32
CAPÍTULO 7 TRASTORNOS NUTRICIONALES Kevin M. Wright, DVM y Brent R. Whitaker, MS, DVM Se han observado una variedad de problemas nutricionales en anfibios cautivos. Cuidadores de zoológicos, veterinarios y los nutricionistas suelen centrarse en el análisis de los nutrientes en la dieta ofrecida, pero el impacto de la calidad del agua en el desarrollo de estos desórdenes necesita ser revisado en el futuro. 7.1 ENFERMEDAD ÓSEA METABÓLICA En nuestra experiencia, la enfermedad ósea metabólica es el trastorno relacionado con la nutrición más comúnmente reconocido de anfibios en cautiverio, y fue reportado como un asociado con la hipervitaminosis A en la Rana de garras africana, Xenopus laevis, hace 50 años (Bruce & Parkes, 1950). La enfermedad ósea metabólica es un término amplio que no especifica una etiología particular, aunque las etiologías comunes en los anfibios son un desequilibrio en los niveles de calcio y fósforo ingeridos en la dieta, y vitamina D3, o ingestión de otras sustancias (por ejemplo, vitaminas liposolubles, varios minerales, oxalatos) que interfieren con la absorción, excreción, o la utilización de cualquiera de estos tres compuestos. A diferencia de los peces óseos, los reptiles, las aves y los mamíferos, los anfibios utilizan las lipoproteínas como mecanismo de transporte para el metabolito activo de la vitamina D 25-hidroxicolecalciferol (Hay & Watson, 1976). Esta diferencia en los mecanismos de transporte puede tener un efecto adverso en consecuencias para los anfibios que consumen dietas que contienen niveles y equilibrios inapropiados de grasas ácidos y grasas, pero niveles adecuados de calcio en la dieta, fósforo y vitamina D3. Esto puede ser una contribución factor en el desarrollo del hueso metabólico en los anfibios que se alimentan de roedores y otros artículos que no son típicamente parte de su dieta natural. Las revisiones recientes han demostrado que las Faltas de conocimientos sobre el calcio en el metabolismo de los anfibios. metabolismo (Bentley, 1984; Boutilier et ai., 1992; Larsen, 1992; Shoemaker y otros, 1992; Stiffler, 1993). Este es un proceso fisiológico que tiene un profundo impacto sobre el desarrollo y el mantenimiento de la normalidad en esqueletos mineralizados, y la oscuridad de este básico hace que el tratamiento de la enfermedad ósea metabólica sea menos científico que deseable. Muchos de los artrópodos y otros invertebrados que son cultivados para las dietas de los anfibios tienen un efecto inverso. proporción de calcio a fósforo y se consideran un factor de calcio en la fuente de alimento deficiente para los vertebrados (Dierenfeld & Barker, 1995). Dos métodos para compensar este desequilibrio

CAPÍTULO 7 TRASTORNOS NUTRICIONALES · 2018. 12. 23. · •CAPÍTULO 7 • TRASTORNOS NUTRICIONALES • Kevin M. Wright, DVM y Brent R. Whitaker, MS, DVM Se han observado una variedad

  • Upload
    others

  • View
    1

  • Download
    0

Embed Size (px)

Citation preview

  • • CAPÍTULO 7

    • TRASTORNOS NUTRICIONALES • Kevin M. Wright, DVM y Brent R. Whitaker, MS, DVM

    Se han observado una variedad de problemas nutricionales en

    anfibios cautivos. Cuidadores de zoológicos, veterinarios y los nutricionistas suelen centrarse en el análisis de los nutrientes en la dieta ofrecida, pero el impacto de la calidad del agua

    en el desarrollo de estos desórdenes necesita ser revisado en el futuro.

    7.1 ENFERMEDAD ÓSEA METABÓLICA

    En nuestra experiencia, la enfermedad ósea metabólica es el trastorno relacionado con la nutrición más comúnmente reconocido

    de anfibios en cautiverio, y fue reportado como un asociado con la hipervitaminosis A en la

    Rana de garras africana, Xenopus laevis, hace 50 años (Bruce & Parkes, 1950). La enfermedad ósea metabólica es un término amplio que no especifica una etiología particular,

    aunque las etiologías comunes en los anfibios son un desequilibrio en los niveles de calcio y fósforo ingeridos en la dieta, y vitamina D3, o ingestión de otras sustancias

    (por ejemplo, vitaminas liposolubles, varios minerales, oxalatos) que interfieren con la absorción, excreción,

    o la utilización de cualquiera de estos tres compuestos. A diferencia de los peces óseos, los reptiles, las aves y los mamíferos, los anfibios utilizan las lipoproteínas como mecanismo de transporte

    para el metabolito activo de la vitamina D 25-hidroxicolecalciferol

    (Hay & Watson, 1976). Esta diferencia en los mecanismos de transporte puede tener un efecto adverso en consecuencias para los anfibios que consumen dietas que contienen niveles y equilibrios inapropiados de grasas

    ácidos y grasas, pero niveles adecuados de calcio en la dieta, fósforo y vitamina D3. Esto puede ser una contribución factor en el desarrollo del hueso metabólico

    en los anfibios que se alimentan de roedores y otros artículos que no son típicamente parte de su dieta natural.

    Las revisiones recientes han demostrado que las Faltas de conocimientos sobre el calcio en el metabolismo de los anfibios. metabolismo (Bentley, 1984; Boutilier et ai., 1992;

    Larsen, 1992; Shoemaker y otros, 1992; Stiffler, 1993). Este es un proceso fisiológico que tiene un profundo impacto sobre el desarrollo y el mantenimiento de la normalidad en

    esqueletos mineralizados, y la oscuridad de este básico hace que el tratamiento de la enfermedad ósea metabólica sea

    menos científico que deseable. Muchos de los artrópodos y otros invertebrados que son cultivados para las dietas de los anfibios tienen un efecto inverso.

    proporción de calcio a fósforo y se consideran un factor de calcio en la fuente de alimento deficiente para los vertebrados (Dierenfeld & Barker, 1995). Dos métodos para compensar este desequilibrio

  • son la carga de tripas y el desempolvado. (Ver Sección 6.7, Vitamina

    y Suplementos Minerales.) Cabe reiterar aquí los puntos más destacados. Es importante para alimentar a los insectos con una dieta de mantenimiento adecuadamente diseñada, para un grillo desnutrido resultará en una situación de desnutrición en el anfibio

    Las especies de grillos domésticos de fácil acceso cricket (p. ej., Acheta domestica) que se utilizan como El alimento básico de muchas dietas de anfibios debe ser manejado cuidadosamente

    con una dieta de carga intestinal que contiene alrededor del 80/0 de calcio durante 48 horas antes de la alimentación en un intento de mantener

    un balance positivo de calcio y fósforo. Sin embargo, incluso las ranas alimentadas con un grillo cargado de tripas pueden seguir perdiendo calcio (Allen & Oftedal, 1989), lo que sugiere que una variedad

    de otros factores pueden influir en la absorción y distribución del calcio, y excreción en el anfibio. Hay disponibles en el mercado y de fabricación casera

    dietas específicamente diseñadas para aumentar el contenido de calcio de insectos a través de un proceso llamado "carga de tripas".

    por el cual el tracto gastrointestinal del insecto esta lleno de una dieta alta en calcio (5% a 8%). La presa, debe tener acceso a la dieta de carga intestinal a 48 h antes de su presentación al anfibio.

    la desventaja significativa de la carga de tripa es que muchos de los insectos no pueden sobrevivir con una dieta que contenga un contenido tan alto de niveles de calcio y morirá si esta dieta es la única dieta

    fuente de nutrientes más allá de un período de 48 horas. Otro problema es que el insecto debe comerse poco después de ingerir la dieta alta en calcio o de lo contrario la ingesta del

    insecto ya no tendrá un resultado positivo. equilibrio de calcio. Otra opción para mejorar el calcio y la vitamina

    de la presa ingerida es desempolvar a la presa con una mezcla de minerales y vitaminas inmediatamente antes de la alimentación como en Grillos cabeza de alfiler, moscas de la fruta, Drosophila

    spp. y los escarabajos de la harina, Triboleum spp. alimentado a pequeños anfibios como las ranas dendrobatidas y ranas recién metamorfoseadas de muchas especies.

    Desafortunadamente, la carga intestinal con dietas altas en calcio

    parece matar a un insecto con una masa corporal pequeña en unas horas después de la ingestión, por lo que el método usado para mejorar el nivel de calcio y vitamina D es

    espolvorear el insecto con una mezcla de vitaminas y minerales. Asi se ofrecen muchos de los insectos que se le dan de comer a los animales. El polvo puede ser eliminado o perdido de alguna otra manera.

    antes del consumo del anfibio en cuestión, y un estudio sugiere que el desempolvado hace poco para mejorar

    el contenido de calcio de los insectos (Trusk & Crissey, 1987). El consumo de los insectos no desempolvados puede promover condiciones hipocalcémicas. Los grillos cabeza de alfiler

    realmente tienen niveles adecuados de calcio (Dierenfeld & Barker, 1995), pero esto espera confirmación. Una revisión del régimen de alimentación debería resolver la cuestión

    de cuántos artículos se ofrecen a la vez, cuando el alimento que se ofrece, cuántos alimentos se hacen en el curso de un día, y qué tan rápido todos los artículos

    se consumen. Los altos niveles de vitamina A encontrados en ratones domésticos

    y las ratas (Douglas et aI., 1994) pueden interferir con la absorción y utilización de vitamina D. La Hipervitaminosis A es una posible etiología de la enfermedad ósea metabólica

  • en grandes anfibios (Bruce & Parkes, 1950), y

    ha sido sospechada como la etiología subyacente de la enfermedad metabólica ósea en varias muestras del ornato rana de cuernos, Ceratophrys ornata, mantenida en

    una dieta basada en roedores en el zoológico de Filadelfia. Suplementos de roedores domésticos con calcio (por ejemplo, calcio glubionato, jarabe Neo-Calglucon, Sandoz Pharmaceuticals,

    East Hanover, NJ) y vitamina D inmediatamente antes de la alimentación se recomienda

    compensar la probable hipervitaminosis A, que resulta a partir de la alimentación con dietas de roedores disponibles en el mercado. Un suplemento de 2.7 iu vitamina D, peso corporal

    puede ser necesario para compensar los altos niveles de vitamina A en roedores. Sin embargo, esta tasa de suplementación aún no se ha alcanzado. para ser probado en cuanto a la seguridad y eficacia a largo plazo en anfibios

    y puede resultar en toxicidades de los productos liposolubles Para evitar este riesgo la alimentación de roedores

    a los anfibios debe ser restringida. Se ha reportado enfermedad ósea metabólica en la Rana de garras africana, Xenopus laevis, (Bruce &

    Parkes, 1950) y la rana toro, Rana catesbeiana, (Modzelewski & Culley, 1974), y ha sido observado por los autores en muchas otras especies, incluyendo,

    pero no limitado a la rana toro africana de Tschudi, Pyxicephalus adspersus, rana de cuernos ornamentada, Ceratophrys ornata, rana toro sudamericana, Leptodactylus

    pentadactylus, rana gigante australiana, Litoria infrafrenata, Rana de Pino Barren, Hyla andersoni,

    varios bufónidos, el axolotl, Ambystoma mexicanum, y el mexicano caecilianus, Dermophis mexicanus. Signos que sugieren enfermedad ósea metabólica o

    hipocalcemia incluyen en la deformidad mandibular, anormal postura con uno o más miembros separados, escoliosis, renuencia a moverse, fractura ósea larga, tetania, hinchazón

    (gas gastrointestinal), hidropesía, subcutánea edema, y prolapso gástrico, rectal o cloacal (Placas

    7.1, 7.2; figuras 7.1, 7.2, 7.3, 7.4). La Confirmación de La enfermedad metabólica ósea requiere estudios radiográficos. Características radiográficas que sugieren que el hueso metabólico

    Enfermedad, incluyen anormalidad de forma y radiotransparencia Mandíbular, corticales finas de huesos largos, expansión de la cavidad de la médula ósea, la pérdida total de densidad ósea, el ángulo

    deformidades de las extremidades, y la presencia de deformidades patológicas fracturas (véase la figura 7.3). Además de los problemas patológicos

    fracturas de fémur y húmero, luxación pélvica, fracturas de la columna vertebral, y fracturas del coracoide son comúnmente en los anuros con enfermedades metabólicas óseas. Además

    a una gran deformidad mandibular, la única caciliana diagnosticado con enfermedad ósea metabólica tenía menos radiodensidad en los procesos vertebrales laterales que los sanos

  • Figura 7.1. Nueva rana granadina de banda cruzada, Smiliscus phaeota,

    con deformidades de la mandíbula, maxilar y premaxilar causadas por

    una enfermedad metabólica ósea. (George Grall, National Aquarium in

    Baltimore)

    Figura 7.2. Rana toro, Rana catesbeiana, con enfermedad ósea metabólica.

    Debido a múltiples fracturas patológicas, la rana no puede elevarse

    su cabeza y el sacro está anormalmente posicionado. (George Grall,

    Acuario Nacional en Baltimore

  • Figura 7.3. Radiografía de la rana toro, Rana catesbeiana, en Figura

    7.2. Son evidentes las fracturas patológicas múltiples de los huesos largos.

    (George Grall, Acuario Nacional de Baltimore)

    Figura 7.4. Rana toro, Rana catesbeiana con una ligera deformidad mandibular

    que puede ser el primer signo obvio de enfermedad ósea metabólica.

    (Kevin Wright, Jardín Zoológico de Filadelfia)

    especímenes. En los jóvenes caecilianos, es típico en las vértebras caudales que sean menos radiodensas que las craneales vértebras, ya que el crecimiento se produce por la adición de vértebras.

    caudalmente. El caciliano afectado tenía una marcada, menos vértebras caudales radio-densas que los caqui-les sanos.

    La hipocalcemia y/o la hiperfosfatemia pueden apoyar el diagnóstico de enfermedades metabólicas óseas, especialmente

  • en anfibios adultos, pero dado el flujo típico

    en el plasma anfibio estos dos iones suelen estar a menudo dentro de los parámetros que se supone que son normales para una especie. El Tratamiento del anfibio con hueso metabólico, su

    enfermedad puede ser frustrante. Complementación con suplementos orales se recomienda el calcio y la vitamina D3. Calcio glubionato en forma de Neo-Calglucon puede ser

    administra a 1 mllkg PO diariamente, y debe ser administrado por un mínimo de 30 días o hasta que los huesos se reanuden a una

    densidad normal en las radiografías. Alternativamente, de 1 a 2 hora diaria en gluconato de calcio al 2,3 % puede ser considerado como un tratamiento para los anfibios que son difíciles

    a dosificar por vía oral. Calcio parenteral (100 mg/kg) de gluconato de calcio 100/0 1M, IV, o intracoelómicamente) se recomienda para los anfibios que muestran

    tetania o distensión gastrointestinal, y puede administrarse cada 4-6 h hasta 24 h. Después de 24 h de

    iniciar la terapia de calcio, si la tetania ha disminuido, a los anfibios se les puede administrar vitamina D3 parenteral (1000 iu/kg 1M). Suplementos orales de vitamina D3

    (Concentrado Líquido de Alta D 2X Vitamina D3, 4.000.000 iu/oz., 1.D. Russell Company, Laboratories, Longmount, CO) se sugiere en una dosis más baja

    (por ejemplo, 100-400 iu/kg) concomitante con el calcio oral o suplementación. La elucidación del papel de la calcitonina en los anfibios ha sido problemática (Herman, 1992)

    y regímenes terapéuticos modificados de los descritos en la iguana verde, Iguana iguana, (Mader,

    1993) han demostrado no ser gratificantes en los anfibios. Con un Incremento de dosis de calcitonina (es decir, más de 50 iu/kg 1M) o un programa de dosificación más frecuente (es decir, más frecuentemente

    que cada 7 días) puede ser productiva. Es extremadamente importante para continuar con el calcio y la vitamina D3 hasta que las estructuras del esqueleto sean

    radiográficamente normal, un proceso que puede tomar 6 semanas o más.

    La Suspensión de los suplementos orales demasiado pronto resultará en problemas continuos, tales como fracturas patológicas.

    Un ajuste de la gestión dietética de los anfibios deben aparecer concomitantemente con el calcio y terapia suplementaria de vitamina D. Anamnesis de

    el régimen de alimentación es obligatorio, y las instrucciones relativas a el cuidado adecuado de los productos de alimentación, así como

    preparación y presentación adecuada de la dieta debe ser distribuida. A modo de ejemplo, la contribución del factor en el desarrollo de la enfermedad ósea metabólica

    en un caeciliano mexicano juvenil, Dermophis mexicanus, parece haber sido la falta de alimentación de la colonia de lombrices usada como fuente de alimento.

    La relación entre la radiación ultravioleta y el activo Los metabolitos de la vitamina D3 no han sido bien documentados. para los anfibios, pero es probable que desempeñe el papel

    en el desarrollo de enfermedades metabólicas óseas en algunos países o especies de anfibios. La Exposición a la radiación ultravioleta

    las bombillas fluorescentes deben considerarse como accesorios en terapia en el tratamiento de enfermedades metabólicas óseas

  • en anfibios, a menos que se haya demostrado

    que una especie particular de anfibio no tiene una necesidad de radiación ultravioleta. El paciente anfibio se le deberá permitir el acceso a la iluminación que

    proporciona un ultravioleta-B sin filtrar en el rango de 280-310 nm. Varias marcas de bombillas fluorescentes se sabe que son débiles emisores de ultravioleta en estas frecuencias

    (Ball, 1995; Bernard, 1995; Gehrmann, 1987, 1992, 1994, 1996). Al momento de escribir esto, hay

    una plétora de bulbos de marca que dicen ser ultravioletas

    y algunas de las marcas han sido

    rediseñados para mejorar su rendimiento de radiación ultravioleta. Esto hace que sea imposible para nosotros recomendar ninguna marca en particular en este momento. El médico

    se le aconseja que se familiarice con los reclamos de uno de ellos. o más marcas para obtener gráficos espectrales e irradiancia y posibles

    reclamaciones del fabricante, así como cualquier investigación independiente del producto. Los Radiómetros puede utilizarse para cuantificar la producción de

    ultravioleta-A (onda larga) o ultravioleta-B (onda corta) ) radiación de una bombilla (Ver Gehrmann, 1987,

    1992, 1994, 1996). Si los resultados de las pruebas independientes estan disponibles, que los datos pueden compararse con los del fabricante. y la utilidad de esta marca puede ser mejor evaluada. Se sabe que hay

    una disminución significativa de la producción de algunos de estos productos bombillas dentro de la primera semana de uso, y una disminución posterior varios meses después. Por lo tanto, los bulbos deben ser

    reemplazado como mínimo cada 6-12 meses, a menos que allá pruebas que sugieren lo contrario. La fecha en que

    una bombilla se utiliza por primera vez (o fecha de sustitución) se marcará directamente en la bombilla con una marca indeleble. para permitir una rápida evaluación de la vida útil de la bombilla.

    No se recomiendan las lámparas incandescentes, ni tampoco lámparas que produzcan altos niveles de radiación ultravioleta. Muchas de las lámparas de halogenuros metálicos utilizadas en

    el mantenimiento de los invertebrados marinos puede resultar beneficioso con anfibios, pero la intensidad de la luz

    puede ser demasiado alto para los anfibios. Si el anfibio muestra signos de estrés o daño por radiación (p. ej,

    opacidades corneales, eritema, exceso de producción de moco, etc.), entonces la fuente de luz ultravioleta debe ser eliminado.

    El riñón es el lugar del último paso en la activación de vitamina D3 en 1,25-dihidroxicolecalciferol (Baksi et al., 1977), por lo que la enfermedad renal puede contribuir

    al desarrollo de enfermedades metabólicas óseas a pesar de la ingesta adecuada de vitamina D3. Además, las grandes cantidades de iones de calcio filtrados del plasma son

    reabsorbido por los túbulos renales (Stiffler, 1993), y podría resultar en una pérdida significativa de calcio ingerido si

    el mecanismo de transporte está dañado. La Enfermedad renal deben ser sospechados siempre que haya una aparente fallo para un anfibio con enfermedad ósea metabólica

    para responder a la terapia apropiada. 7.2 HIPERVITAMINOSIS D3

  • Ha habido un informe de un síndrome que sugiere

    de hipervitaminosis D3 en un anuro (Frye, 1992). Progresivo letargo, anorexia, debilidad, hidropesía (ascitis o anasarca), y el edema de los muslos se observó en un

    rana joven macho de cuernos ornamentada, Ceratophrys ornata. Un transudado celular acelerado fue fuertemente positivo para el nitrógeno ureico sugestivo de enfermedad renal. Estas ranas

    habían sido alimentados con peces dorados que a su vez fueron alimentados con una dieta que permitía la acumulación de niveles potencialmente altos de

    vitamina D3. La mineralización de los tejidos blandos se observó en corazón y riñones, y la histopatología fue sugerente de hipervitaminosis D3.

    7.3 DEFICIENCIA DE TIAMINA Salamandras y ranas acuáticas, así como Las ranas con cuernos, Ceratophrys spp., la rana toro, Rana catesbeiana, y la rana toro africana de Tschudi, Pyxicephalus

    adspersus, pueden ser fácilmente entrenados para aceptar pescado congelado y descongelado. Se puede esperar una deficiencia de tiamina

    en anfibios que son alimentados con una dieta que consiste principalmente en pescado congelado que contiene tiaminasa, una enzima que inactiva rápidamente cualquier presencia de tiamina.

    La tiaminasa se encuentra comúnmente en agua dulce y marina. En diferentes especies de peces, así como algunos moluscos y crustáceos (Comité del Consejo Nacional de Investigación sobre

    Nutrición Animal, 1993; Consejo Nacional de Investigación Subcomité de Nutrición de Peces de Aguas Cálidas, 1983). Aunque no se ha realizado un estudio definitivo de

    deficiencia de tiamina en los anfibios, dada la universalidad de signos descritos para esta enfermedad en mamíferos

    (Dllrey & Allen, 1986), aves (Ward, 1971) y reptiles (Donoghue & Langenberg, 1996), deficiencia de tiamina debe sospecharse en anfibios que exhiben

    disfunción neurológica, incluyendo fasciculaciones, temblores, opistótonos y convulsiones. Cualquier anfibio que muestren estos signos clínicos con un historial de dieta que incluya

    los peces deberían recibir tiamina inmediatamente a una dosis de 25-100 mg/kg de peso corporal por vía intramuscular

    o intracoelómicamente. Suplementos parenterales la tiamina debe administrarse hasta que se produzcan paradas de las contracciones musculares o las convulsiones cesen. A partir de entonces, la tiamina oral

    puede administrarse como suplemento dietético a 25 mg/kg de peso corporal con cada comida durante varias semanas después de la resolución de signos clínicos, o una dosis de mantenimiento puede

    derivarse alométricamente del requisito conocido de tiamina de un primate (es decir, 0,03 mg/kg/día) (Waisman y McCall, 1944). La tiamina es relativamente no tóxica,

    así que se pueden dar niveles aún más altos de tiamina sin miedo a los efectos adversos.

    La dieta debe ser ajustada para incluir alimentos frescos y enteros.

    animales como insectos, lombrices de tierra o ratones. Si esto no es posible, variar las especies de peces que se ofrecen. Si se utiliza pescado congelado, un suplemento regular que

    se recomienda es hasta 250 mg de tiamina por kilogramo de pescado (Snyder y Terry, 1986).

  • 7.4 ESTEATITIS La esteatitis es probable que ocurra en aquellos anfibios que

    han sido alimentados con alimentos incorrectamente almacenados y manipulados

    peces o roedores muertos que se han vuelto rancios. La Vitamina E por sí solo o en combinación con selenio puede administrarse

    pero la eliminación exitosa de los nodulos esteaticos utilizando este enfoque es poco probable. La Cirugía para extirpar

    estos nódulos de los cuerpos grasos pueden estar justificados si el anfibio parece tener molestias al palpar el abdomen. Una combinación de 1

    mg/kg de peso corporal de vitamina E y 0,1 mglkg de peso corporal en selenio de peso se puede administrar una vez 1M, seguido por administración semanal de 100-400 iu/kg

    peso corporal vitamina E por vía oral. 7.5 CÁLCULOS RENALES

    Las plantas que contienen oxalato, como las espinacas, se ha relacionado con el desarrollo de productos que contienen oxalato con cálculos renales en los renacuajos de algunas ranas ranitas. Sin embargo,

    otras ranas han sido criadas con espinacas sin

    efectos adversos. Parece probable que las larvas herbívoras de anuros han coevolucionado con las plantas de su entorno

    y se adaptan al procesamiento de las toxinas de las plantas y algas de las que se alimentan normalmente. Los problemas surgen en el cautiverio, y presumiblemente en el

    salvaje, cuando un renacuajo ingiere un compuesto desconocido y carece de la vía metabólica para una desintoxicación eficiente y/o eliminación. Esta información suele ser

    logrado por ensayo y error, y es imperativo que una revisión exhaustiva de la literatura precede al desarrollo

    de una dieta de crianza para una especie. Comercialmente los productos alimenticios disponibles para peces tropicales son razonables dietas alternativas, y hasta ahora no ha habido informes

    de cálculos renales relacionados con estos productos. Individuos de la rana de cera, Phyllomedusa sauvagii, hidrocoelom han desarrolado un subcutáneo

    edema y letargo (Figura 7.5). Estas ranas eran

  • Figura 7.5. Toxicosis por oxalato en la rana de cera, Phyllomedusa

    sauvagii. Observe la acumulación de líquido en la garganta ventral y el abdomen.

    (George Grall, Acuario Nacional de Baltimore)

    alojadas en un recinto que contiene un equipo que produce oxalato la reina de plata, Aglaonema roebelinii.

    Se sospechaba que los grillos que se alimentaban de las ranas se comían esta planta, y esta era la presunta forma de oxalato

    ingestión por parte de las ranas. Como esta especie es uricotélica y excreta poca agua urinaria, se presume que esta causó que los oxalatos se concentraran a patológicos

    niveles. Esta enfermedad no se puede presentar en forma de Diuresis salina en especies ureotélicas de anfibios. pero todas las ranas severamente afectadas

    murieron. La Histopatología de las ranas afectadas revelada cristales de oxalato en los riñones, lo que sugiere que el fallo en los riñones fue

    responsable de los signos clínicos del fluido acumulación y letargo. Una vez que la planta fue reemplazada con un lirio de la paz, Spathophyllium spp.

    Remitio la incidencia de la enfermedad, pero la relación entre las especies de plantas dentro de un recinto y el desarrollo de la presunta toxicosis del oxalato es especulativa.

    7.6 OBESIDAD

    La obesidad es causada por el consumo de una dieta en exceso de las necesidades energéticas de los anfibios. Muchas especies de anfibios

    están condicionados a atiborrarse de presas. Este ciclo de alimentación es valioso en la

    preparación del cuerpo para la estimulación, hibernación y reproducción pero puede no estar vinculada a esta actividad. La Obesidad

    se observa con mayor frecuencia en especímenes cautivos de la especie White's rana arbórea, Pelodryas caerulea (Placas 7.3, 7.4, 7.5), ranas con cuernos, Ceratophrys spp. y Tschudi's

    Rana toro africana, Pyxicephalus adspersus. El axolotl,

  • Ambystoma mexicanum, y salamandra tigre,

    Ambystoma tigrinum, son las salamandras mascota más comunes. visto con esta condición. La Deposición de grasa típica ocurre en los cuerpos grasos, causando un abdomen agrandado

    en el anfibio obeso que debe ser diferenciado de la producción de huevos (Placas 7.6, 7.7). Los cuerpos grasos pueden ser palpables, y pueden oscurecer los

    órganos normalmente visibles a través de la pared abdominal. Algunos especímenes obesos de la rana blanca,

    Pelodryas caerulea, puede desarrollar crestas agrandadas sobre los ojos que pueden impedir la visión. El tratamiento de la obesidad requiere el asesoramiento del cliente

    sobre las necesidades energéticas estimadas de los anfibios. fórmulas para determinar la tasa metabólica basal de los anfibios se presentan en la Sección 7.13.2.

    Fórmula; y Cuadros 7.1, 7.2, y 7.3.) Todas las demás variables en igualdad de condiciones, los animales más grandes requieren proporcionalmente

    menos calorías que las más pequeñas. Por ejemplo, peso 50 g de la rana blanca, Pelodryas caerulea, mantenida a 25°C (77°F) se calcula que requiere aproximadamente 0.54

    Kcal/day para mantener su tasa metabólica basal, mientras que el peso de

    500 g de la rana de cuernos ornamentada, Ceratophrys ornata, se calcula

    para necesitar 3,7 kcal/day (ver Tabla 7.4). Por lo tanto, aunque hay un aumento de 10 veces el tamaño del cuerpo entre

    Cuadro 7.1. Ecuaciones para calcular el metabolismo en reposo de los anuranos. Para convertir el consumo de oxígeno en calórico

    de 4,8 kcal/1000

    ml 02 o 0,0048 kcal/ml 02' (Adaptado de la Tabla 12.2 encontrado en Gatten et aI., 1992.)

    • Temperatura °C eF) (ml/hr)

    • Consumo de oxígeno

    5 (40) 0,049 (BW en g)O.81 10 (50)

    15 (60) 0,104 (BW en g)O.79 20 (68) 0,103 (BW en g)O.82

    25 (77) 0,174 (BW en g)O.84

    Cuadro 7.2. Ecuaciones para calcular el metabolismo en reposo

    de salamandras. Para convertir el consumo de oxígeno a

    necesidades calóricas, asuma una conversión estándar de 4.8 kcal/1000 ml 02 o 0,0048 kcal/ml 02' (Adaptado de

    Tabla 12.2 encontrada en Gatten et aI., 1992.)

    Temperatura'oC eF) (mllhr)

    Consumo de oxígeno

    5 (40) 0,02 (BW en g)O.81

    10 (50)

    15 (60) 0,045 (BW en g)O.81

  • 20 (68)

    0,068 (BW en g)O.80

    25 (77)

    0,095 (BW en g)O.80

    Tabla 7.3. Ecuaciones para calcular el metabolismo en reposo

    de cacilianos. Para convertir el consumo de oxígeno a necesidades calóricas, asuma una conversión estándar de 4.8

    kcal/1000 ml 02 o 0,0048 kcallml 02' (Adaptado de Figura 2 encontrada en Smits & Flanagin, 1994.)

    Temperatura °C (",F) (ml/hr)

    Consumo de oxígeno

    5 (40) -

    -------------------------

    10 (50) -

    -------------------------

    15 (60) -

    --------------------------

    20 (68) 0,023 (BW en g)1,0S

    25 (77) 0,067 (BW en g)1,06

    las dos ranas, hay menos de un aumento de 7 veces en

    necesidades calóricas generales. Una rana goliat de 5000 g, Conraua Goliath, a 25°C, se calcula que necesita 25 kcal/day, lo que refleja un aumento de menos de 48 veces las calorías totales

    a pesar de que la masa corporal se ha multiplicado por 100. Con la actividad, las demandas metabólicas aumentan y se requiere un aumento correspondiente de la ingesta calórica.

    Con ejercicio vigoroso la tasa metabólica puede ser de 9 veces la de un anfibio en reposo (Gatten et aI., 1992).

    Si el anfibio obeso es un buscador activo, tal como es el caso de las ranas dendrobatidas, aumentando el recinto

    de tamaño o la adición de nuevos muebles de la jaula puede estimular el aumento de actividad y aumentar su demanda metabólica. como muchos buscadores que se sientan y esperan, como las.

    ranas, Ceratophrys spp., es difícil de manipular su entorno para aumentar su nivel de actividad para la reducción de peso. Con estos anfibios, el peso

    se logra mejor mediante la manipulación de la dieta para reducir la cantidad de comida ofrecida durante un período semanal hasta que el anfibio esté comiendo un poco menos de lo que es

    necesarios para el mantenimiento. Una leve elevación en el medio ambiente de la temperatura puede aumentar el metabolismo del anfibio

    después de la aclimatación, pero la exposición prolongada a temperaturas por encima de la temperatura corporal preferida puede tener efectos fisiológicos adversos.

    Tabla 7.4. Tasa Metabólica Estándar de anuranos por cuerpo masa y temperatura corporal. Durante una lesión o enfermedad,

    las necesidades calóricas deben ser incrementadas en un mínimo

  • del 50%.

    Peso corporal en gramos

    kcal/día @ 5°C

    kcal/día @ 15°C

    kcal/día @ 20°C

    kcal/día @ 25°C

    1 0.006 ' 0.01 0.01 0.02

    5 0.02 0.04 0.04

    0.08

    10 0.04 0.07 0.08 0014. "

    20 0.06

    0.13 0.14 0.25

    30 '0.09 0.t8 0.19 0;3;5,·

    40 0.11 0.22 0.24 0.45

    50 0.13 0.26 0:29 0.54 60 0.16 0.30 0.34 0.63

    70 0.18 ,·0.34 0.39 0.71

    80 0.20 0.38 0.43 0.80

    90 0.22

    0.42 0.47

    0.88

    100 0.24 0.46 0.52 0.97

    500 0.87 1.6

    1.9 3.7

    Un periodo de ayuno puede volver al anfibio ser mas conservador

    y reducir realmente las calorías utilizadas en cada uno de ellos.

    Una tabla de peso semanal y un diario de alimentación deben ser mantenida por el cliente y evaluada cada 4-6 semanas hasta que el anfibio haya regresado a un

    peso.

    Si el cliente desea criar el anfibio obeso, el médico puede aconsejar inducir la estimulación o la hibernación

    como un medio para reducir el exceso de grasa. El objetivo de este esfuerzo es convertir la grasa corporal en masas de huevo en

    la mujer y para estimular la actividad de cortejo que es energéticamente exigente en el macho. Por ejemplo,

    la rana macho de caña jaspeada, Hyperolius viridiflavus, utiliza diez veces más energía durante la llamada que una rana en reposo (Grafe, 1988). Esto sólo se recomienda para aquellos clientes que tienen la habilidad y el equipo disponible

    para monitorear al anfibio durante este período de extremos ambientales. Para la estimulación de especies se sabe que forman capullos como respuesta a las condiciones de secado,

  • el anfibio obeso puede ser colocado en un

    cubo de barro de río que se deja secar lentamente. Los alimentos deben retenerse durante 14 días antes de la estimulación, y el anfibio debería estar empapado en agua

    durante varias horas inmediatamente antes de permitir la defecación y mictura. El espécimen puede ser estivado

    durante 2-6 meses después de que el barro se haya secado. La Humectación de el lodo seco sacará al anfibio de la estivación. La estimulación también puede lograrse utilizando un poco de musgo esfagno húmedo; se permite la capa superior

    para secarse, pero las capas inferiores deben permanecer ligeramente

    húmedo. Si las capas inferiores de musgo se secan, el anfibio puede desecarse. Si se sabe que una especie hiberna, puede ser hibernado con una condición previa similar como se describe para la estimulación. La temperatura de

    el hibernáculo se puede bajar 2°C todos los días hasta que se alcanza la temperatura deseada. La Temperatura de hibernación

    debe ser apropiada para la especie y no debe durar más de 4 meses. Estos ciclos

    puede inducir la ovulación en las ranas hembras. Si la oviposición no ocurre, puede ser asistida con hormonas o

    el desaislado manual (véase el capítulo 22, Reproducción). La falta de ovipositación puede crear problemas médicos adicionales. por lo que, una vez más, se advierte al médico de que

    estas técnicas no se recomiendan para la media

    7.7 SOBRECARGA E IMPACTO GÁSTRICO

    Muchas especies de anfibios exhiben una fuerte alimentación que puede dar lugar a la ingestión de una cantidad excesiva de

    alimentos grandes o un número excesivo de alimentos pequeños Este es un fenómeno especialmente común en

    ranas con cuernos, Ceratophrys spp. y Tschudi's African

    rana toro, Pyxicephalus adspersus, aunque ha sido observada en muchas especies de ranas y salamandras más pequeñas

    (Placas 7.8, 7.9, Figura 7.6). El estómago distendido disminuye el volumen inspiratorio de un anfibio, que conduce

    a hipoxia e hipercarbia. La circulación se convierte en comprometida cuando el estómago distendido

    comprime las venas principales, lo que lleva a una hipovolemia en pocas horas. Los anfibios que mueren en esta etapa tendrá contenido estomacal que muestra poco o nada de

    digestión o descomposición. Si el anfibio puede sobrevivir estas tensiones fisiológicas, eventualmente sucumbe a las toxinas asociadas con la putrefacción de la ingesta.

  • Figura 7.6. Aunque el estómago sólo estaba ligeramente distendido por

    esta comida, el ovipositor de un grillo había causado numerosos pinchazos

    en el estómago de un sapo manchado, Bufo guttatus, aportando

    hasta su muerte. (Virginia Pierce, Jardín Zoológico de Filadelfia)

    La sobrecarga gástrica es una emergencia médica. Los Intentos

    Que se puede hacer para recuperar presas a través de la orofaringe Son usando pinzas para el pulgar o pinzas de cocodrilo, pero los objetos no deben ser forzados a salir, ya que los bordes afilados y los

    puntos en la presa (por ejemplo, patas de grillo, uñas de los pies del ratón) puede romper la pared tensa del estómago.

    En ocasiones es posible desalojar el material mediante un catéter de alimentación de caucho rojo de calibre pequeño a el estómago y la realización de un masaje suave con

    pequeñas cantidades de solución salina caliente. La Recuperación endoscópica de cuerpos extraños ha tenido éxito en muchos pacientes. Esto generalmente se considera una emergencia quirúrgica,

    y una celiotomía y gastrotomía está garantizada si los objetos no pueden ser removidos de otra manera. Para el Preoperatorio

    se recomiendan los corticosteroides, así como en el postoperatorio los fluidos. Puede producirse un impacto cuando se ingieren objetos extraños.

    Se pueden consumir piedras, mantillo y otros desechos junto con la comida. Estos artículos pueden ser lo suficientemente grande como para causar una retención gástrica, o puede ser

    Pasados al intestino, causando obstrucción intestinal. y el impacto fecal concomitante. Con sintomas como Letargo y los abdominales hinchados sugieren una obstrucción o impactación.

    La palpación puede revelar una masa intraabdominal firme. Un examen radiográfico y ecografía

    puede confirmar la presencia de un objeto extraño. En Contraste los estudios no suelen ser necesarios para el diagnóstico, pero pueden permitir diferenciación de otras masas internas.

    la terapia en forma de líquidos por vía oral y una dieta suave puede que

  • se intente, pero generalmente una gastrotomía o enterotomía

    está justificado. 7.8 ESCOLIOSIS La Escoliosis de leve a severa entre 1000/0 de mortalidad ocurrida en renacuajos criados en cautiverio del mono gigante

    rana, Phyllomedusa cf tarsius, en el Acuario Nacional en Baltimore (Figuras 7.7, 7.8) La Crianza con éxito

    se logró cuando el complejo de vitamina B (Vitamina B Complex, VEDCO, Inc. y St. Joseph, MO). al agua del tanque a una dosis de 1 ml por galón de tanque

    agua (cada ml de complejo B aportaba 12,5 mg de tiamina, 2 mg de riboflavina, 5 mg de piridoxina hidroclorhídrica.

    Figura 7.7. Escoliosis leve de la cola en un renacuajo joven de un individuo no descrito

    Phyllomedusa sp. (George Grall, National Aquarium in

    Baltimore)

  • Figura 7.8. Escoliosis severa en un renacuajo tardío de una enfermedad no descrita.

    Phyllomedusa sp. Esta condición es progresiva y terminal.

    (George Grall, Acuario Nacional de Baltimore)

    , 12.5 mg niacinamida, 10 mg d-pantenol, 5 f-Lg cianocobalamina). Este suplemento puede compensar la lixiviación de las vitaminas B de los alimentos para peces ofrecidas,

    sin embargo, hubo un mayor crecimiento de algas en el tanque suplementario que en los tanques no suplementados, por lo que el mecanismo por el que se produjo la maduración normal

    no está claro. Un Uso posterior de suplementos de vitamina B de esta manera con otros hylidae y dendrobatidae

    ranas ha tenido un éxito similar.

    7.9 PATA FLACUCHA Pierna caótica (es decir, subdesarrollo esquelético muscular) ha sido reconocido desde hace mucho tiempo como un factor de desarrollo,

    enfermedad que afecta a renacuajos y recientemente metamorfoseadas ranas dendrobatidas (por ejemplo, la rana venenosa de Espinosa, Epipedobates espinosai, E. antoni, veneno de patas negras

    rana, Phyllobates bieolor) y ranas hílidas (p. ej.

    Phyllomedusine frog, Phyllomedusa cf tarsius, New Rana de Granada, Smilisea phaeota). La mayoría

    de estos anfibios no sobreviven. Este síndrome se ha relacionado con los alimentos de pescado en escamas como única dieta, tal vez debido a la lixiviación de las vitaminas B. Los Renacuajos su alimentación fue dada con un

    alimento de escamas de pescado de calidad (p. ej. Aquarian®, Wardley Corporation, Secaucus, NJ) que contiene importantes niveles de vitaminas y minerales (incluido el B

    vitaminas) o la adición del complejo vitamínico B (descrita en la Sección 7.8, Escoliosis) ha causado drásticamente reducción de la pata flacucha entre las especies mencionadas,

    sugiriendo la importancia de una dieta adecuada

  • para prevenir esta enfermedad. La provisión de vida,

    la vegetación acuática y las algas como fuente de alimento también parece disminuir la incidencia de la pierna fláccida (Ver también Sección 18.1, Pierna giratoria).

    7.10 PARALISIS

    Se ha observado parálisis en las extremidades posteriores y anteriores.

    en numerosos anuranos mantenidos en cautiverio de la población. Ranas dendrobatidas y sapos atelopides han mostrado una parálisis progresiva de las extremidades posteriores,

    y menos frecuentemente las extremidades anteriores, que pueden culminar en la muerte del anfibio afectado en un asunto de

    días a semanas. Hemos observado átomos con una parálisis rígida, mientras que otras ranas tienen típicamente mostraron una parálisis flácida. El Examen patológico

    de varios dendrobatides afectados del National El acuario de Baltimore demostró una desmielinización de los nervios periféricos consistentes con la tiamina

    y otras deficiencias de vitamina B. Un sospechoso Clostridium botulinum fue aislado de una

    Atelopidea, pero se perdió durante los intentos de

    confirmar la identificación. Las personas afectadas fueron

    tratadas con complejo vitamínico B a 0,1 ml/300 g de peso corporal peso PO cada 24 horas durante 7 días, luego cada 48 horas (B Complex, VEDCO Inc. St. Joseph, MO); corticosteroides;

    antibióticos (penicilina-G 40,000 iu/kg cada uno) 24 h durante 7 días); antitoxoide botulínico (dilución 1:1000 de 300 mg/ml de antitoxoide estándar); y parenteral

    calcio. Los tratamientos fueron efectivos, aunque una recuperación completa tomó más de un mes. Para

    la fecha, se han aplicado efectivamente regímenes de tratamiento similares que se usan para tratar casos de parálisis en la rana venenosa, Dendrobates auratus, veneno arlequín

    rana, D. histrionicus, rana venenosa de banda amarilla, D. leocomelas, D. tinctorius, D. tinctorius, agradable rana venenosa, Epipedobates bassleri, tres rayas

    rana venenosa, E. trivittatus, rana venenosa de patas negras, Phyllobates bieolor, hermosa rana venenosa, P. lugubris,

    y el sapo Veragoa, Atelopus varius. La eficacia de cualquiera de los productos farmacéuticos utilizados en esta aproximación de"escopeta" es desconocida y

    la etiología subyacente de la parálisis. La Deficiencia de tiamina, otras deficiencias de vitamina B, hipocalcemia, el botulismo y la infección son posibles causas de esta enfermedad.

    síndrome de Down.

    7.11 LIPIDOSIS CORNEAL (LÍPIDOS),(QUERATOPATÍA) Una de las teorías que explican la lipidosis corneal es las

    relacionadas con las diferencias de composición entre las presas alimentadas en cautividad y las presas consumidas en la naturaleza, particularmente en lo que se refiere al equilibrio

    de ácidos grasos y grasas. Hay amplia evidencia de que diferentes órdenes de insectos tienen diferentes ácidos grasos esenciales (es decir, ácidos grasos

    que no pueden sintetizar). Por ejemplo, Ephestia

  • las polillas no desarrollan alas cuando se alimentan con una dieta deficiente

    ácido linoleico, pero las lombrices de Tenebrio sufrirán

    desarrollo normal y metamorfosis (Fraenkel & Blewett, 1947, citado en Prosser, 1950). El linoleico se comparó con el contenido de ácido de la grasa de los dos insectos después de que un insecto fue alimentado con una dieta libre de ácido linoleico y el

    otro fue alimentado con una dieta suplementada con ácido linoleico. El Tenebrio tenía un contenido de ácido linoleico de 100/0 cuando se alimentaba de una deficiente dieta, y un contenido de 200/0 cuando en era una dieta suplementada

    Ephestia tiene un contenido linoleico de 1 0/0 cuando se alimentan con la dieta deficiente, y un contenido del 15 % en la

    dieta suplementaria. Si un insecto es presa de un insecto, como el doméstico el gusano de harina, Tenebrio molitor, tiene un particular ácido graso en cantidades muy superiores a las de un anfibio y sus

    necesidades, esto podría resultar en un enredo metabolico en los anfibios, ,lo que resulta en un trastorno como lipidosis corneal.

    El colesterol es necesario en las dietas de Drosophila, Tribolium, Tenebrio, Blatella (cucarachas), y la mayoría de los otros insectos, pero los vertebrados como los anfibios

    pueden sintetizar el colesterol que necesitan (Prosser, 1950). Es posible que el contenido de colesterol en una dieta compuesta de insectos domésticos es demasiado alta para los anfibios

    para metabolizar adecuadamente, y que la corneallipidosis es análoga a la relacionada con la hipercolesterolemia en enfermedades del hombre. La incidencia de esta enfermedad en los anfibios silvestres

    no se ha reportado. Dadas las diferencias de composición conocidas para algunos insectos, es probable que el metabolismo de los anfibios

    se adapte a las fluctuaciones de los niveles de nutrientes asociados a la variedad de especies de invertebrados consumidos por anfibios en libertad. La Exposición constante

    a niveles inapropiados de un compuesto, tales como la ingestión excesiva de colesterol, puede abrumar la metabólica, lo que lleva a un trastorno de almacenamiento, en

    este caso, lipidosis corneal. Aunque la lipidosis corneal probablemente es una enfermedad nutricional primaria

    una etiología multifactorial puede ser probablemente, Por ejemplo, muchos de los anfibios con córnea lipidosis son mujeres cautivas que no han logrado

    ovipositar en una o más temporadas. Cuando los óvulos son absorbidos en lugar de depositarse en el medio ambiente, los nutrientes en los óvulos deben ser metabolizados o almacenados.

    Dado que esto no es un resultado normal del desarrollo del folículo en la naturaleza, los mecanismos para la reabsorción eficiente

    de los nutrientes puede faltar. Una posible consecuencia de un transporte y almacenamiento inadecuados de ácidos grasos es la lipidosis corneal (véase también el capítulo 19.),

    El Ojo de Anfibio). 7.12 CAQUEXIA Los anfibios se presentan a menudo en un estado caquéctico (Placas 7.10, 7.11, Figura 7.9). Los efectos del hambre

    son consistentes con los descritos en otros vertebrados, incluyendo la utilización de depósitos de grasa (cuerpos de grasa),

    Pérdida de músculo por catabolismo proteico y gluconeogénesis. de las reservas de glucógeno hepático y muscular

  • (Merkle & Hanke, 1988). La hambruna a largo plazo en

    La rana de garras africana, Xenopus laevis, tiene dos especies distintas (Merkle, 1990). La Fase I, que dura de 4 a 6 semanas (o más en ranas obesas), está marcada

    por la reducción de la actividad, la reducción del consumo de oxígeno, el agotamiento de reservas de glucógeno, atrofia del cuerpo adiposo, y atrofia de las gónadas (con movilización concomitante).

    de lípidos de cualquier óvulo presente). Fase II comienza cuando el cuerpo adiposo está completamente atrofiado.

    y el catabolismo de las proteínas de los tejidos se acelera a medida que el glicógeno y las reservas de grasa están agotadas. El Esqueleto marcado le sigue la atrofia muscular. La masa cardíaca y renal

    se mantienen sin cambios durante períodos prolongados de 6 a 12 meses de duración, pero el síndrome hepático, la masa puede disminuir en más de 200/0. Ovárico

    la masa puede disminuir en un 70%, mientras que la masa de la grasa de

    los cuerpos pueden disminuir en un 990/0. Como la proteína muscular

  • Figura 7.9. Severa inanición de una rana leopardo del norte, Rana pipiens, usado por una clase de biología de la universidad. Se excluyen los anfibios

    de las pautas de cuidado y uso de los animales de muchas instituciones.

    (Sharon K. Taylor)

    disminuye, el contenido de agua de los músculos aumenta de forma similar a la línea de proteína-agua reportada en

  • (Love, 1980).

    Cambios fisiológicos similares a los descritos para la Rana comestible, Rana kl. esculenta, se esperan en las regiones terrestres.

    anfibios que se mueren de hambre (Grably & Peiry, 1981). Es probable que los anfibios terrestres se deshidraten. si están lejos de agua estancada o de un lugar húmedo

    medio ambiente, debido a las demandas conflictivas de energía conservación y el movimiento requerido para homeostasis del agua. El coquí puertorriqueño Eleuthrodactylus

    coquí, conservará el agua del cuerpo al reducir movimiento y búsqueda de alimento, permaneciendo en un microclima húmedo

    y optando por la inanición en lugar de la deshidratación (Stewart, 1995). Un anfibio terrestre hambriento puede desarrollar mayor cantidad de agua corporal si se encuentra en un lugar adecuadamente húmedo

    (Grably & Peiry, 1981). Los signos clínicos de la inanición varían entre los acuáticos y anfibios terrestres. Los cuerpos grasos pueden ser indetectables

    por palpación o transiluminación, y la hembra de los anfibios pueden carecer de óvulos desarrollados (sin embargo,

    ambos signos ocurren en anfibios hembras después de que desove). La vesícula biliar puede estar marcadamente distendida. Las extremidades y el abdomen pueden parecer delgados en

    anfibios terrestres, y la pelvis o el urostile aparecen prominentes. En Los anfibios acuáticos pueden aparecer hinchado y edematoso debido al aumento de agua corporal

    asociado con el catabolismo proteico. En los Anfibios terrestres pueden parecer deshidratados y tener marcas de pérdida de peso (superior a 200/0), especialmente si están deshidratados.

    Los globos de los ojos pueden estar hundidos en las órbitas de los anfibios terrestres. La piel puede volverse

    más delgada (Grably & Peiry, 1981) y puede ser más fácil de rompe cuando el anfibio se sujeta manualmente. A menudo hay problemas subyacentes que son los siguientes

    la causa de la caquexia, pero a veces es sólo el resultado de la incapacidad del cliente para entender el comportamiento del anfibio y sus necesidades de energía (es decir, subalimentación) o para presentar

    de una manera apropiada. El tratamiento de la caquexia debe incluir lo siguiente

    alimentación con una fórmula alta en calorías hasta que el anfibio está aumentando de peso (véase la Sección 7.13, Nutricional

    Soporte para el III y el Anfibio Inapetente). Se a logrado una vez esto destetando al anfibio en un programa de autoalimentación. El cliente debe

    ser aconsejado sobre cualquier problema de cría que sea contribuyendo a la inapetencia del anfibio. Son comunes las cuestiones relacionadas con la cría de animales incluyen la alimentación de animales diurnos

    por la tarde o por la noche, alimentando a los animales nocturnos por la mañana, alimentándose con alimentos de tamaño inapropiado productos alimenticios (por ejemplo, grillos pequeños a un adulto ornamentado).

    rana de cuernos, Ceratophrys ornata, alimentación de grillos adultos al sapo de Boulenger, Pedostibes hosei), y

    alimentar con alimentos inapropiados. 7.13 APOYO NUTRICIONAL A LOS ENFERMOS

    E INAPETENTE ANFIBIO

    7.13.1. Alimentación asistida

  • La alimentación asistida (alimentación manual) es una ruta preferida de

    apoyo nutricional para algunos anfibios debilitados. Muchos anfibios se tragarán un trozo de comida (por ejemplo.., un gusano de tierra, un grillo sin cabeza o un ratón neonatal)

    que se coloca en la boca. Es posible que la boca necesite ser abierta con un espéculo, pero algunos especímenes se hundirán si se toca ligeramente en la boca. Para

    aumentar la velocidad de descomposición enzimática de la presa, la piel del ratón debe ser incisa, y

    la cabeza del grillo debería ser removida. El producto alimenticio puede ser predigerido por una inyección de una solución de agua y enzima pancreática (por ejemplo, Prozyme®, The

    Prozyme Company, Elk Grove Village, IL) inmediatamente antes de la alimentación. Las Presas congeladas y descongeladas pueden ser objeto de una digestión y asimilación más rápida

    que los artículos recién matados.

    Los objetos que pueden utilizarse como ayudas abrir las bocas incluyen una tarjeta de crédito de plástico, una película de radiografía revelada, una lámina delgada cuña de plástico (por ejemplo, un trozo de la tapa de un recipiente de yogur),

    una espátula plana de metal (cuchara para productos químicos), papel impermeable una ficha o tarjeta de visita, un párpado un espéculo, un catéter intravenoso, una cuchara de té,

    o una espátula de goma (Figura 7.10). El espéculo es presionado dentro del filtro (divot

    en el borde rostral de la boca), sobre el cual muchos de los anfibios abrirán sus bocas. El espéculo sera presionado hasta que exista una ranura adecuada.

    En este punto, se pueden insertar alimentos en la parte posterior de la boca. Retire el espéculo

    y permita que el anfibio tenga la oportunidad de tragar. Si se rechaza la posición, se debe utilizar una posición más pequeña. Si el artículo se escupe de nuevo, debe lubricarse con un gel soluble en agua y empujado suavemente hacia el esófago antes de permitir que el anfibio tenga la oportunidad de tragar

    por su cuenta.

  • Figura 7.10. Una tarjeta de visita se puede utilizar como espéculo para abrir el

    boca de una rana arborícola de Nueva Granada, Smiliscus

    phaeota. (Jardín Zoológico de Filadelfia)

    En muchos casos es menos estresante y más práctico

    para alimentar por sonda al anfibio. un catéter intravenoso, una sonda urinaria de polipropileno.

    catéter (por ejemplo, catéter urinario tomcat), o un catéter rojo se puede utilizar como sonda de alimentación de goma como sonda nasogástrica (Figura 7.11). En caso de alimentación por sonda, la sonda debe

    medirse y marcarse de forma que la longitud del tubo insertado en el tracto gastrointestinal del anfibio no es más de un tercio a la mitad de la longitud del cuerpo.

    Dado el hecho de que los anfibios adultos tienen un esófago corto el médico debe tener cuidado de no dañar

    el estómago con un tubo demasiado largo. Se debe registrar el peso después de la defecación/urinación. para determinar la verdadera masa corporal del paciente. Todos los esfuerzos

  • Figura 7.11. Tubo de alimentación de una rana arborícola de Nueva Granada de banda cruzada,

    Smiliscus phaeota. (Jardín Zoológico de Filadelfia)

    deben ser hechos para proporcionar un recinto que cumpla con los requisitos de las necesidades de la especie en cuestión, y presas apropiadas se deben proporcionar artículos entre las alimentaciones asistidas.

    Evitar intrusiones innecesarias en el recinto del anfibio. para permitir que el animal se sienta seguro.

    7.13.2. Elección de una fórmula

    Los regímenes de alimentación varían según las especies y deben ser

    adaptados a la condición corporal del anfibio. El estándar de tasa metabólica (SMR, por sus siglas en inglés), a veces conocida como tasa de reposo o tasa metabólica basal, para las tres órdenes de anfibios

    es aproximado por el consumo de oxígeno fórmulas anotadas en las Tablas 7.1, 7.2 y 7.3 (Gatten et al. ai. 1992; Smits & Flanagin, 1994). Esta tasa puede ser,

    se convierte en una necesidad calórica diaria utilizando el estándar de 4,8 kcal/l de oxígeno consumido (o 0,0048

    kcallml 02) y multiplicarlo por 24 h. Oxígeno x tasas de consumo para varios tipos de esfuerzos físicos han sido grabados y pueden ser más de nueve veces

    la tasa determinada para un anfibio en reposo (Gatten et ai., 1992). Aunque desconocemos los informes relativos a la

    SMR de anfibios enfermos, es razonable asumir que

    las demandas metabólicas de un anfibio enfermo o en recuperación son superiores a las tasas metabólicas basales determinadas para anfibios aparentemente sanos e inactivos. La tasa metabólica de los ectotermos varía con la temperatura,

    y si un anfibio está induciendo un comportamiento como fiebre, esto también aumentará sus necesidades energéticas. Debe de estar Pendiente

    de informar de lo contrario, el apoyo nutricional para los anfibios enfermos

  • debe exceder las demandas de energía de la energía basal

    metabolismo en un mínimo del 50%. (Ver tablas 7.4.) 7.5, y 7.6 para las necesidades calóricas diarias de los anfibios mediante peso y temperatura corporal.) Los valores de estas tablas

    reflejan los valores obtenidos para temperaturas de hasta 25°C (77°F), y las necesidades calóricas a temperaturas más altas se duplican por cada 10°C (16 a 18°F) de aumento

    (Gatten et ai., 1992).

    bajo peso, o no logra mantener el peso en este nivel más bajo. aumente las calorías ofrecidas a 2 veces o más

    que el de los RMS calculados. Si el anfibio continúa perdiendo peso, no sube de peso, o en cualquier manera parece tener una recuperación prolongada, el ofrecido

    las calorías pueden ser incrementadas hasta 10 veces más de lo calculado. tasa metabólica estándar. Preferimos trabajar en 7 días de tiempo de modo que mientras que cada alimentación puede no estar en

    exceso, el exceso planeado (por ejemplo, 50% o más) debería estar en ese lapso de tiempo. Trabajar en los 7 días

    disminuye la manipulación necesaria, ya que ayuda a nos ser necesario que se intente la alimentación diariamente.

    Si el tratamiento farmacoterapéutico de el régimen garantiza el manejo diario, luego la lactancia diaria puede llevarse a cabo sin problemas sin

    estrés adicional. En base a la alimentación, la mayoría de las presas alimentadas a Los anfibios se encuentran entre 1 y 2 kcal/gm (Tabla 7.7).

    Esto permite al médico calcular la capacidad de una dieta para satisfacer las necesidades energéticas de un paciente anfibio basado en las presas disponibles. Aunque el sistema de

    el cricket, Acheta domestica, ha reportado un valor calórico de 1,9 kcal/g y el grillo doméstico, CrylIus

    domesticus, tiene un valor reportado de 1.0 kcal/g (Donoghue, 1995), estos datos se basan en estudios limitados y puede que no refleje la verdadera energía biológica.

    En la mayoría de los casos, es práctico utilizar una estimación. Tabla 7.S. Tasa Metabólica Estándar de salamandras por

    la masa corporal y la temperatura corporal. Durante una lesión o enfermedad, las necesidades calóricas deben ser incrementadas por un

    mínimo de 5O%.

  • Peso corporal en

    gramos

    kcal/día

    @ 5°C

    kcal/día

    @ 15°C

    kcal/día

    @ 20°C

    kcal/día

    @ 25°C

    Cuadro 7.6. Tasa Metabólica Estándar de los caquiolas por

    la masa corporal y la temperatura corporal. Durante una lesión o enfermedad, las necesidades calóricas deben ser incrementadas por un

    mínimo de 5O%.

    Peso corporal en gramos

    kcal/día @ 20C

    kcal/día @ 25C

  • valor calórico aparejado de 1,5 kcal/g para los alimentos en vivo al calcular las necesidades energéticas de los anfibios pacientes. El Mantenimiento de grillos adultos bien alimentados e hidratados

    en las colonias del zoológico de Filadelfia pesan aproximadamente 0,3 a 0,4 g cada uno.

    Como regla general, los suplementos adicionales de proteínas y grasas no son necesarios si la presa esta bien alimentada (los artículos son alimentados). Sin embargo, la proteína y los aminoácidos en polvo

    Tabla 7.7. Contenido calórico estimado de algunas presas alimentado a los anfibios. Adaptado de Donoghue, 1995.

    Articulo, presa Energia consumida (Kcal/g) Cricket

    1.9

    Acheta domesticus Casa de cricket

    1.0

    Cryllus domesticus Larvas de gusanos de harina

    2.1

    Tenebrio molitor Gusano de tierra

    0.5

    Lumbricus terrestris Meñique del ratón, 1 g

    Meñique del ratón, 4 g

    Ratón adulto, 27 g

    0,8 (no ha amamantado)

    1,7 (después de la lactancia) 1,7

    puede ser añadido a la fórmula severamente a los

    individuos para ayudar a recuperar la masa muscular. La dieta de "Los"pobres" deben ser evaluados para descartar el exceso de grasa. deficiencia de proteínas como causa.

    Ejemplo 7.1. Thepatiep.tis un inappetente 50-g Rana de árbol blanca, Pelodryas caerulea, mantenida a 25°C con una lesión rostral ulCerativa. Suponga una

    metabólica demanda 500/0 . sobre el estándar de

    tasa de metabolismo.

  • Los anfibios son carnívoros obligados con raras excepciones.

    Extrapolando de otros animales, los carnívoros son adaptados para una dieta que consiste en 500/0 de proteína, 450/0 de grasa, y un 5 % de carbohidratos. El críquet doméstico, Acheta

    domestica, es 50% proteína, 440/0 grasa, y 60/0 carbohidratos en porcentaje de kcal, mientras que un meñique de ratón de 1,5 g

    es 570/0 proteína, 400/0 grasa, y 3 % carbohidratos en la misma base. Cualquier fórmula de alimentación por sonda a base de productos de origen animal, como grillos o animales de 1 a 2 días de edad como

    los ratones deben tener el contenido de calcio ajustado para crear un balance positivo de calcio a fósforo. Como regla general, 1 cucharadita de carbonato de calcio molido

    aporta aproximadamente 6,5 g de calcio.

    Cualquier dieta comercial de reptiles y anfibios debe ser revisada

    con respecto a su contenido en hidratos de carbono antes de proprocionar

    como dieta para el paciente anfibio. Si los principales ingredientes de la dieta son los productos de cereales, más bien

    que las proteínas animales, esa dieta es probablemente inapropiada para anfibios adultos. Los Niveles desmedidos de información simple y los azúcares complejos pueden inducir una diarrea osmótica y

    proporcionan poco o ningún sustento al paciente. La comida para bebés con carne puede servir como base para una comida temporal como

    dieta. Un suplemento multivitamínico-mineral debe echarse a la comida del bebé para hacer que la fórmula sea nutritiva. lo más completo posible. Productos comercializados

    para el consumo humano pueden ser más completos y tener un equilibrio más apropiado de vitaminas y minerales que cualquiera de los productos destinados a los anfibios

    y reptiles (Donoghue, 1995). Incluso con productos dirigidos al ser humano, la fórmula puede cambiar,

  • como sucedió con Centrum® (Lederle, American

    Cyanamid Corporation, Pearl River, NY 10965), que cambió de vitamina D3 a vitamina D2. Esta debe ser revisada con cada nueva compra para

    garantizar la coherencia de la formulación. El calcio a la proporción de fósforo de la carne se puede ajustar de la siguiente manera adición de 0,5 a 1,0 g de carbonato de calcio (400/0 de calcio)

    en peso) por cada 100 g de carne para obtener una fórmula adecuada para perros y gatos, y presumiblemente esta fórmula

    es adecuado para los anfibios. Esta fórmula da como resultado un valor calórico de aproximadamente 1 kcal/ml. Un multivitamínico. se puede añadir como suplemento mineral a la fórmula

    para obtener un nivel de vitamina D3 de 20-100 iu/100 g en la dieta. Se puede agregar Prozyme® a la fórmula para que se licue pero es posible que la fórmula deba diluirse con

    agua para pasar a través de la alimentación de pequeño calibre y la dilución de las calorías alimentadas en la fórmula.

    puede necesitar un mayor número de alimentaciones para satisfacer las necesidades de los anfibios. Por lo tanto, el médico necesita monitorear la cantidad de agua utilizada para

    diluir la fórmula para una evaluación precisa de la ingesta energética del paciente anfibio. Ciertos productos diseñados para humanos o

    los mamíferos domésticos han sido utilizados con éxito en

    reptiles carnívoros (Donoghue & Langenberg, 1996) y son aplicables a los anfibios. Los Cuidados Clínicos Feline Liquid® (Pet-Ag, Elgin, IL) proporciona 0.92 kcal/ml con una distribución calórica de 300/0 de proteína,

    450/0 de grasa, y 250/0 de carbohidratos, y es una de las más comunes en la mayoría de las clínicas de pequeños animales. Esta fórmula

    y otros productos enterales similares pueden utilizarse en caso de que una fórmula a base de presas no se encuentre disponible. Estos productos son, de hecho, a menudo preferibles

    debido a la facilidad de administración a través de los tubos de alimentación y consistencia de los niveles nutricionales.

    Si se utilizan otros productos, su distribución calórica debe acercarse a la que se comen los carnívoros, y

    la concentración calórica debe ser anotada en

    en cualquier cálculo Con pequeños anfibios

    (masa corporal inferior a 5 g) es útil diluir el enteral

    fórmula con agua para satisfacer con mayor precisión la

    necesidades calóricas del paciente.

    En muchos casos es razonable predigerir la

    leche maternizada por sonda, ya sea a base de presas (por ejemplo..,

    grillos) o a base de alimentos para bebés, con polvo para el páncreas

    (p. ej., Prozyme®) para facilitar el paso de

    la fórmula a través de la sonda de alimentación sin diluir

    la cantidad de energía por ml. Este es también un método recomendado como

    procedimiento si el paciente está siendo tratado Para cualquier trastorno gastrointestinal, como la recuperación de una rana. con

    una gastrotomía para remover a un extraño

    cuerpo.

    Independientemente de la fórmula utilizada, es importante

    hacer la mezcla fresca diariamente o según sea necesario. Esto sirve

    para reducir al mínimo el riesgo de contaminación bacteriana del

    producto. Refrigerar la fórmula a o justo por debajo de 3°e

  • (45°F) hasta que sea necesario, y caliente según las preferencias del anfibio y su

    temperatura corporal inmediatamente antes de la alimentación.

    Como regla general, el volumen de la fórmula debe

    no exceder del 10% del peso del anfibio en un período de 24 horas.

    Los anfibios pueden superar este volumen y a menudo lo superan

    cuando comen por su cuenta, pero los animales que necesitan alimentación forzada

    pueden no ser capaz de asimilar comidas grandes.

    Aunque se ha establecido una base matemática

    para determinar las necesidades de nutrientes de un paciente,

    se le recuerda al médico que trate al paciente, no la fórmula.

    Estas fórmulas son aproximaciones de datos

    recolectados de muchas especies diferentes de anfibios,

    y puede haber desviaciones significativas de

    estos valores calculados entre especies e individuos.

    La nutrición no es una ciencia exacta, y en muchos casos

    en los que se debe trabajar con un rango de valores que se debe

    tratar de cumplir con los valores calóricos exactos

    obtenidos mediante fórmulas de tasa metabólica. Por ejemplo, una

    rana de 54 g sana en reposo mantenida a 25°e (77°F) se considera que debe

    tener una necesidad calórica aproximada entre

    0,54 kcal/día (valor para una rana de 50 g) y 0,63

    kcallday (valor para una rana de 60 g) (véase el cuadro 7.4).

    En lugar de calcular una fórmula para una rana de 54 g,

    es práctico proporcionar apoyo nutricional en algún lugar

    entre esos dos valores, y aumentar la

    cantidad de alimento si el paciente está perdiendo peso y para disminuir

    la cantidad de alimento si el paciente se está convirtiendo clínicamente en

    obesos.

    REFERENCIAS Allen, M.E. y O.T. Oftedal. 1989. Manipulación dietética del contenido de calcio de grillos de comida. Journal of Zoo and Wildlife Medicine 20(1):26-33. Baksi, S.N., S.M. Galli-Gallardo y P.K.T. Pang. 1977. Metabolismo de la vitamina D en anfibios y peces. Fedn. Am. Socs. Exp. BioI. 36:1097. Ball, J.e. 1995. Una comparación de la irradiancia uv-b de baja intensidad y espectro completo lámparas con luz solar natural. Boletín del Instituto Herpetológico de Chicago

    Society 30(4):69-72. Bentley, P.J. 1984. Metabolismo del calcio en los anfibios. Bioquímica compuesta. Fisiol. 79A: 1-5. Bernard, J.B. 1995. Irradiación espectral de las lámparas fluorescentes y su eficacia para promover la síntesis de vitamina D en reptiles herbívoros. Doctorado tesis doctoral, Michigan State University, East Lansing, MI. Boutilier, R.G., D.F. Stiffler y D.P. Toews. 1992. Intercambio de material respiratorio gases, iones y agua en anfibios y anfibios acuáticos, en Feder,

    M.E. y W.W. Burggren (Eds.): Fisiología Ambiental de los Anfibios. University of Chicago Press, Chicago, pp. 81-124. Bruce, H.M. y A.S. Parkes. 1950. Raquitismo y osteoporosis en Xenopus laevis. Journal of Endocrinology 7:64-81. Dierenfeld, E.S. y D. Barker. 1995. Composición de nutrientes de las presas enteras comúnmente alimentado a reptiles y anfibios. 1995 Actas de la Asociación of Reptilian and Amphibian Veterinarians, pp. 3-15. Donoghue, S. 1995. Nutrición clínica de reptiles y anfibios. Actas de 1995

    de la Asociación de Veterinarios Reptiles y Anfibios, pp. 16-37. Donoghue, S. y J. Langenberg. 1996. Nutrición, en Mader, R.D. (Ed.): Reptil Medicina y Cirugía. W.B. Saunders Co., Filadelfia, PA, pp. 148-174. Douglas, T.E., M. Pennino y E.S. Dierenfeld. 1994. Vitaminas E y A, y composición próxima de los ratones y ratas enteros utilizados como alimento. Compuesto Bioquímica. Physiol. 107 A(2):419-424. Fraenkel, G. y M. Blewett. 1947. Ácido linoleico en la nutrición de Ephestia y

    Tenebrio. Bioquímica. J. 41:475-478. Frye, F.L. 1992. Anasarca en una rana de cuernos argentina Ceratophrys ornata. Journal of Small Exotics Animal Medicine 1(4):148-149. Gatten, R.E., Jr., K. Miller y R.J. Full. 1992. Energética en reposo y durante locomoción, en Feder, M.E. y W.W. Burggren (Eds.): Medioambiental Fisiología de los anfibios. University of Chicago Press, Chicago, pp. 314-377. Gehrmann, W.H. 1987. Irradiaciones ultravioletas de varias lámparas usadas en animales

  • la cría de animales. Biología del zoológico 6:117-127. Gehrmann, W.H. 1992. No IN B de Filamento de Tungsteno Incandescente Lámparas. Boletín de la Asociación de Veterinarios Reptiles y Anfibios

    2(2):5. Gehrmann, W.H. 1994. Características espectrales de las lámparas comúnmente utilizadas en herpetocultura. El Vivero 5(5}:16-29. Gehrmann, W.H. 1996. Iluminación de reptiles: una perspectiva actual. El Vivero 8(2):44-45, 62. Grably, S. e Y. Peiry. 1981. Cambios en el peso y en los tejidos a largo plazo. ranas, Rana esculenta. Bioquímica y Fisiología Comparativa 69A:683-688.

    Grafe, T.v. 1988. estudios sobre biología reproductiva y Lebensstrategien von Hyperiolius viridiflavus (Amphibia, Anura, Hyperoludae). Tesis de maestría, Bayerische Julius-Maximillans Universistat, Wiirzburg, Alemania.

    TRASTORNOS NUTRICIONALES --87 Hay, A.W.M. y G. Watson. 1976. Las proteínas plasmáticas transportan 25- hidroxicolecalciferol en peces, anfibios, reptiles y aves. Compuesto

    Bioquímica. Physiol. 53B: 167-172. Herman, E.A. 1992. Endocrinología, en Feder, M.E. y W.W. Burggren (Eds.): Fisiología Ambiental de los Anfibios. Universidad de Chicago Press, Chicago, págs. 40-54. Larsen, L.O. 1992. Alimentación y digestión, en Feder, M.E. y W.W. Burggren (Eds.): Fisiología Ambiental de los Anfibios. Universidad de Chicago Press, Chicago, pp. 378-394. Amor, R.M. 1980. La Biología Química de los Peces. Academic Press, Londres,

    REINO UNIDO. Mader, D.R. 1993. Uso de calcitonina en iguanas verdes (Iguana iguana). Boletín de la Asociación de Veterinarios Reptiles y Anfibios 3(1):5. Merkle, S. 1990. Efectos de la inanición en Xenopus. Fortschritte der Zoologie 38:311-320. Merkle S. y W. Hanke. 1988. Hambre a largo plazo en Xenopus laevis Daudin: 1. Efectos sobre el metabolismo general. Bioquímica Comparativa y Fisiología 89B:719-739.

    Modzelewski, E.H. y D.D. Culley, Jr. 1974. Respuestas de crecimiento de la rana toro, Rana catesbeiana, alimentó varios alimentos vivos. Herpetologica 30 (4):396-405. Consejo Nacional de Investigación. Comité de Nutrición Animal. Tablero en Agricultura. 1993. Requisitos del pescado. National Academy Press, Washington, De. Consejo Nacional de Investigación. Subcomité de Nutrición de Peces de Aguas Cálidas. 1983. Requisitos nutricionales de los peces y mariscos de aguas cálidas. Nacional

    Academy Press, Washington, De. Prosser, e.L. 1950. Capítulo 5, Nutrición, en Prosser, e.L. (Ed.): Comparativo Fisiología Animal. W.B. Saunders Co., Filadelfia, PA, pp. 112-143. Shoemaker, V.H., S.S. Hillman, S.D. Hillyard, D.e. Jackson, L.L. McClanahan, P.e. Withers y M.L. Wygoda. 1992. Intercambio de agua, iones, y gases respiratorios en anfibios terrestres, en Feder, M.E. y W.W. Burggren (Eds.): Fisiología Ambiental de los Anfibios. Universidad

    de Chicago Press, Chicago, pp. 125-150. Smits, A.W. y J.I. Flanagin. 1994. Respiración bimodal en acuáticos y anfibios apodan terrestres. American Zoologist 34:247-263. Snyder, R.L. y J. Terry. 1986. Avian nutrition, en Fowler, M.E. (Ed.): Zoológico y Medicina de Animales Salvajes. W.B. Saunders Co., Filadelfia, PA, págs. 190-200. Stewart, M.M. 1995. Las fluctuaciones de la población en la selva tropical impulsadas por el clima ranas. Journal of Herpetology 29:437-446.

    Stiffler, D.F. 1993. Metabolismo del calcio anfibio. J. Exp. BioI. 184: 47-61. Trusk, A.M. y S. Crissey. 1987. Comparación de calcio y fósforo en los grillos alimentados con una dieta rica en calcio en comparación con los que están cubiertos de polvo. suplemento. Actas de la Sexta y Séptima Conferencias Dr. Scholl

    sobre la Nutrición de los Animales Silvestres en Cautividad, Séptima Conferencia Anual, págs. 93-99. Ullrey, D.E. y M.E. Allen. 1986. Principios de la nutrición de los mamíferos de los zoológicos, en Fowler, M.E. (Ed.): Zoológico y Medicina de Animales Salvajes. W.B. Saunders Co, Philadelphia, PA, pp. 516-532. Waisman, H.A. y K.B. McCall 1944. Un estudio de la deficiencia de tiamina en el mono Macaca mulatta. Arco. Bioch. 4:265. Ward, F.P. 1971. Deficiencia de tiamina en un halcón peregrino. Diario de la

    American Veterinary Medical Association 159:599.