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CONSEJO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA-CONCYT-
SECRETARIA NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA-SENACYT-
FONDO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA –FONACYT-
UNIVERSIDAD DEL VALLE DE GUATEMALA-UVG-
INFORME FINAL
Evaluación de la distribución de ácaros, fitófagos y depredadores,
durante la época seca en cultivos de importancia económica en
Guatemala
PROYECTO FODECYT 29-2008
Manuel Antonio Porres Arreaga, Ph D.
Investigador principal
GUATEMALA, junio 2013
ii
AGRADECIMIENTOS
La realización de este trabajo, ha sido posible gracias al apoyo financiero dentro del
Fondo Nacional de Ciencia y Tecnología,- FONACYT-, otorgado por la Secretaria
Nacional de Ciencia y Tecnología-SENACYT-y al Consejo Nacional de Ciencia y
Tecnología -CONCYT-.
iii
OTROS AGRADECIMIENTOS
Se agradece la cooperación del Dr. Gregory Evans en la identificación de especies de
ácaros Depredadores de la familia Phytoseiidae y de ácaros fitófagos de la familia
Tenuipalpidae.
iv
CONTENIDO
Página
RESUMEN ................................................................................................................ vii
ABSTRACT ............................................................................................................. viii
PARTE I ...................................................................................................................... 1
I.1. INTRODUCCION ............................................................................................ 1
I.2. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ....................................................... 2
I.2.1. Antecedentes en Guatemala ....................................................................... 2
I.2.2. Justificación del trabajo de investigación ................................................... 2
I.3. OBJETIVOS ......................................................................................................... 3
I.3.1. Objetivo general ......................................................................................... 3
I.3.2. Objetivos específicos .................................................................................. 3
I.4. METODOLOGIA ................................................................................................. 4
1.4.1. Área experimental ..................................................................................... 4
1.4.2. Las variables ............................................................................................. 5
1.4.3. Diseño experimental ................................................................................... 5
I.4.4. Colecta de muestras de campo .................................................................... 5
I.4.5. Trabajo de Laboratorio................................................................................ 8
PARTE II .................................................................................................................... 9
MARCO TEÓRICO ................................................................................................... 9
PARTE III ................................................................................................................. 23
III. RESULTADOS .................................................................................................. 23
III.1. Discusión de Resultados ............................................................................ 34
PARTE IV ................................................................................................................. 36
IV.1. CONCLUSIONES .......................................................................................... 36
IV.2. RECOMENDACIONES ................................................................................. 37
IV.3. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ........................................................... 38
IV.4. ANEXOS .......................................................................................................... 42
PARTE V .................................................................................................................. 44
V.1. Informe financiero ..................................................................................... 44
v
INDICE DE FIGURAS
Figura 1. Segmentación en la subclase Acari ................................................................ 9
Figura 2. Separación de grupos en orden Parasitiforme según número y posición
de estigmas ................................................................................................. 10
Figura 3. Superfamilia Eriophyoidea .......................................................................... 11
Figura 4. Familia Tetranychidae Donnadieu ............................................................... 12
Figura 5. Familia Tenuipalpidae Berlese .................................................................... 12
Figura 6. Familia Tarsonemidae Kramer ................................................................... 13
Figura 7. Familia Acaridae ......................................................................................... 14
Figura 8. Colocación de las setas dorsales en los diferentes géneros de ácaros de
la familia Phytoseiidae. ............................................................................... 15
INDICE DE FOTOGRAFÍAS
Fotografía 01. Oligonychus punicae del aguacate ........................................................ 2
Fotografía 02. Deformación de frutos ........................................................................ 42
Fotografía 03. Rayado del fruto ................................................................................. 42
Fotografía 04. Decoloración del fruto ........................................................................ 42
Fotografía 05. Manchado del fruto ............................................................................ 42
Fotografía 06. Clorosis del follaje ............................................................................. 42
Fotografía 07. Necrosis de los tejidos ........................................................................ 42
Fotografía 08. Presencia de telarañas en el follaje...................................................... 43
Fotografía 09. Recolección de ácaros del follaje por el MAGA ................................. 43
Fotografía 10. Recolección de ácaros del follaje ........................................................ 43
Fotografía 11. Infestación de ácaros en el follaje de chile (MAGA) ........................... 43
Fotografía 12. Follaje infestado por ácaros (MAGA) ................................................. 43
INDICE DE GRÁFICAS
Gráfica 1. Periodo de incubación de un huevecillo a estado adulto según
temperatura .............................................................................................. 17
Gráfica 2. Proceso de control de ácaros .................................................................... 18
vi
INDICE DE TABLAS
Tabla 1 Regiones muestreadas en los diferentes cultivos. .............................................. 6
Tabla 2 Especies de ácaros depredadores .................................................................... 23
Tabla 3 Especies de ácaros fitófagos ........................................................................... 26
vii
RESUMEN
El objetivo del presente estudio fue la identificación de ácaros depredadores y
fitófagos asociados con los principales cultivos de importancia económica de
Guatemala. La Unidad de Normas y Regulaciones del MAGA (Ministerio de
Agricultura, Ganadería y Alimentación), tuvo su cargo la recolección de especímenes
de ácaros en los cultivos en los diferentes departamentos del país. Los especímenes
recolectados fueron llevados al laboratorio de Entomología Aplicada de la Universidad
del Valle, donde se hicieron los montajes en portaobjetos y cubre objeto de vidrio,
utilizando Hoyer‟s como medio de montaje. Luego se procedió a su secamiento y
clarificación en un horno de laboratorio por cuatro días a temperatura de 45°F. Se
procedió a su anillamiento con pintura de uñas y a su identificaron en el laboratorio de
Entomología Aplicada, enviando los especímenes que no se pudieron identificar, al Dr.
Evans del USDA, para su identificación.
Es importante iniciar la identificación de ácaros en Guatemala, debido a que
existe poca información sobre ellos y se hace importante para las exportaciones porque
son las plagas de mayor importancia en este aspecto. Al detectarlos en los materiales
vegetativos el USDA no permite su entrada a Los Estados Unidos, causando problemas
económicos a los exportadores. Uno de los obstáculos para las exportaciones de
materiales vegetativos de plantas, es la presencia de algún estado de acaros en las hojas,
de tal manera que ocurren intercepciones por el USDA en los puertos de entrada a Los
Estados Unidos. Aunque ellos encuentren un espécimen que sea depredador, el
embarque es sancionado. De aquí que es necesario hacer tratamientos para reducir los
chances de que los follajes estén infestados.
Al realizar las identificaciones se logró establecer que la mayoría pertenecen a
las familias Tenuipalpidae y Tetranychidae, existiendo una buena cantidad de plantas
hospederas en la familia Tenuipalpidae. Se encontró que existe una alta cantidad de
ácaros depredadores, principalmente en la familia Phytoseiidae, lo cual es de
importancia porque existe control natural de fitófagos.
viii
ABSTRACT
The objective of this study was the identification of predacious and
phytophagous mites associated to the main crops of economic importance in Guatemala.
Personal from the Ministerio de Agricultura Ganaderia y Alimentacion, made the
collection of mites in all departments and crops of the country. The samples were kept
in plastic bags in a cool freezer and sent to the Applied Entomology Laboratory of the
Del Valle University, to be mounted in Hoyer‟s, and the proceed to dried at 45°C and
ringed with painting nail for protection.
Identification of mites was done at the laboratory of Applied Entomology of
Del Valle University, and organisms difficult to identify were sent to Dr. Gregory Evans
of the USDA, for his identification. It is important the identification of mites on crops in
Guatemala, since they are the main pests of exportation. Detection of mites in
exportation products results in credits to the exporters and economic losses.
One of the problem for the exports is the presence of stage of mites in the
material, in such a way that interceptions happen in te port of entry to the United States.
Most of the phytophagous species identified, belonged to the families
Tenuipalpidae and Tetranychidae and those predacious to the family Phytoseiidae.
The data of this project will provide information of mites in economics crops
and their distribution in the country. This information will be valuable for phytosanytary
programs for farmers and agronomists.
1
PARTE I
I.1. INTRODUCCION
Los ácaros son pequeños artrópodos que tienen cuatro pares de patas y algunas
especies son fitófagas causando daños a la agricultura. Otras son también de
importancia económica, porque son depredadores que se utilizan para el control
biológico de ácaros fitófagos y de algunas especies de insectos.
En Guatemala la información existente sobre la diversidad de ácaros es escasa,
excepto por dos publicaciones sobre ácaros fitófagos de Centroamérica, escritas por
Baker y Pritchard (1962) y por Ochoa et al. (1991) donde se mencionan algunas
especies de importancia económica para el país. Algunas otras especies que han sido
identificadas en Guatemala son, el ácaro Pediculopsis graminum (Reuter) que está
asociado con Fusarium sp. y causa la pudrición de la flor del clavel (Hernández y
Aguilar, 2002); en cítricos las especies Phylocoptruta oleivora (Ashmead), Brevipalpus
phoenicis (Geijskes) y Eutetranychus banksi (McGregor) en San Sebastián,
Huehuetenango (Hernández, 2002); Tetranychus urticae Koch en arveja china en
Patzún, Chimaltenango (Hernández, 2002); Hemitarsonemus tepidariorum
(Warburton) en helechos (Porres y Arévalo, 2005), Oligonychus punicae en aguacate
„Hass‟ (Porres y Arévalo, 2007) y Tetranychus urticae Koch y Polyphagotarsonemus
latus Banks en Codiaeum variegatum (croton) (Porres, 2006). En 1983 McMurty
escribió una publicación sobre 22 especies de ácaros depredadores de la familia
Phytoseiidae de Guatemala donde se describen 2 nuevas especies de ácaros (McMurtry,
1983). En otra publicación McMurtry (1970), señala que la mayor cantidad de
depredadores utilizadas en control biológico del acaro café en California han sido
recolectados de los aguacatales silvestres de Guatemala.
Se capacitó al personal de campo para el reconocimiento de los daños y
síntomas causados por ácaros, luego se inspeccionaron plantaciones de importancia
económica en los 22 departamentos del país, tomando muestras de follaje infestado. El
monitoreo se realizó durante la época seca, y el material colectado fue trasladado al
laboratorio de Diagnóstico Fitosanitario del MAGA, quienes lo enviaron al laboratorio
de Entomología Aplicada de la Universidad del Valle de Guatemala, donde se
realizaron los montajes e identificaciones de los especímenes recolectados.
Con la realización de este proyecto se tiene información sobre las especies de
ácaros presentes en los cultivos de importancia económica de Guatemala, así como su
distribución en el país. Se realizó una guía de identificación de ácaros de importancia
agrícola, la cual será una herramienta clave en programas de vigilancia fitosanitaria y de
manejo de plagas, beneficiando a profesionales y técnicos investigadores, estudiantes y
productores, que les permitirá realizar consultas de ácaros presentes en las distintas
regiones y en los diferentes cultivos, así como información de diagnóstico de las
especies para futuras identificaciones.
2
I.2. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
I.2.1. Antecedentes en Guatemala
Los ácaros son artrópodos que infestan muchas especies de plantas, pero
debido a su pequeño tamaño son difíciles de detectar. Por la diversificación de cultivos
que ha ocurrido en la agricultura de Guatemala, nuevas especies de plantas se están
cultivando y exportando, como lo es el caso de ornamentales y frutales. Estas especies
son susceptibles a infestaciones y cuando se exportan son interceptadas por el USDA
(United States Department of Agriculture) que al encontrar estadios de estos, son
fumigadas, lo que causa daño a estos materiales vegetativos, causando a la vez
problemas económicos a los agricultores porque no son pagadas las exportaciones.
Debido a que se desconocen la mayoría de especies de ácaros que existen en el país, se
hace necesario su estudio para reconocerlas y practicar medidas de control. Ejemplo de
una especie de acaro que infesta plantas de aguacate: Oligonychus punicae.
Fotografía 1. Oligonychus punicae del aguacate
Fuente: Proyecto FODECYT 029-2008
I.2.2. Justificación del trabajo de investigación
La información sobre ácaros depredadores y fitófagos de Guatemala es escasa
y se hace necesario estudiar estos organismos ya que los fitófagos son el problema
principal de los productos de exportación tanto en el campo (Porres 2010) como en los
productos exportados (Lenis 2007). Un estudio realizado por Porres (2007) permitió la
exportación de croton a los Estados Unidos, libre de tratamiento cuarentenario, ya que
se demostró que las condiciones de manejo y la especie presente no ameritaba las
restricciones en puertos de entrada. Especies presentes en Guatemala son las mismas en
aquel país.
3
I.3. OBJETIVOS
I.3.1. Objetivo general
Determinar la distribución de ácaros fitófagos en cultivos de importancia
económica en la república de Guatemala.
I.3.2. Objetivos específicos
Conocer la distribución de ácaros en época seca en los cultivos de importancia
económica a nivel nacional.
Determinar la relación hospedero – ácaro(s), ácaro – hospedero(s).
Identificar las especies de ácaros fitófagos y depredadores
4
I.4. METODOLOGIA
En el presente estudio se propuso evaluar la distribución de ácaros de
importancia agrícola, fitófagos y depredadores a nivel nacional, así como determinar la
asociación existente entre hospedero y ácaro (s)-hospedero.
Para cumplir con los objetivos propuestos se contó con el apoyo de 4 técnicos
de campo del personal de vigilancia del Ministerio de Agricultura, Ganadería y
Alimentación (MAGA), quienes fueron capacitados para poder reconocer los síntomas
causados por las infestaciones de ácaros. Los técnicos del MAGA están capacitados
para reconocer el daño causado por ácaros en el follaje de las plantas debido a que ellos
recolectan plantas dañadas en su trabajo. La mayoría de ellos trabaja en ornamentales y
frutales y están entrenados para el reconocimiento de síntomas de infestación de ácaros,
además el técnico líder del MAGA (Ing. Otto Lavagnino). Los técnicos con
conocimiento en determinación de los síntomas fueron los ingenieros Otto Lavagnino,
Amílcar Celada, Mario Castillo y Gloria Aguilar. La sintomatología observada en el
campo en el follaje es en parte la siguiente (Anexos).
Parte del entrenamiento recibido por los técnicos, se inició en Enero del 2009 y
se concluyó en Abril 2009. El entrenamiento recibido por los técnicos de campo
consistió en familiarizarse con el daño causado por los ácaros a los tejidos de las
plantas, tanto en si a las células, como nivel macroscópico en los frutos y las raíces. Se
capacitó también al personal en el manejo y llenado de formularios de toma de muestras
con la siguiente información: Persona que toma la muestra, procedencia de éstas,
coordenadas y el hospedero, parte(s) de la planta afectadas, así como el propietario de la
parcela observada y fecha de toma de notas.
1.4.1. Área experimental
El estudio de las especies de ácaros que ocurren en los cultivos en Guatemala,
fue llevado a cabo en los 22 departamentos de Guatemala (Tabla 1) donde ocurren altas
y bajas temperaturas, así como condiciones de baja y alta humedad. Los ácaros bajo
estudio fueron de las familias Tetranychidae, Tarsonemidae, Tenuipalpidae, Acaridae y
Phytoseiidae.
Para localizar los ácaros se visitaron los diferentes cultivos en cada uno de los
departamentos y recolectaron las muestras respectivas. Se visitaron plantaciones de
ornamentales, frutales y hortalizas, principalmente las relacionadas con exportaciones.
Para encontrar los especímenes de ácaros se buscó en áreas donde existe poca
humedad, donde la sequía es predominante y las temperaturas son más altas. Lo
anterior se debe a que en esas condicione las poblaciones son más abundantes, porque la
sequía y las altas temperaturas favorecen el crecimiento de las poblaciones.
5
1.4.2. Las variables
Se recolectaron especímenes de las mismas especies de plantas que crecen a
diferentes altitudes y condiciones de humedad.
1.4.3. Diseño experimental
No se llevó a cabo ningún diseño experimental debido a que el aparecimiento
de los síntomas es eventual y las búsquedas fueron dirigidas para identificar las especies
de ácaros.
I.4.4. Colecta de muestras de campo
Las colectas en el campo fueron realizadas por el personal técnico del MAGA
(Ministerio de Agricultura, Ganadería y Alimentación), quienes abarcaron el país en 5
regiones (centro, norte, occidente, oriente y sur). En cada región se realizó un único
muestreo, abarcando la mayor cantidad de cultivos importantes (Tabla 1).
Los muestreos consistieron en un recorrido de reconocimiento de la plantación,
para ubicar los puntos de infestación, tomando 10 - 20 hojas al azar de las plantas
infestadas. Estas muestras se colocaron en papel periódico húmedo y en bolsas plásticas
tipo ZIPLOCK para luego enviarlas al laboratorio en una hielera conteniendo una fuente
de hielo. Las muestras se etiquetaron con la localidad, cultivo, fecha de colecta y
colector.
El total de sitios muestreados fue de 1420, de los cuales el 50% fueron
positivos para la presencia de ácaros.
Se tomaron algunas fotografías de las plantas infestadas y luego se recolectaron
las hojas para transportarlas al Laboratorio de Entomología Aplicada, de la Universidad
del Valle de Guatemala, para identificación. Las muestras se almacenaron en una
refrigeradora, para poder proceder a la observación, y montaje de especímenes
posteriormente.
6
Tabla 1. Regiones muestreadas en los diferentes cultivos
REGIÓN DEPARTAMENTOS CULTIVOS A
MUESTREAR MUNICIPIOS
SUR
SANTA ROSA Y
JUTIAPA BAJA
Piña, Tabaco, Maicillo,
Ajonjolí, Papa, Arroz, Frijol
Maíz, Caña de Azúcar,
Café, Hortalizas, Aguacate,
Ajonjolí, Ornamentales,
Ponytail, Izote,
Massangeana, Tomate,
Chile, Banano, Plátano,
Güisquil, Cítricos, Soya,
Canela
Taxisco, Guazacapán, Chiquimulilla, Pasaco y Moyuta.
ESCUINTLA Escuintla, La Gomera, Puerto de San José, Nueva Concepción, La Democracia, Palín,
Tiquisate, Santa Lucía Cotzumalguapa.
SUCHITEPEQUEZ Cuyotenango, La Máquina, Cuyotenango, Mazatenango, Patulul, San Antonio Suchitepéquez.
RETALHULEU Retalhuleu, San Sebastián, Santa Cruz Muluá, San Martín Zapotitlán, San Felipe, San Andrés
Villa Seca, Champerico, Nuevo San Carlos, El Asintal.
CENTRO
GUATEMALA
Flores, Maíz, Frijol,
Ornamentales, Hortalizas,
Tomate, Chile, Café, Arveja
China, Arboles Forestales
Guatemala, Santa Catarina Pinula, San José Pinula, San José del Golfo, Palencia, Chinautla,
San Pedro Ayampuc, Mixco, San Pedro Sacatepéquez, San Juan Sacatepéquez, San Raimundo,
Chuarrancho, Fraijanes, Amatitlán, Villa Nueva, Villa Canales, Petapa.
SACATEPEQUEZ
Antigua Guatemala, Jocotenango, Pastores, Santo Domingo Xenacoj, Sumpango, Santiago
Sacatepéquez, San Bartolomé Milpas Altas, San Lucas Sacatepéquez, Santa Lucía Milpas
Altas, Magdalena Milpas Altas,Santa, María de Jesús, Ciudad Vieja, San Miguel Dueñas,
Alotenango, San Antonio Aguas Calientes, Santa Catarina Barahona.
CHIMALTENAGO
Chimaltenango, San José Poaquíl, San Martín Jilotepeque, San Juan Comalapa, Santa
Apolonia, Tecpán, Guatemala, Patzún, Pochuta, Patzicía, Santa Cruz Balanyá, Acatenango,
Yepocapa, San Andrés Itzapa, Parramos, Zaragoza, El Tejar.
BAJA VERAPAZ Salamá, San Miguel Chicaj, Rabinal, Cubulco, Granados, Santa Cruz El Chol, San Jerónimo,
Purulhá.
NORTE
ALTA VERAPAZ Helechos, Maíz, Frijol,
Tomate, Papaya, Melón,
Hule, Ornamentales, Café,
Arroz.
Cahabón.Cobán. Fray Bartolome de las Casas, Raxruha, San Cristobal, San Pedro Carcha,
Santa Catalina La Tinta, Santa Cruz Verapaz, Tactic.
IZABAL Puerto Barrios, Morales, El Estor, Livingston, Los Amates, Santo Tomás de Castilla.
PETEN Santa Elena, San Benito, Melchor de Mencos, Poptún, Sayaxché, San Luis, La Libertad, El
Naranjo.
OCCIDENTE
QUETZALTENANGO Manzana, Pera, Ciruela,
Durazno, Membrillo,
Ornamentales, Maíz,
Aguacate, Frijol,
Hortalizas, Pony, Izote,
Cítricos, Café.
Quetzaltenango, Olintenpeque, San Carlos Sija, Sibilia, San Juan Ostuncalco, Concepción
Chiquirichapa, Almolonga, Zunil, Colomba, Coatepeque, Génova.
SAN MARCOS
Ayutla, Catarina, Comitancillo, Concepción Tutuapa, El Quetzal, El Rodeo, El Tumbador,
Esquipulas Palo Gordo, Ixchiguan, La Reforma, Malacatán, Nuevo Progreso, Ocós, Pajapita,
Río Blanco, San Antonio Sacatepéquez, San Cristóbal Cucho, San José Ojetenam, San
Lorenzo, San Marcos, San Miguel Ixtahuacán, San Pablo, San Pedro Sacatepéquez, San Rafaél
Pie de La Cuesta, Sibinal, Sipacapa, Tacaná, Tajumulco, Tejutla, Concepción Tutuapa.
7
Continuación Tabla 1. Regiones muestreadas en los diferentes cultivos
REGIÓN DEPARTAMENTOS CULTIVOS A
MUESTREAR MUNICIPIOS
HUEHUETENANGO
Aguacatán, Chiantla, Colotenango, Concepción Huista, Cuilco, Huehuetenango, Ixtahuacán,
Jacaltenango, La Democracia, La Libertad, Malacatancito, Nentón, San Antonio Huista, San
Gaspar Ixchil, San Juan Atitán, San Juan Ixcoy, San Mateo Ixtatán, San Miguel Acatán, San
Pedro Necta, San Rafael La Independencia, San Rafael Petzal, San Sebastián Coatán, San
Sebastián Huehuetenango, Santa Ana Huista, Santa Bárbara, Santa Cruz Barillas, Santa
Eulalia, Santiago Chimaltenango, Soloma, Tectitán, Todos Santos Cuchumatán, Unión
Cantinil.
QUICHE
Santa Cruz del Quiché, Chiché, Chinique, Zacualpa, Chajul, Chichicastenango, Patzité, San
Antonio Ilotenango, San Pedro Jocopilas, Cunén, San Juan Cotzal, Joyabaj, Nebaj, San
Andrés Sajcabajá, Uspantán, Sacapulas, San Bartolomé Jocotenango, Canillá, Chicamán,
Ixcán, Pachalum.
TOTONICAPAN Totonicapán, San Cristóbal Totonicapán, San Francisco El Alto, San Andrés Xecul,
Momostenango, Santa María, Chiquimula, Santa Lucía La Reforma, San Bartolo.
SOLOLA
Sololá, San José Chacayá, Santa María Visitación, Santa Lucía Utatlán, Nahualá, Santa
Catarina Ixtahuacan, Santa Clara La Laguna, Concepción, San Andrés Semetabaj,
Panajachel, Santa Catarina Palopó, San Antonio Palopó, San Lucas Tolimán, Santa Cruz La
Laguna, San Pablo La Laguna, San Marcos La Laguna, San Juan La Laguna, San Pedro La
Laguna, Santiago Atitlán,
ORIENTE
JUTIAPA ALTA
Melón, Sandia, Chile,
Tomate, Ornamentales,
Cítricos, Maíz, Frijol,
Melón, Sandia, Tabaco,
Uva, Okra, Arveja China,
Hortalizas
Jutiapa, Agua Blanca, Santa Catarina Mita, Asunció n Mita
SANTA ROSA ALTA Nueva Santa Rosa, Oratorio, Pueblo Nuevo Viñas, Santa Rosa de Lima.
JALAPA Jalapa, San Pedro Pinula, San Luis Jilotepeque, San Manuel Chaparrón, San Carlos Alzatate,
Monjas, Mataquescuintla.
PROGRESO Guastatoya, Morazán, San Agustín Acasaguastlán, San Cristóbal Acasaguastlán, El Jícaro,
Sansare, Sanarate, San Antonio La Paz.
ZACAPA Zacapa, Cabañas, Estanzuela, Gualán, Huité, La Unión, Río Hondo, San Diego, Teculután,
Usumatlán.
CHIQUIMULA Chiquimula, San José La Arada, San Juan Ermita, Jocotán, Camotán, Olopa, Esquipulas,
Concepción Las Minas, Quezaltepeque, San Jacinto, Ipala.
Fuente: MAGA, 2012.
8
I.4.5. Trabajo de Laboratorio
Todas las muestras enviadas al laboratorio fueron revisadas bajo el
estereoscopio para determinar la presencia y características biológicas en vivo de los
ácaros fitófagos y depredadores.
Para el montaje se utilizó la solución de Hoyer‟s, y con ayuda de pinceles
pequeños se tomaron los especímenes de las hojas infestadas separando las hembras de
los machos, principalmente en la familia Tetranychidae. Las hembras se montaron
dorsalmente y los machos, cuando estaban presentes, de lado para observar el edeago
que es importante para la identificación a nivel de especie.
La identificación de ácaros se realizó con la ayuda de un microscopio de
contraste de fases y con la identificación y diagramas de Pritchard y Baker (1955),
Baker y Pritchard (l962), Tuttle et al (l976), Jeppson et al. (1975) Baker y Tuttle (1984),
Doreste, E. (1984), Ochoa, et al. (l994) y Walter D. (2006). Los especímenes que no se
pudieron identificar en Guatemala, fueron enviados con especialistas de ácaros en el
extranjero (Gregory Evans USDA).
El manejo de muestras se realizó en el laboratorio de Entomología Aplicada de
la Universidad del Valle, debido a que en esa institución se ha entrenado a personas en
el campo de la acarología, habiendo preparado a los técnicos de los laboratorios del
Ministerio de Agricultura Ganadería y Alimentación
La distribución de algunas especies de ácaros en la república se conoció
debido a los especímenes identificados en cada región, así también la relación que existe
con los ácaros depredadores identificados en cada área.
9
PARTE II
MARCO TEÓRICO
Los ácaros son un grupo de organismos del Filo Artrópoda, cuyas
características son tener las patas articuladas y un exoesqueleto quitinoso. Pertenecen al
subfilo Chelicerata los cuales poseen un par de quelíceros en vez de mandíbulas, y no
poseen antenas. En este grupo está la clase Arachnida que tienen segmentación
abdominal inconspicua o ausente y están subdivididos en la subclase Araneae y Acari;
al primer grupo pertenecen las arañas que tienen las partes bucales anteriores al
cefalotórax que conecta al abdomen por medio de un pedicelo. Las patas están
adheridas al cefalotórax.
La subclase Acari, por otro lado, tienen el cuerpo dividido en dos partes
(Figura 1), la anterior donde se encuentran las partes bucales (gnathosoma) y la
posterior donde se encuentran adheridas las patas llamado idiosoma (Krantz, 1971).
Figura 1. Segmentación en la subclase Acari
Fuente: Kranz, 1971.
Los ácaros son de importancia biológica, por tener un grupo variado de formas,
tamaños, hábitats y comportamiento. En general, existen más de 30,000 especies
descritas, estimándose que hay más de medio millón no descritas (Triplehorn y Johnson,
2005).
En la separación filogenética de la subclase Acari es importante la presencia y
posición en el cuerpo de los estigmas o espiráculos, dividiéndose en tres órdenes, dos de
ellos con organismos de importancia agrícola, los Parasitiformes y los Acariformes. En
el orden Parasitiformes, se encuentran las subdivisiones Notostigmata que tienen 4
pares de estigmas (espiráculos) dorsalmente; Metastigmata que tiene el estigma dorsal
después del cuarto par de patas; Tetrastigmata, con el estigma a la par del tercer par de
patas y Mesostigmata con un estigma en medio del tercer y cuarto par de patas (Figura
2) (Johnston, 1988, Krantz, 1971). Los Metastigmata (garrapatas) infestan animales y
pastos, y Mesostigmata incluye especies depredadoras importantes en control biológico,
como la familia Phytoseiidae.
10
Figura 2. Separación de grupos en orden Parasitiforme según número y posición de
estigmas
Nototisgmata(a); Tetrastigmata(b); Mesostigmata(c)
Fuente: Kranz, 1971
Entre los Acariformes, se encuentran las subidivisiones Prostigmata y
Astigmata. Los Prostigmata, que tienen el estigma anterior a la pata II, son el grupo
más importante que causa daño a la agricultura, incluyen las superfamilias Eriophyoidea
y Tetranychoidea. Existen alrededor de unas 7,000 especies de ácaros fitófagos que se
encuentran provocando algún daño, directo o indirecto, en la agricultura mundial.
Aproximadamente el 50% de estas especies pertenecen a la superfamilia Eryophoidea, y
el resto a la superfamilia Tetranychoidea, Tarsonemoidea y Acaroidea (Griffith, 2006;
Joiner, 1981; Jeppson et al., 1975; USDA, 2008). Muchas de estas especies, son
difíciles de detectar, por lo que debe de recurrirse a los síntomas y deformaciones que
inducen en el follaje de las plantas (Anexos). En países tropicales, como Guatemala,
donde la flora y la fauna son tan ricas, por las condiciones ambientales que inducen
continuo crecimiento, existe una gran cantidad de especies que son dignas de estudio.
Primero porque algunas son fitófagas y porque también otras son depredadoras de gran
valor para mantener el equilibrio biológico de especies dañinas.
La superfamilia Eriophyoidea es única por poseer dos pares de patas en todos
sus estadios (Figura 3). Ello indica una adaptación ancestral que se ha mantenido en los
linajes derivados por adaptación a vivir sobre la superficie de las hojas y en espacios
confinados. La mayoría de los eriofioideos errantes (no formadores de malformaciones)
no produce daño o éste es poco notable. Los no errantes ocasionan diferentes
malformaciones debido a sus secreciones salivares (De la Torre y Martínez, 2004). Su
genitalia se localiza en la región proximal y detrás de las coxas, siento esta de tipo
transversal. Son ácaros que varían de color, de blanco hasta amarillento o anaranjado.
Las características del escudo dorsal son importantes para la separación de especies, ya
que presentan un diseño y ubicación particular de setas (Ochoa et al 1991).
11
Figura 3. Superfamilia Eriophyoidea
Fuente: Kranz, 1971
La superfamilia Tetranychoidea, está integrada por las familias
Allochaetophoridae que es monoespecífica de gramíneas; Linotetranidae que se
encuentra en la superficie del suelo, sobre la materia orgánica en descomposición y
musgos, principalmente; Tenuipalpidae, Tetranychidae y Tuckerellidae, que
comprenden la mayoría de las especies de importancia agrícola diseminada por el
mundo (Ochoa et al 1991).
Los tetraníquidos (Figura 4), conocidos como arañitas rojas, se encuentran
afectando la mayoría de cultivos agrícolas y de plantas ornamentales en todo el mundo.
Durante su alimentación pueden causar serios problemas al hospedero. Son de color
verde, amarillo, anaranjado o rojo, y casi siempre se encuentran asociados con la
presencia de una telaraña que ellos producen con secreciones de glándulas que se
encuentran en los palpos. Los quelíceros son movibles y flageliformes, fusionados en la
base con el estilióforo. Tienen un máximo de dieciséis pares de setas en la superficie
dorsal. Los tarsos I y II usualmente presentan setas dúplex (Ochoa et al 1991).
La genitalia de la hembra es rugosa, la del macho es característica para la
familia, así como para separar especies. Se presenta un dimorfismo sexual marcado en
los organismos de esta familia (Ochoa et al 1991).
La mayoría de tetraníquidos se diseminan por material vegetal infestado,
viento, herramientas y por el mismo hombre. Sus daños pueden ser confundidos con
deficiencias, enfermedades fungosas o virales, daños mecánicos y con fitotoxicidad de
algunos productos (Ochoa et al 1991).
La primera publicación de algunos ácaros de la familia Tetranychidae de
Guatemala fue escrita por Baker y Pritchard (1962), y luego se publicó la de Ácaros
Fitófagos de América Central, que incluye varias especies presentes en algunos cultivos
de importancia económica (Ochoa et al., 1991).
12
Figura 4. Familia Tetranychidae Donnadieu
Fuente: UVG, 2012
Los tenuipalpidos (Figura 5), o falsos ácaros, son pequeños y aplanados dorso
ventralmente. Se alimentan regularmente en el follaje de las plantas, aunque se han
colectado en corteza o en agallas en algunas plantas.
Poseen un palpo simple, de uno a cinco segmentos; propodosoma con tres
pares de setas dorsales; histerosoma con uno a tres pares de setas dorsocentrales, un par
humeral, de cinco a siete pares dorsolaterales y con una a cuatro pares de histerosomales
dorsosublaterales (Ochoa et al 1991).
Figura 5. Familia Tenuipalpidae Berlese
Fuente: UVG, 2012
La sintomatología producida por estos ácaros se puede confundir con los daños
provocados por hongos, deficiencia de nutrientes, así como trastornos fisiológicos
(Ochoa et al 1991).
Los géneros Brevipalpus y Tenuipalpus son los de mayor importancia agrícola.
El primero tiene especies vectoras de del patógeno Rhabdovirus CiLV – C y CiLV - N,
causantes de la Leprosis de los cítricos (CABI y EPPO, 2008; Krantz, 1971).
13
La superfamilia Tarsonemoidea está formada por familias con hábitos muy
diversos, que van desde insectófilos, forésicos, depredadores, parásitos, nidícolas,
algívoros, fungívoros, hasta fitófagos, algunos de importancia económica. La mayoría
de las especies conocidas son pequeñas y ligeramente esclerotizadas. La familia
Pyemotidae es una de las más grandes de esta superfamilia, incluye alrededor de 100
especies con importancia agrícola y médica. La familia Tarsonemidae (Figura 6)
incluye ácaros fitófagos, fungívoros e insectívoros agrupados en doce géneros. Es una
familia que se encuentra distribuida principalmente en el trópico y subtrópico. Las
especies de los géneros Polyphagotarsoenums, Phytonemus y Hemitarsonemus son
fitófagos, como P. latus (Banks), P. pallidus (Banks) y H. tepidadiorum (Warburton),
siendo de importancia económica (Krantz, 1971).
Figura 6. Familia Tarsonemidae Kramer
Fuente: UVG ,2012
Las hembras se caracterizan por poseer órganos pseudoestigmáticos,
localizados dorsolateralmente entra las coxas I y II. Tienen seis pares de setas
dorsocentrales. Los tarsonemidos presentan un pronunciado dimorfismo sexual, los
machos son más pequeños que las hembras, y el contorno del cuerpo es marcadamente
diferente. Los machos son más obtusos en la región posterior del cuerpo y están
equipados en su parte caudal con una estructura singular, llamada cápsula genital
(Ochoa et al 1991).
La hembra y el macho, por lo general, son de color blanco traslúcido, de
aspecto brillante; son móviles, agresivos, activos y casi imperceptibles a simple vista
(Ochoa et al 1991).
La superfamilia Acaroidea está formada de 12 familias bastante heterogéneas,
que incluyen ácaros de vida libre (Figura 7) y foréticos que se encuentra distribuidos por
todo el mundo. Algunos son de importancia económica por encontrarse provocando
daños en granos almacenados, bulbos y raíces (Krantz, 1971). Además pueden causar
dermatitis en humanos y animales (Triplehorn & Johnson, 2005).
14
Figura 7. Superfamilia Acaroidea
Fuente: UVG, 2012
También existe un grupo de ácaros que son especies depredadoras importantes
para el control biológico de plagas; entre estas está la familia Phytoseiidae que tiene
más de 800 especies descritas (Chant y Yoshida ,1980); otras familias de ácaros
depredadores de menor importancia son Macrochelidae, Rhagidiidae, Parasitidae,
Labidostimmidae, Ascidae y Cheyletidae. (Axtell, 1963). En Guatemala se han descrito
22 especies en la familia Phytoseiidae principalmente recolectadas en aguacate
(McMurtry, 1983). McMurtry et al., (1970) menciona que el origen del ácaro café del
aguacate, Oligonychus punicae, es Guatemala; en otra publicación el mismo autor
señala que la mayor cantidad de depredadores utilizadas en control biológico del acaro
café en California han sido recolectados de los aguacatales silvestres de Guatemala
(McMurtry, 1983).
Los ácaros que se alimentan de ácaros pertenecen a la familia Phytoseiidae,
siendo uno de los principales Phytoseiulus persimilis.
Los ácaros depredadores se mueven rápidamente, tienen forma de una gota y
son de color amarillento; son voraces, pudiéndose alimentarse de 5 - 20 ácaros por día.
La presencia y distribución de setas dorsales permiten la diferenciación entre géneros de
este grupo (Figura 8)
La familia de ácaros depredadores consiste de 1650 especies que ocurren en
todo el mundo (Chant 1993). La primera especie de ácaros de la familia Phytoseiidae
de Centro América, fue reportada de Guatemala por Garman en 1958, Proprioseoipsis
elongatus. Las siguientes especies fueron identificadas en Guatemala: Phytoseiulus
macropilis (Banks) (McMurtry 1983), P. solens (Leon), Amblyseius chiapensis De
Leon (McMurtry 1983), A. corderoi Chant y Baker (McMurtry 1983), A. herbicolus
Chant (Chant 1959), A. segregans De Leon (McMurtry 1983), T. oocarpus Denmark
and Evans, T. quercicolus (De Leon) (McMurtry 1983), T. spinigeru (Chant and
Baker) (McMurtry 1983), T. limonicus (Garman and MacGregor (McMurtry 1983), T.
peregrinus (Muma) (McMurtry 1983), E. concordis (Chant) (McMurtry 1983), E.
hibisci (Chant) (Chant 1959), E. maindamei (Chant and Baker) (McMurtry 1983), E.
quetzali McMurtry (McMurtry 1985), Neoseiulus anonymus (Chant and Baker)
(McMurtry 1983), P. mexicanus De Leon (McMurtry 1983), Cynodromella pilosa
15
(Chant)(McMurtry 1983),P.bidenata Denmark and Evans n sp.,Typhlodromina
conspicua(De León) (McMurtry 1983), T. johnsoni (Mahr) (McMurtry 1983), G.
helveolus (McMurtry 1983), G. porresi (McMurtry) (McMurtry 1983), Typhoseiopsis
maryae (McMurtry) (McMurtry 1983), Paraphytoseiulus multidenatatus Swirski and
Schechter (Denmark et al.).
Figura 8. Colocación de las setas dorsales en los diferentes géneros de ácaros de la
familia Phytoseiidae.
Fuente: Schuster-Pritchard
II.1.1. Importancia de los ácaros
Los ácaros son los organismos más dañinos que existen en la agricultura
después de los insectos, su control por métodos convencionales es difícil de que sea
funcional. Existen organismos entomopatógenos para su control. Dentro de los ácaros
depredadores importantes para su control están las familias Phytoseiide, Ascidae,
Tydeidae, Bdellidae, Stigmatidae y Cheyletidae (Beltran et al., 2003).
16
Los ácaros afectan en las áreas de producción las plantas, alimentándose de las
hojas haciendo que las plantas no puedan exportarse por tener daño mecánico, también
ciertas plantas no pueden exportarse porque están infestadas por especies de ácaros que
son vectores de virus como en el caso del crotón, o de los cítricos que pueden transmitir
la leprosis de los cítricos.
El valor de estos pequeños organismos en el tema fitosanitario es altamente
significativo. Guatemala exporta materiales vegetativos de ornamentales, follaje, frutos,
bulbos y verduras a los Estados Unidos, Europa y Japón (AGEXPORT, 2007). Con las
regulaciones cuarentenarias de cada país, y los accesos a “libres mercados” con la firma
de los tratados de libre comercio, especialmente con los Estados Unidos (CAFTA-DR),
los ácaros toman mayor importancia porque el material vegetal es inspeccionado por el
Departamento de Agricultura (USDA, por sus siglas en inglés) en los puertos de entrada
y al detectar su presencia tratan con bromuro de metilo las plantas, haciéndolas no
vendibles, o destruyen los embarques. Estas pérdidas repercuten en todos los niveles de
la cadena productiva iniciando con las pérdidas económicas al agricultor, porque no le
pagan sus productos; al bróker que importa las plantas porque no puede cumplir con el
viverista; el viverista por el costo que ha representado la preparación para la siembra de
las plantas y por no poder cumplir con la entrega con los compradores finales.
Guatemala es afectada por la pérdida de divisas y clientes compradores de productos
agrícolas; muchas compañías exportadoras han dejado de existir debido a las pérdidas
de sus productos al ser exportados (Porres, 2007).
Varias especies de ácaros fitófagos han sido recolectadas en ornamentales
embarcadas de Guatemala, Honduras y Costa Rica hacia Florida, siendo principalmente
las especies son Polyphagotarsonemus latus, Brevipalpus phoenicis,
Fungitarsonemus sp., Tarsonemus confusus, Tetranychus urticae y Rhizoglyphus sp.
(Children y Rodrigues ,2005).
II. 1.2. Factores que afectan el ciclo de vida de los ácaros.
Los factores ambientales, como son la temperatura y la humedad relativa, son
importantes para el desarrollo de poblaciones de ácaros fitófagos (Jeppson et al. 1975).
A bajas temperaturas ambientales 10°C el periodo de incubación de un
huevecillo a estado adulto puede ser de 70 días, pero a temperaturas de 25° C de 5-10
días (Grafica 1).
El efecto de la temperatura en el desarrollo de ácaros, es importante para el
control de ácaros, ya que los ciclos de vida en la costa sur son diferentes a los del
altiplano, para lo cual es necesario hacer ajuste en los periodos de aplicación de las
diferentes medidas para control.
17
Gráfica 1. Periodo de incubación de un huevecillo a estado adulto según temperatura
Fuente: Kranz, 1972; Jeppson et al., 1975
Los ácaros de plantas, son afectados por la humedad, de aquí que en la época
de lluvia sus poblaciones son bajas y estas aumentan en la época seca y de altas
temperaturas.
Se ha evaluado el efecto de la temperatura en la mortandad de ácaros de la
especie Phytonemus pallidus. Se evaluaron temperaturas de 44 °C ,46° y 48°C por
medio de agua caliente habiendo encontrado que la especie puede soportar los
siguientes tiempos: Al estar expuestos por 6, 2.5y 1.25 minutos respectivamente.
Normalmente en el verano los ácaros se transforman en más tolerantes a temperaturas
más altas cuando están en contacto con los tejidos de las plantas (Hellqvist, 2002).
II. 1.3. Control de ácaros
El control de una plaga, ya sea un ácaro o un insecto conlleva un proceso, que
consiste primero en identificar el organismo, para determinar si es un ácaro plaga o si es
un ácaro depredador. Luego monitorear su presencia en la plantación para asperjar
únicamente en las áreas donde ocurre y no en toda la plantación. Una vez se conoce que
se va a utilizar un químico, seleccionar uno que sea amigable al medio ambiente, como
un aceite o un jabón. Luego es importante asperjar en las horas frescas del día para
evitar la fitotoxicidad en las plantas. Si se aplica un químico aunque sea solo agua,
cuando la planta esté caliente por su exposición al sol, esta es de dañada. Enseguida
debe de asperjarse únicamente las áreas infestadas basados en el monitoreo de la plaga
en toda el área sembrada (Porres, 2012).
Los ácaros pueden mantenerse en poblaciones que no dañan plantas al
aplicarles agua a presión. Este método es efectivo aplicando el agua en el envés de las
hojas cuando se inician las poblaciones. Otro compuestos efectivos, son la Abamectina,
el Cinnamaldehyde que es un aceite de canela, el Spinosad, la Deltamethrina que es un
piretroide, el jabón de potasio, el Dicofol y el azufre entre otros (Short y Buss, 2007).
18
Acaricidas cuyos residuos se degradan rápidamente después de una aplicación,
son relativamente inefectivos par el control de ácaros. Por otro lado un químico que
tenga residuos más persistentes, es esencial para control efectivo.
Gráfica 2. Proceso de control de ácaros
Fuente: Porres, 2003
Altas temperaturas son un prerrequisito para que el control de ácaros sea
efectivo, especialmente cuando se usa azufre en el control.
El control de ácaros es más difícil cuando las plantas han sido expuestas a
polvo en las orillas de carreteras. Por otro lado no es recomendable hacer combinación
de acaricidas para el control, excepto cuando se combina un adulticida con un ovicida
(Jeppson, 1965).
Estudios previos, realizados por la Universidad del Valle de Guatemala, para
identificar y estudiar los ácaros asociados con la planta ornamental de crotón
demostraron la importancia en el uso de sombra natural. Se estudiaron plantas de
crotón cultivadas bajo sarán y bajo sombra de árboles utilizados para sombra de café.
Mensualmente se tomaron las poblaciones de ácaros en ambas plantaciones. Se
determinaron las especies presentes y se encontró que el crotón cultivado bajo sarán
desarrolla poblaciones de ácaros constantemente, y en las que crecieron bajo sombra
natural no había poblaciones de ácaros. En las plantaciones creciendo bajo sarán el
crotón estaba expuesto a altas temperaturas en contraste con el que crecía bajo sombra
natural, donde la temperatura era moderada y había exposición a presencia de
depredadores por ser un área abierta.
Se conoce que la temperatura no sólo reduce el ciclo de vida de los ácaros sino
que aumenta sus poblaciones.
CONTROL
Identificar
ácaro
Monitorear
su presencia
en la plantación
Marcar áreas
Infestadas
Seleccionar
químicos amigables
al medio ambiente
Asperjar en horas frescas
del día
Asperjar sólo
en áreas
infestadas
19
Las plantas exportadas de área bajo sombra no tuvieron intercepción en las
exportaciones, pero no así las que crecieron bajo sarán. Con base a los resultados de
este experimento, al presente se cultiva el crotón bajo sombra natural evitando el uso de
acaricidas y la inversión de sarán.
II. 1.4 Especies fitófagas importantes
Tetranychus urticae Koch
Esta es la especie de más amplia distribución en América Central. Sus colonias
se presentan generalmente en el envés de las hojas, sin embargo, cuando las poblaciones
son altas se pueden encontrar también en el haz (Ochoa et al 1991, Hoy 2011). Se ha
reportado en más de 150 plantas hospederas de algún tipo de importancia económica y
afecta a más de 300 plantas en invernaderos (Zhang 2003).
Las hembras son de color verde oscuro generalmente, con dos manchas
laterales, aunque la tonalidad cambia en medida que maduran (Ochoa et al 1991, Hoy
2011). En algunas plantas ornamentales se han observado hembras de coloración rojiza,
mientras que los machos conservan su tonalidad verde. Los machos poseen el
gnatosoma y las patas ligeramente blanquecinas, y son de dos o tres veces de menor
tamaño que las hembras (Ochoa et al 1991).
Los huevos son esféricos y lisos, blanquecinos a pardo amarillentos. En
algunos casos cuando van a madurar son ligeramente anaranjados. El período de
desarrollo varía dependiendo la temperatura, pudiendo ser de cuatro días a 23ºC y 18 a
13ºC. El ciclo de vida puede ser entre cinco a 20 días para los machos y entre cinco a
50 días para las hembras. Cada hembra puede ovipositar hasta 140 huevos (Ochoa et al
1991).
Eotetranychus lewisi (McGregor)
Sus colonias se presentan generalmente en el envés de las hojas, a los lados de
la vena central y secundarias, hasta cubrir toda la lámina foliar. A simple vista, puede
confundirse con T. urticae, pero este es más pequeño (Ochoa et al 1991, Hoy 2011). Se
conoce como el ácaro de la pascua, por ser el ácaro que más afecta este cultivo (Zhang
2003).
Las hembras son de forma oval alargada, de color amarillo claro a blanquecino,
mientras que el gnatosoma y las patas son blanquecinos con un leve tono rojizo. Los
huevos son esféricos y de una coloración blanquecina levemente anaranjada; se
encuentran principalmente en pequeñas depresiones de la superficie de las hojas (Ochoa
et al 1991, Zhang 2003).
El ciclo de vida es de aproximadamente dos semanas para las hembras. Los
machos emergen un par de días antes que las hembras, debido a que estos únicamente
poseen un estadio ninfal. Las hembras pueden ovipositar de dos a tres huevos diarios
durante un período de 30 días (Zhang 2003).
Las infestaciones ocurren regularmente en hojas jóvenes, provocando una
clorosis y deformación de las mismas. Si las infestaciones son severas, las hojas
20
pierden la lámina foliar. Este síntoma en particular induce a diagnosticar erróneamente
un ataque de virus en plantaciones de papaya (Ochoa et al 1991).
Eutetranychus banksi (McGregor)
Estos ácaros se localizan regularmente en el haz de las hojas. Generalmente se
encuentran a lo largo de las venas y en algunos casos cubren casito todo el follaje. Al
mirar las hojas a trasluz, se aprecian las poblaciones como pequeños puntos oscuros
sobre el fondo claro de la lámina foliar. (Ochoa et al 1991).
Si no se realizan medidas de control, la planta puede llegar a presentar un
moteado blanquecino uniforme, desde las hojas inferiores hasta las más jóvenes,
llegando a alcanzar una decoloración absoluta, debido a la destrucción celular efectuada
por el ácaro (Ochoa et al 1991).
Las hembras son de coloración verde-amarillenta, con patas y gnatosoma de
color rojizo; mientras que los machos son de coloración anaranjada, con el mismo
patrón de color en patas y gnatosoma (Ochoa et al 1991)
Los huevos son de forma redondeada, aplanado, con una coloración que va
desde blanco-grisáceo (blancuzco), pasando por tonos amarillos y anaranjados. Se
pueden encontrar adheridos a la lámina foliar, principalmente a los lados de las venas
(Ochoa et al 1991).
Oligonychus punicae (Hirst)
Estos ácaros se localizan regularmente en el haz de las hojas, principalmente a
lo largo de la vena central, luego sobre las venas secundarias, y cuando las infestaciones
son altas sobre la superficie total de la hoja (Jeppson 1994). Este tetraníquido está
asociado con el bronceado del aguacate y del café (Ochoa et al 1991).
El tiempo requerido para completar su ciclo de vida depende de la temperatura.
En el verano se pueden completar dos generaciones en un mes. Únicamente 7 días son
necesarios para completar el ciclo a un temperatura de 25ºC, mientras que a una
temperatura de 32.5ºC todos los estadios pueden morir, incluyendo los huevos (Jeppson
1994).
Las hembras de esta especie son típicas del género, con siete setas en la tibia I
y cuatro setas en el tarso I proximales a las setas dúplex (Jepsson 1994).
Polyphagotarsonemus latus (Banks)
Esta especie, conocida como ácaro blanco, está distribuida en el trópico en una
amplia variedad de cultivos, afectando tanto a campo abierto como en invernaderos
(Jepsson 1994).
Su ciclo de vida depende de la humedad relativa y temperatura; así a 14ºC el
ciclo puede ser de 18.3 días, y mientras la temperatura va aumentando su ciclo va
disminuyendo (30ºC en 4 días) (Ochoa et al 1991).
21
Se localiza en las hojas tiernas y brotes nuevos, a lo largo de las venas, así
como en estructura florales, provocando el enrollamiento del follaje, la deformación y
caída de flores. Los huevos se encuentran adheridos en áreas escondidas, o que
presentan hundimientos de tal manera que estén protegidos (Ochoa et al 1991, Jeppson
1994).
Las hembras son de color blanco, translúcido y brillante. Presentan una uña
fuerte en la pata I, y la pata IV es delgada, en forma de flagelo. Los machos son de
color semejante al de las hembras, presentando en la pata IV una terminación en forma
de botón (Ochoa et al 1994)
En plantas ornamentales, las hojas presentan desde ligeros corrugamientos
hasta acolochamientos hacia el envés. Las plantas muestran un atraso en el crecimiento.
En algunos caso las hojas exhiben una pérdida parcial de la lámina foliar. Esta
deformación en las hojas jóvenes es motivo de rechazo en los mercados internacionales,
ya que los brotes (tips) no cumplen con las exigencias de los compradores (Ochoa et al
1994, Zhang 2003).
Los daños producidos en muchos de sus hospederos pueden ser utilizados por
otras plagas como áreas de protección, reproducción y alimentación; entra las más
comunes están los trips, chinches, cochinillas y mosca blanca. Los síntomas producidos
por esta especie pueden ser confundidos con los causados por bacterias, hongos, virus,
nematodos, deficiencias de boro e intoxicaciones por herbicidas de tipo hormonal
(Ochoa et al 1994).
Phytonemus pallidus (Banks)
Esta especie se conoce como el ácaro ciclamen, y también como el ácaro de la
fresa, ya que es una de las mayores plagas de este cultivo. Ataca principalmente los
tejidos jóvenes y los botones florales. En las hojas se alimenta en el haz, provocando el
acolochamiento, distorsión y reducción del tamaño. Daños severos en las hojas
provocan la muerte del tejido, y en flores y frutos jóvenes se necrosan en la base, y
pueden llegar a morir (Zhang 2003).
Su ciclo de vida se puede completar de una a tres semanas, dependiendo la
temperatura y regularmente se completa de diez a 14 días en invernaderos. El período
de incubación de los huevos es de cuatro días a 20ºC pero de 13 días a 15ºC. La larva
se alimenta de uno a cuatro días, y los adultos emergen de dos a siete días. Cada
hembra puede depositar de uno a tres huevos por día, y un total de 12 – 16 durante su
período de oviposición (Zhang 2003).
Esta especie prefiere los sitios oscuros y húmedos. Su dispersión la realiza a
través del viento, foresía en insectos y otros animales, por el movimiento de material
infestado. La reproducción es continua durante todo el año si la temperatura es
favorable como en un invernadero (Zhang 2003).
Brevipalpus phoenicis (Geijskes)
El ácaro plano ataca más de 486 especies de plantas en todo el mundo, entre las
que se incluye los cítricos, la papaya, el café y el té. Los adultos son de un color rojizo
22
pálido a oscuro, y tienen un patrón de pigmentación oscura en el cuerpo. Las hembras
se reproducen por telitoquía, y los machos ocurren muy raramente (Hoy 2011). Toda la
progenie se origina a partir de una hembra, a partir de partenogénesis generando
hembras clones (Hoy 2011).
En los cítricos, los frutos presentan resquebrajamiento de un tono blanco hueso
y de forma irregular, abarcando hasta un 80%. Algunas veces pueden observarse
bronceados y amarillamientos en la epidermis, con puntos de color verde y cobre
intenso, a manera de pequeños cráteres y estriaciones en forma de estrella de
aproximadamente 1 mm de diámetro (Ochoa et al 1991).
La biología es muy similar a B. obovatus y B. californicus, y muchas veces se
encuentran juntos en la misma planta. B. phoenicis es el vector de una enfermedad viral
en café (Hoy 2011).
Su ciclo de vida es muy similar al de los tetraníquidos, y consiste en huevo,
larva, protoninfa, deutoninfa y adulto. Los huevos son ovoides. El tiempo de desarrollo
se reduce en la medida en que aumenta la temperatura, y se completa en tres semanas a
25ºC (Hoy 2011).
Las hembras pueden vivir hasta dos meses, pero su tasa de reproducción es
bastante baja, llegando a ovipositar un huevo por día y no más de 50 huevos en su ciclo
de vida (Hoy 2011).
23
PARTE III
III. RESULTADOS Tabla 1. Especies de ácaros depredadores
Departamento Municipio Localización Cultivo Especie Fecha de
colecta
Totonicapán Momostenango Xequemeyá Guayaba Phytoseius bennetti De Leon 17.II.2009
Totonicapán Santa María
Chiquimula Xecachelaj Naranja Amblyseiinae inmaduro 18.II.2009
Totonicapán Santa María
Chiquimula Xecachelaj Durazno Neoseiulus sp 18.II.2009
Totonicapán Santa María
Chiquimula Xecachelaj Granadilla Ambliseiinae macho 18.II.2009
Totonicapán Momostenango Xequemeyá Anona Galendromus annectens 18.II.2009
Totonicapán Santa María
Chiquimula Xecachelaj Manzana Typhlodromalus peregrinus 18.II.2009
Sololá Sololá - Crisantemo Neoseiulus californicus
McGregor -
San Marcos San Antonio
Sacatepéquez Las Barrancas Aguacate Typhlodromina johnsoni (Mahr) -
San Marcos San Antonio
Sacatepéquez Las Barrancas Aguacate Euseius hibisci (Chant) -
Retalhuleu Champerico San Miguel Las Pilas Chile pimiento Proprioseiopsis mexicanus
(Garman); Amblyseius n. sp near
cessator De Leon
16.IV.2009
Retalhuleu Champerico San Miguel Las Pilas Pepino Proprioseiopsis mexicanus
(Garman 16.IV.2009
Retalhuleu Champerico San Miguel Las Pilas Hierba mora Proprioseiopsis mexicanus
(Garman) 16.IV.2009
Retalhuleu Champerico Parcelamiento El
Rosario Quixtán
Euseius consors (De Leon) maybe
E. hibisci syn. 16.IV.2009
Retalhuleu
Parcelamiento El
Salto Almendra Euseius hibisci or E. consors 15.IV.2009
Retalhuleu San Andrés Villa
Seca La Máquina Mango Amblyseiinae macho 17.IV.2009
24
Continuación Tabla 2. Especies de ácaros depredadores
Departamento Municipio Localización Cultivo Especie Fecha de
colecta
Zacapa Estanzuela El Puñal Okra Abelmoschus esculentus –
Amblyseiinae inmaduro 22.IV.2009
Zacapa La Fragua - Nance
Byrsonima crassifolia – a)
Euseius consors (De Leon) b)
Amblyseius chiapensis De Leon
23.IV.2009
Zacapa La Fragua - Guanaba Euseius quetzali McMurtry 23.IV.2009
Zacapa San Jorge - Sorgo Typhlodromips dentilis (De Leon) 23.IV.2009
Escuintla Iztapa Güiscoyol 1 Guayaba Amblyseiinae macho 12.V.09
Escuintla Iztapa Güiscoyol 1 Chico Zapote Amblyseiinae macho 12.V.09
Escuintla Puerto de San
José Arizona Nance
a) Amblyseius largoensis (Muma)
b)Amblyseius chiapensis De Leon 13.V.09
Escuintla Puerto de San
José Arizona Zapote
Typhlodromalus peregrinus (Muma)
13.V.09
Escuintla Palín Comunidad ECA Aguacate
criollo Galendromus helveolus (Chant) 14.V.09
Escuintla Palín - Jocote Galendromus helveolus (Chant) 15.V.09
Escuintla Palín - Mango criollo Phytoseiidae inmaduro 15.V.09
Escuintla San Vicente de
Pacaya
San Francisco de
Sales Durazno Galendromus helveolus (Chant) 15.V.09
Departamento Municipio Aldea Planta Especie de acaro Fecha colecta
Suchitepéquez Cuyotenango Cantón Chacalte Nance inmaduro Amblyseiinae 26.V.2009
Suchitepéquez Cuyotenango Cantón Chacalte Cushín -Paraphytoseius n. sp.? 26.V.2009
Suchitepéquez Cuyotenango Cantón Chacalte Mango Tommy
26.V.2009
Suchitepéquez Santo Tomás La
Unión
Cantón Camaché
Grande Gengibre
Zingiber officinale - a)
Typhlodromips dentilis (De Leon)
b) Ascidae
29.V.2009
Suchitepéquez Santo Tomás La
Unión Cantón Camaché
Limón
mandarina Amblyseius chiapensis De Leon,
b) Amblyseius macho 29.V.2009
Suchitepéquez Santo Tomás La
Unión Cantón Camaché Limón criollo Typhlodromips dentilis (De Leon) 29.V.2009
Suchitepéquez San Antonio - Lima macho Amblyseiinae 29.V.2009
Suchitepéquez San Antonio - Rambután Extraño. –z3, pero tiene 4va 29.V.2009
25
Continuación Tabla 2. Especies de ácaros depredadores
Departamento Municipio Localización Cultivo Especie Fecha de
colecta
Huehuetenango Aguacatan Cantón Aguacatán Maíz Ascidae 16.VI.2009
Huehuetenango Santa Barbara Tojkail Mora - Typhlodromalus aripo De Leon 17.VI.2009
Quiché Chichicastenango Camanchaj Durazno Prunus – Typhlodromips sp. 22.VI.09
Quiché Chichicastenango Chuabaj Manzana Typhlodromalus aripo De Leon 22.VI.09
Quiché Chichicastenango Chuabaj Ciruela Euseius n.sp cerca citrifolius 22.VI.09
Quiché Santa Cruz del
Quiché Chajbal Ciruela Amblyseius sp 22.VI.09
Quiché Santa Cruz del
Quiché Chajbal Higo
Galendromus occidentalis (Nesbitt)
22.VI.09
Quiché San Pedro
Jocopilas - Limón persa - 23.VI.09
Quiché Cunen Media Luna Ciruela Amblyseius herbicolus Chant 24.VI.09
Quiché Nebaj Cantón Bascoral Pera Amblyseiinae 25.VI.09
Quiché Nebaj Cantón Bascoral Manzana Typhlodromalus aripo De Leon 25.VI.09
Quiché Nebaj Cantón Bascoral Ciruela
tecpaneque
Typhlodromips sinensis Denmark
& Muma 25.VI.09
Petén Dolores Sabaneta Loroco Amblyseius faerroni Denmark &
Evans 19.VIII.2009
Petén Flores Santa Elena Mango Amblyseius largoensis (Muma) 27.VIII.2010
Fuente: Proyecto FODECYT 29-2008
26
Tabla 2 Especies de ácaros fitófagos
Departamento Municipio Localización Cultivo Especie Fecha de
colecta
Baja Verapaz Santa Cruz El
Chol El Idilio Tomate
Polyphagotarsonemus
latus (Banks) 14.X.2009
Baja Verapaz Santa Cruz El
Chol - Maíz Tetranychus sp. 14.X.2009
Baja Verapaz San Gabriel - Maíz Tetranychus sp. 14.X.2009
Chimaltenango Parramos - Durazno Eotetranychus lewisi
(McGregor) 15.III.2010
Chimaltenango Parramos - Durazno Eotetranychus lewisi
(McGregor) 16.III.2010
Chimaltenango Tecpan Pamanzana Durazno Eotetranychus lewisi
(McGregor) 18.III.2010
Chimaltenango Zaragoza - Durazno Eotetranychus sp. 17.III.2010
Chimaltenango Patzicia - Durazno Eotetranychus sp. 18.III.2010
Chimaltenango Chimaltenango - Aguacate
criollo Oligonychus punicae
(Hirst) 15.III.2010
Chimaltenango Patzicia - Aguacate Oligonychus punicae
(Hirst) 17.III.2010
Chimaltenango San Andres
Itzapa - Café Oligonychus sp. 16.III.2010
Chimaltenango San Andres
Itzapa - Café Oligonychus sp. 16.III.2010
Chimaltenango Acatenango Km. 79 Café Oligonychus sp. 17.III.2010
Chimaltenango Tecpan Chimazat Fresa Polyphagotarsonemus
latus (Banks) 18.III.2010
El Progreso Sanarate - Golden
Pothos Tetranychus urticae
(Koch) 25.IV.2009
Escuintla Escuintla - Naranja Brevipalpus sp. 16.V.2009
Escuintla Guanagazapa Brito Km.
81 Papaya Eotetranychus sp. 12.V.2009
Escuintla Santa Lucia
Cotzumalguapa - Papaya
Eotetranychus lewisi
(McGregor) 12.V.2009
Escuintla Palín Comunidad
ECA Mandarina Eutetranychus sp. 14.V.2009
Escuintla Guanagazapa Brito Km.
81
Mango
Tommy Oligonychus sp. 12.V.2009
Escuintla Iztapa Güiscoyol 1 Chile
pimiento Polyphagotarsonemus
sp. 12.V.2009
27
Continuación Tabla 3 Especies de ácaros fitófagos
Departamento Municipio Localización Cultivo Especie Fecha de
colecta
Escuintla Iztapa Güiscoyol 1 Chile
jalapeño Polyphagotarsonemus
sp. 12.V.2009
Escuintla Puerto de San
José Arizona Papaya
Polyphagotarsonemus
sp. 13.V.2009
Escuintla Iztapa Güiscoyol 1 Maíz Tetranychus sp. 12.V.2009
Escuintla Iztapa Güiscoyol 1 Melón Tetranychus sp. 12.V.2009
Escuintla Masagua Cuyuta Yuca Tetranychus sp. 14.V.2009
Escuintla Escuintla - Golden
Pothos Tetranychus urticae
(Koch) 16.V.2009
Escuintla Iztapa Güiscoyol 1 Lima Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 12.V.09
Escuintla Puerto de San
José Arizona Jocote
Tenuipalpus uvae De
Leon 13.V.09
Escuintla Palín Comunidad
ECA Pacaya
Brevipalpus viquierae BTA
14.V.09
Escuintla Palín - Níspero Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 15.V.09
Escuintla Palín - Naranja Brevipalpus viquierae
BTA 15.V.09
Escuintla Palín - Mandarina Brevipalpus viquierae
BTA + ninfa 15.V.09
Escuintla Escuintla - Café Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 16.V.09
Escuintla Escuintla - Mamey Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 16.V.09
Huehuetenango Aguacatan - Naranja
criolla Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) macho 16.VI.2009
Huehuetenango Aguacatan - Naranja
criolla Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 16.VI.2009
Huehuetenango San Sebastián Kiajola Toronja Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 18.VI.2009
Huehuetenango San Sebastián Kiajola Limón Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 18.VI.2009
Huehuetenango San Sebastián Kiajola Naranja Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 18.VI.2009
Huehuetenango San Rafael
Petzal - Naranja
Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 18.VI.2009
Petén Dolores Sabaneta Mango Brevipalpus prob.
phoenicis (Geijskes) 19.VIII.2009
Petén Poptún Canchacán Papaya Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 18.VIII.2009
Petén Poptún Canchacán Limon Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 18.VIII.2009
28
Continuación Tabla 3 Especies de ácaros fitófagos
Departamento Municipio Localización Cultivo Especie Fecha de
colecta
Petén Dolores Barrio San
Ramón
Limón
Criollo Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 19.VIII.2009
Petén Dolores Barrio San
Ramón
Limón
Persa Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 19.VIII.2009
Petén Dolores Sabaneta Papaya Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 19.VIII.2009
Petén Poptún Machaquila Mandarina Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 20.VIII.2009
Petén Dolores Barrio San
Ramón
Limón
Criollo Brevipalpus sp. 19.VIII.2009
Petén Poptún Poxte Papaya Eotetranychus sp. 20.VIII.2009
Petén Poptún Lacanoa Papaya Eotetranychus sp. 20.VIII.2009
Petén Dolores Mopán I Aguacate
"Hass" Oligonychus sp. 19.VIII.2009
Petén Dolores Mopán I Mango Oligonychus sp. 19.VIII.2009
Petén Dolores Sabaneta Mango Oligonychus sp. 19.VIII.2009
Petén Poptún Poxte Café Oligonychus sp. 20.VIII.2009
Petén Poptún Santo
Domingo Tomate
Polyphagotarsonemus
latus (Banks) 20.VIII.2009
Petén Poptún Canchacán Yuca Tetranychus sp. 18.VIII.2009
Petén Dolores Mopán I Maíz Tetranychus sp. 19.VIII.2009
Petén Dolores Sabaneta Yuca Tetranychus sp. 19.VIII.2009
Petén Poptún Poxte Maíz Tetranychus sp. 20.VIII.2009
Petén Poptún Canchacán Papaya Tetranychus
cinnabarinus (Koch) 18.VIII.2009
Quetzaltenango La Esperanza Campo
Viejo Durazno
Eotetranychus lewisi
(McGregor) 12.II.2009
Quiché Santa Cruz del
Quiché Chajbal Naranja
Brevipalus prob.
viquierae BTA
inmaduro d3&e3 dif
22.VI.2009
Quiché Santa Cruz del
Quiché Chajbal Limón
Brevipalpus poss.
viquierae BTA -
inmaduros
22.VI.09
29
Continuación Tabla 3 Especies de ácaros fitófagos
Departamento Municipio Localización Cultivo Especie Fecha de
colecta
Quiché Santa Cruz del
Quiché Chajbal Lima
Brevipalpus viquiereae BTA molting
22.VI.09
Retalhuleu San Andrés
Villa Seca La Máquina Mandarina Eotetranychus sp. 17.IV.2009
Retalhuleu San Andrés
Villa Seca La Máquina Frijol Eutetranychus sp. 17.IV.2009
Retalhuleu San Andrés
Villa Seca La Máquina Yuca Mixonychus 17.IV.2009
Retalhuleu Nuevo San
Carlos - Café Oligonychus sp. 15.IV.2009
Retalhuleu Nuevo San
Carlos -
Huevo de
toro Oligonychus sp. 15.IV.2009
Retalhuleu Nuevo San
Carlos - Café Oligonychus sp. 15.IV.2009
Retalhuleu San Andrés
Villa Seca La Máquina Mango Oligonychus sp. 17.IV.2009
Retalhuleu San Andrés
Villa Seca La Máquina Maíz Oligonychus sp. 17.IV.2009
Retalhuleu San Andrés
Villa Seca La Máquina Achiote Oligonychus sp. 17.IV.2009
Retalhuleu San Andrés
Villa Seca La Máquina Limón Tetranychus sp. 17.IV.2009
Retalhuleu Retalhuleu - Croton Tetranychus urticae
(Koch) -
Retalhuleu San Andrés
Villa Seca La Máquina Mango
Tenuipalpus uvae De
Leon 17.IV.2009
Retalhuleu San Andrés
Villa Seca La Máquina Melón
Brevipalpus phoenicis (Geijskes)
17.IV.2009
Retalhuleu San Andrés
Villa Seca La Máquina Naranja
Brevipalpus phoenicis (Geijskes)
17.IV.2009
Retalhuleu San Andrés
Villa Seca La Máquina Marañón
Brevipalpus phoenicis (Geijskes) inmaduro
17.IV.2009
Retalhuleu San Andrés
Villa Seca La Máquina Marañón
Brevipalpus phoenicis (Geijskes)
17.IV.2009
San Marcos Comitancillo Tuichilupe Limón Eotetranychus lewisi
(McGregor) 12.III.2009
San Marcos Comitancillo Caserio Las
Flores Durazno
Eotetranychus lewisi
(McGregor) 12.III.2009
San Marcos San Antonio
Sacatepéquez
Las
Barrancas Güisquil Eotetranychus sp. 10.III.2009
San Marcos San Antonio
Sacatepéquez
San Isidro
Ixcolochil Manzana Eotetranychus sp. 10.III.2009
30
Continuación Tabla 3 Especies de ácaros fitófagos
Departamento Municipio Localización Cultivo Especie Fecha de
colecta
San Marcos San Lorenzo - Durazno Eotetranychus sp. 12.III.2009
San Marcos Comitancillo Caserio
Ixmoco Manzana Eotetranychus sp. 12.III.2009
San Marcos Comitancillo Caserio
Ixmoco Aguacate
Oligonychus punicae
(Hirst) 12.III.2009
San Marcos San Antonio
Sacatepéquez
Las
Barrancas Aguacate Oligonychus sp. 10.III.2009
San Marcos San Antonio
Sacatepéquez
San Isidro
Ixcolochil Aguacate Oligonychus sp. 10.III.2009
San Marcos San Antonio
Sacatepéquez
San Isidro
Ixcolochil Durazno Oligonychus sp. 10.III.2009
San Marcos San Pedro
Sacatepéquez
San José
Caren Durazno Oligonychus sp. 10.III.2009
San Marcos Tajumulco Boxohcan Durazno Oligonychus sp. 11.III.2009
San Marcos Comitancillo Caserio Las
Flores
Arveja
criolla Tetranychidae 12.III.2009
San Marcos San Antonio
Sacatepéquez
Las
Barrancas
Naranja
criolla Tetranychus sp. 10.III.2009
San Marcos San Antonio
Sacatepéquez
Las
Barrancas Maíz Tetranychus sp. 10.III.2009
San Marcos San Antonio
Sacatepéquez
Las
Barrancas Chilacayote Tetranychus sp. 10.III.2009
San Marcos San Lorenzo - Manzana Tetranychus sp. 12.III.2009
San Marcos San Antonio
Sacatepéquez
Las
Barrancas
Naranja
criolla
Brevipalpus viquierae Baker, Tuttle &
Abbatiello (=BTA)
10.III.2009
San Marcos Comitancillo Caserio
Ixmoco Manzana
Brevipalpus viquierae BTA
12.III.2009
Sololá Sololá El Tablón Durazno
criollo Eotetranychus lewisi
(McGregor) 25.II.2009
Sololá Panajachel Fca. Las
Vegas Café
Oligonychus coffeae
(Nietner) 25.II.2009
Sololá San Andrés
Semetabaj
Caserío
Xejuyú Aguacate Oligonychus sp. 25.II.2009
Sololá San Andrés
Semetabaj
Caserío
Xejuyú
Aguacate
criollo Oligonychus sp. 25.II.2009
31
Continuación Tabla 3 Especies de ácaros fitófagos
Departamento Municipio Localización Cultivo Especie Fecha de
colecta
Sololá San Antonio
Palopó
Caserio El
Naranjo Aguacate Oligonychus sp. 25.II.2009
Sololá San Lucas
Tolimán - Café Oligonychus sp. 25.II.2009
Sololá Santiago
Atitlán Cerro de Oro Pitaya Oligonychus sp. 25.II.2009
Sololá San Pedro La
Laguna - Café Oligonychus sp. 25.II.2009
Sololá San Andrés
Semetabaj Las Canoas Crisantemo Tetranychus sp. 25.II.2009
Sololá San Andrés
Semetabaj Las Canoas Crisantemo Tetranychus sp. 25.II.2009
Sololá Sololá El Tablón Pera Tetranychus sp. 25.II.2009
Sololá Sololá - Staticia Tetranychus sp. 25.II.2009
Sololá Sololá - Mortal Tetranychus sp. 25.II.2009
Sololá Sololá Los
Encuentros
Arveja
dulce Tetranychus sp. 25.II.2009
Sololá Panajachel - Maíz Tetranychus urticae
(Koch) 25.II.2009
Sololá San Antonio
Palopó
Caserio San
Gabriel Maíz
Tetranychus urticae
(Koch) 25.II.2009
Suchitepequez Patulul - Croton Polyphagotarsonemus
latus (Banks) 25.II.2009
Suchitepéquez Cuyotenango Cantón
Chacalte Guanaba
Brevipalpus phoenicis (Geijskes)
26.V.2009
Suchitepéquez Cuyotenango Cantón
Chacalte Nance
Brevipalpus phoenicis (Geijskes)
26.V.2009
Suchitepéquez Cuyotenango Lotificación
Unclesam Guayaba
Brevipalpus phoenicis (Geijskes) + ninfa
26.V.2009
Suchitepéquez Cuyotenango Cantón
Chacalte Cushín
Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 26.V.2009
Suchitepéquez Cuyotenango Cantón
Chacalte
Naranja
agria Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 26.V.2009
Suchitepéquez Cuyotenango Cantón
Chacalte
Limón
criollo Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 26.V.2009
Suchitepéquez Cuyotenango Cantón El
Progreso Mandarina
Brevipalpus prob.
phoenicis (Geijskes) 27.V.2009
Suchitepéquez Santo Tomás
La Unión - Mashán
Brevipalpus phoenicis (Geijskes)
28.V.2009
Suchitepéquez Santo Tomás
La Unión
Cantón
Camaché
Limón
persa Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 29.V.2009
Suchitepéquez San Antonio - Granadilla Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 29.V.2009
32
Continuación Tabla 3 Especies de ácaros fitófagos
Departamento Municipio Localización Cultivo Especie Fecha de
colecta
Suchitepéquez San Antonio - Almendro Brevipalpus phoenicis
(Geijskes) 29.V.2009
Totonicapán Santa Lucía La
Reforma San Luis Granada
Eotetranychus lewisi
(McGregor) 17.II.2009
Totonicapán Santa María
Chiquimula Xecachelaj Granadilla
Eotetranychus lewisi
(McGregor) 18.II.2009
Totonicapán Santa María
Chiquimula Xecachelaj Durazno
Eotetranychus lewisi
(McGregor) 18.II.2009
Totonicapán Santa María
Chiquimula Xecachelaj Granadilla
Eotetranychus lewisi
(McGregor) 18.II.2009
Totonicapán Santa Lucía La
Reforma San Luis Mandarina Eotetranychus sp. 17.II.2009
Totonicapán Santa Lucía La
Reforma San Luis Yuca Eotetranychus sp. 17.II.2009
Totonicapán Santa Lucía La
Reforma San Luis
Lima
limón Eutetranychus banksi
(McGregor) 17.II.2009
Totonicapán Santa Lucía La
Reforma
San Luis
Sibilia
Lima
limón Eutetranychus banksi
(McGregor) 17.II.2009
Totonicapán Santa Lucía La
Reforma San Luis Aguacate
Oligonychus punicae
(Hirst) 17.II.2009
Totonicapán Santa María
Chiquimula Xecachelaj Aguacate
Oligonychus punicae
(Hirst) 18.II.2009
Totonicapán Santa Lucía La
Reforma San Luis Café Oligonychus sp. 17.II.2009
Totonicapán Momostenango Paraje San
José Maíz Oligonychus sp. 17.II.2009
Totonicapán Momostenango Caserío San
José Sigüila Tomate Tetranychus sp. 17.II.2009
Totonicapán Santa Lucía La
Reforma San Luis Güisquil
Tetranychus urticae
(Koch) 17.II.2009
Totonicapán Santa Lucía La
Reforma
San Luis
Sibilia
Chile
Pimiento Tetranychus urticae
(Koch) 17.II.2009
Totonicapán Momostenango Caserío San
José Sigüila Papaya
Tetranychus urticae
(Koch) 17.II.2009
Totonicapán Momostenango Caserío San
José Sigüila
Lima
chichuda Tetranychus urticae
(Koch) 17.II.2009
Totonicapán Santa María
Chiquimula Xecachelaj Naranja
Tenuipalpus bakeri McGregor
18.II.2009
Zacapa Rio Hondo - Naranja Eutetranychus sp. 21.IV.2009
Zacapa Estanzuela Barrio El
Museo
Limón
criollo Eutetranychus sp. 22.IV.2009
Zacapa Estanzuela - Higuerillo Eutetranychus sp. 22.IV.2009
33
Continuación Tabla 3 Especies de ácaros fitófagos
Departamento Municipio Localización Cultivo Especie Fecha de
colecta
Zacapa La Fragua - Limón
criollo Eutetranychus sp. 23.IV.2009
Zacapa Estanzuela - Maíz Oligonychus sp. 22.IV.2009
Zacapa Estanzuela - Mango
Tommy Oligonychus sp. 22.IV.2009
Zacapa Estanzuela - Okra Tetranychus sp. 22.IV.2009
Zacapa Rio Hondo - Lima Tenuipalpidae 21.IV.2009
Zacapa Estanzuela Barrio El
Museo Limón
Brevipalpus prob.
phoenicis (Geijskes),
falta tarso II
21.IV.2009
Zacapa Estanzuela Barrio El
Museo Banano Brevipalpus sp. 22.IV.2009
Zacapa Estanzuela Barrio El
Museo Noni
Brevipalpus phoenicis (Geijskes)
22.IV.2009
Zacapa La Fragua
Jocote
corona
Tenuipalpus uvae De
Leon 23.IV.2009
Zacapa - Llanos de La
Fragua Maracuyá
Brevipalpus poss.
obovatus Donn.
(moulting)
23.IV.2009
Zacapa - Llanos de La
Fragua Naranja
Brevipalpus phoenicis (Geijskes)
23.IV.2009
Zacapa Teculután San Antonio Uva Brevipalpus sp. (6
laterales) 24.IV.2009
Fuente: Proyecto FODECYT 29-2008
Con los resultados obtenidos en este estudio, se logró identificar las principales
especies de ácaros fitófagos que ocurren en los cultivos de importancia económica para
Guatemala, así también las principales especies de ácaros depredadores asociados con
cada uno de los cultivos, con el propósito de utilizarlos para control biológico de plagas
cuando sea necesario.
Se presenta en lasTabla 2 y 3 un detalle de las especies de ácaros presentes en
los cultivos de importancia económica, donde se incluye el registro de la especie, la
localización (aldea y departamento) el hospedero, la especie identificada y el registro de
la determinación. Puede observarse que el acaro fitófago Brevipalpus phoenicis, tiene
un amplio rango de especies infestadas tales como melón, mango, marañon, noni,
níspero, café, mamey, guanabana, nance, guayaba, cushin, mashan, granadilla, almendro
y papaya. Así como varias especies de cítricos, limón, naranja, lima, naranja agria,
limón criollo, mandarina y lima persa. Esta especie si está infectada con el virus de la
leprosis, puede ser un problema para las exportaciones, ya que si esta cercana o asociada
con plantas infectadas, no podrían exportarse principalmente a los Estados Unidos de
América.
En lo que respecta a ácaros depredadores, estos se encontraron en menor escala
con respecto a los fitófagos. Typhlodromus peregrinus se encontró en zapote y
34
manzana; Euseius hibisci en aguacate y almendra y Proprioseiopsis mexicanus en
pepino y hierba mora.
III.1. Discusión de Resultados
Los ácaros son organismos que se han encontrado alimentándose en muchos
cultivos, en todas las áreas productoras de la República de Guatemala. En regiones
donde las condiciones climáticas favorecen su desarrollo, como lo son las zonas con
temperaturas promedio superiores a 22ºC y baja humedad, estos llegan a poblaciones
importantes, impactando en el buen desarrollo de los cultivos y reduciendo la
producción potencial de los mismos.
Con el estudio se determinó qué especies de ácaros fitófagos infestan las
especies de plantas que se cultivan. Si se conoce la especie de acaro presente en un
cultivo, es más fácil hacer una revisión de literatura para ver la forma de control
adecuada y efectiva realizada en otros países.
Uno de los objetivos principales era la identificación de especímenes en los
cultivos de importancia económica en el país, se cumplió en parte identificando las
especies de ácaros fitófagos y depredadores. Las especies de ácaros depredadores son
abundantes, por lo que es importante tener cuidado con el mal uso de químicos. Ya que
con su uso excesivo puede acabar con la especies depredadoras que son importantes en
el control biológico.
Los resultados se relacionan en varios aspectos: asociar las especies de
hospedero a cada unas de las especies de ácaros identificados, como se presenta en las
tablas 2 y 3 que detallan el registro de la muestra, la localidad (departamento y
municipio), los hospederos y las especies de ácaros identificados en cada una de las
especies de plantas.
De la familia Tetranychidae, cuatro géneros fueron los que se presentaron
principalmente, siendo estos Tetranychus, Eotetranychus, Oligonychus y Eutetranychus.
No en todos los especímenes fue posible determinar la especie, debido a la ausencia de
machos, quienes en esta familia son importantes y necesarios para observar las
características morfológicas del edeago y poder realizar dicha determinación. De los
géneros de esta familia, el más abundante es Tetranychus, el cual fue encontrado en
cultivos como la arveja dulce, el chilacayote, chile pimiento, crisantemo, crotón, golden
pothos, güisquil, lima, limón, maíz, manzana, melón, okra, papaya, pera, staticia, tomate
y yuca. La especie Tetranychus urticae, es la más polífaga y la que mayor distribución
tiene.
De la familia Tenuipalpidae, la especie más abundante en las muestras
recolectadas fue Brevipalpus phoenicis. Es interesante porque esta especie únicamente
ha sido reportada en Guatemala en cítricos. Su importancia radica principalmente por
ser un vector de la leprosis de los cítricos, y su presencia en productos de exportación
puede ser una razón de detención y cuarentena. Se encontró presente en el cultivo de
almendro, café, cushín, granadilla, guanaba, guayaba, melón, nance, níspero, noni,
papaya. Otras especies de Brevipalpus también fueron encontradas en pacaya, naranja,
35
mandarina, limón criollo, manzana, banano y uva. Además se encontraron dos especies
del género Tenuipalpus, T. uvae y T. bakeri.
Es importante observar la cantidad de depredadores de la familia Phytoseiidae
que existen en las plantas observadas del presente proyecto, lo que indica que si hay
presencia de control biológico en el campo.
Las principales familias de ácaros encontradas en los cultivos fueron de 5;
Tenuipalpidae, Tetranychidae, Phytoseiidae, Ascidae y Acaridae.
36
PARTE IV
IV.1. CONCLUSIONES
1. Las condiciones climáticas de la época seca, favorecen el desarrollo de
poblaciones de ácaros en toda la República de Guatemala, teniendo mayor
impacto en las regiones que se ven afectadas por períodos de altas temperaturas
y baja humedad, como lo son la región oriente y norte del país.
2. La especie de la familia Tetranychidae más polífaga y de amplia distribución es
Tetranychus urticae Koch, para el caso de la familia Tarsonemidae es la especie
Polyphagotarsonemus latus Banks y de la familia Tenuipalpidae, la especie
Brevipalpus phoenicis (Geijskes).
3. Los ácaros depredadores, de la familia Phytoseiidae, están presentes en todas las
regiones productores de Guatemala, lo cual favorece un control biológico de
especies fitófagas.
4. Se ha logrado reconocer qué especies de ácaros depredadores se tienen en cada
cultivo lo cual es útil para propósitos de control biológico de plagas. El saber
que se tiene un buen número de especies depredadores hace importante el no
usar químicos que dañen tales organismos.
37
IV.2. RECOMENDACIONES
1. Debido a la amplia distribución de los ácaros en la República de Guatemala, es
importante que se tomen medidas preventivas, a partir de monitoreos de las
poblaciones. Con el aumento de temperatura de los últimos años, estos
organismos serán cada día más importantes en los procesos productivos, ya que
sus ciclos de vida se acortarán, y su potencial biótico aumentado.
2. La información de las especies presentes en cada uno de los cultivos debe de
utilizarse como herramienta para la búsqueda de alternativas de control,
principalmente cuando se han encontrado especies de ácaros depredadores, los
cuales pueden utilizarse como un control biológico.
3. Debe de tomarse principal cuidado, con aquellas especies de ácaros que tengan
problemas de exportación. Ejemplo no sembrar plantas de cítricos cercanos al
crotón de exportación, para evitar la presencia de ácaros que puedan causar la
leprosis de los cítricos (rhabdovirus).
4. Utilizar para el control biológico de Brevipalpus, ácaros de la familia
Phytosoeiidae, principalmente de la especies que han sido encontradas en este
estudio (Phytoseiulus, Neoseiulus, Galendromus, Typhlodromina, Euseius,
Proseiopsis, Euseius hibisci y otros).
38
IV.3. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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42
IV.4. ANEXOS
V.2.1. Sintomatología utilizada para detectar infestaciones de
ácaros en el follaje
Fotografía 2. Deformación de frutos
Fuente: Proyecto Fodecyt 29-2008
Fotografía 3. Rayado del fruto
Fuente: Proyecto Fodecyt 29-2008
Fotografía 4. Decoloración del fruto
Fuente: Proyecto Fodecyt 29-2008
Fotografía 5. Manchado del fruto
Fuente: Proyecto Fodecyt 29-2008
Fotografía 6. Clorosis del follaje
Fuente: Proyecto Fodecyt 29-2008
Fotografía 7. Necrosis de los tejidos
Fuente: Proyecto Fodecyt 29-2008
43
Fotografía 8. Presencia de telarañas en el
follaje
Fuente: Proyecto Fodecyt 29-2008
Fotografía 9. Recolección de ácaros del
follaje por el MAGA
Fuente: Proyecto Fodecyt 29-2008
Fotografía 10. Recolección de ácaros del
follaje
Fuente: Proyecto Fodecyt 29-2008
Fotografía 11. Infestación de ácaros en el
follaje de chile (MAGA)
Fuente: Proyecto Fodecyt 29-2008
Fotografía 12. Follaje infestado por ácaros
(MAGA)
Fuente: Proyecto Fodecyt 29-2008