MATERIAL Y METODOS PARA LA TOMA DE MUESTRAS

Manual de Colección, Manejo, Conservación, Transporte y Recepción de Muestras para Análisis Bacteriológico

Código: M-CCBA-LB-01 Revisión: 02 Página: 1 de 17Fecha de emisión: 19 de abril de 2010

Fecha de modificación: 31de agosto de 2016

Manual de Colección, Manejo, Conservación,

Transporte y Recepción de Muestras para Análisis

Bacteriológico




Objetivo / Pág. 3Alcance / Pág. 3Políticas / Pág. 3Contenido, Introducción / Pág. 4Material para Estudio Bacteriológico/ Pág. 4Muestras Bacteriológicas: Colección y transporte / Pág. 5

Colección de muestras / Pág. 5Órganos / Pág. 6Piel / Pág. 7Fluidos / Pág. 7Exudados o Líquidos / Pág. 7Exudados Nasales / Pág. 8Exudados Vaginales / Pág. 8Exudados Oticos / Pág. 8Exudados Oculares / Pág. 9Orina / Pág. 9Heces / Pág. 9Absceso / Pág. 10Leche para Mastitis / Pág. 10Agua / Pág. 11

Agua de red de Distribución (llave, filtro) / Pág. 11Agua Estancada (estanque, cisterna, pozo y tinacos) / Pág. 12

Alimento / Pág. 13Abejas / Pág. 13

Transporte de Muestras / Pág. 13Recepción y Manejo de Muestras Diagnósticas / Pág. 14Documentos de Referencia / Pág. 17Glosario / Pág. 17Control de Revisiones / Pág. 17

ÍNDICE




Proporcionar al personal del laboratorio la información necesaria para la correcta

colección, manejo, conservación, transporte y recepción de muestras para análisis

bacteriológico.

Aplica a todo el personal en el laboratorio de bacteriología que procese muestras para

análisis bacteriológicos.

á

Todas las muestras enviadas al laboratorio para analisis bacteriologico deberán

apegarse a lo establecido en este manual.

I. OBJETIVO

II. ALCANCE

III. POLÍTICAS

IV. CONTENIDO




El procedimiento usado para la identificación de agentes infecciosos varía

ampliamente. Es importante que la muestra remitida al laboratorio lleve una historia clínica

completa, e incluya un diagnóstico tentativo que permita al personal del laboratorio decidir

sobre un rango de los posibles agentes a evaluar y además seleccionar las pruebas y

procedimientos adecuados para identificar al patógeno.

Un problema común en la microbiología clínica veterinaria es el que resulta a

consecuencia del envío inadecuado de muestras que además carecen de historia clínica o

comentarios del médico que las envía.

Hay que tener en cuenta que poco antes de ocurrir la muerte, los tejidos pueden ser

invadidos por un número considerable de bacterias intestinales.

El significado sobre la presencia de estos microorganismos, de los cuales algunos

pueden ser patógenos, resulta difícil de establecer cuando las muestras fueron recolectadas

poco después de la muerte. Por este motivo las mejores muestras son las que se obtienen de

animales enfermos sacrificados para realizar necropsias.

De cualquier manera, es necesario considerar la importancia de colectar muestras

frescas lo más pronto posible después de la muerte. Este manual detalla algunos aspectos

importantes sobre colección y remisión de muestras al laboratorio de bacteriología.

a. Antes de iniciar la recolección de la muestra para estudios bacteriológicos, se debe

revisar la historia clínica para saber si el animal ha recibido algún tratamiento con

antibióticos en los últimos tres días.

b. El material para la recolección de la muestra deberá estar en condiciones estériles. La

esterilización puede llevarse a cabo en una autoclave en una olla de presión de tipo

MATERIAL PARA ESTUDIO BACTERIOLOGICO

INTRODUCCIÓN




casero (121°C, 15lb, 15 min.). Si los instrumentos por usar se han sumergido

previamente en soluciones antisépticas, debe tenerse cuidado de no usarlos mojados,

ya que el contacto con dichas soluciones podría inhibir el crecimiento de los

microorganismos. Siempre debe trabajarse frente a un mechero de gas o lámpara de

alcohol.

c. Deberá recogerse la mayor cantidad posible de muestras, tomadas de diferentes sitios

(tejidos, líquidos, exudados etc.), esto con el fin de tener una mejor oportunidad de

aislar el agente causal.

d. Las muestras no procesadas inmediatamente deberán conservarse en refrigeración a

una temperatura de 4°C.

e. Durante su transporte las muestras deberán enviarse en estado de refrigeración.

f. Las muestras para análisis bacteriológico deben ser tomadas de un animal recién

muerto o en un lapso no mayor a 2 horas.

g. Si pasan más de dos horas después de la muerte del animal se recomienda tomar

fracciones de médula hematopoyética de un hueso largo, ya que éste es el último tejido

en sufrir invasión bacteriana postmortem.

Colección de muestras Uno de los tres siguientes tipos de muestras es usualmente colectado para cultivo:

hisopo, fluido aspirado y muestra de tejido. Las muestras de hisopos son menos satisfactorias,

ya que son más propensas a contaminarse con bacterias comensales de las superficies.

Pequeños volúmenes de muestra pueden ser absorbidos en los intersticios y puede inhibirse su

crecimiento, sobretodo en el caso de bacterias anaerobias, debido a que el oxígeno se queda

atrapado dentro de las fibras del hisopo. Hisopos de rayón o alginato son los ideales, ya que el

algodón inhibe el desarrollo bacteriano. Los hisopos pueden ser usados para obtener muestras

MUESTRAS BACTERIOLOGICAS: COLECCIÓN Y TRANSPORTE




de conjuntiva y oídos, pústulas de la piel recientemente rotas, heridas profundas e infecciones

de tejidos suaves.

Las muestras de fluido aspirado son convenientes para cultivo y cualquier fluido del

cuerpo normalmente estéril (por ejemplo, líquido pleural, peritoneal, pericardio, sinovial ó

líquido cerebroespinal así bien como sangre y orina) o para cultivo de exudados líquidos de

heridas, abscesos e infecciones profundas.

Las biopsias de tejido se cultivan cuando el fluido no puede ser obtenido. Están

indicadas para cultivo de animales con pyoderma bacteriana, infecciones profundas de tejidos

suaves, infecciones de médula y cualquier infección asociada con necrosis de tejido o

formación de gas. Las muestras de tejido también tienden a conservar su núcleo

microambiental, por medio de eso aumenta la sobrevivencia de las bacterias. La colección de

las muestras para estudio bacteriológico se realiza de la siguiente manera:

a) ÓrganosLos órganos sanos por lo general están libres de bacterias, por lo que hay que evitar su

contaminación con exudados y/o contenido intestinal, ya que esto haría prácticamente

imposible una interpretación correcta de los hallazgos bacteriológicos.

Para la colección, se cortan trozos de tejido de la parte afectada o con lesiones

características del agente causal que se sospeche a un grosor no mayor de 4 cm2.Se colocan en

frascos con tapa hermética o bolsas estériles individuales, y se guardan en refrigeración a una

temperatura de 4°C hasta el momento de ser procesadas.

Generalmente se obtienen por procesos quirúrgicos; la necropsia debe realizarse en

condiciones de esterilidad o con la mayor asepsia posible para evitar contaminaciones. Cuando se

obtienen especímenes de necropsia es mejor anticipar que tejidos se requerirán para análisis

microbiológico, antes que la manipulación y la exposición excesiva del tejido cause mayor

contaminación.




Las muestras de tubo digestivo se toman al final para evitar la contaminación de otros

tejidos. Se deben enviar porciones amplias (300 gr. aproximadamente; mínimo 100 gr.) del área

de la muestra que presenta la lesión característica de la enfermedad. Deben recolectarse en un

lapso no mayor a dos horas después de la muerte del animal.

b) PielSe debe seleccionar un área de piel en donde se encuentren pústulas intactas. Deberá

lavarse bien el área con algodón y alcohol al 70%. Dejar evaporar el alcohol y exprimir el

contenido (pústula) entre el pulgar y el índice. Se deberán impregnar los hisopos (3 mínimos) con

el líquido. Estos deberán conservarse en tubos estériles con Solución Salina Fisiológica al 0.85%

ó en algún Medio de Transporte. El envío será en condiciones de refrigeración.

c) FluidosEstos se pueden obtener con jeringas estériles por medio de punción directa,

desinfectando un área de aproximadamente 10 cm. La muestra deberá conservarse en

refrigeración. Se recomienda enviar la muestra en la misma jeringa con que se obtuvo para evitar

contaminaciones.

d) Exudados o LíquidosCuando las muestras son exudados o líquidos, se deben aspirar con aguja y jeringa o

pipetas Pasteur estériles y vaciar en tubos estériles, siempre cerca del mechero. Si las jeringas

son de plástico, puede quemarse la punta de las mismas una vez llenadas, para sellarlas

herméticamente. La muestra de absceso o de tejido suave sin drenar es fácilmente obtenida por

aspiración con aguja; si la lesión ha sido drenada, la muestra deberá ser obtenida por

aspiración con aguja en un punto lejos del sitio drenado ó por aspiración del fondo del tejido

infectado.

e) Exudados nasales




Para disminuir la contaminación al mínimo, se deben limpiar las fosas nasales por fuera

con un algodón con alcohol al 70% exprimido. Si hay exudado nasal se puede usar un hisopo

para obtener la muestra, introduciéndolo lo más lejos posible o lo más profundo de la fosa nasal.

Las muestras de hisopos faríngeos o de saliva no son convenientes para algunas

enfermedades. Deberán tomarse dos muestras (dos hisopos) de la misma área. Cuando la muestra

es obtenida con hisopo hay peligro de que este se seque, por lo tanto hay que colocarlo

inmediatamente en un medio de cultivo adecuado para transportarlo (medio de transporte) como

el Stuart, para evitar la pérdida de agentes infecciosos durante el envío, al colocar los hisopos en

el medio de transporte no romper el aplicador. Las muestras deberán enviarse lo más pronto

posible al laboratorio en una nevera de nieve seca con hielo.

f) Exudados vaginalesSe realiza un lavado del área con solución jabonosa. Se toma el contenido del fondo del

saco vaginal con hisopos o con pipetas estériles. El material extraído se suspende en un tubo

estéril con solución salina o en medio de transporte Stuart. Se recomienda enviar la muestra en

condiciones de refrigeración.

g) Exudados oticosLas excreciones o secreciones para frotis y cultivo deberán obtenerse con hisopo estéril.

Debe evitarse la irrigación con agentes desinfectantes o antimicrobianos que reducen la población

bacteriana, si no es posible recolectar la muestra con anterioridad a la irrigación se deja pasar un

lapso de tiempo razonable (varias horas) entre la irrigación y la colección con el objeto de

facilitar un aislamiento positivo. En casos de otitis media se debe obtener la muestra después de

limpiar el canal auditivo externo. Este tipo de muestra se deberá trabajar inmediatamente de la

obtención, pero si no es posible usar un medio de transporte como Caldo de Soya Tripticasa,

Medio de Thioglicolate, Stuart, BHI (Caldo Infusión Cerebro, Corazón) etc. Enviar lo más pronto

posible en condiciones refrigeradas.

h) Exudados oculares




Deberá realizarse en las etapas incipientes o en las más agudas de la infección y antes de

la aplicación de antimicrobianos o de anestésicos locales, ya que tienden a arrastrar los

microorganismos del saco de la conjuntiva.

Los materiales se recogen con hisopos estériles, si se va a hacer frotis directo, tomar con

un asa de platino estéril ó cualquier otro instrumento quirúrgico adecuado. Si hay suficiente

secreción se podrá tomar con una pipeta Pasteur estéril.

Deberán tomarse dos hisopos por área. Los hisopos deberán sembrarse lo más pronto

posible; si no es posible colocarlos en un tubo de ensayo con solución Salina Fisiológica al 0.85%

estéril en condiciones de refrigeración.

i) OrinaLa orina puede ser obtenida por punción de la vejiga, cateterización o estimulación

mecánica de la micción en el orden de preferencia. Todo el material utilizado deberá ser

esterilizado. Se debe limpiar perfectamente la zona con un algodón impregnado con benzal

diluido. Si la muestra es obtenida por micción mecánica, se eliminan los primeros chorros de

orina y el resto se colecta en frascos estériles de boca ancha y tapa hermética. La orina es un buen

medio de cultivo por lo tanto todas las muestras deberán ser procesadas en el laboratorio entre las

dos horas de obtención o bien guardar en el refrigerador a 4°C hasta el momento de procesar, no

se debe esperar más de 18 horas después de la obtención. El envío deberá ser en condiciones de

refrigeración y a la brevedad posible.

j) HecesLas muestras de materia fecal para grandes especies deben ser de 4 gramos

aproximadamente para estudio de laboratorio y deberán ser tomadas directamente del recto

utilizando guantes de palpación o captarse en frascos estériles.

Para animales pequeños o para pequeñas especies pueden utilizarse hisopos introduciendo

directamente en el recto y colocándolos después en tubos estériles con medio de transporte.


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Fecha de emisión: 19 de abril de 2010


La conservación debe ser en refrigeración con Solución Salina Fisiológica, Medio de

Transporte Stuart o incluso el Caldo Tetrathionate. El envío debe ser en condiciones de

refrigeración y a la brevedad posible. Las muestras deberán llegar al laboratorio en un lapso no

mayor a 24 horas.

k) AbscesoEn caso de absceso abierto se debe tomar 1 c.c. de exudado no expuesto, de preferencia

con jeringa estéril. Si el animal esta muerto es útil colectar un trozo de cápsula.

En caso de absceso cerrado, si se trata de una necropsia, enviarlo completo y con cápsula,

si no es posible se envía 1 c.c. de exudado en jeringa estéril, si el animal está vivo se toma 1 c.c.

con jeringa estéril, antes de debridar el absceso y colocar las muestras en Medio de Transporte. El

envío deberá ser en condiciones de refrigeración.

l) Leche para mastitisSe recomienda en la práctica médica realizar periódicamente la prueba de California para

detectar las ubres afectadas y prevenir la transmisión o complicación de la mastitis.

Una vez detectados los cuartos positivos o afectados se procede a la obtención de la

muestra para Análisis Bacteriológico:

1. Las muestras deberán tomarse inmediatamente antes de la ordeña regular, sin eliminar

los primeros chorros de leche, ya que estos contienen mayor número de

microorganismos infectantes. Es importante que en el área de muestreo no haya

corrientes de aire ni levantamientos de polvo.

2. Es necesario lavar la ubre y las tetas con agua tibia y limpia y dejarse bien secas al

concluir el lavado.

3. Frotar la punta del orificio de la teta con un algodón humedecido con alcohol al 70%

hasta que en el algodón no queden residuos sucios. El alcohol debe evaporarse

completamente antes de tomar la muestra.





4. La muestra deberá ser tomada en un frasco estéril con tapa de rosca con capacidad de

por lo menos 15 ml. La teta no deberá tocar el frasco y deberá mantenerse inclinado

protegiendo la boca del frasco con la tapa, evitando contaminación con bacterias del

medio ambiente.

5. El técnico o persona que tome la muestra deberá desinfectarse las manos con alcohol

entre cada vaca muestreada. La muestra deberá mantenerse a una temperatura de 4-

5°C hasta el momento de ser trabajadas.

6. El envío se hará en condiciones de refrigeración identificando cada tubo

apropiadamente (por ejemplo 1-1, 1-2, 1-3, 1-4, indicando que es la vaca #1 y los

números 1,2,3, y 4 corresponden a los cuartos delantero derecho, trasero derecho,

trasero izquierdo y delantero izquierdo respectivamente).

7. Es importante enviar una breve historia clínica con los datos del animal. Los mejores

resultados se obtienen con muestras tomadas dentro de las 24 horas.

m) AguaSe requieren frascos estériles de boca ancha, cierre hermético y con capacidad mínima de

100 ml.

Obtención: Agua de Red de Distribución (llave, filtro).

1. Abrir la llave y dejar correr el agua por 1 minuto.

2. Improvisando un mechero se (algodón mojado con alcohol y sostenido con una

pinza) flamea la boca de la llave procurando esterilizar la superficie de la boca

principalmente. Otra manera seria limpiar la salida del agua por medio de una

torunda de algodón tallando hasta que no se desprenda más suciedad u óxido.

3. Abrir nuevamente la llave y dejar correr el agua durante 1 minuto, al cabo del cual

se puede tomar la muestra.





4. Llenar el frasco 2/3 de su capacidad. Al destapar el frasco y durante toda la

maniobra tener cuidado de no contaminar la boca del frasco ni el interior del

tapón.

5. Cerrar perfectamente el frasco y cerciorarse de que no hayan fugas.

Agua Estancada (estanque, cisterna, pozo y tinacos).

1. Introducir el frasco destapado, con la boca hacia abajo, sosteniéndolo por la base.

2. Girar el frasco impulsándolo suavemente hacia arriba de tal manera que al salir

de la superficie se haya llenado 3/4 partes de su volumen y posteriormente tapar

el frasco. Si el agua va a ser tomada de agua en movimiento como la de un arroyo,

se efectuara una maniobra similar, ejecutando el desplazamiento en dirección

opuesta a la corriente.

3. La conservación deberá ser a una temperatura de 4°- 10°C. Debe ser enviada a la

brevedad posible. El tiempo para almacenar o transportar muestras de agua y

comenzar el análisis deberá ser en un lapso no mayor a 6 horas para las aguas

impuras y no mayor a 12 horas para las relativamente puras.

4. Recogida y conservada la muestra, se produce un rápido cambio en su categoría

bacteriana. Generalmente el número de microorganismos muestra un notable

aumento, gradual unas veces y rápidos otras. Esto obedece a la multiplicación de

las bacterias típicamente acuáticas, pues las bacterias patógenas y otras que suelen

albergarse en el intestino del hombre y de los animales tienden a morir muy

pronto.

5. El envío deberá ser en un frasco estéril de boca ancha con los datos de

identificación (fuente, fecha y hora de muestreo).

Nota: para muestreo de aguas cloradas, los frascos deberán prepararse depositando

0.1 ml de solución de Tiosulfato de Sodio al 10 % antes de la esterilización.





n) Alimento1. La obtención varía de acuerdo con la naturaleza y consistencia del alimento.

2. Para las harinas de carne, pescado etc. la obtención se hará de diferentes niveles

(fondo, parte media, y superficie), las muestras deberán ser colectadas en bolsas

de plástico limpias.

3. En caso del sustituto y del concentrado la muestra tomada será de

aproximadamente 100 gramos por nivel. Se deben conservar en un lugar fresco y

seco.

4. El envío deberá ser en bolsas de plástico nuevas, y se deben conservar en un lugar

fresco y seco.

o) AbejasLos panales de cría se seleccionan con base a los que contengan crías en todos los estados

de desarrollo y se corta un fragmento de 10 a 15cm2 asegurándose que esta sección lleve consigo

cría afectada (muerta, con cambios de color, etc.). La muestra deberá envolverse en papel

periódico u otro material que permita la ventilación, luego deberá colocarse en una caja de cartón

con la correcta identificación para posteriormente ser enviada. Las muestras deberán conservarse

en un lugar limpio y fresco.

Transporte de las muestrasUna especial atención a los métodos y la prontitud del transporte de muestras al

laboratorio es necesaria para mantener la sobrevivencia de las bacterias, particularmente

bacterias anaerobias y bacterias sensibles a cambios de temperatura, pH (incluyendo muchas

bacterias entéricas patógenas). Los hisopos para cultivos aerobios deberán ser transportados en

un medio de transporte así como el medio de transporte modificado de Stuart. Para anaerobios,

los hisopos deberán ser colocados en un medio de transporte especial. El transporte de las

muestras para estudio bacteriológico se realiza de la siguiente manera:





a. Muestras aspiradas: Pueden ser transportadas dentro de la jeringa donde fueron

colectadas o colocadas en un tubo estéril. Muestras aspiradas de líquido

cerebroespinal, líquido de coyuntura o sangre pueden también ser introducidos

asépticamente en botellas de cultivo de sangre, transportadas y cultivadas de la misma

manera. Cuando la muestra es tomada por aspiración, el riesgo de contaminación es

mínimo y mayores volúmenes son disponibles para cultivo.

b. Muestras de tejido: Deberán ser transportadas en frascos de vidrio estériles o medios

de transporte anaeróbicos.

c. Muestras fecales: Si el transporte va a demorar más de 3 horas deberán ser colocadas

en un medio de transporte (1 gr. de heces por 10 ml de medio).Cary-Blair es un medio

de transporte conveniente para la mayoría de los patógenos entéricos incluyendo

Campylobacter jejuni. Algunas muestras (especialmente líquido cerebroespinal, heces

y muestras anaeróbicas) no deberán ser refrigeradas y deben ser cultivadas a la

brevedad posible.

d. Las muestras remitidas para cultivo deberán ser claramente marcadas (identificación

del animal y origen de la muestra) y deberá incluir una breve historia de las

condiciones del animal y tratamiento. El correcto empaque de las muestras ayuda a

proteger de rupturas o extremos de temperatura.

Es lógico suponer que todas las muestras clínicas son potencialmente infecciosas, y es

prudente manejar estos materiales en forma tal que permita impedir razonablemente la

exposición franca del personal a los patógenos cuya presencia es más probable, en

consecuencia y como precaución mínima los laboratorios clínicos deberán utilizar numerosas

prácticas dictadas por el simple sentido común en la recepción y manejo inicial de todas las

muestras diagnósticas.

RECEPCIÓN Y MANEJO DE MUESTRAS DIAGNÓSTICAS





Una consideración fundamental que no se puede olvidar es el hecho de que la mayor

parte de las muestras para microbiología no son obtenidas por el laboratorista sino por el

Médico Veterinario, por lo tanto realizar una técnica cuidadosamente no es suficiente sin una

toma adecuada y correcta de la muestra. Además es necesario contar en el laboratorio con

recipientes adecuados y en número suficiente, así como procurar un ambiente de cooperación

entre el laboratorista y el recolector proporcionando informes y datos completos.

Las muestras obtenidas de un sitio de infección para cultivo bacteriano deberán

tomarse de lugares apropiados para incrementar la probabilidad de contener el patógeno

bacteriano que se pretende diagnosticar. La flora normal podría contaminar las muestras

bacteriológicas, ya que la piel y las superficies de las membranas mucosas de animales

contienen gran población de bacterias. El examen microscópico directo de la muestra es de

gran ayuda para confirmar la infección presente y debería ser desarrollado rutinariamente en

conjunto con el cultivo. En general, las muestras ideales para cultivo son: tejidos, exudados y

pus colectados asépticamente. Cualquier muestra obtenida de sitio estéril por aspiración es

conveniente para cultivo. Los resultados de cultivos de muestras obtenidas de piel,

especialmente cerca de la superficie de membranas mucosas, deberá ser interpretado

cautelosamente.

Por ejemplo, hisopos de tractos drenados son inapropiados para el diagnóstico de

osteomelitis debido a la alta probabilidad de contaminación por comensales de la superficie y

bacterias colonizantes. En su lugar una muestra debe ser colectada por aspiración con una

aguja fina o por biopsia. Para maximizar el desarrollo bacteriano, los cultivos deberán ser

tomados antes de que el tratamiento antimicrobiano sea iniciado. El volumen de la muestra

obtenida es también importante, especialmente en fluido cerebroespinal, sangre y líquido

sinovial, en los cuales la concentración de los microorganismos es a menudo muy baja. Para

cultivo de líquido cerebroespinal de humano varios ml son recomendados de la muestra.

Volúmenes muy pequeños de animales pequeños deberán ser suficientes.





Hay algunos factores que deben tenerse en cuenta para el estudio microbiológico de

una muestra:

a. Las muestras deben ser lo más frescas posible.

b. El material debe ser tomado bajo estrictas normas de asepsia.

c. Cada muestra debe ser rotulada, de modo que sea fácil de identificar.

d. En caso de enviar órganos el peso de la muestra debe ser mínimo de 100 gr.

e. La muestra debe estar acompañada de la historia clínica completa.

f. Especificar claramente el análisis que solicite.

g. Muestras de fluido deben ser de un mínimo de 2-5 ml. (Ver sección de fluidos).

h. Muestras de materia fecal para grandes especies deben ser aproximadamente de 4

gramos y para pequeñas especies pueden ser muestras de hisopos en tubos estériles con

medio de transporte para estudio de laboratorio (Ver sección de Heces).

i. Muestras de leche o agua deben ser enviadas en un frasco con tapa de rosca de cierre

hermético con una capacidad mínima de 20-30 ml en el caso de la leche y de 50 ml si se

trata de agua. La muestra deberá mantenerse a una temperatura de 4°-5°C. Hasta el

momento de ser trabajada (Ver sección Leche para mastitis).

j. Muestras de órganos deben ser mínimo de 100-300 g. En caso de que el órgano sea

menor se debe enviar completo. Deberán ser enviadas en bolsas o frascos limpios (Ver

sección de órganos).

k. Muestras de carne de cerdo o bovino debe ser un mínimo de 250 gr.

l. Muestras de carne de ave, debe ser de la canal o la pieza completa.

m. En caso de que las muestras se encuentren refrigeradas, dejar a temperatura ambiente

por 30 minutos antes de procesarlas.

n. Todas las muestras procesadas y analizadas deberán permanecer en refrigeración a una

temperatura de 4°C durante los 2 días posteriores a la entrega de resultados.





Código Nombre del documento Lugar de almacenamiento

N/AManual de Bacteriología Veterinaria. UADY. Mérida Yucatán, México. Autores: Salazar F. M del R., Echeverría C. Pilar E. (2000).

Laboratorio de Bacteriología

BHI: Caldo Infusión Cerebro Corazóncc: Centímetro cubico.

Nivel de revisión

Sección y/o página Descripción de la modificación y mejora Fecha de

modificación01 1 Actualización de las firmas. Octubre 2012

02

Todo el documento

Se modificó la redacción y el número de páginas de cada apartado.Se cambio la redacción de los párrafos en los apartados de: Material para estudio bacteriológico. Muestras bacteriológicas: colección y transporte. Recepción y manejo de muestras diagnósticas.

31/Agosto/2016

Nota: Esta sección será utilizada a partir de la primera modificación a este documento. La revisión 00, se mantendrá en blanco.

VI. GLOSARIO

VII. CONTROL DE REVISIONES

V. DOCUMENTOS DE REFERENCIA

Las firmas avalan la responsabilidad de las personas que: elaboran el documento, revisan su adecuación y aprueban para su implementación dentro del Sistema de Gestión de la Calidad de la Universidad Autónoma de Yucatán

Aprobó

Dr. José Alberto Rosado AguilarResponsable del Laboratorio

Elaboró

QFB Ana Ma. Rejón MagañaTécnico Académico

Revisó

Dr. José Alberto Rosado AguilarResponsable del Laboratorio

Documents

MATERIAL Y METODOS PARA LA TOMA DE MUESTRAS