Datos Personales

Nombre: Garibay Tapia Elvia

Matrícula: 94225 157

Teléfono: 58-44-22-82

Licenciatura: Hidrobiología

División: C.B.S

Unidad Universitaria: Iztapalapa

Trimestre lectivo: 01- I

Título del Proyecto de Servicio Social:

EQUINODERMOS DEL CARIBE MEXICANO (CLASE ASTEROIDEA Y ECHINOIDEA)

ESTUDIO SOBRE LA BIOLOGÍA REPRODUCTIVA DE

Título del Proyecto del que depende el Servicio Social:

EQUINODERMOS DEL CARIBE MEXICANO (CLASE ASTEROIDEA Y ECHINOIDEA)

ESTUDIO SOBRE LA BIOLOGÍA REPRODUCTIVA DE

Nombre de los Asesores: M. en C. Sonia Ruiz Yañez M. en C. Jorge Quintana Molina.

Lugar de Realización: Parque Xcaret, Quintana Roo.

Clave de Registro H.009.01

PARAISO SAGRADO OE LA NATURALEZA

R I V I E R A M A Y A C A N C U N

Playa del Carmen, Q. Roo. a 27 de Septiembre del 2001

DR. GERARD0 SAUCEDA CASTAÑEDA DIRECTOR DE LA DIVISIdN DE CIENCIAS BlOLdGlCAS Y DE LA SALUD P R E S E N T E .

Por este conducto me permito hacer de su conocimiento que la alumna Elvia Garibay Tapia, alumna de la Licenciatura en Hidrobiología de la UAM con matricula 942251 57 cumplió 100% con las actividades de servicio social, en el laboratorio de Invertebrados del acuario del parque Xcaret.

Dentro de éstas actividades, la alumna, desarrolló el proyecto de investigación: “Estudio sobre la biología reproductiva de equinodermos del Caribe Mexicano (Clase Asteroidea y Equinoidea)” (ANEXO I ) , del mismo modo, participó en algunas actividades relacionadas con la operación, manejo y mantenimiento del acuario (ANEXO 2), estas actividades fueron realizadas del 20 de marzo al 29 de septiembre del presente año.

En espera de que la presente sirva para los fines que a la interesada así convengan, me pongo a su disposición para cualquier información adicional que pueda servir a este propósito.

A t e n t a m e n t e

¡a Ruiz Yáñez

Vo. Bo. Jefe Acuario Xcaret Rodolfo Raigoza Figueras

Parque Xcaret, Km 282 Carretera Chetumal Puerto Juarez CP 77710

1 México D.F. a 17 de Octubre del 2001

DR. GERARD0 SAUCEDA CASTAÑEDA DIRECTOR DE LA DIVISIóN DE CIENCIAS BIOLóGICAS Y DE LA SALUD P R E S E N T E .

Por este medio me permito hacer de su conocimiento que la alumna Elvia Garibay Tapia, de la Licenciatura en Hidrobiología de la Universidad Autónoma Metropolitana, Unidad Iztapalapa, con matrícula 94225 157, cumplió con el 100% de las actividades referentes al servicio social con título Estudio sobre la Biología Reproductiva de Echinodermos del Caribe Mexicano.

Dicho servicio social fue realizado en el acuario del Parque Xcaret, del 20 de Marzo al 29 de septiembre del presente año.

En espera de que la presente sirva para los fines que a la interesada convengan, me pongo a su disposición.

A T E N T A M E N T E

i6oslst&as Bentónicos T.C Titular “D”

M. en C. Jorge Quintana Molina

UNIDAD IZTAPALAPA Av. Michoachn y La Purísima, Col. Vicentina, 09340 Mhxico, D.F. Tel.: 724-4600 TELEFAX: (5) 61 2 0885

FORMATO PARA SER LLENADO POR EL (LOS) ASESOR(ES) INTERNO O EXTERNO PARA EL INFORME F'INAL DE SERVICIO SOCIAL.

1.

2.

3.

4.

Nombre y adscripción del asesor.

M. en C. Sonia Ruiz Yáñez RESPONSABLE DE HABITATS ARRECIFALES Acuariio Xcaret

La naturaleza del Proyecto del que procede el Servicio Social es:

a) Proyecto de Servicio Social asociado a la investigación que se realiza en las áreas departamentales.

Cl Interno.

O Externo.

0 Por convenio.

0 b) Proyecto de Servicio Social asociado a actividades disciplinarias realizadas por el asesor.

Nombre del Proyecto del que deriva el Servicio Social e institución u organismo que lo avala.

Estudio sobre la biología reproductiva de equinodermos del Caribe Mexicano (Clase Asteroidea y Equinoidea) ACUARIO XCARET

Desglosar las actividades que desarrolló el asesor para favorecer el cumplimiento de los objetivos planteados en el Proyecto Inicial de Servicio Social.

Revisión y recopilación de información para sustentar el proyecto de investigación Implementación'del área de la cuarentena de invertebrados para el montaje del diseño experimental Organización de las salidas al mar Coordinación del equipo del acuario para colectar organismos Valoración y análisis de los resultados obtenidos Ajustes y reestructuración del diseño experimental Asesoramiento por parte de la División de Acuicultura, Instituto de Fomento Pesquero

5. ¿Cómo evalúa el desempeño del alumno prestador de Servicio Social? ¿Considera que la formación que el alumno recibe en la UAMI es adecuada y suficiente para su desempeño profesional? ;Por que?

El desempeño de Elvia fue notable y muy bueno, siempre mostró una gran disposición y capacidad para llevar a cabo las actividades relacionadas con el proyecto de investigación, así como las tareas que le fueron encomendadas dentro de la operación del acuario, por lo que considera que la formación recibida en la UAMI es muy buena, ya que, desarrolla en los estudiantes una base científica sólida por lo que, permite mayor independencia en sus acciones.

6. Anote las fortalezas y debilidades detectadas por usted con respecto a la formación del estudiante.

Elvia es una persona que destaca por su inteligencia y aprovechamiento, además de que ha demostrado poseer aptitudes para la investigación científica, como lo son el orden, empeño, creatividad y gran capacidad de análisis y síntesis.

7. Nombre y firma del asesor.

M. en h/ C. NIA RUI Z YAÑ=

FORMATO PARA SER LLENADO POR EL (LOS) ASESOR(ES) INTERNO O EXTERNO PARA EL INFORME FINAL DE SERVICIO SOCIAL.

l.

2.

3.

4.

5.

6.

7.

Nombre y adscripción del asesor.

QUINT.4NA Y MOLINA JORGE R. T i t u l a r ' I D q 1 . R e s r o n s a b l e de L a b o - r a t o r i o de Ecos is tem3.s B. C.B.S. 9EPARTAMENTO DE 3IDROBIOLOGIA

La naturaleza del Proyecto del que procede el Servicio Social es:

o a) Proyecto de Servicio Social asociado a la investigacion que se realiza en las areas departamentales.

0 Interno.

0 Externo.

R Por convenio.

Q b) Proyecto de Servicio Social asociado a actividades disciplinarias realizadas por el asesor.

Nombre y firma del asesor.

J o r g e R o g e l i o Q u i n t a n a y Mol in?

Nombre del Alumno: Garibay Tapia Elvia

Matrícula: 94225157

Licenciatura: Hidrobiología

Título del Proyecto de Servicio Social:

CARIBE MEXICANO (CLASE ASTEROIDEA Y ECHINOIDEA) ESTUDIO SOBRE LA BIOLOGÍA REPRODUCTIVA DE EQUINODERMOS DEL

Clave del Servicio Social: H.009.01

Fecha de entrega: 6 de Noviembre del 2001

Asesores: M. en C. Sonia Ruiz Yáñez Responsable de Hábitats Arrecifales

Rodolfo Raigoza Figueras Jefe Acuario Xcaret

M. en C. Jorge Quintana Molina Titular ‘V. Responsable de Laboratorio de Ecosistemas Bentónicos.

I Resumen El establecimiento de una metodología para la reproducción y el cultivo de la especie

Tripneustes ventricosus, el conocimiento de la biología de los erizos característicos del Caribe, así como el papel que juegan dentro de los hábitats arrecifales heron los principales objetivos del presente proyecto. Este se desarrolló en seis fases: obtención de organismos, mantenimiento de los organismos en el acuario, selección de organismos maduros, inducción de desove por métodos químicos, fertilización de huevos y desarrollo larval. La descripción de la técnica desarrollada para el cultivo del erizo T. ventricosus es presentada. Durante el proyecto se identificaron factores importantes específicos para el desarrollo de cada fase. La inducción del desove se realizó químicamente, además se ef-ó un incremento en la temperatura del agua, ya que se observó que favorece la liberación de gametos masculinos y femeninos. Tanto la temperatura como la calidad del agua son factores determinantes en la fertilización,- puesto que la baja temperatura y la presencia de protozoarios inhiben la segmentación del huevo. El diámetro corporal de los erizos (30 a 60 mm) no es un factor determinante en la madurez sexual de los mismos. Se propone ajustar la época de inducción para el organismo T.. ventricuosus, comenzando las inducciones en mayo para finalizarlas a principios de julio.

R 1 V l E R A M A Y A C A N C U N

INFORME FINAL

ACTIVIDADES DE SERVICIO SOCIAL REALIZADAS EN EL ACUARIO XCARET

ELVlA GARIBAY TAPIA

20 de marzo al 30 de septiembre 2001

Playa del Carmen Q. Roo, a 27 de Septiembre de 2001

ANEXO 1

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ESTUDIO R l V I E R ? M A V A C A N C U N

SOBRE LA BIOLOGíA REPRODUCTIVA DE EQUINODERMOS DEL CARIBE MEXICANO (CLASE ASTEROIDEA

Y EQUINOIDEA)

El Phylum Echinodermata (Griego: echinos, espina; dema, piel) contiene unas 7 O00 especies vivientes, comprendidas en seis Clases (Hendrickx 1995):

m Holothuroidea (pepinos de mar), m Concentricicloidea (galletas de mar) = Crinoidea (lirio de mar) = Ofiuroidea (estrellas frágiles) = Echinoidea (erizos de mar) = Asteroidea (estrellas de mar)

Los integrantes de este grupo son principalmente habitantes de aguas marinas, aunque existen reportes de que algunas especies viven en aguas salobres. El área de distribución es muy amplio, comprendiendo desde la zona intermareal, en la cual son abundantes, hasta la zona abisal, abarcando los arrecifes de coral, playas arenosas y, los sedimentos blandos de la plataforma continental (Hendrickx 1995). Sus tallas oscilan de 10 cm de longitud y de diámetro hasta dos metros (Hendler 1995).

Los equinodermos poseen tres características que los hacen diferentes de otros animales: una simetría radial pentámera secundaria; (evidente en estrellas de mar), un esqueleto interno; formado por placas de carbonato de calcio, el esqueleto es interno, formado dentro de la dermis y siempre cubierto por tejido vivo, las piezas individuales de calcita (conocidos como osículos) pueden medir 3 cm o más en algunas especies y pueden formar una dura y rígida testa, en contraste con los holoturidos que son microscópicos e incrustados en su cuerpo relativamente suave y un sistema hidrovascular o ambulacral; este sistema es frágil y se encuentra confinado en un conjunto de tubos internos que utiliza al agua del medio circundante ingresándola por la placa madrepórica aumentando con ello la presión interna con la finalidad de extender o contraer las estructuras llamadas podios o pies ambulacrales. Estos podios son proyecciones tubulares terminadas en forma de ventosa cuyo funcionamiento es utilizado, en la locomoción, adhesión al sustrato, respiración, excavación, percepción sensorial, manipulación y captura de alimento. (Hendler 1995).

Otra especialización como su sistema nervioso (difuso), separan a los equinodermos de otros grupos de animales, cabe mencionar que los organismos ,

pertenecientes a este phylum carecen de cabeza, ojos, cerebro y corazón (Hendler 1995).

Para algunas especies de estrellas y pepinos de mar el poder de regeneración (regeneración de partes que pierden) es empleado como reproducción asexual. En este proceso, el organismo se divide en dos o más piezas, y cada pieza dará origen a un adulto. Sin embargo este método de reproducción es menos frecuente que la reproducción sexual, la mayoría de los equinodermos, son unisexuales, en este tipo de reproducción la fecundación es externa, en donde los óvulos S son fertilizados por esperma. Los gametos son expulsados al agua, en donde se lleva acabo la fertilización. En este proceso los huevos se desarrollan como larvas, incluyendo varios estadios planctónicos hasta la metamorfosis final cuyo estadio es bentónico. Las larvas microscópicas tienen una apariencia muy diferente que cuando son adultos. Cada clase de equinodermo tiene una larva específica, las características de estas larvas se agrupan en una amplia variedad de familias, géneros y especies (Hendlerl995).

Su depredación por otras especies no es frecuente, ya que poseen un esqueleto protector de calcita, algunas especies utilizan toxinas (Holothuridos) para auyentar a los predadores, además hacen uso de estructuras defensivas como espinas y pedicelos. Mientras que sobreviven a los ataques a través de la regeneración de partes que pierden, mientras que algunos con capaces de perder voluntariamente partes de su cuerpo (autotomía), cuando son atacados, esto en respuesta a que algunos de los integrantes de este phylum son alimento para peces, crustáceos y el hombre (Hendler 1995).

Un gran número de equinodermos pueden ejercer cambios sobre los arrecifes, ya que despojan enormes cantidades de algas y pastos marinos, los equinodermos al ser animales bentónicos, provocan la erosión del sustrato ya que desgastan las rocas carbonatadas, (principal composición de arrecifes), produciendo grandes cantidades de sedimento ocasionando una alteración en la estructura de este ecosistema, por lo tanto los equinodermos (estrellas y erizos de mar, principalmente) parecen ser responsables de la bioerosión de más del 90% de substratos Caribeños (Birkeland and Lucas1990:202).

Clase Echinoidea

El papel de los erizos sobre la comunidad marina es la regulación de la diversidad y abundancia de animales y plantas marinas, como el erizo negro que representa a uno de los grandes consumidores de algas. Los erizos al ser animales bentónicos, provocan la erosión del sustrato y el desgaste las rocas carbonatadas, que son las principales formadoras del arrecife, produciendo grandes cantidades de sedimento por lo que causan una alteración en la estructura del mismo.

En cuanto a la comercialización del erizo de mar, Japón es el país que domina la pesquería de erizo (Paracentrotus lividus, con una producción anual de 13,735 ton, producción anual mundial 117,193 ton) (Keesing 1998), en dicha pesquería el

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producto principal es la gónada, alimento muy apreciado desde hace miles de años. Este país cultiva 14 especies nativas e importan gónadas de 13 países destacándose Estados Unidos (Strongylocenfrofus franciscanus, S. Purpurafus, S. Droebachiensis, Keesing 1998) y Chile (Loxechinus albus, Keesing 1998). AI ser una pesquería escasamente regulada y sobreexplotada, provoca la reducción del recurso, este problema ha registrado casos de destrucción de hábitats y una drástica declinación de las poblaciones de erizos.

Los erizos (Heliocidaris eryfhrogramma, S. Rodgersii, Evechinus chloroficus, Tripneustes gratilh, Keesing 1998) también son cultivados en el Océano Pacífico, en regiones del Mar Caribe y en Barbados, (Tripneusfes ventricosus, Keesing 1998) en donde recientemente las poblaciones de erizos han sido devastados (Hendler 1995), por estas razones la acuacultura es una posible solución a futuro (Fernández 1998).

En la mayoría de los erizos la fertilización es externa. El crecimiento embrionario termina a partir de una larva planctónica conocida como equinopluteus seguido por una metamorfosis (de organismo filtrador pelágico a un organismo omnívoro bentónico). Durante este proceso, la larva equinopluteus se adhiere con sus pies mientras que sus brazos son inclinados hacia atrás provocando el colapso de su piel y el esqueleto es despojado, dando origen a un erizo.

Diferentes autores han realizado estudios sobre erizos en lo referente a los siguientes temas: sistemática y biología (Harvey 1956; Durham et al 1966), morfología y filogenía (Smith 1984 a), reproducción (Pearse & Cameron 1991) y hábitos alimenticios (Jangoux & Lawrence 1982). Sin embargo desde hace más de una década, únicamente, se llevan acabo investigaciones relacionadas con la crianza de erizos, también conocida como equinocultura (Le Gall & Bucaille 1989, Le Gall 1990 y Hagen 1996).Dentro de esta ciencia, destacan cultivos exitosos de la especie Paracentrotus lividus (Hinegardner 1996, Fridberger ef al 1979, Cellario y Fenaux 1990), así como, el desarrollo de procesos experimentales a gran escala (Fernández y Caltagirone 1994, Fernández 1996), al igual que sistemas “land- based” (Le Gall y Bucaille 1989, Le Gall 1990, Fernández 1996) o sistemas de policultivo (cultivo de erizos en jaulas con peces (Kelly et al 1998).

OBJETIVOS

Dar a conocer la biología de los erizos y estrellas de mar característicos del Caribe, así como el papel que juegan dentro de los hábitats arrecifales.

Establecimiento de una metodología de reproducción óptima para la cría de la especie Tripneusfes ventricosus, esta especie se encuentra en el área del Parque Xcaret. En donde la época de desove de dicha especie abarca entre primavera y verano (Moore et al 1963b & McPherson 1965).

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O Cría y reproducción de las especies en estudio con fines de exhibición y conservación de las poblaciones nativas del mar caribe

METODOLOGíA

Para establecer una metodología para la reproducción de los erizos, es necesario hacer una revisión bibliográfica y comparar los diferentes métodos ya establecidos, una vez realizado este, se procederá a la fase experimental:

El proyecto se divide en seis fases: J Obtención de organismos J Mantenimiento de organismos en el acuario J Selección de organismos maduros J Desove por inducción quimica J Fertilización de huevos J Desarrollo larval

Obtención de organismos

La zona de colecta de la especie T. ventricosus (para grupo B y.C) fue Punta Inah, la cual, se encuentra dentro de la zona autorizada por la SEMARNAT, la colecta se realiza con equipo de buceo autónomo de forma manual, al momento de encontrarse los organismo se colocan en bolsas de plástico, durante el transporte en lancha los organismos se encuentran en contenedores de plástico hasta llegar a la cuarentena de invertebrados, en donde, se mantienen por una semana en una tina circular (1000 L) para su aclimatación.

Mantenimiento de organismos en el acuario

Después de la semana de aclimatación, el mantenimiento, manejo y control de los organismos se realizo a través de la construcción de un sistema de vidrio de 69.5 x 50 x 151 , con 18 divisiones de regilux, dos de estas divisiones son para la entrada y la salida del agua y el resto son para los organismos, el sistema cuenta con una toma de agua del mar y el agua remanente llega al intercanal uno, la temperatura promedio del agua no esta regulada de ninguna forma, la finalidad del sistema es registrar fecha de inducción, hora de inducción, peso, temperatura inicial y final, cantidad de KC1 que se inyecto, hora de desove, sexo y número de inducción. En el sistema los organismos se alimentan de algas calcáreas (suministradas en piedras o corales muertos recubiertos por éstas) y gelatina de pescado (elaborada con levadura de cerveza, aceite de hígado de bacalao, alga espirulina, pescado freso y grenetina natural), solo la gelatina es proporcionada de forma de manual y diariamente, la limpieza de restos de alimento y heces fecales

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se realiza de forma diaria, para evitar acumulación de esta y degradación del agua.

Selección de organismos maduros

Se utilizaron organismos de la especie T. Ventricosus, por ser organismos comunes en la zona y de los más llamativos dentro de la exhibición (Poza de Contacto). Las características que se toman en cuenta para determinar si los organismos son aptos para el experimento son: espinas completas y rígidas y no debe existir ninguna ruptura o deformación en el esqueleto (Bustos, 2001), el peso promedio de los organismos es de 140.63 grs, mientras que .el diámetro promedio de los organismos es de 90 mm.

Desove por inducción.

La obtención de gametos se realiza por medio de inducción química. El procedimiento se describe a continuación:

1.- Se evalúa el peso de los organismos para conocer la cantidad de KCL que se va a suministrar.

2.- Se eliminan algas y excremento, del exterior de los organismos, mediante lavados con agua dulce de un minuto y posteriormente 3 veces con agua de mar previamente filtrada (45 micras durante 3 minutos). La filtración de esta agua se hizo por medio de papel filtro, posteriormente con malla de 4 micras y por último con un filtro de diatomeas (Vortex).

3.- Se prepara la solución química; la solución requerida es 0.5 Molar de KCI, y la proporción a inyectar es 0.50 ml de KC1 por gramo de peso húmedo. En cada una de las inducciones se prepara una nueva solución, se mantiene cubierta y en un lugar fresco (17°C) para evitar la contaminación y degradación de la misma

4.- Se inyecta al organismo introduciendo la aguja totalmente en posición recta, vía membrana peristomal.

5.- Se deja que el químico induzca la liberación de gametos, por lo que los organismos son colocados en un recipiente con agua a 24°C por espacio de aproximadamente 3 hrs, (se ha tomado en cuenta esta temperatura y este tiempo, por que la mayoría de las inducciones se han realizado bajo estas condiciones).

6.- Se realiza un recambio total del agua a mayor temperatura (28°C).

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7.- Después de media hora, aproximadamente, comienza la liberación de gametos. Los gametos obtenidos, se observaron en el microscopio óptico para determinar el sexo, las primeras observaciones revelan que las nubes de gametos de color naranja son óvulos, mientras que las nubes de color blanquecino son espermatozoides, esta es la única manera de conocer el sexo de los organismos ya que la especie T. venfricosus no presenta dimorfismo sexual.

Fertilizacicin de huevos

La fertilización se realiza de la siguiente forma:

1 .- Los óvulos y espermatozoides obtenidos en la inducción se mezclan en un matraz en agua previamente filtrada (45 micras) a temperatura de 25"C, . posteriormente se incremento la temperatura a 28°C.

2.- Una hora después de la mezcla se realiza una decantación de agua para eliminar el exceso de espermatozoides y evitar la descomposición del agua.

3.- El éxito de la fertilización se evalúa por la aparición de la membrana de fecundación en los óvulos.

Cultivo Larval

Aproximadamente después de una hora y media de ocurrida la fertilización, comienza la primera segmentación (dos células) que es el principio de la gastrulación.

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ANEXO 2

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ACTIVIDADES REALIZADAS EN EL ACUARIO DEL PARQUE XCARET

Proyecto Echinodermos Phyllum Echinodermata

Exposición de las Clases Asteroidea, Ofiuroidea, Echinoidea y Holoturoidea.

Proyecto Medusas:

Alimentación Recambios de agua al sistema Control de filtro biológico Limpieza de sistema Recolección de pólipos Fijación de pólipos Adición de vitaminas Estrobilación

Mantenimiento de pólipos:

Mantenimiento de éfiras: Recolección de éfiras Alimentación Recambios de agua

Alimentación

Alimento vivo: Descapsulación de quiste de artemia

Operación

Limpieza Limpieza de intercanal Limpieza de canal de equinodermos

Corales

Monitoreo de corales Identificación de corales Ubicación de corales en estanques y menores

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Objetivos y Metas alcanzadas

,,,k Dar a conocer la biología de los erizos y estrellas de mar característicos del Caribe, así como el papel que juegan dentro de los hábitats arrecifales.

Establecimiento de una metodología de reproducción óptima para la cría de la especie Tripneustes venfricosus, esta especie se encuentra en el área del Parque Xcaret. En donde la época de desove de dicha especie abarca entre primavera y verano (Moore et a/. 1963b & McPherson, 1965).

Cría y reproducción de las especies en estudio con fines de exhibición y conservación de las poblaciones nativas del mar caribe

El principal hábitat de T. venfricosus es pastos marinos (Thalassia festudinium) . en el área intermareal.

Del mismo modo se observó que la dieta principal de Oreasferreficulatus, es T. ventricosus. sin embargo en el acuario se le alimenta con una gelatina de pescado

El primer paso a seguir era el conocimiento de los sexos de cada organismo, esto realizó a partir de inducciones químicas mediante la inyección de KCL, sin embargo se encontró que un cambio brusco de temperatura aunado a la inducción química provoca la liberación de gametos.

La fecundación se desarrolló exitosamente, a partir de esta se observaron las primeras segmentaciones, hasta el estado ocho.

Resultados

En el proyecto se involucraron tres poblaciones, denominadas como grupo “A, B y C”, ya que el lugar de colecta y las fechas de inducción fueron diferentes para cada una de estos grupos.

Se inicio el experimento con una población denominada grupo “ A , formado por 14 organismos de la especie T. venfricosus, los organismos de este grupo se encontraban en la cuarentena de invertebrados ya que estos organismos crecieron dentro del acuario. La talla de los organismos utilizados oscila alrededor de los 90 mm de diámetro, lo que para esta especie indica que su edad es de un año y que son sexualmente maduros (Lewis 1958), ya que, se ha reportado que alcanzan su madurez sexual a los 8 meses con una talla de 20 a 30 mm (Lewis 1958) y 30 a 45 mm (McPherson 1965).

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El grupo "A (Tabla I), en las primeras fechas de inducción (08/05/01 y 09/05/01) dieron como hembras En la tercera fecha de inducción (10/07/01) aunado a la inducción química se observan que un cambio brusco de temperatura era propicio para el desove, los organismos que desovaron son machos, por lo tanto se le inyectó a una hembra 3, para iniciar la fertilización, esta se realizó mezclando óvulos y espermatozoides en un vaso de precipitado de 1 L, con agua filtrada (55 micras) y aireación ligera y constante, la fertilización comenzó a las 16:06 p.m., a partir de este momento comenzaron las primeras divisiones del huevo, a las 17:40 el estado dos era evidente, mientras que a las 18:15 p.m. se encontraba en el estado cuatro, en este momento la temperatura del agua fue de 24"C, al siguiente día se esperaría encontrar otro estadio, sin embargo las observaciones no reflejan cambio alguno, se cree que la temperatura baja (24" C) provoco se detuviera la división celular, sin embargo autores como; Bustos R & Olave M (Loxechinus albus, Chile,2001) reportan una temperatura de 17 -18"C, para los primeros estadios (hasta gástrula) mientras que Keesing (Acanthaster . planci, Australia, 1997) y Lucas (Acanfhaster planci, Australia,l982) reportan que los gametos se deberán encontrar a una temperatura de 28°C.

La cuarta fecha de inducción (1 1/07/01) dio lugar a otra fertilización de los organismos I 1 y 4, con agua filtrada (55 micras), aireación ligera y constante, mientras que la temperatura se mantuvo a 28"C, la fertilización al igual que la división celular (estadio 8) se llevaron a cabo, sin embargo al realizar observaciones en el microscopio para evaluar el desarrollo de los estadios se encontró una gran cantidad de protozoarios vivos además todos los óvulos se encontraban desechos. La hembra 4 murió al ser sometida a una segunda inducción. En la última fecha de inducción del grupo "A" (16/105/01) se realizó la fecundación de los organismos 14 y 1 O, el agua se filtro con una malla de (45 micras) posteriormente fue filtrado con el vortex, con aireación ligera y constante, además se realizaron recambios al agua que contenía a los gametos, sin embargo la presencia de protozoarios volvió a provocar que la división celular se viera afectada, ya que todos los óvulos se encontraron destrozados, mientras que en la muestra solo se identificaron protozoarios.

El cambio brusco de temperatura induce al desove, ya que las dos últimas fechas de inducción (16/105/01) de 7 organismo solo uno no desovó.

Después de haber sido sometidos a una inducción, los organismos no fueon sometidos a una segunda inducción, debido a que era muy probable que murieran, esto ya había sucedido en prácticas pasadas, probablemente el tiempo entre la primera y segunda inducción no era suficiente, por lo tanto se transladaron al intercanal 1 (canal que comunica al estanque 1 y estanque 2 del acuario), ya que contenía gran cantidad de algas calcáreas (dieta básica) durante dos semanas para después comenzar con otro experimento, sin embargo, al tener comunicación con los estanques, los organismos se ocultaron dentro de los estanques mayores de donde fue imposible recuperarlos.

Los organismos del grupo "B" (Tabla 2) se sometieron a las mismas condiciones de inducción (solución química, alimento) que el grupo "A a pesar de esto solo un organismo desovó, por lo tanto se evito el cambio brusco de temperatura, ya que Matsunaga & Kasuga (1978) mencionan que 1 ml de solución eran suficientes

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para lograr el desove, además con el grupo “ A no se había provado el incremento de solución química, las inducciones con un mililitro de solución tuvieron como resultado, dos hembras (gametos femeninos) todos los organismos del grupo “B” murieron, a pesar de que solo se sometieron a una sola inducción.

En el grupo ‘ C ’ (Tabla 3) con un total de 9 organismos, se evito el cambio brusco de temperatura y se mantuvieron a temperatura constante (25°C) y en algunos organismos se inyectaron cantidades de 1 y 3 ml (Bustos y Olave, 2001) de KC1 para ver si de esta forma se obtenían gametos, solo un organismo desovo al ser inyectado con 3 ml de solución, el resto de los organismos murieron.

AI ver que los organismos tanto del grupo B y C morían se procedió a la realizar una incisión de dos organismos, desde el ano hasta la boca, para observar sus gónadas en uno de los organismos las gónadas se encontraron muy delgadas y con óvulos inmaduros (no eran esféricos), mientras que las gónadas del otro organismo eran grandes pero con óvulos inmaduros, por lo tantose determino que la época de desove ya había concluido.

Los espermatozoides se mantuvieron vivos por un día mediante, baja temperatura (16°C) y poca aereación. No se logró realizar el mismo procedimiento con óvulos. Sin emgargo Lutz E.F et al (1959) propone que si los óvulos son mantenidos cerca de los 8°C conservan la capacidad de fertilización por una semana.

Conclusiones

0 El cambio brusco de temperatura aunado a la solución química, propicia la inducción en la liberacibn de gametos tanto masculinos como femeninos.

El rango de 30 a 60 mm de diámetro, no es factor confiable en la determinación de la madurez sexual de los erizos de la especie T. Ventricosus.

Probablemente la causa de muerte de los organismos se debe al hecho de haber realizado el experimento en agosto. Aunque a pesar, de que la metodología se siguió adecuadamente y la bibliografía consultada mencionaba que la &poca de desove es en primavera y verano para Florida y el Caribe, (Hendler et al 1995), al parecer, los organismos no estaban maduros sexualmente, por lo que se debería ajustar la época de inducción para el organismo T. Ventricosus., comenzando las inducciones en mayo y finalizarlas a principios de julio.

20

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"1

Criterios de Evaluación

Elaboración del Proyecto de la Biología reproductiva de Echinodermos del Caribe Mexicano

Elaboración de reportes mensuales y semanales

Evaluación de la metodología y su aplicación

Evaluación del cumplimiento de los estándares del acuario

Entrega y exposición del proyecto final sobre el trabajo realizado en el acuario

Bibliografía

Ambrose, W.G., Jr. 1993. Effects of predation and disturbance by ophiuroids on soft-bottom communitu structure on Oslofjord: Results of a mesocosm study. Marine Ecology Progress Series 97:225-236.

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