IDENTIFICACIÓN DE CIANOBACTERIAS

Las cianofitas comprenden una sola clase Cianophyceae. Están relacionadas con las eubacterias gramnegativas por poseer una pared celular de cuatro capas, presentan importantes particularidades que permiten relacionarlas con las algas eucariotas, como son la presencia de clorofila y el realizar fotosíntesis aeróbica con desprendimiento de oxígeno. Se incluyen organismos unicelulares, coloniales, filamentosos; las especies unicelulares forman coloniales al permanecer unidas por medio de mucílagos.Presentan clorofila a y b y pigmentos accesorios como son las ficobiliproteínas.Como sustancias de reserva acumulan gránulos de carbohidratos y de cianoficina (IZCO 2004).

INTRODUCCIÓN

El estudio de las comunidades fitoplanctónicas es de suma importancia ya que son productores primarios y representan la base fundamental de la red trófica, y son también los responsables de la oxigenación del medio tanto acuático como aéreo. El conocimiento de la composición específica y de los factores que permiten la sucesión estacional de las distintas poblaciones, es fundamental para nuestra comprensión de las comunidades fitoplanctónicas y más aún en un cuerpo de agua parcialmente dragado (CRUZ ROSADO, 2006).

ANTECEDENTESSe usó la tesina de Cruz Rosado (2006) en la cual hay reportadas: Anabaena sp, Anabaenopsis sp, Chroococcus sp, Cianoprocariota sp, Gloecapsa sp , Merismopedia sp, Lyngbya sp y Planktolyngbya sp.

JUSTIFICACIÓN

En este trabajo se pretende identificar los diferentes géneros de cianobacterias presentes en la laguna de las ilusiones, con ello es posible conocer la forma en que estos organismos trabajan para mantener la sustentabilidad de este cuerpo de agua ya que está sujeto a numerosos contaminantes como el recibir basura de los que pasan alrededor de él y su principal enemigo, ser un desagüe de aguas negras de uno de los hoteles cercanos (Cencali).Es importante saber la forma en que las cianobacterias trabajan en este cuerpo de agua ya que si bien sabemos que proporcionan oxigenación al agua estas son usadas como indicadores de la calidad del agua, además de ser parte del fitoplancton.Una vez que sepamos que géneros y en qué cantidad se encuentran las cianobacterias en la laguna de las ilusiones podremos conocer la calidad del agua, y así, teniendo un resultado bueno o malo seremos capaces de hacer algo para remediar el problema si es que este lo presenta.

OBJETIVO GENERAL

Identificar los géneros de cianobacterias en la laguna de las ilusiones

Observar en que horarios del día se encuentra mayor abundancia de cianobacterias

OBJETIVO ESPECÍFICO

DESCRIPCIÓN DEL ÁREA DE ESTUDIO

La Laguna de las Ilusiones es símbolo de la ciudad de Villahermosa, ya que está ubicada en la parte norte de la ciudad, con una superficie de 229.27 hectáreas, que incluyen su zona federal, sus coordenadas geográficas son: 17° 59' 22” y 18° 01' 22” de latitud norte y los 92° 55' 20”, 92° 56' 40” longitud oeste, presenta una profundidad promedio de 2 metros y en alguna de sus partes llega a tener hasta los 4 metros de profundidad. Sin embargo, durante la época de lluvias, la profundidad de la laguna suele llegar hasta los 6 metros.

•18 frascos de vidrio de 500 ml•Gotero

•Papel absorbente •portaobjetos•cubreobjetos

•Pipetas de 10 ml•Propipeta

•Plumón permanente•Etiquetas

•Cámara fotográfica•Microscopio

MATERIALES

Reactivos•Solución de Formol-aldehído •Lugol

METODOLOGÍA1.- Se tomó la muestra de agua en la orilla de la laguna con ayuda de un bote de boca ancha en 3 estaciones (1.- Vaso Cencali, 2.- Mirador las águilas, 3.- Frente al toro) y en 3 horarios distintos: 9:00 a.m., 12:00 p.m. y 6:00 p.m.

2.- Se vaciaron 200 ml de agua a dos de los frascos de vidrio y se fijaron las muestras, una con Lugol (10 gotitas por cada 100ml de agua) y otra con formol (8 ml de formol y 192 de agua).

3.- Se centrifugaron 10 ml de cada frasco a 2000 rpm durante 5 minutos

4.- Se observaron al microscopio óptico y con ayuda de la bibliografía se comenzó a identificar.

METODOLOGÍA

PRIMERA ESTACIÓN: FRENTE AL VASO CENCALLI

PRIMERA ESTACIÓN: FRENTE AL VASO CENCALLI

SEGUNDA ESTACIÓN: MIRADOR LAS ÁGUILAS

Colectado a las 14:00 horas


METODOLOGÍA




METODOLOGÍA


TERCERA ESTACIÓN: A UN COSTADO DEL TORO

TERCERA ESTACIÓN: A UN COSTADO DEL TORO

METODOLOGÍA

METODOLOGÍA

HORA LUGAR Reactivo

09:00

Vaso Cencali

Lugol -

FormolSpirulina sp,

Merismopedia sp

Mirador las águilas Lugol -Formol Chroococcus

Toro

Lugol -

Formol Chroococcus sp

14:00

Vaso CencaliLugol -

Formol Spirulina sp, Lyngbya sp

Mirador las águilas

Lugol -

FormolSpirulina sp,

Planktolyngbya sp

ToroLugol -

Formol Spirulina sp

18:00

Vaso Cencali

Lugol -

Formol

Lyngbya sp, Spirulina sp, Chroococcus sp,

Merismopedia sp

Mirador las águilasLugol -

Formol Chroococcus sp

Toro

Lugol -

Formol Merismopedia sp

RESULTADOS

RESULTADOS

ESTACIÓN HORA RESULTADO

Vaso Cencali

09:00 Spirulina sp, Merismopedia sp

14:00 Spirulina sp, Lyngbya sp

18:00Lyngbya sp, Spirulina sp, Chroococcus sp,

Merismopedia sp

Mirador las águilas

09:00 Chroococcus sp

14:00 Spirulina sp, Planktolyngbya sp


Toro


14:00 Spirulina sp

18:00 Merismopedia sp

En base a los resultados obtenidos se puede observar que en el horario en que se encontró mayor variedad de géneros de cianobacterias presentes fue a las 18:00 horas encontrando a los géneros Spirulina, Chroococcus, Merismopedia, Lyngbya y Planktolyngbya , dominando entre estas Chroococcus y Merismopedia ya que se encontraron en las estaciones del vaso Cencali y en el mirador las águilas Chroococcus y en el vaso Cencali y en el toro Merismopedia.La estación en la que se encontraron mayor variedad de géneros en las 3 diferentes horas en que se muestreó fue el vaso Cencali.

RESULTADOS

RESULTADOSSpirulina sp

Vaso Cencali, 9:00 horas

Spirulina sp. Filamentos cortos, afilados en los extremos, en forma de S o helicoidales con 1-3 giros. Paredes transversales invisibles en vida. Filamentos solitarios o agrupados en talos blandos, informes. Movimiento regular, helicoidal. T Filamentos de 20-60 µ de largo y 2,5-5 µm de ancho. H Aguas estancadas, también aguas contaminadas.

1. Talo colonial, no filamentoso, raramente solitario……………………………………………………….21. Talo filamentoso………………………………………….92. células generalmente esféricas, excepto en división……………………………………………………….32. Células generalmente ovoides o cilíndricas, excepto en división………………….73. Colonias en formas de láminas planas, células en hileras en dos planos……….Merismopedia3. Colonias no en forma de láminas planas, células no en hileras de dos planos………………………………………………………..44. Colonias de muchas células……………………………54. Colonias de pocas células o de grupos de pocas células….65. Colonias micrscópicas no formando grupos…….Microcystis5. Colonias macroscópicas, formando grupos…. Aphanocapsa6. Colonias con vainas mucilaginosas hialinas….. Croococcus6 Colonias con vainas mucilaginosas coloreadas con el tiempo…. Pleurocapsa6. Colonias con vainas mucilaginosas no evidentes… Synechocystis7. Celulas diviendose longitudinalmente…87. Células dividiéndose transversalmente… Anacystis8. Matriz gelatinosa con ramificaciones radiales…. Gomphosphaeria8. Matriz gelatinosa sin tales ramificaciones…. Coelosphaerium9. Tricomas conspicuamente atenuadas…. ………………109. Tricomas no atenuados, o solamente muy apicalmente… 1310. Tricomas sin vainas…. Raphidiopsis10. Tricomas con vainas, algunas veces no evidentes… 1111. Heterocistos ausentes…. Amphithrix11. Heterocistos presentes, o usualmente presentes….1212. Filamentos formando masas esféricas… Gloeotrichia12. Filamentos en masas indefinidas o solitarias…. Calothrix13. Heterocistos ausentes…………………………………1413. Heterocistos presentes………………………………..2014. Tricomas sin vainas evidentes… ……………………1514 Tricomas con vainas evidentes………………………..1615. Talo en espirales regulares… Spirulina15. Talo en espirales irregulares o rectos… Oscillatoria

1. Talo colonial, no filamentoso, raramente solitario………………………………………………….………….21. Talo filamentoso……………………………………………………….92. células generalmente esféricas, excepto en división………………………………………………………………32. Células generalmente ovoides o cilíndricas, excepto en división…………………………………………...73. Colonias en formas de láminas planas, células en hileras en dos planos………………………Merismopedia3. Colonias no en forma de láminas planas, células no en hileras de dos planos…………………………………………………………………..4

RESULTADOS

Merismopedia spVaso Cencali, 9:00 horas

Merismopedia sp. Colonias tabulares formadas por una sola capa de células; se originan gracias a las divisiones celulares rítmicas y regularmente alternadas en dos direcciones perpendiculares. Las envolturas especiales que rodean a las células tienen un nivel de desarrollo variable. Células de color verde azulado intenso, densamente dispuestas. T Células de 7-9 µm de largo y 5-7 µm de ancho. H Charcas y estanques. E M. convoluta: colonias en forma de hoja (no rectangulares), a menudo plegadas, de 1-4 mm de tamaño.

Chroococcus spToro, 9:00 horas

RESULTADOS

Chroococcus sp. Células solitarias; tras la división permanecen unidas como máximo cuatro células durante un cierto tiempo, rodeadas por envolturas estratificadas. Células esféricas. Células hijas semiesféricas en el interior de las envolturas. De color verde azulado intenso o pardusco, a veces amarillento. T Células sin envolturas 8-32 µm. H Turberas, estanques, mar, incluso sobre cieno putrefacto. E Ch. giganteus: células de 54-58 µm, en aguas estancadas, rara vez en el plancton.

1.Células dispuestas en filas, formando filamentos…………………………………..51. Células individuales o formando colonias, células globosas o elipsoidales, todas de aspecto muy similar, colonias formadas por grupos de varias células recubiertas por una membrana externa común……………………………………………………………………………………… 2 2. Células con la envuelta externa fina, gelatinosa, hialina…………………….. 32. Células con una envuelta externa gruesa, evidente …………………………… 43. Colonias de hasta 6 células de 8-30 µm de diámetro………………………….. Chroococcus3. Colonias formadas por muchas más células de menor tamaño (entre 2 a 12 µm) …………………………… Myxosarcina

Chroococcus spMirador las águilas, 9:00 horas

RESULTADOS

RESULTADOS Lyngbya spVaso Cencali, 14:00 horas

1. Talo colonial, no filamentoso, raramente solitario……………………………………………………….21. Talo filamentoso………………………………………….92. células generalmente esféricas, excepto en división……………………………………………………….32. Células generalmente ovoides o cilíndricas, excepto en división………………….73. Colonias en formas de láminas planas, células en hileras en dos planos……….Merismopedia3. Colonias no en forma de láminas planas, células no en hileras de dos planos………………………………………………………..44. Colonias de muchas células……………………………54. Colonias de pocas células o de grupos de pocas células….65. Colonias micrscópicas no formando grupos…….Microcystis5. Colonias macroscópicas, formando grupos…. Aphanocapsa6. Colonias con vainas mucilaginosas hialinas….. Croococcus6 Colonias con vainas mucilaginosas coloreadas con el tiempo…. Pleurocapsa6. Colonias con vainas mucilaginosas no evidentes… Synechocystis7. Celulas diviendose longitudinalmente…8

7. Células dividiéndose transversalmente… Anacystis8. Matriz gelatinosa con ramificaciones radiales…. Gomphosphaeria8. Matriz gelatinosa sin tales ramificaciones…. Coelosphaerium9. Tricomas conspicuamente atenuadas…. ………………109. Tricomas no atenuados, o solamente muy apicalmente… 1310. Tricomas sin vainas…. Raphidiopsis10. Tricomas con vainas, algunas veces no evidentes… 1111. Heterocistos ausentes…. Amphithrix11. Heterocistos presentes, o usualmente presentes….1212. Filamentos formando masas esféricas… Gloeotrichia12. Filamentos en masas indefinidas o solitarias…. Calothrix13. Heterocistos ausentes…………………………………1413. Heterocistos presentes………………………………..2014. Tricomas sin vainas evidentes… ……………………1514 Tricomas con vainas evidentes………………………..1615. Talo en espirales regulares… Spirulina15. Talo en espirales irregulares o rectos… Oscillatoria16. Tricomas generalmente solitarios con vainas…1716. Tricomas generalmente pocos con vaina…. Schizothrix16. Tricomas numerosos con vainas o variosfilamentos en una sola vaina…………… Microcoleus17. Vainas no confluentes con otra…1817. Vainas lateralmente confluentes…1918. Vainas hialinas o amarillo-cafesosas Lyngbya18. Vainas rojas, rojo-púrpuras y/o rojo-naranja… Porphyrosiphon

RESULTADOS

Lyngbya sp. Filamentos enrollados, con entre dos y veinte espiras densas y regulares. Libres. Vainas estrechas, incoloras. T Células de 3-6 µm de largo y 1-2 µm de ancho. H Plancton de lagos y estanques eutróficos, frecuente.

RESULTADOS

Spirulina spVaso Cencali, 14:00 horas

RESULTADOS

Spirulina spMirador las águilas, 14:00 horas

Planktolyngbya sp ,Mirador las águilas 14:00 horas

Planktolyngbya sp. Filamentos planctónicos, rectos, curvados o helicoidales. Vainas finas generalmente incoloras. Células vegetativas sin flagelos. Organismos de coloración verdeazulada. Talos filamentosos. Tricomas sin heterocitos. Tricomas delgados (máximo 3 µm de diámetro) con células siempre más largas que anchas. Tricomas con vaina mucilaginosa inconspicua. Tricomas siempre aislados.

Spirulina spToro, 14:00 horas

RESULTADOS

RESULTADOSSpirulina sp

Vaso Cencali, 18:00 horas

Lyngbya spVaso Cencali, 18:00 horas

RESULTADOS

Chroococcus spVaso Cencali, 18:00 horas

Merismopedia spVaso Cencali, 18:00 horas

Chroococcus spToro, 18:00 horas

RESULTADOS

RESULTADOS

Merismopedia spToro, 18:00 horas

CONCLUSIÓNLas cianobacterias, además de contar con una importancia evolutiva, también son útiles en la determinación de la calidad del agua, lo cual, en este caso nos indica que el agua de la laguna de las ilusiones no cumple con los estándares de calidad requeridos.

Esto no implica que toda la laguna esté en el mismo estado ya que hay zonas en las que la concentración de contaminantes es menor que en otras, ejemplo de ello es el vaso Cencali, como se muestra en los resultados fue la estación de muestreo con mayor variedad de géneros de cianobacterias presentes.

BIBLIOGRAFÍA

•BARRENO E. Pérez S. (2003) Clave para la identificación de fitobiontes. Consejería de medio ambiente, ordenación del territorio e infraestructuras del principado de Asturias. España.

•CEBALLOS C. (?). Clave para los géneros de cianofíceas dulceacuícolas.•CRUZ L. (2006). Distribución espacial y abundancia del fitoplancton en temporada de estiaje, en el vaso Cencali, Laguna de las ilusiones, Villahermosa Tabasco, México.

•IZCO J. (2004) Botánica. 4ª edición.McGraw-Hill. Colombia.

•STREBLE, H., Krauter, D. 1987. Atlas de los microorganismos de agua dulce. La vida en una gota de agua. Editorial Omega. Barcelona, España. Página 114-127.

Documents

IDENTIFICACIÓN DE CIANOBACTERIAS