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Amt der Steiermärkischen Landesregierung Bezirkshauptmannschaft Murau - Veterinärreferat
Wildtiere und ihre Bedeutung
als Überträger von Zoonosen
Armin Deutz
Amtstierärztliche
Weiterbildung, 14.11.2013
Zoonosen - Definitionen
„Sämtliche Krankheiten bzw. Infektionen, die auf natürlichem Weg direkt oder indirekt zwischen Tieren und Menschen übertragen werden können“
Kontaktzoonosen: hervorgerufen durch Tierkontakte
Foodborne Diseases: hervorgerufen durch Genuss von Lebensmittel oder Wasser
One World – One Health
62% aller Erreger von Human-Infektionen sind Zoonosen
54% aller Erreger von Haustier-Infektionen können Wildtiere infizieren
44% aller Erreger von Human-Infektionen können Wildtiere infizieren
? % aller Erreger von Wildtier-Infektionen können Haustiere (Nutztiere) infizieren ?
Tollwutfälle – Europa, 2009, FLI
Haustiere Wildtiere
Rabies – Bulletin - Europe
(FLI, 2010) Tollwut 2013: Griechenland, Kroatien, Niederlande, Polen, Rumänien, Ungarn, Slowakische Republik
Welche Wildtiere?
Wildwiederkäuer
Wildschwein
Hasenartige
Nagetiere
Raubsäuger inkl. Neozoen
Insektenfresser, Fledertiere
Wildvögel (Zugvögel!)
(Arthropoda), Exoten, …
Risikogruppen - Wildtierzoonosen
Jäger, Tierpräparatoren
Landwirte, Tierhalter
Tierärzte
Schlachthofarbeiter
Laborpersonal
Freizeitsportler
Konsumenten, …
YOPIS
(young, old, pregnant, immunosuppressed)
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Risikofaktoren
Wilddichten
Wildfütterung
Klimawandel
Migrationen, Neozoen
Eroberung neuer Lebensräume („Stadtfüchse“, -“sauen“)
Freilandhaltung von Haustieren, Farmwild
Globalisierung des Handels mit Wildtieren und
Wildtierprodukten
Unwissenheit, fehlende Untersuchungen, …
Übertragungsmöglichkeiten
Beispiel: Zoonosen beim Feldhasen Zoonose Erreger Übertragung
1. Virale Zoonosen
FSME (Metazoonose)
Togaviridae
Zecken
2. Bakterielle Zoonosen
Campylobacteriose
Leptospirose
Brucellose
Tularämie
Borreliose (Metazoonose)
Pseudotuberkulose, Yersiniose
Pasteurellose
Staphylokokkose/-Enterotoxikose
Streptokokkose
Q-Fieber
Chlamydiose
Listeriose
C. jejuni, coli; (lari)
Leptospira spp.
Brucella suis (Biovar 2)
Francisella tularensis
Borrelia burgdorferi
Y. pseudotub., Y. enterocolitica
Pasteurella multocida
Staphylococcus aureus
Streptococcus spp.
Coxiella burnetti
Chlamydia psittaci
Listeria mnocytogenes
LM, SI
K (bes. Urin), SH
K (bes. Wunden)
K, A, blutsaugende Insekten
Zecken
LM (rohes Fleisch?)
K, A
K (Wunden)/LM (Toxine)
K
A, K, (Zecken?)
K, A
LM, (Geonose)
3. Parasitäre Zoonosen
Fasciolose
Toxoplasmose
Fasciola hepatica
Toxoplasma gondii
LM
LM Abkürzungen: A ... Aeosol, K ... Kontakt, LM ... Lebensmittel, SH ... Schleimhaut-, SI ... Schmierinfektion
Zoonosen beim Feldhasen (n = 630), Steiermark
(Deutz u. Hinterdorfer, 1999)
Zoonose n % Pseudotuberkulose Pasteurellose Brucellose (B. suis) Staphylokokkose Streptokokkeninfektion Listeriose Toxoplasmose Tularämie Salmonellose
148 37 35 22
7 5 4 2 1
23,5 5,9 5,6 3,5 1,1 0,8 0,6 0,3 0,2
Pseudotuberkulose
Brucellose
Aktuelle Diskussionen um Wildtierzoonosen
Trichinose (Wildschwein, Marderhund, ..)
Tularämie (Feldhase)
Brucellose (Feldhase, Wildschwein)
EHEC,VTEC, STEC (Wild-Wdk.)
Tuberkulose (Dachs, Rot-/Schwarzwild)
Echinokokkose (Fuchs)
Tollwut (Fuchs, Fledermäuse, ..)
Ehrlichiose und Q-Fieber (Schalenwild)
Chlamydiose, NCD, West-Nile-Virus, Influenza (Vögel)
Dirofilariose (Fuchs?)
Zoonosen-Richtlinie (2003/99/EG)
Kategorie Zoonosen und Zoonoseerreger
A
B
Überwachungspflichtige Zoonosen und Zoonoseerreger
Brucellose, Campylobacteriose, Echinokokkose, Listeriose, Salmonellose,
Trichinellose, Tuberkulose (verursacht durch Mycobacterium bovis),
Verotoxinbildende Escherichia coli
Je nach epidemiologischer Situation überwachungspflichtige Zoonosen und
Zoonoseerreger
1. Virale Zoonosen: Calicivirus, Hepatitis-A-Virus, Influenzavirus, Tollwut und
durch Arthropoden (z. B. Zecken, Stechmücken) übertragene Viren
2. Bakterielle Zoonosen: Borrelliose, Botulismus, Leptospirose, Psittakose,
Tuberkulose (ausgenommen Tuberkulose gem. Abschnitt A), Vibriose, Yersiniose
3. Parasitäre Zoonosen: Anisakiase, Cryptosporidiose, Zystizerkose, Toxoplasmose
3
Motive der Überwachung von Wildkrankheiten / Zoonosen
Wildökologische Motive - Bedrohung von Arten
Landwirtschaftliche - Reservoir Haustierseuchen
Handelspolitische - Nachweis Seuchenfreiheit
Public health Motive - Reservoir für Zoonosen
Schätzung/Erfassung von Populationsgrößen!?
Populations-Parameter
• Dichte
Primäre Populations-Parameter
• Geburtsrate
• Sterberate
• Migrationsraten
Zeitliche Eigenschaften
Räumliche Eigenschaft
“gesund” oder “krank”?
Träger/Ausscheider von Zoonoseerregern sind häufig klinisch vollkommen unauffällig
Paratuberkulose: Zoonose ja/nein?
IKK-Seuchenzug 2006, Niedere Tauern
IKK: auch Zoonose!
2006: Ende Nov. Fliegen auf 2.000m
152 Landwirte
149 Jäger
147 Schlachthofarbeiter
137 Tierärzte
50 Personen als Kontrollgruppe
635 Probanden (untersucht auf 27 Zoonosen)
Untersuchungsstellen: AGES Mödling, Institut für Virologie der UVW, Abt. Med. Parasitologie des Hygieneinstitutes Uni Wien, Hygieneinstitut Graz
Untersuchung prädisponierter Personen
(Deutz et al., 2003)
4
Seroprävalenzen bakterielle Zoonosen (Deutz et al., 2003)
21
3
13
0 00
4
0 0 01
4
0 0 0
3
10
01
3
0 0 0 0 00
5
10
15
20
25
Ch. psittaci Leptospira sp. C. burnetii Brucella sp. F. tularensis
Se
rop
os
itiv
e i
n %
Tierärzte
Landwirte
Schlachthofarbeiter
Jäger
Kontrollgruppe
Borreliose, Ehrlichiose
Borreliose (49% der Jäger pos.!): Erythema chronicum migrans (ca. 70%); Fieber, Gelenks-, Muskel-, Kopf- und Nackenschmerzen, Menin- gitis, Fazialisparesen, Extremitäten- lähmungen, Verhaltensstörungen, kardiale Symptome, Arthritiden (Knie!), Acrodermatitis chronica atrophicans
Ehrlichiose (18% der Jäger pos.!): Fieber, Kopf- u. Rücken- schmerzen, Erbrechen, Nieren- und Leberfunktionsstörungen, Panzytopenie Infektion auch über Blutkontakte?
Viele Zoonosen verlaufen „grippeähnlich“ > hohe Dunkelziffern!
Brucellose (B. suis)
1 seropositiver (1:40) Jäger und 1 Jäger mit Titer von 1:20
Risiko: Schwarzwild- und Feldhasenkontakte
Von 128 untersuchten Stück Schwarzwild
(99 Sera auswertbar) waren 7 (7%) seropositiv Von 630 Feldhasen (Stmk.) gelang bei 35 (5,6%) der
Erregernachweis (B. suis)
Tularämie
Tularämie
In Ö ca. 10 - 15 Humanfälle/Jahr
(hohe Dunkelziffer vermutet!)
Infektionswege: Feldhasenkontakt
(Schleimhautinfektion, aerogen),
Lebensmittel- bzw. Trinkwasserinfektion,
Vektoren (blutsaugende Insekten)
Krankheitsbild: vielfältig, je nach
Eintrittspforte, Infektionsdosis und Erregerstamm:
(ulzero)glandulär, oculär, oropharyngeal, intestinal,
pulmonal, typhoidal
F. tularensis gilt als potenzielle Biowaffe! (Kategorie A)
Tularämie
5 seropositive (3,4%) Jäger und 7 mit Titern < 1:80 (4,7%)
Risiko: Feldhasenkontakte
Bekannte Endemiegebiete in Ostösterreich
Geringe minimale Infektionsdosis
Infektion durch intakte Haut möglich, Aerosole!
Verbreitungsgebiet klimaabhängig, Ausweitung des Endemiegebietes
5
Verstärktes Auftreten der Tularämie bei:
Wintertemperatur über + 0,5 °C
Maitemperatur unter 14 °C
Sommerniederschlag > 180 mm
Jahresniederschlag < 720 mm
Leptospirosen
10 % Jäger 4 % Landwirte 4 % Schlachthofarbeiter 3% Tierärzte seropositiv
Risiko: Schweine-, Schwarz- wild-, Nager- und Feldhasen- und Hundekontakte
Von 108 untersuchten Stück Schwarzwild waren 26 (24%) seropositiv (L. bratislava, grippo- typhosa, icterohämorrhagiae, hardjö)
(Deutz et al., 2002)
Ergebnisse parasitäre Zoonosen
55
34
22
1 0 0
79
48
15
5 30
73
25
17
4 30
67
17
5
11
0
64
2
10
0 0 00
10
20
30
40
50
60
70
80
90
T. gondii T. canis/cati A. suum E. multiloc. E. granulos. F. hepatica
Sero
po
sitiv
e in
%
Tierärzte
Landwirte
Schlachthofarbeiter
Jäger
Kontrollgruppe
E. multilocularis („Fuchsbandwurm“) und
T. spiralis bei Füchsen, Steiermark
pos. Fälleneg. Fälle
Mur
Mürz
( T.s., E.m.)
(Lassnig, 1996; Deutz et al., 1995)
6
Nachuntersuchungen (Echinococcus spp.)
Serologie: von 152 Landwirten/Innen: E. m.: 8 pos./grw. E. g.: 4 pos./grw. (insges. 10 Probanden p/g)
Ultraschall, CT: 3 Probanden (weibl., 37, 43, 49 J.) mit Leberzysten, Bestätigung von Echinokokkenzysten (Serologie: 2 E. m., 1 E. g.)
Toxokarose („Hunde-/Katzenspulwurm“)
48 % Landwirte (ELISA) 34 % Tierärzte 26 % Schlachthofarbeiter 17% Jäger seropositiv („Normalbevölkerung“: 1 - 2%)
Füchse: ca. 50% Spulwurmträger
Risiko: Schmierinfektionen ausgehend von Hund/Katze oder Fuchs, Kontamina- tionen von Gemüsegärten und Kinderspielplätzen (Problem Stadtfüchse?)
© Bayer Animal Health GmbH© Bayer Animal Health GmbH
Okuläre Larva migrans (OLM-Syndrom)
Retinagranulom, Mensch
Larve aus Retinagranulom
Weitere Krank-heitsbilder (z.B. Asthma, Rheuma, Epilepsie) werden als Folge von Toxokara-Infestationen (LMV) vermutet
(DEUTZ et al., 2005)
Odds ratio Toxokarose (Landwirte – Kontrollgruppe)
Landwirte
Kontrollg
total
Seroprä-valenz
Toxocara
positiv
67
1
68
negativ
85
49
134
total
152
50
202
²-Test
Value
df
Significance
Pearson Chi-Square
29,832
1
0,00000
Risk Estimate Value
95% Confidence Interval
Lower
Upper
Odds Ratio
38,624
5,198
286,991
Jäger (Seroprävalenz Westernblot: 17%)
> Odds ratio 9 (= 9faches Risiko)
Durch Arthropoden übertragene Krankheiten/Zoonosen
Babesiose
Borreliose
Ehrlichiose
Filariose
FSME
Leishmaniase
Louping-ill
Rickettsiosen
Tularämie u.v.m. Zoonosen MU 04-12
Durch Arthropoden übertragene Krankheiten
Virus Wirte/Reservoir Zoonose Vorkommen in Europa
FSME-Virus Mäuse, Vögel, Reh-/Rotwild ja fast europaweit
West-Nile-Virus Vögel, Pferde, Frösche, Mäuse ja SK, H, A, Südeuropa
Bluetongue-Virus Wiederkäuer nein fast europaweit
Batai-Virus Wildvögel, Hasenartige, Nagetiere ja Skandinavien, MittelEU
Tahyna-Virus ja A, Tschechien, F
Uukuniemi-Virus ja Norwegen
Eyach-Virus Nagetiere? ja NL, F, Tschechien
Tribec-Virus Kleinnager, Hasenartige ja ?
Lipovnik-Virus ? ja ?
Bahanja-Virus Vögel, Säuger ja Tschechien, Italien,
Österreich, Portugal,
Spanien, Polen Semliki-Forest-
Komplex-Virus
? ja
Lednice-Virus Vögel ?
Sindbis-Virus ja
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Infektionsgefährdete Gebiete werden im Alpenraum größer
Hantavirus-Infektionen in Österreich
(Aberle, 2011)
Hantavirus, Wasserspitzmaus, Murau „Neue Krankheiten“, z.B.WNV-Infektionen
Empfänglich: Vögel, Pferde, Mensch
1999 Raum New York; in den USA ca. 1.000 Tote
ab 2004 in Ungarn (Stamm Lineage 2)
2008 in Österreich bei Vögeln (90% Habichte)
übertragen durch Stechmücken
WNV-Infektionen (783 Fälle, davon EU 226 Fälle, Stand 6.11.2013)
Verbreitung H. marginatum (Krim Kongo Hämorrhagisches Fieber)
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Fuchs als „Indikator“
385 Füchse und 110 Feldhasen:
Tularämie: 7,5% Füchse serologisch und 4,5% Hasen kulturell positiv
Brucellose: 3,1% Füchse serologisch und 2,7% Hasen kulturell positiv
Tularämie/Brucellose: Mandibularlymphknoten von 903 Füchsen kulturell untersucht (2007/08) >> 10 Füchse F. tularensis-, 4 B. suis- und 3 B. microti-pos.
(HÖFLECHNER-PÖLTL, 1999)
(HOFER et al., 2009)
Fuchs als „Indikator“
Trichinella britovi:
1.546 Fuchsköpfe untersucht
(2003/04) > 24 positiv (1,55%)
(KROIS et al., 2005)
Trichinella sp. (Übersichtsarbeit):
Österreichweit insgesamt 5.565 Füchse untersucht >
Nachweise in 31 von 121 Bezirken; Prävalenzen in 12
Bezirken zwischen 0,01 und 2%, in 15 zwischen 2,01
und 5% und in 4 zwischen 5,01 und 9,48%
(DUSCHER et al., 2005)
Fuchs als „Indikator“
Alaria alata (Dunkerscher
Muskelegel), 2,5-6 x 0,5-2 mm,
2 Zwischenwirte (Süßwasser-
schnecke / Amphibien),
paratenischer Wirt Wildschwein
> Zoonose
1.980 Füchse aus Österreich
untersucht > 0,2 – 22,1% positiv
(Duscher, 2011)
Weitere Krankheiten (Seuchen), Fuchs
Staupe (Zusammenhang mit MS?)
Räude > Mensch > „Scheinräude“
Wildfleisch als Infektionsquelle?
• Campylobacteriose
• Salmonellose
• Trichinose
• Brucellose, Tularämie
• Pseudotuberkulose
• Yersiniose
• Botulismus
• Taeniasis
• Verotoxinbildende E. coli, Hepatitis E, ..
Enterohämorrhagische E. coli (EHEC)
Erste Krankheitsfälle 1981/82 in Nordamerika, 1994 weltweit Krankheitsfälle
Hauptinfektionsquellen: Rindfleisch, Rohmilch aber auch Obst, Gemüse, Apfelsaft usw.
Schmierinfektionen durch Mensch- und Tierkontakte
BfR: Risiko Reh- und Rotwild
Infektionsdosis: 10 bis 100 Keime
EHEC (O157 H7) auch in 1,5% heimischer Rohmilchproben nachgewiesen (DEUTZ et al., 1999)
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STEC/EHEC in Gams- und Hirschwürsteln
4 Rückrufaktionen von österr. Wildwürsten im Winter 2011/12
Hepatitis E
Krankheitsbild ähnlich Hep A
BRD: 15% der untersuchten
Wildschweine positiv
Risiko: nicht durchgegarte
Leber!
Symptome: Müdigkeit, Abgeschlagenheit, Kopfschmerzen, Appetitlosigkeit, Gewichtsverlust, Muskel- und Gelenkbeschwerden, Druckgefühl im Oberbauch, Gelbsucht, Dunkelfärbung des Urins, Hellfärbung des Stuhls)
Vorbeugemaßnahmen – Jäger
Einhaltung hygienischer Grundsätze
Trichinenuntersuchung
Keine „Rituale“
Handschuhe beim Aufbrechen
Anfeuchtes des Balges (Abbalgen)
Risiko Rohprodukte
Regelmäßiges Entwurmen von Hunden
Keine rohen Abfälle verfüttern
Reduktion Zeckenbefall
Sektion verdächtiger Tiere, Veränderungen abklären
Information über Risiken, Vorsorgeuntersuchung
Verstärkte Kooperation Human-/Veterinärmedizin
Keine Hysterie!
Bewusstsein für neue Erreger/Krankheiten muss
erhöht werden (Jäger, Tierhalter, TÄ, Behörden,
Untersuchungsstellen), Austausch von Daten
Zoonotisches Potential nicht vergessen
(75% aller neuen Krankheiten sind Zonosen!)
Gezielte Querschnittsuntersuchungen
Systematische Erfassung von Fällen (human/veterinär)
Beiträge zur Ökologie von Erregern, Vektoren und
Zwischenwirten; Einfluss des Klimawandels beachten
Zoonosen sind häufig Medienereignisse!?
Forderungen, Strategien Gute alte Zeit?
Besten Dank für ihre Aufmerksamkeit