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Anestesiología

Tema 18

Anestesia en Animales Exóticos

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Programa de Anestesiología

ANESTESIOLOGÍA VETERINARIA

A - Anestesia General1. Introducción a la anestesia: concepto y

nomenclatura. 2. Evaluación preanestésica

B – Farmacología aplicada3. Preanestésicos: anticolinérgicos y

tranquilizantes4. Anestésicos intravenosos y disociativos5. Anestésicos inhalatorios6. Anestésicos locales. Analgesia loco-

Regional7. Relajantes musculares

C – Equipamiento y Monitorización8. Monitorización del paciente anestesiado9. Equipamiento anestésico

D – Técnicas de soporte. Complicaciones10. Dolor perioperatorio, reconocimiento y

tratamiento. Analgésicos11. Manejo de la vía venosa: Fluidoterapia12. Manejo de la vía aérea: Ventilación13. Complicaciones anestésicas

y su tratamiento

E - Anestesia por especies14. Anestesia en perro y gato15. Anestesia en équidos16. Anestesia en rumiantes y cerdo17. Anestesia en animales de laboratorio18. Anestesia en animales exóticos

F – Manejo anestésico en situaciones específicas

19. Anestesia en pacientes especiales sanos20. Anestesia en el paciente enfermo

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Objetivo del Tema

Conocer las características, fármacos y métodos empleados en la anestesia de Reptiles, Aves y Peces

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Anestesiología

Tema 18

Anestesia en Reptiles

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Anestesia en reptiles.

Características fisiológicas particulares

Poiquilotermia

Corazón tricavitario, excepto cocodrilianos

Sistema porta-renal

Adaptaciones físicas específicas

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Anatomía respiratoria

GlotisEn la base de la lengua: intubación sencillaQuelonios: lengua es más gruesa que dificulta la intubaciónCocodrilos: epiglotis desarrollada y disponen del pliegue gular que debe ser deprimido para permitir la intubación

TraqueaSaurios y los ofidios: anillos traqueales incompletosCocodrilos y quelonios: anillos completosQuelonios: traquea pequeña que se bifurca al entrar en la cavidad celómica.

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Administración de sustancias

Intramuscularen extremidades anteriores o posteriores.Ofidios, a lo largo de los paquetes musculares, preferentemente de los dorsales.

IntravenosaOfidios, vena ventral de la cola, o por punción intracardiacaQuelonios y saurios: venas yugular, dorsal de la cola, femoral y longitudinal del caparazón

IM, extremidad posterior

IV, dorsal de la cola

IV, yugularIC

IV, dorsal de la cola 8

Administración de Sustancias

IntraóseaEn tortugas y lagartos, en húmero y fémur, en tortugas además en puente del caparazón

Intracelómica

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Inducción Anestésica

Fases de la inducción anestésica en reptiles:

Excitación.Pérdida del reflejo de enderezamiento.Relajación muscular.Pérdida del reflejo de retirada.Reflejo de la membrana nictitante, en las especies que la tienen, se mantiene..Disminución de la frecuencia cardiaca, nunca por debajo del 80%.

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Inducción Anestésica e Intubación

InducciónCon mascarilla con isofluorano, halotano y sevofluoranoReptiles acuáticos y semiacuáticos son capaces de permanecer en apnea largos periodos de tiempo: se emplean sedantes inyectados

IntubaciónLa glotis se situa en la base de la lengua.Dificultades: Abrir el pico de los quelonios,En tortugas y cocodrilos los anillos traqueales son completos

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Mantenimiento

Anestésico de elecciónIsoflurano 1-2%

Flujo de O2<5 kg, sistema abierto, 0,3-0,5 l/kg/min.>5kg , sistema con absorción de CO2, 2-4 l/min para inducir, y 1-2 l/min para mantener

VentilaciónFrecuencia respiratoria normal 10-20 resp/minEn ventilación asistida: 2-6 resp/min, presión pico < 12 cm H2O

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Recuperación

Según anestésicoIsoflurano: 20-30 min para intervenciones de <1 hora.Anestésicos Inyectables: de horas a días

Ventilación asistidaMantener hasta que el animal ventile regular y expontaneamente.Se puede reducir a 2 resp/min para aumentar el CO2, o ventilar con aire ambiental

SoporteMantener la temperatura y la fluidoterapia para evitar retrasar la recuperación

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Protocolos Anestésicos

IsofluranoInducción y mantenimiento

Propofol5-10 mg/kg IV, IO + 0,25 mg/kg/min

Ketamina + Butorfanol10-30 mg/kg + 0,5-1,5 mg/kg IMpara pequeñas intervenciones en quelonios

Ketamina + diazepam60-80mg/kg + 0.2-0.8 mg/kg IMpara procedimientos que requieran relajación muscular

Ketamina + Medetomidina10 mg/kg + 0.1-0.3 mg/kg IM

Tiletamina + Zolazepam4-5 mg/kg SC, IM. Cirugía 30 min, recuperación en 1-12 h

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Anestesiología

Tema 18

Anestesia en Aves

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Fisiología Cardiovascular

Frecuencia CardiacaEntre 200-500 lpm. Colibríes 1000 lpm.

Gasto CardiacoMayor que en mamíferos y dependiente de la frecuencia Cardiaca

Presión ArterialControl poco conocido.Presiones ateriales más altas, > 150 mmHg en algunas especies

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Anatomía Respiratoria

GlotisAusencia de epiglotis, cuerdas vocales, cartílago tiroides

TráqueaAnillos cerrados de diámetro variable craneo-caudal (hasta 1/3).Diferentes morfologías (dobles, enrollamientos, divertículos)

En Anestesia:Espacio muerto elevado (x 4,5 respecto a mamíferos)Emplear tubos endotraqueales sin balón y con tamaño acorde a la porción caudal. No deben alcanzar la siringeDivertículos traqueales: Colocar vendajes en el cuello.

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Sacos Aéreos

Avasculares, No contribuyen al intercambio gaseoso.

Termoregulan y humidifican el aire.

Reducen y distribuyen el peso en el vuelo

Huesos neumatizados

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Fisiología Respiratoria

Frecuencia Respiratoria muy variableAvestruces (7rpm) → colibries (143 rpm)

Volumen corriente ligeramente superior a los mamíferos

Intercambio gaseoso en parabronquios y capilares aéreos

Modelo doble ciclo respiratorio

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Saco Aéreo Torácico Craneal

Inspiración

Tráquea

SiringeBronquioPrimario

Saco Aéreo Torácico Caudal

Saco Aéreo

Abdominal

Saco Aéreo Interclavicular

Bronquios Ventrales

Bronquios Dorsales

Bronquios Laterales

Segmento Acelerante

Bronquios Pulmonares

Parabronquios

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Parabronquios

Espiración

Saco Aéreo Interclavicular

Tráquea

SiringeBronquioPrimario

Segmento Acelerante

Bronquios Pulmonares

Bronquios Laterales

Saco Aéreo Torácico Caudal

Saco Aéreo

Abdominal

Bronquios Dorsales

Bronquios Ventrales

Saco Aéreo Torácico Craneal

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Ciclo respiratorio en las Aves

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Fisiología Respiratoria

Inspiración y espiración son activas:

No existe diafragma que separe cavidad abdominal y torácica

La musculatura respiratoria facilita el flujo de aire desde los sacos aéreos

Existe un flujo continuo de gas a través de los capilares aéreos desde los sacos aéreos

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Implicaciones Anestésicas del movimiento respiratorio

Monitorización de la frecuencia respiratoria difícilSe observa el movimiento de la quilla o capnografía

La posiciones en decúbito dorsal (supino) dificulta la ventilación:

Pared abdominal no sigue al esternón.Vísceras abdominales bloquean ostium y comprimen sacos aéreos caudales.Disminución volumen corriente y ventilación pulmonar.

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Eficiencia RespiratoriaEl intercambio gaseoso de las aves es muy eficiente, con una barrera de difusión muy delgada y extensa y con un intercambio continuo en los parabronquios y capilares alveolares

Ello implica:

Posibles sobredosificaciones (grisú)

Recuperaciones prolongadas por el efecto acumulativo en los sacos aéreos: el aire tarda más tiempo en renovarse.

La hipoxia/apneas no son bien toleradas en aves al ser el metabolismo elevado

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Termorregulación

Animales homeotermosTemperaturas varían entre 38-42ºC. Hipotermia <38ºC.Piel sin glándulas sudoríparas, eliminación calor por la erección de las plumas

La anestesia, especialmente los agentes inhalatorios y la relajación muscular provocan grandes pérdidas de calor

EVITAR PÉRDIDAS y APLICAR CALOR

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Vías de administraciónVía venosa

v. cubital v. metatarsiana

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Parasimpaticolíticos

No obligatorio su uso rutinario

Utilizar cuando se presente un animal con una historia previa de bradiarritmia

Atropina: 0,02-0,08 mg/kg IM

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Ketamina

Amplio margen de seguridadInducción rápidaMantiene Frecuencia CardiacaMantiene estabilidad ventilatoria

Excitación en la recuperaciónGran variabilidad de respuestas individuales

Utilización:Procedimientos cortosCirugía menorPrevio a anestesia general

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Xilacina+Ketamina

Combinación común: 100-200 mg/kg + 20-40 mg/kg

Buena relajación muscular y analgesia para la mayoría de intervenciones.

Inducción rápida y recuperación suave

Por especies:Género Buteo responde muy mal.Falconiformes y psitácidas responden muy bien.Acuáticas y columbiformes presentan movimientos espontáneos incluso a dosis muy altas.

Ketamina + Medetomidina: 100-200 mg/kg + 0,1-0,2 mg/kg: similar a la anterior 30

Antagonización

Fármacos:Yohimbina (ANTAGONIL®). 0.2 mg/kg) IV (0.5 mg/kg) IM.

Atipamezol (ANTISEDAN®) 5x dosis de medetomidina

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Tiletamina-Zolacepam

Inducción es rápida y suave

Recuperación es muy prolongada y esta asociada a factores desfavorables como temblores, excitación, aleteo.

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Propofol

Dosis: 20 mg/kg + 3mg/kg según demanda, IV

Poco empleada en aves aunque con buenos resultados

Gran incidencia de apneas:

Depresión respiratoria aguda y apneas documentadas en palomas (14 mg/kg).Utilizado en patos con pocas apneas.

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Analgesia

Características Generales:

Información escasa y confusa

Distribución de los receptores:en cerebro de palomas: kappa 76%, mu 14%

Difícil reconocimiento del dolor en aves.

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Analgesia

Monitorización del dolor mediante la respuesta al estímulo nociceptivo en:

CabezaCera del picoArticulacionesCloacaPeriostioEspacio InterdigitalAlmohadilla plantarPiel y vísceras

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Analgésicos

Buprenorfina0,01-0,03 mg/kg IM, IV, SCSeguro, reducción la CAM

Butorfanol0,1-0,5 mg/kg, IM, IV, SCMuy utilizado en psitácidasPuede producir bradicardia, y disminución de la ventilación

Fentanilo: ¡ Sin acción analgésica !

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Anestésicos Locales y AINEsAnestésicos Locales

Uso limitado en avesTópicamente para tratar heridas: benzocaina y bupivacainaToxicidad: adecuar las diluciones

Bupivacaina 0,5% (5 mg/ml): 1 mg/kgLidocaina 0,2% sin adrenalina (2 mg/ml): Diluir

AINEsKetoprofeno 5 mg/kg IM, en patosMeloxicam 0,2 mg/kgCarprofeno 1 mg/kg SC

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Anestesia Inhalatoria

Características Generales:Muy sensibles a las sobredosisInducción y recuperación más brevesPueden producirse cambios bruscos de planoMuy sensibles a hipoxia e hipercapniaDecúbito dorsal interfiere ventilaciónPotencian hipotermia y deshidrataciónHuesos neumatizados fracturadoscomplican la anestesiaNo se produce colapso pulmonar por cirugía torácica y abdominal

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Anestesia Inhalatoria

Isofluorano:

Efectos similares a mamíferos (Hipotensión)

La potencia es también similar (CAM)

Mejor tolerado en aves que el halotano

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CAM en aves

-1,35-Grulla

2,41.30,9Perro

-1,321,05Pato

2,21-0,85Gallina

-1,44-Cacatúa

Sevoflurano (%)Isoflurano (%)Halotano(%)

CAM para halotano, isoflurano y sevoflurano en aves

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Mascarillas y Tubos endotraqueales

MascarillasHan de adaptarse al pico y sus variaciones anatómicas

Empleadas en la inducción y mantenimiento de la anestesia

Tubo de sacos aéreos

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Ventilación Asistida

Se suele emplear cuando la depresión respiratoria de los anestésicos inhalatorios es excesiva

La presión pico aplicada se inferior a 15-20 cm H2O

Vigilar el movimiento de la pared abdominal y de la quilla para ajustar

Frecuencia Respiratoria:

Aves grandes: 8-25 resp/minAves pequeñas: 30-40 resp/min.

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Recuperación

OxigenaciónMantener oxigenado hasta que empiece a moverse, p.e. la cabeza

ExtubaciónEvitar aspiración de secreciones pero no retrasar

Evitar hipotermiaIncubadora …Jaula acolchada, ambiente tranquilo, con calor

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MonitorizaciónPlano anestésico

Superficial: reflejos presentes, ausencia de movimientos voluntarios

Medio: reflejo corneal (3er párpado) y podal presentes aunque reducidos, parpebral ausente. Respiración lenta, regular y profunda

Profundo: ausencia total de reflejos, Respiración lenta, irregular y superficial. Puede aparecer apnea

Signos vitales

Frecuencia cardiaca, ECG Frecuencia respiratoria, capnografíaPulsioximetría

Soporte

Mantener calienteMinimizar sangrado

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Cuidados postanestésicos

Envolver al ave con una toalla para prevenir traumatismos

Analgesia:Vigilar signos de dolorIniciar o mantener protocolos de analgesia postoperatoria

Mantener fluidoterapia

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Diagnósticas y Quirúrgicas

– Endoscopia de vías aéreas (laringe, tráquea y siringe).

– Oftalmología.

– Cirugía y exploración de la cabeza, cuello, buche, esófago y vías aéreas.

– Obstrucción de vías aéreas: semillas, granulomas fúngicos, tumores, concreciones de células epiteliales y mucus.

Anestesia por Sacos Aéreos

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Anestesiología

Tema 18

Anestesia en Peces

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ANESTESIA EN PECES

Se limita al empleo de unos pocos compuestos disueltos en el agua: Tricaina, Quinaldina, y CO2

El animal se recupera al pasar a un tanque de agua sin anestésico

Se emplean para la manipulación y pequeñas intervenciones quirúrgicas

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Anestésicos en pecesTricaina - (MS-222)Dosis: 15 to 330 mg/L tamponadas con NaHCO3 o Tris

Quinaldina y sulfato deDosis: 60 mg/L. Tamponar (0,45 g NaHCO3/1 g sulfato de quinaldina). Son irritantes

Dióxido de carbonoSe aplica como gas o administrando bicarbonato sódico. Se emplea para el transporte. Debe tamponarse

Isoeugenol (AQUI-S)Sedación: 5-10 mL/1000 lAnestesia: 17-20 mL/1000 l

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ResumenExóticos

Aves

Fisiología cardiovascularFrecuencia cardíaca

Fisiología respiratoriaCiclo respiratorio doble

Intubación endotraquealtamaño del tubo

Inducción anestésicaPropofol, ketamina, inhalatoria

Mantenimiento anestésicoInhalatorio

AnalgesiaOpioides kappa, AINEs

Reptiles

Anatomía y FisiologíaVías de administración

AnestésicosParenterales: ketamina y propofolInhalatorios: isoflurano

Analgésicos¿Opioides? ¿Otros?

Peces

Fisiología respiratoriaSoluciones anestésicas