPLICACIÓN DE LOS BROTES
• En esta fase los explanos originan brotes con varias hojas.
• En la base de cada hoja hay una yema que se desarrollará
luego de ser puesta en contacto con el medio de cultivo.
• Periódicamente estos nuevos brotes se deben subcultivar en
un nuevo medio, mediante divisiones y resiembras en
condiciones de asepsia.
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Esquema del proceso de multiplicación de los brotes
Brote de Explanto División del Brote Siembra y resiembra de brotes
Etapa 4:
ELECCIÓN DE UN MEDIO DE ENRAIZAMIENTO DE LOS
EXPLANTOS
• Para enraizar los explantos se utilizan
principalmente dos métodos:
– Enraizamiento in vitro
– Enraizamiento ex vitro
Embrión Germinado
In Vitro
Enraizamiento
in vitro
Enraizamiento
ex vitro
• ENRAIZAMIENTO IN VITRO
• En la cámara de flujo laminar, se transfieren los
explantos a un medio que solo contenga auxinas.
• Este método permite más flexibilidad para escoger
los brotes, ya que éstos obtienen del medio de
cultivo la fuente de energía para enraizar, y por
tanto no es necesario que tengan las hojas muy
bien desarrolladas para realizar la fotosíntesis.
• ENRAIZAMIENTO EX VITRO
• Los explantos se transfirieren a un sustrato
limpio, que puede ser una mezcla de turba con
perlita o vermiculita.
• El medio de enraizamiento debe estar libre de
patógenos y los brotes deben tener las hojas bien
desarrolladas, ya que deben realizar fotosíntesis,
para tener energía para enraizar y desarrollarse.
• Los explantos se plantan en contenedores
cubiertos por un plástico, para mantener la
humedad relativa elevada, y hacerlos enraizar
en el laboratorio, o dentro de un invernadero
en un área sombreada y con "mist-system".
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fase de enraizado ex vitro.
Fotografía de un cultivo en la fase de enraizado ex vitro.
Etapa V:
ACLIMATACIÓN DE LOS EXPLANTOS ENRAIZADOS
• Los explantos son muy sensibles a los cambios
ambientales, por lo que el éxito o el fracaso de todo
el proceso depende de la aclimatación.
• Los explantos enraizados in vitro están poco
adaptados a crecer en invernadero porque sus
estomas no son completamente funcionales, además
de la falta de una cutícula con cera bien desarrollada
para evitar la perdida de agua.
• Los explantos deben ser aclimatados a las condiciones
de humedad del invernadero disminuyendo en forma
progresiva la humedad relativa y aumentando
progresivamente la intensidad de luz.
• Estos explantos se llevan a contenedores cubierto con
un plástico para mantener una lata humedad relativa.
• Para trasplantar, se elige un sustrato suelto, poroso,
con mezcla de arena y turba, para lograr un desarrollo
y crecimiento rápido de raíces.
Aclimatación en contenedores cubierto con un plástico
• Se debe controlar la humedad, para mantener
un ambiente húmedo a nivel del sustrato.
• A los 15 días del trasplante, se puede
comenzar a levantar la cobertura de nylon en
las horas de menor calor.
Esquema del proceso de aclimatación ex vitro
Planta entera Microtúnel
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• Los cambios deben ser muy graduales para
minimizar el estrés y tener mayor tasa de
sobrevivencia, ya que las condiciones del
cultivo in vitro, genera cambios en algunos
aspectos anatómicos y fisiológicos de las
plantas como estomas no completamente
funcionales, y falta de cutícula con cera bien
desarrollada para evitar perdida de agua.
Comparación de las características de una
planta in vitro respecto a una planta in vivo
Planta In vitro
No realiza fotosíntesis
Crecimiento en condiciones
controladas
Crecimiento en condiciones de
asepsia
Alta humedad relativa
Estomas no funcionales
Ausencia de pelos radiculares
Ausencia de cera en la cutícula
Planta In vivo
Realiza fotosíntesis
Crecimiento en condiciones no
controladas
Exposición a patógenos y
gérmenes del ambiente
Humedad relativa variable
Estomas funcionales
Presencia de pelos radiculares
Presencia de cera en la cutícula
Plántula de vid aclimatada al
sustrato en condiciones de
invernadero, funcionando su
actividad autótrofa
Brotes de vid que muestran
las raíces inducidas por el
ácido indolacético
Explante de yema axilar
mostrando nuevos brotes
en la axila de cada hoja,
60 días después de su
cultivo in vitro
Propagación in vitro de vid variedad Red Globe
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