Epidemiología y control de la Epidemiología y control de la infección nosocomial por infección nosocomial por microorganismos multirresistentes: microorganismos multirresistentes: Papel de la MicrobiologíaPapel de la Microbiología

Álvaro PascualUGC de Enfermedades Infecciosas y Microbiología

Hospital Universitario Virgen MacarenaUniversidad de Sevilla

Microbiología e Infección Nosocomial

1. Papel del microbiólogo2. Papel del laboratorio de Microbiología

Principales funciones del Microbiólogo

………………………….. Participar con el máximo nivel de

responsabilidad en el control y prevención de la IN y comunitaria.

Implicarse en la política de uso racional de antimicrobianos.

Colaborar con los sistemas de vigilancia epidemiológica y de salud pública.

………………………..

García Bermejo et al. EIMC 2010.

Composición de una comisión de infecciones

Niveles de implicación Servicios implicados

Principalmente implicados

Microbiología, EEII, M. Preventiva, Farmacia, Esterilización

Servicios donde la infección es problema grave

Cirugía, UCI, Trasplantes/Oncología, Neonatología, Pediatría, M. Interna…

Órganos de dirección Direcciones gerencia, médica y enfermería

García Bermejo et al. EIMC 2010.

Función del microbiólogo en la vigilancia y control de la IN

Comité de infecciones y política de antimicrobianos.

Equipo de control de la IN Diseño de estrategias de vigilancia y control Trabajo de campo Cultivos de portadores Cultivos ambientales Control de reservorios Formación continuada….

Papel del laboratorio de Microbiología en la vigilancia y control de la IN (y de la comunidad)

Protocolos de recogida y procesamiento de muestras diagnósticas y de control de infección

Sistemas de identificación y sensibilidad. Nuevos patógenos y fenotipos de resistencia.

Pruebas de diagnóstico rápido Informes periódicos de incidencia de microorganismos

involucrados y sensibilidad a antimicrobianos. Protocolos de cultivos de vigilancia (portadores,

trabajadores sanitarios, ambiente, etc). Técnicas de tipificación molecular para investigar

brotes, reservorios, vías de transmisión. Almacenamiento de microorganismos Sistema de almacenamiento de datos, gestión de

datos y comunicación.

Niveles de Laboratorios: colaboración

(HGP = hospitales generales pequeños, HGG = hospitales generales grandes, GHR = grandes hospitales de referencia, CRNH = centros de referencia no hospitalarios)

* al menos en situaciones de brotes

Análisis de evolución de Análisis de evolución de resistenciasresistencias

Control de la infección nosocomial Política de antimicrobianos Evitar sobredimensionar resistencias Criterios comunes con fines

comparativos.

Recomendaciones generales para elaborar el Recomendaciones generales para elaborar el informe acumulado de susceptibilidad informe acumulado de susceptibilidad antimicrobiana.antimicrobiana.

Realizarlo y presentarlo por lo menos 1 vez al año Incluir especies con al menos >30 aislados/año Para calcular los porcentajes de resistencia, utilizar los

puntos de corte vigentes ese año y analizar el impacto de los cambios introducidos en los comentarios del informe.

Incluir sólo resultados de muestras clínicas (descartar los resultados de colonización o de vigilancia)

Incluir sólo el primer aislado de cada paciente Incluir sólo los resultados de antibióticos que se informan

de forma rutinaria, descartar los que se utilizan para identificación o para detección de fenotipos de resistencia

Calcular el porcentaje de sensibles y descartar el porcentaje de aislados con sensibilidad intermedia

Fuentes: CLSI, ESCMID, SEIMC

Recomendaciones específicas del M39-A2 Recomendaciones específicas del M39-A2 para la elaboración del informe acumulado para la elaboración del informe acumulado de susceptibilidad antimicrobianade susceptibilidad antimicrobiana

Microorganismo Recomendación

Streptococcus pneumoniae Calcular el porcentaje de sensibles y con sensibilidad intermedia a la penicilina

Calcular el porcentaje de sensibles a cefotaxima/ceftriaxona usando los puntos de corte para meningitis y para cuadros no meníngeos

Estreptococos gr. viridans Calcular el porcentaje de sensibles y con sensibilidad intermedia a la penicilina

Staphylococcus aureus Calcular los porcentajes de sensibilidad de forma separada el subgrupo de aislados resistentes a meticilina

Fuente: CLSI

Microorganismo Fenotipo

A) Fenotipos novedosos (no descritos o detectados en casos esporádicos)

S. pyogenes PenicilinaR o cefalosporinas 3ª generaciónR

S. pneumoniae VancomicinaR o linezolidR

L. monocytogenes AmpicilinaR o gentamicinaR

N. meningitidis Cefalosporinas 3ª generaciónNS o carbapenémicosNS

H. influenzae Cefalosporinas 3ª generaciónR

B) Fenotipos poco frecuentes hasta la fecha

Enterobacterias Productores de BLEE e inhibidores de BLR

CarbapenémicosR (excepto Proteus/Morganella spp)

S. enterica Typhi Cefalosporinas 3ª generaciónR

A. baumannii Colistina/polimixinaR

P. aeruginosa Colistina/polimixinaR

S. maltophilia CotrimoxazolR

H. influenzae Amoxicilina/clavulánicoR o fluorquinolonasR

N. meningitidis PenicilinaR de alto nivel

N. gonorrhoeae Cefalosporinas 3ª generaciónNS

S. pneumoniae PenicilinaR de alto nivel

S. aureus VancomicinaR de alto nivel, linezolidR, daptomicinaR

SCN LinezolidR

Enterococcus LinezolidR

E. faecalis PenicilinaR de alto nivel

Fenotipos de resistencia que deben ser confirmados

Strain/Plasmid Mutations CLSI EUCAST

E. coli ATCC 25922-S83L-S80RGyrA Ser83Leu, ParC Ser80Arg S S

E. coli ATCC-S83L-S80R/qnrAGyrA Ser83Leu, ParC Ser80Arg I R

E. coli ATCC-S83L-S80R/qnrBGyrA Ser83Leu, ParC Ser80Arg S R

E. coli ATCC-S83L-S80R/qnrSGyrA Ser83Leu, ParC Ser80Arg I R

Microorganismos centinelaMicroorganismos centinela Monitorización periódica de

microorganimos centinelas: No existen recomendaciones Epidemiología local Información de ámbito nacional (brotes,

importación de nuevos mec., etc) Disposiciones locales, autonómicas o

nacionales. Frecuencia de comunicación: alerta,

monitorización o impacto de intervención

Grupos de microorganismos centinelas mas frecuentes (1)Microorganismo Característica

A) Bacterias multirresistentes

Klebsiella/Enterobacter spp Productor de BLEE/carbapenemasa

P. aeruginosa Productor de carbapenemasa

A. baumannii CarbapenémicosR

S. aureus MeticilinaR, glicopéptidosI/R, linezolidR

SCN GlicopéptidosR, linezolidR

E. faecalis/E. faecium GlicopéptidosR

S. pneumoniae PenicilinaR alto nivel, C3GR

M. tuberculosis IsoniacidaR+rifampicinaR

Grupos de microorganismos centinelas mas frecuentes (2)

B) Patógenos de posible adquisición nosocomial de persona a persona

C. difficile Toxigénico

Norovirus, astrovirus

Adenovirus Serotipo 8 y 19

RSV, virus influenzae

VIH, HBV, HCV

C) Patógenos de adquisición de fuente ambiental

Aspergillus spp

Legionella pneumophila

Micobacterias Especies de crecimiento rápido

D) Otros

B. cepacia

S. Maltophilia

Nuevos métodos en MicrobiologíaNuevos métodos en Microbiología

Métodos de detección rápida de Métodos de detección rápida de microorganismos centinelamicroorganismos centinelaMicroorganismo Método Muestra

Detección de antigeno

Virus respiratorios (VRS, influenza) ELISA de membranaInmunocromatografía

Aspirado nasofaríngeo

Toxina de C. difficile ELISAInmunocromatografía

Heces

Virus entéricos (Norovirus, astrovirus) ELISA de membranaInmunocromatografía

Heces

L. pneumophila ser. 1 Inmunocromatografía Orina

pbp2´ de S. aureus meticilina resistente Aglutinación de latex Cultivo de S. aureus

Detección de ácidos nucleicos

mecA y SCC de S. aureus meticilin resistente Multiplex PCR en tiempo real Frotis nasal

Productores de BLEE y carbapenemasas Microarray cultivo positivo

Múltiples determinantes de resistencia (vanB y vanA, mecA)

Multiplex PCR en tiempo realMultiplex PCR e hibridación

Sangre

Toxina de C. difficile PCR en tiempo real heces

Estudios de portadores. SARMEstudios de portadores. SARM

A favor En contra El análisis de muestras clínicas sólo

detecta 50-70% de los portadores de MRO y es necesario reducir el 90% de las transmisiones para tener impacto en la reducción de las infecciones

Deberían utilizarse sólo en caso de brotes, cuando las medidas universales de prevención de infecciones han fallado

Evidencia científica que la detección de portadores es beneficioso en la reducción de la infección tanto en brotes como

La mayoría de los estudios tienen una calidad limitada y no incluyen grupos control sin detección activa

Estas reducciones de la incidencia han ocurrido sólo en instituciones con alta prevalencia de MRO

Existe evidencia de reducción de la tasa de infecciones por SARM sin incluir la vigilancia activa de portadores

Son menos costosas que los casos de infección por SARM que se evitan

Son costosas porque hay que incluir el coste de la técnica, personal del laboratorio, transporte, administración.

Estudios de portadoresEstudios de portadores

¿Qué microorganismos? ¿Qué grupo de pacientes? ¿Qué tipo de muestra? ¿Qué tipo de técnica?

Métodos disponibles para Métodos disponibles para estudios de portadores. MRSAestudios de portadores. MRSA

Basados en cultivo Microorganismo Medio de cultivo

S. aureus meticilinaR No cromogénicos Agar manitol-sal + 4-6 mg/l oxacilina Agar MH + 4% ClNa + 4-6 mg/l oxacilinaCromogénicos ORSAB (Oxoid) MRSA select (Biorad) ChromID MRSA (Biomérieux) BBL CHROMagarTM MRSA II (BBL) HardyCHROM MRSA (HardyDiagnostics) CHROMagar MRSA (CHROM agar Microbiology) Brilliance MRSA (Oxoid) Chromatic MRSA (Liofilchem)

Técnicas moleculares

Microorganismo Técnica

S. aureus meticilinaR GenoType MRSA Direct (Hain Lifescience)BD GeneOhm MRSA real-time PCR assay (BBL)Cepheid Xpert MRSA assay (Cepheid)

Coste-eficacia en estudios de portadores de SARM. HUVM. Sevilla

Prevalencia de SARM en 2010 HUV Macarena (<15%)

23% de PCR-TR de SARM tenían cultivo con SASM.

Se cambió la PCR-TR por medio cromogénico. Ahorro anual : 50.000€ (93%)

Obviedad en estudios de Obviedad en estudios de vigilancia y control de INvigilancia y control de IN

¿Para qué quieres aplicar técnicas rápidas si no tienes un

equipo de control de la infección nosocomial eficiente?

No pidas aquella determinación que en caso de ser positiva no

sabes lo que significa

Métodos moleculares e INMétodos moleculares e IN

Identificación de microorganismos resistentes

Detección de mecanismos de R: Genes de resistencia Elementos móviles (integrones, Plasmidos,...) Regiones promotoras Genes reguladores

Tipificación molecular. PCR (Rep-PCR,...) PFGE MLST Secuenciación

Técnicas de tipado

REP-PCRRibotipiaDiversiLab

Secuencias repetidas

PFGE

• Todo el cromosoma• Cualquier especie• Alta discriminación• Difícil estandarización• Permite normalización• 3 días

• 1 día• Díficil estandarización• No normalización

Secuenciación

MLST

MLVAVTNR

PFGEPFGE

Suspensión bacteriana

Introducción en bloques de agarosa

Digestión enzimática

Lisis enzimática

Electroforesis en campo pulsante

Fotografía del gelAnálisis del resultado

Técnicas de tipado molecularTécnicas de tipado molecular

Permiten comparar el genoma de varios aislados

….GG CC….….CC GG….

….GA CC….….CT GG….

1 mutación=1 cambio genético

Aislado A Aislado B

Técnicas de tipado: Técnicas de tipado: comparacióncomparación

Relación del 78%

Técnicas de tipado: Técnicas de tipado: comparacióncomparación

Perfiles idénticos

Ejemplos prácticos en el HUVMEjemplos prácticos en el HUVM

Episodio 1: Búsqueda de reservorio

Episodio 2: Importancia del determinante de resistencia

Episodio 3: Transmisión vs pseudobrote de SARM

Episodio 1: búsqueda del Episodio 1: búsqueda del reservorioreservorio UCI adultos año

2010

Paciente Fecha Cama Muestra

A 23 julio 6 A. bronquial SARM+

B 27 julio 2 A. bronquial SARM+

2 pacientes con NAV

Episodio 1: búsqueda del Episodio 1: búsqueda del reservorioreservorio Situación basal: no había casos anteriores de SARM en

la UCI en 2010

Paciente ACama 6

Paciente BCama 2

16

Ingreso?

F. nasal no realizado

22

Ingreso

23 26

A. bronquial SARM

F. nasal negativo

Cuestiones que se plantean: ¿Es el mismo microorganismo?

¿Se ha podido transmitir entre los dos pacientes?

El caso B: ¿Puede ser un falso positivo?

¿Existen otros pacientes portadores en la unidad?

¿Existen portadores sanitarios?

Episodio 1: búsqueda del Episodio 1: búsqueda del reservorioreservorio

Actuaciones del equipo de infección nosocomial: Aislamiento de los dos casos

Limpieza terminal de áreas comunes

Búsqueda de portadores en todos los pacientes

Búsqueda de portadores en todo el personal

Episodio 1: búsqueda del Episodio 1: búsqueda del reservorioreservorio

Pacientes Todos negativos

Trabajadores (71) 1 frotis nasal positivo

Fibrobroncoscopio Se había utilizado el mismo en los 2 casos. No cultivo

Episodio 1: búsqueda del Episodio 1: búsqueda del reservorioreservorio

Dice (Opt:0.60%) (Tol 1.0%-1.0%) (H>0.0% S>0.0%) [0.0%-100.0%]PFGE

100

9080

PFGE

956

957

961

Caso Muestra

A A. traqueal

B A. traqueal

Trabajador F. nasal

Transmisión cruzada entre los 2 pacientes (fibrobroncoscopio?)

Fallo en el protocolo de detección precoz del 1er caso

El trabajador sanitario “no está relacionado”

Episodio 1: RESULTADOS

1) Descolonización del trabajador

2) Formación sobre la limpieza y desinfección del fibrobroncoscopio

3) Control microbiológico del reprocesado de endoscopios

4) Reforzamiento de las muestras de control al ingreso en UCI

ACTUACIONES

Episodio 2: importancia del Episodio 2: importancia del determinante de resistenciadeterminante de resistencia

Agosto 2005-febrero 2006

32% de los pacientes colonizados

9 sepsis

J Hosp Infect 2009; 73: 159-163

Bacteremia

Colonized

Feb09

Infected/colonised patients

Positive dateDeath dateICU stay

Mar

09Abr0

9M

ay09

Jun09

Jul09

Ago09

Sep09

Oct09

Nov09

Dic09

Ene10

Feb10

Mar

10Abr1

0M

ay10

Jun10

Jul10

Ago10

Sep10

Oct10

Nov10

Dic10

Ene11

Feb11

Mar

11Abr1

1M

ay11

Jun11

Positive culture

Negative culture

Sink 2 cultures

Sink removal Feb 25th, 2011

Epidemiological and environmental study of an Epidemiological and environmental study of an outbreak caused by a carbapenemase-producing outbreak caused by a carbapenemase-producing K. K. oxytoca.oxytoca.

MC Domínguez et al. Poster K-237. ICAAC 2011

Sink 1 cultures

Sink removal Sep 10th, 2010

Episodio 3: transmisión Episodio 3: transmisión vsvs pseudobrotepseudobrote

En Traumatología 2006-2011: 22 pacientes con infecciones postquirúrgicas

Se disponía de 19 aislados conservados

¿Existe transmisión postquirúrgica en el

Servicio de Traumatología?

¿Los pacientes estaban colonizados antes de la

cirugía?HIPÓTESIS

Episodio 3: transmisión Episodio 3: transmisión vsvs pseudobrotepseudobrote

11 perfiles

clones

11 perfiles diferentes:

10 perfiles relacionados con clones del hospital estudiados en años anteriores

E2 el grupo mayor (4 casos)

Se revisaron los antecedentes epidemiológicos en los 2 grupos mayores del hospital

E2: 4/6 pacientes

E5: 7/16

Episodio 3: transmisión Episodio 3: transmisión vsvs pseudobrotepseudobrote

Antecedente previoLa misma consulta

Pacientes con colonización previa a la intervención

Revisar el protocolo de preparación del paciente

Actuaciones en las consultas del área

Episodio 3: Resultados

Conclusiones Establecer la relación clonal es una herramienta útil

para la planificación de intervenciones de control

A corto plazo: actuaciones iniciales

A largo plazo: búsqueda de reservorios ocultos

El estudio comparativo entre aislados debe ir acompañado de un análisis de los determinantes de resistencia

Es necesario establecer una base de datos histórica de datos epidemiológicos, microbiológicos y moleculares

Equipo de control de IN multidisciplinar y proactivo.

Mantenimiento de baja incidencia de infecciones producidas por patógenos multirresistentes en un hospital terciario

Jesús Rodríguez-Baño, Lola García-Ortega, Lorena López-Cerero, Carmen Lupión, Mariola Alex, Carmen González, María D. del Toro, Julio López, Encarnación Ramírez,

Miguel A. Muniain, Alvaro Pascual

Unidad Clínica de Enfermedades Infecciosas y Microbiología.Hospital Universitario Virgen Macarena, Sevilla

Spanish Network for Research in Infectious Diseases (REIPI)

Hospital UniversitarioVirgen Macarena, Seville

Método (III)

MicrobiologíaProcedimientos

Detección diaria de casosMantenimiento aislados

Identificación molecular

Datos epidemiológicosPrecauciones de contacto

Limpieza ambientasRefuerzo de medidas de control

Enfermedades InfecciosasCoordinación

Consejo clínico y seguimientoDecolonización si es posible

Refuerzo de medidas de control

Enfermería de INFeed-back

Flujo de trabajo

Resultados

0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

0,8

0,919

95

1996

1997

1998

1999

2000

2001

2002

2003

2004

2005

2006

2007

2008

2009

2010

Cas

es p

er 1

,000

pat

ient

-day

s

Infect Control Hosp Epidemiol 2010; 31: 786-95

SARM

<15%

Resultados

Am J Infect Control 2009; 37: 715-22

A. baumannii

0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

0,8

0,9

1994

1995

1996

1997

1998

1999

2000

2001

2002

2003

2004

2005

2006

2007

2008

2009

2010

Cas

es p

er 1

,000

pat

ien

t-d

ays

Resultados

Am J Infect Control 2009; 37: 715-22

A. baumannii

0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

0,8

0,9

1994

1995

1996

1997

1998

1999

2000

2001

2002

2003

2004

2005

2006

2007

2008

2009

2010

Cas

es p

er 1

,000

pat

ien

t-d

ays

Resultados

0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

2002

2003

2004

2005

2006

2007

2008

2009

2010

Years

Cas

es p

er 1

,000

pat

ient

-day

s

MRSA

0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

2002

2003

2004

2005

2006

2007

2008

2009

2010

Years

Cas

es p

er 1

,000

pat

ient

-day

s

A. baumannii

0

0,02

0,04

0,06

0,08

0,1

0,12

2002

2003

2004

2005

2006

2007

2008

2009

2010

Years

Cas

es p

er 1

,000

pat

ient

-day

s

ESBL-K. pneumoniae

0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

2002

2003

2004

2005

2006

2007

2008

2009

2010

Years

Cas

es p

er 1

,000

pat

ient

-day

s

ESBL-E. coli

Media en Hospitales de Andalucía

Tasa,Hosp. Univ. V. Macarena

El desarrollo de un programa específico de control de infecciones dirigido a detectar y evitar la transmisión de bacterias MR se asoció con una disminución significativa y mantenida de las tasas de SARM y A. baumannii nosocomial.

Las tasas de P. aeruginosa mulrirresistente y K. pneumoniae productor de BLEE se mantuvieron a niveles muy bajos.

Los brotes fueron rapidamente detectados y controlados. La identificación molecular “en tiempo real” ha sido una herramienta indispensable.

No se detectó transmisión de VRE, de enterobacterias y/o P. aeruginosa productoras de carbapenemasas.

El principal problema actual es la entrada de E. coli productor de BLEE desde la comunidad a los hospitales

Conclusiones

UGC Intercentros de Enfermedades Infecciosas, Microbiología Clínica y Medicina Preventiva

Hospital Universitario Virgen Macarena. Sevilla

Laboratorio de Referencia para tipado molecular de patógenos nosocomiales y detección genotípica de

mecanismos de resistencia a antimicrobianos de interés sanitario en Andalucía

Programa PIRASOA

Antecedentes

1. Reconocimiento como laboratorio de referencia (UPRA) en noviembre de 2013.

2. Finalidad: tipado molecular de bacterias MR y ofrecer información relevante en tiempo real para el control de brotes producidos por bacterias MR.

Objetivos (I)

Servir de apoyo al Programa PIRASOA en la detección, investigación y control de brotes por bacterias MR. Apoyo a SVEA.

Determinar la relación clonal de los aislamientos de patógenos nosocomiales MR mediante la combinación de pruebas fenotípicas y genotípicas en tiempo suficiente para poder tomar medidas de control adecuadas.

Estudio fenotípico y genotípico de los mecanismos de resistencia de patógenos nosocomiales de interés y que puedan favorecer el desarrollo de medidas terapéuticas y/o preventivas.

Objetivos (II)

Identificación y seguimiento de clones de microorganismos MR que circulen en centros hospitalarios de la Comunidad.

Creación de una base de datos con los genotipos de interés.

Servir de centro centinela para la detección de nuevos mecanismos de resistencia en patógenos nosocomiales o de la comunidad.

Cartera de Servicios (I)Resistencia a antimicrobianos

• Detección de resistencia a oxacilina (SARM) en Staphylococcus aureus.

• Detección de resistencia a vancomicina en Enterococcus spp.

• Detección e identificación de genes de beta-lactamasas de espectro extendido (BLEE) tipo TEM, SHV y CTX-M, más frecuentes en nuestro entorno, en enterobacterias.

• Detección e identificación de genes de AmpC plasmídicas y cromosómicas.

• Detección e identificación de genes de beta-lactamasas que hidrolizan carbapenems (carbapenemasas).

Perfiles de la base de

datos de Andalucía

Nuevos aislados

Comparación con previos

October 2013-Marzo 2015

218 Aislados21 Hospitales75 Informes

Microorganismos No. Determinantes de resistencia

Enterobacteriaceae

K. pneumoniae 106 38 KPC-3; 8 OXA-48; 26 OXA-48+CTX-M-15; 12 CTX-M-15; 1 CTX-M-14; 10 SHV gr; 1 hiper TEM-1; 10 CIT gr

K.oxytoca 1 K1

Enterobacter spp 5 AmpC+pérdida de porinas

E. coli 8 4 OXA-48

C. freundii 2 1 IMP-1; 1 VIM-1

Otros Gramnegativos

A. baumannii 77 47 OXA-23; 20 OXA-58; 10 OXA 24/40

P. aeruginosa 13 AmpC

B. cepacia 5

Grampositivos

S. aureus 1 mecA

2014 y 1er Trimestre de 2015

Centro Nº de aislados

Nº episodios

Media aislados/envio

H Virgen de la Victoria 32 9 3,6H San Cecilio 27 2 13,5H Reina Sofía 22 2 11H alto Guadalquivir de Andujar 14 6 2,3H Carlos Haya 9 3 3,0H Virgen Macarena 8 3 2,7H Costa del Sol 7 2 3,5H de Jerez 7 1 7H de la Línea 5 1 5H Virgen de las Nieves 5 3 1,7HARE de Puentegenil 4 1 4H de Valme 3 2 1,5H San Juan de Dios de Aljarafe 3 2 1,5HARE del Valle del Guadiato 3 1 3H de Huercal Overa 2 2 1H de Montilla 2 1 2H Serranía de Málaga 2 2 1H Virgen del Rocío 1 1 1H de Pozoblanco 1 1 1H de Riotinto 1 1 1H de Alcalá la Real 1 1 1

Hospitales 2014

K. pneumoniae ST512 productora de KPC3

agosto 2012CórdobaTransfer de Italia

Abril, 2013Cabra

Febrero, 2014Montilla

Abril, 2014Pozoblanco

Mayo, 2014Sevilla

Mayo, 2014Jerez

Agosto, 2014Alcala la Real

Agosto, 2014, Peñarroya-Pueblonuevo

Diciembre, 2014Puente Genil

Febrero, 2015Andujar

95% similitudDice (Opt:0.60%) (Tol 1.2%-1.2%) (H>0.0% S>0.0%) [0.0%-100.0%]

PFGE

100

959085

PFGE

2014082

2014114

2014061

2014069

2014083

2014084

2014113

2014115

325/#1

327/#1

40447

262

281

266

268

278

2014100

40185

CA-6390/#1

CA-12539/#1

2014073

2014079

2014080

2014065

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3

KPC-3v

KPC-3v

KPC-3

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

11/03/14

29/08/14

11/03/14

01/04/14

12/05/14

16/05/14

28/08/14

30/09/14

01/08/12

02/08/12

03/02/14

27/06/12

10/07/12

28/06/12

28/06/12

06/07/12

06/08/14

04/02/14

29/04/13

25/07/13

10/04/14

16/05/14

13/05/14

19/03/14

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

H de Jerez

H Valle del Guadiato

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H de Jerez

H de Jerez

H Valle del Guadiato

H Valle del Guadiato

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Montilla

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Alcala la Real

H Montilla

H Infanta Margarita

H Infanta Margarita

H Reina Sofia

H San Lazaro

H San Lazaro

H Reina Sofia

Nuevo perfil en marzo 2014

Primeros aislados 2012

K. pneumoniae ST405 productor de CTX-M-15

Dice (Opt:0.60%) (Tol 1.2%-1.2%) (H>0.0% S>0.0%) [0.0%-100.0%]

PFGE

100

90807060

PFGE

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

CTX-M-15

OXA-48+CTX-M-15

OXA-48+CTX-M-15

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H Reina Sofia

H La Paz

H La Paz

Brote de Neonatología 2013

Aislados 2014

Brote Hospital La Paz de Madrid

K. pneumoniae productor de OXA-48+CTX-M-15

2012-2014H Reina Sofia

2012-2014H Virgen MacarenaH San LázaroH San Juan de Dios

2012-2014H Virgen de la VictoriaH Carlos Haya

2014 H Puerta del MarH de Jérez

K. pneumoniae productor de OXA-48+CTX-M-15

febrero-abril, 2014H San Cecilio OXA-23 ST2

junio, 2014H San Juan de DiosOXA-23

julio-diciembre, 2014H Virgen de la VictoriaOXA-23

diciembre, 2014H Virgen MacarenaOXA-23

marzo, 2015H Alto GuadalquivirOXA-23

A. Baumannii resistente a carbapenems febrero-julio, 2014

H AndujarOXA-58

marzo, 2014H Costa de SolOXA-58

Marzo, 2015H Regional MalagaOXA-58

Enero, 2015H San Juan de DiosOXA-24/40

febrero, 2015H Virgen MacarenaOXA-24/40

Dice (Opt:1.00%) (Tol 1.2%-1.2%) (H>0.0% S>0.0%) [0.0%-100.0%]PFGE2

10

0

90

80

70

PFGE2

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

01/12/14

04/03/15

13/06/14

20/01/14

22/07/14

03/03/15

05/02/14

20/01/15

01/04/14

04/03/15

11/06/14

29/01/15

02/02/15

27/01/15

27/01/15

03/02/15

19/02/14

11/03/14

25/03/14

18/02/14

04/07/14

02/03/2015

03/03/2015

26/12/14

08/01/15

24/03/14

01/03/14

20/03/15

23/03/15

27/08/14

06/08/14

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

...

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

.

OXA-23

OXA-23

OXA 24/40

OXA-23

OXA 24/40

OXA 24/40

OXA 24/40

OXA 24/40

OXA 24/40

OXA 24/40

OXA-23

OXA 24/40

OXA 24/40

OXA 24/40

OXA 24/40

OXA 24/40

OXA-58

OXA-58

OXA-58

OXA-58

OXA-58

OXA-58

OXA-58

OXA-23

OXA-23

OXA-23

OXA-23

OXA-23

OXA-23

OXA-23

OXA-23

H VIRGEN DE LA VIC.

H SAN JUAN DE DIOS

H SAN JUAN DE DIOS

H VIRGEN MACARENA

H VIRGEN MACARENA

H SAN JUAN DE DIOS

H VIRGEN MACARENA

H VIRGEN MACARENA

H VIRGEN MACARENA

H VIRGEN MACARENA

H SAN JUAN DE DIOS

H VIRGEN MACARENA

H VIRGEN MACARENA

H SAN JUAN DE DIOS

H SAN JUAN DE DIOS

H VIRGEN MACARENA

H COSTA DEL SOL

H COSTA DEL SOL

H COSTA DEL SOL

H DE ANDUJAR

H DE ANDUJAR

H CARLOS HAYA

H CARLOS HAYA

H VIRGEN DE LA VIC.

H VIRGEN DE LA VIC.

H SAN CECILIO

H SAN CECILIO

H DE ANDUJAR

H DE ANDUJAR

H VIRGEN DE LA VIC.

H VIRGEN DE LA VIC.

A. baumannii. Transmisión entre centros hospitalarios

Unidades de Gestión de Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica

J. Antimicrob. Chemother 2011

Unidades de Gestión de Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica

Equipo de Infección nosocomial Enfermería: L García, C Lupión, C González, C

Romero, M Alex, C Garcia-Briz Microbiología: L López-Cerero, L. Serrano Medicina Preventiva: J López Enfermedades Infecciosas: MD del Toro, J.

Rodríguez Baño

Agradecimientos