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SUSCEPTIBILIDAD DE AEDES AEGYPTI (LINNAEUS, 1762) (DIPTERA, CULICIDAE) DE LA
PARROQUIA J.J.OSUNA, MUNICIPIO LIBERTADOR ESTADO MÉRIDA AL MALATION.
REPUBLICA BOLIVARIANA DE VENEZUELA MINISTERIO DEL PODER POPULAR PARA LA SALUD
INSTITUTO AUTÓNOMO DE ALTOS ESTUDIOS DR ARNOLDO GABALDÓN
AUTOR: Ing. LÓPEZ MARQUINA, PABLO EMILIO
Maracay, junio 2012
La reemergencia a nivel mundial de enfermedades transmitidas
por vectores, tal como la malaria, dengue, encefalitis y otras están
asociadas a múltiples factores de diversas índoles, desde
factores políticos y sociales hasta ambientales ( Delgado et al,
2003).
INTRODUCCIÓN
OMS
En América una de las principales arbovirosis que transmite el
vector Aedes aegypti (Linneaus 1762) es el dengue, que se
mantiene debido a las malas condiciones de vida que aún
persisten en estos países, y constituye una de las principales
causas de su auge, exponiendo a un alto número de personas al
riesgo de contraer esta patología (Rodríguez et al., 2004).
En Venezuela, el estado Trujillo ha sido una de las
entidades endémicas para protozoosis (malaria, leishmaniasis y
Enfermedad de Chagas) y arbovirosis como dengue en sus
manifestaciones clásicas y hemorrágicas, por lo que las
poblaciones vectoras de estas enfermedades fueron fuertemente
presionadas con diferentes grupos de insecticidas.
El uso continuo de insecticidas en el control del vector en el
estado Mérida, la gran heterogeneidad medioambiental en los
centros urbanos, así como el deficiente saneamiento ambiental
del ecosistema han podido provocar cambios en la presencia,
abundancia y en la sucesión de Ae. aegypti en este estado,
condicionado por factores que favorecen las continuas
reinfestaciones que en ocasiones alcanza valores sumamente
elevados en varios municipios del estado (Rojas, 2003).
OBJETIVOS DE LA INVESTIGACIÓN
Objetivo General
Conocer el comportamiento de poblaciones naturales de Aedes aegypti
en la Parroquia J.J. Osuna Rodríguez, Municipio Libertador del estado
Mérida, frente al insecticida malation
Objetivos Específicos
Determinar la susceptibilidad de cepas de Aedes aegypti de campo al
insecticida malation en comparación con una cepa susceptible referencial.
Determinar en cepas de campo experimentales el mecanismo de
resistencia a esterasas por método rápido.
Determinar en cepas de campo experimentales el mecanismo de
resistencia a esterasas por pruebas bioquímica método ELISA.
Evaluar la eficacia del malation en condiciones de campo.
TIPO DE ESTUDIO
Se realizará un estudio de tipo experimental, en condiciones controladas de
laboratorio a fin de evaluar la susceptibilidad al malation de cepas de Ae.
aegypti.
MATERIALES y MÉTODOS
Población y muestra.
La población de estudio estará conformada por mosquitos Aedes
aegypti de la parroquia J.J. Osuna del municipio Libertador del estado
Mérida,
•Parte alta 8°34'45.87"N–71°12'30.86"O.
•Parte media este 834'23.82"N-71°11'57.75"O
•Parte media Oeste 8°33'51.39"N-71°12'7.80"O y
•Parte baja de los curos 8°33'51.39"N-71°12'7.80“
Insecticida a evaluar
•Organofosforado malation al 98%, pureza grado técnico para pruebas
biologicas (bioensayos).
•Organofosforado malation al 94%, formulado comercial.
Datos tiempo-mortalidad de una cepa susceptible comparada con la cepa J.J.Osuna
ESTERASAS ALFA ESTERASAS BETA
20 individuos ˃ 1.30 18 individuos ˃ 1.30
76 individuos ˂ 1.30 78 individuos ˂ 1.30
Pruebas Bioquímicas en placas de microtitulación Elisa. Los resultados
determinados IN VITRO, de los mecanismos de resistencia basados en la
actividad incrementada de esterasas, corroboran la información obtenida en
las pruebas biológicas, ya que esto representa aproximadamente el 18% de
individuos que demostraron ser menos susceptibles.
Pruebas Bioquímicas
INDIVIDUO ALFA BETA
INDIVI-
DUOS ALFA
BET
A
INDIVI
DUOS ALFA BETA
INDIVI-
DUOS ALFA BETA INDIVIDUOS ALFA BETA
1 S S 21 S S 41 S S 61 R R 81 R R
2 S S 22 S S 42 S S 62 R R 82 S S
3 S S 23 S S 43 S S 63 S S 83 S S
4 S S 24 S S 44 R R 64 S S 84 S S
5 S S 25 R R 45 R R 65 S S 85 S S
6 S S 26 S S 46 R R 66 S S 86 S S
7 S S 27 S S 47 R R 67 S S 87 S S
8 R R 28 S S 48 R R 68 S S 88 S S
9 S S 29 S S 49 R R 69 S S 89 S S
10 S S 30 S S 50 R R 70 S S 90 S S
11 S S 31 S S 51 S S 71 S S 91 S S
12 S S 32 S S 52 S S 72 S S 92 S S
13 S S 33 S S 53 S S 73 S S 93 S S
14 S S 34 S S 54 S S 74 S S 94 S S
15 S S 35 S S 55 S S 75 S S 95 S S
16 S S 36 S S 56 S S 76 R R 96 S S
17 S S 37 S S 57 S S 77 S S 97 S S
18 S S 38 R R 58 S S 78 S S 98 S S
19 S S 39 S S 59 S S 79 S S 99 S S
20 R R 40 S S 60 S S 80 S S 100 S S
Pruebas bioquímicas (Papel Filtro).
%gotas<30µ/lámina
Num.de
láminas Muertos Expuestos %Letalidad
0-10 2 4 42 9,52
10-20 3 29 59 49,15
20-30 1 3 16 18,75
30-40 1 2 25 8,00
40-50 0 0 0 0
50-60 4 23 78 29,49
60-70 7 22 160 13,75
70-80 19 131 465 28,17
80-90 5 24 106 22,64
90-100 14 134 292 45,89
TOTALES 56 372 1243 29,93
Porcentajes de letalidad por %gotas<30 µ/lámina
INSECTOS CAÍDOS
% GOTAS < 30µ/ LÁMINA
Modelo de Regresión Lineal. Muertes/%gotas<30µ por lámina.
INS
EC
TO
S C
AÍD
OS
% GOTAS < 30µ/ LÁMINA
Muertes/%gotas<30µ por lámina.
DISCUSIÓN
El uso de insecticidas sigue siendo la estrategia de control más efectiva en la
lucha contra el dengue. Lamentablemente, el creciente desarrollo de resistencia a
insecticidas amenaza esta alternativa.
La combinación de datos biológicos y bioquímicos utilizada en este trabajo
permitió detectar niveles de resistencia de Ae. aegypti de la parroquia J.J.Osuna.
Los resultados obtenidos al evaluar la susceptibilidad al malation de Ae. aegypti
cepa J.J.Osuna, tanto en pruebas de campo como laboratorio y sometidos a sus
correspondientes análisis permiten confirmar que, muy probablemente, se está
en presencia de desarrollo de resistencia del vector en la localidad objeto de
estudio.
Los análisis matemáticos utilizados confirmaron plenamente los hallazgos de
laboratorio.
Aunado a lo anterior, se pudiera estar en presencia de una presión excesiva ejercida
sobre el vector, existiendo fallas procedimentales.
Estos resultados son comparables a los obtenidos por Molina y Figueroa (2009)
quienes confirmaron en su estudio que la resistencia a organofosforados detectada se
debe a la presión ejercida por los servicios de salud con insecticidas durante largos
periodos.
Teniendo en cuenta estos resultados se recomienda el monitoreo de la
susceptibilidad a los insecticidas piretroides, principalmente deltametrina y sobre
todo, en aquellos lugares donde todavía se continúa utilizando malation para el control
de Ae. Aegypti.
Particularmente en Venezuela, el uso prolongado de insecticidas ha
contribuido a la aparición de resistencia en las poblaciones de algunos
vectores, tal como Ae.aegypti, vector del dengue.
La correlación entre la actividad de las esterasas y la resistencia a los
compuestos organofosforados, está documentada en un gran número
de insectos.
En la pruebas bioquímicas (esterasas) reafirma lo hallado por otros
investigadores en cuanto a que el mecanismo de esterasas elevadas
está fuertemente involucrado en la resistencia a insecticidas.
CONCLUSIONES
El hallazgo de resistencia en casi un 20% de la población aédica
estudiada lleva a concluir que, muy posiblemente, esto se deba a la
excesiva presión que durante los últimos años se ha ejercido sobre el
vector tal como lo han corroborado otros estudios y, además, existen
otros factores inherentes a la práctica de la aplicación espacial del
insecticida.
El hallazgo de resistencia en casi un 20% de la población aédica
estudiada lleva a concluir que, muy posiblemente, esto se deba a la
excesiva presión que durante los últimos años se ha ejercido sobre el
vector
RECOMENDACIONES
Los resultados encontrados en la presente investigación sugieren la
vigilancia periódica de la resistencia de las poblaciones de Ae. aegypti del
municipio evaluado a este insecticida, a fin de conservar en las poblaciones
el carácter susceptible a este insecticida en virtud de que resultaron
resistentes al malatión.
implementar la rotación de insecticidas en forma sistemática a fin de
prevenir una posible resistencia cruzada entre insecticidas organofosforados.
Alertar a las autoridades sanitarias a convenir estrategias de control de
manejo integrado de enfermedades que beneficien el control del vector y no
afecten su susceptibilidad a insecticidas.
Eliminación de criaderos, campañas de educación para la salud, vigilancia
epidemiológica permanente son algunas de las estrategias a utilizar para así minimizar
el empleo de insecticida y con ello poder frenar el desarrollo potencial de resistencia
a insecticida por parte del vector.
Mientras no haya alternativas efectivas al uso del control químico, éste debe
enmarcarse en programas de control integrado, adaptándose a las condiciones
locales, con énfasis en la rotación de insecticidas, a fin de prevenir, retardar o revertir
el desarrollo futuro de resistencia en las poblaciones de insectos vectores.
elaboración de políticas de manejo y control, en la identificación del momento
oportuno y la forma correcta de realizar cambios, y la forma ideal de rotar los tipos de
insecticidas.
GRACIAS POR SU ATENCIÓN
Pablo Emilio
@PABLOEMILIO111
http://pablolopezsistemas.wixsite.com/misitio
