“Extracción de flavonoides del orujo y escobillón de uva (Vitis … · 2017-01-23 · Objetivo:...

UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE

SAN LUIS POTOSÍ

Facultad de Ingeniería

“Extracción de flavonoides del orujo y

escobillón de uva (Vitis vinífera)”

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Taller Integrador III

Asesor: M.C. Cecilia Y. Garibay Flores

Presenta: Dalila Pérez Castillo

AGENDA:

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* Introducción:

• La uva (Vitis vinífera) es una frutaobtenida de la vid, vienen en racimos yson pequeñas y dulces.

• Según su uso final se clasifican en dos

grandes grupos: las de mesa, que seconsumen frescas o como uvas pasas y,las viníferas, que se emplean para laelaboración del vino.

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• Los flavonoides contenidos en las uvas

son antioxidantes no enzimáticos querompen la cadena en la fase lipídicabloqueando los radicales libres evitandoo previniendo la peroxidacion lipídica.

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Antecedentes:

Universidad Autónoma de San Luis Potosí (2004)

Efecto cosmético positivo del extracto de semilla de uva en piel humana.

Universidad de Illinois (2002)

Componentes de las uvas inhiben enzima clave en la proliferación del cáncer

Universidad de Barcelona (2011)

Compuestos de la uva protegen de la radiación solar

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Justificación:

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Objetivo:

• Extraer y cuantificar los flavonoidespresentes en el orujo y escobillón de uva(Vitis vinífera) para adicionarlos a alimentosy productos de uso humano

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Orujo: Escobillón:

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Identificación de flavonoides por método de Folin

Ciocalteau y de Liu y cols.

Estudio y prueba de posibles opciones de micro

encapsulado y esferificación

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Cronograma de actividades:

FEBRERO MARZO ABRIL MAYO

Obtención de

extracto y

estimación de

concentraciones

Identificación de

flavonoides

Experimentación

para

esterificación

Observaciones y

conclusiones 13

Procedimientos:

1. Deshidratación de muestras:

Temperatura: 40°C

Tiempo: 10 - 12 hrs.

2. Molienda de muestras.

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Orujo

Escobillón

METODOLOGÍA:

3. Obtención del extracto por el

método soxhlet

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4. Determinación de flavonoides totales porel método de Liu y Col. (catequina):

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Preparación de 5 mL de muestra

Adición de 1.2mL agua destilada y

0.07mL NaNO2

Adición de 0.15 mL de AlCl3

Adición de 0.5 mL de NaOH y aforo

a 2.5mL con agua destilada

Medición de absorbancia a

510 nm

5. Determinación de polifenoles totales por el

método de Folin- Ciocalteau:

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Preparación de 0.5 mL de muestra

Adición de 0.75 mL de reactivo

Folin-Ciocalteau

Adición de 0.75 mL de

carbonato de sodio 20%

Reposo por 90 min a

temperatura ambiente

Medición de absorbancia a

760 nm

Diseño experimental:

• Para los resultados de la cuantificación de flavonoidestotales se utilizará un análisis de varianza considerando undiseño experimental completamente basal, ya que semanipulan variables independientes sobre una variabledependiente en situaciones de control.

• Dichas situaciones de control son:

* Temperatura de secado: 40ºC

* Tiempo de secado: 10 – 12 hrs. 18

Variables independientes

o Orujo de uva

o Escobillón de uva

• Variable dependientes:

o Concentración de flavonoides.

• La selección de las muestras para ser procesadas se

realiza de manera aleatoria

• Se aplicará una prueba Anova al ser 30 muestras para

análisis.19

Resultados:

• Para hacer posible la cuantificación de poli fenoles contenidos en las muestras, fue necesario tomar en primera instancia la densidad de los tres extractos.

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Muestra Orujo Escobillón Mixta

Densidad

g/ml 0.947 0.922 0.938

Cuadro 1: Densidad de extractos

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Método de Liu y Col.:

Cuadro 2: Concentración de catequina

PROMEDIOS

Orujo Escobillón Mixta

Absorbancia 3.84 3.804 3.93

Mg cat. / ml

extracto

144.14 142.78 147.52

Mg cat. / g extracto 136.50 131.64 138.38

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Método de Folin - Ciocalteau

Cuadro 3. Concentración de ácido gálico

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PROMEDIOS

Orujo Escobillón Mixta

Absorbancia 3.732 3.729 3.882

Mg ag. / ml

extracto

61.47 61.42 63.94

Mg ag. / g extracto 58.21 56.63 59.98

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Discusión de resultados:

• Si comparamos nuestros resultadoscon datos ya existentes de contenidode flavonoides en otros frutos,tenemos que:

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CUADRO 4: CONCENTRACIÓN DE FLAVONOIDES EN DIFERENTES FRUTOS.

FRUTO FLAVONOIDES

(mg/g peso)

Zarzamora 2.56

Arándano 3.60

Fresa 0.80

Ext. Mixto (Liu y col) 138.38

Ext. Mixto (Folin) 59.98

• Los resultados que tenemos sobre la cuantificaciónde poli fenoles son de todos los tipos que se puedenencontrar, incluyendo antocianos, taninos,catequina, ácido gálico, resveratrol, etc.

• La técnica que utilizamos cuantifica polifenolestotales sin hacer distinción del tipo de polifenoles,esa es la razón de tener valores muy altos.

• Para realizar una caracterización de los polifenoles

se deben recurrir a técnicas como la cromatografíalíquida (Hplc).

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Prueba de esferificación:

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29La duración de las esferas esta reportada como 1.5 meses.

La liofilización y el secado por lecho fluidizado (por espuma) por años.

Muestra

Ml gastados/ 100

esferas formadas

Orujo 8.2 ml

Escobillón 8.1

Mixta 9.4 30

De un volumen inicial de 50 ml, después de 100

gotas de Alginato en la solución, obtenemos

que:

Conclusiones:

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Referencias:

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