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实实实实实实 PCR 实实实实实实实实 (Real time Quantitative PCR) 戚戚戚 2012 戚 12 戚 15

实时荧光定量 PCR 技术的原理及应用 (Real time Quantitative PCR)

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实时荧光定量 PCR 技术的原理及应用 (Real time Quantitative PCR). 戚振华 2012 年 12 月 15 日. Contents. 1. 实时荧光定量 PCR 原理. 实时荧光定量 PCR 的方法介绍. 2. Click to add title in here. 实时荧光定量 PCR 的应用. 3. 实时荧光定量 PCR 定义:. 在 PCR 反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号累积实现了实时监测整个 PCR 进程,对起始模板进行定量分析的方法。. 与普通 PCR 的区别. 普通 PCR 技术. 实时定量 PCR 技术. - PowerPoint PPT Presentation

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实时荧光定量 PCR 技术的原理及应用 (Real time Quantitative PCR)

戚振华2012 年 12 月

15 日

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Contents

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1

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实时荧光定量 PCR 原理

实时荧光定量 PCR 的方法介绍

实时荧光定量 PCR 的应用

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实时荧光定量 PCR 定义:

• 在 PCR 反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号累积实现了实时监测整个 PCR 进程,对起始模板进行定量分析的方法。

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与普通 PCR 的区别

普通 PCR 技术普通 PCR 技术 实时定量 PCR 技术实时定量 PCR 技术

在 PCR 结束后对终点产物进行定量分析。

实时检测 PCR 扩增,在扩增的指数期对起始模板进行定量。

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相同模板进行 96 次扩增,终点处产物量不恒定; Ct 值则极具重现性。

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Ct 值的定义: 扩增产物的荧光信号达到设定的阈值时所经过的扩增循环数。此时扩增是呈对数期增长。

Ct 值

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定量 PCR 的数学原理

•理想的 PCR 反应: X=X0*2n

•非理想的 PCR 反应: X=X0(1+Ex)n

n :扩增反应的循环次数X :第 n 次循环后的产物量X0 :初始模板量Ex :扩增效率

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在扩增产物达到阈值线时 : XCt=X0(1+Ex)Ct=M (1)XCt: 荧光扩增信号达到阈值强度时扩增产物的量。 在阈值线设定以后 , 它是一个常数 , 我们设为 M

方程式 (1) 两边同时取对数得 : log M=log X0(1+Ex)Ct (2)

整理方程式 (2) 得 : log X0= -log(1+Ex) *Ct+ log M (3)

最后结论: Log X0 与 Ct 呈线性关系,根据样品扩增的 Ct 值就可计算出样品中所含的模板量。

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Log 起始拷贝量与 Ct 呈线性关系,通过已知起始拷贝数的标准品可作出标准曲线,根据样品 Ct 值,就可以计算出样品中所含的模板量。

标准曲线

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实时荧光定量 PCR 的方法介绍

DNA 产物的荧光标记

非特异性荧光标记:1 、 SYBR Green

特异性荧光标记:2 、 TaqMan3 、 Molecular Beacon

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SYBR Green 法工作机理

1.SYBR Green 只有和双链 DNA 结合后才发荧光。2.变性时, DNA 双链分开,无荧光。3.在延伸结束阶段采集荧光信号。4.SYBR Green 也能和非特异的双链 DNA 结合发光,所以必须在反应结束时做熔解曲线分析。

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SYBR Green 熔解曲线分析

融解曲线分析,单一峰,无非特异性荧光,定量准确

融解曲线分析,出现杂峰其他产物出现非特异性荧光,因此定量不准确

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SYBR Green 法优缺点

优点优点 缺点缺点

1. 对 DNA 模板没有选择性 -- 适用于任何 DNA

2. 使用方便 -- 不必设计复杂探针

3. 非常灵敏4. 便宜

1. 容易与非特异性双链 DNA 结合,产生假阳性,但可以通过融解曲线的分析,优化反应条件

2. 对引物特异性要求较高

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TaqMan 法

1. 5′ 端标记有报告基团 (Reporter, R) ,如 FAM 、 VIC 等2. 3′ 端标记有荧光淬灭基团 (Quencher, Q)3. 探针完整, R 所发射的荧光能量被 Q 基团吸收,无荧

光, R 与 Q 分开,发荧光4. Taq 酶有 5′→3′ 外切核酸酶活性,可水解探针

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TaqMan 法工作原理

每扩增一条 DNA 分子,释放一个荧光信号

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TaqMan 法 PCR 反应的建立

1.引物、探针的设计:探针 Tm 为 68-70℃ , <30 bp, 5’ 不能有 G , G 可能会淬灭荧光素,引物尽量靠近探针,扩增片段 <400 bp ,引物 Tm 为 59-60℃2.反应参数的确定:一般为: 95 ,3min ℃ 、 94 ℃ , 15S 、 60 ℃ , 60S ( Taq 酶 5′→3′ 外切酶活性在 60℃ 最高也可通过温度梯度优化退火温度)3.优化引物和探针浓度:引物浓度: 50-900nM 探针浓度: 50-250nM4.其他与常规 PCR 相同

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TaqMan 法优缺点

优点优点 缺点缺点

1. 对目标序列的高特异性 -- 阴性结果确定

2. 引物设计相对简单

3. 重复性比较好

1.只适合一个特定的目标2.委托公司标记,价格较高

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荧光定量 PCR 技术的应用1. 绝对定量 基因表达研究 转基因食品检测2. 相对定量 基因在不同样本中的表达差异 药物疗效考核3. 阴阳性分析 病原体( HBV , HCV 等)检测 禽流感检测4. 等位基因分型 SNP 分析 与疾病相关的等位基因点突变检测

拓展应用1. MicroRNA 分析2. 基因拷贝数分析3. 表观遗传学分析4. 蛋白质分析5. 肿瘤稀有突变检

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两种定量的不同方法

1.绝对定量检测起始模板数的精确拷贝数 标准曲线法

2.相对定量是确定经过不同处理的样本之间基因的表达 差异

2- Ct△ △

双标准曲线法

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优点:给出的是目标基因的绝对数量,数据容易处理缺点:必须有标准品;标准品必须准确测定,难以制备和质控

绝对定量 相对定量优点:不需要知道模板的确切拷贝数。可以不做标准品;标准品容易制备;使用广泛缺点:数据处理比较麻烦,数据理解困难

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相对定量—— ΔΔ Ct 法

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相对定量——相对标准曲线法

当目的基因和内对照的扩增效率不一致时使用,只需知道稀释倍数 , 不需要知道准确拷贝数或浓度,需对每个基因作一条标准曲线

通过并列跑两条扩增曲线,查看指数增长期曲线是否平行来确定扩增效率是否相似 .

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两种方法的区别

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