PENENTUAN LAJU PERTUMBUHAN FITOPLANKTON Chaetoceros calcitrans, Chlorella vulgaris, Dunaliella salina, DAN Porphyridium cruentum.pdf

7/22/2019 PENENTUAN LAJU PERTUMBUHAN FITOPLANKTON Chaetoceros calcitrans, Chlorella vulgaris, Dunaliella salina, DAN

1/7

1

*Alamat koresponden: [email protected]

PENENTUAN LAJU PERTUMBUHAN SEL FITOPLANKTON

Chaetoceros calcitrans, Chlorella vulgar is, Dunali ell a salina, DANPorphyridium cruentum

Yusi Anda Rizky*, Indah Raya, Seniwati Dali1

1Jurusan Kimia, FMIPA, Universitas Hasanuddin Makassar, Sulawesi Selatan 90245

Abstrak. Penelitian tentang Penentuan Laju Pertumbuhan Sel Fitoplankton Chaetoceros calcitrans,Chlorella vulgaris, Dunaliella salina, danPorphyridium cruentum telah dilakukan. Pada penelitian kali inidigunakan air laut dengan penambahan medium Conway dan vitamin sebagai media kultur pada keempatjenis fitoplankton uji. Fitoplankton uji diberikan perlakuan yang sama. Hasil Penelitian memperlihatkan

bahwa fitoplankton Chlorella vulgaris menghasilkan jumlah kepadatan sel paling tertinggi, yakni 3060 x 104

sel/mL pada hari ke-14.

Kata kunci: Chlorella vulgaris, fitoplankton, laju pertumbuhan, kepadatan sel

Abstract. The research about Determination of Cell Growth Rate by phytoplankton Chaetoceros calcitrans,

Chlorella vulgaris, Dunaliella salina, and Porphyridium cruentum have been done. It used sea water that

was added by Conway medium and vitamin as culture media on the fourth species of phytoplankton test. The

phytoplankton test has given same conditions. The result indicated that phytoplankton C. vulgaris is the

higher cell density 3.060 x 104 cell/mL on 14th day.

Key words: cell density, Chlorella vulgaris, growth rate, phytoplankton

PENDAHULUANPerubahan terhadap kualitas perairan

dapat ditinjau dari kelimpahan dan komposisi

fitoplankton. Keberadaan fitoplankton di

suatu perairan dapat memberikan informasi

mengenai keadaan perairan. Fitoplankton

merupakan parameter biologi yang dapat

dijadikan indikator untuk mengevaluasi

kualitas dan tingkat kesuburan suatu

perairan (bioindikator) (Wijaya dan Hariyanti,

2005).Dalam proses fotosintesisnya,

fitoplankton memanfaatkan dan mengubah

unsur-unsur anorganik menjadi bahan

organik dengan bantuan cahaya matahari.

Kemampuan dalam menyerap cahaya

matahari oleh seluruh permukaan sel

menjadikan peranannya lebih penting dari

pada tanaman air (Asmara, 2005).

Selain memiliki peranan penting

dalam habitatnya, fitoplankton juga memiliki

peranan penting dalam kehidupan manusia,

salah satunya dalam bidang kesehatan. Hal ini

disebabkan kandungan nilai gizi yang tinggi

yang terdapat pada fitoplankton. Menurut

Hasanah (2011), fitoplankton dapat

menambah nilai gizi pada makanan dan

mempunyai pengaruh yang positif terhadap

kesehatan manusia. Biomassa fitoplankton

kaya nutrien antara lain asam lemak omega 3

dan 6, asam amino esensial (leusin, isoleusin,

valin, dan lain-lain), dan karoten. Beberapa

jenis fitoplankton juga memiliki kandungan

protein yang tinggi. Asam amino padafitoplankton lebih baik jika dibandingkan

dengan sumber protein makanan yang lain.

Fitoplankton juga memiliki kandungan

karbohidrat dalam bentuk pati, glukosa, gula,

dan polisakarida lain. Beberapa keunggulan

lain dari fitoplankton tidak tergantung pada

iklim dan cuaca, waktu tumbuh cepat

sehingga dapat dipanen dalam waktu yang

tidak terlalu lama, dapat diproduksi terus-

menerus, tidak dapat menyebabkan dampak

buruk bagi lingkungan, serta produksinya

dapat dikendalikan sesuai dengan kebutuhan


2/7

2


dan keinginan, serta aman bagi kesehatan.

Fitoplankton memiliki komponen aktif

yang dimanfaatkan dalam bidang industri

pangan, kosmetik, pharmaceutical dan

neutraceutical. Komponen aktif fitoplankton

antara lain fenol, terpenoid, sterol, flavonoid

dan polisakarida. Selain itu, fitoplankton jugamengandung pigmen (klorofil, phycobillin,

karoten) tokoperol, EPA dan DHA (El-Baky

dkk, 2008). Komponen aktif mikroalga

mempunyai aktivitas antimikroba (Abedin

dan Taha 2008); antitumor dan antimikroba

(Taskin dkk, 2010); dan aktivitas antioksidan

(Marxen dkk, 2007).

Salah satu fitoplankton yang

mempunyai komponen aktif tersebut adalah

Chaetoceros calcitrans, Chlorella vulgaris,

Dunaliella salina, dan Porphyridiumcruentum. C. vulgaris telah digunakan

sebagai alternatif obat yakni sebagai

antioksidan dan antinyeri selain memiliki efek

hipoglikemik. Secara luas, C. vulgaris telah

diproduksi dan dipasarkan sebagai suplemen

makanan pada Negara Cina, Jepang, Eropa,

dan Amerika (Mayasari, 2012). Menurut

Hasanah (2011), P. cruentum memiliki

komponen aktif yang dimanfaatkan sebagai

antivirus, antibakteri, dan antioksidan.

Menurut Mayasari (2012), Dunaliella salinamemiliki kandungan -karoten yang tinggi

dan berpotensi sebagai suplemen makanan,

serta Chaetoceros calcitrans yang memiliki

kandungan protein yang banyak. Mengingat

fungsi dari fitoplankton yang sangat

bermanfaat, maka perlu dilakukan penelitian

untuk menentukan laju pertumbuhan sel

fitoplankton tersebut.

Berdasarkan uraian di atas, maka perlu

dilakukan penelitian mengenai PenentuanLaju Pertumbuhan Sel Fitoplankton


Dunaliella salina, dan Porphyridium

cruentum.

METODE PENELITIAN

Bahan PenelitianBahan-bahan yang digunakan pada

penelitian kali ini yakni biakan fitoplankton

Chaetoceros calcitrans yang berasal dari

Balai Riset Perikanan Budidaya Air Payau

Maros, Chlorella vulgaris, Dunaliella salina,

danPorphyridium cruentum yang berasal dari

Balai Budidaya Air Jepara, air laut yang

berasal dari daerah pantai Makassar, alkohol,

FeCl2.6H2O, H3BO3, MnCl2.4H2O,Na-EDTA,

NaH2PO4.2H2O, NaNO3, ZnCl2, CoCl2.6H2O,

(NH4)6MoO24.4H2O, CuSO4.5H2O, VitaminB12, Vitamin B1, Na2SiO3.5H2O, akuades,

kertas saring, dan aluminium foil.

Alat PenelitianAlat-alat yang digunakan pada

penelitian kali ini yakni alat-alat gelas yang

pada umumnya digunakan pada laboratorium,

set lampu neon philips 40 watt, toples yang

terbuat dari bahan gelas, panci, selang, batu

aerator, aerator,salinometer, haemositometer,

pompa vakum, corong Buchner, danmikroskop Nikon type 102.

Waktu dan Tempat PenelitianPenelitian ini dilakukan di

Laboratorium Kimia Anorganik dan

Laboratorium Organik, Jurusan Kimia

Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan

Alam Universitas Hasanuddin Makassar pada

bulan Juni 2012Oktober 2012.

Prosedur

Pembuatan medium ConwaySatu liter larutan stok A dididihkan

dan ditambahkan 2 mL larutan stok B.

Campuran larutan Conway ini ditambahkan

ke dalam air laut steril yang tidak

mengandung fitoplankton (1 mL per 1 L air

laut), kemudian ditambahkan 1 tetes stok C.

Untuk Fitoplankton yang dinding selnya

terbuat dari silika, ditambahkan lagi 1 mL

stok D.

Mengkultur Fitoplankton Chaetoceros

calcitrans, Chlorella vulgaris, Dunaliella

salina, danPorphyri dium cruentumAir laut ditampung dalam wadah

kemudian disterilkan dan disaring dengan

menggunakan kertas saring, selanjutnya

diukur salinitasnya dengan menggunakan alat

salinometer. Setelah itu, air laut steril

ditambahkan medium Conway, kemudian


3/7

3


0

200

400

600

800

1000

1200

1400

1600

1800

2000

2200

2400

2600

2800

3000

3200

3400

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18

Jumlahkepadatansel(104mL/sel)

Waktu Pertumbuhan (hari)

C.calcitrans

C.vulgaris

D.salina

P.cruentum

dilakukan aerasi untuk pengkondisian CO2,

dan ditambahkan fitoplankton.

Untuk memperoleh salinitas air laut

yang sesuai untuk spesies fitoplankton uji

dilakukan dengan cara pengenceran atau

pemekatan. Cara mendapatkan kepadatan

fitoplankton yang diinginkan digunakanrumus pengenceran:

V1 x N1 = V2 x N2

Dimana; V1 = Volume fitoplankton yang

dibutuhkan, V2 = Volume kultur,

N1 = Kepadatan sel fitoplankton stok,

N2 = Kepadatan sel fitoplankton kultur

Penghitungan kepadatan sel

fitoplankton menggunakan alat

Haemositometer dengan pengamatan

mikroskop.

Menentukan Waktu PertumbuhanFitoplankton Chaetoceros calcitrans,

Chlorella vulgaris, Dunaliella salina, dan

Porphyri dium cruentum.Penentuan pola pertumbuhan

fitoplankton, dilakukan dengan penghitungan

jumlah sel per mililiter medium setiap 24 jam.

Contoh diambil dengan pipet tetes steril,

diteteskan sekitar 0,1-0,5 mL pada

Haemositometer, kemudian diamati melalui

mikroskop. Bila kepadatan sel masih normal,

penghitungan kepadatannya menggunakan

rumus:

( )

Bila kepadatan selnya terlalu tinggi,

penghitungannya menggunakan rumus:

Jumlah sel/mL =Jumlah sel dalam 4 bagian x

4 x 10.000

HASIL DAN PEMBAHASAN

Pertumbuhan Sel Fitoplankton laut


Dunaliella salina, dan Porphyridium

cruentum.

Pengamatan pola pertumbuhan keempat selfitoplankton dilakukan setiap 1 hari selama 18

hari waktu pertumbuhan dalam media kultur

air laut dengan penambahan medium Conway

serta vitamin. Grafik pola pertumbuhan

keempat sel fitoplankton tersebut ditunjukkan

pada Gambar 1:

Gambar 1. Grafik pola pertumbuhan sel masing-masing fitoplankton

1 3 5 7 9 11 13 15 17

Train Line


4/7

4


Menurut Martossudarmo dan Wulani

(1990), dalam Budidaya (2009), pertumbuhan

fitoplankton secara umum ditandai dengan

empat tahap terpisah yaitu tahap adaptasi,

tahap eksponensial, tahap stationer, dan tahap

kematian. Berdasarkan grafik yang

ditunjukkan pada Gambar 1, dapat diketahuibahwa waktu pertumbuhan yang dibutuhkan

oleh fitoplankton C. calcitrans, C. vulgaris,

D. salina, dan P. cruentum untuk beradaptasi

terhadap media kultur (air laut yang

ditambahkan dengan medium Conway dan

vitamin) cukup singkat, yakni dua hari. Hal

ini dapat dilihat pada grafik kepadatan sel,

dimana kepadatan sel pada hari pertama

hingga hari kedua belum menunjukkan

jumlah pertumbuhan sel yang signifikan, hal

ini dikarenakan masih sedikitnya jumlah selyang mengalami proses pembelahan.

Pertumbuhan signifikan mulai terjadi pada

hari ketiga, yang berarti proses pembelahan

sel yang terjadi mulai optimal. Proses

pertumbuhan signifikan terjadi hingga hari

ke-11 untuk C. calcitrans dengan kepadatan

sel tertinggi berjumlah 1238 x 104 mL/sel,

hari ke-14 untuk C. vulgaris dengan

kepadatan sel tertinggi berjumlah

3060 x 104 mL/sel dan D. salina dengan

kepadatan sel tertinggi berjumlah515 x 104 mL/sel, serta hari ke-16 untuk

P. cruentum dengan kepadatan sel tertinggi

berjumlah 2387 x 104mL/sel. Setelah proses

pembelahan sel mencapai puncak, maka tak

terjadi proses pembelahan sel lagi, yang

artinya laju pertumbuhan seimbang dengan

laju kematian. Tahap ini dinamakan tahap

stationer. Tahap stationer mulai terjadi pada

hari ke-12 untuk C. calcitrans, hari ke-15

untuk C. vulgaris dan D. salina, serta harike-17 untukP. cruentum. Tahap stationer

terjadi dikarenakan jumlah pertumbuhan sel

fitoplankton dalam media kultur semakin

banyak, namun jumlah kandungan nutrien

dalam media kultur semakin menurun.

Selanjutnya keempat fitoplankton mengalami

tahap kematian, yakni penurunan jumlah sel

dikarenakan laju kematian sel lebih tinggi

daripada laju pertumbuhan sel sehingga

kepadatan populasi semakin menurun.

Menurut Rusyani (2001), terjadi penurunan

jumlah sel dikarenakan baik kandungan

nutrien maupun media kultur berada dalam

jumlah yang terbatas. Pada awal kultur,

kandungan nutrien masih tinggi, yang

dimanfaatkan oleh masing-masing

fitoplankton untuk melakukan proses

pertumbuhan. Peningkatan jumlah sel akanterhenti pada satu titik puncak populasi, pada

titik tersebut kebutuhan nutrien menjadi

semakin lebih besar, sedangkan kandungan

nutrien dalam media semakin menurun karena

tidak dilakukannya penambahan nutrien.

Selain itu, juga terjadi persaingan

memperebutkan tempat hidup karena semakin

banyak jumlahnya sel dalam volume yang

tetap. Menurut Fogg (1975) dalam Utomo

dkk (2005), adanya bayangan populasi dari

selnya sendiri (self shading) jugamenyebabkan berkurangnya intensitas cahaya

yang diserap sehingga dapat mengakibatkan

kematian. Ketiga faktor inilah yang

menyebabkan kematian individu dan

sekaligus memperkecil jumlah sel-sel yang

tumbuh, sehingga setelah mengalami puncak

akan mengalami penurunan jumlah sel.

Penggunaan medium Conway dan

vitamin sebagai media kultur untuk keempat

fitoplankton dengan kepadatan awal

10 x 104 sel/mL medium untukC. calcitrans,C. vulgaris, dan P. cruentum serta 20 x 104

sel/mL medium untukD. salina.C. calcitrans

mengalami peningkatan sebanyak 28 kali

lipat dari kepadatan awal selama 14 hari

kultur, C. vulgaris sebanyak 69,5 kali lipat

dan D. salina sebanyak 10,5 kali lipat dari

kepadatan awal selama 15 hari kultur, serta

P. cruentum 85 kali lipat dari kepadatan awal

selama 17 hari kultur.

Menurut Garofalo (2010) dalamMayasari (2012), kebutuhan nutrien sangat

berkorelasi dengan sifat morfologi dari

fitoplankton, dalam hal ini ukuran sel dan

tingkat pergerakan sel, yakni 6-8 m untuk

C. calcitrans (Sumeru, 2008), 2-8 m untuk

C.vulgaris (Chinnasamy dkk, 2009), 9-11 m

untukD. salina (Abusara dkk, 2011), dan

4-9 m untukP. cruentum (Lee, 1989).

Gambar 1 menunjukkan pola

pertumbuhan dari keempat fitoplankton di

dalam kondisi medium Conway dan vitamin


5/7

5


yang mana jumlah nutrien yang terkandung

adalah sama. Dari gambar tersebut dapat

dilihat bahwa jumlah pertumbuhan sel pada

keempat fitoplankton dari yang paling tinggi

ke yang paling rendah secara berturut-turut

adalah C. vulgaris, P. cruentum,

C. calcitrans, dan D. salina. Hal inidisebabkan karena sifat morfologi dari

C. vulgaris. C. vulgaris mempunyai ukuran

sel yang paling kecil bila dibandingkan

dengan P. cruentum, C. calcitrans, dan

D. salina, yang menyebabkan luas permukaan

sel semakin besar sehingga proses masuknya

nutrien ke dalam jaringan sel lebih cepat

terjadi. Selain itu, Menurut Mayasari (2012),

C. vulgaris tak memiliki alat gerak berupa

flagella, tak seperti ketiga fitoplankton

lainnya, sehingga nutrien hanya dimanfaatkanuntuk proses pertumbuhan dan pergerakan sel

saja, tak untuk pergerakkannya.

Namun apabila diperbandingkan

pertumbuhan antara C. calcitrans, D. salina,

danP. cruentum, makaP. cruentum memiliki

tingkat pertumbuhan sel yang lebih tinggi

daripada C. calcitrans danD. salina. Apabila

diperbandingkan lagi antara C. calcitrans dan

D. salina, C. calcitrans memiliki tingkat

pertumbuhan yang lebih tinggi daripada D.

salina. Hal ini terjadi dikarenakan ukuran seldari fitoplankton tersebut. Semakin kecil

ukuran sel fitoplankton, maka luas permukaan

sel semakin besar, sehingga proses masuknya

nutrien ke dalam jaringan sel lebih cepat

terjadi. Urutan ukuran sel dari yang paling

kecil ke yang paling besar secara berturut-

turut adalah P. cruentum 4-9 m, C.

calcitrans 6-8 m, dilanjutkan dengan D.

salina 9-11 m.

KESIMPULAN

Fitoplankton Chlorella vulgaris

merupakan jenis fitoplankton yang memiliki

jumlah kepadatan sel paling banyak, yakni

3060 x 104mL/sel pada hari ke-14.

DAFTAR PUSTAKAAbusara, N.F., Emeish, S., and Sallal, A.K.J.,

2011, The Effect of Certain

Environmental Factors on Growth

and -carotene Production by

Dunaliella sp. Isolated from Dead

Sea, Jordan Journal of Biological

Science, 4 (1): 29-36.

Andewi, N.M.A.Y. dan Hadi, W., 2011,

Produksi Gas Hidrogen melalui

Proses Elektrolisis Air sebagaiSumber Energi, skripsi tidak

diterbitkan, Jurusan Teknik

Lingkungan, Fakultas Teknik Sipil

dan Perencanaan, Institut Teknik

Sepuluh November, Surabaya.

Anggreani, N., 2009, Penentuan Parameter

Pencemaran berdasarkan

Keragaman Jumlah Fitoplankton

Cholerra sp. di Perairan, skripsi

tidak diterbitkan, Jurusan Teknikkimia, Fakultas Teknik, Universitas

Indonesia, Jakarta.

Berg, J.M., Tymoczko, J.L., and Stryer L.,

2002, Biochemistry 5th edition, New

York, WH Freeman.

Boney, A.D., 1983, Phytoplankton, Edwar

Arnold ( Publishers) Limited,

London.

Budidaya P., 2009, Budidaya Pakan Alami

(Fytoplankton, Zooplankton, dan

Benthos), (online),

(http://ardivedca.blogspot.com/, diakses

tanggal 25 Mei 2012, pukul

22.45 wita).

Carlsson, A.S., Bellen, J.B.V., Moller, R., and

Clayton, D., 2007, Micro and Macro

Algae: Utility For IndustrialApplications, EPOBIO Project, USA.

Fazeli, M.R., Tofighi, H., Samadi, N.,

Jamalifar, H., and Fazeli, A., 2006,

Carotenoid Accumulation by

Dunaliella tertiolecta (Lake Urmia

Isolate) and Dunaliella salina (CCAP

19/18 & WT) under Stress Condition,

Department of Drug and Food and

Pharmaceutical Science Research

Center, Iran.
http://ardivedca.blogspot.com/http://ardivedca.blogspot.com/http://ardivedca.blogspot.com/http://ardivedca.blogspot.com/


6/7

6


Hemschemeier, A., Melis, A., and Happe, T.,

2009, Analytical approaches to

photobiological hydrogen production

in unicellular green alga, Photosynth

res, 102 (2009): 523-540.

Herlinah, 2010, Karakteristik Genetik

Berbagai Spesies Chaetoceros Serta

Analisis Pemanfaatannya pada

Perbenihan Udang Windu (Panaeus

monodon), laporan tidak diterbitkan,

Dewan Riset Nasional Kementrian

Negara Riset dan Teknologi, Jakarta.

Karyati, Y., Rahmawati, I., Rachmawaty, R.,

Addarojah, Z., 2011,Manajemen dan

Konservatif Energi AnalisaBiohidrogen, skripsi tidak

diterbitkan, Jurusan Teknik Kimia,

Fakultas Teknik, Universitas

Diponegoro, Semarang.

Kundu, K., Kulshrestha, M., Dhar, N., and

Roy, A., 2012, Production of

Hidrogen as a Potential Source of

Renewable Energy from Green

Algae, 2012 IACSIT Coimbatore

Conferences,28: 57-62

Kurniawan, M., Izzati, M., dan Nurchayati,

Y., 2010, Kandungan Klorofil,

Karotenoid, dan Vitamin C pada

Berbagai Spesies Tumbuhan Akuatik,

Buletin Anatomi dan Fisiologi,

18 (1): 31-37.

Kusmiyati dan Agustini, N.W.S, 2007, Uji

Aktivitas Senyawa Antibakteri dariMikroalga Porphyridium cruentum,

Jurnal Biodiversitas 8 (1): 48-53.

Lee, E.R., 1989, Phycology, Second edition,

Cambridge, Cambridge University

Press.

Mayasari, E., 2012, Efek Penambahan Fe2+dan Mn2+ Terhadap Produktifitas-Karoten oleh FitoplanktonDunaliella salina, Isocrysis galbana,dan Chlorella vulgaris, thesis tidak

diterbitkan, Program Magister IlmuKimia, Fakultas Matematika danIlmu Pengetahuan Alam UniversitasHasanuddin, Makassar.

Muliawati, N., 2008, Hidrogen sebagai Sel

Bahan Bakar Sumber Energi Masa

Depan, skripsi tidak diterbitkan,

Jurusan Teknik Kimia, Fakultas

Teknik, Universitas Lampung,

Lampung.

Rahman, A., 2010, Nutrien Pembatas diEast

River; Korea, Bioscientiae, 7 (2):

1-16.

Riyono, S.H., 2006, Beberapa Metode

Pengukuran Klorofil FitoplanktonLaut, Oseana, 31 (3): 33-44.

Riyono, S.H., 2007, Beberapa Sifat Umum

dari Klorofil Fitoplankton, Oseana,

32 (1): 23-31.

Rusyani, E., 2001, Pengaruh Dosis Zeolit

yang Berbeda terhadap Pertumbuhan

Isochrysis galbana Klon Tahiti Skala

Laboratorium dalam Media

Komersial, skripsi tidak diterbitkan,Progran Studi Budidaya Perairan,

Fakultas Perikanan dan Kelautan,

Institut Pertanian Bogor, Bogor.

Sumeru, S., 2008, Artikel Budidaya

Perikanan, (online),

(http://www./2008_10_01_arcive.html,

diakses tanggal 25 Mei 2012, pukul

01.30 wita).

Suzuki, J.Y., Bollivar, D.W., dan Bauer, C.E.,1997, Genetic Analysis of

Chlorophyll Biosynthesis, Annual

Review of Genetics, (31): 61-89.

Utomo, N.B.P., Winarti, dan Erlina, A., 2005,

Pertumbuhan Spriluna plantesis yang

Dikultur dengan Pupuk Inorganik

(Urea, TSP, dan ZA) dan Kotoran

Ayam, Jurnal Akuakultur Indonesia,

4 (1): 41-48.
http://www./2008_10_01_arcive.htmlhttp://www./2008_10_01_arcive.htmlhttp://www./2008_10_01_arcive.htmlhttp://www./2008_10_01_arcive.html


7/7

7


Wang, W.Y., Wang, W.L., Boynton, J.E., dan

Gillham, N.W., 1974, Genetic

Control of Chlorophyll Biosynthesis

in Chlamydomonas, The Journal of

Cell Biology, (63): 806-823.

Yudha, A.P., 2008, Senyawa Antibakteri dari

Mikroalga Dunaliella sp. Pada UmurPanen yang Berbeda, skripsi tidak

diterbitkan, Program Studi Teknologi

Perikanan Fakultas Perikanan dan

Ilmu Kelautan, Institut Pertanian

Bogor, Bogor.

Documents

PENENTUAN LAJU PERTUMBUHAN FITOPLANKTON Chaetoceros calcitrans, Chlorella vulgaris, Dunaliella salina, DAN Porphyridium cruentum.pdf