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UNIVERSIDAD ESTATAL DEL SUR DE MANABÍ
FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES Y DE LA
AGRICULTURA
CARRERA DE INGENIERIA FORESTAL
TRABAJO DE TITULACION
MODALIDAD – PROYECTO DE INVESTIGACION
Título
Evaluación del comportamiento de las especies Swietenia macrophylla
Fisher y Triplaris cumingiana Meyer con tres dosis de fertilizantes
Autor: Stalin Jhoan Cedeño Mera
Agosto 2018
Jipijapa – Manabí – Ecuador
i
UNIVERSIDAD ESTATAL DEL SUR DE MANABÍ
FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES Y DE LA
AGRICULTURA
CARRERA DE INGENIERIA FORESTAL
TRABAJO DE TITULACION
MODALIDAD – PROYECTO DE INVESTIGACION
Título
Evaluación del comportamiento de las especies Swietenia macrophylla
y Triplaris cumingiana con tres dosis de fertilizantes
Autor: Stalin Jhoan Cedeño Mera
TUTOR
Ing. Sofía Ivonny Castro Ponce Mg. Sc.
Septiembre 2018
Jipijapa – Manabí – Ecuador
ii
iii
D
E
D
I
C
A
T
O
R
I
A
Este proyecto de investigación está dedicado a:
A mí querida madre Lcda. Grey María Mera quien me apoyo incondicionalmente en los
momentos más difíciles durante mis años de estudios y fue la persona que me incentivo
a seguir adelante hasta conseguir la meta propuesta que es lograr el título profesional.
iv
A mi abuelita Nilda Solórzano y a mi tío Ing. Carlos Anchundia quienes estuvieron
apoyándome moralmente en este trajinar durante mis años de estudio.
A mi novia Andrea Martínez Alcívar quien me ha apoyado moralmente durante mis
últimos años de estudios y quien me ha incentivado a seguir adelante hasta lograr mi
objetivo.
Stalin Jhoan Cedeño Mera
Reconocimiento
El presente trabajo de investigación está dedicado a las siguientes instituciones y a las
personas que colaboraron de una u otra manera en el desarrollo y ejecución de este
proyecto de investigación.
v
A mí querida Universidad Estatal del Sur de Manabí quien me acogió durante estos
años de estudios en donde logre conseguir mi meta propuesta.
A la Carrera de Ingeniería Forestal quien me brindo sus conocimientos científicos a
través de sus docentes.
A los docentes de la Carrera de Ingeniería Forestal que con sus consejos y apoyos
supieron guiarme por el buen camino hasta alcanzar mi meta.
Y a todas las personas y amigos que contribuyeron de una u otra manera en hacer
posible que alcanzara el objetivo propuesto.
Stalin Jhoan Cedeño Mera
Índice de contenidos
vi
I. INTRODUCCION……………………………………………………… 1
I. Introducción…………………………………………………. 2
II. Objetivos…………………………………………………….. 32.1. Objetivos General…………………………………………………….... 3
2.2. Objetivo Específicos…………………………………………………… 3
III. Marco Referencial…………………………………………… 43.1. Biofertilizantes………………………………………………………….. 4
3.2. Tipos y modo de acción de biofertilizantes……………………………... 4
3.3. Producción de biofertilizantes…………………………………………... 4
3.4. Solubilización de fuentes de fósforo asociada a compuestos
Orgánicos con biofertilizantes…………………………………………… 5
3.5. Caracterización y selección de bacterias y hongos micorricios
para la elaboración de fertilizantes………………………………………. 5
3.6. Biofertilizantes de origen de Azospirillum y micorrizas en especies……. 6
3.7. Estimulación de crecimiento en plántulas en vivero por hongos
Ectomicorricico y saprobio como biofertilizantes……………………….. 7
3.8. Efectos de los fertilizantes en los cultivos forestales…………………….. 7
3.9. Microorganismo rizosfericos en la germinación y crecimiento
de las especies forestales…………………………………………………. 8
3.10. Biofertilizantes…………………………………………………………… 8
3.11. Caracterización física y química de los biofertilizantes…………………. 9
3.12. Microrganismos benéficos en los biofertilizantes eficientes…………….. 9
3.13. Biofertilizantes en agricultura forestal…………………………………… 9
3.14. Ventajas de su uso………………………………………………………... 10
3.15. Crecimiento en viveros de las especies forestales y sustratos……………. 10
3.16. Pre germinación de semillas forestales……………………………………10
3.17. Caoba……………………………………………………………………... 11
3.18. Fernán Sánchez…………………………………………………………… 11
vii
IV. Materiales y métodos………………………………………… 134.1. Materiales……………………………………………………………..... 13
4.2. Métodos………………………………………………………………… 14
4.3. Ubicación geográfica…………………………………………………… 14
4.4. Diseño experimental……………………………………………………. 14
4.5. Tipo de estudio…………………………………………………………. 14
4.6. Factores en estudio……………………………………………………… 14
4.7. Análisis de Variación…………………………………………………… 15
4.8. Metodología de toma de datos………………………………………….. 15
4.9. Porcentaje de germinación (%)……………………………………….. 15
4.10. Altura de planta a los 30-60-90 días (cm)……………………………… 15
4.11. Diámetro de tallo 30-60-90 días (cm)………………………………….. 16
4.12. Proceso metodológico de la investigación……………………………... 16
4.13. Observación……………………………………………………………. 16
4.14. Analítico………………………………………………………………... 16
4.15. Estadístico………………………………………………………………. 16
4.16. Concentraciones de biofertilizantes……………………………………. 17
4.17. Tratamiento realizado a las plantas que fueron utilizadas……………… 17
4.18. Preparación de sustratos………………………………………………... 17
4.19. Siembra de semillas…………………………………………………….. 17
V. Resultados……………………………………………………. 185.1. Porcentaje de germinación (%)………………………………………… 18
5.2. Altura de planta a los 30-60 y 90 días (cm)……………………………… 18
5.3. Diámetro del tallo a los 30-60 y 90 días (cm)……………………………. 29
5.4. Número de hojas por planta a los 30-60 y 90 días (cm)………………….. 29
VI. Discusión……………………………………………………… 30
VII. Conclusiones………………………………………………….. 32VIII. Recomendaciones………………………………………………………... 33
IX. Bibliografía………………………………………………………………. 34
X. Anexos…………………………………………………………………… 38
viii
INDICE DE TABLAS
Tabla 1. Análisis de Varianza…………………………………………………………. 17
Tabla 2. Valores promedio de porcentaje de supervivencia, altura de planta (cm), Diámetro del tallo (cm) 30-60 y 90 días en el ensayo "Evaluación del efecto de un biofertilizante en la especie de caoba (Swietenia macrophylla) y Fernán Sánchez (Triplaris cumingiana). Cantón Portoviejo. 2018………………………………………………………...………………… 20
Tabla 3. Porcentaje de germinación (%)………………………………………………. 21
Tabla 4. Altura de planta a los 30 días (cm)…………………………………………….. 22
Tabla 5. Altura de planta a los 60 días (cm)…………………………………………….. 24
Tabla 6. Altura de planta a los 90 días (cm)…………………………………………….. 25
Tabla 7. Diámetro de tallo a los 30 días (cm)…………………………………………… 26
Tabla 8. Diámetro de tallo a los 60 días (cm)……………………………………………. 27
Tabla 9. Diámetro de tallo a los 90 días (cm)…………………………………………….. 28
ix
Índice de figuras
Foto 1. Evidencia de elaboración de substratos………………………………………. 41
Foto 2. Elaboración de semilleros en bandejas de germinación……………………… 41 Foto 3. Plántulas de caoba……………………………………………………………. 42
Foto 4. Plántulas de Fernán Sánchez…………………………………………………. 42
Foto. 5. Plántulas de Fernán Sánchez…………………………………………………. 43
Foto. 6. Plántulas de caoba……………………………………………………………. 43
Foto 7. Toma de datos en caoba y Fernán Sánchez en vivero………………………… 43
Foto 8. Área del ensayo en caoba y Fernán Sánchez en vivero……………………….. 44
x
Resumen
El objetivo de la investigación fue evaluar el efecto de un biofertilizante en la especie
Swietenia macrophylla y Triplaris cumingiana, dada la aplicación inadecuada de
fertilizantes químicos que está incidiendo en los bajos rendimientos ofrecidos en estas
especies forestales. Para ello, en esta investigación se utilizaron dosis de 200, 300 y
400 ml en 5 lt de agua de sustrato orgánico tratado con microrganismos eficientes de
captación sanitaria del cantón Manta y el ensayo se realizó desde abril a julio del 2018,
ubicado en el Cantón Portoviejo en la vía a Crucita en el paso lateral y para ello se
empleó un diseño experimental de Bloques al Azar con arreglo factorial 2 x 4, con tres
repeticiones, logrando un total de 24 unidades experimentales, donde el cultivar caoba
(S. macrophylla) registró el mayor porcentaje de germinación en la etapa de semillero
con el 90,95% que probablemente estuvo supeditado a sus características agronómicas
definidas de esta especie maderable que con respecto al porcentaje de germinación lo
produjo el cultivar S. macrophylla que registró el mayor índice de germinación en la
etapa de semillero con el 90,95% y en la altura de planta a los 30 y 60 días (cm), la
misma especie reportó el mayor valor con 8,19 cm; 18,73 cm y 28,73 cm y en la
aplicación de las dosis del sustrato de biofertilizantes se pudo establecer que a los 60
con la dosis de 200 ml y 300 ml en cinco lt de agua la mayor altura de planta con 13,89
cm y 13,59 cm en ese orden respectivo. Asì mismo al interaccionarse los valores en la
misma variable altura de planta el tratamiento S. macrophylla con 200 ml en 5 lt de
agua presentó el mayor valor con 8,41 cm a los 30 días y 19,37 cm a los 60 días.
Mientras que el diámetro de tallo reportó a los 60 días un diámetro de tallos de 0,40
cm y a los 90 días con 0,70 cm para (S. macrophylla).
Palabras Claves: Biofertilizante -Especie Swietenia macrophylla y Triplaris
cumingiana Fisher y Meyer.
xi
Summary
The objective of the research was to evaluate the effect of a Biofertilizer in the species
Swietenia macrophylla and Triplaris cumingiana, given the inadequate application of
chemical fertilizers that is affecting the low yields offered in these forest species. For
this, in this research doses of 200, 300 and 400 ml were used in 5 lt of water of organic
substrate treated with efficient microorganisms of sanitary catchment of the Manta
canton and the test was carried out from April to July 2018, located in the Canton
Portoviejo on the road to Crucita in the lateral step and for this an experimental design
of Random Blocks with factorial arrangement 2 x 4 was used, with three repetitions,
achieving a total of 24 experimental units, where the cultivar mahogany (S.
macrophylla) recorded the highest percentage of germination in the seedling stage with
90,95% that was probably subject to its defined agronomic characteristics of this timber
species which, with respect to the percentage of germination, was produced by the
cultivar S. macrophylla, which recorded the highest rate of germination in the seedling
stage with 90,95% and in the plant height at 30 and 60 days (cm), the same species
reported the highest value with 8,19 cm; 18,73 cm and 28,73 cm and in the application
of the doses of the substrate of biofertilizantes it was possible to establish that to the 60
with the dose of 200 ml and 300 ml in five lt of water the greater height of plant with
13,89 cm and 13,59 cm in that order. Likewise, as the values in the same plant height
variable interacted, the S. macrophylla treatment with 200 ml in 5 lt of water presented
the highest value with 8, 41 cm at 30 days and 19,37 cm at 60 days. While the stem
diameter reported at 60 days stems diameter of 0,40 cm and at 90 days with 0,70 cm for
(S. macrophylla).
Key Words: Biofertilizer - Species of Swietenia macrophylla and Triplaris cumingiana
Fisher and Meyer.
xii
1
I. Introducción
Producción de biofertilizantes en este contexto, sostiene Avellán (2015), que
dada la producción de productos de origen orgánico en países desarrollados con
métodos de siembra tecnificados, y más que todo en lo relacionado a la preparación de
sustratos para la siembra de especies forestales de valor comercial y económico, se
incluyen a las micorrizas, las cuales contienen hongos del tipo Rhizobium,
Azospirillum, Azotobacter, Bacillus, Pseudomona y de biocontrol como las
Trichoderma. Sin embargo, declara (Guevara, 2013) que estos productos a nivel de país,
son concentrados a base de microorganismos eficientes, que tienen como propósito, al
ser aplicados al suelo cerca de la planta, logrando sustituir en forma parcial a los
fertilizantes químicos, beneficiando la microflora del suelo y evitar la contaminación
generadas por productos sintéticos, de acuerdo a Bashan (2014).
La investigación tuvo como objetivo evaluar el efecto de un biofertilizante en
las especies Swietenia macrophylla y Triplaris cumingiana, en dosis de 200, 300 y 400
ml en 5 lt de agua de sustrato orgánico tratado con microrganismos eficientes de
captación sanitaria del cantón Manta y el ensayo se instaló en el Cantón Portoviejo y
para ello se empleó un diseño experimental de Bloques al Azar con arreglo factorial 2 x
4, con tres repeticiones, logrando un total de 24 unidades, debido a la falta de
divulgación y por prácticas de sus efectos beneficiosos para el suelo, cultivos y el
medio ambiente, los cuales pueden llegar al uso mínimo de fertilizantes convencionales
de origen químico que son utilizados en forma exagerada en sus aplicaciones y en esta
investigación el mayor porcentaje de germinación lo produjo el cultivar S. macrophylla
que registró el mayor índice de germinación en la etapa de semillero con el 90,95%. En
la altura de planta a los 30 y 60 días (cm), la misma especie reportó el mayor valor con
8,19 cm; 18,73 cm y 28,73 cm y en la aplicación de las dosis del sustrato de
biofertilizantes se pudo establecer que a los 60 con la dosis de 200 ml y 300 ml en
cinco lt de agua la mayor altura de planta con 13,89 cm y 13,59 cm en ese orden
respectivo y al interaccionarse en la misma variable altura de planta el tratamiento S.
macrophylla con 200 ml en 5 lt de agua presentó el mayor valor con 8,41 cm a los 30
días y 19,37 cm a los 60 días. Mientras que el diámetro de tallo reportó a los 60 días
un diámetro de tallos de 0,40 cm y a los 90 días con 0,70 cm para (S. macrophylla).
2
Lo que conllevó a que exista una adecuada absorción de nutrientes por parte de las
plantas, registrando rendimientos bajos acorde a la actividad agrícola, señala
(Vizacarra, 2014).
Por su parte, afirma Cuenca, (2013), que los agricultores están proponiendo
novedosas alternativas en la producción agrícola, que les ha permitido mantener la
sostenibilidad en cultivos varios. Registró el mayor índice de supervivencia en la etapa
de semillero con el 90,95% que probablemente estuvo supeditado a sus características
agronómicas definidas a las especies maderables.
3
II. Objetivos
2.1. Objetivos General
Evaluar el efecto de un Biofertilizante en las especies Swietenia macrophylla y
Triplaris cumingiana
2.2. Objetivo Específicos
Determinar el porcentaje de germinación a la aplicación de tres dosis de
biofertilizantes de 200 ml, 300 ml y 400 ml en las Swietenia macrophylla y Triplaris
cumingiana
Analizar los efectos de las variables aplicación de biofertilizantes en tres dosis
en las especies Swietenia macrophylla y Triplaris cumingiana, en la etapa de vivero
2.3. Variables
2.3.1. Variable independiente
Germinación
Crecimiento
2.3.2. Variable dependiente
Dosis 200 ml
Dosis 300 ml
Dosis 400 ml
4
III. Marco Referencial
3.1. Biofertilizantes
Según Gupta (2012), afirma que la existencia de ciertas bacterias, pueden
producir acciones beneficiosas en el suelo, entre ellas el Bacillus subtilis, la cual
produce hormonas naturales, como las auxinas, citoquininas y giberelinas, las cuales se
encargan de promover el crecimiento de la planta e inciden en su resistencia con
enfermedades.
3.2. Tipos y modo de acción de biofertilizantes
Según lo expresado por Barbera (2014), el componente principal son las
micorrizas las cuales fueron creadas por Albert Bernard Frank en el año de 1885, que
tiene el significado de hongo raíz, existiendo una asociación simbiótica entre el micelio
del hongo y las raíces del vegetal hospedante. Por ello lo indica (Suárez, 2015), que
entre los medios en el cual la micorriza puede mejorar el nivel nutricional de las plantas
por efecto del mejoramiento del suelo, está en el aumento de volumen radicular, por el
accionar de la hifas de hongo que interaccionan en lo que es una mejor asimilación del
agua y nutrientes mayores (nitrógeno, fósforo, potasio y calcio).
Entre tanto Barbera (2014), manifiesta que dado el tipo de estructura de suelo, se
mantienen unidos sus agregados, por el accionar del micelio de las micorrizas y la
secreción continua de glomalinas, por ella son utilizadas en proyectos de agricultura
sostenible. Donde (Tejada, 2013), enumera al género trichoderma como un habitante en
el área rizosfera, donde dado su mecanismo de acción permite una adecuada nutrición a
la planta de reguladores de crecimiento, solubilización y absorción adecuada de fósforo,
cobre, hierro, zinc y manganeso, no permitiendo cierto accionar de hongos en contra de
las plantas.
Las bacterias encargadas de este accionar, se presentan en una amplia variedad
de microorganismos del suelo, las cuales debido a su asociación simbiótica crecen en
forma adecuada con las plantas, estimulando su crecimiento, permitiendo acciones
fisiológicas tales como:
Fijación permanente de nitratos y nitritos
5
Producción y suministro acorde a los requerimientos de la planta de vitaminas y
hormonas naturales.
Aumento de disponibilidad de nutrientes en la rizosfera
Incremento del área de contorno superficial de la raíz
Control de presencia de microorganismos patógenos (Aguirre, 2014)
Por su parte Rovira (2012), indica que cuantificando a esta hormona, permite a
la planta un desarrollo favorable, debido a que tiene la facultad de tener una mayor
absorción de nutrientes.
3.3. Producción de biofertilizantes
En este contexto, sostiene Avellán (2015), que dada la producción de
productos de origen orgánico en países desarrollados con métodos de siembra
tecnificados, y más que todo en lo relacionado a la preparación de sustratos para la
siembra de especies forestales de valor comercial y económico, se incluyen a las
micorrizas, las cuales contienen hongos del tipo Rhizobium, Azospirillum, Azotobacter,
Bacillus, Pseudomona y de biocontrol como las Trichoderma. Las cuales son
inoculantes que no ocasiona perjuicio a las plantas. Sin embargo declara (Guevara,
2013), que estos deben ser manejados con precaución y en dosis adecuadas, lo cual hace
que su uso sea restringido, ya que debe llevarse un control técnico, debido a que puede
existir renuencia por parte de estos microorganismos que actúan en contra perjudicial en
las plantas e incluso en los humanos, expone (Bardon, 2013). Por ello es evidente que
programas de forestación o en actividades dedicadas a la siembra de especies
maderables se debe tener un control adecuado del uso de inoculantes, con la finalidad
de obtener troncos de mayor diámetro, dureza y la coloración deseada, que incide en el
precio según la especie maderable, indica (Lynch, 2012).
3.4. Solubilización de fuentes de fósforo asociada a compuestos orgánicos con
biofertilizantes.
En un estudio realizado por (Rosatto, 2014) sobre él, enriquecimiento de un
producto orgánico con microorganismos, tales como bacterias solubulizadoras de
fósforo, con la finalidad de mejorar las propiedades del suelo para tener una mayor
disponibilidad de asimilación de nutrientes, en el cual se emplearon productos
6
provenientes del fósforo, entre ellos roca fosfatada, fosfato natural, superfosfato triple y
fosforita cuba con dos fuentes de biofertilizantes, donde las verificaciones fueron
realizadas a los 30-60-90 días, los resultados mostraron que a los 90 días se vio un
incremento en la presencia de microorganismos dado su alto contenido de fósforo que
promovió la presencia de microorganismos solubilizadores.
3.5. Caracterización y selección de bacterias y hongos micorricios para la
elaboración de fertilizantes.
En este contexto señala Quirós (2014), en un ensayo realizado en especies
hortícolas, entre ellos pimiento y frejol, cultivos de importancia económica, donde los
resultados mostraron que, el empleó de microorganismos rizosfericos, como hongos
micorrizas y bacterias promotoras de crecimiento, solas o inoculadas mostraron su
efectividad en la nutrición de ambas especies, las cuales requieren un alto contenido de
aplicación de agroquímicos, entre ellos la alta fijación de nitrógeno, fosfato
solubilizado, producción de sideróforos, hormona auxina, etileno, las cuales lograron
que en ambos cultivares exista una respuesta agronómica, tanto a nivel de arquitectura
de planta como niveles de producción, donde se pudo establecer que las bacterias de
tipo endofitica, siamensis; hongo mossae, los cuales controlaron la presencia de
patógenos del suelo y las plantas se presentaron saludables.
3.6. Biofertilizantes de origen de Azospirillum y micorrizas en especies
forestales.
En la aplicación de alternativas realizadas por Sosa (2013), sobre el accionar de
los biofertilizantes a nivel de vivero en especies forestales, en matanzas, se mostró un
acción favorable en cuanto a crecimiento y nivel de supervivencia, en edad de 30 a 60
días en el cultivo de caoba (Swietenia macrophylla King). Por su parte (Zorrilla, 2013),
sostiene que la aplicación de micorrizas en especies maderables a nivel de vivero, en
cultivos maderables han mostrado un efecto benéfico en la planta en la etapa de
semillero a vivero, dado dice (Forty, 2014), por el accionar de hongos del tipo
Azospirillum, el cual ha mejorado el incremento en el número de hojas y contextura del
tallo. En este mismo contexto sostiene (Audrey, 2014), que dado este accionar y por la
presencia de hormonas naturales se estable que el crecimiento con la aplicación de
biofertilizantes su crecimiento es elevado y al mismo tiempo existe un mayor
7
engrosamiento del tallo y lo microflora del suelo se incrementa existiendo una simbiosis
acorde a las necesidades de ambos componentes.
3.7. Estimulación de crecimiento en plántulas en vivero por hongos
ectomicorricico y saprobio como biofertilizantes.
De acuerdo a Gavilla (2015), en sus investigaciones en la preparación y
crecimiento de viveros forestales, los substratos se utilizan componentes como los
hongos sagofitos y micorrizas y por su accionar simbiótico estimula el crecimiento de
las especies forestales. En tanto que (Cadena, 2014), expresa, que la utilización de
hongos ectomicorrizales y saprofitos, gracias a su efectividad como inoculantes
biológicos, que se preparan con estos hongos de tipo Suillis luteus y Rhizopogon
luteolus y juntos a hongos de clase Coriolopsia rigida y Trichoderma harzianum los
combinados con biofertilizantes inciden en el crecimiento de las plantas a nivel de
vivero en especies forestales y por lo general su efecto se empieza a ver a partir de los
30-60 y 90 días, más que todo en las variables morfológicas de las plantas, por ello se
presenta como una alternativa viable en la producción de especies maderables.
Mientras que Pereira (2014), sostiene que la aplicación de tecnología orgánica a
nivel de substratos en especies forestales proporciona un adecuado sistema radicular y
un adecuado diámetro y crecimiento de planta hasta su sitio definitivo. Por su parte
(Barreto, 2012) , manifiesta que una adecuada proporción y mezcla es el éxito para una
plantación forestal que verá manifestada en adecuadas características agronómicas de la
planta. Sin embargo enumera (Reyes, 2012), que dada las condiciones exigente de
cultivos forestales, por su larga existencia, necesita reforzar su sistema radicular, por
ello las primera fases de semillero y vivero, se las considera fundamental.
En tanto que Díaz (2013), manifiesta, la utilización de biofertilizantes, debe
tener la asesoría de un profesional en las actividades forestales, debido a la falta de
divulgación y por prácticas de sus efectos beneficiosos para el suelo, cultivos y el
medio ambiente, los cuales pueden llegar al uso mínimo de fertilizantes convencionales
de origen químico que son utilizados en forma exagerada en sus aplicaciones
provocando efectos quelantes.
8
3.8. Efectos de los fertilizantes en los cultivos forestales.
Para Murillo (2012), la aplicación de estos productos tiene un efecto beneficioso
en sus cualidades morfológicas, dado el accionar de los fertilizantes orgánicos por los
efectos microbianos que provoca en el suelo y por la actividad simbiótica que ocasiona
en la rizosfera de la planta. Pero estos productos dice (Ortega, 2014), trata varios
tópicos más que todo en lo relacionado a su arquitectura de planta, que se muestra en un
adecuado impacto en su crecimiento. Por lo tanto, se requiere una mayor vinculación
entre la industria y los científicos con el fin de colaborar en mejorar los sistemas de
producción y calidad de los biofertilizantes. Además, es indispensable contar con
asesoría, orientación y capacitación sobre su uso a los productores agrícolas.
3.9. Microorganismo rizosfericos en la germinación y crecimiento de las
especies forestales.
Mientras que Acuña, (2010), señala que, desde hace décadas, se han
desarrollado numerosos estudios para incorporar las Rizobacterias promotoras del
crecimiento vegetal en la producción agrícola. No obstante existe poca información
sobre estudios de rizobacterias promotoras de crecimiento vegetal en especies
forestales, especialmente del bosque seco tropical.
También Ortuño (2016) que el éxito de una planificación forestal,
independientemente del objetivo, inicia con la selección de semillas de calidad y la
producción de plántulas de calidad a nivel de vivero, calidad que no depende
únicamente en las propiedades genéticas de las semillas sino también de las propiedades
de los sustratos porque es en este medio en el cual la plántula desarrollará sus primeros
estadios de vida.
El suelo dice Aguirre (2014), es el medio de crecimiento de las plántulas por
naturaleza e históricamente ha sido el material más utilizado en los viveros, por
diversos factores tales como: su disponibilidad, costo, fácil obtención, entre otros. Sin
embargo no necesariamente sea el material más indicado para la producción de
plántulas en vivero. Por tanto, el conocimiento de las propiedades de otros sustratos
diferentes al suelo es de suma importancia (Aray, 2012).
9
Si la disponibilidad de agua es baja, la planta encuentra dificultades para su
adecuada nutrición hídrica afectando su desarrollo (Aguirre, 2014). La densidad real
tiene un interés relativo, su valor varía según la materia de que se trate y suele oscilar
entre 2,5-3 para la mayoría de los sustratos de origen mineral; mientras que la densidad
aparente indica indirectamente la porosidad del sustrato y su facilidad de transporte y
manejo, los valores se prefieren bajos (0,7-0,1) y que garanticen una cierta consistencia
de la estructura.
3.10. Biofertilizantes
Los biofertilizantes son súper abonos líquidos con mucha energía equilibrada y
en armonía mineral, preparados a base de posta a de vaca muy fresca, disuelta en agua y
enriquecida con leche, melaza y ceniza, que se ha colocado a fermentar por varios días
en toneles o tanques de plástico, dice (Aguirre, 2014). Funcionan principalmente al
interior de las plantas, activando el fortalecimiento del equilibrio nutricional como un
mecanismo de defensa de las mismas, a través de los ácidos orgánicos, las hormonas de
crecimiento, antibióticos, vitaminas, minerales, enzimas y coenzimas, carbohidratos,
aminoácidos y azúcares complejas, entre otros, presentes en la complejidad de las
relaciones biológicas, químicas, físicas y energéticas que se establecen entre las plantas
y la vida del suelo, afirma (Guevara, 2013).
3.11. Caracterización física y química de los biofertilizantes
El conocimiento de las propiedades de los biofertilizantes Aguirre (2014) como
medios de crecimiento es importante para la toma de decisiones, pero no es suficiente
para determinar un sustrato ideal. Aunque en realidad Barbera (2014), dice que el
sustrato ideal quizá no exista, únicamente se puede conocer el sustrato adecuado porque
va a depender de muchos factores: tipo de planta, fase del proceso productivo en el que
se interviene (semillado, estaquillado, crecimiento, etc.), condiciones climatológicas, y
el manejo del sustrato.
El compostaje dice Amaguaña (2013), que consiste en la descomposición física
y química de materiales que liberan nutrientes disponibles para las plantas. Agentes
microorganismos, indica (Acosta, 2013), tales como hongos y bacterias digieren los
materiales durante el proceso de descomposición. Cualquier material orgánico se puede
10
compostar, una mezcla de material puede ser mejor. En el caso del lombricompuesto es
un producto natural obtenido a través de la acción digestiva de la Lombriz Roja
Californiana sobre sustancias orgánicas de animales, previamente seleccionados y
acondicionados (Gupta, 2012), el lombricompuesto se utiliza como fertilizante
orgánico, enmienda orgánica y sustratos para plantas.
3.12. Microrganismos benéficos en los biofertilizantes eficientes
En el uso y manejo de biofertilizantes en la agricultura, expresa (Bardon, 2013)
uno de los principales problemas es el desconocimiento de las especies presentes en los
agroecosistemas y en la rizosfera de los cultivos, para su posible utilización eficiente.
Desde el punto de vista ecológico dice (Audrey, 2014), que es importante conocer los
integrantes de la comunidad bacteriana que favorecen su aplicación como inoculantes y
propician un efecto agro biológico positivo en los cultivos agrícolas.
3.13. Biofertilizantes en agricultura forestal
Señala Suárez (2015), que son insumos formulados con uno o varios
microorganismos benéficos (hongos y bacterias principalmente), los cuales aumentan la
disponibilidad de nutrientes para las plantas. Estos biofertilizantes, manifiesta (Ayala,
2014) pueden presentar grandes ventajas como una producción a menor costo,
protección del ambiente y aumento de la fertilidad y biodiversidad del suelo.
Los biofertilizantes, afirma Rovira (2012), que se usan abundantemente en
agricultura orgánica, sin embargo, es factible y ampliamente recomendable aplicarlos
de manera integral en cultivos intensivos en el sistema tradicional. Por su uso, los
biofertilizantes se podrían dividir fijadores de nitrógeno, solubilizadores de fósforo,
captadores de fósforo y promotores del crecimiento vegetal. A continuación se
mencionan algunos detalles y ejemplos de cada grupo.
Para Díaz (2013), los fijadores de nitrógeno, que son bacterias se desarrollan de
forma natural en el suelo, representan un biofertilizantes ecológico y se dividen en
simbióticas, señala (Aguirre, 2014), como Rhizobium, específicas de las leguminosas y
las libres, que viven en el suelo y no necesitan a la planta para su reproducción,
como Azotobacter y Azospirillum.
11
3.14. Ventajas de su uso
Estos insumos formulados con uno o varios microorganismos, señala, (Avellán,
2015), los cuales, de una forma u otra, proveen o mejoran la disponibilidad de
nutrientes cuando se aplican a los cultivos.
Permiten una producción a bajo costo
Enriquecimiento con materia orgánica para mejorar la textura y otras
características relacionadas con ella.
Regulación de las condiciones de nutrición, alcalinidad y salinidad
Regulación de las condiciones biológicas para limitar la aparición de plagas y
enfermedades en el suelo.
Protección del medio ambiente
Mantienen la conservación del suelo desde el punto de vista de fertilidad y
biodiversidad. (Acuña, 2010)
3.15. Crecimiento en viveros de las especies forestales y sustratos
Los suelos franco arenosos o francos son ingredientes buenos para la
preparación de mezclas con suelo señala (Artieri, 2014). Los francos tienen las
características físicas deseables de las arcillas y las arenas sin mostrar las propiedades
indeseables de soltura extrema, baja fertilidad, y baja retención de humedad por un
lado, y adherencia, compactación, drenaje y movimiento lento del aire por el otro
Zorrilla (2013).
Puesto que los problemas que envuelven el drenaje y la aireación son acentuados
cuando el suelo es colocado en un recipiente, el franco o el franco arenosos son
preferidos al franco limoso o arcilloso (Rodriguez, 2013).
3.16. Pre germinación de semillas forestales
Para garantizar una producción de plántulas de calidad, es necesario contar con
material genético de buena calidad. Es ahí la importancia de las semillas certificadas.
En Guatemala, la institución encargada de regir la calidad de las semillas, dice (Aray,
2012), De hecho, para que un plan de reforestación sea aprobado e incluido en el
Programa de Incentivos Forestales se debe utilizar semillas certificadas, sostiene Ayala
12
(2014). Pero existen algunas prácticas antes del establecimiento de un vivero en
relación a las semillas, por ejemplo, el tratamiento pre germinativo, el cual tiene como
propósito romper la dormancia de la semilla y obtener una germinación uniforme
(Bardon, 2013).
El Cedro y la Caoba Antillana no requieren tratamiento, afirma Audrey (2014) y
la dinámica de crecimiento de las posturas obtenidas de semillas pre germinadas con
agua residual, que se manifiesta en un incremento de la altura y el diámetro, (Mesa,
2013).
3.17. Caoba
Nombre Común: Caoba
Nombre Científico: Swietenia macrophylla King
Familia: Meliaceae
Distribución geográfica: Es un árbol nativo, que es sembrado y cultivado en
bosques húmedos tropicales y secos en provincias, tales como Esmeraldas, Galápagos,
Napo, Pastaza y Loja, que oscila entre una altitud sobre el nivel del mar entre 1 a 500
metros señala (Aguirre, 2014).
Descripción botánica: Esta especie tiene una proximidad de hasta 40 m de
altura, con un diámetro de tallo entre 80 a 10 cm. Es de copa redondeada con ramas
extendidas y su tallo es erecto y cilíndrico, con raíces tablares pequeñas, siendo su
corteza externa de color gros a marrón, constituida por fisuras verticales, exfoliantes en
láminas, con ramas terminales cilíndricas, con forma estructural similar a una corona en
el ápice. Mientras que las hojas son compuestas, de tipo paripinnadas, de posición
alterna que tienen de 3 a 6 foliolos opuestos en el raquis, siendo estos con una longitud
entre 5 a 18 cm de longitud y un diámetro entre 3 a 6 centímetros, de forma oblonga a
lanceolada, con el ápice agudo, de bordes enteros y con una base desigual. Donde el
peciolo es pulvinado en su base, monoica y de flores grandes de color blanco a
amarillentas, de forma vistosa agrupadas en panículas terminales. Mientras que el fruto
es una cápsula grande y de consistencia leñosa, letincelada, dehiscente que se compone
entre 4 a 5 valvas, con varias semillas aladas, sostiene (Acosta, 2013)
13
Color de la madera: Café rojizo 7,5YR 7/6.
Usos: Entre los usos de esta madera, dada su gran calidad, se la utiliza en la
fabricación de muebles de lujo, ebanistería y carpintería para diferentes fines, y en la
actualidad es exportable, con precios cotizados en el país y el comercio internacional, lo
indica, (Vásquez, 2014)
3.18. Fernán Sánchez
Nombre Común: Fernán Sánchez
Nombre Científico: Triplaris cumingiana Fisher y Meyer. Sinónimo: Triplaris
guayaquilensis Wedd. Familia: Polygonaceae
Distribución geográfica: Es un árbol endémico de la costa y de zonas
subtropicales, de provincias tales como Bolívar, Chimborazo, El Oro, Esmeraldas,
Galápagos, Guayas, Los Ríos, Manabí, Morona Santiago y Pichincha, con una altura
para su adecuado crecimiento entre 1 a 1500 metros sobre el nivel del mar, sostiene
(Rodriguez, 2013).
Descripción botánica: Esta especie, tiene una altura de 17 a 18 m, con una copa
irregular, con raíz axonomorfa profunda y muchas veces dan la forma de tablares, pero
son engrosamientos en la superficie que están en forma paralela al tallo, llegando a un
nivel entre 40 a 50 centímetros sobre el suelo. Mientras que el fuste es recto, con
hendiduras, su corteza de color grisáceo, mientras que internamente es de color café
claro. Por su parte las hojas son simples, alternas, de color verde mate, en el haz y en el
envés de color grisáceo, de forma oblonga, de borde entero, con nervadura (Nuñez,
2015).
Densidad de la madera: De 0,82 gr por cm3 y su color marrón a pálido 10YR 7/3
Usos: Es empleada y utilizada en la actividad de la mueblería, elaboración de puertas,
cajoneras, pisos de madera, sostiene (Grijalva, 2014)
14
IV. Materiales y métodos
4.1. Materiales
Los materiales que se utilizaron en la investigación fueron de oficina y de
campo.
Materiales de oficina
Computadora
Impresora
Internet
Flash memory
Copias
Papel boom
Carpeta
Bolígrafos
Lápiz
Borrador
Anillado
Empastado de tesis
Transporte
Materiales de campo
Materia orgánica
Arena de rio
Semilla Caoba
Semilla Fernán Sánchez
Bandejas para germinación
Calibrador
Flexómetro
Fundas de 8x20
Equipo humano
Tutor del proyecto de investigación
Egresado
15
4.2. Métodos
4.3. Ubicación geográfica
El proyecto de investigación se realizó, en el Cantón Portoviejo en la vía a
Crucita en el paso lateral a la altura del registro civil entre las coordenadas de latitud sur
a 01°03´16” y a 80°27´16” de longitud oeste, según reporte del (INAMHI, 2015) y a 15
msnm y según (Holdrige, 2013) como bosque tropical Seco, se inició desde abril a
julio del 2018.
4.4. Diseño experimental
Se empleó un diseño experimental de Bloques al Azar con arreglo factorial 2 x
4, con tres repeticiones, logrando un total de 24 unidades experimentales, donde los
datos fueron sometidos a la prueba de significación de Tukey en el nivel del 5% de
probabilidad para comprobar las diferencias entre los tratamientos.
4.5. Tipo de estudio
El trabajo de investigación fue apoyado por un diseño experimental, en el cual
se investigó cuál de los sustratos utilizados es el que obtuvo mejor respuesta, a través
del método experimental que se apoyó de los métodos estadísticos, inducción,
deducción, entre otros.
4.6. Factores en estudio
Estuvo basado en criterios forestales emitidos por parte de investigadores como
(Vizacarra, 2014), (Vásquez, 2014), los cuales señalaron la importancia de realizar
estudios sobre estas especies forestales, para su reforestación, ya que se están
extinguiendo estas especies por su valor comercial, por ello la importancia de evaluar el
efecto de un Biofertilizantes en las especies Swietenia macrophylla y Triplaris
cumingiana Fisher y Meyer), la cual se realizó desde abril a Julio del 2018, en el
Cantón Portoviejo en la vía a Crucita en el paso lateral y empleó un diseño
experimental de Bloques al Azar con arreglo factorial 2 x 4, con tres repeticiones,
logrando un total de 24 unidades experimentales, para los cuales se emplearon dos
factores que fueron estudiados y se establecen de la siguiente manera:
16
Especies forestales
A1- Swietenia macrophylla
A2- Triplaris cumingiana.
Dosis utilizadas de biofertilizante (ME)
B1- 0 ml B2- 200 ml en 5 lt de agua
B3- 300 ml en 5 lt de agua B4- 400 ml en 5 lt de agua
TratamientosA1B1- Swietenia macrophylla + 0 mlA1B2- Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de aguaA1B3- Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de aguaA1B4- Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 lt de aguaA2B1- Triplaris cumingiana + 0 mlA2B2- Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de aguaA2B3- Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de aguaA2B4- Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua
4.7. Análisis de Variación
Tabla 1. Análisis de VarianciaANOVA
FUENTE DE VARIACIÒN GRADO DE LIBERTADTotal 23
Repeticiones 2
Especies forestales 1
Dosis de biofertilizantes 3
Interacción (Especies y dosis) 3
Error 14
4.8. Metodología de toma de datos
Para la toma de los datos se procedió a utilizar un biofertilizantes a base de
productos vegetales, por el fabricante.
17
4.9. Porcentaje de germinación (%)
Para determinar el tiempo de prendimiento, se procedió a utilizar un compuesto
realizado a base de productos naturales el mismo que sirvió como estimulante para
acelerar el proceso de germinación de la semilla y así poder evaluar qué tiempo demora
en germinar la planta con la ayuda del sustrato de biofertilizantes, el cual germinó a
partir de los 15 días T.cumingiana Fisher y Meyer y a los 21 días S. macrophylla de
sembradas las especies forestales.
4.10. Altura de planta a los 30, 60, 90 días (cm)
En cuanto al parámetro de altura se procedió a utilizar un flexómetro para así
determinar la altura en 10 plantas al azar que logro alcanzar durante cada 30 días luego
se continuó realizando la toma de altura cada mes hasta terminar la investigación.
4.11. Diámetro del tallo 30, 60, 90 días (cm)
Para lograr determinar el diámetro se procedió a realizar la toma cada mes en la
parte media ecuatorial del tallo de las plántulas con un calibrador expresado en
milímetros a los 30-60-90 días para así comprobar el porcentaje que ha desarrollado en
diámetro la planta.
4.12. Proceso metodológico de la investigación
La metodología que se utilizó en esta investigación fue de tipo estadística y
descriptiva para poder establecer resultados.
4.13. Observación
En este proceso se realizó la observación de cómo fue avanzando la germinación
y el crecimiento de las plantas tanto en longitud como en diámetro en cada una de sus
tratamientos y en las diferentes repeticiones.
4.14. Analítico
En este parámetro se realizó el análisis de los datos tomado en la investigación
para ir comprobando cómo va el desarrollo de las plantas en cada unidad experimental
así poder determinar el resultado esperado.
18
4.15. Estadístico
Dentro de este proceso se realizó el análisis estadístico e interpretación de los
resultados obtenido a través de la investigación para determinar el resultado
correspondiente del trabajo investigativo.
4.16. Concentraciones de biofertilizantes
Las concentraciones utilizadas en la investigación para acelerar la germinación
de las semilla y planta fueron: 200 ml, 300 ml, 400 ml biofertilizantes de en 5 litros de
agua de un fertilizante residual proveniente de las lagunas sépticas de Manta, las cuales
fueron sometidas a tratamiento con microrganismos eficientes y están siendo aplicadas
en cultivos hortícolas de experimentación en los Bajos de Montecristi, y en las dos
especies utilizadas y en los diferentes tratamientos.
4.17. Tratamiento realizado a las plantas que fueron utilizadas
Dentro de la investigación se procedió a utilizar biofertilizantes como un
estimulante para acelerar la germinación de la semilla S. macrophylla y de T.
cumingiana). En una relación 200 ml, 300 ml y 40 ml en 5 litros de agua con esta dosis
empleada se puedo demostrar que si factible la utilización de biofertilizantes en las
semillas para que haya un mejor desarrollo en las plantas.
4.18. Preparación de Sustrato
El sustrato que se utilizó en la germinación de la semilla fue arena de rio
mesclado con materia orgánica, el mismo que se utilizó para el llenado de funda donde
se trasplanto las plantitas que germinaron en las bandejas germinadores para continuar
con la investigación.
4.19 . Siembra de semillas
Las semilla que se utilizó dentro de la investigación fueron especies forestales
de S. macrophylla y T. cumingiana.las cuales fueron seleccionadas de árboles de óptima
calidad y fueron regadas temprano en la mañana cada dos y según las condiciones
climáticas del medio con el fin de que tengan un buen proceso de germinación y de
desarrollo.
19
V. Resultados
5.1. Porcentaje de germinación (%)
Con respecto a esta variable (Tabla 2), las especies forestales presentaron
diferencias para el 1% de probabilidad, donde los resultados sometidos a la prueba de
Tukey al 5%, detectaron dos rangos de significación, con S. macrophylla que registró el
mayor índice de germinación en la etapa de semillero con el 90,95% resultado que
estadísticamente fue superior al obtenido por la especie T. cumingiana Fisher y Meyer,
que reportó el menor valor con el 60,29% de germinación (Tabla 2), lo cual
probablemente estuvo supeditado a sus características agronómicas definidas de esta
especie maderable, permitiendo expontenciar su componente genético y por las
condiciones favorables que proporcionó el biofertilizante, ya que para (Murillo, 2012),
la aplicación de estos productos tiene un efecto beneficioso en su cualidades
morfológicas, dado el accionar de los fertilizantes orgánicos por el efectos microbiano
que provoca en el suelo y por la actividad simbiótica que ocasiona en la rizosfera de la
planta.
5.2. Altura de planta a los 30, 60, 90 días (cm).
Para esta característica, que se muestra en el (Tabla 2), se pudo evidenciar que
Las especies maderables presentaron un resultado favorable, registrando significación
estadística al 1% de probabilidad y los datos de la prueba de Tukey mostraron dos
rangos de significación a los 30-60 y 90 días donde la especie (Swietenia macrophylla)
reportó el mayor valor con 8,19 cm; 18,73 cm y 28,73 cm que fue superior
estadísticamente a los obtenidos por (Triplaris cumingiana), que mostró menores
valores con 5,48 cm; 8,19 cm y 20,31 cm a los 30-60 y 90 días en ese orden
consecutivo (Tablas 3, 4 y 5)
Probablemente se debió a que es un árbol nativo, que se adapta a varios micro
ambientes y por las características agronómicas de planta hace que presente este
comportamiento, en situaciones favorables y desfavorables, en relación al (Triplaris
cumingiana), que por su arquitectura propia de la planta en estado de vivero a esta edad
es susceptible a diversas condiciones adversas, entre ellas las condiciones de suelo y
ambiente de señala (Aguirre, 2014).
20
Mientras que en la aplicación de las dosis del sustrato de biofertilizantes se pudo
establecer que este mostró diferencias estadísticas para el nivel del 1% de probabilidad,
donde la prueba de comparación de medias de Tukey al 5% encontró dos rangos de
significancia reportando a los 60 y 90 días con la dosis de 200 ml y 300 ml en cinco lt
de agua la mayor altura de planta con 13,89 cm y 25,24 cm en ese orden respectivo,
(Tabla 2), mostrando que este producto dice (Ortega, 2014), trata varios tópicos más
que todo en lo relacionado a su arquitectura de planta, que se muestra en un adecuado
impacto en su crecimiento. Por lo tanto, se requiere una mayor vinculación con el fin de
colaborar en mejorar los sistemas de producción y calidad de los biofertilizantes.
Además, es indispensable contar con asesoría, orientación y capacitación sobre su uso a
los productores agrícolas.
Mientras que al interaccionarse los factores estudiados, registraron a los 30 y 60
(Tabla 2) días diferencias estadísticas para los niveles del 5% y 1% de probabilidad
estadística, donde Tukey, presentó dos rangos de significación, estableciendo que el
tratamiento conformado por S. macrophylla + 200 ml en 5 litros de agua (A1B2)
presentó el mayor valor con 8,41 cm a los 30 días y 19,67 cm a los 60 días (Tablas 7 y
8), confirmando lo descrito por (Kamilova, 2011), quien dice que en investigaciones
realizadas en especies forestales a nivel de semillero y vivero, señala que es importante
la utilización de sustratos que tengan en su contenido Azospirillum brasilense, debido a
su accionar en la estimulación de crecimiento, la cual predomina en este hongo por su
emisión de hormonas naturales, que inciden en su crecimiento y afectan en forma
adecuada en la morfología y fisiología de la raíz, que se traduce en una adecuada
arquitectura de la planta.
Aunque es importante encontrar un sustrato ideal, porque cada especie tiene
requerimientos distintos, pero a través de investigaciones científicas es posible hallar un
sustrato óptimo que reúna las condiciones mínimas requeridas por las especies a
estudiar, dice (Artieri, 2014). En general, los nutrientes son vitales para el óptimo
crecimiento de plantas, dice Amaguaña (2013) en las especies forestales, al igual que
los cultivos agrícolas, requieren de ciertos elementos en el suelo, de manera que si
algunos escasean, deben ser agregados en las dosis y en el momento oportuno
(Avellán, 2015). Las plantas captan los nutrientes del suelo selectivamente, absorbiendo
preferentemente los nutrientes.
21
Tabla 2. Valores promedio de porcentaje de supervivencia, altura de planta (cm), Diámetro del tallo (cm) a los 30,60 y 90 días en el ensayo "Evaluación del efecto de un biofertilizante en la especie de caoba (Swietenia macrophylla) y Fernán Sánchez (Triplaris cumingiana Fisher y Meyer). Cantón Portoviejo. 2018.
Factores % de Crecimiento de planta (cm) Diámetro del tallo (cm)Germinación 30 días 60 días 90 días 30 días 60 días 90 días
Especies forestales ** ** ** ** ** NS **Swietenia macrophylla 90,95 a 8,19 a 18,73 a 28,73 a 0,40 a 0,68 0,70 aTriplaris cumingiana 60,29 b 5,48 b 8,19 b 20,31 b 0,10 b 0,46 0,50 b
Dosis de biofertilizante NS NS ** ** NS NS NS0 ml (Testigo) 66,97 6,86 12,98 b 23,20 b 0,23 0,51 0,58200 ml en 5 lt de agua 78,09 6,87 13,89 a 24,49 b 0,28 0,59 0,61300 ml en 5 lt de agua 77,66 6,86 13,59 a 25,24 a 0,24 0,58 0,62400 ml en 5 lt de agua 79,77 6,75 13,40 ab 25,16 ab 0,26 0,59 0,61
Tratamientos NS * ** NS NS NS NSA1B1 S. macrophylla+ 0 ml 79,40 7,96 b 18,00 a 28,12 0,36 0,63 0,69A1B2 S. macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 94,11 8,41 a 19,37 a 29,08 0,44 0,73 0,72A1B3 S. macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 95,07 8,18 ab 19,01 a 28,88 0,38 0,67 0,69A1B4 S. macrophylla + 400 ml en 5 lt de agua 95,25 8,23 a 18,57 a 28,86 0,43 0,68 0,70A2B1 T. cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 54,54 5,77 b 7,96 b 18,28 0,10 0,39 0,48A2B2 T, cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 62,08 5,34 b 8,41 b 19,91 0,12 0,45 0,50A2B3 T. cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 60,26 5,55 b 8,18 b 21,61 0,10 0,49 0,52A2B4 T. cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 64,29 5,28 b 8,23 b 21,46 0,09 0,51 0,53
Promedio 75,63 6,84 13,47 24,52 0,25 0,57 0,68C.V. (%) 33,56 14,09 13,82 9,53 33,38 30,38 26,71Tukey 5% (Especies forestales) 13,67 2,34 7,89 5,89 0,43 0,61Tukey 5% (Dosis de biofertilizante) 0,44 1,11 Tukey 5% (Interacciones) 2,11 7,89
Tabla 3. Porcentaje de germinación (%)
22
Tratamientos Rep I Rep II Rep III ∑ PromedioA1B1 Swietenia macrophylla + 0 ml 77,45 83,21 77,56 238,22 79,40A1B2 Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 92,45 98,32 91,56 282,33 94,11A1B3 Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 91,23 99,42 94,56 285,21 95,07A1B4 Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 lt de agua 97,34 92,89 95,52 285,75 95,25
358,47 373,84 359,2 1091,51 A2B1 Triplaris cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 66,34 56,35 41,23 163,92 54,54A2B2 Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 62,67 62,34 61,23 186,24 62,08A2B3 Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 52,37 56,78 71,63 180,78 60,26A2B4 Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 62,34 69,32 61,23 192,89 64,29
243,72 244,79 235,32 723,83 602,19 618,63 594,52 1815,34
ADEVAF. de V. G.L. S.C. C.M. F. Cal. 0,50% 1%
Total 23 6978,00 Repeticiones 2 40,91 20,45 0,07 NS 3,74 6,51Especies 1 2345,67 2345,67 8,65 ** 2,76 4,28Dosis 3 331,11 110,37 0,40 NS 3,74 6,51Interacción 3 467,89 155,96 0,57 NS 3,74 6,51Error 14 3792,42 270,88 ** Altamente significativo al 1% de probabilidadNS No significativo
23
Tabla 4. Altura de planta a los 30 días (cm)
24
Tratamientos Rep I Rep II Rep III ∑ PromedioA1B1 Swietenia macrophylla + 0 ml 8,90 7,50 7,50 23,90 7,96A1B2 Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 8,95 8,20 8,10 25,25 8,41A1B3 Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 8,83 7,80 7,91 24,54 8,18A1B4 Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 lt de agua 8,84 7,90 7,96 24,70 8,23
35,52 31,40 31,47 98,39 A2B1 Triplaris cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 6,32 5,78 5,23 17,33 5,77A2B2 Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 5,34 5,34 5,34 16,02 5,34A2B3 Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 6,11 4,76 5,78 16,65 5,55A2B4 Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 5,32 5,23 5,31 15,86 5,28
23,09 21,11 21,66 65,86 58,61 52,51 53,13 164,25
ADEVAF. de V. G.L. S.C. C.M. F. Cal. 0,50% 1%
Total 23 49,37 Repeticiones 2 2,82 1,41 1,51 NS 3,74 6,51Especies 1 16,43 16,43 17, 66 ** 2,76 4,28Dosis 3 8,43 2,81 3,02 NS 3,74 6,51Interacción 3 8,56 2,85 3,76 * 3,74 6,51Error 14 13,13 0,93 ** Altamente significativo al 1% de probabilidadNS No significativo
25
Tabla 5. Altura de planta a los 60 días (cm)Tratamientos Rep I Rep II Rep III ∑ Promedio
A1B1 Swietenia macrophylla + 0 ml 17,90 18,20 17,90 54,00 18,00A1B2 Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 19,20 18,93 20,00 58,13 19,37A1B3 Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 19,09 18,70 19,26 57,05 19,01A1B4 Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 litros de agua 19,05 18,45 18,23 55,73 18,57
75,24 74,28 75,39 224,91 A2B1 Triplaris cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 8,90 7,50 7,50 23,90 7,96A2B2 Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 8,95 8,20 8,10 25,25 8,41A2B3 Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 8,83 7,80 7,91 24,54 8,18A2B4 Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 8,84 7,90 7,96 24,70 8,23
35,52 31,40 31,47 98,39 110,76 105,68 106,86 323,3
ADEVAF. de V. G.L. S.C. C.M. F. Cal. 0,50% 1%
Total 23 665,58 Repeticiones 2 1,76 0,88 0,25 NS 3,74 6,51Especies 1 234,67 234,67 67,62 ** 2,76 4,28Dosis 3 112,67 37,55 10,88 ** 3,74 6,51Interacción 3 167,89 55,96 16,12 ** 3,74 6,51Error 14 48,59 3,47 ** Altamente significativo al 1% de probabilidadNS No significativo
26
Tabla 6. Altura de planta a los 90 días (cm)Tratamientos Rep I Rep II Rep III ∑ Promedio
A1B1 Swietenia macrophylla + 0 ml 27,92 28,45 28,01 84,38 28,12A1B2 Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 29,23 29,01 29,01 87,25 29,08A1B3 Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 29,10 28,56 28,98 86,64 28,88A1B4 Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 lt de agua 29,01 28,67 28,91 86,59 28,86
115,26 114,69 114,91 344,86 A2B1 Triplaris cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 15,56 19,45 19,67 54,68 18,28A2B2 Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 17,82 20,13 21,78 59,73 19,91A2B3 Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 19,45 21,61 23,78 64,84 21,61A2B4 Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 21,67 19,15 23,56 64,38 21,46
74,50 80,34 88,79 243,63 189,76 195,23 203,7 588,49
ADEVAF. de V. G.L. S.C. C.M. F. Cal. 0,50% 1%
Total 23 489,31 Repeticiones 2 22,14 11,07 2,02 NS 3,74 6,51Especies 1 222,23 222,23 216,76 ** 2,76 4,28Dosis 3 117,11 39,03 7,13 ** 3,74 6,51Interacción 3 51,23 17,07 3,12 NS 3,74 6,51Error 14 76,66 5,47 ** Altamente significativo al 1% de probabilidadNS No significativo
27
Tabla 7. Diámetro de tallo a los 30 días (cm)Tratamientos Rep I Rep II Rep III ∑ Promedio
A1B1 Swietenia macrophylla + 0 ml 0,22 0,40 0,47 1,09 0,36A1B2 Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 0,28 0,47 0,57 1,33 0,44A1B3 Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 0,25 0,45 0,46 1,16 0,38A1B4 Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 lt de agua 0,35 0,39 0,55 1,30 0,38
1,11 1,72 2,05 4,89 A2B1 Triplaris cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 0,12 0,08 0,10 0,30 0,10A2B2 Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 0,13 0,13 0,11 0,37 0,12A2B3 Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 0,11 0,11 0,08 0,30 0,10A2B4 Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 0,10 0,10 0,08 0,29 0,09
0,47 0,43 0,37 1,28 1,58 2,15 2,43 6,17
ADEVAF. de V. G.L. S.C. C.M. F. Cal. 0,50% 1%
Total 23 2,73 Repeticiones 2 0,19 0,09 1,80 NS 3,74 6,51Especies 1 1,03 1,03 20,60 ** 2,76 4,28Dosis 3 0,56 0,18 3,60 NS 3,74 6,51Interacción 3 0,23 0,07 1,40 NS 3,74 6,51Error 14 0,72 0,05 ** Altamente significativo al 1% de probabilidadNS No significativo
28
Tabla 8. Diámetro de tallo a los 60 días (cm)Tratamientos Rep I Rep II Rep III ∑ Promedio
A1B1 Swietenia macrophylla + 0 ml 0,49 0,69 0,72 1,91 0,63A1B2 Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 0,57 0,84 0,72 2,20 0,73A1B3 Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 0,50 0,75 0,78 2,03 0,67A1B4 Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 lt de agua 0,50 0,79 0,74 2,04 0,68
2,07 3,07 3,04 8,18A2B1 Triplaris cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 0,32 0,43 0,41 1,17 0,39A2B2 Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 0,39 0,48 0,50 1,37 0,45A2B3 Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 0,51 0,46 0,52 1,49 0,49A2B4 Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 0,49 0,51 0,55 1,55 0,51
1,71 1,88 1,99 5,593,78 4,96 5,35 13,78
ADEVAF. de V. G.L. S.C. C.M. F. Cal. 0,50% 1%
Total 23 2,04 Repeticiones 2 0,03 0,01 0,08 NS 3,74 6,51Especies 1 0,14 0,14 1,16 NS 2,76 4,28Dosis 3 0,08 0,02 0,16 NS 3,74 6,51Interacción 3 0,04 0,01 0,08 NS 3,74 6,51Error 14 1,75 0,12 NS No significativo
29
Tabla 9. Diámetro de tallo a los 90 días (cm)Tratamientos Rep I Rep II Rep III ∑ Promedio
A1B1 Swietenia macrophylla + 0 ml 0,65 0,72 0,71 2,08 0,69A1B2 Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 0,70 0,73 0,74 2,17 0,72A1B3 Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 0,72 0,65 0,61 2,08 0,69A1B4 Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 lt de agua 0,72 0,69 0,68 2,09 0,70
2,79 2,78 2,74 8,42A2B1 Triplaris cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 0,49 0,46 0,49 1,44 0,48A2B2 Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 0,43 0,51 0,56 1,51 0,50A2B3 Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 0,46 0,55 0,54 1,56 0,52A2B4 Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 0,51 0,52 0,57 1,60 0,53
1,89 2,05 2,16 6,11 4,90 4,83 4,90 14,53
ADEVAF. de V. G.L. S.C. C.M. F. Cal. 0,50% 1%
Total 23 2,10 Repeticiones 2 0,24 0,12 1,71 NS 3,74 6,51Especies 1 0,78 1,78 25,42 ** 2,76 4,28Dosis 3 0,25 0,08 1,14 NS 3,74 6,51Interacción 3 0,14 0,04 0,57 NS 3,74 6,51Error 14 1,06 0,07 ** Altamente significativo al 1% de probabilidadNS No significativo
29
5.3. Diámetro del tallo a los 30, 60, 90 días (cm).
Para esta variable (Cuadro 2), el factor relacionado con las especies forestales
presentaron diferencias estadísticas a los 30 y 60 días, donde la prueba de comparación
de medias de Tukey al 5% presentó dos rangos de significación reportado a los 60 días
un diámetro de tallos de 0,40 cm y a los 90 día con 0,70 cm para (S. macrophylla), que
estadísticamente fue superior a los valores obtenido por (T. cumingiana), que reportó un
diámetro de 0,10 cm a los 30 días y 0,50cm a los 90 días, comportamiento que estuvo
supeditado a las características agronómicas de cada especies, pero influencia por las
dosis del biofertilizante. Por su parte Parreño (2014), sostiene que para la siembra y
normas de aprovechamiento de bosques cultivados bajo sistemas agroforestales, es
importante en la fase de vivero la aplicación de productos orgánicos para mantener las
condiciones de la especie vegetal. Así mismo (Pulido, 2012), indica que en el ámbito
forestal la realización de un substrato orgánico, el cual identifica, a las plantaciones
forestales, árboles plantados y de regeneración.
30
VI. Discusión
El cultivar S. macrophylla registró el mayor índice de germinación en la etapa
de semillero con el 90,95% resultado que estadísticamente fue superior al obtenido por
la especie T. cumingiana Fisher y Meyer, que reportó el menor valor con el 60,29% de
sobrevivencia, lo cual probablemente estuvo supeditado a sus características
agronómicas definidas de esta especie maderable, permitiendo exponer su componente
genético y por las condiciones favorables que proporcionó el biofertilizante, ya que para
(Murillo, 2012). Mientras que en la altura de la planta a los 30, 60 y 90 (cm) días la
especie S. macrophylla reportó el mayor valor a los obtenidos por el T. cumingiana,
que probablemente se deba a que es un árbol nativo, que se adapta a varios micro
ambientes y por las características agronómicas de planta hace que presente este
comportamiento, en situaciones favorables y desfavorables, en relación a esta especie
forestal que por su arquitectura propia de la planta en estado de vivero a esta edad es
susceptible a diversas condiciones adversas, entre ellas las condiciones de suelo y
ambiente de señala (Aguirre, 2014).
En las dosis del sustrato del biofertilizante a los 60 y 90 días con la dosis de 200
ml y 300 ml en cinco litros de agua la mayor altura de planta, mostrando que este
producto dice (Ortega, 2014), trata varios tópicos más que todo en lo relacionado a su
arquitectura de planta, que se muestra en un adecuado impacto en su crecimiento. Por lo
tanto, se requiere una mayor vinculación con el fin de colaborar en mejorar los sistemas
de producción y calidad de los biofertilizantes. Aunque es importante encontrar un
sustrato ideal, porque cada especie tiene requerimientos distintos, pero a través de
investigaciones científicas es posible hallar un sustrato óptimo que reúna las
condiciones mínimas requeridas por las especies a estudiar (Artieri, 2014). En general,
los nutrientes son vitales para el óptimo crecimiento de plantas, dice (Amaguaña, 2013)
en las especies forestales, al igual que los cultivos agrícolas, requieren de ciertos
elementos en el suelo, de manera que si algunos escasean, deben ser agregados en las
dosis y en el momento oportuno (Avellán, 2015). Las plantas captan los nutrientes del
suelo selectivamente, absorbiendo preferentemente los nutrientes.
31
En el diámetro del tallo a los 30-60 y 90 días (cm) a los 30 y 60 días, para S.
macrophylla, que estadísticamente fue superior a los valores obtenido por T.
cumingiana Fisher y Meyer, que reportó un diámetro que estuvo supeditado a las
características agronómicas de cada especies, pero influencia por las dosis del
biofertilizante. Por su parte (Parreño, 2014), sostiene que para la siembra y normas de
aprovechamiento de bosques cultivados bajo sistemas agroforestales, es importante en
la fase de vivero la aplicación de productos orgánicos para mantener las condiciones de
la especie vegetal. En el número de hojas por planta S. macrophylla, reportó los
mayores valores y respondió en forma favorable a la aplicación de las dosis del
biofertilizante en forma de sustrato natural. Aunque señala (Suárez, 2015), que son
insumos formulados con uno o varios microorganismos benéficos (hongos y bacterias
principalmente), los cuales aumentan la disponibilidad de nutrientes para las plantas.
32
VII. Conclusiones
De acuerdo a los resultados obtenidos se establecen las siguientes conclusiones:
En el porcentaje de germinación lo produjo el cultivar S. macrophylla que
registró el mayor índice de germinación en la etapa de semillero con el 90,95%.
En la altura de planta a los 30 y 60 días (cm), la misma especie reportó el mayor
valor con 8,19 cm; 18,73 cm y 28,73 cm y en la aplicación de las dosis del
sustrato de biofertilizante se pudo establecer que a los 60 días con la dosis de
200 ml y 300 ml en cinco lt de agua la mayor altura de planta con 13,89 cm y
13,59 cm en ese orden respectivo. Al interaccionarse el tratamiento S.
macrophylla con 200 ml en 5 lt de agua presentó el mayor valor con 8,41 cm a
los 30 días y 19,37 cm a los 60 días.
El diámetro de tallo reportó a los 60 días un diámetro de tallos de 0,40 cm y a
los 90 día con 0,70 cm para (S. macrophylla),
33
VIII. Recomendaciones
En base al trabajo realizado se recomiendo lo siguiente:
Evaluar el porcentaje de germinación aplicando biofertilizante para
establecer potencialidad en calidad fisiológica y producción
Utilizar otros biofertilizantes en diferentes dosis y relacionar con sus
resultados obtenidos
Relacionar los resultados obtenidos de manera que se tomen en
consideración los problemas detectados, y así aplicar correctamente la
dosificación del biofertilizante
34
IX. Bibliografía
1. Acosta. (2013). Especies maderables del Ecuador. Quito, Ecuador: Editorial Cosmos.
2. Acuña. (2010). Uso de Biofertilizantes en la Agricultura. Laboratorio de Bioquímica de Procesos Orgánicos Centro de Investigaciones Agronómicas, Pág. 306.
3. Aguirre. (2014). Especies forestales del Ecuador. Revista Tècnica de Proforestal, Pàg.56-72.
4. Amaguaña. (2013). Importancia de los biofertilizantes en la agricultura convencional y forestal. Madrid, España: Editorial Elseiver.
5. Aray. (2012). Los biofertilizantes y modo de actuar. México D.F.: Editorial AlfaOmega.
6. Artieri. (2014). Fitoreguladores naturales de las plantas. Revista de Agricultura Sostenible Argentina, Pág. 23.
7. Audrey. (2014). Accionar fisiológico de los fertilizantes orgánicos a nivel de vivero en especies forestales. Revista Chilena Forestal, Pág.76.
8. Avellán. (2015). Accionar de fertilizantes orgánicos en la flora microbiana del suelo y planta. Chapingo, México: Editorial AlfaOmega.
9. Ayala. (2014). Efecto de dos biofertilizantes en el estado sanitario y establecimiento de plantones de Acacia longifolia. Revista Colombina de Agricultura Forestal, Pág. 23-24.
10. Barbera. (2014). Pesticidas agrícolas y su accionar en la flora microbiana del suelo. México D.F.: Editorial Limusa Hermanos.
11. Bardon. (2013). Efecto técnico de los inoculantes de suelo y sus efectos en las plantas. Mendoza, Argentina: Institituto Nacional de Tecnologia Agropecuaria (INTA).
12. Barreto. (2012). Efecto de Microorganismos Rizosféricos sobre Germinación y Crecimiento Temprano de Anacardium Excelsum. Revista Chilena Agroforestal, 11(1), Pág. 14-15.
13. Bashan . (2014). Efecto benéfico de los fertilizantes. Revista Peruana de Fertilización Orgánica en especies forestales, Pág. 45-47.
14. Cadena. (2014). Los hongos sagofitos y micorrizas arboricolas. Revista de silvicultura Ecuatoriana, Pág. 34.
35
15. Cuenca. (2013). Alternativas de fertilización orgánica en cultivos forestales. Revista Mexicana de Chapingo , Pág.34.
16. Díaz. (2013). Los Biofertilizantes en la Agricultura sostenible. INTAGRI S.C, Pág. 89.
17. Forty. (2014). Los biofertilizantes y su efecto benefico agronómico en plantas forestales a nivel de vivero. Revista Española de Agroforestación, Pág. 56.
18. Gavilla. (2015). Fertilización inicial de plantaciones comerciales de teca (Tectona grandis Linn F.) en el sureste de México. Mexico D.F.: Editorial Tompson.
19. Gomez. (2014). Efecto de las micorrizas en el suelo y sus efectos en el crecimiento de las plantas. Revista de Mexicana de Interès agrìcola, Pàg. 34-36.
20. Grijalva. (2014). Usos de las maderas forestales de valor comercial y econòmico. Palmira, Colombia: Editorial Tompson.
21. Guevara. (2013). Los inoculantes y su accionar en las plantas. Santa Fe de Bogota, Colombia: Editorial Interoamericana.
22. Gupta. (2012). Biofertilizante. Revista Colombiana Agronòmica del accionar de los biofertilizantes, Pàg. 23-27.
23. Holdrige. (2013). Escalas de vida de la flora. Turrialba, Costa Rica: Univerdidad de Turrialba.
24. INAMHI. (2015). Atlas del Ecuador. Quito, Ecuador: Instituto Nacional de Metereología e Hidrología del Ecuador.
25. Kamilova. (2011). Bacterias promotoras del crecimiento vegetal. Barcelona, España: Editorial Salvat.
26. Lynch. (2012). Producción de biofertilizantes y su accionar . Turrialba, Costa Rica: Editorial Los Ticos.
27. Mesa. (2013). Pregerminación de semillas de cinco especies forestales con aguas residuales de la producción de torula. Revista científica agroecosistemas de Colombia, Pág. 78.
28. Murillo. (2012). Impacto de los biofertilizantes en la agricultura forestal. (Texcoco, Ed.) Revista de agrociencias forestales, 3(6), Pág.67.
29. Nuñez. (2015). Identificaciòn taxonòmica de las especies maderables en Amèrica del sur. Revista Colombiana de agricultura tropical, Pàg. 89.
36
30. Ortega. (2014). Crecimiento de Cedrela odorata L. Biofertilizada con Rhizophagus intraradices y Azospirillum brasilense en vivero. Revista Chapingo serie ciencias forestales y del ambiente de México, Pág. 67.
31. Ortuño. (2016). Aplicación de Biofertilizantes Foliares en el Cultivar Huaycha (Solanum Tuberosum Subsp. Andigena) en los Valles Interandinos de Bolivia. Latinoamericana de la papa, 2(14, 25), Pág. 20-22.
32. Parreño. (2014). Accionar del biol como compuesto biofertilizante en plantación de viveros en el cultivo de especies forestales. Guayaquil, Ecuador: Editorial Cosmos.
33. Pereira. (2014). Estimulación del crecimiento en plántulas de Pinus radiata utilizando hongos ectomicorrícicos y saprobios como biofertilizantes. (B. (Valdivia), Ed.) Revista de especies maderables en el Ecuador, 1(57, 63), Pag. 67.
34. Pulido. (2012). Importancia del cultivo de especies forestales con tecnología orgánica. Buenos Aires, Argentina: Editorial Kapeluz.
35. Quirós. (2014). Caracterización y selección de bacterias y hongos micorrícicos aislados en raíces de alubia y pimiento, en la provincia de León, para el desarrollo de biofertilizantes. Salamanca, España: (Doctoral dissertation, Universidad de Salamanca).
36. Reyes. (2012). Las plantaciones forestales. Usos y manejo . Mendoza, Argentina: Editorial Luz y vida.
37. Rodriguez. (2013). Las especies arboreas de las costa ecuatoriana. Guayaquil, Ecuador: Editorial Universidad Santiago de Guayaquil.
38. Rosatto. (2014). Solubilización de fuentes de fósforo asociadas a un compuesto orgánico enriquecido con biofertilizantes (Vol. 5). Mérida, Colombia: Editorial Agrociencia.
39. Rovira. (2012). El accionar de las micorrizas en la rizosfera de las especies vegetales. Barcelona, España: Editorial Eros.
40. Sosa. (2013). Resultados de la aplicación de biofertilizantes a base de Azospirillum y micorrizas en asociaciones de cultivos hortícolas en condiciones de semiprotegido. (Vol. 1). Chapingo. México: Centro Agrícola.
41. Suárez. (2015). Efecto benéfico de las micorrizas y su accionar microbiano. Morelia, México: Editorial Trillas.
42. Tejada. (2013). Las micorrizas y el género trichoderma en la rizosfera del suelo. Lima, Peru: Editorial Elseiver.
37
43. Vásquez. (2014). El cultivo y comercializaciòn de la caoba. Revista Peruana de Especies Forestales de valor econòmico y comercial, Pàg. 56.
44. Vizacarra. (2014). Los fertilizantes químicos y su efecto nocivo en la actividad forestal. Portoviejo, Ecuador: Facultad de Ingeniería Agrnómica de la Universidad Técnica de Manabí.
45. Zorrilla. (2013). Elaboración de biofertilizantes y su aplicación en condiciones de suelo. Revista Panameña de Siembra y cultivo de forestación , Pág. 45-89.
38
X. Anexos
39
CROQUIS DE CAMPO
Testigo REPETICIONES
1 2 3
Caoba
t1+ agua-C
O O O O O
O O O O O
O O O O O
O O O O O
T1+D1-EC
O O O O O
O O O O O
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T1+D1-EC
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T1+D1-EC
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t2+ agua-C
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T2+D2-EC
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T2+D2-EC
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T2+D2-EC
O O O O O
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t3+agua-C
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T3+D3-EC
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T1+D3-EC
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T1+D3-EC
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T1+ agua-FS
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T2+D2-FS
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T3+D3-FS
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T3+D3-FS
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O O O O O
O O O O O
T3+D3-FS
O O O O O
O O O O O
O O O O O
O O O O O
40
Fernán Sánchez
41
FOTOS DE EVIDENCIA DE TRABAJO DE CAMPO
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