Upload
ida-idutt-dudduud
View
417
Download
7
Embed Size (px)
Citation preview
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 1/23
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 2/23
disebut juga levulosa. Pada umumnya monosakarida dan disakarida mempunyai rasa manis(McGilvery&Goldstein, 1996). Fruktosa mempunyai rasa lebih manis daripada glukosa, juga
lebih manis daripada gula tebu atau sukrosa. Fruktosa dapat dibedakan dari glukosa dengan pereaksi seliwanoff, yaitu larutan resorsinol (1,3 dihidroksi benzene) dalam asam HCl.
Dengan pereaksi ini, mula-mula fruktosa diubah menjadi hidroksimetilfurfural yang
selanjutnya bereaksi dengan resorsinol membentuk senyawa yang berwarna merah. pereaksi
Seliwanoff ini khas untuk menunjukkan adanya ketosa. Fruktosa berikatan dengan glukosamembentuk sukrosa, yaitu gula yang biasa digunakan sehari-hari sebagai pemanis, dan
berasal dari tebu atau bit (McGilvery&Goldstein, 1996). D-fruktosa mempunyai sifat
mereduksi reagen Benedict, Haynes, Barfoed (gula pereduksi), membentuk osazon dengan
fenilhidrazina yang identik dengan osazon glukosa, difermentasi oleh ragi dan berwarna
merah ceri dengan reagen Seliwanoff resorsinol-HCl (Harper et al, 1979).
3. 3. Galaktosa
Monosakarida ini jarang terdapat bebas dalam alam. Umumnya berikatan dengan
glukosa dalam bentuk laktosa, yaitu gula yang terdapat dalam susu. Galaktosa mempunyai
rasa kurang manis daripada glukosa dan kurang larut dalam air. Galaktosa mempunyai sifat
memutar bidang cahaya terpolarisasi ke kanan (McGilvery&Goldstein, 1996). D-galaktosamempunyai sifat mereduksi reagen Benedict, Haynes dan Barfoed, membentuk osazon yang
berbeda dengan dua monosakarida sebelumnya (glukosa dan fruktosa), dengan reagenfloroglusinol memberi warna merah, dan dengan HNO3 membentuk asam musat (Harper et
al, 1979). Pada proses oksidasi oleh asam nitrat pekat dan dalam keadaan panas, galaktosamenghasilkan asam musat yang kurang larut dalam air bila dibandingkan dengan asam
sakarat yang dihasilkan oleh oksidasi glukosa. Pembentukan asam musat ini dapat dijadikancara identifikasi galaktosa, karena kristal asam musat mudah dimurnikan dan diketahui
bentuk kristal maupun titik leburnya (McGilvery&Goldstein, 1996).
4. 4. Pentosa
Beberapa pentosa yang penting diantaranya adalah arabinosa, xilosa, ribosa dan 2-
deoksiribosa. Keempat pentosa ini adalah aldopentosa dan tidak terdapat dalam keadaan
bebas di alam. Arabinosa diperoleh dari gum arab dengan jalan hidrolisis, sedangkan xilosa
diperoleh dari proses hidrolisis terhadap jerami atau kayu. Xilosa terdapat pada urine
seseorang yang disebabkan oleh suatu kelainan pada metabolisme karbohidrat. Kondisi
seseorang sedemikian itu disebut pentosuria. Ribosa dan deoksiribosa merupakan komponen
dari asam nukleat dan dapat diperoleh dengan cara hidrolisis. Dari rumusnya tampak bahwa
deoksiribosa kekurangan satu atom oksigen dibanding dengan ribosa.
(McGilvery&Goldstein, 1996)
y Oligosakarida
Senyawa yang termasukoligosakarida mempunyai molekul yang terdiri atas beberapa molekul
monosakarida. Dua molekul monosakarida yang berikatan satu dengan yang lain, membentuk
satu molekul disakarida. Oligosakarida yang lain adalah trisakarida yaitu yang terdiri atas tiga
molekul monosakarida dan tetrasakarida yang terbentuk dari empat molekul monosakarida.Oligosakarida yang paling banyak terdapat di alam adalah disakarida (McGilvery&Goldstein,
1996).
1. Sukrosa
Sukrosa adalah gula yang kita kenal sehari-hari, baik yang berasal dari tebu meupun dari bit.
Selain dari tebu dan bit, sukrosa terdapat pada tumbuhan lain, misalnya dalam buah nanas
dan dalamwortel. Dengan hidrolisis sukrosa akan terpecah dan menghasilkan glukosa danfruktosa (McGilvery&Goldstein, 1996). Pada molekul sukrosa terdapat ikatan antara molekul
glukosa dan fruktosa, yaitu antara atom karbon nomor 1 pada glukosa dengan atom karbon
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 3/23
nomor 2 pada fruktosa melalui atom oksigen. Kedua atom karbon tersebut adalah atomkarbon yang mempunyai gugus±OH glikosidik atau atom karbon yang merupakan gugus
aldehida pada glukosa dan gugus keton pada fruktosa. Oleh karena itu molekul sukrosa tidak mempunyai sifat dapat mereduksi ion-ion Cu2+ atau Ag+ dan juga tidak membentuk osazon
(McGilvery&Goldstein, 1996).
Sukrosa mempunyai sifat memutar cahaya terpolarisasi ke kanan. Hasil yang diperoleh dari
reaksi hidrolisis adalah glukosa dan fruktosa dalam jumlah yang ekuimolekuler. Glukosamemutar cahaya terpolarisasi ke kanan, sedangkan fruktosa ke kira. Oleh karena fruktosa
memiliki rotasi spesifik lebih besar dari glukosa, maka campuran glukosa dan fruktosa
sebagai hasil hidrolisis itu memutar ke kiri. Proses ini disebut inverse. hasil hidrolisis sukrosa
yaitu campuran glukosa dan fruktosa disebut gula invert.
2. Laktosa
Dengan menghidrolisis laktosa akan menghasilkan D-galaktosa dan D-gluokosa, karena itu
laktosa adalah suatu disakarida. Ikatan galaktosa dan glukosa terjadi antara atom karbon
nomor 1 pada galaktosa dan atom karbon nomor 4 pada glukosa. Oleh karenanya molekul
laktosa mempunyai sifat mereduksi gugus ±OH glikosidik. Dengan demikian laktosa
memiliki sifat mereduksi dan mutarotasi. Biasanya laktosa mengkristal dalam bentuk E.
Dibandingkan dengan glukosa, laktosa memiliki rasa yang kurang manis. Apabila laktosa
dihidrolisis kemudian dipanaskan dengan asam nitrat akan terbetuk asam musat.(McGilvery&Goldstein, 1996)
3. MaltosaMaltosa adalah suatu disakarida yang terbentuk dari dua molekul glukosa. ikatan yang terjadi
ialah antara atom karbon nomor 1 dan atom karbon nomor 4, oleh karenanya maltosa masihmempunyai gugus ±OH glikosidik dan dengan demikian masih mempunyai sifat mereduksi.
Maltosa merupakan hasil antara dalam proses hidrolisis amilum dengan asam maupun denganenzim. (McGilvery&Goldstein, 1996)
Telah diketahui bahwa hidrolisis amilum akan memberikan hasil akhir glukosa. Dalam tubuhkita amilum mengalami hidrolisis menjadi maltosa oleh enzim amylase. maltosa ini kemudian
diuraikan oleh enzim maltase menjadi glukosa yang digunakan oleh tubuh.
(McGilvery&Goldstein, 1996)
Urutan tingkat rasa manis pada beberapa mono dan disakarida
4. Rafinosa
Rafinosa adalah suatu trisakarida yang penting, terdiri atas tiga molekul monosakarida yang berikatan, yaitu galaktosa-glukosa-fruktosa. Atom karbon 1 pada galaktosa berikatan denganatom karbon 6 pada glukosa, selanjutnya atom karbon 1 pada glukosa berikatan dengan atom
karbon 2 pada fruktosa. (McGilvery&Goldstein, 1996)Apabila dihidrolisis sempurna, rafinosa akan menghasilkan galaktosa, glukosa dan fruktosa.
Hidrolisis dengan asam lemah atau pada konsentrasi H+
rendah, akan menghasilkan melibiosadan fruktosa. Hasil yang sama seperti ini juga dapat diperoleh melalui hidrolisis dengan
bantuan enzin sukrase. Di samping itu, hidrolisis dengan bantuan enzim maltase akanmemberikan hasil galaktosa dan sukrosa. Hasil hidrolisis sempurna juga dapat diperoleh
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 4/23
apabila dalam reaksi ini digunakan dua jenis enzim, yaitu sukrase dan melibiase. Melibiaseakan menguraikan melibiosa menjadi galaktosa dan glukosa (McGilvery&Goldstein, 1996).
Pada kenyataanya, rafinosa tidak memiliki sifat mereduksi. Hal ini disebabkan karena dalammolekul rafinosa tidak terdapat gugus±OH glikosidik. Rafinosa terdapat dalam bit dan tepung
biji kapas mengandung kira-kira 8%. Trisakarida ini tidak digunakan manusia sebagai sumber
karbohidrat (McGilvery&Goldstein, 1996).
5. StakiosaStakiosa adalah suatu tetrasakarida. Dengan jalan hidrolisis sempurna, stakiosa menghasilkan
2 molekul galaktosa, 1 molekul glukosa dan 1 molekul fruktosa. Pada hidrolisis parsial dapat
dihasilkan fruktosa dan manotriosa suatu trisakarida. Stakiosa tidak memiliki sifat mereduksi
(McGilvery&Goldstein, 1996)
y Polisakarida
Pada umumnya polisakarida mempunyai molekul besar dan lebih kompleks daripada mono
dan oligosakarida, Molekul polisakarida terdiri atas banyak molekul monosakarida.
Polisakarida yang terdiri atas satu macam monosakarida saja disebut homopolisakarida,
sedangkan yang menagdung senyawa lain disebut heteropolisakarida. Umumnya polisakarida
berupa senyawa berwarna putih dan tidak berbentuk kristal, tidak memiliki rasa manis dantidak memiliki sifat mereduksi. Berat molekut polisakarida bervariasi dari beberapa ribu
hingga lebih dari satu juta. Polisakarida yang dapat larut dalam air akan membentuk larutankoloid. beberapa polisakarida yang penting diantaranya adalah amilim, glikogen, dekstrin dan
selulosa. (McGilvery&Goldstein, 1996)1. Amilum
Amilum terdiri atas dua macam polisakarida yang kedua-duanya adalah polimer dari glukosa,yaitu amilosa (kira-kira 20-28%) dan sisanya amilopektin. Amilosa terdiri atas 250-300 unit
D-glukosa yang terikat dengan ikatan E 1,4-glikosidik, jadi molekulnya merupakan rantaiterbuka. Amilopektin juga terdiri atas molekul D-glukosa yang sebagian besar mempunyai
ikatan 1,4-glikosidik dan sebagian lagi ikatan 1,6-glikosidik. Adanya ikatan 1,6-glikosidik ini
menyebabkan terjadinya cabang, sehingga molekul amilopektin berbentuk rantai terbuka dan bercabang. Molekul amilopektin lebih besar daripada molekul amilosa karena terdiri atas
lebih dari 1.000 unit glukosa. Butir-butir pati tidak larut dalam air dingin tetapi apabilasuspensi dalam air dipanaskan, akan terbentuk suatu larutan koloid yang kental. larutan
koloid ini apabila diberi larutan iodium akan berwarna biru. Warna biru tersebut disebabkanoleh molekul amilosa yang membentuk senyawa. Amilopektin dengan iodium akan
memberikan warna ungu atau merah lembayung (McGilvery&Goldstein, 1996). Amilumdapat dihidrolisis sempurna dengan menggunakan asam sehingga menghasilkan glukosa.
hidrolisis juga dapat dilakukan dengan bantuan enzim amylase. Dalam ludah dan dalamcairan yang dikeluarkan oleh pankreas terdapat amylase yang bekerja terhadap amilum yang
terdapat dalam makanan kita. Oleh enzim amylase, amilum diubah menjadi maltosa dalam
bentuk F maltosa. (McGilvery&Goldstein, 1996)
2. GlikogenSeperti amilum, glikogen juga menghasilkan D-glukosa pada proses hidrolisis. Glikogen
yang terlarut dalam air dapat diendapkan dengan jalan menambahkan etanol. Endapan yang
terbentuk apabila dikeringkan berbentuk serbuk putih. Glikogen dapat memutar cahaya
terpolarisasi ke kanan dan mempunyai rotasi spesifik [E]D20=196o. Dengan iodium,
glikogen menghasilkan warna merah. Struktur glikogen serupa dengan struktur amilopektin
yaitu merupakan rantai glukosa yang mempunyai cabang. (McGilvery&Goldstein, 1996)
3. Dekstrin
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 5/23
Pada reaksi hidrolisis parsial, amilum terpecah menjadi molekul-molekul yang lebih kecilyang dikenal dengan nama dekstrin. jadi dekstrin adalah hasil antara proses hidrolisis amilum
sebelum terbentuk maltosa. tahap-tahap dalam proses hidrolisis amilum serta warna yangterjadi pada reaksi dengan iodium adalah sebagai berikut:
4. Selulosa
Selulosa terdapat dalam tumbuhan sebagai bahan penbentuk dinding sel. Serat kapas boleh
dikatakan seluruhnya adalah selulosa. Dalam tubuh kita selulosa tidak dapat dicernakankarena kita tidak mempunyai enzim yang dapat menguraikan selulosa. Dengan asam encer
tidak dapat terhidrolisis, tetapi oleh asam dengan konsentrasi tinggi dapat terhidrolisis
menjadi selobiosa dan D-glukosa. Selobiosa adalah suatu disakarida yang terdiri atas dua
molekul glukosa yang berikatan glikosidik antara atom karbon 1 dengan atom karbon 4.
(McGilvery&Goldstein, 1996)
5. Mukopolisakarida
Mukopolisakarida adalah suatu heteropolisakarida, yaitu polisakarida yang terdiri atas dua
jenis derivate monosakarida. Derivat monosakarida yang membentuk mukopolisakarida
tersebut ialah gula amino dan asam uronat. Debagai contoh asam hialuronat yang merupakan
komponen jaringan ikat yang terdapat pada otot, terbentuk dari kumpulan unit N-
asetilglukosamina yang berikatan dengan asam glukuronat. Heparin, suatu senyawa yang
berfungsi sebagai antikoagulan darah, adalah suatu mukopolisakarida.(McGilvery&Goldstein, 1996).
Karbohidrat banyak terdapat dalam bahan nabati, baik berupa gula sederhana, heksosa,
pentosa maupun karbohidrat dengan berat molekul yang tinggi. Selulosa dan lignin berperan sebagai penyusun dinding sel tanaman
Monosakarida seperti glukosa dan fruktosa terdapat pada buah-buahan Disakarida seperti gula tebu (sukrosa dan sakarosa) banyak terkandung dalam batang tebu
Didalam air susu terdapat laktosa dan gula susu.
Dekstrin banyak terdapat pada sirup pati, serealia dan umbi-umbian
Selulosa dan pectin banyak terdapat pada buah- buahan
Struktur karbohidrat selain mempunya hubungan dengan sifat kimia yang ditentukan
dengan sifat fisika dalam hal ini juga aktivitas optik (Mc Gilvery & Goldstein, 1996). Jikakristal glukosa murni dilarutkan dalam air, maka larutannya akan memutar cahaya
terpolarisasi ke arah kanan. Namun bila larutan itu dibiarkan beberapa waktu dan diamati
putarannya, terlihat bahwa sudut putaran berubah menjadi semakin kecil, hingga lama
kelamaan menjadi tetap. Peristiwa ini disebut mutarotasi, yang berarti perubahan rotasi
perputaran (Mc Gilvery & Goldstein, 1996).
Monosakarida dan beberapa disakarida mempunyai sifat dapat mereduksi terutama
dalam suasana basa. Seifat sebagai reduktor ini dapat digunakan untuk keperluan identifikasi
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 6/23
karbohidrat maupun analisis kuantitatif. Sifat mereduksi ini disebabkan oleh adanya gugusaldehid dan keton bebas.
Analisis Kualitatif
Karbohidrat dengan zat tertentu akn menghasilkan warna tertentu yg dapat dgunakan
untuk analisis kualitatif. Beberapa reaksi yg lebih spesifik dpt membedakan golongan
karbohidrat. Banyak cara untuk mengetahui atau mengidentifikasi karbohidrat dalam suatu bahan alam, diantaranya adalah sebagai berikut:
1. Uji Molisch
Pereaksi Molish harus selalu dibuat segar. Pereaksi ini dibuat dari -naftol dengan etanol.
Karbohidrat oleh asam sulfat pekat akan terhidrolisis menjadi monosakarida dan selanjutnya
monosakarida mengalami dehidrasi oleh asam sulfat pekat menjadi furfural atau hidroksi
metil furfural. Furfural dengan -naftol akan berkondensasi membentuk senyawa kompleks
yang berwarna ungu. Apabila pemberian asam sulfat pada larutan karbohidrat yang telah
diberi -naftol melalui dinding gelas dengan hati-hati maka warna ungu yang terbentuk
berupa cincin pada batas antara larutan karbohidrat dengan asam sulfat.
KH (pentose) + H2SO4 pekat furfural + -naftol warna unguKH (heksosa) + H2SO4 pekat HM-furfural + -naftol warna ungu
Kedua macam reaksi diatas berlaku umum, baik untuk aldosa (-CHO) maupun karbohidratkelompok ketosa (C=O).
2. Uji Benedict
Pereaksi ini berupa larutan yang mengandung kuprisulfat, natrium karbonat, dan natriumsitrat. Glukosa dapat mereduksi ion Cu 2+ dari kuprisulfat menjadi ion Cu + yang kemudian
mengendap sebagai CuO. Adanya natrium karbonat dan natrium sitrat membuat pereduksiBenedict bersifat basa lemah. Endapan yang terbentuk dapat berwarna hijau, kuning, atau
merah bata.Reaksi:
R-COH + CuO Cu2O (s) + R-COOH
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 7/23
AtauKH + camp CuSO4, Na-Sitrat, Na2CO3 Cu2O (endapan merah bata)
3. Uji BarfoedLarutan Barfoed merupakan campuran kupriasetat dan asam asetat. Larutan ini akan bereaksi
dengan gula pereduksi sehingga dihasilkan endapan Tembaga (II) Oksida. Dalam suasanaasam, gula pereduksi yang termasuk disakarida memberikan reaksi yang sangat lambat
dengan larutan Barfoed sehingga tidak memberikan endapan merah kecuali pada waktu percobaan yang diperlama. Uji ini untuk menunjukkan gula pereduksi monosakarida.
KH + camp CuSO4 dan CH3COOH Cu2O endapan merah bata
4. Uji Seliwanoff
Peristiwa dehidrasi monosakarida ketosa menjadi furfural lebih cepat dibandingkan dehidrasimonosakarida aldosa. Hal ini dikarenakan aldosa sebelum mengalami dehidrasi lebih dahulu
akan mengalami transformasi ketosa. Dengan demikian aldosa akan bereaksi negatif pada uji
silwanoff. Pada pengujian ini furfural yang terbentuk dari dehidrasi tersebut dapat bereaksi
denga resorsinol membentuk senyawa kompleks berwarna merah.
KH (ketosa) + H2SO4 furfural + resorsinol warna merah.
KH (aldosa) + H2SO4 furfural + resorsinol negatif
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 8/23
5. Uji Tauber
Pentosa dalam asam asetat pekat jika dipanaskan berubah menjadi furfural uyang kemudian
dengan benzidin mengadakan kondensasi membentuk zat yang berwarna merah anggur.
Heksosa tidak memberikan warna merah. Reaksi ini posotif untuk aldopentosa dan negatif
untuk ketopentosa.
6. Uji Fenilhidrazin
Semua karbohidrat yang mempunyai gugus aldehid atau keton bebas akan membentuk osazon bila dipanaskan bersama fenilhidrazin berlebih. Osazon yang terjadi mempunyai
bentuk kristal dan titik lebur yang khas bagi mesing-masing karbohidrat. Hal ini sangat
penting untuk mengidentifikasi karbohidrat dan merupakan salah satu cara membedakan
beberapa monosakarida.
7. Uji Iodium
Karbohidrat dengan golongan polisakarida akan memberikan reaksi dengan larutan iodium
dan memberikan warna yang spesifik bergantung pada jenis karbohidratnya. Analisa dengan
iodin akn berwarna biru, amilo[ektin dengan iodin akan berwarna merah violet, glikogen
dengan iodin akan berwarna merah cokelat, begitu juga dengan dekstrin.
KH (poilisakarida) + Iod (I2) warna spesifik (biru kehitaman)
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 9/23
8. Uji FermentasiDalam ragi terdapat enzim-enzim yang dapat mencerna amilum sampai menjadi CO2 dan
H2O, juga terdapat enzim sukrosa (invertase) maupun fruktokinase. Oleh karena amilum,glukosa, fruktosa, maltosa, dan sukrosa dapat diragikan. Dalam ragi tidak terdapat laktosa,
maka laktosa tidak dapat dipecahkan. Hal ini dapat digunakan untuk membedakan apakah
gula dalam urin glukosa atau fruktosa. Enzim ragi pada umumnya baik bekerja pada
temperatur 37o C ± 40o C.
Analisis Kuantitatif Kadar karbohidrat dalam berbagai bahan makanan dapat ditentukan dengan berbagai
cara, diantaranya cara kimiawi, cara fisik, cara enzimatik atau biokimia dan carakromatografi. Penentuan karbohidrat yang termasuk polisakarida maupun oligosakarida
memerlukan pendahuluan yaitu hidrolisis lebih dahulu sehingga diperoleh monosakarida.Untuk keperluan ini, maka bahan dihidrolisa dengan asam atau enzim pada suatu keadaan
tertentu. Salah satu metode yang dapat digunakan adalah Luff Schoorl.Penentuan kadar karbohidrat pada percobaan dengan metode Luff Schoorl dibagi atas
tiga tahapan, yaitu:1. Tahap sebelum inversi
2. Tahap setelah inversi lemah
3. Tahap setelah inversi kuatPada penentuan karbohidrat dengan metode Luff Schoorl, yang ditentukan bukan Cu2O
yang mengendap tapi dengan menggunakan CuO dalam larutan yang belum direaksikandengan gula reduksi (titrasi blanko) dan sesudah direaksikan dengan gula reduksi (titrasi
sampel). Penentuannya dengan menggunakan titrasi volumetri. Setelah diketahui selisih banyaknya titrasi blanko dan titrasi sampel kemudian dikonsultasikan dengan tabel yang telah
tersedia yang menggambarkan hubungan antara banyaknya Na2S2O3 dengan banyaknya gula pereduksi. Pada metode Luff Schoorl terdapat dua cara pengukuran yaitu :
1. Penentuan Cu tereduksi dengan I2
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 10/23
2. Menggunakan prosedur Lae-EynonMetode Luff Schoorl mempunyai kelemahan yang terutama disebabkan oleh komposisi
yang konstan. Hal ini diketahui dari penelitian A.M Maiden yang menjelaskan bahwa hasil pengukuran yang diperoleh dibedakan oleh pebuatan reagen yang berbeda.
Monosakarida akan mereduksikan CuO dalam larutan Luff menjadi Cu2O. Kelebihan
CuO akan direduksikan dengan KI berlebih, sehingga dilepaskan I2. I2 yang dibebaskan
tersebut dititrasi dengan larutan Na2S2O3. Pada dasarnya prinsip metode analisa yangdigunakan adalah Iodometri karena kita akan menganalisa I2 yang bebas untuk dijadikan
dasar penetapan kadar. Dimana proses iodometri adalah proses titrasi terhadap iodium (I2)
bebas dalam larutan. Apabila terdapat zat oksidator kuat (misal H2SO4) dalam larutannya
yang bersifat netral atau sedikit asam penambahan ion iodida berlebih akan membuat zat
oksidator tersebut tereduksi dan membebaskan I2 yang setara jumlahnya dengan dengan
banyaknya oksidator. I2 bebas ini selanjutnya akan dititrasi dengan larutan standar Na2S2O3
sehinga I2 akan membentuk kompleks iod-amilum yang tidak larut dalam air. Oleh karena itu,
jika dalam suatu titrasi membutuhkan indikator amilum, maka penambahan amilum sebelum
titik ekivalen.
Metode Luff Schoorl ini baik digunakan untuk menentukan kadar karbohidrat yang berukuran sedang. Dalam penelitian M.Verhaart dinyatakan bahwa metode Luff Schoorl
merupakan metode tebaik untuk mengukur kadar karbohidrat dengan tingkat kesalahansebesar 10%.
Persamaanreaksinya:
R-COH + 2 CuO Cu2O (s) + R-COOH (aq)H2SO4 (aq) + CuO CuSO4 (aq) + H2O (l)
CuSO4 (aq) + 2 KI (aq) CuI2 (aq) + K 2SO4 (aq)
2 CuI2 Cu2I2 + I2
I2 + Na2S2O3 Na2S4O6 + NaI
I2 + amilum Biru
Penetapan sebelum inversi dilakukan untuk mengetahui jumlah gula pereduksi yang
terdapat dalam sampel. Penetapan inversi lemah dilakukan untuk mengetahui jumlah
disakarida yang tidak bersifat reduksi seperti sukrosa. Penetapan sesudah inversi kuat
biasanya dilakukan untuk menentukan kadar karbohidrat pada poliskarida.
C. Alat dan Bahan Analisis Kualitatif
Alat
1. Tabung reaksi
2. Rak tabung reaksi3. Pipet tetes tangkai panjang
4. Kaca preparat5. Penangas air
6. Mikroskop
7. Batang pengaduk 8. Pemanas listrik 9. Botol semprot
10. Kertas saring
11. Corong kaca
12. Gelas kimia
13. Spatula
14. Kertas lakmus¶
15. Penjepit tabung reaksi
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 11/23
Bahan1. Pereaksi Molisch
2. Pereaksi Asam Pikrat3. Pereaksi Barfoed
4. Pereaksi Benedict
5. Pereaksi Seliwanoff
6. Pereaksi Fenilhidrazin7. Air tebu
8. Larutan kanji 1%
9. Larutan NaOH 6M
10. Larutan HCl 6M
11. Larutan I2 0,01M
12. Larutan HCl pekat
13. Amil Alkohol
Analisis Kuantitatif
Alat1. Tabung Reaksi
2. Gelas Kimia 250mL3. Kassa
4. Botol semprot5. Labu ukur 250mL
6. Kertas saring7. Corong pendek
8. Labu erlenmeyer
9. Pembakar bunsen
10. Buret
11. Pipet volum
12. Gelas ukur
13. Pipet tetes
14. Batang pengaduk
Bahan
1. Larutan Na2S2O3
2. Larutan H2SO4
3. Larutan KI
4. Air tebu
5. Larutan HCl6. Aquades
7. Larutan NaOH8. Larutan Luff Schoorl
- CuSO4.5H2O
- Asam sitrat- Na2CO3.10H2O
D. Diagram Alir
Analisis Kualitatif Karbohidrat
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 12/23
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 13/23
E. Langkah Kerja, Pengamatan dan Analisis
No. Langkah Kerja Pengamatan Analisis
a Analisis Kualitatif Karbohidrat
es umum Karbohidrat
Uji Molisch
2mL air tebu dimasukkan kedalam tabung reaksi
Ditambahkan 2 tetes pereaksi MolischDikocok Tabung reaksi dimiringkan Ditambahkan 2 mL asam sulfat pekat secara perlahan
Diamati
Pereaksi Molisch:larutan berwarnaorange
Air tebu: larutan berwarna kuning
kecokelatan
Pereaksi Molisch
+ air tebu +
dikocok saling
melarutkan dan
terbentuk endapan
putih+ asam sulfat
pekat terbentuk cincin
berwarna ungu
Karbohidratdihidrolisis olehasam sulfat menjadi
monosakarida
Didehidrasi dengan
asam sulfat menjadi
furfural
Furfural
berkondensasi
dengan -naftol
membentuk senyawa
kompleks berwarnaungu
Positif (sampelmengandung
karbohidrat)
es Oksidasi Gula Uji Benedict
5 mL pereaksi Benedict ditambahkan 8 tetes air tebu Dikocok
Diletakkan didalam penangas air yang mendidih selama3 menit
Didinginkan
Diamati
Uji Barfoed
y 3 mL pereaksi Barfoed ditambahkan 2 mL air tebuDiletakkan didalam penangas air yang mendidih selama
1 menit atau lebih
Diamati
Pereaksi
Benedict: larutan
berwarna biru tua
Air tebu : larutan
berwarna kuningkecokelatan
Pereaksi Benedict
+ air tebu
terbentuk dualapisan
+ dikocok
biru kehijauan
dipanaskan
terbentuk endapanmerah bata
Pereaksi Barfoed
: larutan berwarna biru tua
Air tebu : larutan
berwarna kuning
kecokelatan
Pereaksi Barfoed
Positif terhadap ujiBendict (sampel
mengandung gula pereduksi
monosakarida)
ositif terhadap uji
Barfoed (sampel
mengandungmonosakarida)
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 14/23
+ air tebu terbentuk dua
lapisan
+ dipanaskan 7
menit endapanmerah bata
es untuk Ketosa dan Pentosa
Uji Seliwanoff
3 mL pereaksi Seliwanoff dimasukkan kedalam tabung reaksi Ditambahkan 3 tetes air tebuDiletakkan didalam penangas air Dididihkan sampai ada perubahanDiamati
Uji Tauber
1 mL pereaksi Tauber dimasukkan kedalam tabung
reaksi
Ditambahkan 5 tetes air tebuy Dipanaskan sampai mendidih
y Didinginkany Diamati
Pereaksi
Seliwanoff :larutan tidak
berwarna
Air tebu : larutan
berwarna kuningkecokelatan
PereaksiSeliwanoff + air
tebu agak keruh
+ dipanaskan
larutan berwarna
merah
Pereaksi Tauber :larutan berwarna
jingga pudar
bening
Air tebu : larutan berwarna kuning
kecokelatan
Pereaksi Tauber +
air tebu larutan
berwarna orange
+ dipanaskan
tidak mengalami
perubahan
Ketosa didehidrasi
menjadi furfural
Furfural bereaksi
dengan resorsinolmembentuk senyawa
kompleks berwarna
merah
Positif terhadap ujiSeliwanoff (sampel
termasuk golonganketosa)
Pentosa + pereaksi
Tauber larutan berwarna merah
anggur
Heksosa + Pereaksi
tauber tidak
merah
Negatif terhadap uji
Tauber (sampeltermasuk golongan
heksosa)
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 15/23
in-lain Uji Fenilhidrazin
masing-masing 2mL glukosa, galaktosa dan fruktosaditambahkan 5 mL fenilhidrazin
Diletakkan didalam pennagas air selama 30 menit
Dibiarkan sampai dingin
Diambil sedikit dan diletakkan diatas kaca objek Diamati
Inversi sukrosa
-10 mL larutan sukrosa 1% dimasukkan kedalam tabung
reaksi
y Ditambahkan 2 tetes asam sulfat pekat
y Dipanaskan dalam penangas air yang mendidihselama 3 menit
y Didinginkany Dinetralkan dengan menambahkan Na2CO3 jenuh
y Dilakukan uji Benedicty Diamati
5. Uji hidrolisis air tebu
10 mL air tebu dimasukkan kedalam tabung reaksi Ditambahkan 3 mL HCl 3MDiletakkan dalam penangas air mendidih
Diambil 1 tetes tiap 3 menitD tes dengan larutan I2 0,01M sampai warna iodium
permanenDinetralkan dengan penambahan Na2CO3
Dilakukan tes terhadap pereaksi BenedictDiamati
-
Fenilhidrazin :
larutan tidak berwarna
Fenilhidrazin +sampel +
dipanaskan larutan berwarna
kuning
25 menit
terbentuk endapan
kuning
(tidak selesai
dilakukan)
Larutan sukrosa :
larutan berwarnakuning
kecokelatan
H2SO4 : larutan
tak berwarna
Na2CO3 : larutan
tak berwarna
Larutan sukrosa +
H2SO4 larutan
berwarna kuning
kecokelatan
+ dipanaskan larutan berwarna
kuning
kecokelatan
+Na2CO3
netral (tidak
memberikan
perubahan warna pada uji lakmus,
timbul busa (gasCO2)
+ Uji Benedict larutan
berwarna biru tua
+ dipanaskan
merah bata
Endapan kuning
diperkirakanmerupakan osazon
yang terbentuk darireaksi monosakarida
yang terdapatdidalam sampel
dengan reagen
fenilhidrazin
Positif (sampelmengandung gula
pereduksi)
Positif mengandunggula pereduksi
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 16/23
HCl : larutan tak
berwarnaAir tebu : larutan
berwarna kuningkecokelatan
HCL 3M + air
tebu : larutan
berwarna kuning
kecokelatan pudar
3 menit pertama
larutan
berwarna merah
cokelat
3 menit kedua
larutan berwarna
merak cokelat3 menit ketiga
larutan berwarna
merah cokelat
+ pereaksi Benedict
merah bata
b Analisis Kuantitatif Karbohidrat
embuatan Larutan Luff Schoorl
y 20 gr CuSO4.5H2O dimasukkan kedalam gelas kimia
Ditambahkan 100 mL aquades
y 50 gr asam sirat dimasukan ke dalam gelas kimia
Ditambahkan 50 mL H2O
y 310,4 gr Na2CO3.10H2O dimasukkan kedalam gelas
kimiaitambahkan 100 mL H2O kemudian dipanaskan
Larutan 1,2,3 dicampurkan
Dibiarkan semalam
Tidak dilakukan
Tidak dilakukan
Tidak dilakukan
Tidak dilakukan
apan sebelum inversi lemah
25 mL sampel ditambahkan 25 mL pereaksi Luff SchoorlDipanaskan 10 menit
Tidak dilakukan
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 17/23
Didinginkan dan ditambah 10 mL KI 1N dan 15 mLH2SO4
Dititrasi dengan Na2S2O3 Dicatat volume Na2S2O3
hapan setelah inversi lemah
25 mL sampel ditambahkan 50 mL larutan HCl 20%
Ditambahkan 50 mL aquades
Dipanaskan 10 menitDidinginkan
Ditambahkan larutan NaOH 20%Ditambahkan phenolftalein
Tidak dilakukan
ahapan setelah inversi kuat
25 mL sampel ditambahkan 50 mL aquadesDitambahkan 10 mL larutan HCl 10%
DipanaskanDidinginkan
Dinetralkan dengan NaOH 20%
Tidak dilakukan
asi blanko
25 mL larutan Luff Schoorl Ditambahkan 25 mL aquades
Dipanaskan 10 menit
Ditambahkan 15 mL larutan H2SO4 6N
Ditambahkan 10 mL larutan KI 1N
Ditambahkan indikator amilumDititrasi dengan larutan Na2S2O3
Dicatat volume larutan Na2S2O3 yang terpakai
Larutan LS :
larutan berwarna
biru tua
+ aquades 25 mL
larutan
berwarna biru tua+ dipanaskan
10 menit
larutan berwarna biru tua + H2SO4
18M timbulgas
+ KI cokelatmuda
Larutan LS
mengandung CuO,
ketika CuO + H2SO4
CuSO4 + H2O
Ketika campuran
ditambahkan KI,terbentuk warnakuning kecokelatan
yang menunjukkanadanya campuran
CuI, Cu2I2 dan I2.
Ketika ditambahkan
amilum, terbentuk warna biru ungu
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 18/23
+ indikator amilum
terdapat warna biru didalam
larutan
+ Na2S2O3 hingga
warna biru hilangV Na2S2O3 :
22,8mL
yang merupakankompleks dari
amilum-I2
Ketika dititrasi
dengan Na2S2O3,terbentuk warne
putih susu yangmerupakan warna
dari Cu2I2
etuan kadar karbohidrat
25 mL larutan sampel ditambahkan 25 mL larutan Luff Schoorl
Dipanaskan 10 menit
Didinginkan
Ditambahkan 15 mL larutan H2SO4 6N
Ditambahkan 10 mL larutan KI 1N
Ditambahkan indikator amilum
Dititrasi dengan larutan Na2S2O3
Dicatat volume larutan Na2S2O3 yang terpakai
Sampel + LS larutan berwarna
biru tua
+ dipanaskan
larutan berwarna
merah bata
+ H2SO4 18M
timbul gelembung
gas
+ KI larutan
berwarna cokelatmuda
+ indikator
amilum tidak
ditemukan warna
biru didalam
larutan
Ketika sampelditambahkan larutan
LS, terjadi reaksi R-COH + 2CuO
Cu2O + R-COOHyang membentuk
warna merah bata
setalah dipanaskan.
Ketika ditambahkanKI, tidak terbentuk
warna cokelat karena
I-
tidak bereaksidengan Cu
2+, artinya
Cu2+
dalam larutantelah habis bereaksi
dengan sampel
Ketika ditetesi
indikator amilum,tidak terbentuk
warna biru karenatidak ada I2 dalam
campuran
Dengan demikian,
kadar gula dalam
sampel � reagen LS
yang dipakai
idrolisis sampel
0,5 gr sampel dilarutkan kedalam 15 mL air mendidih
ditambahkan 5 mL larutan HCl 1N
Larutan disimpan dalam air mendidih selama 10 menit
Diidnginkan
Ditambahkan 5 mL larutan NaOH 1N
Diencerkan hingga 250 mL dalam labu ukur 250 mL
Air tebu : larutan berwarna kuning
kecokalatan
Air tebu + air mendidih
larutan berwarna
kuningkecokelatan
Air mendidih yangditambahkan
berfungsi sebagai
peeraksi dalam
hidrolisis
untuk mempercepat
reaksi, maka air yang ditambahkan
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 19/23
+ HCl 6M larutan berwarna
agak kemerahan
Dipanaskan dan
didinginkan tidak mengalami
perubahan+ NaOH
netral
Diencerkanmenjadi 100mL
larutan
berwarna kuning
kecokelatan
adalah air yangmendidih
HCl 6N merupakankatalis atau pemberi
suasana asam untuk mempercepat reaksi
NaOH 6N dipakaiuntuk menetralkan
campuran sehingga
memungkinkan
untuk dilakukan uji
iodium
F. Analisis dan Pembahasan
Percobaan yang dilakukan adalah analisis kualitatif dan analisis kuantitatif karbohidratyang terdapat dalam air tebu. Melalui analisis kualitatif kita dapat menentukan jenis
karbohidrat yang terdapat dalam sampel (air tebu), sedangkan analisis kuantitatif berguna
untuk menentukan kadar karbohidrat yang terkandung dalam sampel air tebu tersebut.
Analisis Kualitatif Karbohidrat
Untuk analisis kualitatif dilakukan beberapa tes pada sampel diantaranya uji Molisch, uji
Benedict, uji Barfoed, uji Seliwanoff, uji Tauber, uji fenilhidrazin, Inversi sukrosa, uji
iodium, dan uji hidrolisis air tebu.
Berdasarkan percobaan, diketahui bahwa pada uji molisch, pereaksi dibuat dari -naftol
dengan etanol. Ketika pereaksi (orange) ditambahkan air tebu (kuning kecoklatan) dan H2SO4
(tak berwarna), maka terbentuk cincin berwarna ungu. Karbohidrat oleh asam sulfat pekatakan terhidrolisis menjadi monosakarida dan selanjutnya monosakarida mengalami dehidrasi
oleh asam sulfat pekat menjadi furfural atau hidroksi metil furfural. Furfural dengan -naftolakan berkondensasi membentuk senyawa kompleks yang berwarna ungu. Hal ini
menunjukkan bahwa sampel positif mengandung karbohidrat.Karbohidrat + H2SO4 pekat HM-furfural + -naftol cincin ungu
Pada uji benedict, pereaksi Benedict (berwarna biru) berupa larutan yang mengandungkuprisulfat, natrium karbonat, dan natrium sitrat. Ketika pereaksi ditambahkan air tebu
(kuning kecoklatan), terbentuk dua lapisan. Lapisan atas merupakan air tebu. Sedangkan
lapisan bawah adalah pereaksi benedict. Larutan dikocok dan membentuk larutan berwarna
biru kehijauan. Selanjutnya dipanaskan dan terbentuk endapan merah bata. Glukosa dapat
mereduksi ion Cu2+
dari kuprisulfat menjadi ion Cu+
yang kemudian mengendap sebagai
CuO. Adanya natrium karbonat dan natrium sitrat membuat pereduksi Benedict bersifat basalemah. Endapan yang terbentuk dapat berwarna hijau, kuning, atau merah bata.
Hasil uji positif pada fruktosa, glukosa, maltosa, dan laktosa, sedangkan untuk
karbohidrat jenis sukrosa dan pati menunjukkan hasil negatif. Sekalipun aldosa atau ketosa berada dalam bentuk sikliknya, namun bentuk ini berada dalam kesetimbangannya dengan
sejumlah kecil aldehida atau keton rantai terbuka, sehingga gugus aldehida atau keton ini
dapat mereduksi berbagai macam reduktor, oleh karena itu, karbohidrat yang menunjukkan
hasil reaksi positif dinamakan gula pereduksi. Pada sukrosa, walaupun tersusun oleh glukosa
dan fruktosa, namun atom karbon anomerik keduanya saling terikat, sehingga pada setiap unit
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 20/23
monosakarida tidak lagi terdapat gugus aldehida atau keton yang dapat bermutarotasi menjadirantai terbuka, hal ini menyebabkan sukrosa tak dapat mereduksi pereaksi benedict. Pada
pati, sekalipun terdapat glukosa rantai terbuka pada ujung rantai polimer, namunkonsentrasinya sangatlah kecil, sehingga warna hasil reaksi tidak tampak oleh penglihatan.
Karbohidrat + campuran CuSO4, Na-Sitrat, Na2CO3 Cu2O (endapan merah bata)
Pada uji Barfoed, pereaksi Barfoed (biru tua) merupakan campuran kupriasetat dan
asam asetat. Ketika pereaksi ditambahkan air tebu dan dipanaskan, pada menit ke-7 terbentuk endapan merah bata. Larutan ini akan bereaksi dengan gula pereduksi sehingga dihasilkan
endapan Tembaga (II) Oksida. Dalam suasana asam, gula pereduksi yang termasuk
disakarida memberikan reaksi yang sangat lambat dengan larutan Barfoed sehingga tidak
memberikan endapan merah kecuali pada waktu percobaan yang diperlama. Uji ini untuk
menunjukkan gula pereduksi monosakarida.
Karbohidrat + campuran CuSO4 dan CH3COOH Cu2O (endapan merah bata)
Uji Seliwanoff dilakukan dengan mereaksikan pereaksi Seliwanoff (tak berwarna)
dengan air tebu, membentuk larutan yang agak keruh. Selanjutnya dipanaskan dalam penangas air yang mendidih sehingga terbentuk larutan berwarna merah. Dari percobaan,
diketahui bahwa ketosa didehidrasi menjadi furfural. Furfural tersebut akan bereaksi denganresorsinol membentuk senyawa kompleks berwarna merah. Dari uji seliwanoff dapat
disimpulkan bahwa sampel termasuk ketosa karena pada uji seliwanoff, ketosa akanmenghasilkan senyawa kompleks berwarna merah, sedangkan untuk aldosa tidak.
KH (ketosa) + H2SO4 furfural + resorsinol warna merah.KH (aldosa) + H2SO4 furfural + resorsinol negatif
Pada uji Teuber, pereaksi Tauber (jingga pudar bening) direaksikan dengan air tebu
membentuk larutan berwarna orange. Selanjutnya dipanaskan dan tidak mengalami
perubahan. Hal ini berarti sampel tidak mengandung pentosa karena negatif terhadap tes
Tauber. Dengan kata lain, smpel mengandung heksosa.
Pada uji fenilhidrazin, pereaksi fenilhidrazin (tak berwarna) ketika direaksikan dengan
sampel dan dipanaskan terbentuk warna kuning. Setalah 25 menit terbentuk endapan kuning
yang diperkirakan merupakan osazon yang terbentuk dari reaksi monosakarida yang terdapat
dalam sampel dengan reagen fenilhidrazin. Namun tidak dilakukan uji bentuk kristal karena
keterbatasan waktu sehingga tidak bisa digunakan untuk mengidentifikasi jenis karbohidrat
yang terdapat didalam sampel.
Selanjutnya dilakukan inversi sukrosa dengan menambahkan asam sulfat pekat
kedalam larutan sukrosa (kuning kecokelatan). Selanjutnya dipanaskan dan ditambahkan
natrium karbonat agar larutan netral. Penetralan larutan ini dilakukan dengan menggunakankertas lakmus sebagai penguji pH. Kemudian dilakukan uji Benedict membentuk larutan biru
tua. Lalu dipanaskan hingga berwarna merah bata. Dari uji ini diketahui bahwa sampelmengandung gula pereduksi.
Untuk uji Iodium, air tebu dimasukkan kedalam 3 tabung yang berbeda. Tabung
pertama ditambahkan air dan I2, tabung ke-2 ditambahkan HCl dan I2, tabung ke-3ditambahkan NaOH dan I2. Ketiga larutan kemudian diamati. Dari percobaan, tidak dihasilkan endapan ungu biru yang berarti bahwa sampel tidak mengandung pati.
Pada analisis kualitatif yang terakhir dilakukan hidrolisis air tebu dimana air tebu
ditambahkan HCl (kuning muda). Selanjutnya dipanaskan dan diambil 1 tetes tiap 3 menit
serta di tes dengan larutan I2 0,01M. Pada 3 menit ke-1, ke-2, dan ke-3 terbentuk larutan
merah cokelat. Kemudian dinetralkan dengan natrium karbonat. Ketika dilakukan uji
Benedict, terbentuk endapan merah bata yang berarti bahwa sampel mengandung gula
pereduksi.
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 21/23
Dari berbagai uji diatas menunjukkan sampel mengandung fruktosa, glukosa danmungkin juga sukrosa karena sukrosa terbentuk dari fruktosa dan glukosa.
Glukosa adalah suatu aldoheksosa dan sering disebut dekstrosa karena mempunyai sifatdapat memutar cahaya terpolarisasi ke arah kanan. Di alam, glukosa terdapat dalam buah-
buahan dan madu lebah. Darah manusia normal mengandung glukosa dalam jumlah atau
konsentrasi yang tetap, yaitu antara 70-100 mg tiap 100 ml darah. Glukosa darah ini dapat
bertambah setelah kita makan makanan sumber karbohidrat, namun kira-kira 2 jam sesudahitu, jumlah glukosa darah akan kembali pada keadaan semula. Pada orang yang menderita
diabetes mellitus, jumlah glukosa darah lebih dari 130 mg per 100 ml darah
(McGilvery&Goldstein, 1996). D-glukosa memiliki sifat mereduksi reagen Benedict, Haynes,
Barfoed, gula pereduksi, memberi osazon dengan fenilhidrazina, difermentasikan oleh ragi
dan dengan HNO3 membentuk asan sakarat yang larut (Harper et al, 1979).
Madu lebah selain mengandung glukosa juga mengandung fruktosa. Fruktosa adalah
suatu ketoheksosa yang mempunyai sifat memutar cahaya terpolarisasi ke kiri dan karenanya
disebut juga levulosa. Pada umumnya monosakarida dan disakarida mempunyai rasa manis.
(McGilvery&Goldstein, 1996) Fruktosa mempunyai rasa lebih manis daripada glukosa, juga
lebih manis daripada gula tebu atau sukrosa. Fruktosa dapat dibedakan dari glukosa dengan pereaksi seliwanoff, yaitu larutan resorsinol (1,3 dihidroksi benzene) dalam asam HCl.
Dengan pereaksi ini, mula-mula fruktosa diubah menjadi hidroksimetilfurfural yangselanjutnya bereaksi dengan resorsinol membentuk senyawa yang berwarna merah. pereaksi
Seliwanoff ini khas untuk menunjukkan adanya ketosa. Fruktosa berikatan dengan glukosamembentuk sukrosa, yaitu gula yang biasa digunakan sehari-hari sebagai pemanis, dan
berasal dari tebu atau bit (McGilvery&Goldstein, 1996). D-fruktosa mempunyai sifatmereduksi reagen Benedict, Haynes, Barfoed (gula pereduksi), membentuk osazon dengan
fenilhidrazina yang identik dengan osazon glukosa, difermentasi oleh ragi dan berwarna
merah ceri dengan reagen Seliwanoff resorsinol-HCl (Harper et al, 1979).
Sukrosa adalah gula yang kita kenal sehari-hari, baik yang berasal dari tebu meupun
dari bit. Selain dari tebu dan bit, sukrosa terdapat pada tumbuhan lain, misalnya dalam buah
nanas dan dalamwortel. Dengan hidrolisis sukrosa akan terpecah dan menghasilkan glukosa
dan fruktosa. (McGilvery&Goldstein, 1996) Pada molekul sukrosa terdapat ikatan antara
molekul glukosa dan fruktosa, yaitu antara atom karbon nomor 1 pada glukosa dengan atom
karbon nomor 2 pada fruktosa melalui atom oksigen. Kedua atom karbon tersebut adalah
atom karbon yang mempunyai gugus OH glikosidik atau atom karbon yang merupakan gugus
aldehida pada glukosa dan gugus keton pada fruktosa. . Oleh karena itu molekul sukrosa tidak
mempunyai sifat dapat mereduksi ion-ion Cu 2+ atau Ag+ dan juga tidak membentuk osazon.
(McGilvery&Goldstein, 1996)
Analisis Kuantitatif KarbohidratPada analisis kuantitatif, dapat ditentukan kadar karbohidrat yang terkandung dalam
suatu sampel. Banyak cara yang digunakan untuk analisis ini, salah satunya dengan cara Luff Schoorl. Pengukuran karbohidrat yang merupakan gula pereduksi dengan metode Luff
Schoorl ini didasarkan pada reaksi sebagai berikut :
R-CHO + 2 Cu
2+
R-COOH + Cu2O2 Cu2+
+ 4 I-Cu2I2 + I2
2 S2O32- + I2 S4O6
2- + 2 I-
Dalam percobaan ini, pereaksi Luff Schoorl telah disediakan. Larutan ini terdiri dari
larutan CuSO4.5H2O, larutan asam sitrat, dan larutan Na2C2O3.10H2O. mula-mula dilakukan
titrasi blanko dengan titran larutan Na2C2O3. Larutan Luff Schoorl ditambahkan aquades dan
dipanaskan. Setelah itu ditambahkan H2SO4 dengan persamaan reaksi:
CuO + H2SO4 CuSO4 + H2O
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 22/23
Kemudian ditambahkan KI membentuk larutan berwarna kuning kecokelatan yangmenunjukkan adanya campuran CuI2, Cu2I2 dan I2. Ketika ditambahkan indikator amilum,
terbentuk larutan berwarna biru ungu yang merupakan kompleks dari amilum-I2. Selanjutnyadititrasi dengan larutan Na2S2O3 hingga warna biru hilang. I2 bereaksi dan terbentuk larutan
warna putih susu yang merupakan warna dari Cu2I2. Volume larutan Na2S2O3 yang terpakai
dapat digunakan untuk menentukan berapa kadar karbohidrat yang terkandung didalam
sampel. Volume Na2S2O3 yang terpakai sebanding dengan banyaknya I2 sisa yang bereaksidengan karbohidrat. Jika diketahui berapa sisa I2 yang bereaksi dengan Na2S2O3, maka dapat
ditentukan berapa I2 yang bereaksi dengan karbohidrat sehingga dapat ditentukan kadar
karbohidratnya.
Langkah selanjutnya adalah penentuan kadar karbohidrat dengan menggunakan larutan
Luff Schoor yang ditambahkan kedalam larutan sampel dan dipanaskan dengan persamaan
reaksi:
R-COH + 2CuO Cu2O + R-COOH (merah bata)
Ketika ditambahkan KI, larutan tidak berwarna cokelat. Hal ini kemungkinan
disebabkan karena I-
tidak bereaksi dangan Cu2+,
artinya Cu2+
dalam larutan telah habis
bereaksi dengan sampel. Begitu juga ketika ditetesi amilum, tidak terdapat warna birudidalam larutan. Hal ini kemungkinan disebabkan oleh tidak ada I2 didalam campuran.
Dengan demikian, kadar gula dalam sampel lebih besar atau sama dengan reagen Luff Schoorl yang dipakai.
Selanjutnya dilakukan hidrolisis sampel dengan cara melarutkan sampel kedalam air mendiidh yang berfungsi sebagai pereaksi dalam hidrolisis untuk mempercepat reaksi. Lalu
ditambahkan larutan HCl yang merupakan katalis dan pemberi suasana asam untuk mempercepat reaksi. Kemudian dinetralkan dengan larutan NaOH sehingga memungkinkan
untuk menguji iodium yang terdapat didalam campuran.
G. Perhitungan Massa sampel = 10,348 gram
V Na2S2O3 yang terpakai dalam titrasi blanko = 22,8 mL
pel = 0 mL (karena I2 dalam campuran telah habis sehingga tidak ada I2 yang akan bereaksi dengan
Na2S2O3)
25/100 x 10,3489 = 2,587 gram = 2587 mg
V larutan Luff Schoorl yang dipaki = 25 mL
25/25 mL x 22,8 mL = 22,8 mL
¨V Na2S2O3 = V Na2S2O3 blanko ± V Na2S2O3 sampel
= 22,8 mL ± 0 mL= 22,8 mL
1 mL ¨V = 2,4 mL gula pereduksi (dari tabel)Jadi, kadar gula pereduksi dalam sampel = 24 mg x 22,8
= 54,72 mg
= 0,05472 gram% gula pereduksi = 2,115 %
H. KesimpulanDari analisis kualitatif karbohidrat di atas dapat disimpulkan bahwa terdapat banyak
cara untuk mengidentifikasi karbohidrat yang dapat dilakukan selain dengan sifat fisik juga
melalui sifat kimianya. Pereaksi-peraksi yang digunakan pada identifikasi karbohidrat antara
lain: pereaksi Molisch, Benedict, Berfoed, Seliwanoff, dan lain-lain. Beberapa karbohidrat
8/7/2019 ANALISIS KUALITATIF DAN KUANTITATIF KARBOHIDRAT
http://slidepdf.com/reader/full/analisis-kualitatif-dan-kuantitatif-karbohidrat 23/23
memiliki gugus fungsi yang berbeda sehingga hal ini sangat berguna pada identifikasikarbohidrat yang berbeda.
Berdasarkan data percobaan dapat disimpulkan bahwa sampel mengandungmonosakarida yaitu glukosa dan fruktosa serta tidak mengandung polisakarida. Selain itu,
sampel juga diduga mengandung sukrosa karena hasil hidrolisis sukrosa adalah glukosa dan
fruktosa.
Selanjtnya, kadar karbohidrat yang terdapat dalam sampel yang diuji dalam analisakuantitaif karbohidrat adalah sebesar 2,115%.
Daftar Pustaka
Fessenden, Ralph J and Fessenden, Jean S (1982). Kimia Organik Edisi Ketiga. Jakarta: ErlanggaPoedjiadi, Anna. (1994). Biokimia. Jakarta: UI
Sudarmaji, Slamet. (2003). Analisis Bahan Makanan dan Pertanian. Yogyakarta: LibertyYogyakarta
Tim Biokimia. Pedoman Praktikum Biokimia. Bandung: Jurusan Pendidikan Kimia FPMIPA
UPI.http//:www. Luff Schoorl « Queen Of Sheeba¶s Weblog.html